1396 26 5 103 178

بررسی فاکتورهای شیمیایی، ارزش غذایی و میزان پذیرش کیلکای معمولی (Clupeonella cultriventris) خشک طعم‌دار تولید شده به روش صنعتی Study of chemical factors, nutritional value and acceptance of dried flavored Kilka (Clupeonella cultriventris) produced by industrial method 1 1 این پژوهش با هدف تهیه فرآورده خشک طعم دار از کیلکا، بررسی ارزش غذایی، فاکتورهای شیمایی، کپک و مخمر و مدت زمان ماندگاری در دمای محیط انجام شد. تیمارها شامل کیلکای خشک نمک سود شده سبک (تیمار 1)، نمک سود شده سبک به اضافه سرکه (تیمار 2)، نمک سود شده سبک به اضافه سس خردل (تیمار 3) و نمک سود شده سبک به اضافه سس گوجه فرنگی (تیمار 4) بودند. تیمارهای طعم‌دار شده در دستگاه  خشک کن آزمایشگاهی به مدت 24 ساعت قرار گرفتند. نمونه ها به روش دوخت معمولی (هوازی) بسته بندی شدند. نمونه برداری در مراحل پس از تولید و فواصل زمانی 15 روز انجام شد. جذب نمک در تیمارها 24 درصد بود. پروتپین در تیمار 3 در مقایسه با تیمار 2 افزایش معنی دار داشت (05/0>p). مقادیرTVB-N ، pH، پراکسید، تیوباربیتوریک اسید، بو، طعم، مزه و رنگ در هر تیمار طی مدت زمان نگهداری در دمای محیط تفاوت معنی دار نشان دادند (05/0>p). رطوبت، چربی و خاکستر در هر ۴ تیمار طی مدت زمان نگهداری در دمای محیط تفاوت معنی دار نداشتند(05/0p>). فاکتور طعم و مزه در تیمارهای 1 و 2 بر خلاف تیمارهای 3 و 4 طی مدت زمان نگهداری در دمای محیط تفاوت معنی‌دار نشان داد (05/0>p). در تیمارهای آزمایشی و شاهد رنگ و تردی کاهش معنی دار نشان دادند (05/0>p). تردی در تیمار 2 در مقایسه با تیمارهای 1 و 4 افزایش معنی دار داشت (05/0>p). در تیمارهای آزمایشی طی 45 روز نگهداری در دمای محیط کپک و مخمر مشاهده نشد. با توجه به نتایج به دست آمده از ارزش غذایی و آنالیز حسی، تیمار 2 در مقایسه با سایر تیمارها از کیفیت بهتری برخوردار بود. تیمارهای آزمایشی به مدت 45 روز در دمای محیط از کیفیت خوبی برخوردار بودند.   2 This aim of present study is to prepare Kilka dried flavored (Clupeonella cultriventris). We evaluated nutritional value, chemical factors and shelf life in salt (group 1), vinegar (group 2), mustard Sauce (group 3) and tomato sauce (group 4)-treated flavored dried Kilka. Flavored Kilka were placed in industrial dryer for 12 hours (in per 40 and 80 oC temperatures) and packaged through conventional method. Sampling was done after production and intervals 15 days. Salt absorption was 10%. Protein levels was showed significant changes in treatment 3 compared with treatment 2 (p<0.05). During storage in room temperature, was observed significant difference in chemical factors such as  TVB-N, pH, peroxide value and Thiobarbitouric acid and sensory factors such as odor, flavor and color(p<0.05). Moisture, fat and ash remained unchanged. Flavor did not significant differences in 1 and 2 treatments compared with other groups(p>0.05). Color and fragility decreased significantly in 3 and 4 groups(p<0.05). Fragility increased significantly in treatment 2 compared with 3 and 4 groups(p<0.05). Our results demonstrated that vinegar treated Kilka has a better quality compared with other treatments. Experimental treatments had a favorable quality for 45 days in room temperature. 1 12 2015/08/16 1394/5/25 2017/12/17 1396/9/26 علی اصغر خانی پور A.A Khanipoor موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران aakhanipour@yahoo.com مینا سیف زاده M Seifzade نوسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران m_seifzadeh_ld@yahoo.com قربان زارع گشتی Gh Zaregashti نوسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران dsfgsv@yahoo.com فرشته خدابنده F Khodabande نوسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران Common Kilka Nutritional value Chemical factors Shelf life Dried flavored fish کیلکای معمولی ارزش غذایی فاکتورهای شیمیایی زمان ماندگاری ماهی خشک طعم دار ##ذولفقاری، م.، شعبانپور، ب. و فلاح زاده، س.، 1390. اثر نمک سود کردن، بسته بندی در خلاء و تاثیر توامان آن ها بر ماندگاری فیله قزل آلای رنگین کمان طی نگهداری در دمای 4 درجه سلسیوس. فصلنامه علوم و صنایع غذایی، 8 (31) : 35-44.##سیف زاده، م. و زارع گشتی، ق.، 1386. ارزیابی و کیفیت گوشت تاس ماهی ایرانی پرورشی عمل آوری شده با نمک خالص و نمک مخلوط. مجله علمی شیلات ایران، 16(2) : 93–102. ##معینی، س. و جواهری، م.، 1383. بررسی کاربرد روش اسمز در خشک کردن ماهی کیلکا. مجله علوم کشاورزی ایران. 35(4) : 901-909.##هدایتی فرد، م.، 1394. تغییرات شاخص های حسی، شیمیایی، بار میکروبی و ترکیب اسیدهای چرب بافت ماهی کپور نقره ای تحت فرآیند خشک کردن حرارتی و نگهداری تحت خلاء در 4 درجه سانتی گراد. مجله علمی شیلات ایران. 24(4): 127 – 144.##Aberoumand, A. and Karimi Reza abad, M., 2015. Influences of drying methods processing on nutritional properties of three fish species Govazym stranded tail, Hamoor and Zeminkan. International Food Research Journal, 22:2309-2312.##Adib Flowra, F., Gulrukh Nahar, D., Sen Tumpa, A. and Islam, T., 2012. Biochemical analysis of five dried fish species of Bangladesh University. Journal Zoological Rajshahi Univercity, 31:09-1. DOI: 10.3329/ujzru.v31i0.15373##Akinneye, J. O., Amoo, I. A. and Bakare, O. O., 2010. Effect of drying methods on the chemical composition of three species of fish (Bonga spp., Sardinella spp. and Heterotis niloticus(. African Journal of Biotechnology, 9: 4369-4373. DOI: 10.5897/AJB2010.000-3299. ##Al, Reza, S., Karmaker, S. K., Hasan, M., Roy, S., Hoque, R. and Rahman, R., 2015. Effect of traditional fish processing methods on the proximate and microbiological characteristics of Laubuka dadiburjori during storage at room temperature. Journal of Fisheries and Aquatic Science, 10: 232-243. DOI: 10.3923/jfas.2015.232.243##AOAC, 2005. Official methods of analysis. Association of Official Analytical Chemists, Maryland, USA.##AOAC, 2002. Official methods of analysis. Association of Official Analytical Chemists, Maryland, USA.##Atapattu, R. and Samarajeewa, U., 1990. Fungi associated with dried fish in Sri Lanka. Mycopathologia, 11: 55 – 59. DOI: 10.1007/BF02277304##Beatty, S. A. and Fougere, H., 1957. The processing of dried salted fish. Published by the Fisheries Research Board of Canada Under the Control of the Honorable the Minister of fisheries Ottawa. Bulletin. 112: 1 - 54.##Bellagha, S., Sahli, A., Farhat, A., Kechaou, N. and Glenza, A., 2007. Studies on salting and drying of sardine (Sardinella aurita): experimental kinetics and modelling. Journal of Food Engineering, 78: 947-952. DOI: 10.1016/j.jfoodeng.2005.12.008##Binte Farid, F., Ara Latifa, G., Nabila Nahid, M. and Begum, M., 2014. Effect of sun-drying on proximate composition and pH of Shoal fish (C. striatus; Bloch, 1801) treated with salt and salt-turmeric storage at room temperature. IOSR Journal of Agriculture and Veterinary Science, 7: 01- 08. DOI:10.9790/2380-07930108##Chukwu, O., 2009. Influences of drying methods on nutritional properties of Tilapia fish (Oreochromis nilotieus) Ogbonnaya. World Journal of Agricultural Sciences, 5: 256-258. ##Chukwu, O. and Shaba, I. M., 2009. Effects of drying methods on proximate compositions of Catfish (Clarias gariepinus) Ogbonnaya and Ibrahim Mohammed. World Journal of Agricultural Sciences, 5: 114-116 ##Davis, L., Goodwin, L., Smith, G. and Hole, M., 1993. Lipid oxidation in salted-dried fish: The effect of temperature and light on the rate of oxidation of a fish oil. Journal of the Science of Food and Agriculture, 62: 355-359. ##Duan, Z. H., Jiang, L. N., Wang, J – I., YangYu, X. and Wang, T., 2011. Drying and quality characteristics of Tilapia fish fillets dried with hot air microwave heating. Food and Bioproducts Processing, 89: 472–476 . DOI: 10.1016/j.fbp.2010.11.005##Fafioye, O.O., Efuntoye, M. O. and Osho, A., 2001. Studies on the fungal infestation of five traditionally smoke-dried freshwater fish in Ago-Iwoye, Nigeria. Mycopathologia, 154: 177–179. DOI: 10.1023/A:1016331418893.##Foline, O. F., Rachael, A. M., Iyabo, B. E. and Fidelis, A. E., 2011. Proximate composition of Catfish (Clarias gariepinus) smoked in Nigerian stored products research institute (NSPRI): Developed kiln. International Journal of Fisheries and Aquaculture, 3: 96-98. ##Gokoglu, N., Yerlikaya, P. and Cengiz, E., 2004. Effect of cooking methods on the proximate composition and mineral contents of Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Food Chemistry, 84: 19-22. DOI:10.1016/S0308-8146(03)00161-4##Islam, T., Ahmed, S., Sultana, A., Sen Tumpa, A. and Adib Flowra, F., 2013. Nutritional and food quality assessment of dried fishes in Singra upazila under nature district of Bangladesh. Trends In Fisheries Research, 2: 2319- 4758. ##Immaculate, J., Sinduja, P. and Jamila, P., 2012 . Biochemical and microbial qualities of Sardinella fimbriata sun dried in different methods. International Food Research Journal, 19: 1699 - 1703.##Irene Seila, N., 2014. Determination of fungi and factors associated with their growth on dried Rastrineobola argentea in Gucha South, KisII country, Kenya. Dissertation, School of Pure and Applied Sciences of Kenyatta University. ##Juarez Ceballos, M., 2012. Effect of protein and lipid oxidation in the changes of color in salted and dried herring and klipp fish. NTNU Trondheim, University of Nonwage.## Minh, N.V., 2007. The effects of storing and drying on the quality of cured, salted Cod. Nha Trang, University of Vietnam.##Mustapha, M. K., Ajibola, T. B., Ademola, S. K. and Salako, A. F., 2014. Proximate analysis of fish dried with solar driers. Italian Journal Food Science, 26: 221 – 226. ##Nabila Nahid, M., Ara Latifa, G., Chakraborty, S. C., Binte Farid, F. and Begum, M., 2016. Comparison of shelf life quality of salted smoke-dried freshwater fish Chapila (Gudusia chapra) Kaika (Xenentodon cancila) and Baim (Mastacembelus pancalus) at refrigeration storage (4oC). IOSR Journal of Environmental Science, Toxicology and Food Technology, 10: 08-14. DOI: 10.9790/2402-1012020814##Ogbonnaya, C. and Shaba, I. M., 2009. Effects of drying methods on proximate compositions of Catfish (Clarias gariepinus). World Journal of Agricultural Sciences, 5: 114 - 116. ## Seifzadeh, M., 2014. Effects of whey protein edible coating on bacterial, chemical and sensory characteristics of frozen common Kilka. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 13: 477-491. ##Siddique, M. A. A., Mojumder, P. and Zamal, H., 2012. Proximate composition of three commercially available marine dry fishes (Horpodon nehereus, Johnius dussumieri and Lepturacanthus savala). American Journal of Food Technology, 7:429–436. DOI: 10.3923/ajft.2012.429.436##Smith, G. and Hole, M., 1991. Browning of salted sun-dried fish. Journal of the Science of Food and Agriculture, 55: 291 -301. DOI: 10.1002/jsfa.2740550214##Tamanna, N. and Mahmood, N., 2015. Food processing and maillard reaction products: Effect on human hhealth and nutrition. International Journal of Food Science, 2015: 1 - 6 . DOI:10.1155/2015/526762##Tao, W. and Linchun, M., 2008. Influences of hot air drying and microwave drying on nutritional and odorous properties of Grass Carp (Ctenopharyngodon idellus) fillets. Food Chemistry, 110: 647-653. doi.org/10.1016/j.foodchem.2008.02.058##Tournas, V., Stack, M. E., Mislivec, P. B., Koch, H. A. and Bandler, R., 2001. Yeasts, molds and mycotoxins. Food and Drug Administration, Washington, DC, USA. ##Ullah, N., Hazarika, P. and Handique. P. J., 2016. Biochemical quality assessment of ten selected dried fish species of North East India. International Advanced Research Journal in Science, Engineering and Technology, 3:30-33. DOI: ## 10.17148/IARJSET.2016.3107##Wang, Y., Zhang, M., Mujumdar, A. S. and Mothibe , K. J., 2012. Quality changes of dehydrated restructured fish product from Silver Carp (Hypophthalmichthys molitrix) as affected by drying methods. Food and Bioprocess Technology, 6: 1-17. DOI: 10.1007/s11947-012-0812-y##Wheeler, K. A., Hocking, A. D., Pitt, J. J. and Anggawati, A. M., 1989. Fungi associated with Indonesian dried fish. Food Microbiology, 34: 351-357. DOI: 10.1016/0740-0020(86)90020-1 ## ##

بررسی خواص آنتی‌اکسیدان ترکیبات فنلی در گیاه دریایی قهوه ای (Sargassum ilicifolium) سواحل ایرانی دریای عمان Antioxidant properties of phenol compounds in brown seaweed, Sargassum ilicifolium of Iranian shore coast of Oman sea 1 1 بهره­گیری­های صنعتی از گیاهان دریایی در دهه­های گذشته رشد نمایی را نشان می­دهد. کاربردهای غذایی به خصوص در ترکیبات غذای انسانی و کاربردهای درمانی از مهمترین این بهرمندی­ها محسوب می­گردند. در این مقاله پتانسیل­های بیوتکنولوژیک و تجاری گونه غالب سواحل استان سیستان و بلوچستان- سارگاسوم ایلیسی فولیوم، به خصوص در موضوع  بهداشت و سلامت انسانی شامل ترکیبات تقریبی، محتوای فنولیک، فعالیت آنتی­اکسیدانی کل، محدوده اسید آلژینیک مورد ارزیابی آزمایشگاهی قرار گرفته است. بطور کلی این گیاه دریایی دارای کربوهیدراتی بسیار غنی (21/40-38/33 درصد وزن  خشک) ولی محتوای چربی (04/0-17/0 درصد وزن خشک) بسیار کمی دارد. محتوای فنولیک و فعالیت آنتی اکسیدانتی کل آن به ترتیب  05/3±66/28 میلی­گرم بر گرم و 86/9±66/36 میلی­گرم بر گرم  بدست آمد. محدوده اسید آلژینیک آن بین 15-6/12 درصد می­باشد. لذا می تواند به  عنوان یک محرک ایمنی در غذا مورد استفاده قرار گیرد.   2 Industrial usage of different macro algae has grown exponentially during the last decade. Nutritional applications for human feeding and multiple therapeutic are their main important exploitation. This work is aimed at providing information on a species of Sargassum so as to promote this alga to be potentially profitable from biotechnology and commercial perspectives, and also benefit public health. The proximate composition, total phenolic content, total antioxidant activity, alginic acid yield of brown seaweed, Sargassum ilicifolium were studied. The seaweed was high in carbohydrate (33.38-40.21% DW) and low in lipid content (0.17-0.04% DW). Total phenolic content and total antioxidant activity of this seaweed species are 28.66±3.05 mg /g and (36.66±9.86 mg /g respectively. This seaweed showed (12.6-15.0%) alginic acid yield which can be used as immune- stimulant in food and feed.   13 21 2015/08/162017/05/15 1396/2/25 2017/12/172018/01/7 1396/10/17 محمود حافظیه M Hafezieh تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی ایران jhafezieh@yahoo.com Bioactive composition Total phenol Total antioxidant Alginic acid yield Sargassum ilicifolium Oman Sea ترکیبات زیست فعال کل فنل کل آنتی اکسیدانت محدوده آلژینیک اسید Sargassum ilicifolium دریای عمان ##آبکنار، م.م.، حافظیه، م.، امینی راد، ت.، قرنجیک، ب.م. و اژدهاکش، ا.، 1392. بررسی میزان آلژینات در گونه های مختلف جلبک های دریایی خلیج چابهار. گزارش نهایی پروژه تحقیقاتی موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور.##اژدری، ح.، اژدری، ز.، آبکنار، م.م.، قرنجیک، ب.م.، 1381. برآورد جلبک به ساحل آورده شده ساحل دریای عمان. گزارش نهایی پروژه تحقیقاتی موسسه تحقیقات شیلات ایران. 120صفحه. ##حافظیه، م.، مرادی، ی.، پورکاظمی، م.، دادگر، ش. و شریفیان، م.، 1395. ترکیبات تقریبی- شیمیایی گیاه دریایی سارگاسوم مناطق مختلف استان سیستان و بلوچستان. مجله علمی شیلات ایران. شماره 4: 40-29.##قرنجیک، ب.م.، اژدری، د.، آذینی، م.ر.، امینی راد، ت. و بلوچ، گ.م.، 1391. ارزیابی ذخایر گونه های اقتصادی گیاهان دریایی سواحل دریای عمان- استان سیستان و بلوچستان. گزارش نهایی پروژه تحقیقاتی موسسه تحقیقات شیلات ایران. 159 صفحه.##Ambreen Hira, k., Amna Tariq Ruqqia1 Vqarsultana1 and Jehan Ara., 2012. Evaluation of biochemical component and antimicrobial activity of some seaweeds occurring at Karachi coast, Pakistan Journal of Botany, 44(5): 1799-1803.##Bixler, H.J. and Porse, H., 2010. A decade of change in the seaweed hydrocolloids industry, Journal of Applied Phycology, 23: 321-335. Doi:10.1007/s10811-010-9529-3.##Budhiyanti, S.A., Raharjo, S., Marseno, D.W. and Lelana, I.Y.B., 2011. Free radical scavenging, metal chelating and singlet oxygen quenching activity of fractionated brown seaweed Sargassum hystrix extract, Journal of Biological Sciences, 11: 288-298. Doi:10.3923/jbs.2011.288.298##Burtin, P., 2003. Nutritional value of seaweeds. Electronic Journal of Environmental, Agricultural and Food Chemistry, 2: 498-503. ##Chauhan, V.D., 1970. Variation in alginic acid content with growth stages in two species of Sargassum. Botanica Marina, 13(1): 57-58. ## Doi:10.1515/botm.1970.13.1.57##Chidambaram, K. and Unny, M.M., 1953. Note on the value of seaweeds as manure. Ist Int. Seaweed Research and Utilizations, pp: 67-68.##Dubois, M., Giles, K.A., Hamilton, J.K., Reborsand, P.A. and Smith, F., 1956. Calorimetric method for determination of sugars and related substances, Analytical Chemistry, 28: 350-356. Doi:10.1021/ac60111a017##Fleurence, J., Gutbier, F., Mabeau, S. and Leray, C., 1994. Fatty acids from 11 marine macro algae of the French Britanny coast, Journal of Applied Phycology, 6: 527-532.## ##Folch, J., Lees, M. and Solane Stanley, G.H., 1956. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues, Journal Biological Chemistry, 226: 497-509.##Ganapathi, K., Subramanian, V. and Mathan, S., 2013. Bioactive potentials of brown seaweeds, Sargassum myriocystum (J. Agardh) S. plagiophyllum (C.Agardh) and S. ilicifolium (Turner) J.Agardeh. Int. Res J Pharm. App Sci., 3(5): 105-111. ##Gupta, S. and Abu-Ghannam, N., 2011. Recent developments in the application of seaweeds or seaweed extracts as a means for enhancing the safety and quality attributes of foods, Innovative Food Science and Emerging Technologies, 12: 600-609. ##Doi:10.1016/j.ifset.2011.07.004##Hossain, Z., Kurihara, H. and Takahashi, K., 2003. Biochemical composition and lipid compositional properties of the brown alga Sargassum horneri, Pakistan Journal of Biological Sciences, 6(17): 1497 -1500.##Kaladharan, P. and Kaliaperumal, M., 1999. Seaweed industry in India, ICLARM (NAGA), 22: 11-14.##Kalimuthu, S., Kaliaperumal, N. and Ramaligam, J.R., 1991. Standing crop, algin and mannitol of some alginophytes of Mandapam coast, Journal of the Marine Biological Association of India, 33(1&2): 170-174.##Kappanna, A.N., Visweswara Rao, A. and Mody, I.C., 1962. Alginic acid content of some of the brown seaweeds of Sourashtra coast, Current Sciences, 31: 463-46.##Khotimchenko, S.Yu., 2010. The antitumor properties of non-starch polysaccharides: carrageenans, alginates, pectins, Russian Journal of Marine Biology, 36(6): 401-412.##Kohen, R. and Nyska, A., 2002. Invited review: Oxidation of biological systems: Oxidative stress phenomena, antioxidants, redox reactions and methods for their quantification, Toxicologic Pathology, 30: 620-650. ## Doi:10.1080/01926230290166724##Kuda, T. and Ikemori, T., 2009. Minerals, polysaccharides and antioxidant properties of aqueous solutionsobtained from macroalgal beach-casts in the Noto Peninsula, Ishikawa, Japan, Food Chemistry, 112: 575–581. ## Doi:10.1016/j.foodchem.2008.06.008##Kumar, M., Kumar, P., Trivedi, N., Shukla, M.K., Gupta, V., Reddy, C.R.K. and Jha, B., 2010. Minerals, PUFAs and antioxidant properties of some tropical seaweeds from Saurashtra coast of India, Journal Applied Phycology, 23:797–810.##Lowry, O.H., Rosebrough, N.J., Farr, A.L. and Randall, R.J., 1951. Protein measurement with the phenol regent, Journal of Biological Chemistry, 193: 265- 275 (original method).##Mairh, O.P., 1982. Seasonal variation in alginic acid and viscosity of sodium alginate from a brown alga Cystoseira indica (Thivy. et Doshi) Mairh from Port Okha. Seaweed Research. Utilization, 5(1): 43-46.##Manivannan, K., Thirumaran, G., Karthikai Devi, G., Hemalatha, A. and Anantharaman, P., 2008. Biochemical composition of seaweeds from Mandapam coastal regions along southeast coast of India, American -Eurasian Journal of Botany, 1(2): 32-37.##Marinho-Soriano, E., Fonseca, P.C., Carneiro, M.A.A. and Moreira, W.S.C., 2006. Seasonal variation in the chemical composition of two tropical seaweeds, Bioresource Technology, 97:2402-2406. Doi:10.1016/j.biortech.2005.10.014##McHugh, D.J., 1987. Production, properties and uses of alginates. FAO Fisheries Technology, 288: 58-115.##Murthy, M.S., Radia, 1978. Eco-biochemical studies on some economically important intertidal algae from Port Okha (India). Botanica Marina, 21(7): 417-422.##Nagai, T. and Yukimoto, T., 2003. Preparation and functional properties of beverages made from sea algae, Food Chemistry, 81: 327-332. ## Doi:10.1016/S0308-8146(02)00426-0##Neela, M.V., 1956. Analysis of seaweeds. Home. Science. Bull. Women's Christian Coll. Madras. 258 p.##Parekh, R.G., Maru, L.V. and Dave, M.J., 1977. Chemical composition of green seaweeds of Surashtra Coast, Botanica Marina, 20(6): 359-362.## Doi:10.1515/botm.1977.20.6.359##Pathak, T.S., Kim, J.S., Lee, J.S., Baek, D.J. and Paeng, K.J., 2008. Preparation of alginic acid and metal alginate from algae and their comparative Study, Journal of Polymer and the Environment,16: 198-204. ##Pavia, H., Cervin, G., Lindgren, A. and Aberg, P., 1997. Effects of UV-B radiation and stimulated herbivory on phlorotannins in the brown alga Ascophyllum nodosum. Marine Ecology Progress Series, 157: 139-146.##Perez, R., Kaas, R., Campello, F., Arbault, S. and Barbaroux, O., 1992. Ed. La culture des algues marinesdans le monde, IFREMER, Plouzane, France, 614 p.##Pillai, V.K., 1957. Chemical studies on Indian seaweeds. II: Partition of Nitrogen Proceedings on Indian Academic Science, B 45: 43-63. Doi:10.1007/BF03051022##Pise, N.M. and Sabale, A.B., 2010. Biochemical Composition of seaweeds along central west coast of India. Pharmacognosy Journal, 2: 7. Doi:10.1016/S0975-3575(10)80082-3##Prieto, P., Pineda, M. and Aguilar, M.M., 1999. Spectrophotometric quantification of antioxidant capacity through the ormation of a phoshomolybdenum complex; specific application to the determination of vitamin E, Analytical Biochemistry, 269: 337-341. Doi:10.1006/abio.1999.4019##Ragan, M.A. and Glombitza, K.W., 1986. Phlorotannins brown algal polyphenols. In:Progress in Phycological Research Bio press, Round, F.E. and D.J. Chapman (eds.), Bristol, UK, pp: 129-241.##Simpi, C.C., Nagathan, C.V., Karajgi, S.R. and Kalyane, N.V., 2013. Evaluation of marine brown algae Sargassum ilicifolium extract for analgesic and anti-inflammatory activity, Pharmacognosy Research, 5(3): 146-149. ## Doi:10.4103/0974-8490.112413##Singleton, V.L. and Rossi, J.A., 1956. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic- phosphotungstic acid reagents, American Journal of Enology and Viticulture, 16: 144-158.##Sitakara Rao, V. and Tipnis, U.K., 1967. Chemical constituents of marine algae from Gujarat coast. Proceedings and Seminar an sea salt and plants, CSMCRI, Bhavanagar, pp: 277-288.##Sitakara Rao, V. and Tipnis, U.K., 1964. Protein content of marine algae from Gujarat coast, Current Science, 33: 16-17.##Solimabi, Naqvi, S.W.A., 1975. Alginic acid content of some brown seaweeds of Goa. Mahasagar, 8(1& 2): 97-99.##Suresh, V., Senthil Kumar, N., Murugan, P., Palani, P., Rengasamy, R. and Anbazhagan, C., 2012. Antioxidant properties of sequential extracts from brown seaweed, Sargassum plagiophyllum, C. Agardh, Asian Pacific Journal of Tropical Disease, pp: S937-S939. Doi:10.1016/S2222-1808(12)60295-3##Suzuki, N., 1955. Studies on the manufacture of align from brown algae. Memoirs of the Faculty of Fisheries, Hokkaido University, 3: 93-158.##Valson, A.P., 1955. Alginic acid content of some of the common seaweeds of the Gulf of Mannar area, Current Sciences, 24: 343-345.## ##

