1398 28 3 113 217

تاثیر افزودن اتیلن دی آمین تترا استیک اسید به جیره غذایی بر کاهش میزان عناصر سنگین در گوشت ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) Effect of dietary EDTA supplementation on reduction of heavy metals load in common carp (Cyprinus carpio) muscle 1 1 در این مطالعه اثر سطوح مختلف اتیلن دی آمین تترا استیک اسید (EDTA) در جیره غذایی و تاثیر آن بر تغییرات میزان عناصر سنگین کادمیوم، جیوه، سرب و آرسنیک در گوشت ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) در یک دوره پرورش 90 روزه مورد بررسی قرار گرفت. این تحقیق بر اساس طرح کاملاً تصادفی شامل 5 تیمار 1(شاهد)، 2، 3، 4 و 5 که بترتیب حاوی صفر، 75، 150، 300 و 600 میلی گرم در کیلوگرم EDTA بودند و تحقیق در 6 تکرار انجام گردید. میانگین وزن کل، طول کل و ارتفاع بدن در بچه ماهیان معرفی شده بترتیب 06/0±1/2 گرم، 05/0±96/1 سانتی‌متر و 01/0±51/0 سانتی‌متر بود. میانگین غلظت آرسنیک در گوشت ماهی کپور معمولی در تیمارهای مختلف در محدوده 66/84-56 میکروگرم بر کیلوگرم به ثبت رسید. حداکثر غلظت آرسنیک در تیمار 2 و کمترین مقدار این عنصر در تیمار 5 بدست آمد و تفاوت معنی‌داری بین تیمارها مشاهده نشد (05/ 0>P ). حداکثر و حداقل غلظت جیوه در گوشت ماهی کپور معمولی بترتیب در تیمار 3 (4/2±33/129 میکروگرم بر کیلوگرم) و 4 (02/2±33/112 میکروگرم بر کیلوگرم) بدست آمدکه از نظر این عنصر سنگین تفاوت معنی‌داری بین تیمارهای 4، 5 و شاهد با تیمارهای 2 و 3 مشاهده شد (05/ 0>P ). محدوده تغییرات غلظت سرب در گوشت ماهیان 256-192 میکروگرم بر کیلوگرم اندازه‌گیری شد. تیمار 4 با سایر تیمارها تفاوت معنی‌داری نشان داد (05/ 0>P ). حداقل و حداکثر میزان غلظت کادمیوم در گوشت ماهی کپور معمولی بترتیب در تیمارهای 2 (72/4±00/106 میکروگرم بر کیلوگرم) و 4 (61/4±0/113 میکروگرم بر کیلوگرم) بدست آمد که تیمار 4 با تیمارهای 1، 2 و 5 تفاوت معنی‌داری را نشان داد (05/ 0>P ). 2 In this study the effects of various amounts of dietary EDTA (ethylene di amine tetra-acetic acid) supplementation on the amounts of cadmium, mercury, lead and arsenic were evaluated over a growing period of 90 days. This research was conducted according to completely randomized design with 5 treatments including 1(the control), 2, 3, 4 and 5 containing different EDTA concentration of 75, 150, 300 and 600 ppm, respectively and 6 replicates. The average concentration of arsenic ranged from total weight, total length and body height in fingerling fishes were 2.1±0.06 g, 1.96±0.05 and 0.51±0.01 cm, respectively. The average concentration of arsenic ranged from 56 to 84.66 µg/kg in different treatments. The highest and lowest concentration of arsenic were observed in treatment 2 and 5 were significantly different among various treatments (P>0.05).The highest and the lowest concentration of mercury were observed in treatment 3 (129.33±2.4 µg/kg) and 4 (112.±332.02 µg/kg), respectively. The amounts of mercury in treatment 1, 4 and 5 were significantly different from treatments   2 and 3(P<0.05). Lead concentration ranged from 192 to 256 µg/kg, in which the treatment 4 showed a significantly different as compared to the other (P<0.05). The lowest and the highest concentration of cadmium were observed in treatments 2 (106.00±4.72 µg/kg) and 4 (113.0±4.61 µg/kg), respectively. The concentration of cadmium in treatment4 was a significantly different from treatments 1, 2 and5 (P<0.05). 1 12 2016/05/7 1395/2/18 2019/06/10 1398/3/20 حسین باصری ارغوانی H. Basseri Arghavani دانشگاه آزاد اهواز ایران mvelayatzadeh@gmail.com ابوالفضل عسکری ساری A. Askary Sary دانشگاه آزاد اهواز ایران askary_sary@yahoo.com مهران جواهری بابلی M. Javaheri Baboli دانشگاه آزاد اهواز ایران mehranjavaheri@gmail.com EDTA Cadmium Mercury Lead Arsenic EDTA کادمیوم جیوه سرب آرسنیک ##اسماعیلی ساری، ع.، 1381. آلاینده ها، بهداشت و استانداردها در محیط زیست. انتشارات نقش مهر، چاپ اول، تهران، 767 صفحه.##اسماعیلی ساری، ع.، نوری ساری، ح. و اسماعیلی ساری، ا.، 1386. جیوه در محیط زیست. انتشارات بازرگان، چاپ اول، رشت، 226 صفحه.##امینی رنجبر، غ. و ستوده نیا، ف.، 1384. تجمع فلزات سنگین در بافت عضله ماهی کفال طلایی (Mugil auratus) دریای خزر در ارتباط با برخی مشخصات بیومتریک (طول استاندارد، وزن، سن و جنسیت). مجله علمی شیلات ایران، 14 (3): 18-1.##آقازاده مشگی، م.، 1380. عوامل میکروبی مولد فساد در ماهی و فرآورده های آن. سمینار دوره دکتری تخصصی بهداشت مواد غذایی، دانشکده علوم تخصصی دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران، 23 صفحه.##بندانی، غ.، رستمی، ح. و یلقی، س.، 1389. سطح فلزات سنگین( سرب، کادمیوم، کروم و روی) در بافت عضله و کبد ماهی کپور (Cyprinous carpio) سواحل استان گلستان. مجله علمی شیلات ایران، سال نوزدهم، شماره9.##جلالی جعفری، ب. و آقازاده مشگی، م.، 1386. مسمومیت ماهیان در اثر فلزات سنگین و اهمیت آن در بهداشت عمومی. انتشارات مان کتاب، چاپ اول، تهران، 134 صفحه.##روحانی، م.، 1374. تشخیص پیشگیری و درمان بیمارها و مسمومیت های ماهی (ترجمه). انتشارات اداره کل آموزش و ترویج تکثیر و پرورش آبزیان، سازمان شیلات ایران، تهران، 256 صفحه.##صادقی راد، م.، 1373. بررسی و تعیین میزان فلزات سنگین در چند گونه از ماهیان خوراکی تالاب انزلی. مجله علمی شیلات ایران، 4: 16-1.##عسکری ساری، ا.، جواهری بابلی، م.، محجوب، ث. و ولایت زاده، م.، 1391. میزان فلزات سنگین (جیوه، کادمیوم، سرب) در عضله ماهی شوریده در بنادر صیادی آبادان و بندرعباس، مجله علمی شیلات ایران، 21 (3): 106-99.##عسکری ساری، ا. و ولایت زاده، م.، 1393. فلزات سنگین در آبزیان. انتشارات دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز، چاپ اول، اهواز، 388 صفحه.##فرکیان، ن.، محمدی، غ. و عسکری ساری، ا.، 1392. میزان جیوه در عضله میش ماهی (Argyrosomus hololepidotus) در گروه های سنی مختلف در صید آب های شمال غربی خلیج فارس. فصلنامه زیست شناسی دریا، 5 (19): 34- 25.##گرجی پور، ع.؛ صدوق نیری، ع.؛ حسینی، ا.ر. و بیتا، س.، 1388. بررسی تجمع برخی فلزات سنگین در بافت های عضله، کبد و آبشش ماهی هامور معمولی. مجله علمی شیلات ایران(1)18:34-25##Ahmad, A.K. and Shuhaimi-Othman, M., 2010. Heavy metal concentration in sediments and fishes from Lake Chini, Pahang, Malaysia. Journal of Biological Sciences, 10 (2): 93-100. DOI: 10.3923/jbs.2010.93.100##Al-Yousuf, M.H., El-Shahawi, M.S. and Al-Ghais, S.M., 2000. Trace metals in liver, skin and muscle of Lethrinus lentjan fish species in relation to body length and sex. The Science of the Total Environment, 256: 87-94. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.109998##AOAC, 1995. Official methods of analysis, Association of official analytical chemists, INC., Arlington, Virginia, USA. DOI: 10.12691/ajfn-3-6-1##Canli, M. and Atli, G., 2003. The relationship between heavy metal (Cd, Cr, Cu, Fe, Pb, Zn) levels and the size of six Mediterranean fish species. Journal of Environmental Pollution, 121: 129-136.##Chen, Y. and Chen, M., 2001. Heavy metal concentrations in mine species of fishes caught in coastal waters off Ann-Ping, S.W. Taiwan. Journal of Food and Drug Analysis, 9 (2): 107-114.##Cornelis, R., Crews, H., Caruso, J. and Heumann, K.G., 2005. Toxic effects of arsenic. In: Handbook of Elemental Speciation II: Species in the Environment, Food, Medicine and Occupational Health. John Wiley and Sons, Chichester, 78–79.##Farkas, A., Salanki, J. and Varanka, I., 2000. Heavy metal concentrations in fish of Lake Balaton, Lakes and Reservoirs. Journal of Research and management, 5: 271-279. DOI: 10.1046/j.1440-1770.2000.00127.x.##Gibbs, P.J. and Miskiewicz, A.Z., 1995. Heavy metal in fish near a major primary treatment sewage plant outfall. Marine ## ## Pollution Bulletin, 30: 667-674. DOI:10.1007/s10661-006-9552-7.##Heath, A.G., 1987. Water pollution and fish physiology. CRC. Press,. Boston, USA. 245P.##Humtsoe, N., Davoodi, R., Kulkarni, B.G., Chavan, B., 2007. Effect of arsenic on the enzymes of the rohu carp , Labio rohita. The Raffles Bulletin Zoology, 14: 17-19.##Iranshahi, F., Faramarzi, M., Kiaalvandi, S., Jalaee, H. and Dehghan, M., 2011. Effectiveness of edta in mobilizing of the contaminant metal ions, especially cadmium from tissue of Angel fish (Pterophyllum scalare schultze) subjected to chronic poisoning with cadmium acetate. American-Eurasian Journal of Agricultural and Environmental Sciences, 11 (4): 519-527.##James, R., Sampath, K. and Selvamani, P., 1998. Effect of EDTA on reduction of copper toxicity in Oreochromis mossambicus (Peters). Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 60: 487-493. DOI:10.1007/s001289900651.##Karuppasamy, R., Subathra, S. and Puvaneswari, S., 2005. Haematological responses to exposure to sublethal concentration of cadmium in air breathing fish, Channa punctatus (Bloch). Journal of Environmental Biology, 26 (1): 123-128. DOI: 10.5897/JTEHS12.028##Kimmel, C.A., 1977. Effect of route of administration on the toxicity and teratogenicity of EDTA in the rat. Toxicology and Applied Pharmacology, 40 (2): 299-306. DOI: 10.1016/0041-008X(77)90101-6##Licop, M.S., 1988. Sodium - EDTA effects on survival and metamorphosis of Penaeus monodon larvae. Aquaculture, 74 (3-4): 239-247. DOI: 10.1016/0044-8486(88)90368-7##MOOPAM., 1999. Manual of oceanographic observations and pollutant analysis methods. Kuwait. DOI: 10.12691/jephh-5-2-4.##Moshtaghie, A.A., Taghikhani M. and Sandughchin, M., 1994. Cadmium interaction with iron metabolism, in vitro and in vivo studies. Medical Journal of IslamicWorld Academy of Science, 7(3): 145-150.##Muramoto, S., 1980. Decreases in cadmium concentration in Cd contaminated fish by short term exposure to EDTA. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 25 (5): 828-831.##Nowack, B., 1996. Behavior of EDTA in groundwater: A study of the surface reactions of EDTA-metal complexes. Dissertation, E- T- H- Nr. Zurich. Switzerland.##Olsson, P.E., 1998. Disorders associated with heavy metal pollution. In, Fish diseases and disorders. Vol. 2 Non infectious disorders. Leather land J.F., Woo P.T.K.(eds). CAB International Publishing. Oxford, England. 386P. DOI:10.1002/9781118222942.##Shackelford, G.S., Regni, C.A., Beamer, L,J. 2004. Evolutionary trace analysis of the α-D-phosphohexomutase superfamily. Protein Science, 13:2130–2138. DOI: 10.1110/ps.04801104.##Shalaby, A.M.E., 2007. Effect of EDTA on reduction of cadmium toxicity on growth, some hematological and biochemical profiles of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 2: 100-109. DOI: 10.3923/jfas.2007.100.109.##Taati, R., Soltani, M., Bahmani, M. and Zamini, A.A., 2011. Effect of the prebiotics Immunoster and Immunowall on growth performance of juvenile beluga (Huso huso). Journal of Applied Ichthyology, 27(2): 796-798. DOI: 10.1111/j.1439-0426.2010.01664.x.##Tuzen, M., 2009. Toxic and essential trace elemental contents in fish species from the Black Sea, Turkey. Journal of Food and chemical Toxicology, 47(9): 2302-2307. DOI: 10.1016/j.fct.2009.04.029. ##Voigt, H.R., 2007. Heavy metal concentrations in four-horn sculpin Triglopsis quadricornis (L.) (Pisces), its main food organism Saduria entomon L. (Crustacea), and in bottom sediments in the Archipelago Sea and the Gulf of Ecology, Proceedings of the Estonian Academy of Sciences. 56 (3): 224-238. DOI: 10.1007/s00244-010-9483-8.##WHO, 1985. Review of potentially harmful substances- cadmium, lead and tin. World Health Organization, Geneva. Switzerland. DOI: 10.29252/ijmr-040105.## ##

بررسی تغییر اندازه چشمه کیسه ی تورهای پره منطقه میانکاله بر وضعیت صید ماهیان Standardization of mesh size in codend of the Miankaleh Beach Seine 1 1 تورهای پره ساحلی ابزارهای صیدی هستند که از سطح تا بستر را بوسیله دیواره توری غیرگوشگیر اشغال می­کنند. بالابودن میزان صید ماهیان غیراستاندارد در تورهای پره باعث شد تا این تحقیق در راستای استانداردسازی چشمه­ های کیسه پره انجام شود. نمونه­ برداری در فصل زمستان 1395 آغاز و در بهار 1396 با انجام 73 بار پره­کشی با استفاده از چهار تور پره با چهار چشمه به اندازه­ های 26، 28، 30 و33 میلی­متری (از گره تا گره مجاور) در قسمت کیسه در منطقه میانکاله صورت گرفت. نتایج نشان داد که بیشترین میزان صید از گونه ­های مختلف در اندازه ­های مختلف مربوط به چشمه 26 میلی­متر می­باشد. همچنین بیشترین فراوانی طول کل برای گونه کفال­ طلایی Liza aurata Risso, 1810)) در چشمه­ های مختلف در طبقه طولی 35-30 سانتی­متری، برای شگ­ ماهیان Alosa caspia Linck, 1790)) در طبقه طولی 35 تا 40 سانتی­متری و برای گونه ماهی سفید Rutilus kutum Kamensky, 1901)) در طبقه طولی 30 تا 35 سانتی­متری قرار داشتند. نتایج نشان داد که در تور با چشمه 26 میلی­متر برای ماهی کفال طلایی طول 50 درصد صید مجاز معادل 87/24 سانتی­متر، در چشمه 30 میلی­متر 06/25 سانتی­متر و چشمه 32 میلی­متر 65/26 سانتی­متر می­باشد. میزان طول 50 درصد صید مجاز شگ­ ماهی در استفاده از چشمه 30 میلی­متر مقدار 5/25 سانتی­متر بدست آمد. با توجه به نتایج بدست آمده مشخص شد که پره­ های موجود در منطقه به هیچ عنوان انتخابی عمل نکرده و ماهیان زیادی را زیر استاندارد طولی صید می­کند. 2 Beach seine is fishing gears that occupy all depths of water from surface to bed by non-gillnet net. Increasing non-standard catches caused this survive was done to standardization of the beach seine mesh size. The research was started from winter of 2017 to spring of 2017, performing 73 hauling with four mesh sizes of 26, 28, 30 and 33 mm (knot to knot) in the bag area of ​​the beach seine in Miankaleh region of Golestan Province. According to the mesh size used in the bag section, the results showed that the highest amount of catches from different mesh size was done in size of 26 mm. Also, the maximum lengths were found for Liza aurata, Risso, 1810 in different mesh size in the 30-35 cm class length and for Alosa caspia, Linck, 1790 for 35-40 cm and for Rutilus kutum, Kamensky, 1901 at 30 to 35 cm. Also, in the mesh size of 26 mm, 50 percent of Lisa fish was caught at the length of 24.87 centimeters, in mesh size of 30 mm, 25.66 centimeters and mesh size of 32 mm, 26.65 centimeters. Also, the length of 50% of the permitted catch was obtained 25.5 centimeters by using 30 mm mesh size. According to the results, it was found that the Beach seines in the region did not caught selective and did catch much fish below the standard length. 13 21 2016/05/72018/12/30 1397/10/9 2019/06/102019/05/21 1398/2/31 محسن یحیایی M Yahyaei دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان ایران mohsenyahyaee@yahoo.com سعید گرگین S Gorgin دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان ایران sgorgin@gau.ac.ir دانیال اشتپوتیش D. Stepputis موسسه تونن ایران sgorgin@gmail.com محسن صفایی M. Saffaei گروه شیلات ، دانشگده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان ایران gorgin_s@yahoo.com سید یوسف پیغمبری S.Y. Paighambari دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان ایران gorgin2000@yahoo.com Mesh standardization Selectivity of catches Beach seine Miankaleh استانداردسازی چشمه صید انتخابی صید پره میانکاله ##بی‌باک، ز. 1395. مطالعه پویایی جمعیت، ترکیب نسبی و صید به ازای واحد تلاش شگ ماهی Alosa sp صید شده از تعاونی پره مستقردر سواحل استان گلستان. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. پایان نامه کارشناسی ارشد. صفحات: 12-34 ##تمسکی، م. ص. گرگین، س. قربانی، ر. قره آقاجی، ع. ا. و عقیلی نژاد، س. م. 1395. بررسی صدمات فیزیکی و اثر انبارداری بر میزان استحکام تورهای گوشگیر تاسماهیان. مجله علمی شیلات ایران، 25 (4)، صفحات: 162-151##جهانتیغ، ن. گرگین، س. و بابانژاد، م. 1397. بررسی وضعیت خروج آبزیان از بخشهای مختلف تور ترال ماهی به روش پاکت##در آبهای ساحلی چابهار. مجله علمی شیلات ایران، 27 (3)، صفحات: 10-1. (DOI): 10.22092/ISFJ.2018.116858##حقیقت جو، ن. گرگین، س. حسینی، س. ع. و بابانژاد، م. 1397. بررسی انتخاب پذیری طولی ماهی سرخو معمولی (Lutjanus johni Bloch, 1792 ) براساس رابطه طول- دور بدن در تورهای گوشگیر آبهای ساحلی بندرعباس. مجله علمی شیلات ایران، 27 (1)، صفحات: 19-11 . (DOI): 10.22092/ISFJ.2018.116310##سپاهی، ع. گرگین، س. سانتوز، خ. عباسپور نادری، ر. و آذینی، م. ر. 1395. مطالعه ترکیب و تنوع گونههای ماهیان صید شده در تورهای ترال آبهای دریای عمان- منطقه چابهار. نشریه پژوهشهای ماهی شناسی کاربردی. دوره چهارم، شماره سوم. صفحات 42 – 29.##شعبانی، ع. و شعبان‌پور، ب. 1387. گزارش نهایی بررسی ترکیب گونه‌ای صیدد پره در استان گلستان. معاونت پزوهشی و فناوری دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 28ص.##عبدالملکی، ش.، دریانبرد، غ.، و بندانی، غ. 1384. ارزیابی ذخایر ماهیان استخوانی در سواحل جنوبی دریای خزر (84-1383). پژوهشکده آبزی پروری (آب‌های داخلی). 150 ص. ##غنی‌نژاد، د. و مقیم، م. 1372. ارزیابی ذخایر ماهیان استخوانی دریای خیر. مرکز تحقیقات شیلات استان گیلان. 65 ص. ##غنی‌نژاد، د. 1377. ارزیابی ذخایر ماهیان استخوانی در دریای خزر. مجموعه مقالات هفتمین کنفرانس ملی شیلات ایران (ماهیگیری مسئولانه) صفحات: 57 تا 66##غنی‌نژاد، د. مقیم، م. و پرافکنده، ف. 1380. ارزیایبی ذخایر ماهیان استخوانی دریای خزر. مرکز تحقیقات شیلات استان گیلان. 149ص.##غنی‌نژاد، د. عبدالملکی، ش. بورانی، م. پورغلامی، ا. عباسی، ک. و مراخواه، س. 1382. ارزیابی ذخایر ماهیان استخوانی دریای خزر (بخش شگ ماهیان). گزارش کار مرکز تحقیقات ماهیان استخوانی دریای خزر. صفحات: 103-106 ##غنی‌نژاد، د. عبدالملکی، ش. بورانی، م. ص. پورغلامی، ا. عباسی، ک. مراخواه، س. پرافکنده، ف. بندانی، غ. پیری، ح. و رضوی صیاد، ب. 1382. ارزیابی ذخایر ماهیان استخوانی دریای خزر. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 165 ص.##فضلی، ح. و غنی‌نژاد، د. 1383. بررسی صید و برخی جنبه‌های زیست‌شناختی کفال ماهیان در حوضه جنوبی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران، 13 (1)، صفحات: 113-97##مشک آبادی، م. گرگین، س. فضلی، ح. و قره آقاجی ع. ا. 1396. بررسی استحکام الیاف تور بالابر مخروطی صیذ کیلکا قبل و بعذ از استفاده. مجله علمی شیلات ایران، 26 (2)، صفحات: 6-1.##مهدوی، ج. 1390. مطالعه ترکیب صید، فراوانی طولی و تلاش صیادی تورهای پره سواحل شرقی و غربی استان گلستان. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. پایان نامه کارشناسی ارشد. صفحات: 10-35##Afraei, M.A., Mashhor, M., Abdolmalaki, S., Keymaram, F. and Janbaz, A.A., 2010. Age and growth of kutum (Rutilus frisii kutum, Kamensky, 1901) in southern Caspian Sea. Aquatic Resource, 2: 25-33. DOI: 10.5829/idosi.gv.2012.9.2.64105##Belyaeva, V.N., Kazancheev, E.N. and Raspopov, V.M., 1989. The Caspian Sea: Ichthyofauna and commercial resources. Moscow, Nauka, 236P. ##Broadhurst, M.K., Wooden, M.E., and Millar, R.B., 2007. Isolating selection mechanisms in beach seines. Fisheries Research, 88(1-3): 56-69.##Carbal, H., Duque, J. and Costa, M.J., 2003. Discards of the beach seine fishery in the central coast of Portugal. Fisheries Resource. 63: 63-71. DOI:10.1016/S0165-7836(03)00004-3##Coad, B.W., 2019. http://www.briancoad. com/species%20accounts/Keys%20new.htm##Fazli, H., Ghaninejad, D., Janbaz, A.A. and Daryanabard, R., 2008. Population ecology parameters and biomass of golden grey mullet (Liza aurata) in Iranian waters of the Caspian Sea. Fisheries Research, 93(1-2), 222-228.##Huxley, L.S., 1924. Constant differential growth ratios and their significance. Nature, 114: 895-896.##Khoroshko, A.I., 1981. Population abundance and structure in the long-finned mullet (genus Liza, Mugilidae) during acclimation in the Caspian Sea. Journal of Ichthyology, 22(6), 62-69.##Masompour, Y., Gorgin, S., Pighambari, S.Y., Karimzadeh, Gh., Babanejad, M. and Eighani, M., 2018. The impact of ghost fishing on catch rate and composition in the southern Caspian Sea. Marine Pollution Bulletin, 135: 534–539. https://doi.org/10.1016/ S0165-7836(03)00209-1##Pauly, D. and Munro, J.L., 1984. Once more on the comparison of growth in fish and invertebrates. ICLARM: International Center for Living Aquatic Resources Management. Fishbyte, Vol. 2, No. 1, 21P.## ## ##