بررسی روابط اکولوژیک بین گروه‌های زیستی فیتوپلانکتون، زئوپلانکتون، شانه‌دار و ماکروبنتوز در بخش جنوب شرقی دریای خزر (مازندران-گهرباران) Study of ecological relationships among biological groups of phytoplankton, zooplankton, Jelly comb and macrobenthos at the southeast of the Caspian Sea (Mazandaran-Goharbaran) 1 1 این مطالعه در بخش جنوب شرقی دریای خزر در سواحل مازندران و در منطقه گهرباران در سال 1393-1392 به اجرا درآمد. نمونه برداری بصورت ماهانه و در 8 ایستگاه صورت پذیرفت. در مجموع 157 گونه فیتوپلانکتون، 10 گونه از زئوپلانکتون و 24 گونه از ماکروبنتوز شناسایی گردید. اختلاف معنی داری از نظر تراکم و زی توده بین گروه­های زیستی در ایستگاه­های مختلف وجود داشت (05/0>p). بررسی مقایسه تراکم و زی توده فیتوپلانکتون در فصول مختلف نشان داد که از بهار تا زمستان دارای روند افزایشی بوده است اما در مقابل میزان تراکم و زی توده زئوپلانکتون دارای روند کاهشی بوده است. نتایج حاصل از آنالیز چند متغیره ضریب همگونگی پیرسون و آنالیز چند متغیره مولفه­های اصلی در ماه­های مختلف نشان داد که از نظر زی­توده بیشترین همبستگی بین فیتوپلانکتون و زئوپلانکتون با 943/0 بدست آمد اما از نظر تراکم بیشترین همبستگی بین زئوپلانکتون و شانه­دار بود و این امر می­تواند به دلیل ساختار فیزیولوژیک و شرایط اکوبیولوژیک آن­ها باشد. نتیجه­گیری این که روابط اکولوژیک بین گروه­های زیستی می­تواند به دلیل تغییرات تراکم، زی­توده، تنوع گونه­ای، پارامترهای محیطی، شکارچی، تغییرات فصلی، رفتار تغذیه­ای و آلودگی­های زیست محیطی باشد.     2 This study was carried out at the southeast of the Caspian Sea on the shores of the Goharbaran region during 2013-2014. Sampling was repeated monthly in eight stations. A total of 157 species of phytoplankton, 10 species of zooplankton and 24 species from macro invertebrate were identified. There were significant differences based on abundance and biomass among different biological groups in various stations (p<0.05). Comparing the abundance and density of phytoplankton in different seasons showed that there was an increasing trend in phytoplankton from spring to winter, whereas the abundance and biomass of zooplankton showed a decreasing trend. The results of the multivariate statistical analysis, Pearson correlation coefficient and Principal Component Analysis (PCA) in different months showed that the biomass of phytoplankton and zooplankton had the highest correlation (0.943), whereas the abundance of zooplankton and jelly comb had the highest correlation which could be due to their physiological structure and ecobiological conditions. In conclusion, ecological relationships among biological groups can be due to the abundance and biomass changes, species diversity, environmental parameters, predator, seasonal changes, feeding habits and environmental pollutions.   23 31 2015/08/162017/05/152016/12/1 1395/9/11 2017/12/172018/01/72018/01/7 1396/10/17 محمد علی افرائی بندپی M.A Afraei Bandpei موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران mafraei@yahoo.com حسن نصرالله زاده H Nasrolahzadeh موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران hnsaravi@yahoo.com ابولقاسم روحی A Roohi موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران roohi_ark@yahoo.com آسیه مخلوق A Makhlogh موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران asieh_makhlogh@yahoo.com فاطمه سادات تهامی F Tahami موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران farnaz_tahami@yahoo.com نوربخش خداپرست N Khodaparast موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران noorbakhsh_k@yahoo.com مژگان روشن طبری M Roshantabari موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران rowshantabari@yahoo.com مهدی نادری M Naderi موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران Naderi_j@yahoo.com غلامرضا دریانبرد R Daryanabard موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران daryanabard@yahoo.com حمید رمضانی H Ramazani موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران hamid_ramazani@yahoo.com فرشته اسلامی F Eslami موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران fr_eslami1689@yahoo.com Phytoplankton Zooplankton Jelly comb Macrobenthos Caspian Sea فیتوپلانکتون زئوپلانکتون شانه دار ماکروبنتوز دریای خزر ##افرائی بندپی، م.ع.، نصراله‌زاده، ح.، پرافکنده، ف.، نصراله‌تبار، ع.، نگارستان، ح.، پوررنگ، ن. و نجف‌پور، ش.، a1395. طرح بررسی پارامترهای زیستی، غیر زیستی و آلاینده های زیست محیطی در محدوده استقرار قفس های پرورش ماهی (قبل از ماهی دار کردن) در حوزه جنوبی دریای خزر (سواحل مازندران-کلارآباد). پژوهشکده اکولوژی دریای خزر. 126 صفحه.##افرائی بندپی، م.ع.، هاشمیان، ع. و پرافکنده، ف.، b1395. بررسی ساختار جمعیت بزرگ بی مهره گان کفزی در سواحل جنوبی دریای خزر بمنظور استقرار قفس های پرورش ماهی. مجله علمی شیلات ایران، 5 : 39-23 ##افرائی بندپی، م.ع.، پرافکنده، ف.، کیهان ثانی، ع.، خداپرست، ن. و نادری، م.، 1395. بررسی تغییرات گروه‌های زیستی )فیتوپلانکتون، زئوپلانکتون، بی‌مهرگان کفزی( در محدوده استقرار قفس‌های دریایی در سواحل کلارآباد. مجله آبزیان خزر. 2: 60-48##پرافکنده، ف.، افرائی بندپی، م.ع. و سلیمانی رودی، ع.، 1395. بررسی پراکنش، تراکم و زیتوده بزرگ موجودات بنتیکی در محل استقرار پرورش ماهی در قفس در سواحل جنوبی دریای خزر )آب‌های مازندران کلارآباد(. مجله علمی شیلات ایران. 3: 103-91##روشن طبری، م.، خداپرست، ن.، رستمیان، م.ت.، رضوانی، غ.، اسلامی، ف.، سلیمانی رودی، ع.، کیهان ثانی، ع. و کنعانی، م.، 1393. بررسی تنوع، بیوماس و فراوانی زئوپلانکتونهای حوضه جنوبی دریای خزر. پژوهشکده اکولو‍ژی دریای خزر. 89 صفحه.##روحی، ا.، نصراله زاده، ح.، مکرمی، ع.، رستمیان، م.، کیهانی ثانی، ع.، نصراله تبار، ع.ف.، زاهدی، گ.، رازقیان، غ.، خداپرست، ن.، کاردر رستمی، م.، الیاسی، ف. و پورمند، ت.، 1392. بررسی فراوانی و بیوماس شانه دار (Mnemiopsis leidyi) در منطقه جنوبی دریای خزر در سالهای 91-1389. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 85 صفحه.##هاشمیان کفشگری، ع.، سلیمانی رودی، ع.، سالاروند، غ.، رئیسیان، ا.، نصراله زاده، ح.، افرائی بندپی، م. ع.، فارابی، م.و.، اسلامی، ف.، الیاسی، ف.، نظران، م.، دشتی، ع.، رضایی نصرآبادی، ع. و کاردر رستمی، م.، 1392. بررسی پراکنش و برآورد تولیدات سالانه ماکروبنتوزها در حوزه جنوبی دریای خزر در سال 1389. پژوهشکده اکولوزی دریای خزر. 95 صفحه.##مخلوق، آ.، نگارستان، ح.، افرائی، م.ع.، نصراله زاده، ح.، اسلامی، ف.، تهامی، ف.، خداپرست، ن.، پورغلام، ر.، روحی، ع.، کیهان ثانی، ع.، نصراله تبار، ع.، صفوی، ا.، رضایی، م. و ابراهیم زاده، م.، 1394. بررسی تراکم و تنوع فیتوپلانکتون با تاکید بر پدیده شکوفایی جلبکی در حوزه جنوبی دریای خزر – استان مازندران. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 105 صفحه.##Abdel Aziz, N.E., Gharib, S.M. and Dorgham, M.M., 2006. The interaction between phytoplankton and zooplankton in a Lake-Sea connection, Alexandria, Egypt. International Journal of Oceans and Oceanography, 1(1): 151-165.##APHA (American Public Health Association), 2005. Standard method for examination of water and wastewater. Washington. USA: American Public Health Association Publisher, 18th edition, 1113 p.##Bagheri, S., Niermann, U., Sabkara, J., Mirzajani, A. and Babaei, H., 2012. State of Mnemiopsis leidyi (Ctenophora: Lobata) and mesozooplankton in Iranian waters of the Caspian Sea during 2008 in comparison with previous surveys. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 11(4): 732-754. ##Bluman, A.G., 1998. Elementary statistics: a step by step approach. USA: Tom Casson publisher, 3rd edition.749 p.##Boltovskoy, D.(Ed.)., 1999. South Atlantic Zooplankton. Backhuys Publishers, Leiden pp: ixvi + 1–1706.##Eleftheriou, A. and McIntyre, A., 2007. Methods for the Study of Marine Benthos, Third Edition Published Online, Chapter 5. Macrofauna Techniques. DOI: 10.1002/9780470995129.ch5##Hartley, B.H.G., Barber, J.R.C. and Sims, P., 1996. An Atlas of British Diatoms. UK: Biopress Limited, Bristol. 601p.##Kovach, W.L., 2007. A multivariate statistical package for windows (MVSP), Ver. 3.13. Kovach Computing. Services, Pentraeth, Wales, UK.##Lawrence, S.G., Malley, D.F., Findlay, W.G., Maclyer, M.A. and Delbaere, L.L., 1987. Method for estimating dry ## Weight of Freshwater Planktonic Crustaceans from Measures of Length and Shape. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 44(S1): 264-274. Doi:org/10.1139/f87-301##Shiganova, T.A., Dumont, H.J., Sokolsky, A.F., Kamakin, A.M., Tinenkova, D. and Kurasheva, E.K., 2004. Population dynamics of Mnemiopsis leidyi in the Caspian Sea, and effects on the Caspian ecosystem. Aquatic Invasions in the Black, Caspian, and Mediterranean Seas, pp: 71-111. DOI:10.1007/1-4020-2152-6_3##Sourina. A., 1978. Phytoplankton manual UNESCO. Paris. 340 p.##Vollenweider, R.A. and Kerekes, J., 1982. Eutrophication of waters: Monitoring, assessment and control. Report of the OECD Cooperative Program on Eutrophication. Paris: Organization for the Economic Development and Co-operation.## ##

تاثیر استفاده از ملاس و شیره ضایعات خرما بر بار باکتریایی آب، شاخص های رشد و بافت روده میگوی سفید غربی (Litopenaeus vannamei) در محیط بایوفلاک Effects of molasses and spoilage date palm extract on bacterial load of water, growth performance and intestine of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) in the biofloc technology 1 1 هدف این تحقیق بررسی تاثیر بایوفلاک (با منابع قندی شیره ضایعات خرما و ملاس) بر کارایی رشد، بار باکتری­های آب و بافت روده میگوی وانامی ((Litopenaeus vannamei با استفاده از سطوح مختلف پروتئینی بود. چهار تیمار بایوفلاک مشتمل بر بایوفلاک خرما+جیره با پروتئین 25% (P25)، بایوفلاک ملاس+جیره با پروتئین 25% (M25)، بایوفلاک خرما+جیره با پروتئین 15% (P15) و بایوفلاک ملاس+جیره با پروتئین 15% (M15) و یک تیمار شاهد (حاوی 38% پروتئین) با 3 تکرار بود. در یک دوره 35 روزه 35 قطعه میگوی جوان (33/0±37/5 گرم) به طور تصادفی در 15 تانک 300 لیتری (تراکم 175 قطعه در متر مکعب) ذخیره­سازی گردید. بالاترین میزان پارامترهای رشد (وزن به دست آمده، ضریب تبدیل غذایی، نرخ رشد و بازماندگی) در میگوهای تیمار P25 و کمترین آنها در تیمار شاهد دیده شد (05/0p<). بالاترین درصد شاخص وزن بدن، کارایی غذا و نرخ رشد ویژه در تیمار P25 و کمترین آن در تیمار M15 دیده شد (05/0p<). نتایج حاکی از افزایش تعداد باکتری­های هتروتروف در طول پژوهش بود که در همه تیمارهای بایوفلاک از شاهد بیشتر بودند. بیشترین و کمترین تعداد قارچ­ها، ویبریو و باسیلوس به ترتیب در تیمار P25 و شاهد مشاهده گردید. طول سلول­های اپی­تلیال در بافت روده در همه تیمارهای بایوفلاک نسبت به شاهد افزایش یافت اما این اختلاف فقط در اولین بند شکمی معنی­دار بود. نتایج حاکی از برتری شیره خرما نسبت به ملاس بود که می­تواند به دلیل حضور ترکیبات مفیدی چون محرک­های رشد و ایمنی باشد.       2 The aim of this study was to evaluate the effects of biofloc (with addition of spoilage date palm extract (SDE) and molasses as sugar sources) on bacterial load of water, growth performance and intestine of Litopenaeus vannamei using diets containing different protein levels. Four biofloc treatments were designated including the biofloc treatment with SDE + a diet containing 25% protein (P25), biofloc treatment with molasses + a diet containing 25% protein (M25), biofloc treatment with SDE + a diet containing 15% protein (P15), biofloc treatment with molasses + a diet containing 15% protein (M15) and the control treatment with a diet containing 38% protein (Control). All treatments were conducted in triplicates. A 35-day study was conducted on 35 juvenile shrimp (with average weight of 5.37±0.33 g) which randomly stocked in fifteen tanks (each 300 L) at a stocking density of 175 shrimp m−3. The highest amounts of growth parameters (weight gain, Feed Conversion Ratio (FCR), growth rate and survival) were observed in P25 treatment and the lowest amounts of growth parameters were observed in the control (P<0.05). Moreover, the highest percentages of body weight index, feed efficiency and specific growth rate were observed in P25 and the lowest percentages of those were observed in M15 treatment (P<0.05). Results showed that the number of total heterotrophic bacteria was increased during the study and the numbers of total heterotrophic bacteria in all biofloc treatments were higher than that of the control. The highest and the lowest numbers of fungi, vibrio and bacillus were found in P25 treatment and the control treatment, respectively. The length of the epithelial cells of the intestine was increased in all biofloc treatments as compared to the control but this difference was significant in the first abdominal segment, only. The result demonstrated that the effects of SDE were better than molasses, which could be due to the presence of useful compounds such as the growth and immunity promoters in it.   33 41 2015/08/162017/05/152016/12/12017/05/31 1396/3/10 2017/12/172018/01/72018/01/72018/01/10 1396/10/20 اکبر عباس زاده A Abbaszade دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر ایران abas1351@gmail.com وحید یاوری V Yavari دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر ایران yavarivahid@yahoo.com سیدجواد حسینی S.J Hosseini 2. پژوهشکده خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر ایران sjhosseini@pgu.ac.ir محمود نفیسی بهابادی M Nafisi Bahabadi 2. پژوهشکده خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر ایران nafisi2002@gmail.com Litopenaeus vannamei Intestinal tissue Biofloc Spoilage date palm extract Bacterial load. میگوی وانامی بافت روده بایوفلاک شیره ضایعات خرما بار باکتریایی ##آیین جمشید، خ. و حق شناس، خ.، 1396. ارزیابی ریسک زیست محیطی فعالیت مراکز تولید میگوی عاری از بیماری خاص. مجله علمی شیلات ایران، (26) 4، 82-73.##فارابی، س.م.و.، متین فر، ع.، صالحی، ع.ا. و شریفیان، م.، 1396. بررسی تراکم ذخیره سازی میگو پاسفید Litopenaeus vannamei (Boone, 1931) در پرورش با آب لب شور دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران، (26) 3، 76-65.##Aguilera-Riveraa, D., Prieto-Davóc, A., Escalanteb, K., Chávezd, C., Cuzone, G. and Gaxiolab, G., 2014. Probiotic effect of FLOC on Vibrios in the pacific white shrimp Litopenaeus vannamei. Aquaculture, 424-425: 215-219. DOI: 10.1016/ j.aquaculture.2014.01.008##Anand, P.S., Kohli, M.P., Kumar, S., Sundaray, S., Venkateshwarlu, G., Sinha, A. and Pailan, G.H., 2014. Effect of dietary supplementation of biofloc on growth performance and digestive enzyme activities in Penaeus monodon. Aquaculture, 418:108-115. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2013.09.051.##Avnimelech, Y., 2009. Biofloc Technology- A Practical Guide Book. Baton Rouge, Louisiana, US. 182 p.##Avnimelech, Y., 2006. Bio-filters: the need for an new comprehensive approach. Aquacultural Engineering, 34:172-178. DOI: 10.1016/j.aquaeng.2005.04.001. ##Avnimelech, Y., 1999. Carbon/nitrogen ratio as a control element in aquaculture systems. Aquaculture, 176:227-235. DOI: 10.1016/S0044-8486(99)00085-X##Burford, M.A., Costanzo, S.D., Dennison, W.C., Jackson, C.J., Jones, A.B., McKinnon, A.D., Preston, N.P. and Trott, L.A., 2003. A synthesis of dominant ecological processes in intensive shrimp ponds and adjacent coastal environments in NE Australia. Marine Pollution Bulletin, 46:1456-1469. DOI: 10.1016/S0025-326X(03)00282-0.## Davis, D.A. and Arnold, C.R., 2000. Replacement of fish meal in practical diets for the Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei. Aquaculture, 185:291-298. ## Ebeling, J., Timmons, M. and Bisogni, J., 2006. Engineering analysis of the stoichiometry of photoautotrophic, autotrophic, and heterotrophic removal of ammonia–nitrogen in aquaculture systems. Aquaculture, 257:346-358. ## Ekasari, J., Angela, D., Hadi, S., Bachtiar, T., Surawidjaja, E., Bossier, P. and Schryver, P., 2014. The size of biofloc determines the nutritional composition and the nitrogen recovery by aquaculture animals. Aquaculture, 426-427:105-111. DOI: 10.1016/j. aquaculture.2014.01.023.## Ferreira, G.S., Bolívar, N.C., Pereira, S.A., Guertler, C., Vieira, F.V., Mouriño, J.L.P. and Seiffert, W.Q., 2015. Microbial biofloc as source of probiotic bacteria for the culture of Litopenaeus vannamei. Aquaculture, 448:273-279. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2015.06.006. ## Hoseinifar, S.H., Khalili, M., Rufchaei, R., Raeisi, M., Attar, M., Cordero, H. and Esteban, M., 2015. Effects of date palm fruit extracts on skin mucosal immunity, immune related genes expression and growth performance of common carp (Cyprinus carpio) fry. Fish and Shellfish Immunology, 47(2):706-711. DOI: 10.1016/j.fsi.2015.09.046.## Irasema, E.L., Domenico, V., Juan, M.A.N., María, R.P.M., Víctor, H.E. and Emilio, R.B., 2015. Effects of biofloc promotion on water quality, growth, biomass yield and heterotrophic community in Litopenaeus vannamei (Boone, 1931) experimental intensive culture. Italian Journal of Animal Science, 14:332-337. DOI: 10.4081/ijas.2015.3726. ## Ismail, W. and Radzi, M., 2013. Alternative and Integrative Medicine Evaluation on the Benefits of Date Palm (Phoenix dactylifera) to the Brain. Dissertation, Universiti Teknologi MARA, Malaysia. ## Khodabandeh, S., Charmantier, G. and Charmantier-Daures, M., 2006. Immunolocalization of Na+ , K+- ATPase in osmoregulatory organs during the embryonic and post-embryonic development of the lobster Homarus gammarus. Journal of Crustacian biology, 26(4):515-523.## Kuhn, D., Boardman, G.D., Lawrence, A.D., Marsh, L. and Flick, G.J., 2009. Microbial floc meal as a replacemen tingredient for fish meal and soybean protein in shrimp feed. Aquaculture, 296:51-57. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2009.07.025.## Liu, L., Hu, Z., Dai, X. and Avnimelech,Y., 2014. Effects of addition of maize starch on the yield, water quality and formation of bioflocs in an integrated shrimp culture system. Aquaculture, 418-419:79-86. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2013.10.005.## Oujifard, A., Abedian Kenari, A., Taheri, A. and Ghanizadeh Kazerouni, E., 2011. Effected by dietary nucleotide on changes in intestinal morphology, growth and fatty acid profile of whiteleg shrimp (Litopenaeus vannamei). Iranian Sientific Fisheries Journal, 20(4):1-10.## Rengpipat, S., Phianphak, W., Piyatiratitivorakul, S. and Menasveta, P., 1998. Effects of a probiotic bacterium on black tiger shrimp Penaeus monodon survival and growth. Aquaculture, 167:301-313. DOI: 10.1016/S0044-8486(98)00305-6.## Serra, F.P., Gaona, C.A.P., Furtado, P., Poersch, L.H. and Wasielesky, W., 2015. Use of different carbon sources for the biofloc system adopted during the nursery and grow-out culture of Litopenaeus vannamei. Aquaculture International: Journal of the European Aquaculture Society, 23(6):1325-1339. DOI: 10.1007/s10499-015-9887-6.## Sha, Y., Liu, M., Wang, B., Jiang, K., Qi, C. and Wang, L., 2016. Bacterial population in intestines of Litopenaeus vannamei fed different probiotics or probiotic supernatant. Journal of Microbiology and Biotechnology, 26(10):1736-1745. ##Taw, N., 2010. Biofloc technology expanding at white shrimp ponds farms. Global Aquaculture Advocate, 13(3):20-22.##Vayalil, P., 2012. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, Date Fruits (Phoenix dactylifera Linn): An Emerging Medicinal Food. Department of Pathology, University of Alabama at Birmingham, Birmingham magazine, 249–271.## ##

اثرات کوتاه مدت نانوذرات اکسید روی بر شاخص‌‌‌های خونی و آنزیم‌های متابولیک بچه ماهی آزاد خزر (Salmo trutta caspius) 1 1 استفاده گسترده از نانوذرات اکسید روی (ZnO-NPs)، نگرانی در مورد خطرات زیست محیطی ناشی از ورود آن­ها به سیستم­های آبی را افزایش داده است. هدف از این مطالعه، بررسی اثرات کوتاه مدت نانوذرات اکسید روی بر فعالیت ­آنزیم­های متابولیک و فاکتورهای خونی ماهی آزاد خزر نوجوان بود. بچه ماهیان آزاد خزر به مدت 4 روز در رویارویی با ده درصدLC50-96h  قرار گرفتند. نمونه های خون بعد از 24، 48، 72 و 96 ساعت از ماهی گرفته شد. آنالیز فاکتورهای خونی نشان داد که در مدت 96 ساعت، مقدار گلبول­های قرمز، هماتوکریت، هموگلوبین، تعداد گلبول­های سفید، نوتروفیل­ها و مونوسیت­ها، افزایش معنی­داری را تحت تاثیر نانوذرات اکسید روی نسبت به شاهد نشان دادند (05/0>P)، ولی در تعداد لنفوسیت­ها در مقایسه با گروه شاهد کاهش معنی داری دیده شد (05/0>P). همچنین سطح فعالیت آنزیم­هایALT ، AST و ALP در رویارویی با نانوذرات اکسید روی در 96 ساعت و آنزیم LDH در 48 ساعت در مقایسه با شاهد افزایش نشان دادند (05/0>P). می­توان نتیجه گرفت که تغییرات حاصله در فاکتورهای خونی و آنزیم­های متابولیک، حساسیت نسبتا بالای بچه ماهی آزاد خزر را در غلظت تحت کشنده به ZnO-NPs نشان می­دهد و تغییرات پارامترهای خونی می­تواند شاخص مفیدی برای بررسی تاثیرات کوتاه مدت نانو ذره اکسید روی باشد.   2 Extensive use of zinc oxide nanoparticles (ZnO-NPs) has raised concerns about the environmental risks caused by these NPs entering into aquatic ecosystems. The aims of the present study were to assess the short term effects of ZnO-NPs on activities of metabolic enzymes and haematological parameters of the Caspian trout juveniles. Fish were exposed to 10% of LC50-96h for 4 days. Blood samples were collected from fish after 24, 48, 72 and 96 hours of exposure. Analysis of blood parameters showed that the numbers of red blood cells, haematocrit, haemoglobin, white blood cells, neutrophils and monocytes were significantly increased as compared to those of the control group (P<0.05), whereas the numbers of lymphocytes were decreased significantly compared to that of the control group (P<0.05). Enzyme activity levels of ALP, AST and ALT after 96 hours of exposure and enzyme activity level of LDH after 48 hours of exposure to ZnO-NPs were significantly increased as compared to those of the control group (P<0.05). It can be concluded that the sensitivity of the Caspian trout juveniles to the sub-lethal concentration of ZnO nanoparticles were relatively high. Therefore, alteration in haematological parameters can be a useful indicator for studying the short term effects of ZnO-NPs.   43 50 2015/08/162017/05/152016/12/12017/05/312016/12/15 1395/9/25 2017/12/172018/01/72018/01/72018/01/102018/01/13 1396/10/23 فاطمه اسمعیل کاویانی Fatemeh Esmaeel Kaviyani دانشگاه گیلان، دانشکده علوم پایه، گروه زیست‌شناسی، رشت، ایران، صندوق پستی: 13351914 ایران hana.kaviani5@gmail.com اکرم سادات نعیمی Akram Sadat Naeemi دانشگاه گیلان، دانشکده علوم پایه، گروه زیست‌شناسی، رشت، ایران، صندوق پستی: 13351914 ایران akramnaeemi@yahoo.com علی صالح زاده Ali Salehzadeh گروه زیست‌شناسی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران ایران salehzadehmb@yahoo.com Toxicity Biochemical analysis Nanoparticle سمیت آنالیز بیوشیمیایی نانوذره ##جوهری، س.ع. و حسینی، س.، 139۳. سمیت تغذیه‌ا‌ی کلوئید نانوذرات نقره در ماهی قزل آلای رنگین کمان. مجله علمی شیلات ایران، ۲۳ (۱): ۲۳-۳۱.##رضوانی، ز.، جمالزاده، ح. و پورغلام، ر.، 1392. بررسی تاثیر نانو ذرات اکسید روی بر گلبولهای سفید خون بچه ماهی آزاد دریای خزر. همایش ملی پژوهشهای محیط زیست ایران، دانشگاه شهید مفتح، همدان. ##محمدی، ز.، و اسلامی، ه.، ۱۳۹۵. تاثیر مکمل معدنی نانوذره اکسید منگنز بر عملکرد رشد و یاخته های خونی بچه ماهی انگشت قد قزل آلای رنگین کمان. مجله علمی شیلات ایران، ۲۵ (۳): ۱۹۹-۲۱۵.##هدایتی، س.ع.، جهانبخشی، ع. و مرادزاده، م.، 1394. بررسی سمیت تحت کشنده نانو اکسیدروی (ZnO NPs)بر شاخصهای خونی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله علمی ـ پژوهشی زیست شناسی جانوری تجربی، ۴ (۱): ۲۷-۳۴.##Auffan, M., Jérôme, R., Jean-yves, bottero., Gregory, V.L., Jean-Pierre, J. and Mark, RW., 2009. Towards a definition of inorganic nanoparticles from an environmental, health and safety perspective. Nature Nanotechnology, 4: 634–641. DOI: 10.1038/nnano.2009.242##Banaee, M., Mirvagefei, A. R., Rafei, G. R. and Majazi Amiri, B., 2008. Effect of sub-lethal diazinon concentrations on blood plasma biochemistry. International Journal of Environmental Research, 2:189-198. DOI: 10.22059/ijer.2010.193##Blaxhall, P.C. and Daisley, W., 1973. Routine haematological methods for use with fish blood. Journal of Fish Biology, 5:771- 781. DOI: 10.1111/j.1095-8649.1973.tb04510.x.##Boyle, D., Al-Bairuty, G.A., Ramsden, C.S., Slomanb, K.A., Henrya, T.B. and Handya. R.D., 2013. Subtle alterations in swimming speed distributions of rainbow trout exposed to titanium dioxide nanoparticles are associated with gill rather than brain injury. Aquatic Toxicology, 126: 116-127. DOI: 10.1016/j.aquatox.2012.10.006.##Costillas, E. and Smith, L.S., 1977. Effect of stress on blood coagulation and haematology in rainbow trout. Journal of Fish Biology, 10: 481-491. DOI: 10.1111/j.1095- 8649.1977.tb04081.x.##Edsall, CC., 1999. A blood chemistry profile for lake trout. Journal of Aquatic Animal Health, 11: 81-86. DOI: 10.1577/1548-8667(1999)011<0081:ABCPFL>2.0.CO;2.##El-Sayed, Y.S. and Saad, T.T., 2008. Sub-acute intoxication of a deltamethrin-based preparation (Butox 5% EC) in monosex Nile tilapia, Oreochromis niloticus L. Basic & Clinical Pharmacology & Toxicology, 102: 293-299. DOI: 10.1111/j.1742-7843.2007.00157.x.##Griffin, B.R. and Mitchell, A.J., 2007. Susceptibility of channel catfish, Ictalurus punctatus (Rafinesque), to Edwardsiella ictaluri challenge following copper sulphate exposure. Journal of fish diseases, 30(10): 581-585. DOI: 10.1111/j.1365-2761.2007.00838.x.##Heath, A.G., 1995. Water pollution and fish physiology. CRC Press, New York. 384 p.##Henry, J.B., 1996. Clinical diagnosis and management by laboratory methods. W.B. Saunders Company, USA. 1556p.##Imani, M., Halimi, M. and Khara, H., 2015. Effects of silver nanoparticles (AgNPs) on hematological parameters of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Comparative Clinical Pathology, 24: 491-495. DOI: 10.1007/s00580-014-1927-5.##Keller, A., McFerran, S., Lazareva, A. and Suh, S., 2013. Global life cycle releases of engineered nanomaterials .Journal of Nanoparticle Research,15:1692. DOI: 10.1007/s11051-013-1692-4.##Khabbazi, M., Harsij, M., Hedayati, S.A.A., Gholipoor, H., Gerami, M.H. and Ghafari Farsani, H., 2015. Effect of CuO nanoparticles on some hematological indices of rainbow trout Oncorhynchus mykiss and their potential toxicity. Nanomedicine, 2: 67-73. DOI: 10.7508/nmj.2015.01.008## Lee, J., Kim, J., Shin, Y., Ryu, J.E. and Lee, J.S., 2014. Serum and ultrastructure responses of common carp (Cyprinus carpio L.) during long-term exposure to zinc oxide nanoparticles. Ecotoxicology Environmental Safety, 104: 9-17. DOI: 10.1016/j.ecoenv.2014.01.040. ##Milligan, C.L. and Wood, C.M., 1982. Disturbances in haematology, fluid volume distribution and circulatory function associated with low environmental pH in the rainbow trout, Salmo gairdneri. The Journal of Experimental Biology, 99: 397-415.##Moss, D.W. and Henderson, R., 1999. Clinical enzimology. In: Burtis, C.A. and Asheewd, E.R., 1994. Text book of clinical chemistry, 3rd edn. W.B, Saunders Company, USA. pp 617-721.##Sarkar, S. and Beitollahi, A., 2009. An overview on nanotechnology activities in Iran. Iranian Journal of Public Health, 38:65-68.##Shirdel, I. and Kalbassi, M.R., 2016. Effects of nonylphenol on key hormonal balances and histopathology of the endangered Caspian brown trout (Salmo trutta caspius). Comparative Biochemistry and Physiology, 184: 28-35. DOI: 10.1016/j.cbpc.2016.01.003.##Subashkumar, S. and Selvanayagam, M., 2014. First report on: Acute toxicity and gill histopathology of fresh water fish Cyprinus carpio exposed to Zinc oxide (ZnO) nanoparticles. International Journal of Scientific and Research Publications, 4:2250-3153. ##Witeska, M. and Kosciuk, B., 2003. The Changes in Common Carp Blood after Short-term Zinc Exposure. Environmental Science and Pollution Research, 10: 284. DOI:10.1065/espr2003.07.161.##Zorriehzahra, J., 2012. Conservation and restoration of Caspian trout (Salmo trutta caspius). Final draft report,118P.## ##

بررسی میزان مواد آلی، نوع رسوبات و پراکنش گونه‌های ماکروبنتوزی پارک ملی بوجاق، حوضه جنوبی دریای خزر، ایران Evaluation of organic matter, sediment type and distribution of macrobenthic species in the Boojagh Marine National Park, Southern Caspian Sea, Iran 1 1 در تحقیق حاضر میزان مواد آلی، نوع و میزان رسوبات و پراکنش گونه­ای ماکروبنتوزها در پارک ملی بوجاق واقع در شهرستان کیاشهر استان گیلان مورد مطالعه و بررسی قرار گرفته­اند. نمونه‌برداری با استفاده از نمونه‌بردار چنگه‌ای (Van Veen Grab Sampler) با سطح مقطع 20 سانتی‌متر مربع و با پنج تکرار در پنج فصل (از تابستان 1394 تا تابستان 1395) از شش ترنسکت عمود به ساحل (هر یک شامل سه ایستگاه در سه عمق 1، 5 و 10 متر) انجام شد. نمونه‌های جمع‌آوری شده پس از شستشو و تثبیت در فرمالین به آزمایشگاه منتقل و در آنجا پس از جداسازی، گونه‌های مختلف ماکروبنتوزی شناسایی گردیدند. گونه‌های شناسایی شده عبارتند از:Cerastoderma glaucum, Mytilaster lineatus, Pyrgula grimmi, Anisus kolesnikovi, Stenogammarus carausui, Paraniphargoides motasi, Onisimus caspius, Pterocuma pectinatum, Pterocuma sowinskyi, Pseudocuma (Stenocuma) gracile, Nais sp., Hypania invalida, Manayunkia caspica, Streblospio gynobranchiata, Hediste diversicolor, Amphibalanus improvisus. از نظر بررسی رسوبات، بیشترین نوع رسوبات مربوط به ماسه با میانگین 25/89 درصد و کمترین آن مربوط به رس با میانگین 26/0 درصد بود و بنابراین اختلاف معنی‌داری در سطح ذرات ماسه با دیگر ذرات شناسایی شده وجود دارد (P<0/01). میانگین درصد مواد آلی در تابستان 94 و در ترنسکت چهارم و عمق پنج متری از مابقی کمتر بود و اختلاف کاملاً مشخصی دیده شد که از لحاظ آماری معنی‌دار بود (P<0/01). بیشترین تراکم ماکروبنتوزها در عمق 10 متری بود و تراکم ماکروبنتوزها در فصل تابستان 1394 بیشتر و در فصل بهار 1395 کمتر از سایر فصول بود. 2 In this investigation, the amounts of organic matter, types of sediment and distribution of macrobenthic species in the Boojagh Marine National Park (BMNP) were studied. Sampling was conducted in six transects perpendicular to the beach using a Van Veen grab sampler using cross section of 20 cm with five replications. Samples were collected in five seasons (from summer 2015 to summer 2016). Each transect include three stations at various depths of 1, 5 and 10 meters. Samples were washed and fixed in formalin. Then, they were transferred to a laboratory for sorting and identification of different groups of macrobenthic taxons. The identified species were as follows; Cerastoderma glaucum, Mytilaster lineatus, Pyrgula grimmi, Anisus kolesnikovi, Stenogammarus carusui, Paraniphargoides motasi, Onisimus caspius, Pterocuma pectinatum, Pterocuma sowinskyi, Pseudocuma (Stenocuma) gracile, Naiss sp., Hypania invalida, Manayunkia caspica, Streblospio gynobranchiata, Hediste diversicolor and Amphibalanus improvisus. Evaluation of sediment composition indicated that the highest proportions belonged to sand with an average amount of 89/25%, whereas the lowest proportions belonged to clay with an average amount of 0/26%. with highly significant difference among sand identified with other particles (p<0/01). The average percentage of organic matter in the summer 2015 in the fourth transect at the depth of five meters was significantly lower than that of the others (p<0/01). The highest density of macrobenthos was at the depth of 10 meters. Macrobenthos density was the highest in the summer 2015 and was the lowest in the spring 2016 as compared to the other seasons.   51 60 2015/08/162017/05/152016/12/12017/05/312016/12/152017/07/16 1396/4/25 2017/12/172018/01/72018/01/72018/01/102018/01/132018/01/13 1396/10/23 سهیل بهربر S Bahrebar دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران. ایران bahrebar.soheil@gmail.com حسین نگارستان H Negarestan واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی - - دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران. ایران hosseinnegarestan@yahoo.com عبدالوهاب مقصودلو A.V Maghsoudlou گروه علوم دریایی، پژوهشگاه ملی اقیانوس شناسی و علوم جوی، تهران، ایران ایران wahabbio@gmail.com افشین دانه کار A Danehkar دانشکده کشاورزی دانشگاه تهران، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشکده منابع طبیعی، گروه محیط زیست، کرج، ایران. ایران afdanehkar@gmail.com Macrobenthos Boojagh national park Kiashahr port Gilan province ماکروبنتوز پارک ملی بوجاق بندر کیاشهر استان گیلان ##امیری، ا. و میرآقایی، س.، 1394. بررسی ارزیابی کیفیت شیمیایی آب رودخانه سفیدرود در فصول مختلف سال. کنفرانس بین‌المللی دستاوردهای نوین در مهندسی عمران، معماری، محیط‌زیست و مدیریت شهری، تهران.##بیرشتین، آ.، 1966. اطلس بی‌مهرگان دریای خزر. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 489 صفحه.##تجلی پور، م.، 1373. بررسی تکمیلی سیستماتیک و انتشار نرم‌تنان سواحل ایرانی خلیج‌فارس. انتشارات خیبر. 403 صفحه.##حسینی، س.ع.، روحی، ا.، رستمیان، م.ت.، فلاحی، م.، سبک آرا، ج.، خسروی، م.، واردی، س. ا.، هاشمیان، م.ف.، واحدی، ف.، نصراله زاده ساروی، ح.، نجف پور، ش.، سلیمان رودی، ع.، لالویی، ف.، غلامی پور، س.، علومی، ی. و سالاروند، غ.ر.، 1390. هیدرولوژی و هیدروبیولوژی حوزه جنوبی دریای خزر (1375-76)، گزارش نهایی موسسه تحقیقات شیلات ایران. تهران. 296 صفحه.##سلیمانی رودی، ع.، 1391. بررسی تنوع، پراکنش، فراوانی و زی‌توده ماکروبنتوزها در منطقه جنوبی دریای خزر. پژوهشکده اکولوژی دریای خزر. 45 صفحه.##سیف‌آبادی، ج.، ابطحی، ب. و یزدانی فشتحی، م.، 1389. پویایی جمعیت، پراکنش و در ساحل شهرستان نور، جنوب دریای خزر Hediste diversicolor چرخه تولیدمثلی کرم پرتار. فصلنامه اقیانوس‌شناسی. 1(2): 33- 47.##طاهری، م.، 1386. بررسی اکولوژیکی و تغییرات سالانه جمعیت پرتاران خلیج گرگان- ساحل بندر گز. مجله زیست‌شناسی ایران، 20(2): 286 تا 494.##علیزاده، ح. و غفاری، ا.، 1383. مقدمه‌ای بر ویژگی‌های دریای خزر. انتشارات نوربخش. 119 صفحه.##فارابی، س.، 1387. طرح هیدرولوژی، هیدروبیولوژی و آلاینده‌های زیست‌محیطی در حوزه جنوبی دریای خزر. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 67 صفحه.##قاسم‌اف، آ.گ.، 1372. اکولوژی دریای خزر. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 272 صفحه.##لالوئی، ف.، 1390. طرح هیدرولوژی، هیدروبیولوژی و آلاینده‌های زیست‌محیطی اعماق کمتر از 10 متر حوضه جنوبی دریای خزر. پژوهشکده اکولوژی دریای خزر. 76 صفحه.##میرزاجانی، ع.، 1376. تعیین توده زنده و پراکنش کف-زیان حوزه جنوبی دریای خزر (آستارا تا چالوس). مجله پژوهش و سازندگی، 47(4): 130-143.##نصراله‌زاده ساروی، ح.، 1389. طرح هیدرولوژی، هیدروبیولوژی و آلاینده‌های زیست‌محیطی در منطقه جنوبی دریای خزر. موسسه تحقیقات شیلات. 85 صفحه.##نیکویان، ع.، 1377. بررسی تراکم، پراکنش، تنوع و تولید ثانویه بی‌مهرگان کف‌زی (ماکروبنتوزها) در خلیج چابهار. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم تحقیقات تهران. 152 صفحه.##نبوی، م.، 1389. بررسی تغییرات فراوانی و تنوع پرتاران در زیر قفس‌های پرورش ماهی خور غزاله (خور موسی). مجله اقیانوس‌شناسی، 1(1): 34 –41.##هاشمیان، ع.، 1383. طرح هیدرولوژی، هیدروبیولوژی و آلاینده‌های زیست‌محیطی اعماق کمتر از 10 متر حوزه جنوبی دریای خزر. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 121 صفحه.##Aladin, N., Filippov, A., Petukhov, A. and Plotnikov, I., 2002. Results of hydro biological and palaeonthological studies at the Northern Caspian Sea. Annual Reports of the Zoological Institute. pp: 4-10. DOI: 10.1007/978-94-011-1074-7_3.##Afli, A., Ayari, R. and Zaabi, S., 2008. Ecological quality of some Tunisian coastal and lagoon locations,by using benthic community parameters and biotic indices, Estuarine, Coastal and shelf Science, 21(3): 269-280. DOI: 10.1016/j.ecss.2008.08.010.##Ashuri, A.; Nezami S. and Zolfinejad, K., 2008. Identification of Boojagh National Park Kiashahr Birds. Journal of Environmental Studies, 34(46): 101-111. DOI: 10.1515/9781400880683-013.##Castro, P. and Huber M., 2008. Marine Biology. 8th ed. McGraw Hill, New York, USA.##Coad, B.W., 2016. Review of the Pikes of Iran (Family Esocidae). Iranian Jornal of Ichthiology, 3(3): 161-180.##Creutzberg, F. and Wapenaar, P., 2014. Distribution and density of benthic fauna in the southern North Sea in relation to bottom characteristics and hydrographic conditions. Journal of Conseil international pour exploration. Madrid, Spain, 43(5): 230-245. DOI: 10.1007/s10452-005-6040-z.##Fazli, H., 2011. Some environmental factors effects on species composition, catch and CPUE of Kilka in the Caspian Sea. International Journal of Natural Resources and Marine Sciences, 1: 75–82. DOI: 10.1134/s0032945209080086.##Heliskov, A.C. and Holmer, M., 2001. Effect of benthic fauna on organic matter mineralization in fish-farm sediment: Importance of size and abundance. Journal of Marine Science, 58: 427–434. DOI: 10.1006/jmsc.2000.1026.##Kennish, M.J., 2010. Practical Handbook of Marine Science,3rd edition Boca Raton, USA. 230P. ## DOI: 10.1201/9781420038484.ch5.##Kermer, P., 1976. Population dynamics and ecological energetics of a pulsed zooplankton predator, the ctenophore Mnemiopsis leidyi. In: Wiley M, editor. Estuarine Processes; Uses, Stresses and Adaptation to the Estuary, Academic ## Press. pp: 197-215. DOI: 10.1016/b978-0-12-751801-5.50024-1.##Khara, H., Nezam, S.A., Sattari, M., Mirhasheminasab, D.F. and Mousavi, S.A., 2006. An investigation on digestive parasites of fishes in Boojagh Wetland, North Iran. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 15(2): 9-18. ##Lamb, E.G., Bayne, E., Holloway, G., Schieck, J., Boutin, S., Herbers, J. and Haughland, D.L., 2009. Indices for monitoring biodiversity change: Are some more effective than others. Ecological Indicators, 9: 432–444. ## DOI: 10.1016/j.ecolind.2008.06.001.##Leal, J.H., 1998a. Bivalves. In: the living marine resources of the western central Pacific. Carpenter K. E. and Niem V. H. (eds). Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO), Rome, Italy. pp: 25-98. DOI: 10.1643/0045-8511(2001)003[0212:]2.0.co;2.##Leal, J.H., 1998b. Gastropodes. In: The living marine resources of the western central Pacific. Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO), Rome, Italy. pp: 99-147.##Muniz, P. and Pires A.M.S., 2000. Polychaeta association in a subtropical environment (Sao Sebastio Channel, Brazil): A structural analysis. Marine Ecology, 21(2): 145-160.##Yousefi, A., Bahmanpour, H., Salajegheh B. and Dashti S., 2013. Survey of birds in microhabitats of national park in Boujagh Wetland. Journal of Wetland Ecobiology, 5(2): 19-32.## DOI: 10.1515/9781400880683-013.##World Register of Marine Species (WoRMS). 2017. http://www.marinespecies.org, VLIZ. Cited 21 Jan, 2017. DOI:10.14284/170.## ##