اثر استفاده از سطوح مختلف دانه آناتو (Bixa orellana) در جیره غذایی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) جوان بر برخی شاخص‌های خونی، رشد و رنگ فیله Effect of dietary annatto (Bixa orellana) seed powder on some hematological parameters, growth performance, and fillet color of juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) 1 1 در این پژوهش، سطوح مختلف پودر دانه گیاه آناتو (Bixa orellana) به جیره غذایی ماهیان قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss ااضافه گردید و سپس برخی از شاخص‌های خونی (شامل تعداد گلبول‌های قرمز و سفید‌، غلظت هموگلوبین و درصد‌‌ هماتوکریت)، عملکرد رشد و رنگ فیله ماهیان بررسی شد. جیره‌های آزمایشی با سه تکرار شامل 0 (شاهد)، 25/0، 5/0 و 75/0 درصد پودر دانه گیاه آناتو بود. تعداد 360 عدد ماهی قزل آلای رنگین کمان جوان (5±100 گرم) در 12 عدد تانک به‌صورت کاملاً تصادفی ذخیره‌سازی و 40 روز پرورش یافتند. حداکثر مقدار شاخص‌های خونی بجز تعداد گلبول­های سفید در تیمار شامل 75/0 درصد پودر دانه گیاه آناتو مشاهده شد، در حالیکه کمترین مقدار این شاخص‌ها در تیمار شاهد مشاهده شد (p<0.05). همچنین، بیشترین وزن نهایی بدن (235 گرم) مربوط به تیمار 75/0 درصد پودر دانه آناتو و کمترین (2/108 گرم) مربوط به تیمار شاهد بود (p<0.05). طیف رنگ‌های قرمز و زرد در فیله ماهیان با افزایش سطح پودر آناتو در جیره، به طور معنی‌داری افزایش یافت و بیشترین میزان آنها در فیله ماهیان تغذیه شده با 75/0 درصد پودر آناتو در مقایسه با سایر تیمارها مشاهده شد (p<0.05). بنابراین، افزودن پودر دانه گیاه آناتو به مقدار 75/0 درصد در جیره غذایی ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان تأثیر مثبتی در شاخص‌های خونی داشت و از سویی، با افزایش نرخ رشد و رنگ‌پذیری فیله احتمالاً هزینه‌های پرورش را کاهش و مشتری پسندی گوشت ماهی را افزایش خواهد داد. 2 In this study, rainbow trout diet was supplemented with different levels of annatto (Bixa orellana) seed powder and then some blood parameters (i.e. red and white blood cells count, hemoglobin concentration and hematocrit percentage), growth performance and the fillets color was evaluated. The experimental diets consisted of 0 (control), 0.25, 0.5 and 0.75% annatto powder with three replicates. A total of 360 juvenile rainbow trout (100±5 g) were stocked completely randomly in 12 tanks and reared for 40 days. The maximum amount of all measured blood parameters except white blood cells were obtained in supplemented diet with 0.75% annatto seed powder and the minimum amount of the blood indices were observed in control group (p<0.05). Also, the highest body weight (235 g) was related to 0.75% annatto seed powder and the lowest (108.2 g) was related to control one (p<0.05). Spectrum of red and yellow colors in the fish fillets were increased by increasing in annatto seed powder level in the diet and the highest values were recorded in the fish fillet fed with 0.75% annatto seed powder in comparison with others (p<0.05). Therefore, the addition of annatto seed powder at 0.75% in rainbow trout diet has a positive effect on the blood parameters, and on the other hand, by increasing the growth rate and fillet coloring, probably the cost of culturing will reduce and the customer's satisfaction with the fish meat will increase. 23 32 2016/05/72018/12/302019/01/20 1397/10/30 2019/06/102019/05/212019/07/20 1398/4/29 فاطمه حیدری F. Heidari دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات ایران mahroo.heidari.021@gmail.com سید پژمان حسینی شکرابی S.P. Hosseini Shekarabi دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات ایران hosseini.pezhman@yahoo.com مهدی شمسایی مهرجان M. Shamsaie Mehrgan دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات ایران drshamsaie@gmail.com Annatto Pigment Fillet color Rainbow trout گیاه آناتو رنگدانه رنگ فیله قزل آلای رنگین کمان ##آوازه، ا، عمادی، ح، نگارستان، ح. و جانی جلیلی، خ.، 1394. بررسی اثر پوست انار بر تغییر رنگ پوست، گوشت و خون در ماهی قزل آلای رنگین کمان Oncorhynchus mykiss)). مجله پژوهش‌های علوم و فنون دریایی، 10(1): 1-10.##پورغلام ر.، شریف روحانی، م.، صفری، ر.، سعیدی، ع.ا.، بینایی، م.، نجفیان، ر.، بانکه ساز، ز.، تقوی، م.ج. و سپهداری، ا.، 1392. اثر عصاره سرخار گل (Echinacea purpurea) بر برخی شاخص‌های ایمنی و بازماندگی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) در برابر با استرپتوکوک. مجله شیلات ایران، 2(3): 1-12.##جهانبخشی، ع.، احمدنیا مطلق، ح.، عرفانی‌فر، ا. و صفری، ا.، 1396. اثر استفاده از سطوح مختلف دانه آناتو (Bixa orellana) در جیره غذایی، بر شاخص‌های رشد و بقاء میگوی بزرگ آب شیرین (Macrobrachium Rosenbergii). فن آوری‌های نوین در توسعه آبزی پروری، 11(1): 61-70.##سحری، م.ا.، زرین قلمی، س. و ستاری، م.، 1391. بررسی ویژگی ضد باکتریایی عصاره آناتو (نوربیکسین) در برابر برخی از باکتری های بیماریزا. مجله علوم و صنایع غذایی، 9(35): 17-23.##عادل، م.، پورغلام، ر.، ذریه زهرا، س. ج. و قیاسی، م.، 1394. تاثیر سطوح مختلف عصاره نعناع فلفلی بر برخی شاخص‌های خونی، بیوشیمیایی و ایمنی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران، ۲۴(۱): ۳۷-۴۶.##میرکریمی، س. ع، یوسفی، سیاه کلرودی، س. و فرودی، ف.، 1393. استفاده از گلرنگ (Carthamus tinctorius) در تغییر رنگ گوشت و پوست قزل آلا (Oncorhynchus mykiss). مجله محیط زیست جانوری، 6(4): 161-166.##یلمه، م، حبیبی نجفی، م. ب، فرهوش، ر. و حسنی، ف.، 1395. کاربرد روش سطح در پاسخ بهینه سازی شرایط استخراج رنگ دانه از دانه آناتو به کمک امواج فراصوت. مجله علوم و صنایع غذایی، 50(13): 43-50. ##Ardo, L., Yin, G., Xu, P., Váradi, L., Szigeti, G., Jeney, Z. and Jeney, G., 2008. Chinese herbs (Astragalus membranaceus and Lonicera japonica) and boron enhance the non-specific immune response of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) and resistance against Aeromonas hydrophila. Aquaculture, 275(1-4): 26-33.‌ DOI: 10.1016/j.aquaculture.2007.12.022##Bole-Feysot, C., Goffin, V., Edery, M., Binart, N. and Kelly, P. A., 1998. Prolactin (PRL) and its receptor: actions, signal transduction pathway and phenotypes observed in PRL receptor knockout mice. Endocrine Reviews, 19 (3): 225-268. DOI: 10.1210/edrv.19.3.0334##Bora, M. M., 2010. Adsorption of pigment from annatto seed utilizing fish scale as bio sorbent. Journal of Chemical and Pharmaceutical Research, 2(5): 75-83.## ##Boschetto, D. L., Aranha, E. M., de Souza, A. A. U., Souza, S. M. G. U., Ferreira, S. R., Priamo, W. L. and Oliveira, J. V., 2014. Encapsulation of bixin in PHBV using SEDS technique and in vitro release evaluation. Industrial Crops and Products, 60(2014): 22-29.‌ DOI: 10.1016/j.indcrop.2014.05.050##Choubert, G., Cravedi, J.P. and Laurentie, M., 2009. Effect of alternative distribution of astaxantin on rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) muscle pigmentation. Aquaculture, 286(1-2): 100-104. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2008.09. 001##Degnan, A. J., Von Elbe, J. H. and Hartel, R. W., 1991. Extraction of annatto seed pigment by supercritical carbon dioxide. Journal of Food Science, 56(6): 1655-1659. DOI: 10.1111/j.1365-2621.1991.tb08664.x##Ezuruike, U.F., Prieto and J.M., 2014. The use of plants in the traditional management of diabetes in Nigeria: pharmacological and toxicological considerations. Journal of Ethnopharmacology, 155(2): 857-924.‌ DOI: 10.1016/j.jep.2014.05.055##Giridhar, P., Venugopalan, A. and Parimalan, R., 2014. A review on annatto dye extraction, analysis and processing: A food technology perspective. Journal of Scientific Research and Reports, 3(2): 1-22. DOI: 10.9734/JSRR/2014/5870##Hushangi, R., and Hosseini Shekarabi, S.P., 2018. Effect of a peracetic acid-based disinfectant on growth, hematology and histology of juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fishes, 3(1), 10. Doi: 10.3390/fishes3010010##Irobi, O. N., Moo-Yong, M. and Anderson, W.A., 1996. Antimicrobial activity of annatto (Bixa orellana) extract. International Journal of Pharmacognosy, 34 (2): 87-90. DOI: 10.1076/phbi.34.2.87.13201##Kannan, R. R. and Vincent, S. G. P., 2012. Screening of herbal extracts influencing hematopoiesis and their chemical genetic effects in embryonic zebrafish. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 2(2): S1002-S1009. DOI: 10.1016/S2221-1691(12)60351-7##Kop, A. and Durmuz, Y., 2008. The effect of synthetic and natural pigments on the color of the cichlides (Cichlasoma severum; Heckel, 1840). Aquaculture International, 16(2): 117-122. DOI: 10.1007/s10499-007-9130-1##Layiwola, P. J., Linnecar, D. F. C. and Knights, B., 1983. Hydrolysis of the biliary glucuronic acid conjugate of phenol by the intestinal mucus/flora of goldfish (Carassius auratus). Xenobiotica, 13(1): 27-29.##Levy, L. W., Regalado, E., Navarrete, S. and Watkins, R. H., 1997. Bixin and norbixin in human plasma: determination and study of the absorption of a single dose of annatto food color. Analyst, 122(9): 977-980. ##Li, X., Jiang, H., Liu, F., Cai, J., Dai, T., Cao, W. and Jiang, D., 2013. Induction of chilling tolerance in wheat during germination by pre-soaking seed with nitric oxide and gibberlin. Journal of Plant Growth Regulation, 71 (1): 31-40. DOI: 10.1007/s10725-013-9805-8##Liu, K. K., Barrows, F. T., Hardy, R. W. and Dong, F. M., 2004. Body composition, growth performance, and product quality of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fed diets containing poultry fat, soybean/corn lecithin, or menhaden oil. Aquaculture, 238(4): 309-328. DOI: 10.1016/j. aquaculture.2004.03.022##Nikolov, B. and Boyadzieva-Doichinova, D., 2010. Parameters of the red blood cell count in three species of carp fish. Bulgarian Journal of Agricultural Science, 16(3): 307-310.##Park, J. W., 1994. Functional protein additives in surimi gels. Journal of Food Science, 59(3): 525-527. DOI: 10.1111/j.1365-2621.1994.tb05554.x##Quillfeldt, P., Masello, J. F. and Möstl, E., 2004. Blood chemistry in relation to nutrition and ectoparasite load in Wilson’s storm-petrels Oceanites oceanicus. Polar Biology, 27(3): 168-176.‌ DOI: 10.1007/ s00300-003-0572-2##Safari, O. and Atash, M.M.S., 2015. The effects of dietary supplement of annatto (Bixa orellana) seed meal on blood carotenoid content and fillet color stability in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, 437(2015): 275-281. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2014.12.012##Silva, R. B., Almeida, C. R., Chavasco, J. M. and Chavasco, J. K., 2010. Antimycobacterial activity evaluation and MIC determination of liophilizated hydroalcoholic extracts of Bixa orellana L., Bixaceae. Revista Brasileira de Farmacognosia, 20(2): 171-174. DOI: 10.1590/S0102-695X2010000200006##Sinha, K., Chowdhury, S, Saha, P.D. and Datta, S., 2013. Modeling of microwave-assisted extraction of natural dye from seeds of Bixa orellana (Annatto) using response surface methodology (RSM) and artificial neural network (ANN). Industrial Crops and Products, 44 (2013): 165-171. DOI: 10.1016/j.indcrop.2012.04.004##Srivastava, R. K., Shervani, T. A. and Fahey, L., 1999. Marketing, business process, and shareholder value: An organizationally embedded view of marketing activities and the discipline of marketing. Journal of Marketing, 69(4): 168 -179. DOI:##Storebakken, T. and No, H. K., 1992. Pigmentation of rainbow trout. Aquaculture, 100 (1-3): 209-229. DOI: 10.1016/0044-8486(92)90372-R##Teimouri, M., Amirkolaie, A. K. and Yeganeh, S., 2013. The effect of Spirulina platensis as a feed supplement on growth performance and pigmentation of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, 396 (2013): 14-19. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2013.02.009##Tejera, N., Cejas, J. R., Rodríguez, C., Bjerkeng, B., Jerez, S., Bolaños, A. and Lorenzo, A., 2007. Pigmentation, carotenoids, lipid peroxides and lipid composition of skin of red porgy (Pagrus pagrus) fed diets supplemented with different astaxanthin sources. Aquaculture, 270(4): 218-230. DOI: 10.1016/j. aquaculture.2007.01.019##Torrissen, O.J. and Naevdal, G., 1988. Pigmentation of salmonids-variation in fish carotenoids of Atlantic salmon. Aquaculture, 68(4): 305-310. DOI: 10.1016/0044-8486(88)90244-X##Vázquez, G. R. and Guerrero, G. A., 2007. Characterization of blood cells and hematological parameters in Cichlasoma dimerus (Teleostei, Perciformes). Tissue and Cell, 39(3): 151-160. DOI: 10.1016/j.tice.2007.02.004##Venugopalan, A., Girdhar, P. and Ravishankar, G.A., 2011. Food, ethnobotanical and diversified application of Bixa orellana L.: A scope for its improvement through biotechnological mediation. Indian Journal of Fundamental and Applied Life Sciences, 1(4): 9-31.##Yanar, Y., Büyükçapar, H., Yanar, M. and Göcer, M., 2007. Effect of carotenoids from red pepper and marigold flower on pigmentation, sensory properties and fatty acid composition of rainbow trout. Food Chemistry, 100 (1): 326-330.‌ DOI: 10.1016/j.foodchem.2005.09.056## ##

تاثیر پودر گلبرگ زعفران بر عملکرد رشد، تغذیه و فعالیت آنزیم‌‌های آنتی‌‌اکسیدانی لارو ماهی کپور علفخوار (Ctenopharyngodon idella) Effect of saffron petal powder on feed, growth performance and antioxidant enzymes activity of grass carp (Ctenopharyngodon idella) 1 1 مطالعه حاضر به منظور بررسی تاثیر پودر گلبرگ زعفر ان بر رشد و فعالیت آنزیم‌‌های آنتی‌‌اکسیدانی در لارو ماهی کپور علفخوار (Ctenopharyngodon idella) انجام شد. لارو ماهیان با میانگین وزن و طول (03/0± 75/0گرم و 09/0±39/4 سانتی‌‌متر) بصورت مجزا با چهار سطح پودر گلبرگ زعفران در رژیم غذایی به مدت 60 روز تغذیه شدند که شامل P0 (شاهد)،  P1(2 درصد)، P2 (4 درصد) و P3 (6 درصد) بود. 1200 قطعه ماهی در قالب طرح کاملاً تصادفی در 12 مخزن تقسیم شدند (4 تیمار آزمایشی و هر یک با 3 تکرار). پایان آزمایش، پارامترهای رشد (وزن و طول نهایی، نرخ رشد روزانه، وزن بدست آمده، نرخ رشد ویژه و فاکتور وضعیت)، تغذیه (ضریب تبدیل غذایی و کارایی تبدیل غذا) و آنتی‌‌اکسیدان (گلوتاتیون پراکسیداز، سوپرکسید دیسموتاز، مالون‌‌دی‌‌آلدهید و کاتالاز) مورد بررسی قرار گرفتند. پارامترهای رشد پس از تغذیه با پودر گلبرگ زعفران در مقایسه با گروه شاهد افزایش یافت. وزن نهایی و نرخ رشد ویژه در تیمار P2 در مقایسه با تیمار شاهد افزایش معنی‌‌داری داشت درحالیکه ضریب تبدیل غذایی در این تیمار کاهش معنی‌‌داری داشت. علاوه بر این، مقدار مالون‌‌دی‌‌آلدهید و کاتالاز در لاروهای ماهی تغذیه شده با سطوح مختلف مکمل نسبت به گروه شاهد به طور معنی‌‌داری کاهش یافت. افزایش قابل توجهی در پارامترهای گلوتاتیون و سوپرکسید دیسموتاز پراکسیداز در تیمار P3 نسبت به تیمار شاهد مشاهده شد. این تحقیق نشان داد که مقدار بکارگیری 6 درصد پودر گلبرگ زعفران می‌‌تواند به‌‌عنوان یک افزودنی خوراکی در آبزی پروری مورد استفاده قرار گیرد.   2 The present study was conducted to determine the effect of saffron petal powder on the growth and activity of antioxidant enzymes in the grass carp larva (Ctenopharyngodon idella). Fish larva (0.75 ± 0.03 g and 4.39± 0.09 cm) were fed separately with four levels of saffron petal powder diets which were included; P0 (0%), P1 (2%), P2 (4%) and P3 (6%) for 60 days. One thousand two hundred fish were divided randomly into 12 tanks (4 experimental treatments and each with 3 replications). End of the experiment, growth (final weight, final length, daily growth rate, weight gain, specific growth rate and condition factor), feed (food conversion ratio and food conversion efficiency) and Antioxidant (glutathione peroxidase, superoxide dismutase, malonyldialdehyde and catalase) parameters were evaluated. Growth parameters were enhanced following feeding with saffron petal powder compared with the control group. The final weight and specific growth rate in P2 treatment increased significantly compared to control, while there was a significant reduction in food conversion ratio (FCR) in this treatment. In addition, the activities of MDA and Catalase were significantly decreased in the fish larvae fed with different levels of supplement compared to those of the control group. A significant enhancement in the SOD and GPX parameters of P3 compared to control. This research demonstrated that the saffron petal powder of 6% could be used as a promising feed additive in aquaculture. 33 44 2016/05/72018/12/302019/01/202019/01/16 1397/10/26 2019/06/102019/05/212019/07/202019/07/20 1398/4/29 احسان احمدی فر E. Ahmadifar دانشگاه زابل ایران Ehsan.Ahmadifar@gmail.com حسین آدینه H. Adineh دانشگاه گنبد ایران adineh.h@gmail.com رها فدایی راینی R. Fadaee Raienee دانشگاه سراوان ایران fadai@yahoo.com سمیرا مقدم فر S. Moghaddam far دانشگاه علوم کشاورزی گرگان ایران samira123@yahoo.com Ctenopharyngodon idella Saffron Petal Powder Growth Parameters Antioxidant Enzymes ماهی کپور علفخوار پودر گلبرگ زعفران پارامترهای رشد آنزیم‌های آنتی اکسیدانی ##احمدیان کوچکسرایی، ز.، نیازمند، ر. و نجف نجفی، م.، 1395. بهینه‌سازی شرایط استخراج ترکیبات زیست فعال از گلبرگ زعفران به روش سطح پاسخ. پژوهش و نوآوری در علوم و صنایع غذایی، 5 (1): 39- 54. 10.22101/jrifst.2016.06.01.514: DOI##افرازه، ز.، بلندی، م.، خورشیدی، م. و محمدی نافچی، ع.، 1393. بررسی فعالیت آنتی اکسیدانی عصاره های آبی و الکلی (متانول، اتانول) گلبرگ زعفران. علمی پژوهشی زراعت و فناوری زعفران، 2 (3): 231-236. DOI: 10.22048/jsat.2014.7867##ایمان‌پور، م.ر.، سلاقی، ز.، روحی، ز.، بیک‌زاده، آ. و داودی‌پور، ع.ر.، 1394. اثر مکمل گیاهی سنگروویت بر رشد، پارامترهای بیوشیمیایی خون، بازماندگی و مقاومت در برابر تنش شوری بچه‌ماهیان کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله علمی شیلات ایران، ۲۴ (۳): ۱۳-۲۲. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110190##رنجبر، ش. و خدادادی، م.، 1395. تأثیر پودر چای سبز (Camellia sinensis) بر برخی شاخص‌های خونی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) . اکوبیولوژی تالاب، ۸ (۱):۳۹-۵۰.##زرین کمر، ف.، تاجیک، س. و نیکنام، و.، 1396. ارزیابی فعالیت آنتی اکسیدانی و تعیین محتوای فنولی اندامهای زعفران. مجله زیست‌فناوری مدرس،. ۸ (۲): ۱۶۰-۱۷۰.##سالنامه آماری سازمان شیلات ایران، 1396. معاونت برنامه‌‌ریزی و توسعه مدیریت، دفتر برنامه و بودجه، 64 صفحه.##کریمی پاشاکی، ع.، قاسمی، م.، ذریه زهرا، ج.، شریف روحانی، م. و حسینی، س.م.، 1397. تأثیر مصرف خوراکی عصاره آبی- الکلی برگ زیتون در عملکرد رشد و برخی از فراسنجه‌های خونی و ایمنی در بچه ماهی کپور معمولی(Cyprinus carpio). مجله علمی شیلات ایران، 27 (2): 71-80. DOI: 10.220092/ISFJ.2018.116698 ##مهرپاک، م.، بنایی، م.، نعمت‌دوست حقی، ب. و نوری، ا.، 1394. تاثیر حفاظتی ویتامین C و کیتوزان بر شاخص‌های زیستی استرس اکسیداتیو در آبشش ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) در معرض کلراید کادمیوم. مجله علمی شیلات ایران، ۲۴ (۴): ۳۱-۴۴. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110206## یاسمی، م.، سرپناه، ع.، محمودی خوش دره‌‌گی، م. و پارسا، م.، 1396. مطالعه اثر زیره سیاه (Carum carvi) بر برخی شاخص‌های رشد و ترکیبات لاشه بدن بچه فیل ماهی (Huso huso). مجله علمی شیلات ایران، ۲۶ (۲): ۱۶۹-۱۷۲. 10.22092/ISFJ.2017.113495 DOI:##Abbasi Ghadikolaei, H., Kamali, A., Soltani, M. and Sharifian, M., 2017. Effects of Zingiber officinale powder on growth parameters, survival rate and biochemical composition of body in juvenile common carp (Cyprinus carpio). Iranian Journal of Fisheries Sciences, 16(1): 67-85.##Awad, E. and Awaad, A., 2017. Role of medicinal plants on growth performance and immune status in fish. Fish and shellfish immunology, 67: 40-54. DOI: 10.1016/j.fsi.2017.05.034.##Cai, Z., Feng, S., Xiang, X., Mai, K. and Ai, Q., 2016. Effects of dietary phospholipid on lipase activity, antioxidant capacity and lipid metabolism-related gene expression in large yellow croaker larvae (Larimichthys crocea). Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology, 201: 46-52. DOI: 10.1016/j.cbpb.2016.06.007.##Catoni, C., Schaefer, H.M. and Peters, A., 2008. Fruit for health: the effect of flavonoids on humoral immune response and food selection in a frugivorous bird. Functional Ecology, 22(4): 649-654. DOI: 10.1111/j.1365-2435.2008.01400.x.##Chithra, E., Padmanaban, A. M. and Mohan, K., 2016. Potential use of Ganoderma lucidum polysaccharides as a feed supplement in diets on survival and growth performance of the grass carp, Ctenopharyngodon idella. International Journal of Fisheries and Aquatic Studies, 4: 328-333.##Farombi, E. O. O. A., Adelowo, O. and Ajimoko, Y., 2007. Biomarkers of oxidative stress and heavy metal levels as indicators of environmental pollution in African cat fish (Clarias gariepinus) from Nigeria Ogun River. International Journal of Environmental Research and Public Health, 4(2): 158-165. DOI:10.3390/ijerph 2007040011. ##Handeland, S.O., Porter, M., Björnsson, B.T. and Stefansson, S.O., 2003. Osmoregulation and growth in a wild and a selected strain of Atlantic salmon smolts on two photoperiod regimes. Aquaculture, 222(1-4): 29-43. DOI:10.1016/S0044-8486(03)00100-5.##Hosseinzadeh, H. and Younesi, H.M. 2002. Antinociceptive and anti-inflammatory effects of Crocus sativus L. stigma and petal extracts in mice. BMC Pharmacology ## ##and Toxicology , 2(1):1-8. DOI: 10.1186/1471-2210-2-7.##Jakab Sándor, Z., Bor Papp, Z., Ardó, L., Nagy Biro, J. and Jeney, G., 2018. Effectiveness of dietary vitamin supplementation to the performance of common carp (Cyprinus carpio L.) larvae in intensive rearing condition. Aquaculture Research, 49(2): 738-747. DOI:10.1111/ are.13504.##Langseth, L. 1995. Oxidants, antioxidants and disease prevention. International Life Sciences Institute, Brussels, Belgium, pp 360.##McCord, J.M. and Fridovich, I., 1969. Superoxide dismutase an enzymic function for erythrocuprein (hemocuprein). Journal of Biological Chemistry, 244 (22): 6049–6055.##Moshiri, M., Vahabzadeh, M. and Hosseinzadeh, H., 2015. Clinical applications of saffron (Crocus sativus) and its constituents: a review. Drug Research, 65(6): 287-95. DOI: 10.1055/s-0034-1375681.##Naczk, M., Amarowicz, R., Zadernowski, R., Pegg, R.B. and Shahidi, F., 2003. Antioxidant activity of crude phenolic extracts from wild blueberry leaves. Polish Journal of Food and Nutrition Sciences, 12(13):166-9. ##Özmen, B., Özmen, D., Erkin, E., Güner, İ., Habif, S. and Bayındır, O., 2002. Lens superoxide dismutase and catalase activities in diabetic cataract. Clinical Biochemistry, 35: 69–72. DOI: 10.1016/S0009-9120(01)00284-3.##Paglia, D. E. and Valentine, W.N., 1967. Studies on the quantitative and qualitative characterization of erythrocyte glutathione peroxidase. Journal of laboratory and clinical medicine, 70(1): 158-169.##Rahaiee, S., Moini, S., Hashemi, M. and Shojaosadati, S.A., 2015. Evaluation of antioxidant activities of bioactive compounds and various extracts obtained from saffron (Crocus sativus L.): a review. Journal of food science and technology, 52(4):1881-1888. DOI: 10.1007/s13197-013-1238-x.##Sun, S., Chen, L., Ge, X., Qin, J., Jiang, Z. and Li, E., 2013. Effect of copper-enriched Artemia on growth, body composition, antioxidant enzyme activities, and osmotic stress tolerance of Chinese mitten crab Eriocheir sinensis larvae. Journal of Shellfish Research, 32(3):759-766. DOI:10.2983/035.032.0319.##Sun, Z., Tan, X., Ye, H., Zou, C., Ye, C. and Wang, A. 2018. Effects of dietary Panax notoginseng extract on growth performance, fish composition, immune responses, intestinal histology and immune related genes expression of hybrid grouper (Epinephelus lanceolatus♂× Epinephelus fuscoguttatus♀) fed high lipid diets. Fish and shellfish immunology, 73, 234-244. DOI: 10.1016/j.fsi.2017.11.007.##Termentzi, A. and Kokkalou, E., 2008. LC-DAD-MS (ESI+) analysis and antioxidant capacity of Crocus sativus petal extracts. Journal of Medicinal Plant and Natural Product Research, 74(05): 573-581. DOI: 10.1055/s-2008-1074498.##Tokur, B., Ozkutuk, S., Atici, E., Ozyurt, G. and Ozyurt, C.E., 2006. Chemical and sensory quality changes of fish fingers, made from mirror carp (Cyprinus carpio L., 1758), during frozen storage (-18C). Food Chemistry, 99: 335-341. DOI: 10.1016/j.foodchem.2005.07.044.##Van Hai, N., 2015. The use of medicinal plants as immune stimulants in aquaculture: a review. Aquaculture, 446: 88-96. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2015.03.014.##Vulevic, J., Rastall, R.A. and Gibson, G.R., 2004. Developing a quantitative approach for determining the in vitro prebiotic potential of dietary oligosaccharides. FEMS microbiology letters, 236(1):153-159. DOI:10.1111/j.1574-6968.2004.tb09641.x.##Yang, X., Guo, J. L., Ye, J. Y., Zhang, Y. X. and Wang, W., 2015. The effects of Ficus carica polysaccharide on immune response and expression of some immune-related genes in grass carp, Ctenopharyngodon idella. Fish and shellfish immunology, 42(1): 132-137. DOI: 10.1016/j.fsi.2014.10.037.##Yao, J. Y., Shen, J. Y., Li, X. L., Xu, Y., Hao, G. J., Pan, X. Y. and Yin, W. L., 2010. Effect of sanguinarine from the leaves of Macleaya cordata against Ichthyophthirius multifiliis in grass carp (Ctenopharyngodon idella). Parasitology research, 107(5): 1035-1042. DOI: 10.1007/s00436-010-1966-z.## ## ##

تعیین غلظت فلزات سنگین سرب، مس، کادمیوم و جیوه در بافت نرم جلبک قهوه‌ای سارگاسوم (Sargassum ilicifolium) و لابستر صخره‌ای (Panulirus homarus) قبل و بعد از بروز Determination of heavy metals of Lead, Copper, Cadmium and Mercury concentration in the soft tissues of brown algae (Sargassum ilicifolium) and spiny lobster (Panulirus homarus) 1 1 مطالعه حاضر با هدف بررسی و مقایسه میزان تجمع چهار فلز سرب (Pb)، مس (Cu)، کادمیوم (Cd) و جیوه (Hg) در بافت جلبک قهوه‌ای سارگاسوم (Sargassum illicifolium) و لابستر صخره‌ای (Panuliros homaros) در دو بازه زمانی قبل و بعد از مانسون در مناطق نوزادگاهی سواحل شمالی دریای عمان انجام شد. تعداد 50 نمونه از هر گونه‌ در فصول بهار و پاییز سال 1396 از ایستگاه‌های بندر جاسک، صیدگاه درک، بندر پزم، خلیج چابهار و بندر گواتر تهیه شد. آماده‌سازی نمونه‌ها با روش هضم مرطوب و اندازه‌گیری میزان تجمع فلزات با دستگاه جذب اتمی انجام شد. اختلاف معنی‌داری در میزان تجمع فلزات سنگین در شرایط قبل و بعد از مانسون در بافت هر دو گونه مشاهده شد (05/0p<). مقایسه میزان تجمع فلزات در شرایط قبل و بعد از مانسون اختلاف معنی‌داری فقط در میزان تجمع کادمیوم در بافت عضله لابستر صخره‌ای نشان داد (05/0p<). میزان تجمع این فلز بعد از مانسون در مقایسه با شرایط قبل از آن کاهش معنی‌داری داشت (05/0p<). مقایسه نتایج با حد استانداردهای بین‌المللی (WHO، FDA، NHMRC و سازمان استاندارد ملی ایران) نشان داد که سطح هر چهار فلز در بافت جلبک قهوه‌ای سارگاسوم کمتر از حد مجاز استانداردها بود. سطح سرب در بافت لابستر صخره‌ای نیز از تمامی استانداردها پایین­تر بود؛ اما سطوح مس، کادمیوم و جیوه بالاتر از حد مجاز استانداردها اندازه­ گیری شد. درمجموع، نتایج این تحقیق می‌تواند تا حدودی بیانگر وضعیت نامناسب زیستی در مناطق نوزادگاهی سواحل شمالی دریای عمان باشد.   2 The aim of this study was to evaluate the accumulation of Lead, Copper, Cadmium and Mercury in the soft tissues of brown algae (Sargassum ilicifolium) and muscle of spiny lobster (Panulirus homarus) in a five different stations along the northern coasts of the Oman Sea during pre and post monsoon seasons. A number of 50 specimens of each sample were collected from stations of Jask port, Darak port, Pozm port, Chabahar Golf and Goatre port during spring and autumn 2016. Heavy metals were extracted from the muscle tissues using a wet digestion method. Concentration of metals was measured by Atomic Absorption Spectrophotometer. The results showed a significant difference in the accumulation of heavy metals in the tissues of both species during pre and post condition the monsoon between different stations (p<0.05). Comparisons of heavy metal accumulation in the pre and post-monsoon showed a significant difference only in the cadmium accumulation in the muscle of Spiny lobsters (p<0.05). The accumulation of Cadmium in the post-monsoon was lower than the pre-monsoon condition (p<0.05). By comparison between the results obtained from this study to the international standards defined by WHO, FDA, NHMRC and the National Iranian Standards Organization, it was cleared that the concentrations of heavy metals in brown algae soft muscle were lower than permitted levels and so not risky for health. Also, the Concentration of lead in the soft muscle of Spiny lobster is lower than allowable limits. But, the concentration of copper, cadmium and mercury in the muscle of Spiny lobster was much higher than permitted levels. In conclusion, the results of this study could show inappropriate environmental conditions of the northern coasts of the Oman Sea.   45 54 2016/05/72018/12/302019/01/202019/01/162018/12/3 1397/9/12 2019/06/102019/05/212019/07/202019/07/202019/06/1 1398/3/11 علی مهدی آبکنار A.M. Abkener دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندر عباس ایران aliabkenar@gmail.com مازیار یحیوی M. Yahyavi دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندر عباس ایران maziar_yahyavi@yahoo.com امیر هوشنگ بحری A.H. Bahri دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندر عباس ایران Amirbahri52@yahoo.com محمدرضا بیواره M.R. Bivareh دانشگاه گنبد کاووس ایران mohamadrezabivareh@yahoo.com Monsoon Oman Sea Heavy metals Algae Lobster مانسون دریای عمان فلزات سنگین جلبک لابستر ##اسماعیلی ساری، ع.، 1381. آلاینده‌ها، بهداشت و استاندارد در محیط‌زیست. انتشارات نقش مهر، 767 صفحه.##چاکری، م.، سجادی، م.م.، کامرانی، ا. و آقاجاری، ن.، 1394. تعیین میزان غلظت فلزات سنگین سرب و کادمیوم در بافتهای عضله و کبد ماهی طلال (Rastrelliger kanagurta) در آبهای خلیج‌فارس. مجله علمی شیلات، 24(2): 125-115. ##دادور، ا.، شاپوری، م. و سینایی، م.، 1392. بررسی آلودگی فلزات سنگین در بافت‌های ماهیچه و آبشش خرچنگ روح (Ocypode saratan) در سواحل جزر و مدی چابهار. مجله زیست‌شناسی دریا، 5(19): 56-45.##رنجبر، س.، 1389. بررسی و مقایسه تجمع فلزات سنگین سرب و کادمیوم در پوست و عضلات در خرچنگ غالب سواحل صخره‌ای جزیره قشم. پایان‌نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات. ##کوسج، ن.، جعفریان، ح.ا.، رحمانی، ع.ا.، پاتیمار، ع.ا. و قلی‌پور، ح.، 1396. مطالعه و اندازه‌گیری برخی عناصر فلزی (سرب، نیکل، روی، مس و آهن) در بافت عضله میگوی سفید سر تیز (Metapenaeus affinis). مجله علمی شیلات، 26(1): 190-179.##موحد، ع.، دهقان، ع.و.، حاجی حسینی، ر.، اکبرزاده، ص.، زنده بودی، ع.ع.، نفیسی بهابادی، م.، محمدی، م.م.، حاجیان، ن.، پاکدل، ن.، حفظ الله، ع. و ایران پور، د.، 1392. بررسی غلظت فلزات سنگین در بافت خوراکی میگوهای نمونه‌برداری شده از آب‌های سواحل استان بوشهر. فصلنامه طب جنوب، 16(2): 109-100.##Delman, O., Demirak, A. and Balci, A., 2006. Determination of heavy metals (Cd, Pb) and trace elements (Cu, Zn) in sediments and fish of the southeastern Aegean sea (Turkey) by atomic absorption spectrometry. Food Chemistry, 26: 157-162. DOI: 10.1016/j.foodchem.2005.02.009.##Di Giulio, R.T. and Hinton, D.E., 2008. The toxicology of fishes, Crc Press, 1071P. ##FDA, 2011. Fish and Fishery Products Hazards and Controls Guidance. Department of health and human service public health food and drug administration center for food safety and applied nutrition of food safety. Fourth Edition, 476p.##Garcia, E.M., Cruz-Motta, J.J., Farina, O. and Bastidas, C., 2008. Anthropogenic influences on heavy metals across marine habitats in the western coast of Venezuela. Continental Shelf Research, 28: 2757-2766. DOI: 10.1016/j.csr.2008.09.020.##Garrett, R.G., 2000. Natural source of metals of the environment. Human and Ecological Risk Assessment, 6: 945-963. DOI: 10.1080/10807030091124383.##Gibson, R.S., 1994. Content and bioavailability of trace elements in vegetarian diets. The American Journal of Clinical Nutrition, 59: 1223-1232. DOI: 10.1093/ajcn/59.5.1223S.##Guerzoni, S., Frignani, M., Giordani, P. and Frasari, F., 1984. Heavy metals in sediments from different environments of a Northern Adriatic Sea area, Italy. Environmental Geology and Water Sciences, 6 (2): 111-119. DOI: 10.1007/BF02509917. ##Han, B.C., and Hung, T.C., 1990. Green oysters caused by copper pollution on the Taiwan coast. Environmental Pollution, 65: 347-362. DOI: 10.1016/0269-7491 (90)90126-W.##Karadede, H., Oymak, S.A. and Unlu, E., 2004. Heavy metals in mullet, Liza abu, and catfish, Silurus triostegus, from the Ataturk Dam Lake (Euphrates), Turkey. Environmental International, 30: 183-188. DOI: 10.1016/S0160-4120(03)00169-7.##Karthikeyan, R., Vijayalakshmi, S. and Balasubramanian, T., 2007. Monthly variations of heavy metals and metal resistant bacteria from the Uppanar estuary (Southeast coast of India). Research Journal of Microbiology, 2: 50-57. DOI: 10.3923/jm.2007.50.57.##Komarnicki G.J.K., 2005. Lead and cadmium in indoor air and the urban environment. Environmental Pollution, 136: 47-61. DOI: 10.1016/j.envpol.2004.12.006.##Larsen, R., Eilertsen, K.E. and Elvevol, E.O., 2011. Health benefits of marine foods and ingredients. Biotechnology Advances, 29: 508-18. DOI: 10.1016/j.biotechadv.2011.05.017.##Michael, H.C., 2010. Heavy metal. In Encyclopedia of Earth. Edited by Monosson Cleveland C. Washington DC: National Council for Science and the Environment.##Nee, S. and May, R.M., 1992. Dynamics of meta-populations: habitat destruction and competitive coexistence. Journal of Animal Ecology, 61(1): 37-40. DOI: 10.2307/5506.##Oliver, F., Ridd, M. and Klumpp, D., 2002. The use of transplanted cultured tropical oysters (Saccostrea commercialis) to monitor Cd levels in North Queensland Coastal waters (Australia). Marine Pollution Bulletin, 44(10): 1051-1062. DOI: 10.1016/S0025-326X (02)00157-1.##Ozden, O., 2010. Seasonal differences in the trace metal and macrominerals in shrimp (Parapenaus longirostris) from Marmara Sea. Journal of Environmental Monitoring and Assessment, 162: 191-199. DOI: 10.1007/s10661-009-0787-y.##Ozmen, H., KülahcI, F., ÇukurovalI, A. and Dogru, M., 2004. Concentrations of heavy metal and radioactivity in surface water and sediment of Hazar Lake (ElazIg, Turkey). Chemosphere, 55(3): 401-408. DOI: 10.1016/j.chemosphere.2003.11.003.##Pourang, N., Nikouyan, A. and Dennis, J.H., 2005. Trace Element concentrations in fish, surficial sediments and water from northern part of the Persian Gulf. Journal of Environmental Monitoring and Assessment, 109: 293-316. DOI: 10.1007/s10661-005-6287-9.##Rashed, M.N., 2001. Monitoring of environmental heavy metals in fish from Nassar Lake. Environmtal International, 27: 27-33. DOI: 10.1016/S0160-4120 (01)00050-2.##Roesijadi, G., 1994. Behaviour of metallothioneinbound metals in a natunal population of an estuarine mollusc. Marine Environmental Research, 38(3): 147-168. DOI: 10.1016/0141-1136(94)90005-1.##Sadiqe, M., 1992. Toxic metal chemistry in marine environment. Enviriment in Ternational, 389P.##Sorensen, E.M.B., 1991. Editor. Metal Poisoning in Fish. 1st ed. Boca Raton, Florida: CRC Press, 347P.##Turoczy, N., Bradly, D., Andrew, H. and Vijaya, S., 2001. Cadmium, copper, mercury, and zinc concentrations in tissues of the King Crab (Pseudocarcinus gigas) from southeast Australian waters. Environment International, 27(4): 327-334. DOI: 10.1016/S0160-4120 (01)00064-2.##Ugolini, A., Borghini, F., Calosi, P., Bazzicalupo, M., Chelazzi G. and Focardi S., 2004. Mediterranean Talitrus saltator (Crustacea, Amphipoda) as a biomonitor of heavy metals contamination. Marine Pollution Bulletin, 48: 526-532. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2003.10.002.##WHO, 1995. Health risks from Marin pollution in the Mediterranean, Part 1 Implications for policy makers. World Health Organization, Geneva.##Zauke, G.P., Savinov, V.M., Ritterhoff, J. and Savinova, T., 1999. Heavy metals in fish from the Barents Sea (summer 1994). The Science of the Total Environment, 227(2-3): 161-173. DOI: 10.1016/S0048-9697(99)00014-5. ## ##

ارزیابی عوامل مؤثر بر روند خرید و فروش ماهی در بازارهای ماهی بنادر استان گیلان An evaluating of factors affecting on purchase and sale trends in fish markets in ports of Guilan Province 1 1 از آنجایی که مصرف هدف اصلی تولید است و موارد مد نظر تولید­کننده باید از طریق فروشنده همسو با خواسته­های مصرف‌کننده باشد، ارزیابی روند خرید و فروش بازار از اهمیت ویژه­­ای برخوردار است. بنابراین، تحقیق حاضر در سال 1393به ‌منظور ارزیابی روند خرید و فروش در بازار ماهی بنادر استان گیلان (بندر انزلی، آستارا و کیاشهر) با جمع­آوری داده­ها با استفاده از پرسشنامه از 30 ماهی‌فروشی انجام شد. برای تجزیه و تحلیل داده­ها از آمار توصیفی، آزمون فریدمن و آزمون کای دو استفاده شد. نتایج نشان داد، بیشتر فروشندگان ماهی بنادر استان گیلان در رده سنی 40-31 سال (6/26%) قرار دارند. بیشتر آنها سطح تحصیلات راهنمایی (40%) و متوسطه (40%) دارند. حدود نیمی از آنها 20-10 سال سابقه اشتغال داشته و 65% دارای خانواده 3 و 4 نفره می­باشند. 70 درصد فروشندگان بازار ماهی بنادر استان گیلان از امکاناتی همچون یخچال برای عرضه مناسب برخوردارند، اما بیش از 80 درصد آنها فاقد پیشخوان بودند. یافته­های تحقیق نشان داد تازگی و کیفیت به عنوان مهمترین عامل قابل توجه مصرف­کنندگان هنگام خرید ماهی است. دلایل عدم مصرف ماهی بوی نامطبوع، وجود تیغ و دشواری پاک کردن عنوان شد و فروشندگان در مصرف ماهی سالم بودن و در خرید، تازگی را عامل فروش بیشتر می دانستند. اما برای مصرف، دسترسی آسان و علاقه مندی به گونه­ای خاص و در خرید، چینش ماهی در پیشخوان، یخ­گذاری و شن‌پوشی را عامل قابل توجه از سوی مصرف­کنندگان نمی­دانستند. به دلیل بازار مناسب، فروشندگان مشکلی نداشتند و عدم دسترسی به مصرف کننده نهایی، اجاره سنگین و عوارض بالای شهرداری از مشکلات فروشندگان در فروش ماهی در بازارهای بنادر گیلان تشخیص داده نشد. با این وجود ساماندهی بازارهای بنادر استان گیلان و تجهیز آنها به پیشخوان و استانداردهای لازم جهت مدرن سازی بازار سنتی ضروری بنظر می رسد. 2 Since the consumption is the main target of production and desired items of manufactures must be in the same direction with consumer demands through seller, evaluation of purchase and sale trends have specially importance. Therefore, this study was conducted in 1393 in order to evaluate the purchase and sale trend in the fish market of Guilan province’s in Bandar Anzali, Astara, and Kiashahr ports. Using a questionnaire data were collected from 30 fish store. Friedman test and chi-squared test were used to analyze the data from descriptive statistics. The results showed that most (26.6%) of fish sellers in Guilan ports were 31 to 40 years old. Most of them have had middle school or high school educations. About half of them have had 10 to 20 year experience, and 65% had 3 or 4-person families. 70% of fish market sellers in these ports possess facilities such as refrigerators to appropriately supply fish, but over 80% of them were lacking in counters. The research findings showed that sellers believed that the buyer and the consumer should give the most attention to freshness and quality when buying fish. In order to evaluate the priorities on not to be consumed fish by consumers from suppliers’ perspective, the unpleasant smell, the tiny bones and the difficulty of cleaning were first to fourth priorities. Sellers found that the healthiness and freshness were as the most important factors in consuming fish from the viewpoint of consumers. In addition, it was discovered that, regarding sellers, lack of access to final consumers, high rent, high municipal taxes, lack of buyers’ awareness lack of awareness, and low space in stores are not among problems with which fish sellers are faced in the markets of Guilan ports. Therefore, organizing these markets and equipping them with counters and standards and, modernizing the traditional market is an essential factor. 55 65 2016/05/72018/12/302019/01/202019/01/162018/12/32018/07/22 1397/4/31 2019/06/102019/05/212019/07/202019/07/202019/06/12019/04/8 1398/1/19 افشین عادلی A. Adeli دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان ایران afshinadeli@yahoo.com طاهره غفاری T. Ghafari دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان ایران sahere.ghafari@yahoo.com سید مهدی اجاق S.M. Ojagh دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان ایران mahdi_ojagh@yahoo.com محسن واحدی M. Vahedi دانشگاه علوم بهزیستی و توانبخشی ایران mo.vahedi@uswr.ac.ir Guilan Fish market Fish sellers Ports Fisheries گیلان بازار آبزیان فروشندگان ماهی بندر شیلات ##اداره صنایع شیلات و بازاریابی شیلات استان تهران. 1376. بررسی و شناسایی تولید، عرضه و مصرف ماهی در تهران. تهران: شرکت سهامی شیلات ایران.##رحیمی، ع. 1377. بررسی عوامل موثر بر مصرف آبزیان در شهر شیراز. شیراز: اداره کل شیلات استان فارس.##سالنامه آماری شیلات ایران، 1396. معاونت برنامه ریزی و مدیریت منابع. دفتر برنامه ریزی و بودجه سازمان شیلات ایران، 64 صفحه.##صالحی، ح. و مختاری، ع. 1386. بررسی گرایش متخصصین تغذیه به مصرف ماهی در ایران. مجله علمی شیلات ایران، 1: 90-79.##عادلی، ا. 1383. نقش بازاریابی در امنیت غذایی. اقتصاد بازاریابی شیلات. 1: 16- 13.##عادلی، ا. و شعبانپور، ب. 1386. بررسی تغییر رفتار شهروندان تهرانی در مصرف آبزیان. مجله علمی شیلات ایران.2: 126-117.##عادلی، ا. 1387. اصول بازاریابی و بسته بندی آبزیان. نشر بی نهایت، 204 صفحه.##عادلی، ا.، حسنقلی پور، ط.، حسینی، س.ع.، صالحی، ح. و شعبانپور، ب. 1389. شناسایی عوامل موثر در گرایش مصرف کنندگان خانگی به ماهیان پرورشی در تهران. مجله علمی شیلات ایران،3: 96-87.##عادلی، ا. 1393. بررسی برخی عوامل موقعیتی موثر در رفتار مصرف‌کنندگان خانگی ماهی در تهران. نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران، 2: 261-251.##عزیزی، ج. 1385. ارزیابی اقتصادی راهبردهای بازاریابی برنج در استان گیلان. مجله علمی- پژوهشی علوم کشاورزی، 4: 727- 716.##عقیلی، س.م.، صفری، ر.، شعبانپور، ب. و رحمانی، م. 1389. ارزیابی بازار مصرفی آبزیان و فرآورده‌های شیلاتی در شهرستان گرگان. مجله شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد آزاد شهر، 3: 101-91.##قربانی، م. و دهقانیان،س.1382. بررسی کارآیی بازاریابی مرغ گوشتی در استان خراسان مجله علوم و صنایع کشاورزی، 1: 134-125. ##موسی نژاد، م. و مجاوریان، م. 1375. بررسی بازاریابی مرکبات شهرستان بابل. فصلنامه علمی، پژوهشی اقتصاد کشاورزی و توسعه، 13: 117-101.##یوسفی، ع.،و شریعتی، م.ت.،1388. تحلیل جامعه‌شناختی رفتار مصرف ماهی در شهر مشهد مجله مطالعات اجتماعی ایران ،3(3):20-12.##Adeli, A. Hasangholipour, T. Hossaini, A., Salehi, H. and Shabanpour, B., 2011. Status of fish consumption per capita Tehran citizens. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 10: 546-556.##Ali, E.A., Gaya, H.I.M. and Jampada, T.N., 2008. Economic analysis of fresh fish marketing in Maiduguri Gamboru market and Kachalari Alau Dam landing site of northeastern Nigeria. Journal of Agriculture Social Sciences, 4: 23-26.##Chisnall, P.M., 1992. Marketing research. Megraw- Hill Book Company, 937p.##Erdogan, B.E., Mol, S. and Cosansu, S., 2011. Factors influencing the consumption of seafood in Istanbul, Turkey. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 11: 631-639.##Ganowiak, Z.M., 1990. Sanitation in marine food industry. Sikorski, Z. E. (Ed), Seafood: Resources, nutritional composition and preservation. CRC press Inc. Boca Raton, Florida, pp: 211-230. ##Graul, H., 1991. Seafood distribution strategies: Merchandising strategies for retailer in the 90s. Journal of Food Distribution Research, 22: 67-68.##Hanson, G.D., Dunn, J.W. and Rauniyar, G.P., 1996. Marketing characteristics associated with seafood counters in grocery stores. Marine Resources Foundation, 11: 11-22.##Kinsey, J., 1988. Marketing in developing countries. Macminall Education. Ltd, London, UK, 374p.##Kotler, P., 1994. Marketing management: Analysis: planning and control, 5th edition. Prentice Hall International Inc., New Jersey, USA, 792P.##Lawal, W.L. and Idega, E.O., 2004. Analysis of fish marketing in Benu state. Proceedings of the 2004 Annual Conference of the National Association of Agricultural Economists (NAAE) held at ABU zaria, Nov 3rd- 5th, 2004.##Liu, Y., Felicia, K., Devinder, G. and Des, F.G., 2006. Consumer purchase behavior for oyster: An empirical study in some state Capital cities of Australia. International Journal of Consumer Studies, 1: 85-94. Malumbe, D. and Musuka, C.G., 2013. The most preferred and tasty fish in Zambia: a case study of three Copperbelt province markets. Pakistan Journal of Nutrition, 12(11): 960-965.##Mol, S. and Saglam, O.E., 2004. Investigating seafood marketing conditions in some important Turkish seafood market in comparison with European countries. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 4: 65-70.##Msangi, S., Kobayashi, M., Batka, M., Vannuccini, S., Dey, M.M. and National## ##Fish and Seafood Promotion Council, 1988. Analysis of consumer attitudes toward fish and seafood. U.S. Dept. of Commerce. National Oceanic and Atmospheric Admin, Wash, D.C.##Rahman, A.K.A., 1997. Fish marketing in Bangladesh: status and issues In: open water fisheries of Bangladesh. The University, Press Limited, Daka-1000, pp:99-114.##Rippen, T., 1991. Potential for seafood product development: An overview. Journal of Food Distribution Research, 22: 53-56.##Rupp, E.M., Miller, F.L. and Buser, C.F., 1980. Some results of recent surveys of fish and shellfish consumption by age and region of USA resident. Health Physics, 39: 165-175.##Salehi, H., 1999. A strategic analysis of carp culture development in Iran. PhD Thesis, University of Sterling, UK, 328p.##Salehi, H., 2006. An analysis of Consumer market for carp and carp product in Iran. Iranian Fisheries Research Sciences, 5: 83-110.##Sathiadhas, R. and Kumar, N.R., 1994. Price policy and fish marketing system in India. Biology Education, 11: 225-241.##Sen, A.K., Hasan, M.M., Rahman, M.L., Ahsan, M.E., Islam, S. and Haque, M.R.M., 2009. Marketing system of fishes and socioeconomic condition of fish retailers in Madaripur town. Journal of Agroforestry and Environment, 3: 69-72.##Spinks, A. and Bose, Sh., 2002. Factors affecting households seafood purchasing decisions in Aukland, New Zealand: An empirical analysis. International Journal of Customer Studies, 26: 62-70.##Varlik, C., 1987. Balik ve kanatli etlerinin sogutulmasi, dondurulmasi ve depolanmasi, soguk teknigi uygulamalari semineri. Tubitak Marmara Arastirma Merkezi: 1-11.##Verbeke, W. and Brunso, K., 2005. Consumer awareness, perception and behavior to wards farmed versus wild fish. The Economics of Aquaculture with Respect to Fisheries. 95th EAAE Seminar, Civitavecchia Rome, 9-11 December: 237-251.## ##