تاثیر استفاده مجزا و تلفیقی پروبیوتیک Pediococcus acidilactici و پودر قارچ Agaricus bisporus بر برخی شاخص‌های خونی و شاخص‌های ایمنی غیراختصاصی سرم در بچه ماهی کپور معمولی پرورشی (Cyprinus carpio) Effects of singular and combined administration of Pediococcus acidilactici and Agaricus bisporus on some blood indices and non-specific immune parameters of common carp (Cyprinus carpio) 1 1 این تحقیق به منظور بررسی اثر پروبیوتیک  Pediococcus acidilacticiو پودر قارچ Agaricus bisporus  جیره غذایی بر شاخص‌های خونی و ایمنی غیراختصاصی سرم در بچه ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) انجام گرفت. بعد از ۲ هفته سازگاری بچه ماهیان با میانگین وزنی ۶۹/۰±۰۶/۱۹ گرم با شرایط آزمایشگاه، تعداد ۱۸۰ قطعه در ۱۲ تانک فایبرگلاس با تراکم ۱۵ قطعه در هر تانک توزیع گردید. سپس در قالب طرح کاملاً تصادفی به مدت ۲ ماه با ۴ جیره آزمایشی شامل جیره تجاری (گروه شاهد) و به ترتیب غذای تجاری مکمل شده به P. acidilactici به میزان CFU/g ۱۰۷×۹/۰، غذای حاوی Agaricus bisporus به میزان ۱۰ گرم بر کیلوگرم و غذای تجاری حاوی ترکیبی از P. acidilactici به میزان CFU/g ۱۰۷×۹/۰ و پودر قارچ به مقدار ۱۰ گرم بر کیلوگرم پرورش داده شدند. نتایج حاصل در پایان دوره آزمایش نشان داد که اختلاف معنی داری در تعداد گلبول قرمز (RBC) وجود ندارد. بالاترین میزان هموگلوبین (۳۷/۰±۱۵/۸گرم در دسی لیتر)، MCV،۷۷/۲۳±۶۳/۲۲۳ (فمتولیتر)، MCH، ۳۱/۵±۲۱/۵۶ (پیکوگرم) و کمترین تعداد گلبول­های سفید خون  به مقدار ۰۰/۱±۷۳/۹ (103 cell/ml×) در گروه سین بیویتیک مشاهده شد (۰۵/۰>p). علاوه بر این، هماتوکریت ۶۹/۱±۴۳/۳۲ (درصد) و MCHC، ۰۶/۱±۱۷/۲۵ (درصد) نسبت به گروه شاهد، در تیمار سین بیوتیک افزایش نسبی نشان دادند (۰۵/۰<p). اختلاف معنی داری در کل ایمونوگلوبولین، فعالیت لیزوزیم و ACH50 در گروه های آزمایشی مشاهده نشد (۰۵/۰<p). براساس نتایج بدست آمده، جیره غذایی حاوی CFU/g ۱۰۷×۹/۰پروبیوتیک و ۱۰ گرم بر کیلوگرم پربیوتیک موجب بهبود برخی از شاخص های خونی در کپور معمولی گردید.   2 This study was conducted to investigate the effects of Pediococcus acidilactici and Agaricus bisporus administration on some blood and non-specific immune parameters of common carp (Cyprinus carpio). The total number of 180 fish with average weight of 19.06±0.69 g was adapted to laboratory conditions for 2 weeks. Afterwards, they were divided into 12 fiberglass tanks with the density of 15 fish in a tank. The study was performed in a complete randomize design for 2 months using 4 dietary treatments including the commercial diet (control group), commercial diet supplemented with P. acidilactici (0/9×107 CFU/g), commercial diet supplemented with mushroom powder (10 g/kg), and commercial diet supplemented with the combination of P. acidilactici (0/9×107 CFU/g) and mushroom powder (10 g/kg). At the end of the study, the results indicated that there was no significant difference in the number of red blood cells (RBC) among various groups. The highest levels of hemoglobin )8/15±0/37)(g/dL), MCV, 223/63±23/77(fL), MCH, 56/21±5/31(pg) and the lowest amount of white blood cell count, 9/73±1/00 (×103 cell/ml) were observed in the synbiotic group (P<0.05). Furthermore, hematocrit (32/43±1/69%) and MCHC (25/17±1/06 %) showed a slight increase in the synbiotic treatment compared to the control group (P>0.05). Significant differences in the total immunoglobulin, lysozyme activity and ACH50 were not found among various experimental groups (P<0.05). In conclusion, the commercial diet supplemented with the combination of the probiotic (0/9×107 CFU/g) and prebiotic (10 g/kg) improved some blood parameters in common carp. 61 70 2015/08/162017/05/152016/12/12017/05/312016/12/152017/07/162017/07/13 1396/4/22 2017/12/172018/01/72018/01/72018/01/102018/01/132018/01/132018/01/17 1396/10/27 دل آرا سپهرفر D Sepehrfar گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه ارومیه ایران delara.sepehrfar@gmail.com کوروش سروی مغانلو K Sarvi Moghanlou گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه ارومیه ایران k.sarvimoghanlou@urmia.ac.ir سیدحسین حسینی فر S.H Hoseinifar گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان ایران hoseinifar@gau.ac.ir حامد کلنگی میاندره H Kolangi Miandare گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان دانشکده کشاورزی دانشگاه تهران، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشکده منابع طبیعی، گروه محیط زیست، کرج، ایران. hkolangi@gmail.com Blood indices Non-specific immunity Common carp شاخص‌های خونی ایمنی غیراختصاصی سرم کپور معمولی ##جافرنوده، ع.، ۱۳۹۵. بررسی خواص سینرژیستی برخی اسیدهای آلی با پروبیوتیک لاکتوباسیلوس کازئی (Lactobacillus casei) در پرورش بچه ماهیان انگشت قد قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). پایان نامه، دانشگاه ارومیه. ##جمیلی، ش.، ماشینچیان مرادی، ع.، بهمنی، م. و کیائی ضیابری، ک.، ۱۳۷۸. بررسی و شناخت فاکتورهای خونی اردک ماهی تالاب انزلی. اولین کنفرانس ملی علوم شیلات و آبزیان ایران، لاهیجان. ##حلاجیان، ع.، بهمنی، م.، کاظمی، ر.، دژندیان، س.، یوسفی جوردهی، ا. و خزایی، ا.، ۱۳۹۴. مطالعه برخی شاخص های ایمنی خون تاسماهی ایرانی (Acipenser persicus) در آب های سواحل استان مازندران. مجله علمی شیلات ایران،‌ ۲۴(۳): ۱۹۱-۲۰۲.##خانی، ف.، ایمانپور، م.، کلنگی میاندره، ح.، قائدی، ع. و تقی زاده، و.، ۱۳۹۴. اثر نوکلئوتید جیره بر پارامترهای خونی و بیوشیمیایی سرم خون تاسماهی ایرانی جوان (Acipenser persicus). مجله علمی شیلات ایران،‌ ۲۴(۳): ۱۷۹-۱۹۰.##شیخ الاسلامی امیری، م.، ۱۳۸۷. تاثیر پربیوتیک اینولین بر رشد، بازماندگی، ‌میکروفلور و سیستم ایمنی ماهی قزل آلای رنگین کمان، پایان نامه، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر.##Amar, E.C., Kiron, V., Satoh, S., Okamoto, N. and Watanabe, T., 2000. Effects of dietary β‐carotene on the immune response of rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Fisheries Science, 66(6): 1068-1075.## DOI: 10.1046/j.1444-2906.2000.00170.x.##Boesen, H.T., Pedersen, K., Larsen, J.L., Koch, C. and Ellis, A.E., 1999. Vibrio anguillarum resistance to rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) serum role of O-antigen structure of lipopolysaccharide. Infection and Immunity, 67(1): 294-301.##Brunt, J. and Austin, B., 2005. Use of a probiotic to control lactococcosis and streptococcosis in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Journal of Fish Diseases, 28(12): 693-701. DOI: 10.1111/j.1365-2761.2005.00672.x.##Ferguson, R.M.W., Merrifield, D.L., Harper, G.M., Rawling, M.D., Mustafa, S., Picchietti, S., Balcàzar, J.L. and Davies, S.J., 2010. The effect of Pediococcus acidilactici on the gut microbiota and immune status of on‐growing red tilapia (Oreochromis niloticus). Journal of Applied Microbiology, 109(3): 851-862. DOI: 10.1111/j.1365-2672.2010.04713.x. ## ##Firouzbakhsh, F., Noori, F., Khalesi, M.K. and Jani-Khalili, K., 2011. Effects of a probiotic, protexin, on the growth performance and hematological parameters in the Oscar (Astronotus ocellatus) fingerlings. Fish Physiology and Biochemistry, 37(4): 833-842. DOI: 10.1007/s10695-011-9481-4•##Gatesoupe, F.J., 1999. The use of probiotics in aquaculture. Aquaculture, 180(1): 147-165. DOI: 10.1016/S0044-8486(99)00187-8.##Geng, X., Dong, X.H., Tan, B.P., Yang, Q.H., Chi, S.Y., Liu, H.Y. and Liu, X.Q., 2011. Effects of dietary chitosan and Bacillus subtilis on the growth performance, non-specific immunity and disease resistance of cobia, Rachycentron canadum. Fish & Shellfish Immunology, 31(3): 400-406. DOI: 10.1016/j.fsi.2011.06.006. ##Gibson, G.R., Probert, H.M., Van Loo, J., Rastall, R.A. and Roberfroid, M.B., 2004. Dietary modulation of the human colonic microbiota: updating the concept of prebiotics. Nutrition Research Reviews, 17(2): 259-275. DOI: 10.1079/NRR200479.##Herre, J., Gordon, S. and Brown, G.D., 2004. Dectin-1 and its role in the recognition of β-glucans by macrophages. Molecular Immunology, 40(12): 869-876. ## DOI: 0.1016/j.molimm.2003.10.007.##Hoseinifar, S.H., khodadadian Zou, H., Kolangi Miandare, H., Hienvan, D., Romano, N. and Dadar, M ., 2017. Enrichment of common carp (Cyprinus carpio) diet with medlar (Mespilus germanica) leaf extract: Effects on skin mucosal immunity and growth performance. Fish & Shellfish Immunology, 67: 346-352. DOI:10.1016/j.fsi.2017.06.023.##Iwama, G.K., McGeer, J.C. and Pawluk, M.P., 1989. The effects of five fish anaesthetics on acid–base balance, hematocrit, blood gases, cortisol, and adrenaline in rainbow trout. Canadian Journal of Zoology, 67, 2065-2073. DOI: 10.1139/z89-294.##Kruger, N.J., 1994. The Bradford method for protein quantitation. Methods in Molecular Biology, 32(1): 9-15. DOI: 10.1385/0-89603-268-X:9.##Martinez-Alvarez, R.M., Hidalgo, M.C., Domezain, A., Morales, A.E., García-Gallego, M. and Sanz, A., 2002. Physiological changes of sturgeon Acipenser naccarii caused by increasing environmental salinity. Journal of Experimental Biology, 205(23): 3699-3706.##Merrifield, D.L., Bradley, G., Baker, R.T.M. and Davies, S.J., 2010. Probiotic applications for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum) I. Effects on growth performance, feed utilization, intestinal microbiota and related health criteria postantibiotic treatment. Aquaculture Nutrition, 16(5): 496-503. DOI: 10.1111/j.1365-2095.2009.00689.x.##Mouriño, J.L.P., Do Nascimento Vieira, F., Jatobá, A.B., Da Silva, B.C., Jesus, G.F.A., Seiffert, W.Q. and Martins, M.L., 2012. Effect of dietary supplementation of inulin and W. cibaria on haemato‐immunological parameters of hybrid surubim (Pseudoplatystoma sp). Aquaculture Nutrition, 18(1): 73-80. ## DOI: 10.1111/j.1365-2095.2011.00879.x.##Osuigwe, D.I., Obiekezie, A.I. and Onuoha, G.C., 2005. Some haematological changes in hybrid catfish (Heterobranchus longifilis x Clarias gariepinus) fed different dietary levels of raw and boiled jackbean (Canavalia ensiformis) seed meal. African Journal of Biotechnology, 4(9): 1017-1021. DOI: 10.5897/AJB2005.000-3199.##Panigrahi, A., Kiron, V., Satoh, S., Hirono, I., Kobayashi, T., Sugita, H., Puangkaew, J. and Aoki, T., 2007. Immune modulation and expression of cytokine genes in rainbow trout Oncorhynchus mykiss upon probiotic feeding. Developmental & Comparative Immunology, 31(4): 372-382. DOI: 10.1016/j.dci.2006.07.004.##Sakai, M., 1999. Current research status of fish immunostimulants. Aquaculture, 172(1): 63-92. DOI:10.1016/S0044-8486(98)00436-0.##Soleimani, N., Hoseinifar, S.H., Merrifield, D.L., Barati, M. and Abadi, Z.H., 2012. Dietary supplementation of fructooligosaccharide (FOS) improves the innate immune response, stress resistance, digestive enzyme activities and growth performance of Caspian roach (Rutilus rutilus) fry. Fish & Shellfish Immunology, 32(2): 316-321. DOI: 10.1016/j.fsi.2011.11.023.##Subramanian, S., Ross, N.W. and MacKinnon, S.L., 2008. Comparison of the biochemical composition of normal epidermal mucus and extruded slime of hagfish (Myxine glutinosa L.). Fish & Shellfish Immunology, 25(5): 625-632. DOI:10.1016/j.fsi.2008.08.012.##Whaley, K. and North, J., 1997. Haemolytic assays for whole complement activity and individual components. Complement: A Practical Approach, 1: 19-47.##Ye, J.D., Wang, K., Li, F.D. and Sun, Y.Z., 2011. Single or combined effects of fructmannan oligosaccharide supplements and Bacillus clausii on the growth, feed utilization, body composition, digestive enzyme activity, innate immune response and lipid metabolism of the Japanese flounder Paralichthys olivaceus. Aquaculture Nutrition, 17: 902-911. DOI: 10.1111/j.1365-2095.2011.00863.x.## ##

انتخاب سایت مناسب پرورش میگو با استفاده از رویکرد ارزیابی چند معیاره (مطالعه موردی: ساحل جنوبی بوشهر) Suitable site selection of shrimp farming using Multi-criteria evaluation approach (Case study: Southern coast of Bushehr) 1 1 انتخاب سایت یک عامل کلیدی در هر گونه عملیات آبزی پروری است که باعث استفاده پایدار از اراضی می­شود. هدف تحقیق، مکانیابی مناطق مناسب توسعه پرورش میگو در سواحل جنوبی استان بوشهر با استفاده از سامانه اطلاعات جغرافیایی (GIS) و ارزیابی چند معیاره با ایجاد پایگاه لایه های اطلاعاتی معیارها و گزینه­های موثر شامل معیار احداث استخر (شیب، ارتفاع، کاربری اراضی و ضخامت خاک)، کیفیت خاک (نوع، بافت و اسیدیته خاک)، دسترسی به آب دریا (فاصله تا دریا و نوع منبع آبی) و  زیر ساخت­های اقتصادی-اجتماعی (فاصله تا هچری، فاصله تا بازار محلی، فاصله تا جاده و تراکم جمعیت) تهیه شده از تصاویر لندست 8 در محیط سیستم اطلاعات جغرافیایی پردازش گردید. لایه محدودیت نیز از مکان­هایی که مجاز به آبزی پروری نیستند، حذف شد. وزن معیارها و گزینه­های با روش فرآیند تحلیل سلسله مراتبی تعیین گردید. تصاویر لندست و 13 لایه موضوعی در محیط ENVI و GIS تجزیه و تحلیل شدند. با تلفیق و همپوشانی لایه های اطلاعاتی، نقشه نهایی مکان های مناسب پرورش میگو در چهار طبقه (بسیار مناسب، مناسب، نسبتاً مناسب و نامناسب) تهیه گردید. نتایج نشان داد که 18781 هکتار (16 درصد) اراضی منطقه در پهنه بسیار مناسب، 46899 هکتار (40 درصد) در طبقه مناسب، 47784 هکتار (7/40 درصد) و 3818 هکتار (3/3 درصد) از مناطق به ترتیب با ارزیابی میدانی در طبقه نسبتاً مناسب و نامناسب قرار گرفتند. صحت‌ نقشه مکانیابی با استفاده از روش منحنی عامل نسبی (ROC) ارزیابی گردید که نتایج مقدار ROC، 749/0 نشان دهنده صحت مدل ارائه شده می­باشد. نتایج به دست آمده از تحقیق حاضر به توسعه مزارع پرورش میگو و تنوع فعالیت­های اقتصادی در منطقه ساحلی کمک می­نمایند.   2 Site selection is a key factor in any aquaculture operation which makes land use sustainable. This study was conducted to identify the appropriate sites for development of shrimp culture in the southern cost of Bushehr Province using geographical information systems (GIS) and Multi Criteria Evaluation (MCE) by creating a database of information layers, criterias and effective alternatives including pond construction (slope, elevation, land use types and soil thickness), soil quality (type, texture and pH of soil), sea water availability (distance to sea and type of water source), and social and economic infrastructure (population density and distance to roads, local markets, and hatcheries) were obtained from the Landsat 8 satellite images and processed in GIS environment. The constraint layer was excluded from the areas that were not allowed to implement shrimp farming. An Analytical hierarchy model was developed to identify and prioritize the most suitable areas for shrimp farming. The Landsat images and 13 thematic layers were analyzed using ENVI and GIS. By consolidating and overlaying the data layers, the final map of the appropriate places for shrimp farming was prepared and classified the area of study in four various zones (most suitable, suitable, moderately suitable and not suitable). The study revealed that 18781 ha (16%) was categorized in the most suitable group, 46899 ha (40%) was suitable, 47784 ha (40.7%) was moderately suitable and 3818 ha (3.3%) was not suitable. These results were consistent with field verification. The map accuracy was evaluated by the method of Relative Operating Characteristic (ROC). The result of ROC (0.749) indicated the validity of the presented model. The results of the present study can help to develope shrimp farms and increase diversity of the economic activities in the coastal zone.   71 83 2015/08/162017/05/152016/12/12017/05/312016/12/152017/07/162017/07/132017/01/5 1395/10/16 2017/12/172018/01/72018/01/72018/01/102018/01/132018/01/132018/01/172018/01/20 1396/10/30 فاضل امیری Fazel Amiri دانشگاه آزاد اسلامی واحد بوشهر ایران amiri_fazel@yahoo.com عبدالرحمان مرادزاده AbdulRahman Moradzadeh دانشگاه آزاد اسلامی واحد بوشهر ایران fazel16760@gmail.com اسماعیل کوه گردی Esmaeil Kouhgardi دانشگاه آزاد اسلامی واحد بوشهر ایران e.kouhgardi@yahoo.com Shrimp farming Site selection Land evaluation Coastal area Bushehr پرورش میگو مکانیابی ارزیابی اراضی مناطق ساحلی بوشهر ##امیری، ف.، طباطبایی، ط. و فقیه، ح.، 1395. تعیین اراضی مناسب پرورش میگو به منظور استفاده از منابع آب شور در محیط‌های خشک و بیابانی با استفاده از سامانه اطلاعات جغرافیایی و ارزیابی چند معیاره مکانی، 6: 68-55. ##جلالی جعفری، ب. و برزگر دولت‌آبادی، م.، 1387. مدیریت بهداشتی پرورش میگو. انتشارات نوربخش. 256 صفحه.##حکمت شعار، م.، درخشان، ر.ب.، اصغری، ا.ر.، آقا احمدی، ا.، عسگری، ص. و معدنی، و.، 1389. زمینه‌های سرمایه-گذاری آبزی‌پروری (پرورش میگو). معاونت آبزی‌پروری سازمان شیلات ایران. 28 صفحه. ##دریانبرد، غ.ر.، فارابی، و.، فضلی، ح.، متین فر، ع. و غرا، ک.، 1396. جانمایی مکان های مناسب برای استقرار قفس‌های پرورش ماهیان در آبهای ایرانی دریای خزر، مجله علمی شیلات ایران، 26(3): 169-159.## DOI: 10.22092/ISFJ.2017.113557##راسخی، ص.، 1374. بیماریهای میگوی خانواده پنائیده. معاونت تکثیر و پرورش آبزیان شیلات ایران. 54 صفحه.## عظیمی حسینی، م.، نظری فر، م. ه. و مومنی، ر.، 1392. کاربرد GIS در مکان یابی. انتشارات مهرگان قلم. 304 صفحه.## قدسی پور، ح.، 1392. فرآیند تحلیل سلسله مراتبی. انتشارات دانشگاه صنعتی امیرکبیر. 224 صفحه.##هادی پور، ا.ب.، وفایی، ف. و احمدی، س.، 1387. مکانیابی مزارع پرورش میگو با استفاده از GIS و تصمیم گیری چند معیاره فازی. هشتمین کنفرانس بین المللی سواحل، بنادر و سازه‌های دریایی، سازمان بنادر و کشتیرانی، تهران، 6-4 آذرماه. 1387.##Alonso-Pérez, F., Ruiz-Luna, A., Turner, J., Berlanga-Robles, C.A. and Mitchelson-Jacob, G.. 2003. Land cover changes and impact of shrimp aquaculture on the landscape in the Ceuta coastal lagoon system, Sinaloa, Mexico. Ocean & Coastal Management, 46(6-7):583-600. (doi: 10.1016/S0964-5691(03)00036-X)##Arnold, W.S., White, M.W., Norris, H.A. and Berrigan, M.E., 2000. Hard clam (Mercenaria spp.) aquaculture in Florida, USA: geographic information system applications to lease site selection. Aquacultural Engineering, 23(1-3): 203-231. (doi: 10.1016/S0144-8609(00)00042-X)##Chen, K.J. and Ramos, S.L., 1989. Prawn farming: hatchery and grow-out operations. West Point Aquaculture Corporation. metro manila Philippines, 186p.##Dahdouh-Guebas, F., Zetterström, T., Rönnbäck, P., Troell, M., Wickramasinghe, A. and Koedam, N., 2002. Recent changes in land-use in the Pambala-Chilaw lagoon complex (Sri Lanka) investigated using remote sensing and GIS: conservation of mangroves vs. development of shrimp farming. Environment, Development and Sustainability, 4(2):185-200. (doi: 10.1023/A:1020854413866)##De Groot, R., 2006. Function-analysis and valuation as a tool to assess land use conflicts in planning for sustainable, multi-functional landscapes. Landscape and urban planning, 75(3):175-186. (doi: 10.1016/j.landurbplan.2005.02.016)##FAO. 1984. Aquaculture development and coordination programme, Inland Aquaculture Engineering (trans: Department FaA). Lectures presented at the ADCP Inter-regional Training Course, Budapest, 220p.##Giap, D.H., Yi. Y. and Yakupitiyage, A., 2005. GIS for land evaluation for shrimp farming in Haiphong of Vietnam. Ocean & Coastal Management, 48(1):51-63. (doi: 10.1016/j.ocecoaman.2004.11.003)##Gupta, M.C., Krishnarajan, V.P. and Nayak, S., 2001. Brackish water aquaculture site selection in coastal track of cannanore (Kerala) using remote sensing and GIS techniques. Journal Indian Socity Remote Sensing, 29(1-2):79-83. (doi: 10.1007/BF02989917)##Hossain, M.S., Chowdhury, S.R., Das, N.G. and Rahaman, M.M., 2007. Multi-criteria evaluation approach to GIS-based land-suitability classification for tilapia farming in Bangladesh. Aquaculture International, 15(6):425-443. (doi: 10.1007/s10499-007-9109-y)##Hossain, M.S., Chowdhury, S.R., Das, N.G., Sharifuzzaman, S.M. and Sultana, A., 2009. Integration of GIS and multicriteria decision analysis for urban aquaculture development in Bangladesh. Landscape and Urban Planning, 90(3-4):119-133. (doi: 10.1016/j.landurbplan.2008.10.020)##Hossain, M.S. and Das, N.G., 2010. GIS-based multi-criteria evaluation to land suitability modelling for giant prawn (Macrobrachium rosenbergii) farming in Companigonj Upazila of Noakhali, Bangladesh. Computers and Electronics in Agriculture, 70(1):172-186. (doi: 10.1016/j.compag.2009.10.003)##Islam, M.M., Ahmed, M.K., Shahid, M.A., Hoque, S. and Islam, D., 2009. Determination of land cover changes and suitable shrimp farming area using remote sensing and GIS in Southwestern Bangladesh. International Journal of Ecology & Development, 12(W09): 28-41.##Kapetsky, J.M. and Aguilar-Manjarrez, J., 2007. Geographic Information Systems, remote sensing and mapping for the development and management of marine aquaculture. FAO Fisheries and Aquaculture Technical Paper, 125p.##Karthik, M., Suri, J., Saharan, N. and Biradar, R.S., 2005. Brackish water aquaculture site selection in Palghar Taluk, Thane district of Maharashtra, India, using the techniques of remote sensing and geographical information system. Aquacultural Engineering, 32(2):285-302. (doi: 10.1016/j.aquaeng.2004.05.009)##Kungvankij, P., Chua, T.E., Pudadera, Jr.B., Corre, K., Borlongan, E., Tiro, Jr.L., Potestas, I. and Talean, G., 1988. Shrimp culture: pond design, operation and management, 76p.##Longdill, P.C., Healy, T.R. and Black, K.P., 2008. An integrated GIS approach for sustainable aquaculture management area site selection. Ocean & Coastal Management, 51(8): 612-624. (doi: 10.1016/j.ocecoaman.2008.06.010)##Longdill, P.C., Healy, T.R., Black, K.P. and Mead, S.T.. 2007. Integrated sediment habitat mapping for aquaculture zoning. Journal of Coastal Research, 50:173-179.##Malczewski, J., 2006. GIS‐based multicriteria decision analysis: a survey of the literature. International Journal of Geographical Information Science, 20(7):703-726. (doi: 10.1080/13658810600661508) ##Malczewski, J., 1999. GIS and Multicriteria Decision Analysis. illustrated edn. John Wiley & Sons, 392p.##Marinoni, O., 2004. Implementation of the analytical hierarchy process with VBA in ArcGIS. Computers & Geosciences, 30(6):637-646. (doi: 10.1016/j.cageo.2004.03.010)##Nath, S.S., Bolte, J.P., Ross, L.G. and Aguilar-Manjarrez, J., 2000. Applications of geographical information systems (GIS) for spatial decision support in aquaculture. Aquacultural Engineering, 23(1):233-278. (doi: 10.1016/S0144-8609(00)00051-0)##Perez, O.M., Telfer, T.C. and Ross, L.G., 2005. Geographical information systems-based models for offshore floating marine fish cage aquaculture site selection in Tenerife, Canary Islands. Aquaculture Research, 36(10):946-961. (doi: 10.1111/j.1365-2109.2005.01282.x)##Rajitha, K., Mukherjee, C.K. and Vinu Chandran, R., 2007. Applications of remote sensing and GIS for sustainable management of shrimp culture in India. Aquacultural Engineering, 36(1):1-17. (doi: 10.1016/j.aquaeng.2006.05.003)##Saaty, R.W., 1987. The analytic hierarchy process-what it is and how it is used. Mathematical Modelling, 9(3-5):161-176. (doi: 10.1016/0270-0255(87)90473-8)##Salam, M.A. and Ross, L.G., 2000. Optimising site selection for development of shrimp (Penaeus monodon) and mud crab (Scylla serrata) culture in South-western Bangladesh. Paper presented at the 14 rd annual conference on geographic information systems, Proceedings of the GIS, March 2000, Toronto, Canada. Santos, 2000.##Salam, M.A., Ross, L.G. and Beveridge, C.M., 2003. A comparison of development opportunities for crab and shrimp aquaculture in southwestern Bangladesh, using GIS modelling. Aquaculture, 220(1):477-494. (doi: 10.1016/S0044-8486(02)00619-1)## ##