اثرات برخی پارامترهای فیزیکی- شیمیایی آب و رسوبات بستر بر تراکم و زی توده گونه (Annelida, Spionidae) Streblospio gynobranchiata در جنوب شرقی دریای خزر (منطقه گهرباران) Effects of some physico-chemical parameters of water and substrate sediments on abundance and biomass of Streblospio gynobranchiata (Annelida, Spionidae) in the Southeast of Caspian Sea (Goharbaran) 1 1 این پژوهش در راستای برنامه انتقال آب دریای خزر به فلات مرکزی، در سواحل جنوب شرقی دریای خزر و منطقه گهرباران در سال 93-1392 انجام شد. هدف از این تحقیق بررسی روابط بین برخی پارامترهای فیزیکی-شیمیایی آب و رسوبات بستر  با پراکنش، تراکم و زی‌توده گونه پرتار Streblospio gynobranchiata  در نیم خط ها، عمق، ایستگاه و فصول می باشد. نمونه برداری به صورت ماهانه و در 8 ایستگاه در اعماق 5، 10 و 15 متر در 2 نیم خط عرضی عمود بر ساحل صورت پذیرفت. نتایج نشان داد که ییشترین مقدار تراکم و زی توده بترتیب در نیم خط شرقی با میانگین (±خطای معیار) 1/269±7/1437 عدد در متر مربع و 131/0±711/0 گرم در متر مربع بود. بر اساس آزمون پیرسون، همبستگی مثبتی بین میزان تراکم گونه S. gynobranchiata  با مواد آلی بستر (TOM) و عمق در سطح 01/0، شوری و درجه حرارت آب در سطح 05/0 یافت شد. بررسی تراکم و زیتوده این گونه در فصول مختلف دارای نوساناتی بود، بطوریکه بیشترین تراکم با میانگین (±خطای معیار) 2/185±08/1550 عدد در متر مربع و 09/0±775/0 گرم در متر مربع مربوط به زمستان و در دی ماه ثبت شد و اختلاف معنی داری بین تراکم و زی توده در ماههای مختلف یافت شد (05/0>p) که این امر می‌تواند به دلیل نزدیک شدن به دوره اختلال آب، به دلیل تغییرات فصلی و ایجاد آشفتگی زیستی (Bioturbation) در بستر دریا و رژیم غذایی معلق خواری (deposit feeder) این گونه باشد 2 This study was carried out in line with the Caspian Sea water transportation program to the central plateau on the Southeast shores of the Caspian Sea (Goharbaran region) since 2013-2014. Sampling was performed monthly and there were 8 stations at depths of 5, 10 and 15 meters in 2 transects. The purpose of this study was to investigate the relationships between some physico-chemical parameters of water and total organic matter, distribution, abundance and biomass of Streblospio gynobranchiata (Spionoidae) in the different depths. The results showed that the highest abundance and biomass were in the Eastern transect with mean 1437.1±269.17 ind.m-2 and 0.711±0.131 g.m-2, respectively. A positive correlation was found between the abundance and biomass of S. gynobranchiata with TOM and at 0.01 level, salinity and water temperature at 0.05 level based on Pearson correlation test. The abundance and biomass of S. gynobranchiatain different seasons was fluctuating, with the highest abundance 1550.08±185.22 ind.m-2 and 0.775±0.09 g.m-2 recorded in winter and in January, respectively .So there was a significant difference between the abundance and biomass in different months (p<0.05). This could be due to the approach to the period of water disruption following the seasonal changes and the creation of a bioturbation in the seabed and a deposit feeder species. 67 76 2016/05/72018/12/302019/01/202019/01/162018/12/32018/07/222019/02/8 1397/11/19 2019/06/102019/05/212019/07/202019/07/202019/06/12019/04/82019/06/12 1398/3/22 محمد علی افرائی بندپی M.A. Afraei Bandpei پژوهشکده اکولوژی دریای خزر ایران mafraei@yahoo.com حسن نصراله زاده H. Nasrolahzadeh پژوهشکده اکولوژی دریای خزر ایران hnsaravi@gmail.com غلامرضا سالاروند G. Salarvand پژوهشکده اکولوژی دریای خزر ایران مهدی نادری جلودار M. Naderi پژوهشکده اکولوژی دریای خزر ایران naderi_j@yahoo.com ابوالقاسم روحی A. Roohi پژوهشکده اکولوژی دریای خزر ایران Abundance Biomass Physico-chemical S. gynobranchiata Caspian Sea تراکم زی توده S. gynobranchiata گهرباران دریای خزر ##افرائی بندپی، م.ع.، هاشمیان، ع. و پرافکنده، ف.، a1396. بررسی ساختار بزرگ بی مهرگان کفزی در سواحل جنوبی دریای خزر به منظور استقرار قفس های دریایی. مجله علمی شیلات ایران، 25 (5): 39-23 DOI: 10.22092/ISFJ. 2017.114049##افرائی بندپی، م.ع.، نصراله زاده، ح.، روحی، ا.، مخلوق، ا.، خداپرست، ن.، تهامی، ف.، روشن طبری، م.، نادری،م.، دریانبرد، ر.، رمضانی، ح. و اسلامی، ف.، b1396. بررسی روابط اکولوژیک بین گروههای زیستی فیتوپلانکتون، زئوپلانکتون، شانه دار و ماکروبنتوز در بخش جنوب شرقی دریای خزر (مازندران-گهرباران). مجله علمی شیلات ایران، 26 (5): 31-23. DOI: 10.22092/ISFJ. 2017.114049##فرشچی، م.، نصرالهی، ع. و شکری، م.، 1395. بررسی اثر آلودگی حرارتی بر جوامع ماکروبنتوز دریای خزر. نوزدهمین کنگره ملی و هفتمین کنگره بین المللی زیست شناسی ایران.دانشگاه تبریز، 11-9 شهریور ،1 صفحه##نصراله زاده، ح.، سلیمانی رودی، ع.، مخلوق، ا.، نگارستان، ح. و اسلامی، ف.، 1392. بررسی روابط بین رد ه های غالب کفزیان و برخی پارامترهای محیطی در حوضه جنوبی دریای خزر با به کارگیری آزمون های چند متغیره تناظر متعارفکننده و مولفه ی اصلی. اقیانوس شناسی، 14(4): 68-57 ##هاشمیان،ع. و همکاران.، 1391. بررسی تنوع، پراکنش و فراوانی زی‌توده ماکروبنتوزها در حوضه جنوبی دریای خزر. گزارش نهایی. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 95 صفحه ##Andrew, S.Y. and Ann, L., 1996. Macro fauna: polychaetes, mollusks and crustacean. In: Methods of the examination of organismal diversity in soil and sediment. Edited by Hall, G.S. UNESCO University Press, Cambridge, pp. 118-132.##APHA (American Public Health Association), 2005. Standard method for examination of water and wastewater. Washington. USA: American Public Health Association Publisher, 18thedition, 1113P.##Barnes, R.S.K. and Hugses R.N., 1987. An introduction to marine ecology. Blackwell Scientific Publiciation. London, UK. 339P.##Birshtain, Y.A., L.G. Vinogradov, N.N. Kondakova, M.S. Koun, T.V. Astakhva and Ramanova, N.N., 1968. Atlas of invertebrates in the Caspian Sea. Mosko, 545P.##Bluman, A.G., 1998. Elementary statistics: a step by step approach. USA: Tom Casson publisher, 3rd edition.749P.##Boltacheva, N.A., 2008. Finding of new alien species Streblospio gynobranchiata Rice and Levin, 1998 Polychaeta: Spionidae) in the Black Sea. Marine Ecological Journal, 7(4): 12. (In Russian).##Cinar, M.E., Ergen, Z., Dagli, E. and Petersen, M.E., 2005. Alien species of spionid polychaetes (Streblospio gynobranchiata and Polydora cornuta in Izmir Bay, eastern Mediterranean. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom, 85: 821-827. DOI: 10.1017/s0025315405011768.##Dauvin, J.C., Ruellet, T., Desroy, N. and Janson, A.L., 2007. The ecology quality status of the Bay of Seine and the Seine estuary: use of biotic indices. Marine Pollution Bulletin, 55: 241–257. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2006.04.010. ##Gray, J.S., 1981. The ecology of marine sediments. Cambridge University press. Cambridge. 187P.##Harkantra, S.N., Rodrigues, C.L. and Parulekar A.H., 1982. Macrobenthos of the shelf off northeastern Bay of Bengal. Indian Journal of Marine Sciences, 11:115-121. DOI: 10.1029/2004 GL020247, 2004.##Holme, N.A. and Mclntyre, A.D., 1984. Methods for study of marine benthos, second edition, Oxford Blackwell Scientific Publication, 387P.##Jayaraj, K.A., Jocob, J., and Dineshkumar, P.K., 2008. Infaunal macrobenthic community of soft bottom sediment in a tropical shelf. Journal of Coastal Research, 24(3): 708-718. DOI:10.2112/06-0790.1.##Kashyap, V., 1997. Life of invertebrates (second revised edition). Vikas publishing house PVT Ltd. 1150 pages .Khlebovich W., 1974. Critical salinity of biological processes (in Russianl. L. Nauka, Moscow, 325P).##Kovach, W.L., 2007. MVSP –A Multivariate Statistical Package for Windows, Ver. 3.13. Kovach Computing Services, Pentraeth, Wales, UK. 259P.##Murina, V.V., Selifonova, Zh.P. and Melnik, V.F., 2008. Finding of polychaete Streblospio sp. (Polychaeta: Spionidae) in the Novorossiysk port of the Black Sea. Marine Ecological Journal, 7(1): 46. (In Russian).##Nybakken, J.W., 1995. Marine biology, an ecological approach, Harper Collins college publishers, California, 328-438.##Pearson, T.H., 1980. Marine pollution effects of pulp and paper industry wastes. Helgolander wiss. Meersunters, 33: 340-365.##Rice, A.S. and Levin, L.A., 1998. Streblospio gynobranchiata, a new spionid polychaete species (Annelida: Polychaeta) from Florida and the Gulf of Mexico with an analysis of phylogenetic relationships within the genus Streblospio. Proceeding of the Biological Society of Washington. 111: 694- 707.##Rouse, G.W. and Pleijel, F., 2001. Polychaetes .Oxford University Press. United State .345P.##Selifonova, Zh.P. and Bartsits, L.M., 2018. First occurrence of the invasive alien species Streblospio gynobranchiata (Rice and Levin, 1998) and Polydora cornuta Bosc, 1802 (Polychaeta: Spionidae) on the coast of Abkhazia (Sukhum Bay, Black Sea). Ecologica Montenegrina, 18: 129-132.##Sutherland, T.F., Martin, A.J. and Levings, C.D., 2001. Characterization of suspended particulate matter surrounding a salmonid net-pen in the Broughton Archiplago, British Columbia. ICES Jornal of Marine Science, 58: 404-410. DOI: 10.1006/jmsc. 2000.1043.##Syomin, V.L., Sikorski, A.V. and Savikin, A. I., 2017. Streblospio gynobranchiata (Polychaeta, Spionidae) from the eastern part of Taganrog Bay. Zoological Journal, 96(1): 119–120 (In Russian).##Tagliapietra, D. and Sigovini, M., 2010. Benthic fauna: Collection and identification of macrobenthic invertebrates. NEAR Curriculum in Natural Environment Science, Tree et Environment, 88: 253- 261.##Taheri, M., Seyfabadi, J., Abtahi, B. and Foshtomi, M.Y., 2009. Population changes and reproduction of an alien spionid polychaete, Streblospio gynobranchiata, in shallow waters of the south Caspian Sea. Marine Biodiversity Records, 2:1-5. DOI: 10.1017/S17552 67208000201##Tomassetti, P., and Porrello, S., 2005. Polychaetes as indicators of marine fish farm organic enrichment. Aquaculture International, 13: 109-128.##Vizakat, L., Harkantra, S.N. and Parulekar, A.H., 1990. Population ecology and community structure of subtidal soft sediment dwelling macroinvertebrates of Konkan, west coast of India. Indian Journal of Marine Science, 20: 40-42. DOI: 10.1029/2004 GL020247, 2004.##Whitlatch, R.B., 1980. Foraging in the deposit-feeding polychaete Pectinaria gouldii: testing the energy-optimization hypothesis. American Zoology, 20, 920P. ## ##

ارزیابی خطر فلزات سنگین Cu, Zn, Ni برای سلامت انسان ناشی از مصرف عضله ماهی سیاه‌کولی (Linnaeus, 1754) Vimba vimba persa و ماهی سفید (Kamansky, 1901) Rutilus frisii kutum در تالاب انزلی، دریای خزر Health risk assessment of trace metals Cu, Zn, Ni via the consumption of the prevailing bony fish Rutilus frisii kutum (Kamansky,1901), and Vimba vimba persa (Linnaeus, 1754) in Caspian sea 1 1 فلزات سنگین به‌ عنوان یکی از گروه‌های اصلی آلاینده‌های محیط آبی، در اثر فعالیت‌های طبیعی و انسانی به محیط آبی راه می‌یابند. این فلزات ممکن است در بدن موجودات آبزی، از جمله ماهی تجمع یابند و خطر بالقوه برای سلامتی اکوسیستم و موجودات زنده و بخصوص برای انسان محسوب گردند. در مطالعه حاضر، میزان فلزات سنگین مس، روی و نیکل در بافت عضله‌ ماهی سفید (Rutilus frisii Kutum) و ماهی سیاه‌کولی (Vimba vimba persa) صید شده از سواحل بندر انزلی بوسیله‌ دستگاه طیف‌سنجی جذب اتمی تعیین گردید. میانگین غلظت فلزات سنگین مس، روی و نیکل در بافت عضله ماهی سفید بترتیب 26/1±47/7، 49/1±96/18، 23/0±68/2 و سیاه‌کولی بترتیب 26/2±41/10، 82/6±01/32 و30/0±50/2 میکروگرم برگرم وزن خشک بود. غلظت فلزات سنگین در بافت عضله کمتر از غلظت مجاز استانداردهای بین‌المللی بود، بجز فلز نیکل که از استانداردهای سازمان بهداشت جهانی (WHO) و سازمان غذا و داروی آمریکا (FDA) بیشتر بود. میزان پتانسیل خطر و شاخص خطر برای هر دو گروه سنی بزرگسال و کودکان کمتر از 1 بدست‌ آمد. بنابراین، خطر چندانی برای مصرف‌کنندگان وجود ندارد. با توجه به اهمیت کیفیت ماهی مصرفی برای ساکنین مناطق شمالی ایران، جهت کنترل میزان آلاینده‌ها در آبزیان و جوامع مصرف‌کننده، باید آلاینده‌های منطقه، بخصوص فلزات سنگین به ‌طور مستمر ارزیابی و پایش گردد. 2 Heavy metals are one of the main groups of environmental pollutants; enter the aquatic environment through natural and human activities. These metals may accumulate in aquatic organisms including fish and be a potential danger to the health of the ecosystem and living organisms, especially for human beings. In this study, the amount of heavy metals including copper, zinc, and nickel was investigated in the muscle tissue of Caspian kutum (Rutilus frisii Kutum), and Caspian Vimba (Vimba vimba persa) from Bandar Anzali by atomic absorption. Mean concentrations of heavy metals including copper, zinc and nickel in dry weight of muscle tissue in Caspian kutum were 7.47 ±1.26, 18.96 ±1.49 and 2.68± 0.23, μg/g, respectively. These amounts were 10.41±2.26, 32.01 ±6.82, and 2.50 ± 0.30 ug in dry weight in the muscle of Caspian Vimba for the copper, zinc and nickel, respectively. The concentration of heavy metals in muscle tissue was less than the permitted concentration of international standards, except for nickel that was higher than the World Health Organization (WHO) and Food and Drug Administration (FDA) standards. Potential risk and hazard indicators were less than 1 for both age groups of adults and children, so there is not much danger to consumers. Due to the importance of the quality of fish used for the inhabitants of northern Iran, pollutants in the area, especially heavy metals, should be continuously monitored to control the amount of contaminants in consumer communities. 77 88 2016/05/72018/12/302019/01/202019/01/162018/12/32018/07/222019/02/82018/12/6 1397/9/15 2019/06/102019/05/212019/07/202019/07/202019/06/12019/04/82019/06/122019/07/20 1398/4/29 زهرا فرح بخش Z. Farahbakhsh علوم و فنون دریایی ایران farahbakhsh.zahra71@gmail.com آرش اکبرزاده A. Akbarzadeh علوم و فنون دریایی ایران akbarzadeh@hormozgan.ac.ir ابوالفضل ناجی A. Naji علوم و فنون دریایی ایران abolfazlnaji@gmail.com Potential risk Anzali Wetland Heavy metals Fish Estimated daily intakes پتانسیل خطر تالاب انزلی فلزات سنگین ماهی میزان جذب روزانه ##پورکاظمی، م.، 1387. منابع زنده دریای خزر و کنوانسیون محیط‌زیست. مطالعات اوراسیای مرکزی، دوره اول، شماره 1، ص. 20-1. DOI: 10.22059/JCEP.2018.68030##حسینی، ع.، صنعتی، م.، تهمتن مقدم، ح.،نامجو، ف.، خدادا، ع.، 1395. تجمع زیستی فلزات سنگین سرب، روی و مس در عضله و کبد ماهی شانک زردباله (Acanthopagrus latus (Houttuyn, 1782 در آبهای سواحل دیلم، شمال خلیج فارس. نشریه پژوهش‌های ماهی‌شناسی کاربردی دانشگاه گنبد کاووس. دوره چهارم، شماره اول، ص. 43-57. ##خانی پور، ع.، احمدی، م.، زارع گشتی، ق.، سیف زاده، م.، رفیع‌پور، ف.، 1396. عیین میزان فلزات سنگین مس، نیکل، کبالت و کروم در بافت خوراکی عضله ماهی کاراس طلایی (Carassiu sauratus) تالاب بین المللی بندر انزلی. مجله بوم‌شناسی آبزیان دوره ششم، شماره چهارم، ص. 91-99. ##مشتاق‌زاده، گ .، ناجی، ا.، کوسج، ن. 1396. ارزیابی خطر بعضی از عناصر با پتانسیل آلایندگی بالا در عضله ماهی هوور (Thunnus tonggol) و بیاح (Liza abu) برای مصارف انسانی در استان هرمزگان. مجله علمی شیلات، سال بیست و شش، شماره 6، ص. 33-46. ##Agah, H., Leermakers, M., Elskens, M., Fatemi, S.M.R. and Baeyens, W., 2009. Accumulation of trace metals in the muscle and liver tissues of five fish species from the Persian Gulf. Environmental Monitoring and Assessment, 157(1-4): 499. DOI:10.1007/s10661-008-0551-8 ##Brahman, K.D., Kazi, T.G., Afridi, H.I., Naseem, S., Arain, S.S. and Ullah, N., 2013. Evaluation of high levels of fluoride, arsenic species and other physicochemical parameters in underground water of two sub districts of Tharparkar, Pakistan: a multivariate study. Water Research, 47(3),: 1005-1020. DOI:10.1016/j.watres.2012. 10.042##Bundy, R.R., 1996. Legal Aspects of Protecting the Environment of the Caspian Sea. Review of European Community and International Environmental Law, 5(2): 122-129. DOI:10.1111/j.1467-9388.1996. tb00260.x##Burrows, I.G. and Whitton, B.A., 1983. Heavy metals in water, sediments and invertebrates from a metal-contaminated river free of organic pollution. Hydrobiologia, 106(3): 263-273. DOI:10.1007/BF00008125##Copat, Ch., Arena, G., Fiore, M., Ledda, C., Fallico, R., Sciacca, S. and Ferrante, M., 2013. Heavy metals concentrations in fish and shellfish from eastern Mediterranean Sea: consumption advisories. Food and Chemical Toxicology, 53: 33–37. DOI:10.1016/j.fct.2012.11.038##Cui, L., Ge, J., Zhu, Y., Yang, Y. and Wang, J., 2015. Concentrations, bioaccumulation, and human health risk assessment of organochlorine pesticides and heavy metals in edible fish from Wuhan, China. Environmental Science and Pollution Research, 22(20): 15866-15879.‌ DOI: 10.1007/s11356-015-4752-8##Dhanakumar, S., Solaraj, G. and Mohanraj, R. 2015. Heavy metal partitioning in sediments and bioaccumulation in commercial fish species of three major reservoirs of river Cauvery delta region, India. Ecotoxicology and Environmental Safety, 113: 145-151.‌ DOI:10.1016/j.ecoenv.2014.11.032##Eggleton, J. and Thomas, K.V., 2004. A review of factors affecting the release and bioavailability of contaminants during sediment disturbance events. Environment International, 30(7): 973-980. DOI: 10. 1016/j.envint.2004.03.001##El-Moselhy, K.M., Othman, A.I., El-Azem, H.A. and El-Metwally, M.E.A., 2014. Bioaccumulation of heavy metals in some tissues of fish in the Red Sea, Egypt. Egyptian Journal of Basic and Applied Sciences, 1(2): 97-105. DOI: 10. 1016/j.ejbas.2014.06.001##FAO, 2010. The state of world fisheries and aquaculture 2010. Rome, FAO. 197P. ##Fard, N.J.H., Ravanbakhsh, M., Ramezani, Z., Ahmadi, M., Angali, K.A. and Javid, A.Z., 2015. Determination of mercury and vanadium concentration in Johnius belangerii (C) fish in Musa estuary in Persian Gulf. Marine Pollution Bulletin, 97(1-2): 499-505. DOI:10.1016/j.marpolbul.2015.05.036##FAO. 2016. The state of world fisheries and aquaculture 2016. Contributing to food security and nutrition for all. Rome. 200P. ##Farkas, A., Salanki, J. and Varanka, I., 2000. Heavy metal concentrations in fish of Lake Balaton. Lakes and Reservoirs: Research and Management, 5(4): 271-279. DOI:10.1046/j.1440-1770.2000.00127.x##Ganjavi, M., Ezzatpanah, H., Givianrad, M.H. and Shams, A., 2010. Effect of canned tuna fish processing steps on lead and cadmium contents of Iranian tuna fish. Food Chemistry, 118(3): 525-528. DOI:10.1016/j.foodchem.2009.05.018##Gu, Y.G., Lin, Q., Wang, X.H., Du, F.Y., Yu, Z.L. and Huang, H.H., 2015. Heavy metal concentrations in wild fishes captured from the South China Sea and associated health risks. Marine Pollution Bulletin, 96(1-2): 508-512. DOI:10.1016/ j.marpolbul.2015.04.022##Hou, D., He, J., Lü, C., Ren, L., Fan, Q., Wang, J. and Xie, Z., 2013. Distribution characteristics and potential ecological risk assessment of heavy metals (Cu, Pb, Zn, Cd) in water and sediments from Lake Dalinouer, China. Ecotoxicology and Environmental Safety, 93: 135-144. DOI: 10. 016/j.ecoenv.2013.03.012##Jan, A.T., Azam, M., Siddiqui, K., Ali, A., Choi, I. and Haq, Q.M.R., 2015. Heavy metals and human health: mechanistic insight into toxicity and counter defense system of antioxidants. International Journal of Molecular Sciences, 16(12): 29592-29630.doi.10.3390/ijms161226183. DOI:10.3390/ijms161226183 ##Javed, Z. and Sathyapalan, T., 2016. Levothyroxine treatment of mild subclinical hypothyroidism: a review of potential risks and benefits. Therapeutic Advances in Endocrinology and Metabolism, 7(1): 12-23. DOI:10.1177/2042018815616543##Kaus, A., Schäffer, M., Karthe, D., Büttner, O., von Tümpling, W. and Borchardt, D., 2017. Regional patterns of heavy metal exposure and contamination in the fish fauna of the Kharaa River basin (Mongolia). Regional Environmental Change, 17(7): 2023-2037. DOI: 10.1007/s10113-016-0969-4##Khosravi M, Bahramifar N, Ghasempour M., 2011. Survey of Heavy Metals (Cd, Pb, Hg, Zn and Cu) Contamination in Sediment of Three Sites Anzali Wetland. Ijhe, 4 (2): 223-232. URL: ##Moopam, R., 1983. Manual of oceanographic observations and pollutant analysis methods.##Regional Organization for the Protection of Marine Environment (ROPME) Kuwait, V1##20. 321P. ##Moopam, R., 1999. Manual of oceanographic observations and pollutant analysis methods. ROPME. Kuwait, 1: 20. ##Naji, A. and Ismail, A., 2012. Sediment quality assessment of Klang Estuary, Malaysia. Aquatic Ecosystem Health and Management, 15(3): 287-293. DOI: 10. 1080/ 4634988.2012.706108##Naji, A., Ismail, A. and Ismail, A.R., 2010. Chemical speciation and contamination assessment of Zn and Cd by sequential extraction in surface sediment of Klang River, Malaysia. Microchemical Journal, 95(2): 285-292. DOI:10.1016/ j.microc.2009.12.015##Naji, A., Ismail, A., Kamrani, E., Sohrabi, T., 2014. Correlation of MT levels in livers and gills with heavy metals in wild tilapia (Oreochromis mossambicus) from the Klang River, Malaysia. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 92 (6): 674–679. DOI:10.1007/s00128-014-1243-4##Naji, A., Khan, F.R. and Hashemi, S.H., 2016. Potential human health risk assessment of trace metals via the consumption of marine fish in Persian Gulf. Marine Pollution Bulletin, 109(1): 667-671. DOI:10.1016/j.marpolbul.2016. 05.002##Rajkowska, M., and Protasowicki, M., 2013. Distribution of metals (Fe, Mn, Zn, Cu) in fish tissues in two lakes of different trophy in Northwestern Poland. Environmental Monitoring and Assessment, 185(4): 3493-3502.‌ DOI:10.1007/s10661-012-2805-8##Saei-Dehkordi, S.S., Fallah, A.A. and Nematollahi, A., 2010. Arsenic and mercury in commercially valuable fish species from the Persian Gulf: influence of season and habitat. Food and Chemical Toxicology, 48(10): 2945-2950. DOI:10. 1016/j.fct.2010.07.031##Sharma, B., Singh, S. and Siddiqi, N.J., 2014. Biomedical implications of heavy metals induced imbalances in redox systems. BioMed research international. DOI:10.1155/2014/640754##Sohrabi, T., Ismail, A., and Nabavi, M. B., 2010. Distribution and normalization of some metals in surface sediments from South Caspian Sea. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 85(5): 502-508. DOI: 10. 1007/ s00128-010-0112-z##Storelli, M.M., Barone, G., Cuttone, G., Giungato, D. and Garofalo, R., 2010. Occurrence of toxic metals (Hg, Cd and Pb) in fresh and canned tuna: public health implications. Food and Chemical Toxicology, 48(11): 3167-3170. DOI:10.1016/j.fct.2010.08.013##Turkmen, A., Türkmen, M., Tepe, Y. and Akyurt, I., 2005. Heavy metals in three commercially valuable fish species from Iskenderun Bay, Northern East Mediterranean Sea, Turkey. Food Chemistry, 91(1): 167-172.‌ DOI:10.1016/ j.foodchem.2004.08.008##UNEP, 1984. Sampeling of selected marine organisms and sample preparation for trace metal analysis refrence metal for marine Pollution Studies, No.7, Rev.2: 1-8.##USEPA (US Environmental Protection Agency), 1989. Risk Assessment Guidance for Superfund. Vol. I. Human Health Evaluation Manual (Part A), Interim Final. EPA 540/1–89/002United States Environmental Protection Agency, Washington, DC.##USEPA, 2000. Risk-based concentration table. Office of Health and Environmental Assessment, Washington DC, USA.##USEPA, 2000. Human health risk assessment: Risk-based concentration table.##Usero, J., Izquierdo, C., Morillo, J. and Gracia, I., 2004. Heavy metals in fish (Solea vulgaris, Anguilla anguilla and Liza aurata) from salt marshes on the southern Atlantic coast of Spain. Environment International, 29(7): 949-956.‌ DOI: 10. 1016/S0160-4120(03)00061-8##USEPA, 2015. Connectivity of streams and wetlands to downstream waters: a review and synthesis of the scientific evidence.‌##Wu, X. Y. and Yang, Y. F., 2011. Heavy metal (Pb, Co, Cd, Cr, Cu, Fe, Mn and Zn) concentrations in harvest-size white shrimp Litopenaeus vannamei tissues from aquaculture and wild source. Journal of Food Composition and Analysis, 24(1): 62-65. DOI:10.1016/j.jfca.2010.03.030## ##

مطالعه تغییرات شاخص‌های بیوشیمیایی خون و آنتی‌اکسیدانی کبد در ماهی کفال خاکستری (Mugil cephalus) تغذیه شده با عصاره جلبک قرمز (Jania adhaerens J.V. Lamouroux) Study of blood biochemical and liver antioxidant parameters changes in grey mullet, Mugil cephalus fed with red seaweed Jania adhaerens J.V. Lamouroux extract 1 1 هدف از این مطالعه، بررسی اثر عصاره جلبک قرمز جانیا (Jania adhaerens) بر شاخص­های بیوشیمیایی و فعالیت آنزیم­های آنتی­اکسیدانی ماهی کفال خاکستری بعد از 60 روز بود. 120 قطعه ماهی کفال خاکستری (Mugil cephalus) با میانگین وزنی 01/2± 95/14 (میانگین± خطای معیار) گرم، در 4 تیمار با جیره­های مختلف شامل 0 (تیمار شاهد)، 5 ، 10 و 15 میلی‌گرم عصاره جانیا بر کیلوگرم غذا تقسیم­بندی شدند. پس از 60 روزتغذیه با جیره­های فوق، نتایج نشان داد بین تیمارهای آزمایشی و گروه شاهد از نظر آلبومین و فعالیت آنزیم کاتالاز اختلاف معنی­داری مشاهده نشد (05/0<P). کمترین میزان گلوکز، کلسترول، آلکالین فسفاتاز و آلانین آمینوترانسفراز و بیشترین میزان گلوتاتیون احیاء شده در تیمار حاوی 15 میلی­گرم عصاره جانیا بر کیلوگرم غذا مشاهده شد. تیمار­های حاوی سطوح مختلف عصاره جانیا افزایش معنی­داری را از نظر فعالیت آنزیم­های سوپر اکسیداز دیسموتاز، مالون دی­آلدئید، گلوتاتیون احیاء شده، پروتئین تام و گلبولین در مقایسه با تیمار شاهد نشان دادند (05/0>P).  به طور کلی، نتایج این تحقیق نشان داد که ماهیان کفال تغذیه شده با رژیم غذایی حاوی 10 و 15 میلی­گرم عصاره جانیا بر کیلوگرم غذا منجر به بهبود فعالیت آنزیم­های آنتی اکسیدانی و شاخص­های بیوشیمیایی سرم خون شده و استفاده از 15 گرم عصاره جانیا بر کیلوگرم غذا در جیره غذایی ماهی کفال خاکستری توصیه می­گردد.  2 The objective of the study was to examine the effects of red seaweed Jania adhaerens J.V. Lamouroux extract (JE) on blood biochemical parameters and antioxidant enzyme activity of grey mullet, Mugil cephalus, after 60 days.  Four experimental diets were prepared: JE0 as a control group; JE5, JE10 and JE 15, which included 0, 5, 10 and 15 mg JE kg-1 diet respectively. One hundred twenty grey mullet weighting 14.95± 2.01 g (mean± SE) was randomly divided into four groups corresponding to the different feeding regimes.After 60 days feeding with above diets, No significant differences were evident in albumin and catalase (CAT) between the control group and treatments (P>0.05). The lowest levels of glucose (GLU), cholesterol (CHO), alkaline phosphatase (ALP), alanine aminotransferase (ALT) and the highest glutathione (GSH (activity were shown in JE15. Treatments containing different levels of JE showed significantly different in superoxide dismutase (SOD), MDA, GSH, total protein and globulin compared with control treatment (P<0.05). Overall, the results of the experiment revealed that grey mullet fed with JE10 and JE15 diets showed improvement of the activity of antioxidant enzymes and blood biochemical parameters and use of diet containing 15 mg/kg J.adhaerens extract could suggest for grey mullet. 89 99 2016/05/72018/12/302019/01/202019/01/162018/12/32018/07/222019/02/82018/12/62019/01/9 1397/10/19 2019/06/102019/05/212019/07/202019/07/202019/06/12019/04/82019/06/122019/07/202019/07/20 1398/4/29 پریا اکبری P. Akbary دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار ایران paria.akbary@gmail.com فرزانه دباشی F. Debashi دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار ایران pariaakbary1355@gmail.com رها فدایی راینی R. Fadai Raeini دانشگاه جیرفت ایران pariaakbary1355@gmail.com Antioxidant enzymes. Red marine seaweed Blood biochemical parameters Grey mullet آنزیم‌های آنتی اکسیدانی جلبک دریایی قرمز شاخص‌های بیوشیمیایی خون ماهی کفال خاکستری ##Abdalla, A. and El – Shebly, A., 2004. The role of Antioxidant (Vitamin E) in the Control of Lead (Pb) Pollution and Enhancement of Growth within Nile tilapia (Oreochromis niloticus). International Journal of Applied Research in Veterinary Medicine,7(3): 20 – 26.##Akbary, P. and Amini khoei, Z., 2018. Effect of water-soluble polysaccharide extract from the green alga Ulva rigida on growth performance, antioxidant enzyme activity, and immune stimulation of grey mullet Mugil cephalus.Journal of Applied Phycology, 30: 1345–1353. DOI: 10.1007/s10811-017-1299-8##Alishahi, M., Cheshmeh, B., M., Peyghan, R., Ghorbanpour, M. and Mohammadian, T., 2013. The effect anesthesia with MS222, clove oil and phenoxy ethanol on some immune indexes in common carp (Cyprinus carpio). Journal of Wetland Ecobiology, 5(18):23-32.##Atli, G. and Canli, M., 2010. Response of antioxidante system of freshwater fish Oreochromis niloticus to acute and chronic metal ( Cd, Cu, Cr, Zn, Fe) exposures. Ecotoxicology and Environmental Safety, 73: 1884-1889. DOI:10.1016/j.ecoenv. 2010.09.005##Baluchnejad mojarad, T., Roghani, M. and Mafakheri, M., 2010. Neuroprotective effect of silymarin in 6-hydroxydopamine hemi-parkinsonian rat:involvement of estrogen receptors and oxidative stress. Neuroscience letter, 480: 206-210. DOI: 10.1016/j.neulet.2010.06.038##Benzie, I.F.F. and Strain J.J., 1996. Ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of antioxidant power: The FRAP assay. Analytical Biochemistry. 239, 70–76. DOI:10.1006/abio.1996.0292. ##Biswas, G., Jena, J.K., Singh, S.K., Patmajhi, P. and Muduli, H.K., 2006. Effect of feeding Philasterides dicentrarchi infection. Journal of Aquatic Animal Health, 22:235–243.##Choi, Y.H.; Lee, B.J. and Nam, T.J., 2015. Effect of dietary inclusion of Pyropia yezoensis extract on biochemical and immune responses of olive flounder Paralichthys olivaceus Aquaculture,435: 347-353. DOI:10.1016/j.aquaculture.2014. 10.010.##Du, Z.Y., Liu, Y.J., Tian, L.X., Wang, J.T., Wang, Y. and Liang, G.Y., 2005. Effect of dietary lipid level on growth, feed utilization and body composition by juvenile grass carp (Ctenopharyngodon idella). Aquaculture Nutrition, 11: 139-146. DOI:10.1111/j.1365-2095.2004.00333.x##Ellman, G.L. 1959. Tissue sulfhydryl groups. Archive of Biochemistry and Biophysics, 82: 70–77.##Farzollahi, L., Sarvi Moghanlou, K. and Imani, A., 2019. Single and combined effects of Chicory (Cichorium intybus L.) and Hypericum perforatum extracts on immune indices and antioxidant enzymes activity of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Iranian Journal of Fisheries ##Science,: 1-12. DOI: 10.22092/ISFJ.2019. 119048.##Ghiasi, M., Aghajani, S., Binaii, M., Pourgholam, R. and Amiri, B., 2015. Effect of aqueous extracts of Hypericumperforatum on hemato serological parameters and survival of rainbow trout (Oncorhynchus mikiss) under thermal stress. Scientific Research Journa,. 4(2):91-101.##Gupta, S. and Abu-Ghannam, N., 2011. Bioactive potential and possible health effects of edible brown seaweeds. Trends. Food Science and Technology, 22: 315-326. DOI:10.1016/j.tifs.2011.03.011##Güroy, D., Güroy, B., Merrifield, D.L., Ergün, S., Tekinay, A.A. and Yiğit, M., 2011. Effect of dietary Ulva and Spirulina on weight loss and body composition of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum), during a starvation period. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 95: 320-327. DOI:10.1111/j. 1439-0396.2010.01057.x##Harikrishnan, R., Balasundaram, C. and Bhuvaneswari, R., 2005. Restorative effect of Azadirachta indicab aqueous leaf extract dip treatment on haematological parameter changes in Cyprinus carpio (L.) experimentally infected with Aphanomyces invadans fungus. Journal of Applied Ichthyology, 21: 410–413. DOI:10.1111/j. 1439-0426.2005.00614.x##Hrubec, T.C. and Smith, S.A., 2010. Hematology of fishes. 944-1003p, In: Weiss, D. A., Wardop, K.J., Sixth eds, Veterinary Hematology. Wiley-Blackwell, USA, 1206p.##Khalafalla, M.M. and El-Hais, A.M.A., 2015. Evaluation of Seaweeds Ulva rigida and Pterocladia capillaceaas Dietary Supplements in Nile Tilapia Fingerlings. Journal of Aquaculture Research and Development, 6 (3): 1-5. DOI:10.4172/ 2155-9546.1000312##Koller, A., 1984. Total serum protein. in: Kaplan, L. A. , Pesce, A. J., (eds).Clin Chem, theory, analysis and correlation. St. Louis: Mosby Company. 1316-1319.##Koroluk, M.A., Ivanova L.I., Maiorova, I.G. and Tokarev, V.E., 1988. A method for measuring catalase activity. Laboratornoe delo- Laboratory Practice, 1: 16–19.##Lee, S., Lee, Y.S., Jung, S.H., Kang, S.S. and Shin, K.H., 2003. Anti-oxidant activities of fucosterol from the marine algae Pelvetia siliquosa. Archive Pharmacy Research, 26: 719–722.## Lee, Y.S., Shin, K.H., Kim, B.K. and Lee, S., 2004. Anti-diabetic activities of fucosterol from Pelvetia siliquosa. Archive Pharmacy Research, 27: 1120–1122.##Lermen, C.L., Lappe, R., Crestani, M., Vieira, V.P., Gioda, C.R., Schetinger, M.R.C, Baldisserotto, B., Moraes, G. and Morsch, V.M., 2004. Effect of different temperature regimes on metabolic and blood parameters of silver catfish Rhamdia quelen. Aquaculture, 239: 497–507. DOI:10.1016/j.aquaculture.2004.06.021##Madibana, M.J., Mlambo, V., Lewis, B. and Fouché, C., 2017. Effect of graded levels of dietary seaweed (Ulvasp.) on grow hematological and serum biochemical parameters in dusky Argyrosomus japonicus, sciaenidae. Egyptian Journal of Aquatic Research, 107:1-5. DOI:10.1016/j.ejar.2017.09.003 ##Morshedi, V., Nafisi Bahabadi, M., Sotoudeh, E., Azodi, M. and Hafezieh, M., 2017. Nutritional evaluation of Gracilaria pulvinata as partial substitute with fish meal in practical diets of barramundi (Lates calcarifer) .Journal of Applied Phycology. 2: 1-11.##Plaza, M., Cifuentes, A. and Iba´n˜ez, E., 2008. In the search of new functional food ingredients from algae.Trends Food Science and Technolog,y.19: 31–39. DOI:10.1016/ j.tifs.2007.07.012##Peixoto, M.J., Svendsen, J.C., Malte, H., Pereira, L.F., Carvalho, P., Pereira, R., Gonçalves, J.F. and Ozório, R.O., 2016. Diets supplemented with seaweed affect metabolic rate, innate immune, and antioxidant responses, but not individual growth rate in European seabass (Dicentrarchus labrax). Journal of Applied Phycology, 28:2061–2071. DOI:10.1007/ s10811-015-0736-9##Porfaraj, V., Karami, M., Nezami, S.A., Rafiee, G.R., Khara, H. and Hamidoghli, A., 2013. Study of some biological features of Mullets in Iranian coasts of the Caspian sea. Journal of Utilization and Cultivation of Aquatics, .l2:97-110##Ragaza, J.A., Koshio, S., Mamauag, R.E., Ishikawa, M., Yokoyama, S. and Villamor, S.S., 2015. Dietary supplemental effects of red seaweed Eucheuma denticulatumon growth performance, carcass composition and blood chemistry of juvenile Japanese flounder,Paralichthys olivaceus. Aquaculture Research, 46:647–657. DOI:10.1111/are.12211##Riche, M., 2007. Analysis of refractometry for determining total plasma protein in hybrid striped bass (Morone chrysops×M. saxatilis) at various salinities. Aquaculture, 264: 279-284. 10.1016/j.aquaculture. 2006.12.018. ## Rifai, N., Bachorik, P.S. and Albers, J.J., 1999. Lipids, lipoproteins and apolipoproteins. In: Burtis CA, Ashwood ER, editors. Tietz Textbook of Clinical Chemistry. 3rd ed. Philadelphia: W. B. Saunders Company, 809p.##Rigi ghazagh, H., Aberoumand, A., Ziaeinejad S. and Akbary, P., 2017. Effect of astaxanthin on growth, body chemical composition and some blood serum biochemical indices in grey mullet, Mugil cephalus Linnaeus, 1758. Iranian Scientific Fisheries Journal , 26(2): 15-24## Shahraki, N., 2016. Effect of Padina astraulis Hauck extract on growth, carcass chemical composition, fatty acids and some of liver parameters in grey mullet (Mugil cephalus Linnaeus, 1758) larvae, M.Sc Thesis. of Marine Sciences Department. Chabahar Maritime University. 60p. (In Persian)..##Song, J.W., Jang, J.W., Kim, S.S., Oh, D.H., Cha, J.H. and Lee, K.J., 2011. Effect of dietary supplementation with alga (Hizikiafusiformis and Ecklonia cava) on the non-specific immune responses of parrot fish Oplegnathus fasciatus. Korean Journal of Fisheries Aquatic Science, 44:332-338.. DOI: 10.5657/KFAS. 2011.0332##Taboada, M.C., Millán, R. and Miguez, M.I., 2013. Nutritional value of the marine algae wakame (Undaria pinnatifida) and nori (Porphyra purpurea) as food supplements. Journal of Applied phycology, 25: 1271–1276. DOI: 10.1007/s10811-012-9951-9##Thomas, L., 1998. Clinical Laboratory Diagnostics.1st ed. Frankfurt: TH-Books Verlagsgesellschaft, 652P.##Valente, L.P., Araújo, M., Batista, S., Peixoto, M., Sousa-Pinto, I., Brotas, V., Cunha, L. and Rema, P., 2015. Carotenoid deposition, flesh quality and immunological response of Nile tilapia fed increasing levels of IMTA-cultivated Ulva spp. Journal of applied phycology, 1: 1–11. DOI: 10.1007/s10811-015-0590-9##Vettrivel, C., Pugazhendy, K., Meenambal, M. and Jayanthi, C., 2013. Curative Efficacy of Spirulina against Lead Acetate Toxicity on the Cyprinus carpio Fresh Water Fish. International Journal of Pharmaceutical and Biological Archives, 4(3): 537 – 542##Vizcaíno, A.J., Mendes, S.I., Varela, J.L., Ruiz-Jarabo, I., Rico, R., Figueroa, F.L., Abdala, R., Moriñigo, M.Á., Mancera, J.M. and Alarcón, F.J., 2015. Growth, tissue metabolites and digestive functionality in Sparus aurata juveniles fed different levels of macroalgae,Gracilaria cornea and Ulva rigida. Aquaculture Research, 47:3224–3238. DOI: 10.1111/are.12774##Winterbourn, C., Hawkins, R., Brian, M. and Carrell, R.W., 1975. Estimation red cell superoxidase dismutase activity, Journal of Laboratory chinease in. The Medicine, 85 (2): 337-340.## ##

عملکرد رشد و شاخص‌های خونی در ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss): بررسی اثر اختصاصی پروبیوتیک در مولدین نر Growth performance and hematological indices in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): Exclusive study of probiotic effect on male broodstock 1 1 به منظور بررسی اثر پروبیوتیک بر پارامترهای رشد و شاخص‌های خونی مولدین نر قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss)، 44 قطعه مولد نر با میانگین وزن اولیه 85/33 ± 14/1366 گرم (خطای استاندارد ± میانگین) دوبار در روز به مدت 8 هفته با جیره­‌های حاوی صفر (شاهد)، 5/0، 1 و 2 گرم در کیلوگرم پروبیوتیک بیوآکوا (Bio-Aqua) تغذیه شدند. با توجه به نتایج، بیشترین میانگین وزن نهایی و کمترین ضریب تبدیل غذایی در تیمار 1 گرم در کیلوگرم مشاهده شد و اختلاف معنی‌داری با تیمار شاهد نشان داد (05/0P<). همچنین بیشترین نرخ رشد ویژه و درصد افزایش وزن بدن در تیمار 1 گرم در کیلوگرم مشاهده شد و تفاوت معنی‌داری با تیمار 2 گرم در کیلوگرم و شاهد داشت (05/0P<). با این حال اختلاف معنی‌داری در فاکتور وضعیت بین تیمارها دیده نشد (05/0P>). در شاخص‌های خونی بالاترین تعداد گلبول­های قرمز و بیشترین مقدار هموگلوبین در تیمار 1 گرم در کیلوگرم بدست آمد و اختلاف معنی‌داری با تیمار 2 گرم در کیلوگرم و شاهد نشان داد (05/0P<). بیشترین تعداد گلبول های سفید و درصد هماتوکریت نیز در تیمار 1 گرم در کیلوگرم مشاهده شد و اختلاف معنی داری با تیمار شاهد داشت (05/0P<). در سایر شاخص‌های خونی تفاوتی بین تیمارهای آزمایشی مشاهده نشد (05/0P>). نتایج پژوهش حاضر بیانگر اثرات مناسب پروبیوتیک بر پارامترهای رشد و شاخص‌های خونی مولدین نر قزل‌آلای رنگین‌کمان می­باشد. بر همین اساس توصیه می­شود از پروبیوتیک بیوآکوا به میزان 1 گرم به ازای هر کیلوگرم جیره در جیره غذایی مولدین نر قزل‌آلای رنگین‌کمان استفاده شود. 2 This study was carried out to determine the effect of probiotic on growth performance and hematological indices in male rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) broodstock. For this purpose, broodstock with an average initial weight of 1366.14 ± 33.85 g (mean ± S.E.M) were fed for 8 weeks with diets containing 0, 0.5, 1 and 2 g.kg-1 Bio-Aqua probiotic. At the end of the period, growth performance and blood parameters were evaluated. According to the results, the highest average final weight and the lowest feed conversion ratio was observed in 1 g.kg-1 treatment and showed a significant difference with control treatment (P<0.05). Moreover, the highest specific growth rate and body weight increase were obtained in 1 g.kg-1 treatment and showed significant difference with control and 2 g.kg-1 treatments (P<0.05). The condition factor was not significantly different among treatments (P>0.05). In hematological indices, the highest number of red blood cells and hemoglobin levels were observed in 1 g.kg-1 treatment and showed significant difference with control and 2 g.kg-1 treatments (P<0.05). The highest number of white blood cells and hematocrit percentage were obtained in 1 g.kg-1 treatment and showed significant difference with control treatment (P<0.05). However, significant difference were not observed in other hematological indices among the treatments (P>0.05). The results of present study demonstrated the ability of probiotic to influence on growth parameters and hematological indices in male rainbow trout broodstock. Accordingly, the Bio-Aqua probiotic in 1 g.kg-1 as the best level suggested to using in feed of male rainbow trout broodstock. 101 112 2016/05/72018/12/302019/01/202019/01/162018/12/32018/07/222019/02/82018/12/62019/01/92019/02/26 1397/12/7 2019/06/102019/05/212019/07/202019/07/202019/06/12019/04/82019/06/122019/07/202019/07/202019/06/3 1398/3/13 عرفان اکبری نرگسی E. Akbari Nargesi دانشگاه گیلان ایران erfan-a-n@phd.guilan.ac.i بهرام فلاحتکار B. Falahatkar دانشگاه گیلان ایران falahatkar@guilan.ac.ir محمد محمدی M. Mohammadi دانشگاه گیلان ایران mami.fishery@gmail.com Salmonids Probiotic bacteria Nutrition Hematology Yeast آزاد‌‌ماهیان باکتری زیست‌یار تغذیه خون‌شناسی مخمر ##ایمان پور، م. ر. و روحی، ز.، 1394. اثر پروبیوتیک چند سویه (پریمالاک) بر عملکرد رشد، پارامترهای بیوشیمیایی خون، بازماندگی و مقاومت در برابر تنش شوری در بچه‌ ماهیان سفید (Rutilus kutum). مجله علمی شیلات ایران، 24 (2): 102-95. DOI: 10.22092/ISFJ.2015.103133.##حسینی، ع. ر.، اورجی، ح.، یگانه، س. و شهابی، ح.، 1393. تاثیر پروبیوتیک پدیوکوکوس اسیدی لاکتیسی (Pediococcus acidilactici) روی رشد، فاکتورهای خونی و سرمی در ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius). مجله علمی شیلات ایران، 23 (2): 45-35. DOI: 10.22092/ISFJ.2014.103691.##سهندی، ج.، جعفریان، ح. ا.، سلطانی، م. و ابراهیمی، پ.، 1394. تاثیر مکمل پروبیوتیکی بیفیدوباکتر بر عملکرد رشد و سیسیتم ایمنی لارو ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). نشریه میکروبیولوژی دامپزشکی. 31 (2): 162-151.##عطایی، خ.، جلالی، س. م. ع.، یداللهی، ف. و همت زاده، آ.، 1397. اثرات پروبیوتیک Pediococcus acidilactici بر هماتولوژی، فراسنجه های خونی و هیستوپاتولوژی روده ماهی قزل آلای رنگین کمان. فصلنامه علمی پژوهشی فیزیولوژی و تکوین جانوری. 43 (4): 35-27.##فلاحتکار، ب. 1394. تغذیه و جیره نویسی آبزیان. انتشارات موسسه آموزش عالی علمی کاربردی جهاد کشاورزی. 334 ص.##مهرابی، ی. 1381. بیهوشی و روش عمل تکثیر دوبار در سال ماهی قزل آلای رنگین کمان. انتشارات اصلانی. 100 ص.## ##Adel, M., Lazado, C.C., Safari, R., Yeganeh, S. and Zorriehzahra, M., 2017. Aqualase®, a yeast‐based in‐feed probiotic, modulates intestinal microbiota, immunity and growth of rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Aquaculture Research, 48: 1815-1826. DOI: 10.1111/are.13019.##Ashley, P. 2007. Fish welfare: current issues in aquaculture. Applied Animal Behaviour Science, 104: 199-235. DOI: 10.1016/j.applanim.2006.09.001.##Carnevali, O., de Vivo, L., Sulpizio, R., Gioacchini, G., Olivotto, I., Silvi, S. and Cresci, A., 2006. Growth improvement by probiotic in European sea bass juveniles (Dicentrarchus labrax, L.), with particular attention to IGF-1, myostatin and cortisol gene expression. Aquaculture, 258: 430-438. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2006.04.025.##Carnevali, O., Maradonna, F. and Gioacchini, G., 2017. Integrated control of fish metabolism, wellbeing and reproduction: The role of probiotic. Aquaculture, 472: 144-155. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2006.04.025.##Craig, S.R., Gardner, T.R. and Carnevali, O., 2017. Growout and Broodstock Nutrition. In: Marine Ornamental Species Aquaculture (ed. by Calado, R., Olivotto, L., Planas Oliver, M., Holt, G.J). John Wiley & Sons. Hoboken. pp. 139-158.##Dacie, J. and Lewis, S., 1995. Erythrokinetics. Practical haematology, 8th edition. Churchill Livingstone, Edinburgh. 668P.##da Paixão, A.E.M., dos Santos, J.C., Pinto, M.S., Pereira, D.S.P., de Oliveira Ramos, C.E.C., Cerqueira, R.B., Navarro, R.D. and da Silva, R.F., 2017. Effect of commercial probiotics (Bacillus subtilis and Saccharomyces cerevisiae) on growth performance, body composition, hematology parameters, and disease resistance against Streptococcus agalactiae in tambaqui (Colossoma macropomum). Aquaculture International, 25: 2035-2045. DOI: 10.1007/s10499-017-0173-7.##Das, S., Mondal, K. and Haque, S.J.G., 2017. A review on application of probiotic, prebiotic and synbiotic for sustainable development of aquaculture. Journal of Entomology and Zoology Studies, 5: 422-429. DOI: 10.22271/j.ento.##Dawood, M.A., Koshio, S., Abdel‐Daim, M.M. and Van Doan, H.J., 2018. Probiotic application for sustainable aquaculture. Reviews in Aquaculture, DOI: 10.1111/raq.12272.##Dodoo, C.C., Stapleton, P., Basit, A.W. and Gaisford, S.J., 2018. Use of a water-based probiotic to treat common gut pathogens. International Journal of Pharmaceutics, 556: 136-141. DOI: 10.1016/j.ijpharm.2018.11.075.##Drabkin, D.L., 1945. Hemoglobin, glucose, oxygen and water in the erythrocytes: A concept of biological magnitudes, based upon molecular dimensions. Science, 101: 445-451.##Fazio, F.J. 2018. Fish hematology analysis as an important tool of aquaculture: A review. Aquaculture, 500: 237-242. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2018.10.030.##Firouzbakhsh, F., Noori, F., Khalesi, M.K. and Jani-Khalili, K., 2011. Effects of a probiotic, protexin, on the growth performance and hematological parameters in the Oscar (Astronotus ocellatus) fingerlings. Fish Physiology and Biochemistry, 37: 833-842. DOI: 10.1007/s10695-011-9481-4.##Gatesoupe, F., 1999. The use of probiotics in aquaculture. Aquaculture, 180: 147-165. DOI: 10.1016/S0044-8486(99)00187-8.##Giannenas, I., Karamaligas, I., Margaroni, M., Pappas, I., Mayer, E., Encarnação, P. and Karagouni, E.J., 2015. Effect of dietary incorporation of a multi-strain probiotic on growth performance and health status in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish Physiology and Biochemistry, 41: 119-128. DOI: 10.1007/s10695-014-0010-0.##Hai, N.J., 2015. The use of probiotics in aquaculture. Journal of Applied Microbiology, 119: 917-935. DOI 10.1111/jam.12886.##Hoseinifar, S., Mirvaghefi, A., Amoozegar, M., Merrifield, D. and Ringø, E.J., 2017. In vitro selection of a synbiotic and in vivo evaluation on intestinal microbiota, performance and physiological response of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fingerlings. Aquaculture Nutrition, 23: 111-118. DOI: 10.1111/anu.12373.##Hoseinifar, S.H., Sun, Y., Wang, A. and Zhou, Z.J., 2018. Probiotics as means of diseases control in aquaculture, A Review of current knowledge and future perspectives. Frontiers in Microbiology, 9: 1-18. DOI: 10.3389/fmicb.2018.02429.##Irianto, A., Austin, B., 2002. Probiotics in aquaculture. Journal of Fish Diseases, 25: 633-642. DOI: 10.1046/j.1365-2761.2002.00422.x.##Iwashita, M.K.P., Nakandakare, I.B., Terhune, J.S., Wood, T. and Ranzani-Paiva, M.J.T., 2015. Dietary supplementation with Bacillus subtilis, Saccharomyces cerevisiae and Aspergillus oryzae enhance immunity and disease resistance against Aeromonas hydrophila and Streptococcus iniae infection in juvenile tilapia Oreochromis niloticus. Fish & Shellfish Immunology, 43: 60-66. DOI: 10.1016/j.fsi.2014.12.008.##Izquierdo, M., Fernandez Palacios, H. and Tacon, A., 2001. Effect of broodstock nutrition on reproductive performance of fish. Aquaculture, 197: 25-42. DOI: 10.1016/S0044-8486(01)00581-6.##Kemski, M., Wick, M. and Dabrowski, K.J., 2018. Nutritional programming effects on growth and reproduction of broodstock and embryonic development of progeny in yellow perch (Perca flavescens) fed soybean meal-based diets. Aquaculture, 497: 452-461. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2018.07.001.##Li, X., Ringø, E., Hoseinifar, S.H., Lauzon, H.L., Birkbeck, H. and Yang, D.J., 2018. The adherence and colonization of microorganisms in fish gastrointestinal tract. Reviews in Aquaculture, DOI: 10.1111/raq.12248.##Llewellyn, M.S., Boutin, S., Hoseinifar, S.H. and Derome, N.J., 2014. Teleost microbiomes: the state of the art in their characterization, manipulation and importance in aquaculture and fisheries. Frontiers in Microbiology, 5: 1-17. DOI: 10.3389/fmicb.2014.00207.##Merrifield, D.L. and Ringø, E., 2014. Aquaculture Nutrition: Gut Health, Probiotics and Prebiotics. Wiley-Blackwell, UK, 488P.##Munir, M.B., Hashim, R., Nor, S.A.M. and Marsh, T.L., 2018. Effect of dietary prebiotics and probiotics on snakehead (Channa striata) health: Haematology and disease resistance parameters against Aeromonas hydrophila. Fish & Shellfish Immunology, 75: 99-108. DOI: 10.1016/j.fsi.2018.02.005.##Neumann, N.F., Stafford, J.L., Barreda, D., Ainsworth, A.J. and Belosevic, M., 2001. Antimicrobial mechanisms of fish phagocytes and their role in host defense. Developmental & Comparative Immunology, 25: 807-825. DOI: 10.1016/S0145-305X(01)00037-4.##Oliva‐Teles, A.J., 2012. Nutrition and health of aquaculture fish. Journal of Fish Diseases, 35: 83-108. DOI: 10.1111/j.1365-2761.2011.01333.x.##Ozorio, R.O., Kopecka‐Pilarczyk, J., Peixoto, M.J., Lochmann, R., Santos, R.J., Santos, G., Weber, B., Calheiros, J., Ferraz‐Arruda, L. and Vaz‐Pires, P.J., 2016. Dietary probiotic supplementation in juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) reared under cage culture production: effects on growth, fish welfare, flesh quality and intestinal microbiota. Aquaculture Research, 47: 2732-2747. DOI: 10.1111/are.12724.##Pandiyan, P., Balaraman, B., Thirunavukkarasu, R., George, E.G.J., Subaramaniyan, K., Manikkam, S. and Sadayappan, B., 2013. Probiotics in aquaculture. Drug Invention Today, 5: 55-59.##Rajikkannu, M., Natarajan, N., Santhanam, P., Deivasigamani, B., Ilamathi, J. and Janani, S., 2015. Effect of probiotics on the haematological parameters of Indian major carp (Labeo rohita). International Journal of Fisheries and Aquatic Studies, 2: 105-109.##Ramos, M.A., Gonçalves, J.F., Costas, B., Batista, S., Lochmann, R., Pires, M.A., Rema, P. and Ozório, R.O.A., 2017. Commercial bacillus probiotic supplementation of rainbow trout (Oncorhynchys mykiss) and brown trout (Salmo trutta): Growth, immune responses and intestinal morphology. Aquaculture Research, 48: 2538-2549. DOI: 10.1111/are.13090.##Ray, A., Ghosh, K. and Ringø, E.J., 2012. Enzyme‐producing bacteria isolated from fish gut: a review. Aquaculture Nutrition, 18: 465-492. DOI: 10.1111/j.1365-2095.2012.00943.x.##Reda, R.M. and Selim, K.M.J., 2015. Evaluation of Bacillus amyloliquefaciens on the growth performance, intestinal morphology, hematology and body composition of Nile tilapia, Oreochromis niloticus. Aquaculture International, 23: 203-217. DOI: 10.1007/s10499-014-9809-z.##Ringø, E., Hoseinifar, S.H, Ghosh, K., Doan, H.V. and Beck, B.R., 2018. Lactic acid bacteria in finfish–an update. Frontiers in Microbiology, 9, 1-37. DOI: 10.3389/fmicb.2018.01818.##Sahandi, J., Jafaryan, H., Soltani, M. and Ebrahimi, P., 2018. The use of two Bifidobacterium strains enhanced growth performance and nutrient utilization of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fry. Probiotics and Antimicrobial Proteins, DOI 10.1007/s12602-018-9455-2.##Sutthi, N., Thaimuangphol, W., Rodmongkoldee, M., Leelapatra, W. and Panase, P., 2018. Growth performances, survival rate, and biochemical parameters of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) reared in water treated with probiotic. Comparative Clinical Pathology, 27: 597-603. DOI: 10.1007/s00580-017-2633-x.##Svesbodora, Z., Fravda, D. and Palakova, J., 1991. Unified methods of haematological examination of fish. Research Institute of Fish Culture & Hydrobiology, Vodnany, Czechoslovekia. 331P.##Tavares Dias, M. and Moraes, F.R.D., 2006. Hematological parameters for the Brycon orbignyanus Valenciennes, 1850 (Osteichthyes: Characidae) intensively bred. Hidrobiologica, 16: 271-274.##Tavares‐Dias, M. and Moraes, F.R.D., 2007. Leukocyte and thrombocyte reference values for channel catfish (Ictalurus punctatus), with an assessment of morphologic, cytochemical, and ultrastructural features. Veterinary Clinical Pathology, 36: 49-54. DOI: 10.1111/j.1939-165X.2007.tb00181.x.##Trichet, V.V., 2010. Nutrition and immunity: an update. Aquaculture Research, 41: 356-372. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2009.02374.x.##Vázquez, G.R. and Guerrero, G., 2007. Characterization of blood cells and hematological parameters in Cichlasoma dimerus (Teleostei, Perciformes). Tissue and Cell, 39: 151-160. DOI: 10.1016/j.tice.2007.02.004.##Webster, C.D. and Lim, C., 2002. Nutrient Requirements and Feeding of Finfish for Aquaculture. CABI. New York, 448P. ##