ارزیابی تاثیر دما، زمان و pH بر پایداری رنگدانه فیکوسیانین استخراج شده از جلبک اسپیرولینا (Spirulina platensis) Evaluation of the effect of temperature, time and pH on stability of phycocyanin extracted from Spirulina platensis 1 1 فیکوسیانین رنگدانه آبی جلبک اسپیرولینا پلاتنسیس بوده که دارای ویژگی­های آنتی اکسیدانی،  ضدسرطانی و ضدالتهابی می­باشد. در این مطالعه، پس از کشت اولیه جلبک اسپیرولینا در محیط کشت زاروک تغییر یافته و استخراج فیکوسیانین با آنزیم لیزوزیم، خالص­سازی نسبی فیکوسیانین ( با استفاده از سولفات آمونیوم 40 درصد) انجام شد. در نهایت، پایداری فیکوسیانین در قالب طرح کاملاً تصادفی بر پایه آزمایش فاکتوریل با در نظر گرفتن سه فاکتور دما در سه سطح 18- ، 4 و 10 درجه سانتی گراد، pH در سه سطح 5/4 ، 5/5 و 7 و زمان در سه سطح 15، 30 و 45 روز مورد ارزیابی قرار گرفت. غلظت و خلوص فیکوسیانین به­ترتیب، در عصاره خام 815/1 و 825/0  میلی­گرم در میلی­لیتر در عصاره خالص­سازی شده 751/3 و 135/1 میلی­گرم در میلی­لیتر بود. نتایج حاکی از کاهش نسبی پایداری فیکوسیانین با افزایش زمان نگهداری در دماهای مورد بررسی بود. با این وجود، بیشترین پایداری فیکوسیانین در دمای 18- و سپس 4 درجه سانتی گراد با روند مشابه در دامنه  pH های مورد بررسی بوده است. با افزایش دمای نگهداری به 10 درجه سانتی گراد، پایداری فیکوسیانین خصوصا در 5/5pH= کاهش شدیدی داشته و جذب نوری آن در روز 30 به صفر رسید. بهترین شرایط جهت حداقل کاهش غلظت فیکوسیانین، 5/4pH=، دمای 18- درجه سانتی گراد و زمان 30 روز بود. با توجه به نتایج بدست آمده، امکان استفاده از فیکوسیانین در فراورده­های غذایی که در دمای یخچال و یا انجماد (فراورده های لبنی و بستنی) نگهداری می شوند وجود دارد.   2 Phycocyanin is a blue pigment of Spirulina algae that has antioxidant, anticancer and anti-inflammatory properties. In this study, primary culture of Spirulina was performed in the modified Zarrouk medium. Phycocyanin was extracted enzymatically using lysozyme and was purified by the use of ammonium sulfate 40% solution. The stability of phycocyanin was evaluated by the split factorial experiment in a completely randomized design based on three factors including temperature (-18, 4 and 10°C), pH (4.5, 5.5 and 7) and time (15, 30 and 45 days). The concentration and purity of phycocyanin in the crude extract were 1.815 mg/ml and 0.825, respectively whereas the concentration and purity of phycocyanin in the purified extract were 3.751 mg/ml and 1.135, respectively. The results showed that the stability of phycocyanin was relatively decreased by increasing the storage time at various temperatures. However, the highest stability of phycocyanin was observed at -18°C followed by 4°C with the same trend in the range of pH. By increasing the storage temperature to 10°C, the stability of phycocyanin drastically reduced especially in a pH of 5.5 and the absorbance of light was reached to zero in 30 days. The best conditions for the minimum concentration loss of phycocyanin were in a pH of 4.5 at -18 °C and storage duration of 30 days. According to the results, it is possible to use phycocyanin in the food products that are stored in cold or freezing temperatures such as dairy products and ice cream.   85 93 2015/08/162017/05/152016/12/12017/05/312016/12/152017/07/162017/07/132017/01/52017/05/15 1396/2/25 2017/12/172018/01/72018/01/72018/01/102018/01/132018/01/132018/01/172018/01/202018/01/21 1396/11/1 رضا صفری Reza Safari دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری ایران safari1351@gmail.com زینب رفتنی امیری Zeynab Raftani Amiri دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری ایران zramiri@gmail.com رضا اسماعیل زاده کناری Reza Esmaeilzadeh Kenari دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری ایران reza_kenari@yahoo.com Spirulina platensis Phycocyanin pigment Stability Environmental parameters اسپیرولینا پلاتنسیس رنگدانه فیکوسیانین پایداری پارامترهای محیطی ##انصاری فرد، ف.، رجبی اسلامی، ه.، شمسایی مهرجان، م. و سلطانی، مهدی.، 1396. تاثیر مکمل اسپیرولینا بر سیستم ایمنی و فاکتورهای بیوشیمیایی خون ماهی کوی(Cyprinus carpio carpio) . مجله علمی شیلات ایران، 3(26): 33-23.##مستولی زاده، ص.، مرادی، ی.، مرتضوی، م .ص.، مطلبی، ع. و قائنی، م.، 1396. تاثیر افزودن پودر میکروجلبک اسپیرولینا بر ترکیب اسیدهای چرب و اسیدهای آمینه پاستا. مجله علمی شیلات ایران، 4(26): 131-119.##Antelo, F.S., Anschau, A., Costa, J. and Kalil, S.J., 2010. Extraction and purification of ##C-phycocyanin from Spirulina platensis in conventional and integrated aqueous two-phase systems. Journal of the Brazilian Chemical Society, 21: 1-12.##Antelo, F.S., Costa, J.A.V., and Kalil, S.J. 2008. Thermal degradation kinetics of the phycocyanin from Spirulina platensis. Biochemistry Engineering Journal, 41: 43–47.##Chaiklahan, R., Chirasuwan, N. and Bunnag, B., 2012. Stability of phycocyanin extracted from Spirulina sp.: Influence of temperature, pH and preservatives. Process Biochemistry, 47: 659–664.##Doke, J.M., 2005. An improved and efficient method for the extraction of phycocyanin from Spirulina sp. International Journal of Food Engineering, 1: 1–13.##Duangsee, R., Phoopat, N. and Ningsanond, S., 2009. Phycocyanin extraction from Spirulina platensis and extract stability under various pH and temperature. Asian Journal of Food and Agro-Industry, 4: 819-826.##Durai, P., Batool, M. and Choi, S., 2015. Structure and effects of cyanobacterial lipopolysaccharides. Marine Drugs, 13: 4217-4230.##Eriksen, N.T., 2008. Production of Phycocyanin – a pigment with applications in biology, biotechnology, foods and medicine. Applied Microbiology and Biotechnology, 80: 1–14.##Intergovernmental Institution for the use of Micro-algae Spirulina Against Malnutrition. 2014. Establishing spirulina cultivation facility & humanitarian aid distribution facility for spirulina & phycocyanin to combat severe hunger and malnutrition with IIMSAM. Final report. 1-92.##Ismaiel, M. M., El-Ayouty, Y. M. and Piercey-Normorea, M., 2016. Role of pH on antioxidants production by Spirulina (Arthrospira) platensis. Brazilian Journal of Microbiology, 47: 298–304.##Jaouen, P., Lépine, B., Rossignol, N., Royer, R. and Quéméneur, F., 1999. Clarification and concentration with membrane technology of a phycocyanin solution extracted from Spirulina platensis. Biotechnology Techniques, 13: 877–81.##Jerley, A. A. and Prabu, D. M., 2015. Purification, characterization and antioxidant properties of C-Phycocyanin from Spirulina platensis. Scrutiny International Research Journal of Agriculture, Plant Biotechnology and Bio Products, 2: 7-15.##Jesperse, L., Strømdahl, L.D., Olsen, K. and Skibsted, L.H., 2005. Heat and light stability of three natural blue colorants for use in confectionary and beverages. European Food Research and Technology, 220: 261–266.##Joshi, M., Kaur, K., Mishra, T. and Singh, S., 2014. To evaluate lab scale cultivation of spirulina by using different substrates and to evaluate its chlorophyll and protein content. International Research Journal of Biological Science, 3: 22-30.##Kamble, S.P., Gaikar, R.B., Padalia, R.B. and Shide, K.D., 2013. Extraction and purification of C-phycocyanin from dry Spirulina powder and evaluating its antioxidant, anticoagulation and prevention of DNA damage activity. Journal of Applied Pharmaceutical Science, 3: 149-153.##Kuddus, M., Singh, P., Thomas, G. and Al- Hazimi, A., 2013. Recent developments in production and biotechnological applications of C- Phycocyanin. BioMed Research International, Article ID 742859, 9 pages.##Kumar, D., Kumar, N. and Pabbi, S., 2013. Protocol optimization for enhanced production of pigments in Spirulina. Indian Journal of Plant Physiology, 18: 308–312.##Leema, J.T., Kirubagaran, R., Vinithkumar, N.V., Dheenan, P.S. and Karthikayulu, S., 2010. High value pigment production from Spirulina platensis cultured in seawater. Bioresource Technology, 101: 9221–7.##Liu, L., Chen, X., Zhang, X., Zhang, X. and Zhou, B., 2005. One- step chromatography method for efficient separation and purification of R- phycoerythrin from Polysiphonia urceolata. Journal of Biotechnology, 116: 91–100.##Mishra, S.K., Shrivastav, A. and Mishra, S., 2008. Effect of preservatives for food grade C-PC from Spirulina platensis. Process Biochemistry, 43: 339–45.##Moraes, C.C., Luisa Sala, G.P. and Kalil, S.J., 2011. C-Phycocyanin extraction from Spirulina platensis wet biomass. Brazilian Journal of Chemical Engineering, 28: 1## 45 – 49. ##Muthulakshmi, M., Saranya, A., Sudha, M. and Selvakumar, G., 2012. Extraction, partial purification, and antibacterial activity of phycocyanin from Spirulina isolated from fresh water body against various human pathogens. Journal of Algal Biomass Utilization, 3: 7–11.##Prabakaran, P. and Ravindran, A.D., 2013. Efficacy of different extraction methods of phycocyanin from Spirulina platensis. International Journal of Research in Pharmacy and Life Sciences, 1: 15-20.##Sarada, R., Pillai, M.G. and Ravishankar, G.A., 1999. Phycocyanin from Spirulina sp: influence of processing of biomass on phycocyanin yield, analysis of efficacy of extraction methods and stability studies on phycocyanin. Process Biochemistry, 34: 795–801.##Saranraj, P. and Sivasakthi, S., 2014. Spirulina platensis – Food for future. Asian Journal of Pharmaceutical Science & Technology, 4: 26-33. ##Sharma, G., Kumar, M., Irfan Ali, M. and Dut Jasuja , N., 2014. Effect of Carbon Content, Salinity and pH on Spirulina platensis for Phycocyanin, Allophycocyanin and Phycoerythrin Accumulation. Microbial & Biochemical Technology, 6: 202-206.##Silveira, S.T., Burkert, J.F.M., Costa, J.A.V., Burkert, C.A.V. and Kalil, S.J., 2007. Optimization of phycocyanin extraction from Spirulina platensis using factorial design. Bioresource Technology, 98: 1629–34.##Sivasankari, S., Ravindran, N. and Ravindran, D., 2014. Comparison of different extraction methods for phycocyanin extraction and yield from Spirulina platensis. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 3: 904-909.##Spolaore, P., Joannis-Cassan, C., Duran, E. and Isambert, A., 2006. Commercial applications of microalgae. Journal of Bioscience and Bioengineering, 101: 87–96.##Vonshak, A., 1997. Spirulina platensis: physiology, cell-biology and biotechnology. Taylor & Francis, London, UK. 233P.##Yu, P., Wu, Y., Wang, G., Jia, T. and Zhang, Y., 2016. Purification and bioactivities of phycocyanin. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. http://dx.doi.org/10.1080/10408398.2016.1167668. Cited 16 May 2016.## ##

مقایسه تاثیر پوشش‌های کیتوزان و نانوکیتوزان غنی شده با عصاره چای سبز (Camellia sinensis L.) بر کیفیت ماهی گیش درخشان (Carangoides coeruleopinnatus) طی نگهداری در یخچال Comparative effects of chitosan and nanochitosan coatings enriched with green tea)Camellia sinensis L.( extract on quality of Costal trevally fish (Carangoides coeruleopinnatus) during refrigerated storage 1 1 در این مطالعه، تاثیر پوششهای کیتوزان و نانوکیتوزان غنی شده با عصاره چای سبز (Camellia sinensis L.) برکیفیت ماهی گیش درخشان (Carangoides coeruleopinnatus) طی نگهداری در یخچال (Cº 1±4) به مدت 12 روز مورد سنجش قرار گرفتند. برای این منظور، فیله­های ماهی گیش درخشان را در سه گروه به ترتیب محلول کیتوزان 2% حاوی 5/0 % عصاره چای سبز ، نانوکیتوزان (کیتوزان 2% و تری پلی فسفات 2%) حاوی 5/0% عصاره چای سبز و محلول اسید استیک به عنوان نمونه شاهد غوطه­ور شدند. اثر ضد میکروبی پوشش­های کیتوزان و نانوکیتوزان غنی شده با عصاره چای سبز با شمارش باکتریهای مزوفیل هوازی و سرمادوست و خصوصیات فیزیکوشیمیایی شامل: pH، اندیس تیوباربیتوریک اسید (TBARS)، ارزیابی ترکیبات نیتروژنی فرار (TVB-N) و اسیدهای چرب آزاد (FFA) ارزیابی شدند. ارزیابی حسی ماهی گیش درخشان توسط 15 نفر با بررسی طعم، بو و پذیرش کلی در روزهای 0، 3، 6، 9 و12 صورت گرفت. نتایج فاکتورهای فیزیکوشیمیایی و میکروبی نشان داد که نمونه­های حاوی پوشش کیتوزان و نانوکیتوزان غنی شده با عصاره چای سبز در مقایسه با نمونه شاهد، در پایان دوره نگهداری به طور معنی­داری (05/0p<) بهتر بودند. مقادیر بازهای نیتروژنی، اسید چرب آزاد، تیوباربیتوریک اسید و  pHدر نمونه­های حاوی پوشش­های کیتوزان  و نانوکیتوزان غنی شده با عصاره چای سبز به ترتیب برابر30/20، 40/19(mgN/100g) ،46/1، 05/1 (درصد اولئیک اسید) و 66/0، 42/0 (میلی­گرم مالون آلدهید درکیلوگرم بافت ماهی) و 61/7، 49/7 بودند. نتایج ارزیابی حسی نشان داد که فیله­های تیمار شده در مقایسه با نمونه شاهد دارای امتیاز بالاتری بودند. هر دو پوشش کیتوزان و نانوکیتوزان غنی شده با عصاره چای سبز برای حفظ کیفیت فیله ماهی گیش درخشان موثر بودند. اگرچه، نانوکیتوزان فعالیت ضدمیکروبی و آنتی اکسیدانی  بیشتری را نسبت به کیتوزان در طول دوره نگهداری نشان داد. بنابراین برای افزایش ماندگاری و به تاخیر انداختن فساد ماهی گیش درخشان در طول دوره نگهداری در یخچال پوشش نانوکیتوزان غنی شده با عصاره چای سبز موثرتر است.     2 In this study, comparative effects of chitosan and nanochitosan coatings enriched with green tea extract were analyzed on quality of Costal trevally fish (Carangoides coeruleopinnatus) during refrigerated (4±1 ºC) storage at 12 days. For this purpose, the costal trevally fillets were coated into three groups, 2% chitosan solution containing 0.5% green tea extract, nanochitosan (2% chitosan, 2% polyphosphate) containing 0.5% green tea extract and acetic acid solution as control sample. Antimicrobial effect of chitosan and nanochitosan coatings enriched with green tea extract was evaluated by count of aerobic mesophilic bacteria and psychrophilic bacteria, physicochemical properties including pH, TBARS, TVBN and FFA. Sensory evaluation determined by 15 persons who asked to evaluate the flavor, odor, overall acceptability of samples in days 0, 3, 6, 9, 12. The results of physicochemical and bacterial analysis showed that samples treated with chitosan and nanochitosan coatings enriched with green tea extract were lower changes compared to control group. TVB-N, FFA, TBA and pH content in the samples of chitosan and nanochitosan coatings enriched with green tea extract were 20.30, 19.40 mgN/100g, 1.46, 1.05 % Oleic acid and 0.66, 0.42 mg MDA/kg and 7.61, 7.49, respectively. The results of sensory characteristics were showed that treated fillets had high score compared to control samples. Both chitosan and nanochitosan coatings were effective for the preservation of costa trevally fillets during refrigerated storage. However, nanochitosan exhibited higher antimicrobial and antioxidant activity than chitosan during the storage period. Therefore, to extend the shelf life and delay the deterioration of fresh costal trevally fillets during refrigerated storage, nanochitosan coating is more effective.   95 109 2015/08/162017/05/152016/12/12017/05/312016/12/152017/07/162017/07/132017/01/52017/05/152017/05/9 1396/2/19 2017/12/172018/01/72018/01/72018/01/102018/01/132018/01/132018/01/172018/01/202018/01/212018/01/24 1396/11/4 حلیمه آلبوغبیش H Alboghbeish دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر ایران halime185@yahoo.com آی ناز خدانظری A Khodanazary دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر ایران khodanazary@yahoo.com Costal trevally Chitosan Nanochitosan Green tea extract ماهی گیش درخشان کیتوزان نانوکیتوزان عصاره چای سبز ##اجاق، م.، سحری، م.ع. و رضایی، م.، 1383. اثر آنتی اکسیدان‌های طبیعی بر کیفیت ماهی کیلکا معمولی، مجله علوم دریایی ایران، 3: 7-1.##فرهنگ فر، ع.، تاجیک، ح.، رضوی روحانی، س.م.، مرادی، م. و علی اکبرلو، ج.، 1390. اثرات ترکیبی اسانس میخک و عصاره دانه انگور بر روی عوامل فساد باکتریایی پَتی گوشت گاومیش در دمای نگهداری 8 درجه سانتی گراد. مجله پژوهش های صنایع غذایی، 1: 130-113.##محمدی، م.، بهرامیان، س. و رخزادی، ا.، 1395. تاثیر پوشش کیتوزان و اسانس بنه (Pistacia atlantica subsp. kurdica) بر روند اکسیداسون چربی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) طی دوره نگهداری. مجله علمی شیلات ایران، 3: 279-273.##مطلبی، ی.، اجاق، س.م. و سفری، ر.، 1395. اثر پوشش کیتوزان همراه با ناتامایسین بر کیفیت تخم ماهی سفید دریایی خزر (Rutilus frisii kutum) طی نگهداری در دمای یخچال. مجله علمی شیلات ایران، 4: 120-109.##منصورکیائی، آ.، 1388. کاربرد مورفومتری و خصوصیات مورفولوژی اتولیت در جداسازی گونه‌های خانواده‌ی گیش‌ماهیان (Carangidae) در خلیج فارس و دریای عمان پایان نامه کارشناسی ارشد رشته بیولوژی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی.120ص.##Artharn, A., Prodpran, T. and Benjakul, S., 2009. Round scad protein-based film: Storage stability and its effectiveness for shelf–life extension of dried fish powder. LWT-Food Science and Technology, 42(7):1238-1244. DOI: 10.1016/j.lwt.2008.08.009##Bulmer, C., Margaritisa, A. and Xenocostas, A., 2012. Production and characterization of novel chitosan nanoparticles for controlled release of rHu-Erythropoietin, Biochemical Engineering Journal, pp. 61-69. DOI: 10.1016/J.BEJ.2012.07.007##Chaijan, M., Benjakul, S., Visessanguan, W. and Faustman, C., 2005. Changes of pigments and color in sardine (Sardinella gibbosa) and mackerel (Rastrelliger kanagurta) muscle during iced storage. Food Chemistry, 93: 607-617. DOI: 10.1016/j.foodchem.2004.10.035##Carpenter, K.E., P.l. Harrison, G. Hodgson, A.H. Alsaffar and S.H. Ahazeem., 1997. The corals and coral reef Fishes of Kuwait, Kuwait Institute for Scientific research.##Chien Po-Jung, Sheu Fuu, Lin Hung-Ren., 2006. Quality assessment of low molecular weight chitosan coating on sliced red pitayas. Journal of Food Engineering, 36: 1-5. DOI: 10.1016/j.jfoodeng.2006.02.047##Du, W.L.; Xu, Z.R.; Han, X.Y.; Xu, Y.L. and Miao, Z.G., 2009. Preparation, characterization and adsorption properties of chitosan nanoparticles for eosin Y as a model anionic dye. Journal of Hazardous Material, 153: 152-156. DOI: 10.1016/j.jhazmat.2007.08.040##Domard, A., 2011. A perspective on 30 years research on chitin and chitosan. Carbohydrate Polymers, 84: 696-703. DOI: 10.1016/j.carbpol.2010.04.083##Egan, H., R.S. Kirk and R. Sawyer., 1997. Pearson’s chemical Analysis of Foods. 9th edition. Churchill Livingtone, Edingburgh, Scotland, UK. pp 609-643.##Estaca, J.G., Montero, P., Gimenez, B. and Guillen, M.C.G., 2007. Effect of functional edible films and high pressure processing on microbial and oxidative spoilage in cold-smoked sardine (Sardina pilchardus). Food Chemistry, 105: 511–520. DOI: 10.1016/j.foodchem.2007.04.006##Fan, W., Chi, Y. and Zhang, S., 2008. The use of a tea polyphenol dip to extend the shelf life of silver carp (Hypophthalmicthys molitrix) during storage in ice. Food Chemistry, 108: 148-53. DOI: 10.1016/j.foodchem.2007.10.057##Fan, W., Sun, J., Chen, Y., Qiu, J., Zhang, Y. and Chi, Y., 2009. Effects of chitosan coating on quality and shelf life of silver carp during frozen storage. Food Chemistry, 115: 66-70. DOI: 10.1016/j.foodchem.2008.11.060##Fishbase., 2004. www. fishbase.org##Goulas, A.E. and Kontominas, M.G., 2007. Combined effect of light salting, modified atmosphere packaging and oregano essential oil on the shelf-life of sea bream (Sparus aurata): Biochemical and sensory attributes. Food Chemistry, 100: 287-296. DOI: 10.1016/j.foodchem.2005.09.045##Goulas, A.E. and Kontominas, M.G., 2005. Effect of salting and smoking-method on the keeping quality of chub mackerel (Scomber japonicus): Biochemical and sensory attributes. Food Chemistry, 93: 511-520. DOI: 10.1016/j.foodchem.2005.09.045##Gimenez, B., Roncales, P. and Beltran, J.A., 2002. Modified atmosphere packaging of filleted rainbow trout. Journal of the Science of Food and Agriculture, 84: 1154–1159. DOI: 10.1002/jsfa.1136##Huss, H.H., 1995. Quality and quality changes in fresh fish. FAO Fisheries Technical Paper No. 348, Food and Agriculture Organization (FAO) of the United Nations, Rome, Italy.##Jeon, Y.-J., Kamil, J. Y. V. A. and Shahidi, F., 2002. Chitosan as an edible invisible film for quality preservation of herring and Atlantic cod. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 50: 5167-5178. DOI: 10.1021/jf011693l##Kanatt, S.R., Chander, R. and Sharma, A., 2008. Chitosan and mint mixture: A new preservative for meat and meat products. Food Chemistry, 107: 845–852. DOI: 10.1016/j.foodchem.2007.08.088##Kim, K.W. and Thomas, R.L., 2007. Antioxidative activity of chitosans with varying molecular weights. Food Chemistry, 101: 308-313. DOI: 10.1016/j.foodchem.2006.01.038##Kirk, R.S. and Sawyer, R., 1991. Pearsons Chemical Analysis of Foods. (9th Ed.) Longman Scientific and Technical. Harlow, Essex, UK.##Kong, M., Chen, X.G., Xing, K. and Park, H.J. 2010. Antimicrobial properties of chitosan and mode of action: a state of the art review. International Journal of Food Microbiology, 144: 51-63. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2010.09.012##Kreuter, J., 2001. Nanoparticulate systems for brain delivery of drugs. Advanced Drug Delivery Reviews, 47: 65-81. DOI: 10.1016/S0169-409X(00)00122-8##Koutsoumanis, K., Lambropoulou, K. and Nychas, G.J.E., 1999. Biogenic amines and sensory changes associated with the microbial Flora of Mediterranean gilt-head sea bream (Sparus aurata) stored aerobically at 0, 8 and 15°C. Journal of Food Protection. 62: 398-402. DOI: 10.4315/0362-028X-62.4.398##Li, T., Hu,W., Li, J., Zhang, X., Zhu, J. and Li, X., 2012. Coating effects of tea polyphenol and rosemary extract combined with chitosan on the storage quality of large yellow croaker (Pseudosciaena crocea). Food Control, 25: 101-106. DOI: 10.1016/j.foodcont.2011.10.029##Lin, C.C. and Lin, C.S., 2005. Enhancement of the storage quality of frozen bonito fillet by glazing with tea extracts. Food Control, 16: 169-175. DOI: 10.1016/j.foodcont.2004.01.007##Losada, V., Barros-Velazquez, J. and Aubourg, S.P., 2007. Rancidity development in frozen pelagic fish: Influence of slurry ice as preliminary chilling treatment. Learning with Technologies, 40: 991–999.##Lopez-Caballero, M.E., Gomez-Guillen, M.C., Perez-Mateos, M. and Montero, P., 2005. A chitosan-gelatin blend as a coating for fish patties. Food Hydrocolloids, 19: 303–311. DOI: 10.1016/j.foodhyd.2004.06.006##Mohan, C.O., Ravishankar, C.N., Lalitha, K.V. and Srinivasa Gopal, T.K., 2012. Effect of chitosan edible coating on the quality of double filleted Indian oil sardine (Sardinella longiceps) during chilled storage. Food hydrocolloids, 26: 167–174. DOI: 10.1016/j.foodhyd.2011.05.005##No, H.K., Meyers, S.P., Prinyawiwatkul, W. and Xu, Z., 2007. Applications of chitosan for improvement of quality and shelf life of foods: A review. Journal of Food Science, 72: 87-100. DOI: 10.1111/j.1750-3841.2007.00383.x##No, H.K., Lee, S.H., Park, N.Y. and Meyers, S.P., 2003. Comparison of physicochemical, binding, and antibacterial properties of chitosans prepared without and with deproteinization process. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 51: 7659-7663. DOI: 10.1021/jf030226w##Nirmal, N.P. and Benjakul, S., 2011. Retardation of quality changes of Pacific White shrimp by green tea extract treatment and modified atmosphere packaging during refrigerated storage. International Journal of Food Microbiology, 149: 247- 253. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2011.07.002 ##Nirmal, N.P. and Benjakul, S., 2009. Melanosis and quality changes of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) treated with catechin during iced storage. Journal of Agricultural and Food Chemistry 57, 3578–3586. DOI: 10.1021/jf900051e##Nowzari, F., Shabanpour, B. and Ojagh, S.M., 2013. Comparison of chitosan-gelatin composite and bilayer coating and film effect on the quality of refrigerated rainbow trout. Food Chemistry, 114: 1667-1672. DOI: 10.1016/j.foodchem.2013.03.022##Ojagh, S.M., Rezaei, M., Razavi, S.H. and Hosseini, S.M.H., 2010. Effect of chitosan coatings enriched with cinnamon oil on the quality of refrigerated rainbow trout. Food Chemistry, 120: 193-8. DOI: 10.1016/j.foodchem.2009.10.006##Ozyurt, G., Kuley, E., Ozkutuk, S. and Ozogul, F., 2009. Sensory, microbiological and chemical assessment of the freshness of red mullet (Mullus barbatus) and gold band goatfish (Upeneus moluccensis) during storage in ice. Food Chemistry, 114: 505–10. DOI: 10.1016/j.foodchem.2008.09.078##Parvaneh, V., 1998. Quality control and the chemical analysis of food. Tehran University Press, 325p.##Qi, L., Xu, Z., Jiang, X., Hu, C. and Zou X., 2004. Preparation and antibacterial activity of chitosan nanoparticles. Carbohydrate Research, 339: 2693-2700. DOI: 10.1016/j.carres.2004.09.007##Ramezani, Z., Zarei, M. and Raminnejad, N., 2015. Comparing the effectiveness of chitosan and nanochitosan coating on the quality of refrigerated silver carp fillets. Food Control, 51:43-48. DOI: 10.1016/j.foodcont.2014.11.015##Ratnaparkhi, M.P. and Chaudhari, S.P., 2011. Pandy V.A., Peptide and protein in pharmaceuticals, International Journal of current Pharmaceutical Research, pp.1-9.##Rezaei, M., Hosseini, S.F., Ershad Langrudi, H., Safari, R. and Hosseini, S.V., 2008. Effect of delayed icing on quality changes of iced rainbow trout (Onchorynchus mykiss). Food Chemistry. 106: 1161-1165. DOI: 10.1016/j.foodchem.2007.07.052##Riebroy S., Benjakul S., Visessanguan W. and Tanaka M., 2007. Effect of ice storage of bigeye snapper (Priacanthus tayenus) on the chemical composition, Properties and acceptability of Som – fug, a fermented Thai fish mince. Food Chemistry. 102: 270-280. DOI: 10.1016/j.foodchem.2006.05.017##Shahbazi, M.A., Hamidi, M. and Mohammadi-Samani, S., 2013. Preparation, optimization, and in-vitro/in-vivo/ex-vivo characterization of chitosan-heparin nanoparticles: drug-induced gelation, Journal of Pharmacy and pharmacology, 65: 1118–1133. DOI: 10.1111/jphp.12076##Sallam, K.I., 2007. Antimicrobial and antioxidant effects of sodium acetate, sodium lactate, and sodium citrate in refrigerated sliced salmon. Food Control, 18: 566–575. DOI: 10.1016/j.foodcont.2006.02.002##Sathivel, S., Liu, Q., Huang J. and Prinyawiwatkul, W., 2007. Influence of chitosan glazing on the quality of skinless pink salmon (Oncorhynchus gorbuscha) fillets during frozen storage. Journal of Food Engineering, 83: 366-373. DOI: 10.1016/j.jfoodeng.2007.03.009##Tarladgis, B.G., Watts, B.M. and Younathan, M.T., 1960. A distillation method for the quantitative determination of malonaldehyde in rancid foods. The Journal of the American Oil Chemists Society, 37: 44-48. DOI: 10.1007/BF02630824##Vásconez, M.B., Flores, S.K., Campos, C.A., Alvarado, J. and Gerschenson, N., 2009. Antimicrobial activity and physical properties of chitosan–tapioca starch based edible films and coatings. Food Research International, 42: 762-769. DOI: 10.1016/j.foodres.2009.02.026##Vladimir, P., Torchilin. and Anatily, N. Lukyaanov., 2003. Peptid and protein and drug delivery to and into tumors: challenges and solutions, therapeutic focus, pp.252-273. ##Woyewoda, A.D., Shaw, S.J., Ke, P.J. and Burns, B.G., 1986. Recommended laboratory methods for assessment of fish quality. Canadian technical report of fish and aquatic science 1448p.##Zarei, M., Ramezani, Z., Ein-Tavasoly, S. and Chadorbaf, M., 2015. Coating effects of orange and pomegranate peel extracts combined with chitosan nanoparticles on the quality of refrigerated silver carp fillets. Journal of Food Processing and Preservation. 39: 2180-2187. DOI: 10.1111/jfpp.12462##Zhang, Y., Yang, Y., Tang, K., Hu, X. and Zou, G., 2008. Physicochemical characterization and antioxidant activity of quercetin-loaded chitosan nanoparticles. Journal of Applied Polymer Science, 107: 891–897. DOI: 10.1002/app.26402 ## ##

بررسی جوامع فیتوپلانکتونی دریاچه سد مهاباد، سد مخزنی حسنلو (شور گل) و تالاب یادگارلو Study on phytoplankton community in the Mahabad, Hasanlu (Shur Gol) and Yadegarlu Lakes 1 1 شناسایی تنوع فیتوپلانکتونی یک اکوسیستم آبی اولین اولویت برای ارزیابی کیفیت، تخمین میزان آلودگی و بررسی امکان بهره برداری از آن می­باشد. در این تحقیق سه تالاب سد مهاباد، سد مخزنی حسنلو و تالاب یادگارلو از استان آذربایجان غربی به صورت فصلی طی یک سال مورد نمونه برداری و بررسی قرار گرفتند.  تعداد 94 جنس و گونه از 5 شاخه (استرپتوفیتا، کلروفیتا، اکروفیتا، مویزوا و سیانوباکتریا) و 11 رده (زیگنماتوفیسه، کلروفیسه، اوستیگماتوفیسه، گزانتوفیسه، مدیوفیسه، داینوفیسه، باسیلاریوفیسه، سیانوفیسه، اولووفیسه، کریزوفیسه و کریپتوفیسه) شناسایی شدند. بیشترین تنوع فیتوپلانکتونی در این سه تالاب متعلق به استرپتوفیتا و کلروفیتا (59%) بود که متعاقب آن دیاتومه ها (21%) و سیانوباکتریها (8%) قرار داشتند. دریاچه سد حسنلو (63 تاگزا) شباهت زیادی از نظر تنوع جمعیتهای جلبکی با سد مهاباد (51 تاگزا) دارد. تالاب فصلی یادگارلو نیز با کمترین تنوع (30 تاگزا) دارای ترکیب جمعیتی متفاوت و خاص تالاب های فصلی مناطق معتدله است. نتایج نشان داد که جلبکهای تاژکدار و سیانوباکتریها که به ترتیب به دلیل تولید سیست مقاوم و آکینات سازگار با شرایط سخت و دوره های خشکی هستند، در یادگارلو ظهور و بروز بیشتری دارند.       2 Analysis of phytoplankton community structure of an aquatic ecosystem is the first priority for evaluating water quality, estimating water pollution and studying the possibility of exploiting them. In the present study, the wetlands of Mahabad, Hasanlu and Yadegarlu in West Azarbayjan were evaluated. Sampling was performed seasonally throughout the year. The total number of 94 species from five phyla (Streptophyta, Chlorophyta, Ochrophyta, Moizoa, and Cyanophyta) and 11 classes (Bacillariophyceae, Zygnematophyceae, Chlorophyceae, Cryptophyceae, Mediophyceae, eustigmatophyceae, Xanthophyceae, Dinophyceae, Chrysophyceae, Cyanophyceae, and Ulvophyceae)  was identified. The highest levels of phytoplankton diversity in these three lagoons were found in Streptophytae and Chlorophytae (59%) following by diatoms (21%) and cyanobacteria (8%), respectively. The variations of phytoplankton communities in Hasanlu (63 taxa) and Mahabad lakes (51 taxa) were quite similar. Yadegarlu Lake showed the lowest level of phytoplankton diversity (30 taxa) with different community composition which was typical for temporal wetlands in temperate zones. In Yadegarlu Lake, flagellates and cyanobacteria showed adaptive traits to extreme conditions and periods of drought by formation of resistant cysts and akinetes, respectively. 111 120 2015/08/162017/05/152016/12/12017/05/312016/12/152017/07/162017/07/132017/01/52017/05/152017/05/92017/05/13 1396/2/23 2017/12/172018/01/72018/01/72018/01/102018/01/132018/01/132018/01/172018/01/202018/01/212018/01/242018/01/30 1396/11/10 زهرا عسل پیشه Zahra Asal pishe دانشگاه ارومیه ایران asalpisheh.z@gmail.com رامین مناف فر Ramin Manaffar دانشگاه ارومیه ایران Raminmanaffar@gmail.com Phytoplankton Wetland Yadegarlu Hasanlu Mahabad فیتوپلانکتون تالاب یادگارلو حسنلو مهاباد ## چراغپور، ج.، افشارزاده. س.، شریفی. م.، رمضان‌نژاد‌ قادی. ر. و مسعودی. م.، 1392. ارزیابی تنوع فیتوپلانکتونی تالاب گندمان، غرب ایران. گیاهشناسی ایران. 19(2): 153-161. DIO:10.22092/ijb.2013.4151##رمضان‌زاده، ح. و نژاد ستاری. ط.، 1382. بررسی جلبک‌های اپی‌فیت تالاب امیرکلایه و مقایسه جوامع جلبکی روی بسترهای مختلف. دانشگاه تهران. پایان نامه کارشناسی ارشد.##ریاحی، ح.، سلطانی، ن. و شکروی، ش.، 1373. مطالعه فلور جلبکی دریاچه ارومیه. نشریه زراعت (پژوهش و سازندگی)، صفحات 23-26.##سبک آرا، ج. و مکارمی. م.، 1382. بررسی تراکم و پراکنش پلانکتونی در دریاچه سد ماکو. مجله علمی شیلات ایران. 12(2): 29-46.##DIO: 10.22092/isfj.2003.113595 ##عسل پیشه، ز.، حیدری. ر. و مناف فر. ر.، 1391. شناسایی و بررسی ارزش غذایی دو گونه جلبک تک سلولی Scenedesmus obliquus وDesmodesmus cuneatus تولید کننده اسیدهای چرب جدا سازی شده از دریاچه سد مهاباد، آذربایجان غربی. زیست شناسی گیاهی ایران. 4(11): 61-72.##غلامی، ع.، اجتهادی، ح. و قاسم زاده، ف.، 1384. بررسی تنوع گونه ای و اکولوژیک فیتوپلانکتون‌های دریاچه بزنگان. مجله علمی شیلات ایران. 14(2): 73-90.##قربانی، س.، مناف فر، ر.، طاعی، ا. و ملک زاده، ر.، 1392. بررسی تنوع مولکولی گونه‌های جلبک Dunaliella در تعدادی از ایستگاه‌های دریاچه ارومیه. زیست شناسی گیاهی ایران. 17 :89-98.##قریب خانی، م.، اتینا. م.، رمضان پور، ز. و چوبیان، ف.، 1388. بررسی تنوع، تراکم و فراوانی فیتوپلانکتون های تالاب استیل آستارا. مجله شیلات. 3(4): 41-54.##نجات خواه معنوی. پ.، مهدوی. م. و فروزد. م.، 1389. بررسی جوامع پلانکتونی و کیفیت آب درتالاب بند علی خان. فصلنامه علوم و تکنولوژی محیط زیست.12(1): 149-162.## ##Bellinger, E.G. and Sigee, D.C., 2010. Freshwater algae: identification and use as bioindicators. Published by Wiley. 270P.##Brönmark, C. and Hansson, L.A., 2005. Translated by Hoseyni N. The biology of lakes and ponds. Second edition. 300p. ##Buzzi, F., 2002. Phytoplankton assemblages in two sub-basins of Lake Como. Journal of Limnology, 61: 117-128. DOI: https://doi.org/10.4081/jlimnol.2002.117.##Graham, L.E. and Wilcox, L.W., 2000. Algae. Upper Saddle River, New Jersey: Prentice-Hall. 640P.##Guillard, R.R.L., 1975. Culture of marine invertebrate animals. Plenum Press, New York, USA Culture of phytoplankton for feeding marine invertebrates. 338P. ##John, D.M., 2002. The freshwater algal flora of the British Isles. First edition, Cambridge University Press. 702P.##Kobanova, G.I. and Genkal, S.I., 1989. Representatives of the genus Stephanodiscus Ehr. (Bacillariophyta) in the Angara River reservoirs and their ecological features. Biol. Vnutr. Vod, 81: 29-32.##Pongswat, S., Thammathaworn, S., Peerapornpisal, Y., Thanee, N. and Somsiri, C., 2004. Diversity of phytoplankton in the Rama IX lake, a man-made lake, Pathumthani province, Thailand. Science Asia, 30: 261-267.##Prescott, G.W., 1982. Algae of the western great lakes area with an illustrated key to the genera of desmids and freshwater diatoms. Koeningstein: Otto Koeltz Science Publishers. 977P.##Rawson, D.S., 1956. Algal indicators of trophic lake types. limnology and Oceanography. 1(1): 18–25. ## DOI: 10.4319/lo.1956.1.1.0018.##Reynolds, C.S., 1984. Phytoplankton periodicity: The interactions of form, function and environmental variability. Freshwater Biology. 14(2):111-142. DOI:10.1111/j.13652427.1984. tb00027.x.##Seung, W.J., Hyoung, M.J., Young-Ok, K., Jin, H.L. and Myung-Soo, H., 2011. Effects of temperature and nutrient depletion and reintroduction on growth of Stephanodiscus hantzschii (Bacillariophyceae): implications for the blooming mechanism. Journal of Freshwater Ecology, 26(1): 115-121.## DIO: 10.1080/02705060.2011.553927.##Wehr, J.D. and Sheath, R.G., 2003. Freshwater algae of north America: ecology and classification. California Academic Press. 1050P.## ##

بررسی علائم بالینی و کالبدگشائی (پاتولوژی ظاهری)بیماری سپتی سمی خونریزی دهنده ویروسی (VHS ) در ماهیان قزل آلای رنگین کمان در سالهای 1394- 1392 در ایران Study on clinical and gross pathology manifestation of Viral Hemorrhagic Septicemia (VHS) disease in cultured rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in Iran (2013-2015) 1 1 بیماری سپتی­سمی خونریزی­دهنده ویروسی VHS(Viral Heamorhagic Septicemia ) یک بیماری ویروسی حاد بوده که باعث تلفات و مرگ و میر گسترده در بسیاری از گونه­های ماهیان از جمله قزل آلای پرورشی می شود. این بیماری دارای سه فرم کلاسیک حاد ، مزمن و عصبی بوده که علائم بالینی و کالبدگشائی متنوعی را نشان می دهند. به منظور یافتن چهره و الگوی پاتولوژی ظاهری بیماری در ایران در خلال سال های 1392 لغایت 1394 این مطالعه بر روی 2641مزرعه تکثیر ، تکثیر و پرورش و پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان صورت گرفت. در این مطالعه علائم مشاهده شده به 5 گروه ( گروه 1  با علائم عمومی سپتی سمی ، گروه 2 با علائم هموراژیک ، گروه 3 با علائم عصبی ، گروه 4 با علائم کم خونی وگروه 5 با میزان تلفات بالا) تقسیم بندی گردید. ااز تمامی مزارع درگیر بیماری بازدید و علائم بالینی و کالبدگشائی مطابق فرم های طراحی شده در سامانه پایش و مراقبت از بیماری های سازمان دامپزشکی کشور ثبت و نتایج به دست آمده در سال­های مختلف هم به صورت توصیفی و هم به صورت تحلیلی  ( تحلیل داده­های کیفی از آزمون مربع کای) مورد ارزیابی قرار گرفت. بیشترین علائم ظاهری ثبت شده در سال 92 مربوط به گروه تلفات، در سال 93 گروه علائم عمومی و در سال 94 نیز گروه علائم عمومی می باشد. در مجموع سه سال کمترین علامت بالینی مشاهده شده گروه علائم کم خونی بوده و بیشترین گروه مشاهده شده گروه علائم عمومی بود. با توجه به مطالعه صورت گرفته می­توان نتیجه گیری کرد که روند بیماری VHSدر ایران از فرم حاد با الگوی تلفات بالا به فرم مزمن تغییر یافته است. از طرفی با توجه به غالب بودن گروه علائم عمومی لازم است کلنیسین ها در هنگام برخورد با هر گونه علائم عمومی وجود بیماری VHS را در نظر داشته باشند. 2 Viral Hemorrhagic Septicemia (VHS) is an acute viral disease leads to great losses in farmed rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). The disease has three different clinical forms including acute, chronic and nervous with different clinical and necropsy signs. This research  was conducted in Iran from 2013 to 2015 in 2641 rainbow trout farms (Hatcheries and fish farms) in order to describe the gross pathology pattern of this disease. The observed signs in the present study were categorized into the five different groups including group 1 with general signs of septicemia, group 2 with hemorrhagic signs, group 3 with nervous signs, group 4 with anemia signs and group 5 with high mortality. All infected farms were inspected and clinical and necropsy signs and mortality rate were recorded based on the designated forms and registered in Geographical Information System (GIS) of Iran veterinary organization (the electronic system for surveillance and monitoring of animals). Results of each year were evaluated descriptively and analytically using chi square test. The dominant group based on the registered signes during 3 years of survey was mortality in 2013, general signs of septicemia in 2014, and general signs of septicemia in 2015. The observed frequency of signs were highest for the general septicemia group and lowest for the anemia group during three years of study. According to the results of the present study, it seems that VHS gross pathology pattern in Iran has been changed from acute manifestation to the chronic form. As the general signs common to a number of diseases, it is so important for clinicians to consider VHS in their differential diagnosis lists.   121 129 2015/08/162017/05/152016/12/12017/05/312016/12/152017/07/162017/07/132017/01/52017/05/152017/05/92017/05/132017/02/10 1395/11/22 2017/12/172018/01/72018/01/72018/01/102018/01/132018/01/132018/01/172018/01/202018/01/212018/01/242018/01/302018/02/3 1396/11/14 محمد جواد قراگزلو M.J Gharaguozlo گروه پاتولوژی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران ایران mjavad@ut.ac.ir امرا... قاجاری A Ghajari گروه پاتولوژی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران ایران amrellahghajari1352@gmail.com کاظم عبدی K Abdi سازمان دامپزشکی ایران kazemabdy@yahoo.com پروانه صیفوری P Seifouri سازمان دامپزشکی ایران partaken_seifori@yahoo.com محمد حسین فلاح مهرابادی M.H Fallah Mehrabadi موسسه رازی ایران mhf2480@yahoo.com نسترن شهبازیان N Shahbazian سازمان دامپزشکی ایران dr.nshahbazian@gmail.com Viral Hemorrhagic Septicemia Rainbow trout Clinical and gross pathology manifestation سپتی‌سمی خونریزی‌دهنده ویروسی ماهیان قزل‌آلا علایم بالینی و کالبدگشایی ##1- Ahmadivand, S., Soltani, M., Mardani, K., Shokrpoor, S., Rahmati-Holasoo, H., Mokhtari, A., Hasanzadeh, R., 2016. Isolation and identification of viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) from farmed rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in Iran. Acta tropica 156, 30-36.##2- Al-Hussinee, L., 2011. Pathogenesis of Viral Hemorrhagic Septicemia Virus (VHSV Vb) in Great Lakes Fish . A Thesis presented to The University of Guelph.##3- Bowden, T.J., 2003. A study of the susceptibility of Atlantic halibut, Hippoglossus hippoglossus (L.), to viral haemorrhagic septicaemia virus isolated from turbot, Scophthalmus maximus (L.). J Fish Dis 26, 207-212.##4- CFSPH , C.f.F.S.a.P.H., 2003. Aquatic Animal Diseases,Viral Hemorrhagic Septicemia. available at: http://www.cfsph.iastate.edu/DiseaseInfo/disease.php?name=viral-hemorrhagic-septicemia&lang=en.##5- Einer-Jensen, K., Peter, A., Lorenzen, N., 2006. Genetic stability of the VHSV consensus sequence of G-gene in diagnostic samples from an acute outbreak. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists, 26, 62-67.##6- Fallah Mehrabadi, M.H., Bahonar, A.R., Vasfi Marandi, M., Sadrzadeh, A., Tehrani, F., Salman, M.D., 2016. Sero-survey of Avian Influenza in backyard poultry and wild bird species in Iran—2014. Preventive Veterinary Medicine 128, 1-5.##7- Ghorani, M., Adel, M., Dadar, M., Langeroudi, A.G., Kamyabi, R., Vakharia, V.N., Einer-Jensen, K., 2016. Phylogenetic analysis of the glycoprotein gene of viral hemorrhagic septicemia virus from Iranian trout farms points towards a common European origin. Veterinary microbiology 186, 97-101.##8- Groocock, G.H., Getchell, R.G., Wooster, G.A., Britt, K.L., Batts, W.N., Winton, J.R., Casey, R.N., Casey, J.W., Bowser, P.R., 2007. Detection of viral hemorrhagic septicemia in round gobies in New York State (USA) waters of Lake Ontario and the St. Lawrence River. Diseases of aquatic organisms 76, 187-192.##9- King, J.A., Snow, M., Smail, D.A., Raynard, R.S., 2001. Distribution of viral haemorrhagic septicaemia virus in wild fish species of the North Sea, north east Atlantic Ocean and Irish Sea. Diseases of aquatic organisms 47, 81-86.##10- Lovy, J., Lewis, N.L., Hershberger, P.K., Bennett, W., Meyers, T.R., Garver, K.A., 2012. Viral tropism and pathology associated with viral hemorrhagic septicemia in larval and juvenile Pacific herring. Veterinary microbiology 161, 66-76.##11- Lumsden, J.S., Morrison, B., Yason, C., Russell, S., Young, K., Yazdanpanah, A., Huber, P., Al-Hussinee, L., Stone, D., Way, K., 2007. Mortality event in freshwater drum Aplodinotus grunniens from Lake Ontario, Canada, associated with viral haemorrhagic septicemia virus, type IV. Diseases of aquatic organisms 76, 99-111.##12- Meyers, T.R., Short, S., Lipson, K., 1999. Isolation of the North American strain of viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) associated with epizootic mortality in two new host species of Alaskan marine fish. Diseases of aquatic organisms 38, 81-86.##13- Mitro, M.G., White, A.L., 2008. Viral Hemorrhagic Septicemia and Freshwater Fisheries: the State of the Science. . Technical Bulletin .Department of Natural Resources • Madison, Wisconsin 196.##14- Noga, E.J., 2011. Viral hemorrhagic septicemia In: Fish Diseases Diagnostic and Treatment. . Blackwell Publishing, Ames, Iowa, 213-215.##15- Oidtmann, B.C., Peeler, E.J., Thrush, M.A., Cameron, A.R., Reese, R.A., Pearce, F.M., Dunn, P., Lyngstad, T.M., Tavornpanich, S., Brun, E., Stärk, K.D.C., 2014. Expert consultation on risk factors for introduction of infectious pathogens into fish farms. Preventive Veterinary Medicine 115, 238-254.##16- OIE, 2016. Manual of Diagnostic Tests for Aquatic Animals, Chapter 2.3.10.Viral haemorrhagic septicaemia.##17- Olson, W.J., 2013. Viral Hemorrhagic Septicemia Virus (Vhsv) Great Lakes Strain Ivb: viral detection ,mechanisms of infection ,and host-virus interactions in the Yellow Perch(Perca Flavescens).##18- . University of Wisconsin – Milwaukee.##19- Purcell, M.K., Laing, K.J., Winton, J.R., 2012. Immunity to Fish Rhabdoviruses. Viruses 4, 140-166.##20- Rose, A.G., 2008. Atlas of Gross Pathology: With Histologic Correlation Cambridge University Press.##21- Sano, M., Ito, T., Matsuyama, T., Nakayasu, C., Kurita, J., 2009. Effect of water temperature shifting on mortality of Japanese flounder Paralichthys olivaceus experimentally infected with viral hemorrhagic septicemia virus. Aquaculture 286, 254-258.##22- Wolf, K., 1998. Viral hemorrhagic septicemia. In: Fish Viruses and Fish Viral Diseases. ##23- . Comstock Pub Assoc Cornell University Press, Ithaca, New York.##24- Yoon, H., Yoon, S.S., Wee, S.H., Kim, Y.J., Kim, B., 2012. Clinical manifestations of foot-and-mouth disease during the 2010/2011 epidemic in the Republic of Korea. Transboundary and emerging diseases 59, 517-525.## ##