مطالعه آلودگی میکرو پلاستیک‌ها در 5 گونه از ماهیان غالب خلیج چابهار (استان سیستان و بلوچستان) Study of Micro-plastic contamination in five species of prevailing fishes of Chabahar Bay, (Sistan and Baluchestan Province) 1 1 تقاضای جهانی برای استفاده از پلاستیک­ها به علت کاربردهای فراوان آن رو به افزایش می­باشد. حدود 80-60 درصد از زباله‌های محیط دریا را مواد پلاستیکی تشکیل می­دهند. کمبود اطلاعات و پژوهش در مورد وجود آلودگی پلاستیکی و میکروپلاستیکی در آبزیان وجود دارد. بنابراین، در تحقیق حاضر به بررسی فراوانی، توزیع، اندازه، رنگ و نوع میکروپلاستیک‌ها در دستگاه گوارش 5 گونه (10n=) از ماهیان سواحل حوزه خلیج چابهار، دریای عمان در بهار 96 پرداخته شد. تعداد کل میکروپلاستیک‌های یافت شده در گونه­های مورد مطالعه متغیر بود و بیشترین درصد شکل میکرو پلاستیک‌ها در دستگاه گوارش ماهیان متعلق به فیبر (%55)، قطعات (26%)، گلوله (18%) و فیلم (%1) بوده است. بر اساس نتایج حاصل از آنالیز طیف‌سنجی مادون‌ قرمز تبدیل فوریه (FT-IR) از نمونه‌های میکروپلاستیک­های یافت شده نشان داد که شایع­ترین پلیمرهای یافت شده، پلی‌اتیلن (PE)، پلی‌اتیلن ترفتالات (PET) و نایلون بودند. نتایج نشان داد که تمامی ماهیان نمونه­برداری شده از خلیج چابهار حاوی میکروپلاستیک بودند. با توجه به اهمیت آلودگی میکروپلاستیک می­توان با نظارت بر رهاسازی پلاستیک­ها در سواحل گردشگری و ماهیگیری خلیج چابهار به ‌عنوان موضوع پیشنهادی مطالعات آتی ارائه گردد. 2 The global demand for plastics is increasing due to it wide applications. About 60 to 80 percent of the waste of the marine environment belong to plastic class. There is a lack of information and research on the presence of plastic and micro-plastic contamination in aquatic animals, The present study, therefore examined the frequency, distribution, size, color and type of micro-plastic (MPS) in the gastrointestinal tract of 5 species (n =10) from the coasts of the Chabahar Bay, the Oman Sea in spring, 96. The total number of MPS found in the studied species varied and highest percentage of MPS in the gastrointestinal tract of the fish belonged to fiber (55%), fragments (26%) and pellets (18%). The results of the Fourier transform infrared spectroscopy (FT-IR) analysis from suspect samples were shown the microplastic samples were found. The most commonly detected polymers were polyethylene (PE), polyethylene terephthalate (PET) and nylon. The results showed that all fish sampled from Chabahar Bay contained MPS. Considering the importance of MPS pollution, it can be suggested by studying this contamination By monitoring the release of plastics on the shores of tourism and fishing in the Chabahar of bay, as a subject of future studies. 113 123 2016/05/72018/12/302019/01/202019/01/162018/12/32018/07/222019/02/82018/12/62019/01/92019/02/262018/11/19 1397/8/28 2019/06/102019/05/212019/07/202019/07/202019/06/12019/04/82019/06/122019/07/202019/07/202019/06/32019/07/20 1398/4/29 ابوالفضل ناجی A. Naji دانشگاه هرمزگان ایران abolfazlnaji@gmail.com سمیه کرد S. Kord دانشگاه هرمزگان ایران s.kord6525@gmail.com Coastal contamination Micro plastic Chabahar Bay Oman Sea Sistan and Baluchestan Province آلودگی سواحل میکروپلاستیک خلیج چابهار دریای عمان استان سیستان و بلوچستان ##Anastasopoulou, A., Mytilineou, C., Smith, C. J. and Papadopoulou, K.N., 2013. Plastic debris ingested by deep-water fish of the Ionian Sea (Eastern Mediterranean). Deep Sea Research Part I: Oceanographic Research Papers, 74: 11-13.‌ DOI: 10.1016/j.dsr.2012.12.008##Avio, C.G., Gorbi, S. and Regoli, F., 2015. Experimental development of a new protocol for extraction and characterization of microplastics in fish tissues: first observations in commercial species from Adriatic Sea. Marine environmental research, 111: pp.18-26. DOI: 10.1016/j.marenvres.2015.06.014##Barnes, D.K., Walters, A. and Gonçalves, L., 2010. Macroplastics at sea around Antarctica. Marine Environmental Research, 70(2): pp.250-252. DOI: 10.1016/j.marenvres.2010.05.006.##Battaglia, P., Pedà, C., Musolino, S., Esposito, V., Andaloro, F. and Romeo, T., 2016. Diet and first documented data on plastic ingestion of Trachinotus ovatus L. 1758 (Pisces: Carangidae) from the Strait of Messina (central Mediterranean Sea). Italian Journal of Zoology, 83(1): 121-129.‌ DOI: 10.1080/11250003.2015.1114157##Bessa, F., Barría, P., Neto, J.M., Frias, J.P., Otero, V., Sobral, P. and Marques, J.C., 2018. Occurrence of microplastics in commercial fish from a natural estuarine environment. Marine pollution bulletin, 128: pp.575-584.##Besseling, E., Foekema, E.M., Van Franeker, J.A., Leopold, M.F., Kühn, S., Rebolledo, E.B., Heße, E., Mielke, L.J.I.J., IJzer, J., Kamminga, P. and Koelmans, A.A., 2015. Microplastic in a macro filter feeder: humpback whale Megaptera novaeangliae. 9: pp.248-252. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2015.04.007##Boerger, C.M., Lattin, G.L., Moore, S.L. and Moore, C.J., 2010. Plastic ingestion by planktivorous fishes in the North Pacific Central Gyre. Marine pollution bulletin, 60(12): pp.2275-2278. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2010.08.007.##Cole, M., Lindeque, P., Halsband, C. and Galloway, T.S., 2011. Microplastics as contaminants in the marine environment:areview. Marine pollutionbulletin, 62(12): pp.2588-2597. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2011.09.025.##Davidson, K. and Dudas, S. E., 2016. Microplastic ingestion by wild and cultured Manila clams (Venerupis philippinarum) from Baynes Sound, British Columbia. Archives of environmental contamination and toxicology, 71(2): 147-156.‌ DOI:10.1016/j.marpolbul.2011.05.030##Dehaut, A., Cassone, A.L., Frere, L., Hermabessiere, L., Himber, C., Rinnert, E., Riviere, G., Lambert, C., Soudant, P., Huvet, A. and Duflos, G., 2016. Microplastics in seafood: benchmark protocol for their extraction and characterization. Environmental Pollution, 215: pp.223-233. DOI:10.1016/j. marpolbul.2011.09.025.##FAO, 2016. The State of World Fisheries and Aquaculture. Contributing to food security and nutrition for all.##Foekema, E.M., De Gruijter, C., Mergia, M.T., van Franeker, J.A., Murk, A.J. and Koelmans, A.A., 2013. Plastic in north sea fish. Environmental science and technology, 47(15): pp.8818-8824. DOI: 10.1021/es400931b##Gorce, J. P. and Spells, S.J., 2002. Structural information from progression bands in the FTIR spectra of long chain n-alkanes. Polymer, 43(14): 4043-4046.‌ DOI: 10.1016/S0032-3861(02)00169-6.##Hermsen, E., Pompe, R., Besseling, E. and Koelmans, A.A., 2017. Detection of low numbers of microplastics in North Sea fish using strict quality assurance criteria. Marine pollution bulletin, 122(1-2): pp.253-258. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2017.06.051.##Hidalgo-Ruz, V., Gutow, L., Thompson, R.C. and Thiel, M., 2012. Microplastics in the marine environment: a review of the methods used for identification and quantification. Environmental science and technology, 46(6): pp.3060-3075. DOI: 10.1021/es2031505.##Jabeen, K., Su, L., Li, J., Yang, D., Tong, C., Mu, J. and Shi, H., 2017. Microplastics and mesoplastics in fish from coastal and fresh waters of China. Environmental Pollution, 221: pp.141-149. DOI: 10.1016/j.envpol.2016.11.055##Jambeck, J.R., Geyer, R., Wilcox, C., Siegler, T.R., Perryman, M., Andrady, A., Narayan, R. and Law, K.L., 2015. Plastic waste inputs from land into the ocean. Science, 347(6223): pp.768-771. DOI: 10.1126/science.1260352##Karami, A., Romano, N., Galloway, T. and Hamzah, H., 2016. Virgin microplastics cause toxicity and modulate the impacts of phenanthrene on biomarker responses in African catfish (Clarias gariepinus). Environ. Res. 151: 58–70 ., 2016. DOI: 10.1016/j.envres.2016.07.024.##Karami, A., Golieskardi, A., Choo, C.K., Romano, N., Ho, Y.B. and Salamatinia, B., 2017. A high-performance protocol for extraction of microplastics in fish. Science of the Total Environment, 578: pp.485-494. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2016.10.213.##Lusher, A.L., Mchugh, M. and Thompson, R.C., 2013. Occurrence of microplastics in the gastrointestinal tract of pelagic and demersal fish from the English Channel. Marine pollution bulletin, 67(1-2): pp.94-99. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2012.11.028##Lusher, A., 2015. Microplastics in the marine environment: distribution, interactions and effects. In Marine anthropogenic litter (pp. 245-307). Springer, Cham. DOI: 10.1038/srep14947.##Naji, A., Esmaili, Z. and Khan, F.R., 2017a. Plastic debris and microplastics along the beaches of the Strait of Hormuz, Persian Gulf. Mar. Pollut. Bull. 114, 1057e1062. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2016.11.032.## Naji, A., Esmaili, Z., Mason, S.A. and Vethaak, A.D., 2017b. The occurrence of microplastics contamination in littoral sediments of the Persian Gulf, Iran. Environ. Sci. Pollut. Res. 24: 20459e20468. . DOI: 10.1016/j.envpol.2017.12.046.##Nelms, S. E., Galloway, T. S., Godley, B. J., Jarvis, D. S. and Lindeque, P. K., 2018. Investigating microplastic trophic transfer in marine top predators. Environ. Pollut. 1–9, DOI: 10.1016/j.envpol.2018.02.016##Ory, N., Chagnon, C., Felix, F., Fernández, C., Ferreira, J.L., Gallardo, C., Ordóñez, O.G., Henostroza, A., Laaz, E., Mizraji, R. and Mojica, H., 2018. Low prevalence of microplastic contamination in planktivorous fish species from the southeast Pacific Ocean. Marine pollution bulletin, 127: pp.211-216. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2017.12.016##Plastics Europe, Plastics - the Facts., 2016 – An analysis of European plastics production, demandandwastedata.AssociationofPlasticManufacturers,Brusselshttp://www.plasticseurope.org/documents/document/20161014113313plastics_the_facts_2016_final_version.pdf. (Access date: 2017-03-04) (2016).##Romeo, T., Pietro, B., Pedà, C., Consoli, P., Andaloro, F., and Fossi, M. C., 2015. First evidence of presence of plastic debris in stomach of large pelagic fish in the Mediterranean Sea. Marine pollution bulletin, 95(1): 358-361.‌ DOI: 10.1016/j.marpolbul.2015.04.048##Rummel, C.D., Löder, M.G., Fricke, N.F., Lang, T., Griebeler, E.M., Janke, M. and Gerdts, G., 2016. Plastic ingestion by pelagic and demersal fish from the North Sea and Baltic Sea. Marine pollution bulletin, 102(1): pp134-141. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2015.11.043.##Thompson, R.C., Olsen, Y., Mitchell, R.P., Davis, A., Rowland, S.J., John, A.W., McGonigle, D. and Russell, A.E., 2004. Lost at sea: where is all the plastic?. Science, 304(5672), pp.838-838. DOI: 10.1126/science.1094559.##Thompson, R.C., Swan, S.H., Moore, C.J. and Vom Saal, F.S., 2009. Our plastic age. DOI: 10.1098/rstb.2009.0054## ##

بررسی آرایه‌شناسی گونه‌های جنسAlburnoides در ایران با استفاده از زیر واحد 1 ژن سیتوکروم اکسیداز COI Phylogeny of the members of the genus Alburnoides in Iran using COI gene 1 1 تاکنون 12 گونه از کپورماهیان جنس Alburnoides در ایران بر اساس صفات ریخت‌شناسی توصیف‌شده است. ویژگی‌های کلیدی تخصیص داده ‌شده به این گونه‌ها فاقد کارایی لازم جهت شناسایی آنهاست، بنحوی که با استفاده از این ویژگی‌ها نمی‌توان گونه‌های توصیف‌ شده را از یکدیگر تشخیص داد. از اینرو، این تحقیق به ‌منظور بررسی روابط آرایه‌شناسی و اعتبارسنجی گونه‌های توصیف ‌شده با استفاده از نشانگر مولکولی زیر واحد I ژن سیتوکروم اکسیداز (COI) به اجرا درآمد. برای این منظور تعداد 70 نمونه از اعضاء این جنس از 20 ایستگاه مختلف در 6 حوضه آبریز داخلی نمونه‌برداری شد. جهت تعیین تفاوت‌های ژنتیکی و روابط خویشاوندی، DNA نمونه‌ها به روش فنل-کلروفرم استخراج و ژن سیتوکروم COI طی فرآیند PCR تکثیر و پس از خالص‌سازی توالی‌‌یابی شد. نتایج نشان داد که گونه‌های ایرانی جنس Alburnoides به هشت شاخه تقسیم می‌شوند. بیشترین فاصله ژنتیکی K2P درون گونه‌ای، مابین نمونه‌های گونهA. samiii  و کمترین میزان بترتیب در بین نمونه‌های A. coadi، A. holciki، A. parhami و A. nicolausi محاسبه گردید. همچنین بیشترین فاصله ژنتیکی K2P بین‌گونه‌ای به میزان 56/7 بین دو گونه A. qanati و A. holciki و کمترین میزان به مقدار 33/0 بین دو گونه A. parhami و A. holciki بدست آمد. با توجه به نتایج، به‌‌ دلیل تمایز اندک ژنتیکی بر اساس ژن COI، اعتبار گونه‌های A. parhami،A. coadi  و A. nicolausi تائید نگردید و پیشنهاد می‌‌گردد که بترتیب مترادف گونه‌های A. holciki، A. namaki و A. idignensis در نظر گرفته شوند. 2 Up to now, twelve species of the genus Alburnoides belonged to Cyprinidae have been described from Iranian inland water solely based on the morphological characteristics. The described key characters for these species have no efficiency for their discrimination, and cannot help their precise diagnosis. Therefore, this study was conducted to study the phylogenetic relationship and verification of these species based on COI gene. For this purpose, 70 specimens of Alburnoides species were collected from 20 sampling sites in six Iranian inland water basins. To determination of inter- and intra-species genetic differences, the DNA of sampled specimens were extracted based on Phenol-chloroform method, their COI gene were amplified using thermal cycler and were sequenced after purifications. Based on the results, the members of the Iranian species of the genus Alburnoides were divided into seven linages. Maximum and minimum intra-species genetic distances based on K2P criterion were found between the populations of A. samiii, and A. coadi, A. holciki, A. parhami and A. nicolausi, respectively. Furthermore, maximum and minimum inter-species genetic distances based on K2P criterion were calculated between A. qanati and A. holciki (7.56), and A. parhami and A. holciki (0.33). Based on the results of this study using COI gene, the validity of A. parhami, A. coadi and A. nicolausi were not confirmed and it is suggested to be synonym of A. holciki, A. namaki and A. idignensis, respectively. 125 136 2016/05/72018/12/302019/01/202019/01/162018/12/32018/07/222019/02/82018/12/62019/01/92019/02/262018/11/192017/08/10 1396/5/19 2019/06/102019/05/212019/07/202019/07/202019/06/12019/04/82019/06/122019/07/202019/07/202019/06/32019/07/202019/06/17 1398/3/27 سهیل ایگدری S. Eagderi دانشگاه تهران ایران soheil.eagderi@ut.ac.ir آرش جولاده رودبار A. Jouladeh-Roudbar دانشگاه تهران ایران soheil.eagderi@yahoo.com جلیل ایمانی هرسینی J. Imani Harsini واحد علوم و تحقیقات دانشگاه آزاد اسلامی تهران ایران imanijalil@yahoo.com محسن رستمی M. Rostami واحد علوم و تحقیقات دانشگاه آزاد اسلامی تهران ایران m.rostami7090@gmail.com Spirlin Morphological variation Genetic variation Taxonomy Iran ماهی خیاطه تنوع ریختی تنوع ژنتیکی آرایه‌‌شناسی ایران ##جعفری، ا.، هدایتی، س.ع.ا.، زین العابدینی، م.، پورباقر، ه.، قربانی، ر.، عبدالحی، ح.، 1398. بررسی تغییرات ریختی ماهی کپور معمولی Cyprinus carpio Linnaeus, 1758 در طول سواحل جنوبی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران، 28(1): 163-159. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.118388##جولاده رودبار، آ.، رحمانی، ح.، وطن دوست، ص.، نجفی. م. و رحیمی، ق.، 1394. بازنگری آرایه شناسی چهار گونه توصیف شده از جنس Alburnoides با استفاده از ویژگی‌های ریخت ‌شناختی. بوم‌‌شناسی آبزیان، 5(2): 17-1.##جولاده رودبار، آ. و ایگدری، س.، 1395. بررسی روابط تبارشناسی گونه Alburnoides namaki Bogutskaya and Coad, 2009 با استفاده از ژن COI. ژنتیک نوین، 11(4): 538-531.##حاجی‌‌پور، ن.، سیف ریحانی، م.ر.، اسمعیل نژاد، ب.، 1398. بررسی تغییرات رژیم غذایی ، شاخص‌‌های تغذیه‌‌ای و درصد بروز ایکتیوفتریوزیس در ماهی خیاطه (Alburnoides bipunctatus) رودخانه کلیبرچای. مجله علمی شیلات ایران، 28(1): ۱۵8-۱۵5. DOI: 10.22092/ISFJ.2018.117958##حقیقی، ا.، ستاری، م.، سالار درافشان، س. و کیوانی، ی.، 1393. ساختار ژنتیکی ماهی خیاطه (Alburnoides echiwaldii) در رودخانه‌های کرگان‌رود و چالوس. تاکسونومی و بیوسیستماتیک، 6(19): 14-1. ##نیک‌‌مهر، ن.، ایگدری، س. و پورباقر، ه.، 1397. بررسی جایگاه آرایه شناسی گاوماهی ایرانی Ponticola iranicus (Teleost, Gobiidae) براساس زیر واحد 1 ژن سیتوکروم اکسیداز COI. نشریه شیلات، 71 (2): 117-112.##هاشم‌‌زاده، ا.، عبدلی، ا.، پوراحمد، ر.، پوریا، م. و گلزاریان پور، ک.، 1393. تهیه بارکد ژنتیکی ماهیان جنس Capoeta در سر شاخه های کارون و دجله. نشریه شیلات، 9(2): 178-171.##Bogutskaya, N. and Coad, B., 2009a. Alburnoides qanati, a new species of cyprinid fish from southern Iran (Actinopterygii, Cyprinidae). ZooKeys, 7(13): 67-74. DOI: 10.3897/zookeys.579.7665##Bogutskaya. N. and Coad, B., 2009b. A review of vertebral and fin-ray counts in the genus Alburnoides (Teleostei: Cyprinidae) with a description of six new species. Zoosystematica Rossica, 18 (1): 126-73.##Esmaeili, H., Coad, B., Gholamifard, A., Nazari, N. and Teimory, A., 2010. Annotated checklist of the freshwater fishes of Iran. Zoosystematica Rossica, 19 (2): 361-86.##Esmaeili, H.R., Sayyadzadeh, G., Eagderi, S. and Abbasi, K., 2018. Checklist of freshwater fishes of Iran FishTaxa, 3(3): 1-95.##Freyhof, J., Esmaeili, H.R., Sayyadzadeh, G. and Geiger, M., 2014. Review of the crested loaches of the genus Paracobitis from Iran and Iraq with the description of four new species (Teleostei: Nemacheilidae). Ichthyological Exploration of Freshwaters, 25(1):11-38.##Hall, T., 1999. BioEdit software, version 5.0. 9. North Carolina State University, Raleigh, NC.##Hubert, N., Hanner, R., Holm, E., Mandrak, E., Taylor, E., Burridge, M., Watkinson, D., Dumont, P., Curry, A., Bentzen, P. and Zhang, J., 2008. Identifying Canadian freshwater fishes through DNA barcodes. PLoS One, 3(6): e2490. DOI: 10.1371/journal.pone.0002490##Jouladeh-Roudbar, A., Eagderi, S. and Esmaeili, H., 2015a. Fishes of the Dasht-e Kavir basin of Iran: an updated checklist. International Journal of Aquatic Biology, 3 (4): 263-73.##Jouladeh-Roudbar, A., Eagderi, S., Esmaeili, H.R., Coad, B.W., Bogutskaya, N., 2015b. A molecular approach to the genus Alburnoides using COI sequences data set and the description of a new species, A. damghani, from the Damghan River system (the Dasht-e Kavir Basin, Iran) (Actinopterygii, Cyprinidae). ZooKeys, 579: 157–181. DOI: 10.3897/zookeys.579.7665.## ##Karakousis, Y., Triantaphyllidis, C. and Economidis, P.S., 1991. Morphological variability among seven populations of brown trout, Salmo trutta L., in Greece. Journal of fish Biology, 38(6): 807-17. DOI: 10.1111/j.1095-8649.1991.tb03620.x##Kumar, S., Nei, M., Dudley, J. and Tamura, K. 2008. MEGA: a biologist-centric software for evolutionary analysis of DNA and protein sequences. Briefings in Bioinformatics, 9(4): 299-306. DOI: 10.1093/bib/bbn017##Levin, B. A., Simonov, E., Matveyev, M. P., Artaev, O. N., Mustafayev, N. J., Pashkov, A. N. and Roubenyan, H. R., 2016. DNA barcoding of the fishes of the genus Alburnoides (Actinopterygii, Cyprinidae) from Caucasus. Mitochondrial DNA Part A, 1-7. DOI: 10.1080/24701394.2016.1238900##Mayr, E., 1963. Animal species and evolution. Cambridge, Massachusetts: Belknap Press of Harvard University Press.##Mousavi-Sabet, H., Anvari Far, H. and Azizi, F., 2015a. Alburnoides tabarestanensis, a new species of riffle minnow from the southern Caspian Sea basin in Iran (Actinopterygii: Cyprinidae). Aqua, International Journal of Ichthyology, 21(3): 144-157.##Mousavi-Sabet, H., Vatandoust, S. and Doadrio, I., 2015b. Review of the genus Alburnoides Jeitteles, 1861 (Actinopterygii, Cyprinidae) from Iran with description of three new species from the Caspian Sea and Kavir basins. Caspian Journal of Environmental Sciences, 13 (4): 293-331.##Nylander, J., 2015. MrModeltest v2. 3 software. Evolutionary Biology Center, Uppsala University, Sweden. ##Rambaut, A., 2015. FigTree version 1.4. 0. Available at http://tree. bio. ed. ac. uk/software/figtree.##Ronquist, F., Teslenko, M., Mark, P., Ayres, L., Darling, A., Höhna, S., Larget, B., Liu, L., Suchard, A. and Huelsenbeck, P., 2012. MrBayes 3.2: efficient Bayesian phylogenetic inference and model choice across a large model space. Systematic Biology, 61(3): 539-42.##Seifali, M., Arshad, A., Moghaddam, F., Esmaeili, H., Kiabi, B., Daud, S. and Aliabadian, M., 2012. Mitochondrial Genetic Differentiation of spirlin (Actinopterigii: cyprinidae) in the south Caspian Sea basin of Iran. Evolutionary Bioinformatics Online, 8: 219-227. DOI: 10.4137/EBO.S9207##Stamatakis, A., 2014. RAxML version 8: a tool for phylogenetic analysis and post-analysis of large phylogenies. Bioinformatics, 30(9): 1312-3. DOI: 10.1093/bioinformatics/btu033##Swain, P. and Foote, J., 1999. Stocks and chameleons: the use of phenotypic variation in stock identification. Fisheries Research, 43 (1): 113-28.##Turan, C., 2006. The use of otolith shape and chemistry to determine stock structure of Mediterranean horse mackerel Trachurus mediterraneus (Steindachner). Journal of Fish Biology, 69:165-80. DOI: 10.1111/j.1095-8649.2006.01266.x##Ward, D., Zemlak, S., Innes, H., Last, R. and Hebert, D., 2005. DNA barcoding Australia's fish species. Philosophical Transactions of the Royal Society of London, Biological Sciences, 360 (1462): 1847-57. DOI: 10.1098/rstb.2005.1716## ##

انتقال و بیان ژن GnRH نوترکیب ماهی در باکتری BL21 E. coli به منظور تولید هورمون نوترکیب Transformation and gene expression study of recombinant fish GnRH in E. coli BL21 in order to produce recombinant hormone 1 1 هورمون آزاد کننده گنادوتروپین (GnRH) یک نوروپپتید موثر در تنظیم فرآیند تولیدمثل در مهره‌‌داران می‌‌باشد. آنالوگ‌‌های مختلفی از این هورمون به فرم سنتتیک با نیمه عمرهای مختلف برای تکثیر مصنوعی آبزیان در بازار موجود می‌‌‌‌باشند. هدف از این تحقیق بررسی بیان GnRH نوترکیب در باکتری  Escherichia coliسویه  BL21به منظور تولید هورمون نوترکیب می‌‌‌‌باشد. در این تحقیق، توالی DNA مربوط به پپتید GnRH طراحی شده در وکتور بیانی pET28a+ کلون شد. واکنش زنجیره‌‌ای پلیمراز (PCR) به کمک آغازگرهای اختصاصی صحت کلونینگ را نشان داد. وکتور نوترکیب pET28a+/GnRH به باکتری بیانی E. coli BL21 (DE3) انتقال داده شد و صحت انتقال با کلونی PCR سنجیده شد و باند 186 جفت بازی حاصل از تکثیر ژن بر ژل آگارز مشاهده گردید. سپس برای بررسی بیان، باکتری نوترکیب در محیط Luria Bertani (LB) حاوی آنتی‌‌بیوتیک کانامایسین در دمای 37 درجه سانتی‌گراد کشت داده شد و با غلظت یک میلی‌‌مولار Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranpside (IPTG) القاء شد و بعد از القاء، باکتری در دو دما و زمان مختلف شامل 6 ساعت در دمای 37 درجه سانتی‌‌گراد و 24 ساعت در دمای 20 درجه سانتی‌‌گراد قرار گرفت. میزان بیان به کمک الکتروفورز ژل SDS-PAGE تعیین شد. بررسی SDS-PAGE نشان‌‌دهنده بیان پپتید بوده و باند هشت کیلودالتونی مربوط به پپتید مورد نظر بر روی ژل قابل مشاهده بود. همچنین میزان بیان پپتید در دمای 20 درجه سانتی‌‌گراد بیشتر از دمای 37 درجه سانتی‌‌گراد می‌‌باشد. با توجه به نتایج بدست آمده از تحقیق حاضر می‌‌توان نتیجه گرفت که هورمون GnRH قابلیت تولید در سیستم بیانی پروکاریوتی همانند اشریشیاکلی را دارد و پس از خالص سازی می‌‌تواند به‌‌عنوان یک همولوگ خاص برای درمان اختلالات تولید مثلی در آبزیان معرفی گردد. 2 Gonadotropin releasing hormone (GnRH) is a neuropeptide known to regulate reproduction in vertebrates. Different analogues of synthetic GnRH are used to induce final sexual maturation in fish breeders. The purpose of this research was to evaluate the expression of recombinant GnRH (rGnRH) in Escherichia coli BL21 to produce recombinant hormone. In the present research, the sequence of DNA related to designed fish GnRH was cloned in pET28a+. The cloning was confirmed by polymerase chain reaction (PCR) and specific primers. Recombinant vector pET28a+/GnRH was transformed into the expression host, E.coli BL21 (DE3). The transformation was confirmed using colony PCR. The transformed bacteria were cultured in LB medium containing kanamycin antibiotic at 37°C at overnight then, induced with 1 mM IPTG. After induction, the bacteria were cultured in two different times and temperatures including 37°C for 6 h and 20° C for 24 h. The protein expression was determined by SDS-PAGE analysis. A band of expected size (186 base pair) of amplification from the gene transmitted to the bacteria was detected on the agarose gel. The 8-kD band of peptide expression was observed in the SDS-PAGE gel and the expression level in 20° C for 24 h was higher than 37° C for 6 h.  The result showed that GnRH from fish had the possibility of producing in the prokaryotic expression system and after optimization, it can be introduced as a specific homologous for the treatment of reproductive disorders in fish. 137 147 2016/05/72018/12/302019/01/202019/01/162018/12/32018/07/222019/02/82018/12/62019/01/92019/02/262018/11/192017/08/102019/02/26 1397/12/7 2019/06/102019/05/212019/07/202019/07/202019/06/12019/04/82019/06/122019/07/202019/07/202019/06/32019/07/202019/06/172019/07/20 1398/4/29 صدیقه محمدزاده S. Mohammadzadeh دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری ایران mohammadzadeh.sedigheh@yahoo.com سکینه یگانه S. Yeganeh دانشکده علوم دام و شیلات دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری ایران فاطمه مرادیان F. Moradian دانشکده علوم دام و شیلات دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری ایران بهرام فلاحتکار B. Falahatkar دانشگاه گیلان ایران سلواین میلا S. Milla دانشگاه لورین فرانسه GnRH E.coli Aquatic animals Hormonal induction GnRH اشرشیاکلی القای هورمونی آبزیان ##سوداگر، م.، صدق‌‌پورثابت، س.، ذکریائی، ح. و دادگر، ش.، 1395. بررسی اثر هورمون‌‌های اواپریم (sGnRHa + دامپریدون)، اوافکت (آنتاگونیست دوپامین + GnRH) و عصاره هیپوفیز بر بازده تکثیر مصنوعی ماهی سفید (Rutillus kutum). پژوهش‌‌های ماهی شناسی کاربردی. دوره چهارم، شماره سوم، صفحات 53 تا 64. ##کلباسی، م.ر.، لرستانی، ر. و غفله مرمضی، ج.، 1391. تاثیر هورمون‌‌های LHRHA2 و عصاره هیپوفیز کپور معمولی بر برخی از شاخص‌‌های لقاح و کیفیت اسپرماتوزوای ماهی بنی (Barbus sharpeyi). مجله علمی شیلات ایران. سال 21، شماره دوم، صفحات 99 تا 104.##محمدی، ن.، کریمی، ج.، شباب، ن.، نادری، س.، یادگارآذری، ر. و سعیدی‌‌جم، م.، 1393. کلونینگ و بررسی بیان ژن کد کننده BMP-2 انسانی در باکتری E. coli به منظور تولید یک داروی نوترکیب. مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی و خدمات درمانی همدان. دوره 21، شماره سوم، صفحات 196 تا 202.##Aizen, J., Meiria, I., Tzchoria, I., Levavi-Sivan, B. and Rosenfeld, H., 2005. Enhancing spawning in the grey mullet (Mugil cephalus) by removal of dopaminergic inhibition. General and Comparative Endocrinology, 142: 212-221. DOI: 10.1016/j.ygcen.2005.01.002##Alfasi, S.N., 2011. Physiological aspects underpinning recombinant protein production in Escherichia coli. Birmingham, University of Birmingham,##Barrero, M., Small, B.C., Dabramo, L.R., Waldbieser, G.C., Hanson, L.A. and Kelly, A.M., 2008. Effect of carp pituitary extract and luteinizing hormone releasing analog hormone on reproductive indices and spawning of 3-year-old channel catfish. North American Journal of Aquaculture, 70: 138-146. DOI: org/10.1577/A06-072.1##Constantinos, C., Mylonas, C. and Zohar, Y., 2001. Use of GnRHa-delivery systems for the control of reproduction in fish. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 10: 463-491.##Falahatkar, B., Poursaeid, S., Langroudi, H.E., Efatpanah, I., Meknatkhah, B. and Rahmati, M., 2013. Spawining induction in Kutum, Rutilus frisii kutum (Kamensky), with different hormones: Analysis of hormone profiles and induced spawning success. Archive of Polish Fisheries, 21: 271-281. DOI: 10.2478/aopf-2013-0028.##German, L.R. and Eduaedo, A.C., 2014. Recombinant protein expression in Escherichia coli: advances and challenges. Frontiers in Microbiology, 5: 172. DOI: 10.3389/fmicb.2014.00172##Gerngross, T.U., 2004. Advances in the production of human therapeutic proteins in yeasts and filamentous fungi. Nature biotechnology, 22: 1409-1414. DOI: 10.1038/nbt1028##Gothilf, Y. and Zohar, Y., 1991. Clearance of different forms of GnRH from the circulation of the gilthead seabream, Sparus aurata, in relation to their degradation and bioactivities. In: (Scott A.P., Sumpter J.P., Kime D.E. and Rolfe M.S) Reproductive Physiology of Fish. Fish Symposium 91, Sheffield. pp. 35-37.## ##Hayat, S.M., Farahani, N., Golichenari, B. and Sahebkar, A., 2018. Recombinant protein expression in Escherichia coli (E. coli): What we need to know. Current Pharmaceutical Design, 24: 718-725. DOI: 10.2174/1381612824666180131121940.##Jagdish, C., Rohit, S., Sahai, P. and Talwar, G.P., 2017. Development of a novel recombinant LHRH fusion protein for therapy of androgen and estrogen dependent cancer. Protein purification and expression, 17: S1046-5928. DOI: 10.1016/j.pep.2017.04.003.##Laemmli, U.K., 1970. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature, 227: 680-685.##Li Y., 2011. Recombinant production of antimicrobial peptides in Escherichia coli. Protein Expression and Purification, 80: 260-267. DOI: 10.1016/j.pep.2011.08.001.##Okubo, K. and Nagahama, Y., 2008. Structural and functional evolution of gonadotropin releasing hormone in vertebrates. Acta Physiologica, 193: 3-15. DOI: 10.1111/j.1748-1716.2008.01832.##Qing, G., Ma, L.C., Khorshid, A., Swapna, G., Mal, T.K., Takayama, M.M., Xia, B., Phadtare, S., Ke H., Acton, T., Montelione, T. and Ikura, M., 2004. Cold-shock induced high-yield protein production in Escherichia coli. Nature Biotechnology, 22: 877-882. DOI: 10.1038/nbt984.##Raina, K., Panda, A.K., Ali, M.M. and Talwara, G.P., 2004. Purification, refolding, and characterization of recombinant LHRH-T multimer. Protein Expression and Purification, 37: 8-17. DOI:10.1016/j.pep.2004.03.008.##Rodriguez-Carmona, E., Cano-Garrido, O., Seras-Franzoso, J., Villaverde, A. and Garcia-Fruitos, E., 2010. Isolation of cell-free bacterial inclusion bodies. Microbial Cell Factories, 9:71. DOI:10.1186/1475-2859-9-71.##Rosano, G.L. and Ceccarelli, E.A., 2014. Recombinant protein expression in Escherichia coli: advances and challenges. Recombinant Protein Expression in Microbial Systems, 5:172. DOI:10.3389/fmicb.2014.00172##Schlegel, S., Lofblom, J., Lee, C., Hjelm, A., Klepsch, M., Strous, M., Drew D., Slotboom, D.J. and Degier, J.W., 2012. Optimizing membrane protein overexpression in the Escherichia coli strain Lemo21 (DE3). Journal of Molecular Biology, 423: 648-659. DOI: 10.1016/j.jmb.2012.07.019##Sezonov, G., Joseleau-Petit, D. and Dari, R., 2007. Escherichia coli physiology in Luria Bertani broth. Journal of Bacteriology, 189: 8746-8749. DOI: 10.1128/JB.01368-07.##Shiloach, J. and Fass, R., 2005. Growing E. coli to high cell density a historical perspective on method development. Biotechnology Advances, 23: 345-357. DOI: 10.1016/j.biotechadv.2005.04.004##Walsh, G., 2014. Biopharmaceutical benchmarks. Nature Biotechnology, 32(10): 992-1000.##Xu, J., Zhu, Z., Duan, P., Li, W., Zhang, Y., Wu, J., Hu, Z., Roque, S.R. and Liu, J., 2006. Cloning, expression, and purification of a highly immunogenic recombinant gonadotropin-releasing hormone (GnRH) chimeric peptide. Protein Expression and Purification, 50: 163-170. DOI: 10.1016/j.pep.2006.08.016.##Zemora, N., Gonzalea, M.D., Munoz, J.A., Madigou, T., Sanchez, E., Doste, S.Z. and Zohar, Y., 2002. The GnRH system in the European sea bass (Dicentrarchus labrax). Endocrinology, 172: 105-116.##Zohar, Y. and Mylonas ,C.C., 2001. Endocrine manipulations of spawning in cultured fish: from hormones to genes. Aquaculture, 197: 99-136. DOI:10.1016/S0044-8486(01)00584-1. ##

بررسی غلظت عناصر فلزی در بافت ماهی سفید Rutilus frisii)) در سواحل جنوب غربی دریای خزر (گیلان) Investigation of metal element concentrations in tissue of Rutilus frisii in the Southwest Caspian Sea 1 1 ماهی سفید (frisii Rutilus) یکی از ماهیان ساکن دریای خزر با بازارپسندی و ارزش اقتصادی بالاست با توجه به بسته بودن دریای خزر، تمامی آلاینده‌هایی که به آن تخلیه می‌شود، در حوضه دریا انباشته می‌شود. آلودگی رسوبات به فلزات سنگین منجر به مشکلات زیست‌محیطی جدی می‌شود. بدین منظور، تعداد 36 عنصر در بافت‌های کبد، عضله، گناد، پوست و کلیه این ماهی اندازه‌گیری شد و ارتباط آنها با پارامترهای رشد (سن و طول)، شاخص‌های فیزیولوژیک (ضریب چاقی، وزن نسبی، شاخص کبدی) بررسی شد. تعداد 51 عدد ماهی در فصل پاییز 1396 توسط پره‌های ساحلی و دام گوش‌گیر صید شدند و اندازه‌گیری فلزات با استفاده از دستگاه-OES  ICP انجام شد. بیشترین غلظت فلزات کلسیم، منگنز در بافت عضله، فلزات آلومینیم، باریم، کادمیم، کبالت، آهن، پتاسیم، سدیم، گوگرد، قلع، تنگستن و روی در بافت کلیه، فلزات آرسنیک، نیکل، سرب و روبیدیوم در بافت گناد، فلزات کروم، لیتیوم، منیزیوم، فسفر، آنتیموآن، سیلیکون، استرونسیم، توریوم و تیتانیوم در بافت پوست و فلز مس در بافت کبد بود. همبستگی میزان عناصر در هر بافت موردسنجش قرار گرفت که در این میان پایین‌ترین میزان همبستگی را عناصر استونسیوم و نیکل در بافت کبد و پایین‌ترین میزان همبستگی عناصر آنتیموان، منگنز و نیکل در بافت عضله محاسبه شد. 2 Caspian kutum, Rutilus frisii Kamensky 1901, is a commercially important fish species in the southern part of the Caspian Sea. All of the metal entered in the Caspian Sea. The pollution of this metal cause To create environmental problem. To address the issue, some 51 R. frisii specimens were caught at five different fishing regions (including Astara, Anzali, Kiashahr,) of the southern shoreline of the Caspian Sea from September 2017 through January 2018. An inductively coupled plasma optical emission spectrometry (ICP-OES) was used to measure heavy metals concentrations in fish tissues. The highest concentrations of calcium, manganese in muscle tissue, aluminum, barium, cadmium, cobalt, iron, potassium, sodium, sulfur, tin, tungsten and zinc in kidney tissues, arsenic, nickel, lead and rubidium in gonads, chromium, lithium, Magnesium, phosphorus, antimony, silicon, strontium, thorium and titanium in skin tissue, copper and uranium in liver tissue. The lowest correlation between Ni and Sr with the other elements reported in liver tissue and the lowest correlation between Sb, Ni and Mn with another elements reported in liver tissue. 149 161 2016/05/72018/12/302019/01/202019/01/162018/12/32018/07/222019/02/82018/12/62019/01/92019/02/262018/11/192017/08/102019/02/262019/03/12 1397/12/21 2019/06/102019/05/212019/07/202019/07/202019/06/12019/04/82019/06/122019/07/202019/07/202019/06/32019/07/202019/06/172019/07/202019/06/22 1398/4/1 مسعود ستاری M. Sattari دانشگاه گیلان ایران Msattari647@gmail.com جاوید ایمانپور نمین J. Imanpour دانشگاه گیلان ایران javid.iman@gmail.com مهدی بی باک M. Bibak دانشگاه گیلان ایران mehdi.bibak65@yahoo.com محمد فروهر واجارگاه M. Forouhar Vajargah دانشگاه گیلان ایران mohammad.forouhar@yahoo.com آرش خسروی A. Khosravi دانشگاه گیلان ایران arash.khosravi1991@yahoo.com Rutilus frisii growth factors heavy metals ICP-OES -OES ICP فلزات سنگین پارامترهای رشد Rutilus frisii ##الصاق، ا. 1389. سنجش میزان تجمع فلزات سنگین در ماهیان سفید (Rutilus frisii kutum) و کپور (Cyprinus carpio) دریای خزر. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی، 5 (2) : 100-91##بهروز م، نوروزی م. 1397. بررسی برخی عناصر فلزی (Al, V, Ni, Zn, Tl, Sn) در بافت‌‌های مختلف ماهی کفال طلایی (Liza aurata) و ارتباط آن با جنسیت و شاخص‌‌ وزن و طولی . مجله علمی شیلات ایران. ۲۷ (۴) :۳۷-۴۶. URL: http://isfj.ir/article-1-1725-fa-html##دوستدار، م، رامین، م، نصرالله زاده، ح، افرایی، م، رحمتی، ر. 1397. بررسی و تعیین میزان برخی عناصر فلزی درماهیان رودخانه ارس در محدوده استان آذربایجان شرقی (۹۵-۱۳۹۴). مجله علمی شیلات ایران. ۲۷ (۳) :۴۱-۴۹. URL: http://isfj.ir/article- 1-1877-fa-html##رضوی صیاد، ب. 1368. روش های تعیین سن و ارزیابی اقتصادی. مرکز تحقیقات شیلات بندر انزلی. 58 صفحه.##موسوی، ر. 1380. زمین شناسی دریای خزر؛ سازمان زمین شناسی و اکتشافات معدنی کشور. ##Al-Yousuf , M.H., El-Shahawi, M.S. and Al-Ghais, S.M., 2000. Trace metals in liver, skin and muscle of Lethrinus lentjan fish species in relation to body length and sex. Science of the total environment, 256(2-3): 87-94. DOI:10.1016/S0048-9697(99)00363-0##Anan, Y., Kunito, T., Tanabe, S., Mitrofanov, I.G. and Aubrey, D., 2005. Trace element accumulation in fishes collected from coastal waters of the Caspian Sea. Marine Pollution Bulletin, 51(8-12): 882-888. DOI:10.1016/j.marpolbul.2005.06.038##Canli, M. and Atli, G., 2003. The relationships between heavy metal (Cd, Cr, Cu, Fe, Pb, Zn) levels and the size of six Mediterranean fish species. Environmental Pollution, 121,129-105,276-284. DOI:10.1016/S0269-7491(02)00194-X##De Mora, S., Sheikholeslami, M.R., Wyse, E., Azemard, S. and Cassi, R., 2004. An assessment of metal contamination in coastal sediments of the Caspian Sea. Marine Pollution Bulletin, 48: 61-77. DOI:10.1016/S0025-326X(03)00285-6##Dias, J.F., Fernandez, W.S., Boufleur, L.A., dos Santos, C.E.I., Amaral, L., Yoneama, M.L. and Dias J.F., 2009. Biomonitoring study of seasonal anthropogenic influence at the Itamambuca beach (SP, Brazil), Nuclear Instruments and Methods in Physics Research, 267: 1960–1964. DOI:10.1016/j.nimb.2009.03.100##Eslami, S., Moghaddam, A.H., Jafari, N., Nabavi, S.F., Nabavi, S.M. and Ebrahimzadeh, M.A., 2011. Trace element level in different tissues of Rutilus frisii kutum collected from Tajan River, Iran. Biological Trace Element Research, 143, 965-973. DOI:10.1007/s12011-010-8885-9##Fallah, A.A., Zeynali, F., SaeiDehkordi, S.S., Rahnama, M. and Jafari, T., 2011. Seasonal bioaccumulation of toxic trace elements in economically important fish species from the Caspian Sea using GFAAS. Journal für Verbraucherschutz und Lebensmittelsicherheit, 6, 367-374. DOI:10.1007/s00003-011-0666-7##Farkas, A., Salánki, J. and Specziár, A., 2003. Age- and size-specific patterns of heavy metal in the organs of freshwater fish Abramis brama L. populating a low-contaminated site. Water research, 37, 959- 964. DOI:10.1016/S0043-1354(02)00447-5##Fernandes, D., Bebianno, M.J. and Porte, C., 2008. Hepatic levels of metal and metallothioneins in two commercial fish species of the Northern lberian shelf. Science of the total environment, 391, 159-167. DOI:10.1016/j.scitotenv.2007.10.057##Foroughi Fard, R., Esmaeli Sari, A. and Ghasempouri, S.M., 2008. The correlation of length and weight of Kutum (Rutilus frisii kutum) in the central south of Caspian Sea with copper and zinc concentration in muscle and liver tissues. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 16 (4), 121-128.##Froese, R., 2006. Cube law, condition factor and weight-length relationships: History, metaanalysis and recommendations. Journal of Applied Ichthyology, 22: 241-251. DOI:10.1111/j.1439-0426.2006.00805.x.##Gašpić, Z.K., Zvonarić, T., Vrgoč, N., Odžak, N. and Barič, A., 2002. Cadmium and lead in selected tissues of two commercially important fish species from the Adriatic Sea.Water Research, 36,5023-5028. DOI:10.1016/S0043-1354(02)00111-2.##Henry, F., Amara, R., Courcot, L., Lacouture, D., and Bertho, M.L. 2004. Heavy metals in four fish species from the French coast of the Eastern English Channel and Southern Bight of the North Sea. Environment International, 30(5), 675-683. DOI:10.1016/j.envint.2003.12.007##Hung, S.S.O. and Deng, D.F., 2002. Sturgeon, Acipenser spp. In: Webster, C.D. Lim, C (Eds), Nurient Requirements and Feeding of Finfish for Aquaculture. CABI Publishing, Walligford, UK: 344-357.##Mirzajani, A.R., Hamidian, A.H., Karami, M., 2016. Metal bioaccumulation in representative organisms from different trophic levels of the Caspian Sea, Iranian Fisheries Research Organization, 15(3): 1027- 1043.##Monsef Rad, S.F., Imanpour Namin, J., Heidary, S., Mohammadi, M. and Hosseini, S.M., 2012. Interaction of essential and nonessential metals in tissues of Rutilus frisii kutum from southwestern basins of the Caspian Sea Journal of Fisheries, Iranian Journal of Natural Resources, Vol. 65, No. 1, pp.79-87.##Nussey, G., Van Vuren, J.H.J. and du Preez, H.H., 2000. Bioaccumulation of chromium, manganese, nickel and lead in the tissues of the moggel, Labeo umbratus (Cyprinidae), from Witbank dam, Mpumalanga. Water Sea, 26, 269–284.##Raeisi, S., Sharifi Rad, J., Sharifi Rad, M. and Zakariaei, H., 2014. Analysis of heavy metals content in water, sediments and fish from the Gorgan bay, southeastern Caspian sea, Iran. International journal of Advanced Biological and Biomedical Research, 2(6): 2162-2172.##Van Dyk, J.C., Pieterse, G.M. and van Vuren, J.H.J., 2007. Review: Histological changes in the liver of Oreochromis mossambicus (Cichlidae) after exposure to cadmium and zinc. Ecotoxicology and Environmental Safety, 66, 432–440. DOI:10.1016/j.ecoenv.2005.10.012##Varedi, S.E., 2011. Survey on envirnomental pollutants (heavy metals, hydrocarbons, surfactant and chlorinated pesticides) in southern part of the Caspian Sea. Iranian Fisheries research organization, Caspian Sea Ecology Research Center, Sari, 200P.##Wahli, T., 2002. Approaches to investigate environmental impacts on fish health Bull. Europ. Association of Fish Pathology, 22:126-132.##Widianarko, B., Van Gestel, C.A.M., Verweij, R.A. and Van Straalen, N.M., 2000. Associations between trace metals in sediment, water, and guppy, Poecilia reticulata (Peters), from urban streams of Semarang, Indonesia. Ecotoxicology and Environmental Safety, 46, 101–107. DOI:10.1006/eesa.1999.1879##Yujing, C., Guan, Y., Zhai, R. and Huang, Y., 2005. Exposure to metal mixtures and human health impacts in a contaminated area in Nanning, China. Environment International, 31:784-790. DOI:10.1016/j.envint.2005.05.025##Zhou, F., Gou, H. and Hao, Z., 2007. Spatial distribution of heavy metals in Hong Kong’s marine sediments and their human impacts: A GIS-based chemo metric approach. Marine Pollution Bulletin, 54: 1372–1384. DOI:10.1016/j.marpolbul.2007.05.017## ##