تاثیر باکتری Lactobacillus بر شاخص های رشد، بقاء و مقاومت ماهی قزل آلای رنگین کمان (Onchorhynchus mykiss) در برابر باکتری Streptococcus iniae Effects of Lactobacillus on growth parameters, survival rate and resistance of rainbow trout (Onchorhynchus mykiss) to Streptococcus iniae 1 1 در این مطالعه تاثیر باکتری­ Lactobacillus جدا شده از دستگاه گوارش ماهی قزل آلا بر برخی از فراسنجه های رشد و همچنین مقاومت در برابر باکتری Streptococcus iniae مورد ارزیابی قرار گرفت.­ باکتری مذکور در قالب 3 تیمار (log 7, 8, 9) به جیره غذایی ماهی اضافه شد و تاثیر آن­ها به همراه تیمار شاهد بر شاخص­های رشد و بقاء در روزهای 30 و 60 مورد بررسی قرار گرفت. در مرحله پایانی، مقاومت ماهیان تیمار شده در برابر استرپتوکوکوزیس مورد ارزیابی قرار گرفت. نتایج نشان داد که Lactobacillus قادر به تقویت فراسنجه های رشد (وزن، ضریب تبدیل غذایی، ضریب چاقی، ضریب رشد ویژه و ضریب بازده پروتئینی) و بقاء بوده که در این بین log 8  باکتری دارای اختلاف معنی دار با سایر تیمارها و گروه شاهد بود. نتایج رویارویی ماهیان مورد بررسی در برابر استرپتوکوکوزیس ناشی از گونه Streptococcus iniae نشان داد که بیشترین بازماندگی در تیمار دارای log 8 66/96 درصد بود و تیمار شاهد نیز دارای کمترین بازماندگی (38/25 درصد) بود. نتیجه گیری نهایی موید آن است که Lactobacillus جدا شده از ماهی قزل آلا دارای خواص پروبیوتیکی بوده و قادر به بروز تغییرات مثبت در شاخص­های رشد است. همچنین، مقاومت ماهی قزل آلا را در برابر استرپتوکوکوزیس افزایش می دهد.   2 In this study, the effects of Lactobacillus which was isolated from the gut of rainbow trout were evaluated on growth parameters, survival rate and resistance of rainbow trout to Streptococcus iniae. This bacterium was added to the fish diet in 3 treatments (log 7, 8 and 9) and a control treatment was considered. The effects of various treatments on growth parameters and survival were evaluated in day 30 and day 60. At the final stage, resistance of treated fish to streptococcosis was evaluated. The results showed that Lactobacillus was able to improve the growth parameters (weight, feed conversion ratio, protein efficiency ratio, coefficient of obesity, specific growth rate and protein yield coefficient) and survival rate of fish in which the log 8 LAB showed a significant difference compared to the other treatments and the control treatment. The challenge of rainbow trout with Streptococcus iniae indicated that the highest survival rate was observed in the treatment with the log 8 LAB (96.66%), whereas the lowest survival rate was observed in the control treatment (25.38%). These results indicated that Lactobacillus which was isolated from the gut of rainbow trout showed probiotic properties and improved growth parameters of fish. Moreover, it increased the resistance of rainbow trout to streptococcosis.   131 138 2015/08/162017/05/152016/12/12017/05/312016/12/152017/07/162017/07/132017/01/52017/05/152017/05/92017/05/132017/02/102015/11/10 1394/8/19 2017/12/172018/01/72018/01/72018/01/102018/01/132018/01/132018/01/172018/01/202018/01/212018/01/242018/01/302018/02/32018/02/7 1396/11/18 رضا صفری Reza safari پژوهشکده اکولوژی دریای خزر ایران safari1351@gmail.com زهرا یعقوب زاده Zahra yaghoubzadeh پژوهشکده اکولوژی دریای خزر ایران za_yaghoub@yahoo.com Lactobacillus Rainbow trout Growth parameters Streptococcus iniae Lactobacillus قزل آلا شاخص‌های رشد استرپتوکوکوس اینیه ##پورغلام،ر. شریف روحانی، م. ساسان،ح. لالویی، ف. صفری، ر. سعیدی، ع.ا. و سلطانی،م.، 1395. تولید واکسن(زنده) نوترکیب علیه بیماری استرپتوکوکوزیس برای ایمن کردن قزل آلای رنگین کمان(فاز یک). گزارش نهایی. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور74.##توکمه چی،ا. ومحسنی،م.، 1390. مطالعه تاثیر پروبیوتیک های Saccharomyces cerevisiae و Lactobacillus casei بر رشد، بقا، پاسخ‌های ایمنی و مقاومت در برابر برخی از استرس های محیطی و مواجهه باکتریایی در ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) . پایان نامه، دانشگاه ارومیه.##قلجایی فرد،ا. خارا،ح. و شناور ماسوله، ع،. 1395. تاثیر باکتری (Lactobacillus plantarum) KC426951 جداسازی شده از روده قزل آلای رنگین کمان استان گیلان بر شاخص های خونی و ایمنی بچه ماهی قزل آلای رنگین کمان. فیزیولوژی و تکوین جانوری .5 (2): 124-111.##کامکار، م.، 1390. بررسی تاثیر باسیلوس سوبتیلیس به عنوان پروبیوتیک در کنترل استرپتوکوکوزیس در ماهی قزل آلای رنگین کمان. پایان نامه، دانشگاه تنکابن.##نظری،ک. شمسایی مهرجان،م .ایلا،ن. شریف پور،ع. و کمالی،ا،.1396 . اثرات سلنیوم آلی و معدنی بر عوامل رشد، پارامترهای خونی وایمنی شناسی بچه ماهیان رنگین کمان(Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران، 26(3): ۱۳۸-۱۲۹. ## یاری،ا.، نعمتی،م .و پوراحمد،ف.،. 1396. بررسی فنوتیپی و ژنوتیپی مقاومت به آنتی بیوتیک های وسیع الطیف در کوکسی های گرم مثبت جدا شده از ماهیان قزل‌آلای رنگین کمان در استان ایلام. مجله علمی شیلات ایران، 26(3): ۱1-۱. ##Akrami, R., Iri, Y., Rostami, H.K. and Mansour, M.R., 2013. Effect of dietary supplementation of fructooligosaccharide (FOS) on growth performance, survival, lactobacillus bacterial population and hemato-immunological parameters of stellate sturgeon (Acipenser stellatus) juvenile. Fish & shellfish immunology, 35(4):1235-1239.##Al-Dohail, M., Ismael, N.E.M., 2011. Evaluation of commertial live baker,s yeast, Saccharomyces cerevisiae as a growth and immunity promoter for Fry Nile tilapia Oreochromis niloticus challenged in situ with Aeromonas htdrophila. Aquaculture, 280: 185-189.##Austin, B., Austin, D.A., 1987. Bacterial Fish Pathogens: Desease in Farmed and Wild Fish .Ellis Horwood, Chichester. UK., p: 364.##Bagheri, T., Hedayati, S.A., Yavari, V., Alizade, M. and Farzanfar, A., 2008. Growth, survival and gut microbial load of rainbow trout (Onchorhynchus mykiss) fry given diet supplemented with probiotic during the two months of first feeding. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 8(1):43-48.##Balcázar, J.L., Vendrell, D., De Blas, I., Ruiz-Zarzuela, I., Gironés, O. and Múzquiz, J.L., 2007. In vitro competitive adhesion and production of antagonistic compounds by lactic acid bacteria against fish pathogens. Veterinary microbiology, 122(3):373-380.##DOI: 10.5402/2012/916845.##Gatesoupe, F.J., 1999. The use of probiotics in aquaculture. Aquaculture, 180:147-165.## Gatesoupe, F.J., 2008. Updating the importance of lactic acid bacteria in fish farming: natural occurrence and probiotic treatments. Journal of molecular microbiology and biotechnology,14(1-3):107-114.## Gatlin III, D.M., 2003. Nutrition and fish health. Fish nutrition, 3:671-702. ##Gomez-Gil, B., Roque, A. and Turnbull, J.F., 2000. The use and selection of probiotic bacteria for use in the culture of larval aquatic organisms. Aquaculture,191(1):259-270.## Irianto, A. and Austin, B., 2002. Probiotics in aquaculture. Journal of fish diseases, 25(11): 633-642. Doi:10.1046/j.1365-2761.2002.00422.x/abstract##Lara-Flores, M. and Olvera-Novoa, M.A., 2013. The use of lactic acid bacteria isolated from intestinal tract of Nile tilapia (Oreochromis niloticus), as growth promoters in fish fed low protein diets. Latin American Journal of Aquatic Research, 41(3), pp: 490-497. DOI: 103856/vol41-issue3-fulltext-12##Martínez Cruz, P., Ibáñez, A.L., Monroy Hermosillo, O.A. and Ramírez Saad, H.C., 2012. Use of probiotics in aquaculture. International Scholarly Research Network. ISRN microbiology. Article ID 916845, 13 pages. ##Mesalhy Aly, S. Mohamed, M.F, and John, G., 2008. Effect of probiotics on the survival, growth and challenge infection in Tilapia nilotica ( Oreochromis niloticus), Aquaculture Research, 39: 647-656. Doi:10.1111/j.1365-2109.2008.01932.x/abstract##Nikoskelainen. S., Ouwehand, A., Bylund, G., Salminen, S., Lilius, E.M., 2003. Immune enhancement in rainbow trout (Oncoehinchus mykiss) by potential probioticbacteria(Lactobacillus rhamrosus) fish and shellfish immunology, 15, pp: 443-452##Panigrahi, A., Kiron, V., Puahqkaew, J., Kabayashi, T., Satoh, S., Sugita, H., 2005. The viability of probiotic bacteria as a factor influencing the immune response in rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Aquaculture. 243, pp: 241-254##Rodas, B.A., Angulo, J.O., Cruz, J., Garcia, H.S., 2002. Proparatian of probiotic buttermilk with Lactobacillus reuteri. Milchwissenschoff Milk Sclence International. 57,pp: 26-28##Son, F.J., Fitzyeraid, G.F., Stanton, C., Ross, R.P., 2009. The evaluation of a mupiricin,based selective Medium for the enumeration for bifidobacteri from probiotic animal food. pp: 22-890.##Vadstein, O., 1997. The use of immunostimulation in marine larvicular: possibilities and challenges. Aquaculture. 155,pp: 401-417 ##Vendrell,D,Balcazar,J.,Blas,I.,Ruiz-Zarzuela.,J., 2008. Protection of rainbow trut (Oncorhynchus mykiss) from lactococosis by probiotic bacterial. FISH and SHELLFISH Immunology,31, pp:337-345.##Xu., Z., Tian, Z., 2009. Production of the antibacterial substance by Bacillus sp.Strain NM12, an intestinal bacterium of Japanese coastal fish.Aquaculture. 168: 269-280##Zorriehzahra, M.J., Delshad, S.T., Adel, M., Tiwari, R., Karthik, K., Dhama, K. and Lazado, C.C., 2016. Probiotics as beneficial microbes in aquaculture: an update on their multiple modes of action: a review. Veterinary Quarterly, 36(4): 228-241.## ##

ارزیابی ‌کیفیت آب رودخانه تجن با استفاده از شاخص‌های کیفی و زیستی Assessment of Tajan River water quality with the use of biological and quality indicators 1 1 افزایش جمعیت، توسعه صنایع، تغییر اقلیم و آلاینده­ های محیط زیستی باعث کاهش کیفیت منابع آب در دسترس گردیده است. امروزه، محدودیت منابع آب شیرین و حفظ کیفیت آنها بزرگترین چالش فرا روی مدیریت منابع آب است. به منظور بررسی کیفیت آب رودخانه تجن با استفاده از شاخص‌های ‌NSFWQI، BMWP، ASPT و هلسینهوف، تعداد 4 ‌ایستگاه نمونه برداری در امتداد مسیر رودخانه انتخاب و بصورت ماهانه با تناوب 3 تکرار در هر ایستگاه از اردیبهشت 1390 تا فروردین 1391 نمونه‌­برداری‌‌ در آنها انجام شد و شاخص­های فوق براساس داده­های حاصل محاسبه گردید. شاخص ‌ NSFWQIکیفیت آب رودخانه را در طبقه فقیر، شاخص BMWP کیفیت آب رودخانه را در دو طبقه متوسط (ایستگاه­های 2، 1 و 3)‌ و فقیر (ایستگاه 4)، شاخصASPT  کیفیت آب رودخانه را در دو طبقه مشکوک به آلودگی و آلودگی متوسط و شاخص هیلسنهوف کیفیت‌ آب رودخانه را در دو طبقه کیفی نسبتا ضعیف و ضعیف قرار داد. بر اساس نتایج حاصل از این مطالعه، کیفیت آب رودخانه تجن در طبقه کیفی متوسط تا خیلی‌ بد قرار گرفت.   2 Population growth, industrial development, climate changes and environmental pollutants reduce the quality of available water resources. Nowadays, limited resources of freshwater and maintaining their qualities are the biggest challenges for the management of water resources. To investigate the water quality of Tajan River, 4 sampling stations were selected along the river. Sampling was performed montly from May 2011 to April 2012 and replicated 3 times for each station. The NSFWQI, BMWP, ASPT and HBI indices were calculated based on the obtained data. The NSFWQI indicated that the water quality of Tajan River was in the “Poor” category. The BMWP index showed that the water quality was in the “Medium” category (for station 1, 2 and 3) and in the “Poor” category (for station 4). The water quality was placed in the “Suspected of pollution” and “Moderately polluted” categories by the ASPT index. HBI index pointed out that the water quality was in the “Relatively weak” and “Weak” categories. According to the results of this study, the water quality of Tajan River ranged from medium to very bad.   139 151 2015/08/162017/05/152016/12/12017/05/312016/12/152017/07/162017/07/132017/01/52017/05/152017/05/92017/05/132017/02/102015/11/102017/04/21 1396/2/1 2017/12/172018/01/72018/01/72018/01/102018/01/132018/01/132018/01/172018/01/202018/01/212018/01/242018/01/302018/02/32018/02/72018/02/13 1396/11/24 عیسی ابراهیمی E Ebrahimi گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان 83111-84156 ، ایران ایران e_ebrahimi@cc.iut.ac.ir پژمان فتحی P Fathi گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان 83111-84156 ، ایران ایران pjpixi@yahoo.com فاطمه قدرتی F Ghodrati گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان 83111-84156 ، ایران ایران Gooodrati.f@yahoo.com مهدی نادری جلودار M Naderi پژوهشکده اکولوژی آبزیان دریای خزر، بلوار خزر، ساری، ایران، ایران Naderi_j@yahoo.com احمدرضا پیرعلی زفره ئی A Pirali گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان 83111-84156 ، ایران ایران ar.pirali@na.iut.ac.ir Macroinvertebrate Tajan River Water quality BMWP ASPT بزرگ بی‌مهرگان کفزی رودخانه تجن کیفیت آب BMWP ASPT ##ابراهیمی، ع.، صوفیانی ‌محبوبی، ن. و کیوانی، ی.، 1383. گزارش داخلی طرح بررسی تنوع ماکروبنتوزهای رودخانه زاینده‌رود. دانشکده منابع‌ طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان. 76 صفحه.##افیونی، م. و عرفان‌منش، م.، 1391. آلودگی محیط زیست آب، خاک و هوا. انتشارات ارکان دانش. 290 صفحه.##احمدی، م.ر. و نفیسی، م.، 1380. شناسایی موجودات بی‌مهره آب‌های جاری. انتشارات خبیر. 234 صفحه.##جرجانی، س.، قلیچی، ا.، اکرمی، ر. و خیبرآبادی، و.، 1387. ارزیابی شاخص زیستی آلودگی و فون کفزیان نهر مادرسوپارک ملی گلستان. مجله شیلات. 2(1): 52-41.##حسین پور، ن.، 1374. بررسی منابع ماکروزئوبنتیک رودخانه‌های سیاهدرویشان و پسیخان. مجله علمی شیلات ایران، مؤسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران، 4(3): 20-8##خاتمی، س.ه.،1383. بیمهرگان کفزی آب‌های شیرین (کلید شناسایی و حساسیت به آلودگی). انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. 215 صفحه.##خلجی، م.، ابراهیمی. ع.، هاشمی نژاد، ه.، متقی، ا. و اسداله، س.، 1395. ارزیابی کیفیت آب دریاچه سد زاینده رود با استفاده از شاخص WQI. مجله علمی شیلات ایران، 25(5): 64-51.##رهبری، ک.، نبوی، م. و موبد، پ.، 1385. بررسی روشهای مختلف ارزیابی بیولوژیکی و تنو ع زیستی در کیفیت منابع آبی و محاسبه شاخص‌های تنوع بستر رودخانه کارون از بازه ملاثانی تا دارخوین. هفتمین سمینار بین المللی مهندسی رودخانه، دانشگاه شهید چمران، اهواز، 12 صفحه.##رجائی، ف.، اسماعیلی ساری، ع.، سلمان ماهینی، ع.، دلاور، م. و مساح بوانی، ع.، 1395. مدلسازی آلودگی نیترات از منابع غیر نقطه‌ای و الویت بندی زیرحوضه‌های بحرانی برای مدیریت محیط زیستی حوضه آبخیز تجن. مجله اکوهیدرولوژی، 3(3): 464-455. ##سهرابیان، ب.، جاوید، ا.ح.، عوضپور، م. و صدوقی، ز.، 1388. بررسی کیفیت پساب استخرهای پرورشی ماهی منطقه کلم و تأثیر آن بر آب پذیرنده با استفاده از شاخص NSF _ دوازدهمین همایش ملی بهداشت محیط ایران، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی، دانشکده بهداشت،10 صفحه.##شریفی نیا، م.، ایمانپور نمین، ج. و بزرگی ماکرانی، ا.، 1391. ارزیابی بوم شناختی رودخانه تجن با استفاده از گروه‌های تغذیه‌ای بزرگ بی‌مهرگان کفزی و شاخص‌های زیستی. مجله اکولوژی کاربردی دانشگاه صنعتی اصفهان، 1(1): 95-80. ##قانع ساسان سرایی، ا.، 1382. شناسایی جمعیت بزرگ بی‌مهرگان کفزی در رودخانه چافرود(استان گیلان) براساس برخی فاکتورهای کیفی آب. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه تربیت مدرس.##کمالی، م. و اسماعیلی ساری، ع.، 1388. ارزیابی زیستی رودخانه لاسم (شهرستان آمل-استان مازندران) با استفاده از ساختار جمعیت بزرگ بی-مهرگان بنتیک. مجله علوم زیستی واحد لاهیجان، 3(1): 56-40##کریمیان، ع.، جوانشیر، آ. و قربانی، ر.، 1388. تعیین شاخص‌های زیستی کیفیت آب رودخانه قشلاق سنندج، ایران. مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی، 16(2): 32-19##محبوبی صوفیانی، ن. و نادری، غ.، 1379. کلید شناسایی بی مهرگان نهرها و رودخانه ها. جهاد دانشگاهی دانشگاه صنعتی اصفهان. 131 صفحه.##مهردادی، ن.، صباغی، ع. و رکنی، م.ع.، 1382. بررسی کیفی آب رودخانه تجن و تعیین اثرات توسعه صنعتی، کشاورزی و شهری بر آن. مجله آب و فاضلاب، 11(4): 31-16##نادری جلودار، م.، عبدلی، ا.، میرزاخانی، م.ک. و شریفی جلودار، ر.، 1390. پاسخ بزرگ بی‌مهرگان کفزی رودخانه هراز به پساب مزارع پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان، نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران‌، 6(2): 176-163.##نعمتی، م.، 1386. پهنه بندی کیفیت آب و تنوع درشت بی‌مهرگان کفزی رودخانه زاینده رود. پایان نامه کارشناسی، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، 125 صفحه.##APHA, 1992. Standard methods for the examination of water and waste water, 18thEdition, American Public Health Association, Washington, D.C.##Armitage, P.D., Moss, D., Wright, J.F. and Furse, M., 1983. The performance of a new biological water quality score system based on macroinvertebrates over a wide range of unpolluted running-water sites. Water Research, 17: 333-347.##Azrina, M.Z., Yap, C.K., Rahim Ismail, A., Ismail, A. and Tan, S.G., 2005. Anthropogenic impacts on the distribution and biodiversity of benthic macroinvertebrates and water quality of the Langat River. Peninsular Malaysia. Ecotoxicology and Environmental Safety, 64: 337-347. ## DOI:10.1016/j.ecoenv.2005.04.003##Camen, Z., Carmen, S., Antonino, S. and Javier, A., 1995. Are biological indices BMWP and ASPT and their significance regarding water quality seasonally dependent? Facrors explaining their variations, 29: 285-290. DOI: 10.1016/0043-1354(94)E0125##Czerniawska-Kusza, I., 2005. Comparing modified biological monitoring working party score system and several biological indices based on macroivertebrates for water-quality assessment. Limnologica, 35: 169-176. ## DOI: 10.1016/j.limno.2005.05.003##Elliott, J.M., Humpesch, U.H. and Macan, T.T., 1988. Larvae of the British ephemeroptera: a key with ecological notes, freshwater biological association scientific publication. 275P.##Hawkes, H.A., 1997. Technical note: origin and development of the biological monitoring working party score system. Water Research, 32: 964-968##Huang, Y.Y., Teng, D.X. and Zhao, Z.X., 1982. Monitoring Jiyunhe estuary pollution by use of macroinvertebrate community and diversity index. Sinozoologia, 2: 133-146. ## DOI: 10.1007/978-94009-3091-9##Hilsenhoff, W.L., 1988. Rapid field assessment of organic pollution with a family level biotic index. Society, 7: 65-68. DOI: 10.2307/1467832##Jessup, B.K., Markowitz, A. and Stribling, J.B., 1999. Family-level key to the stream invertebrates of maryland and surrounding ## arias, Maryland Department of Natural Resource. 312P.##Joel, M., Galloway, A. and James, C., 2003. Water quality and biological characteristic of the middle fork of the saline river. Arkansas. Department of environmental quality Arkansas. 198P.##Kotani, T., Hagiwara, A., Snell, T.W. and Serra, M., 2005. Euryhaline Brachionus strains (Rotifera) from tropical habitats: morphology and allozyme patterns. Hydrobiologia, 546: 161–167.## DOI: 10.1007/S10750-005-4113-6.##Landwehr, J.M. and Deininger, R.A., 1976. A comparison of several water quality indexes. Journal of Water Pollution Control Federation, 48: 947-954.##Pescador, M.L., Rasmussen, A.K. and Harris, S.C., 2004. Identification manual for the caddisfly larvae of Florida, department of enviromental protection, entomology, center for water quality Florida A&M Univerisity Tallahassee, Florida. 32307-4100.##Ravera, O., 2001. A comparison between diversity, similarity and biotic indices applied to the macroinvertebrate community of a small stream of the Ravella river (Como Province, Northern Italy). Aquatic Ecology, 35: 97-107.##Sanchez, E., Colmenarejo, M., Vicente, J., Rubio, A., Garcia, M., Travieso, L. and Borja, R., 2006. Use of the water quality index and dissolved oxygen deficit as simple indicators of watersheds, pollution. Ecological Indicators, 7: 315-328. ## DOI: 10.1016/j.ecolind.2006.02.005##Seather, O.A., 1962. Larval overwintering in endochironomus fabricius. Hydrobiologia, 20: 377-381##Silva, A.M., Novelli, E.L.B., Fascineli, M.L. and Almeida, J.A., 1999. Impact of an environmentally realistic intake of water contamintants and superoxide formation on tissues of rats, 105: 243-249. ## DOI: 10.1016/S0269-7491(98)00213-9##Simeonov, V., Einax, J.W., Stanimirova, I. and Kraft, J., 2002. Environ metric modeling and interpretation of river water monitoring data. Analytical and Bioanalytical Chemistry, 374: 898-905. DOI: 10.1007/S00216-002-1559-5##Wally, W.J. and Hawkes, H.A., 1997. A Computer-based development of the biological monitoring working party score system incorporating abundance rating site type and indicatore value. Water Research, 15: 201-210. DOI: 0043-1354/97 S17.00 + 0.00##Wang, L., Seelbach, P.W. and Hughes, R.M., 2006. Introduction to landscape influencess on stream habitats and biological assemblages. American Fisheries Society Symposium, 48, 1-23.##Zar, J.H., 1999. Biostatistical analysis, prentice Hal, Upper Saddle River, NJ. 662P.## ##

تعیین کیفیت سلامت زیستی رودخانه بهمن شیر با استفاده از شاخص های نایگارد-پالمر و ساپروبیک Determining the Bahmanshir River health and biodiversity using Nygaard-Palmer and Saprobic indices 1 1 این تحقیق به منظور ارزیابی سلامت زیستی رودخانه بهمن شیر با استفاده از شاخص نایگارد-پالمر انجام گرفت. نمونه برداری از فیتوپلانکتون ها بوسیله تور پلانکتون گیری 30 میکرون و از 6 ایستگاه در نقاط مختلف رودخانه طی یک سال به صورت ماهانه (شهریور 1392 تا مرداد 1393) انجام شد. در این بررسی از 109 گونه ریز جلبکی، 87 گونه شناسایی شده متعلق به شاخه  باسیلاریوفیتا بود. دیاتومه ها، بیش از 90% نمونه ها را در کل سال به استثنا تیر و مرداد به خود اختصاص دادند. شاخه سیانوفیتا در تیر ماه %19  و در مرداد ماه 37% کل نمونه ها را به خود اختصاص داد. در میان گونه های باسیلاریوفیتا، Coscinodiscus sp. و سپس Coscinodiscus oculus در تمامی ماه ها و عمدتاً در ایستگاه های دریایی مصب بهمن شیر (ایستگاه 5 و 6) غالب بودند. از شاخه سیانوفیت ها، Oscillatoria sp. در ایستگاه های 1 و 2 (ایستگاه های آب شیرین) در تیر و مرداد 1393 دارای فراوانی نسبتاً زیادی بودند. حضور جنس های جلبکی مقاوم به آلودگی همانند Oscillatoria، Navicula، Scenedesmus، Nitzschia، Fragilaria، Pediastrum، Cymbella، Synedra، Gomphonema، Cyclotella، Pinnularia و Spirogyra در ایستگاه های مختلف رودخانه بهمن شیر نشان دهنده آلودگی آب رودخانه به مقادیر بسیار زیاد مواد آلی است. ارزیابی شاخص ساپروبیک نیز مشخص نمود که تمامی ایستگاهها به استثناء ایستگاه 6 (ایستگاه مصبی دریایی) دارای وضعیت آلفا مزو ساپروبیک بودند که نتایج مشابهی نیز توسط شاخص جلبک نایگارد-پالمر حاصل گردید. در نتیجه، وجود فیتوپلانکتون های  مقاوم به آلودگی های آلی در رودخانه می تواند علامت خطری برای کاهش کیفیت آب رودخانه باشد.   2 This research was conducted to assess the Bahmanshir river health and biodiversity using Nygard-Palmer index. Phytoplankton sampling was performed monthly by the use of a 30-micrometer mesh size plankton net at 6 different stations along the river since September 2013 to August 2014. A total of 109 species of microalgae (phytoplankton) were identified in which Bacillariophyta was the dominant phylum with 87 species. More than 90% of all samples were consisted of diatoms during the whole year excluding July and August. The phylum Cyanophyta was formed 19 and 37% of all samples in July and August, respectively. Among the species of Bacillariophyta, Coscinodiscus sp. and Coscinodiscus oculus were dominant in all months especially at the stations in marine environment of the river estury (station 5 and 6). In the phylum Cyanophyta, Oscillatoria sp. was the dominant species at station 1 and 2 (freshwater condition) in July and August 2014. The presence of pollution-tolerant algae such as Oscillatoria, Navicula, Scenedesmus, Nitzschia, Fragilaria, Pediastrum, Cymbella, Synedra, Gomphonema, Cyclotella, Pinnularia and Spirogyra at various stations of the Bahmanshir River indicated organic pollution of the river with large quantities of organic compounds. Evaluating the saprobic indices showed that all  stations excluding station 6 were in the alpha mesosaprobic class. Similar results were obtained from the Nygard-Palmer indices. The presence of pollution-tolerant phytoplanctons could be a warning sign of declining water quality in the river. 153 166 2015/08/162017/05/152016/12/12017/05/312016/12/152017/07/162017/07/132017/01/52017/05/152017/05/92017/05/132017/02/102015/11/102017/04/212016/08/28 1395/6/7 2017/12/172018/01/72018/01/72018/01/102018/01/132018/01/132018/01/172018/01/202018/01/212018/01/242018/01/302018/02/32018/02/72018/02/132018/02/24 1396/12/5 نسرین سخایی N Sakhaei دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر ایران nsakhaee@yahoo.com بابک دوست شناس B Doostshenas دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر ایران babkdoust@yahoo.com پریوش موبد P Mobed سازمان آب و برق خوزستان ایران parivashmoobed@yahoo.com Algae Nygaard-Palmer index Saprobic index Biological indicator جلبک شاخص نایگارد-پالمر شاخص ساپروبیک نشانگر زیستی ##خلفه نیل ساز، م. و اسماعیلی، ف.، 1388. تاثیر شوری بر پراکنش فیتوپلانکتونهای رودخانه جزر و مدی بهمنشیر. مجله علمی شیلات ایران، 48-56 : 18 (3). ##سواری، ا.، 1361. بررسی پلانکتون های منطقه بوشهر، کنگان خلیج فارس. سازمان تکثیر و توسعه آبزیان وزارت کشاورزی. 102 صفحه.##سخایی، ن. و دوست شناس، ب.، 1390. طبقه بندی کیفیت آب تالاب حله با استفاده از نظام شاخص کیفیت آبBascarón Adapted Water Quality Index (WQIBA). فصلنامه علمی پژوهشی تالاب - دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز، 45-51 :8. ##فعال، ز.، 1391. بررسی پراکنش فصلی فیتوپلانکتونها در زمان جزر و مد در رودخانه بهمنشیر . مجله علمی شیلات ایران. یافته علمی کوتاه، 164-159 :(8)21.##موسوی، س.ح.، اشتری لرکی، ا. و آیتی زاده، ا.، 1385. بررسی مکانیزم فرسایش و انتقال رسوب رودخانه بهمنشیر. هفتمین سمینار بین المللی مهندسی رودخانه. صفحات 1-8.##محسنی زاده، ف.، نگارستان، ح. و سواری، ا.، 1394. عوامل موثر بر نوسانات فیتوپلانکتون‌های خلیج فارس (سواحل استان بوشهر) طی زمستان و بهار ۱۳۹۲-۱۳۹۱. مجله علمی شیلات ایران، 91-101 :(2)23. ##Adam, S.M., 2001. Biomarker/ bioindicator response profiles of organisms can help differentiate between sources of anthropogenic stressors in aquatic ecosystem. Biomarkers, 6(1): 33-44. ## Doi: 10.1080/135475001452779.##Barber, H.G. and Haworth, E.Y., 1981. A guide to the morphology of the diatom frustule. Freshwater Biological Association Scientific Publication, 44, 112.## ##Bellinger, E.G. and Sigee, D.C., 2010. Freshwater algae identification and use as bioindicators. Wiley-Blackwell, John Wiley & Sons, Chichester, UK. 271P.##Biggs, B.J.F., 2000. New Zealand periphyton guidline: detecting, monitoring and managing the enrichment of streams. Ministry for environment publication, Wellington. 151P.##Buf, H.D. and Bayer, M.M., 2002. Automaticatic diatom identification world scientific. World Scientific Publishing, Singapore. 329P.##Castro, M.S., Driscoll, C.T., Jordans, T.E., Reay, W.G. and Boynton, W.R., 2003. Sources of nitrogen to estuaries in the United States. Estuaries, 26(3): 803-814. Doi:10.1007/BF02711991.##Chapman, D., 1996. Water quality assessments. A guide to use of biota, sediments and water in environmental monitoring. Second Edition. E&FN Spon, an imprint of Chapman & Hall. 651P. ##Chan, S.M.N., Luan, T., Wong, M.H. and Tam, N.F.Y., 2006. Removal and biodegration of polycyclic aromatic hydrocarbons by Selenastrum capricornutum. Envaironmental Toxicology and Chemistry, 25: 1772-1779. Doi: 10.1897/05-354R.1.##Cox, E.J., 1996. Identification of freshwater diatoms from Lie Material. Chapman & Hall., London. 158P.##Connel, J.H., 1978. Diversity in tropical rain forest and coral reefs. Science, 199: 1302-1310.##Douterelo, I., Perona, E. and Mateo, P., 2004. Use of cyanobacteria to assess water quality in running waters. Environmental pollution, 127:377-384. Doi:org/10.1016/j.envpol.2003.08.016.##Edmondson, W.T., 1989. Freshwater biology. John Wiley and Sons Inc, New York. 1133P.##Jahan, R. and Kusber, W., 2004. Algae of the ehrenberg collection–1. Typification of 32 names of diatom taxa. Willdenowia, 34: 577-595. Doi:10.3372/wi.34.34219. ##Jørgensen, S.E., Xu, L. and Costanza, R., 2010. Handbook of ecological indicators for assessment of ecosystem health, Second Edition. Taylor and Francis, London, New York. 498P.##Joubert, G., 1980. A bioassay application for quantitative toxicity management using the green algae, Selenastrum capricornutum. Water Research, 14:1759-1763.##Junshum, P., Choonluchanon S. and Traichaiyaporn, S., 2008. Biological indices for classification of water quality around Mae Moh power plant, Thailand. Maejo International Journal of Science and Technology, 2: 24-36.##Kamp, F.J. and Sadrinasab, M., 2005. The circulation of the Persian Gulf: a numerical study. Ocean Science Discussions, 2: 129-164. Doi:10.5829/idosi.mejsr.2013.13.6.2365.## Kshirsagar, A.D., 2013. Use of algae as a bioindicator to determine water quality of river Mula from Pune city, Maharashtra (India). Universal Journal of Environmental Research and Technology, 3(1): 79-85.##Graham, L.E. and Wilox, L.W., 2000. Algae. Upper Saddle River, NJ, Prentice Hall, 640P. Doi:org/10.1086/343625. ##Hotzel, G. and Croome, R., 1999. A phytoplankton methods manual for Australian freshwaters. Land and Water Resources Research and Development Corporation, Wodonga, 58P.##Lee, C.L. and Lee, Y., 2009. Cyanobacterial bio-indicator survey for two main rivers in Taitung Taiwan. Environmental Ecology Proceedings, 2: 1-26.##Lehman, P.W., 2007. The influence of phytoplankton community composition on primary productivity along the riverine to freshwater tidal continuum in the San. Joaquin River, California. Estuaries and Coasts, 30: 82-93. Doi:10.1007/BF02782969.##Malaiwan, T. and Peerapornpisal, Y., 2009. Diversity of phytoplankton and water quality in the reservoir of Nam Ngum Dam, Lao PDR. KKU Science Journal, 37: 42 - 49.## Malaiwan, T. and Peerapornpisal, Y., 2009. Diversity of phytoplankton and water quality in the reservoir of Nam Ngum dam, Lao PDR. KKU Science Journal, 37: 42-49.##McCormick, P.V. and Cairns, J., 1994. Algae as indicators of environmental change. Journal of Applied Phycology, 6: 509-526. Doi:org/10.1007/BF02182405. ##Mann, D.G. and Droop, S.J.M., 1996. Biodiversity, biogeography and conservation of diatoms. Hydrobiologia, 336: 19-32. Doi:org/10.1007/BF00010816.##Mizuno, M., 1964. Illustrations of the freshwater plankton of Japan. Hoikusha publishing. pp. 125-181.##Muylaert, K., Sabbe, K. and Vyverman, W., 2009. Spatial and temporal dynamics of phytoplankton communities in a freshwater tidal estuary (Schelde, Belgium). Estuarine, Coastal and Shelf Science, 50 :673-687. Doi:org/10.1006/ecss.2000.0590.##Nybakken, J.W., 1993. Marine biology and ecological approch. Harper Collins College Publishers, California, USA. 445P.##Padisak, J., Borics, G.B., Grigorszky, I.G. and Soroczki- Pinter, E., 2006. Use of phytoplankton assemblages for monitoring ecological status of lakes within the Water Framework Directive: the assemblage index. Hydrobiologia, 553: 1-14. ## Doi: 10.1007/s10750-005-1393-9.##Palmer, C.M., 1969. Composite rating of algae tolerating organic pollution. Journal of Phycology, 5: 78-82.##Pongswat, S., 2002. The use of phytoplankton biodiversity for monitoring water quality in Rama Ix Lake, Pathumthani Province. Dissertation, Suranaree University. ##Saha, S.B. and Choudhury, A., 2000. Diversity of phytoplankton of sewage pollution brakish water tidal ecosystems. Journal of Environmental Biology, 21(1): 9-14.##Smith, G.M., 1950. The freshwater algae of the United States. New York : 2nd ed. M cGraw-Hill Book Co., New York, 719P.##Volkman, J.K., Jeffrey, S.W., Nichols, P.D., Rogers, G.I. and Garland, C.D., 1989. Fatty acids and lipid classes of ten species of microalgae used in mariculture. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 128: 219-240. ## Doi:org/10.1016/0022-0981(89)90029-4.##Wichard, T., Gerecht, A., Boersma, M., Poulet, S., Wiltshire, K. and Pohnert, G., 2007. Lipid and fatty acid composition of diatoms revisited: rapid wound-activated change of food quality parameters influences herbivorous copepod reproductive success. The Journal of Chemical Biology, 8: 1146-1153. DOI: 10.1002/cbic.200700053.##Wu, J.T., 1984. Phytoplankton as bioindicator for water quality in Taipei. Botanical Bulletin of Academia Sinica, 25: 205-214. ##Yenwaree, W. and Ongmali, R., 2009. Monitoring of water quality using phytoplankton, protozoa, and benthos as bioandicator in Chadeebucha Canal, Nakhon Pathom Province. Journal of Environmental Research, 31(2): 1-14.## ##

یافته کوتاه:بهبود توان فیزیولوژیک ماهی کپور معمولی در نتیجه استفاده خوراکی از مکمل آویشن شیرازی و ویتامین E Improvement in physiological potency of common carp fed with Shirazi thyme and vitamin E as complementary feed additives 1 1 هدف از این بررسی اثر استفاده توام از آویشن شیرازی (Zataria multiflora Boiss) و ویتامین E در جیره غذایی ماهی کپور معمولی در بهبود اثرات مواجهه با فلز سنگین کادمیم می باشد. 135 قطعه ماهی کپور معمولی (3 ± 34 گرم) به سه گروه تقسیم­ شدند: بچه ماهیان گروه اول (کنترل) و دوم (بدون افزودنی) با استفاده از جیره غذایی استاندارد کپور وگروه سوم با جیره غذایی مکمل حاوی 1درصد پودر آویشن شیرازی و مقدار اضافی 100 میلی گرم در کیلوگرم ویتامین E به مدت 45 روز تغذیه شدند. سپس بچه­ماهیان در معرض غلظت زیرکشنده فلز سنگین کادمیم (5/1 میلی گرم در لیتر) قرار گرفته و شاخصهای آنزیمی و بیوشیمیایی پلاسما در تمامی گروه­ها در روزهای 0، 7 و 15 اندازه­گیری شدند. نتایج نشان داد که میزان فعالیت آنزیمهای AST، ALT، LDH و ALP در گروه بدون افزودنی پس از مواجهه با کادمیم به شکل معنی داری افزایش یافت. همچنین بیشترین سطح تری گلیسرید، کلسترول، گلوکز و کراتینین پلاسما نیز در گروه بدون افزودنی دیده شد (P<0.05). اما از سوی دیگر پارامترهای یاد شده در گروه مکمل قبل و پس از مواجهه با کادمیم تغییری نسبت به گروه کنترل نشان نداد (P>0.05). مطابق با نتایج این بررسی استفاده از مکمل آویشن شیرازی و ویتامین E در جیره غذایی ماهی کپور معمولی به شکل موثری موجب بهبود پاسخهای استرسی در این ماهی گردید. 2 The aims of the present study were to evaluate the effects of Shirazi thyme and vitamin E as complementary additives on stress recovery of common carp juveniles that were exposed to cadmium. 135 juveniles (34±3g) were divided into three groups. The first (control) and the second (non-feed additive) group fed with the standard diet for common carp and the third group (complementary) fed with the diet containing 1 percent Shirazi thyme and vitamine E (100 mg/Kg dry weight of diet). All of the experimental groups (except the control group) were challenged with sublethal concentration of cadmium (1.5 mg/L). Then, plasma enzymes and biochemical parameters were evaluated at 0, 7 and 15 days after cadmium exposure. Cadmium exposure led to significant increase in the amounts of AST, ALT, LDH, ALP, triglyceride, cholesterol, glucose and creatinine in the non-feed additive group, whereas the amounts of plasma enzymes and biochemical parameters in the complementary group were not changed after cadmium exposure as compared to those of the control group (p>0.05). In conclusion, using Shirazi thyme and vitamin E led to improvement in stress responses of common carp against waterborne cadmium.   167 171 2015/08/162017/05/152016/12/12017/05/312016/12/152017/07/162017/07/132017/01/52017/05/152017/05/92017/05/132017/02/102015/11/102017/04/212016/08/282017/02/17 1395/11/29 2017/12/172018/01/72018/01/72018/01/102018/01/132018/01/132018/01/172018/01/202018/01/212018/01/242018/01/302018/02/32018/02/72018/02/132018/02/242018/02/26 1396/12/7 محمد محیسنی M Mohiseni دانشگاه صنعتی خاتم الانبیا بهبهان ایران mohiseni@gmail.com مریم سپیدنامه M Sepidnameh دانشگاه صنعتی خاتم الانبیا بهبهان ایران sepidnamehmaryam@yahoo.com دارا باقری D Bagheri دانشگاه خلیج فارس ایران dara.bagheri@ut.ac.ir مهدی بنایی M Banaee دانشگاه صنعتی خاتم الانبیا بهبهان ایران mahdibanaee@yahoo.com بهزاد نعمت دوست حقی B Nematdust Haghi دانشگاه صنعتی خاتم الانبیا بهبهان ایران bnematdoost@yahoo.com Thyme Antioxidant properties Cadmium Common carp آویشن خاصیت آنتی اکسیدانی کادمیم کپور معمولی ##Choobkar, N., Soltani, M., Ebrahimzadeh Mousavi, H., Akhonzadeh Basti, A. and Matinfar, A., 2010. Effect of Zataria multiflora Boiss essential oil on the growth of Staphylococcus aureus in the light salted fillets of silver carp (Hypophthalmichthys molitrix). Iranian Journal of Fisheries Sciences, 9(3): 352-359.##Fazeli, M.R., Amin, G., Attari, M.M.A., Ashtiani, H., Jamalifar, H. and Samadi, N., 2007. Antimicrobial activities of Iranian sumac and avishan-e shirazi (Zataria multiflora) against some food-borne bacteria. Food Control, 18: 646-649. ## DOI: 10.1016/j.foodcont.2006.03.002##Gandomi, H., Misaghi, A., Basti, A. A., Bokaei, S., Khosravi, A., Abbasifar, A. and Javan, A. J. 2009. Effect of Zataria multiflora Boiss. essential oil on growth and aflatoxin formation by Aspergillus flavus in culture media and cheese. Food and chemical toxicology, 47: 2397-2400. DOI: 10.1016/j.fct.2009.05.024##JI, S.C., Takaoka, O., JEONG, G.S., LEE, S.W., Ishimaru, K., Seoka, M. and Takii, K., 2007. Dietary medicinal herbs improve growth and some non‐specific immunity of red sea bream Pagrus major. Fisheries Science, 73: 63-69. ## DOI: 10.1111/j.1444-2906.2007.01302.x##Kavoosi, G., Teixeira da Silva, J.A. and Saharkhiz, M.J., 2012. Inhibitory effects of Zataria multiflora essential oil and its main components on nitric oxide and hydrogen peroxide production in lipopolysaccharide‐stimulated macrophages. Journal of Pharmacy and Pharmacology, 64: 1491-1500. ## DOI: 10.1111/j.2042-7158.2012.01510.x##Miura, K., Kikuzaki, H. and Nakatani, N., 2002. Antioxidant activity of chemical components from sage (Salvia officinalis L.) and thyme (Thymus vulgaris L.) measured by the oil stability index method. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 50: 1845-1851.##Ortuño, J., Cuesta, A., Esteban, M.A. and Meseguer, J., 2001. Effect of oral administration of high vitamin C and E dosages on the gilthead seabream (Sparus aurata L.) innate immune system. Veterinary Immunology and Immunopathology, 79: 167-180. DOI: 10.1016/S0165-2427(01)00264-1##Sajed, H., Sahebkar, A. and Iranshahi, M., 2013. Zataria multiflora Boiss.(Shirazi thyme)—an ancient condiment with modern pharmaceutical uses. Journal of Ethnopharmacology, 145: 686-698. DOI: 10.1016/j.jep.2012.12.018.##Soleimany, V., Banaee, M., Mohiseni, M., Nematdoost Hagi, B. and Mousavi Dehmourdi, L., 2016. Evaluation of pre-clinical safety and toxicology of Althaea officinalis extracts as naturopathic medicine for common carp (Cyprinus carpio). Iranian Journal of Fisheries Sciences, 15: 613-629.##Sönmez, A.Y., Bilen, S., Alak, G., Hisar, O., Yanık, T. and Biswas, G., 2015. Growth performance and antioxidant enzyme activities in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) juveniles fed diets supplemented with sage, mint and thyme oils. Fish Physiology and Biochemistry, 41: 165-175. ## DOI: 10.1007/s10695-014-0014-9##Vinodhini, R. and Narayanan, M., 2009. The impact of toxic heavy metals on the hematological parameters in common carp (Cyprinus carpio L.). Iranian Journal of Environmental Health, Science and Engineering, 6: 23-28.##Yılmaz, S., Ergün, S. and Çelik, E.Ş., 2012. Effects of herbal supplements on growth performance of sea bass (Dicentrarchus labrax): Change in body composition and some blood parameters. Journal of BioScience and Biotechnology, 1: 217-222.## ##

یافته کوتاه:اولین گزارش از علف دریایی (Ruppia maritima) در آب‌های ساحلی دریای خزر (استان گلستان) First report of Ruppia maritima in coastal waters of the Caspian Sea (Golestan Province) 1 1 گونه Ruppia maritima در آبهای ساحلی دریای خزر و داخل کانالهای آبرسان مزارع پرورش میگوی گمیشان واقع در استان گلستان در تابستان سال 1395 مشاهده و نمونه برداری گردید. شناسایی و تایید نام علمی این گونه از طریق منابع موجود در داخل و ارتباط با متخصصان خارجی صورت گرفت. محدوده رویشی آن وسیع بوده و در تمام آبهای شور و لب شور دریاها و اقیانوسهای نواحی گرمسیری و نیمه گرمسیری دنیاگسترش دارد. در ایران نیز در سواحل کم عمق دریای خزر، حاشیه کانالها و استخرهای پرورش میگو رویش داشته و از تراکم بالایی برخوردار می باشد. از نظر علم طبقه بندی، در سلسله Plantae ، شاخه Tracheophyta ، رده Angiosperm ، راسته Najadales ، خانواده Ruppiaceae ، جنس Puppia وگونه Maritima  قرار دارد. گیاهان فوق به علت داشتن ریزوم‌های سفت و محکم، کشیده و بلند براحتی داخل بسترهای گلی یا گلی- ماسه‌ای رویش داشته و از تولید کننده های مهم اولیه در دریا محسوب می شوند. گرچه اهمیت اقتصادی چندانی نداشته ولی از این نظر که پناهگاه مناسبی برای بچه ماهیها و نوزادان آبزیان مهم و اقتصادی منطقه هستند دارای اهمیت اکولوژیکی فراوانی می‌باشند. ولی از این نظر که ممکن است با بی توجهی مزرعه‌داران به داخل استخرهای مزارع پرورش میگو گردیده و ایجاد مزاحمت نماید، و از طرفی یکی از منابع آبزی کشور است، سعی به شناسایی و معرفی گونه موجود و راههای جلوگیری از آن شده است.   2 The species of the Ruppia maritima were Sampled from Caspian Sea coasts and Water Channel of Shrimp Pond in Golestan Province in Summer of 2016.  Identification and Confirmation of Species Scientific name performed by Internal References and Relasionsheep to Forien Experts. The density of these species usually are very abundant in Caspian Sea coasts . This Species belonged to Kingdom of Plantae, Phylum of Tracheophyta, Class of  Angiosperm, Order of  Najadales, Family of Ruppiaceae, Gunes of Ruppia and species of maritima.  The distribution of the species is very large in world and often is in tropical and semi tropical area of Sea and Ocean. These species growing on mudy and mudy - sandy substrates with rhyzom and are primery productions in sea, also these species are suitable sheltered for important and commercial aquatic nursery. So, a little study performed in these case, because, in this research be identified and introduced these planes as other one of aquatic sourse of Iran.   173 178 2015/08/162017/05/152016/12/12017/05/312016/12/152017/07/162017/07/132017/01/52017/05/152017/05/92017/05/132017/02/102015/11/102017/04/212016/08/282017/02/172017/10/10 1396/7/18 2017/12/172018/01/72018/01/72018/01/102018/01/132018/01/132018/01/172018/01/202018/01/212018/01/242018/01/302018/02/32018/02/72018/02/132018/02/242018/02/262018/02/27 1396/12/8 بایرام محمد قرنجیک Bayram mohammad Gharanjik موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران gharanjik@yahoo.com Seagrass Ruppia maritime Caspian Sea Golestan Province علف دریایی Ruppia maritime دریای خزر استان گلستان ##Barber, B.J. and Behrens, P.J., 1985. Effects of elevated temperature on seasonal in situ leaf productivity of Thalassia testudinum Banks ex Konig and Syringodium filiforme Kiitzing. Aquatic Botany, 22: 61-69. ##Beck, M.W., Heck Jr., K.L., Able, K.W., Childers, D.L., Halpern, B., Hays, C.G., Hoshino, K., Minello, T.J., Orth, R.J., Sheridan, P.F. and Weinstein, M.P., 2001. The identification, conservation, and management of estuarine and marine nurseries for fish and invertebrates. Bio-science 51(8): 633–641. Doi:10.1641/0006-3568(2001)051[0633:TICAMO]2.0.##Den, Hartog, C., 1971. The dynamic aspect in the ecology of sea-grass communities. Thalassia Jugosl. 7: 101-112.##Duarte, C.M., 1991. Allometric scaling of seagrass form and productivity Mar. Ecol. Prog. Ser. 77: 289-300.##Duarte, C.M. and Cebrian, J., 1996. The fate of marine autotrophic production. Limnol. Oceanogr. 41: 1758–1766. ## Doi:10.4319/lo.1996.41.8.1758.##Duarte, C.M. and Chiscano, C.L., 1999. Seagrass biomass and production: a reassessment. Aquat. Bot. 65, 159–174. Doi:org/10.1016/S0304-3770(99)00038-8##Eleuterius, L.N., 1987. Seagrass ecology along the coasts of Alabama, Louisiana, and Mississippi. In: Durako, M. J.Phillips, R. C., Lewis, R. R. 111 (eds.) Proc. Symp. Subtropical-Tropical Seagrasses Southeastern United States. Fla mar. Res. Publ. 42: 11-20##Fry, B., 1983. Leaf growth in the seagrass Syringodium filiforme Kiitz. Aquat. Bot. 16: 361-368.##Iverson, R., L. and Bittaker, H., F., 1986. Seagrass distribution and abundance in eastern Gulf of Mexico coastal waters. Estuar. coast. Shelf Sci. 22: 577-602.##Patriquin, D., G., 1975. 'Migration' of blowouts in seagrass beds at Barbados and Carriacau, West Indies, and ~ t esc ological and geological implications. Aquat. Bot. 1: 163-189.##Short, F., T., Montc"r omerv, J., Zimrnermann. C., F., and Short. C., A., 2003. Production and nutrient dynamics of a Syringodium filiforme Kiitz. seagrass bed in Indian River Lagoon, Florida. Estuaries 16: 323-334. Doi:10.1.1.659.8016&rep.##Short, F.,T., and Neckles, A., H., 1999. The effects of global climate change on seagrasses. Aquat. Bot. 63, 169–196.##Short, F.,T., and Short, C.,A., 1984. The seagrass filter purification of coastal water. In: Kennedy, V.,S., (ed) The Estuary as a Filter, Academic Press, USA. pp 395–413.##Spalding, M., Taylor, M., Ravilious, C., Short, F., and Green, E., 2003. Global overview: the distribution and status of seagrasses. In: Green, E.P., Short, F.T. (ed) World Atlas of Seagrasses. University of California Press, Berkeley, USA. Pp 5–26.##Van, Tussenbroek, B., 1994. Spatial and seasonal variability in biomass and leaf morphology of the manatee grass, Syringodium fjliforme in a tropical coral reef lagoon, Mexico. Ann. Inst. Cien. del Mar y Limnol. UNAM, Mexico (inpress).##Virnstein, R.W., 1982. Leaf growth rate of the seagrass Halo Mar. Ecol. Prog., Ser.dule wrightii photographically measured in situ. Aquat, 109: 99-104,##Ward, L.G., Kemp, W.M. and Boynton,W.R., 1984. The influence of water depth and submerged vascular plants on resuspended particles in a shallow estuarine embayment. Mar. Geol. 59: 85–103.##Williams, S.L., 1987. Competition between the seagrasses, Mar. Ecol. Prog. Ser. 35: 91-98.## ##