بررسی تجمع فلزات سنگین (کادمیوم‌، مس،آهن، قلع،آرسنیک، سرب و جیوه) در بافت عضله میگوی سفید هندی (Penaeus indicus) در بنادر بریس، گواتر و کنارک Study on the accumulation of heavy metals (cadmium, copper, iron, tin, arsenic, lead and mercury) in the Indian white shrimp (Penaeus indicus) muscle tissue in Chabahar Bay, Bris and Pasabandar 1 1 مطالعه حاضر به منظور مقایسه میزان تجمع فلزات سنگین مس‌(Cu)، آهن (Fe)، سرب‌(Pb)، کادمیوم‌(Cd)‌، قلع‌(Sn)،‌آرسنیک‌(As) و جیوه‌(Hg) در بافت خوراکی میگوی سفید هندی در مناطق صیادی سواحل دریای مکران ‌(دریای عمان) در سال ۱۳۹۶ انجام گردید. بدین منظور تعداد ۶۰ عدد میگو از مناطق کنارک،‌ اسکله­های‌بریس و گواتر در فصل صید میگو جمع آوری گردید. پس از بیومتری و آماده‌سازی نمونه­ها و سنجش فلزات مشخص گردید که میانگین غلظت مس،‌ آهن،‌‌ قلع، ‌‌سرب، ‌کادمیوم،‌ آرسنیک و جیوه بترتیب برابر با ‌28/0±13/13، 2/0±‌76/2، ‌30/0±‌77/1، ‌05/0±‌24/0، ‌001/0±‌03/0، ‌05/0±32/0، 001/0±‌02/0 میکروگرم بر‌گرم وزن خشک در بافت عضلانی میگو بوده‌ است. در مقایسه میان‌ ایستگاه­ها، منطقه بریس بجز در جیوه و آهن، در سایر فلزات اختلاف معنی‌داری با سایر مناطق داشته است ‌(05/0P<). مقایسه نتایج با برخی استانداردهای بین‌المللی مثل سازمان بهداشت جهانی‌ (WHO, 1995) و مدیریت غذا و داروی آمریکا ‌(FDA) نشان می­دهد که غلظت تمامی عناصر بررسی شده کمتر از حد‌مجاز جهانی بوده است و مصرف میگو در مناطق نمونه‌برداری شده برای سلامتی خطری نخواهد داشت. 2 Shrimps are one of the most important seafood sources for humans. Heavy metals accumulated in the body of shrimp can be transmitted to humans in the food chain. The present study was done in 2017 to compare the accumulation of heavy metals Copper (Cu), Iron (Fe), Lead (Pb), Cadmium (Cd), Tin (Sn), Arsenic (As) and Mercury (Hg) in edible tissue of Indian white shrimp in the fishing grounds of the Makoran coasts. For this purpose, 60 shrimps were harvested from Konarak, Beris and Pasabander. After biometry and preparation of samples and measurement of metals, the mean concentrations of Cu, Fe, Sn, Pb, Cd, As and Hg were 2.13 ± 0.28, 2.76±0.13, 1.77±0.30, 0.24±0.05, 0.03±0.001, 0.32±0.05,0.02±0.001 μg/g dry weight in muscle tissue of the shrimp. Comparing the stations showed that the Bris area had a significant difference except for mercury and iron in other metals (P <0.05). Comparing the results with some international standards, such as the World Health Organization (WHO) and American Food and Drug Administration (FDA), shows that the concentration of all the tested elements is less than global, so shrimp consumption is not hazardous to human health in the sampled areas. 163 173 2016/05/72018/12/302019/01/202019/01/162018/12/32018/07/222019/02/82018/12/62019/01/92019/02/262018/11/192017/08/102019/02/262019/03/122019/01/23 1397/11/3 2019/06/102019/05/212019/07/202019/07/202019/06/12019/04/82019/06/122019/07/202019/07/202019/06/32019/07/202019/06/172019/07/202019/06/222019/07/20 1398/4/29 مهران لقمانی M. Loghmani دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار ایران loghmani.mehran@gmail.com پروین صادقی P. Sadeghi دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار ایران sadeghi.parvin@gmail.com ناصر جدگال N. Jadgal دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار ایران loghmani.mehran@gmail.com Indian white shrimp Penaeus indicus Makoran Chabahar Bay Heavy metals میگوی سفید‌هندی Penaeus indicus مکران خلیج چابهار فلزات سنگین ##احسانی،ج. و رومیانی، ل.، 1393. مقایسه میزان تجمع فلزات سنگین (روی، مس، کادمیوم و سرب) در پوست و عضله میگوی (Litopenaeus vannamei) و میگوی پاسفیدغربی (Metapenaeus affinis) سفیدسرتیز در شمال خلیج فارس. مجله علمی- پژوهشی زیست شناسی دریا. 21(6): 59-51. ##اسماعیلی ساری، ع.، 1381 . آلایند ه ها، بهداشت و استاندارد محیط زیست.چاپ اول، تهران: انتشارات نقش مهر، 767 ص.##پورباقر، ه.، حسینی، س.و.، خراسانی، ن.، حسینی، س.م. و دلفیه، پ. 1393. مقدار فلزات سنگین در عضله میگوی سفید هندی( Fenneropenaeus indicus) نشریه شیلات. مجله منابع طبیعی ایران 67 (1): 24 – 13.##رضوی، س. م. ر.، وهاب زاده، ح.، زمینی، ع. ع.، عسکری ساری، ا. و ولایت زاده، م.، 1391 . اندازه گیری و مقایسه میزان فلزات سنگین جیوه، سرب و . کادمیوم در عضله و پوسته میگوی سفیدهندی در خلیج فارس (بحرکان استان خوزستان). مجله آبزیان و شیلات، 3(9): 52-42.##صفاهیه، ع. پاکزاد توچایی، س. رونق، م.ت.، ارچنگی،ب.، حمزه، م.ع.، 1392. مطالعه تأثیر پدیده مونسون بر تغییر غلظت فلزات سنگین Cd، Cu، Ni، Pb و Zn در رسوبات امتداد خلیج گواتر تا پزم. مجله علوم و فنون دریایی.3(12): 25-15.##عریان، ش.، تاتینا، م.، قریبخانی، م.، 1389. بررسی اثرات آلودگی نفتی در حوزه شمالی خلیج فارس بر میزان تجمع فلزات سنگین (نیکل، سرب، کادمیوم و وانادیوم) در بافت عضله ماهی حلوا سفید. مجله اقیانوس شناسی، 1(4):68-61.##عین الهی پیر، ف. صفاهیه، ع.ر. داداللهی سهراب، ع.، سواری، ا.، 1390 . تجمع فلزات سنگین (مس، سرب و نیکل) در رسوبات و دوکفه ای Saccostrea cucullata در ناحیه بین جزر و مدی چابهار. مجله علوم و فنون دریایی. 10(2): 10تا 25.##غلامحسینی، ا.، اکبری،پ.، علی،م.، سلطانیان،س.، تقدسی،و.، فریدونی، م.س.، 1396. بررسی مقادیر فلزات آهن، سرب و کروم در عضله میگوی سفید هندی (Fenneropenaeus indicus) جاسک و تنگه هرمز. نشریه تحقیقات دامپزشکی و فرآورده‌های بیولوژیک. 30(4): 241-247.##کیابی، ب.، کامرانی،آ.، 1380. پویایی شناسی جمعیت میگوی سفید هندی (Penaeus indicus) در آبهای ساحلی جاسک. مجله پژوهش و سازندگی. 14(2):39-43.##Agusa, T., Kunito, T., Tanabe, S., Pourkazemi, M. and Aubrey, D.G., 2004. Concentrations of trace elements in muscle of sturgeons in the Caspian Sea. Marine Pollution Bulletin, 49: 789– 800.DOI:10.1016/j.marpolbul.2004.06.008##Attar, M.A., El-faer, M.Z., Rawadah, T.N. and Twabini, B.S., 1992. Levels of arsenic in fish from the Arabian Gulf. Marine Pollution Bulletin, 24:94 – 97.##Biney, C.A. and Ameyibor, E., 1992. Trace metal concentrations in the pink shrimp Penaeus notialis, from the coast of Ghana. Water Air Soil Pollution, 63:273– 9. DOI: 10.1007/BF00475494##Bou-Olayan, A.H., AI-Yakoob, S. and AI-Hossaini, M., 1995. Arsenic in shrimp from kuwait. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology ,54: 584–590. DOI: 10.1007/BF00192603##Canli, M. and Atli, G., 2003. The relationships between heavy metal (Cd, Cr, Cu, Fe, Pb, Zn) levels and the size of six Mediterranean fish species. Environmental Pollution, 121: 129-136. DOI:10.1016/S0269-7491(02)00194-X##FDA, 2011. Fish and Fishery Products Hazards and Controls Guidance. Department of health and human service public health food and drug administration center for food safety and applied nutrition of food safety. Fourth Edition, 476P. ##Gendy, A., Al Farrajand., S. and El Hedeny., M., 2015. Heavy Metal Concentrations in Tissues of the Shrimp Penaeus semisulcatus (De Haan, 1844) From Jazan, Southern Red Sea Coast of Saudi Arabia. Pakistan Journal of Zoology, 47(3): 671-677.##Golovanova, I.L., 2008. Effect of heavy metals on the physiological and biochemical status of fishes and aquatic invertebrates. Inland Water Biology, 1:93–101. DOI: 10.1007/s12212-008-1014-1##Harris, J.M., Vinobaba, P., Kularatne, R.K.A. and Kankanamge, C.E., 2018. An assessment of heavy metal levels in brackish water shrimps: Impact on sexes and the relationship between metal pollution index and Fulton's K condition indices. Human and Ecological Risk Assessment: An International Journal. Accepted. DOI: 10.1080/10807039.2018 .1478717.##Heath, A.G.,1987. Water Pollution and Fish Physiology. Florida: CRC press. 384 P.##Joseph, K.O., Srivastava, J.P. and Kadir, P.M.A., 1992. Acute toxicity of five heavy metals to the prawn, Penaeus indicus (H. Milne Edwards) in brackish water medium. Journal of Inland Fisheries Society of India, 24(2): 82–4. DOI: 10.1016/0044-8486(87)90110-4.##Kilemade, M., Hartl, M.G.J., Sheehan, D., Mothersill, C., Pelt, F.N.A., Berien, N.M.O. and Halloran, J.O., 2004. An assessment of the pollutant status of surficial sediment in Cork harbour in the south east of Ireland with particular reference to polycyclic aromatic hydrocarbons. Marrine Pollution Bulltein, 49:1084-1096. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2004.08.002.##Kureishy, T.W., 1993. Concentration of heavy metals in marine organisms around transportation. Water, Air Soil Pollution, 129:229-243.##Lu, H., Shi, X., Costa, M. and Huang, C., 2005. Carcinogenic effect of nickel compounds. Molecular and Cellular Biochemistry, 279 (1-2): 45-67. DOI:10.1007/s11010-005-8215-2.##MAFF, 2000. Monitoring and surveillance of non-radioactive contaminants in the aquatic environment and activities regulating the disposal of wastes at sea, 1997. In, Aquatic Environment Monitoring Report No. 52. Center for Environment, Fisheries and Aquaculture Science, Lowestoft, UK.##Merian, E., 1991. Metals and their Compounds in the Environment Occurrence, Analysis and Biological Relevance, Weinheim, VCH 704P.##Mishra, S., Bhalke, S., Saradhi, I.V., Suseela, B., Tripathi, R.M., Pandit, G.G. and Puranik, V.D., 2007. Trace metals and organometals in selected marine species and preliminary risk assessment to human beings in Thane Creek area, Mumbai. Chemosphere, 69:972–978. DOI: 10.1016/j.chemosphere.2007.05.013##Mitra, A.B., Barua, P., Zaman, S. and Banerjee, K., 2012. Analysis of trace metals in commercially important crustaceans collected from UNC SCO protected world heritage site of Indian Sunderbans. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 12: 53-66. DOI: 10.4194/1303-2712-v12_1_07##Mojtahid, M., Jorissen, F. and Pearson, T.H., 2008. Comparison of benthic foraminiferal and macrofaunal responses to organic pollution in the Firth of Clyde (Scotland). Marine Pollution Bulltein. 56: 42-76. DOI:10.1016/j.marpolbul.2007. 08.018.##Mokhtar, M.B., Aris, A.Z., Munusamy, V. and Praveena, S.M., 2009. Assessment level of heavy metals in Penaeus monodon and Oreochromis spp in selected aquaculture ponds of high densities development area. European Journal of Scientific Research, 30:348–360.##MOOPAM, 1999. Manual of oceanographic observations and pollutant analysis methods. 3rd ed, Kuwait, 321P.##Pourang, N., Dennis, J.H. and Ghourchian, H., 2005. Distribution of heavy metals in Penaeus semisulcatus from Persian Gulf and possible role of metallothionein in their redistribution during storage. Environmental Monitoring and Assessment, 100: 71-88. DOI: 10.1007/s10661-005-7061-8. ##Vicente-Martorell, J.J., Galindo-Riaño, M.D., García-Vargas, M. and Granado-Castro, M.D., 2009. Bioavailability of heavy metals monitoring water, sediments and fish species from a polluted estuary. Journal of Hazardous Materials, 162: 823–836. DOI:1016/j.jhazmat.2008.05.106.##WHO, 1995. Health risks from marine pollution in the Mediterranean. Part 1 Implications for Policy Markers, 25P. ##

بهبود شاخص‌های رشد و کیفیت لاشه بچه تاسماهی ایرانی (Acipenser persicus) با استفاده از پروبیوتیک تجاری دی پرو(D Pro) و مخمر ساکارومایسس سرویزیه (Saccharomycess crevisia) Improving the growth indices and carcasses quality of Acipenser persicus fingerling using D-Pro probiotics and Saccharomyces cerevisiae 1 1 به منظور تعیین اثر پروبیوتیک دی‌پرو (Bacillus licheniformis, Bacillus subtilis)و مخمر ساکارومایسس سرویزیه (Saccharomycess Cerevisia) در جیره غذایی بچه تاسماهی ایرانی(Acipenser persicus)  بر شاخص‌های رشد و ترکیب بیوشیمیایی لاشه، تعداد 2400 قطعه بچه تاسماهی ایرانی به صورت تصادفی با میانگین وزن 10/0±00/4 گرم )میانگین±خطای استاندارد( و میانگین طول  35/0±91/9 سانتی‌متر )میانگین±خطای استاندارد( انتخاب  و در چهار تیمار و هر تیمار با سه تکرار گروه­بندی شدند. مدت آزمایش 60 روز و محل اجرای آن در مرکز تکثیر و بازسازی ذخایر ماهیان خاویاری شهید دکتر بهشتی واقع در استان گیلان بود.  تیمارهای آزمایشی شامل 1) 5 گرم دی­پرو در کیلوگرم غذا 2) 5 گرم مخمر ساکارومایسس سرویزیه در کیلوگرم غذا   3)  5 گرم دی­پرو در کیلوگرم غذا و 5 گرم مخمر ساکارومایسس سرویزیه در کیلوگرم غذا 4) گروه شاهد (جیره پایه فاقد پروبیوتیک و مخمر). نتایج حاصله نشان دادکه، بیشترین میانگین وزن به ترتیب در تیمار حاوی دی‌پرو حاصل گردید. تیمار دریافت کننده پروبیوتیک دی پرو بیشترین افزایش رشد، کوچکترین ضریب تبدیل غذاییرا داشت، که تفاوت آن با سایر تیمارها، معنی­دار (05/0>P) بود.  استفاده از دی پرو در جیره سبب شد تا چربی لاشه افزایش یابد که این افزایش از نظر آماری معنی­دار بود (05/0>P). رطوبت لاشه با افزودن دی پرو به جیره کاهش یافت که این کاهش سبب اختلاف معنی­داری در رطوبت لاشه در مقایسه باکنترل گردید(05/0>P). میزان خاکستر کل لاشه در تیمار حاوی دی پرو و یا مخمر در مقایسه با شاهد اختلاف معنی داری را نشان نداد  (05/0<P).  این در حالی بود که در تیمار حاوی دی پرو و مخمر نتایج متفاوتی مشاهده شد به طوری که میزان خاکستر افزایش  نشان داد  و تنها در مقایسه با گروه دیپرو بطور معنی داری (05/0>P) افزایش یافته است .  مصرف خوراکی  5 گرم پروبیوتیک دی‌پرو در جیره غذایی بچه تاسماهی ایرانی، باعث افزایش رشد و شاخصهای رشد شده و اسفاده از آن در صنعت آبزی پروری توصیه می شود. 2 To determine the effect of D-Pro probiotics (Bacillus licheniformis, Bacillus subtilis) and Saccharomyces cerevisiae in Persian sturgeon’s diet on the growth indices and biochemical analysis of the carcass, a total of 2400 Persian sturgeon species were randomly selected, with a mean weight of 4.00±0.10 g (mean ± standard error) and a mean length of 9.91±0.35 cm (mean ± standard error), and were assigned to four treatment groups, each of which was carried out with three replications. The present study was conducted within 60 days in Dr. Beheshti Center of Proliferation and Restoration of Persian Sturgeon (Guilan province). The treatments were 1) 5 g/1 kg of D-Pro, 2) 5g/1kg of Saccharomyces cerevisiae, 3) a mixture of 5 g/1kg of D-Pro and 5 g/1kg of Saccharomyces cerevisiae, and 4) a control group  )a basic diet without any probiotics and yeasts(. Results of the analyses showed that the highest mean weight was obtained in the D-Pro treatment. The D-Pro treatment had the highest increase in length and the lowest feed conversion ratio which were significantly different compared to other treatments (P<0.05). Using D-Pro in their diet led to a carcass fat increase and this increase was statistically significant (P<0.05). By adding D-Pro to their diet, the carcass moisture decreased and this decrease resulted in a significant difference in the carcass moisture content compared to the control group (P<0.05). The levels of whole carcass ash were not significantly different in the D-Pro and Saccharomyces cerevisiae treatments compared to the control group (P>0.05). However, differences in the levels of whole carcass ash were observed between the D-Pro and Saccharomyces cerevisiae treatments, such that the levels of ash significantly increased compared to the D-Pro treatment (P<0.05). The oral consumption of 5g of D-Pro probiotic in the Persian sturgeon’s diet increased growth and growth indices and is recommended to be used in the aquaculture industry.     175 183 2016/05/72018/12/302019/01/202019/01/162018/12/32018/07/222019/02/82018/12/62019/01/92019/02/262018/11/192017/08/102019/02/262019/03/122019/01/232018/12/27 1397/10/6 2019/06/102019/05/212019/07/202019/07/202019/06/12019/04/82019/06/122019/07/202019/07/202019/06/32019/07/202019/06/172019/07/202019/06/222019/07/202019/07/20 1398/4/29 فروغ درفش F. Darafsh گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، واحد علوم وتحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران ایران darafsh.f@gmail.com مهدی سلطانی M. Soltani گروه بهداشت و بیماریهای آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران ایران msoltani@ut.ac.ir حسین علی عبدالحی H.A. abdolhay موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج جهاد کشاورزی، تهران، ایران. ایران abdolhay@mail.fisheries.ir مهدی شمسایی مهرجان M. Shamsaei Mehrejan گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، واحد علوم وتحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران ایران drshamsaie@gmail.com Persian sturgeon Dpro probiotic Saccharomyces cerevisiae growth indices Carcass analysis تاسماهی ایرانی پروبیوتیک دی‌پرو مخمر ساکارومایسس سرویزیه شاخص های رشد ترکیب بیوشیمیایی لاشه ##باعثی، ف.، آبرومند، ع.، ضیایی نژاد، س. و جواهری بابلی، م.، 1396. بهینه ساسی تزکیبات شیمیایی فیله و شاخصهای بیوشیمیایی خون ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio)با سطوح مختلف پروبیوتیک تجاری لاکتوباسیلوس (Lactobacillus acidophilus) در جیره غذایی. مجله علمی شیلات ایران، 26(2): 101-110.##تکمه چی، ا.، شمسی ، ح.، مشکینی، س.، دلشاد، ر. و قاسمی مغانجوقی، و.، 1391. بهبود شاخصهای رشد برخی پارامترهای شاخص های ایمنی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) با استفاده توام از ویتامین C و پروبیوتیک Lactobacillus rhamnosus. مجله علمی شیلات ایران، 21(3): 13-22. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110067##AOAC, 1995. Official methods of analysis, 18th edn. Association of Official Analytical Chemists, Gaithersburg, MD, USA.##Askarian, F., Kousha, A., Salma, W. and Ring, E., 2011. The effect of lactic acid bacteria administration on growth, digestive enzyme activity and gut microbiota in Persian sturgeon (Acipenser persicus) and beluga (Huso huso) fry. Aquaculture Nutrition, 17: 488-497. DOI: 10.1111/j.1365-2095.2010.00826.x##Azarin, H., Aramli, M. S., Imanpour, M. R. and Rajabpour, M., 2014. Effect of a Probiotic Containing Bacillus licheniformis and Bacillus subtilis and Ferroin Solution on Growth Performance, Body Composition and Haematological Parameters in Kutum (Rutilus frisii kutum) Fry. Probiotics and Antimicrob Proteins, 7(1): 31-7. DOI: 10.1007/s12602-014-9180-4##Chelladurai, G., Jebaraj, F. and Rathinasami, N., 2013. Protective effect of probiotic diets on haematobiochemical and histopathology changes of Mystus montanus (Jerdon 1849) against Aeromonas hydrophila. Journal of Coastal Life Medicine, 1(4): 259-264. DOI: 10.12980/JCLM.1.2013c1088 ##Faramarzi, M., Jafaryan, H., Patimar, R., Iranshahi, F., Lashkar Boloki, M., Farahi, A., Kiaalvandi, S., Ghamsary, M. and Makhtoumi, N.M., 2011. The effects of different concentrations of probiotic Bacillus spp. and different Bioencapsulation times on growth performance and survival rate of Persian sturgeon (Acipencer persicus) Larvae. World Journal of Fish and Marine Sciences, 3(2): 145-150. ##Forouhar, F., Lee, I. S., Vujcic, S., Shen, J., Vorobiev, S. and Xiao, R., 2005. Structural and functional evidence for Bacillus subtilis paiA as a novel N1-spermidine/spermine acetyltransferase. Journal of Biological Chemistry, 280 (48): 40328-40336. DOI: 10.1074/jbc.M505332200## ## Hassaan, M.S., Soltan, M.A. and Ghonemy, M.M.R., 2014. Effect of synbiotics between Bacillus licheniformis and yeast extract on growth, hematological and biochemical indices of the Nile tilapia (Oreochromis niloticus). The Egyptian Journal of Aquatic Research, 40 (2): 199–208. DOI: 10.1016/j.ejar.2014.04.001##Hoseinifar, S.H., Mirvaghefi, A., Merrifield, D.L., Amiri, B.M., Yelghi, S. and Bastami, K.D., 2011. The study of some haematological and serum biochemical parameters of juvenile beluga (Huso huso) fed oligofructose. Fish Physiology and Biochemistry, 37(1): 91-96. DOI: 10.1007/s10695-010-9420-9##Jafaryan, H., Ahmadi, M. and Adineh, H., 2009. Using Daphnia meal for promoting of growth efficiency in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fry by supplementation with probiotic bacillus. Aquaculture Europe, 14: 286-287.##Kane, A.M., Soltani, M., Ebrahimzahe-Mousavi, H.A. and Pakzad, K., 2016. Influence of probiotic, Lactobacillus plantarum on serum biochemical and immune parameters in vaccinated rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) against streptococcosis/lactococosis. International Journal of Aquatic Biology, 4(4): 285-294. ##Mart´ınez Cruz, P., Ib´a˜nez, A.L., Monroy, O. and Ram´ırez-Saad, H., 2012. Use of Probiotics in Aquaculture. International Scholarly Research Network ISRN Microbiology. DOI: 10.5402/2012/916845##Mehrabi, F., Khalesi, M. K. and Hazaie, K., 2018. Effects of Pre- and Probiotics on Growth, Survival, Body Composition, and Hematology of Common Carp (Cyprinus carpio L.) Fry from the Caspian Sea. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 18: 597-602. DOI: 10.4194/1303-2712-v18_4_11##Merrifield, D. and Ringø, E., 2014. Aquaculture Nutrition: Gut Health, Probiotics and Prebiotics. Wiley-Backwell, Garsington Road, Oxford, UK.##Mohammadi, F., Mousavi, S.M., Zakeri, M. and Ahmadmoradi, E., 2016. Effect of dietary probiotic, Saccharomyces cerevisiae on growth performance, survival rate, and body biochemical composition of three spot cichlid (Cichlasoma trimaculatum). AACL Bioflux, 9(3): 451-457.##Mohapatra, S., Chakraborty, T., Prusty, A.K., Pani Prasad, K. and Mohanta, K.N., 2014. Beneficial Effects of Dietary Probiotics Mixture on Hemato-Immunology and Cell Apoptosis of Labeo rohita Fingerlings Reared at Higher Water Temperatures. PLoS ONE, 9(6): e100929. DOI: 10.1371/journal.pone.0100929##Salaghi, Z., Imanpuor, M.R. and Taghizadeh, V., 2013. Effect of Different Levels of Probiotic Primalac on Growth Performance and Survival Rate of Persian Sturgeon (Acipenser persicus). Global Veterinaria, 11(2): 238-242. DOI: 10.5829/idosi.gv.2013.11.2.7545##Soltani, M., Shenavar Masouleh, A., Ahmadi, M., Pourkazemi, M. and Taherimirghaed, A., 2015. Antibacterial activity, antibiotic susceptibility and probiotic use of lactic acid bacteria (LAB) in Persian sturgeon (Acipenser persicus). Iranian Journal of Aquatic Animal Health, 2(1): 54-65. DOI: 10.18869/acadpub. ijaah.2. .54##Vesal, S.E., Mooraki. N. and Vosooghi, A., 2016. Effect of dietary fish oil on growth responses of severum (Heros severus). AACL Bioflux, 9(1): 81-90. ##

مقایسه اثر جیره‌های حاوی پروبیوتیک‌‌های Lactobacillus acidophilus و Pediococcus pentosaceus بر شاخص‌های رشد، خون‌‌شناسی و ایمنی بچه ماهی کپور معمولی C‌yprinus carpio)) Comparison of diets containing Lactobacilus acidophilus and Pediococcus pentosaceus on growth, hematological and immunological characteristics in juvenile common carp (Cyprinus carpio) 1 1 مطالعه حاضر با هدف بررسی تأثیر دو باکتری لاکتوباسیلوس اسیدوفیلوس و پدیوکوکوس پنتوساسئوس بر شاخص‌های خونی، ایمنی‌شناسی و رشد بچه ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) انجام شد. به این منظور تعداد 180 عدد ماهی با وزنS.D) 44/1±gr14 (در 3 تیمار ذخیره‌‌سازی شدند. تیمار 1: جیره تجاری حاوی پروبیوتیک Lactobacillus acidophilus g/10kg(1010CFUg-1) 5/1 و  تیمار 2: جیره تجاری حاوی پروبیوتیک Pediococcus pentosaceus g/10kg(1010CFUg-1) 5/1 و تیمار 3 یا شاهد با استفاده از غذای تجاری بدون پروبیوتیک، به مدت 60 روز مورد تغذیه قرار گرفتند. در پایان دوره آزمایش، تعداد 15 ماهی از هر تیمار نمونه‌گیری و شاخص‌‌های رشد، خون‌‌شناسی و ایمنی اندازه‌‌گیری شد. بر اساس نتایج، درصد افزایش وزن، درصد نوتروفیل و مونوسیت، لایزوزیم و C3 در تیمار 1 به شکل معنی‌داری بیشتر از تیمارهای 2 و 3 بود. مقادیر هماتوکریت، گلبول قرمز خون، هموگلوبین، MCV، MCH در تیمار 2 به شکل معنی‌داری بیشتر از سایر تیمارها بود. مقادیر MCHC و درصد لنفوسیت در تیمار 3 بیشترین مقدار را نشان داد. مقادیر IGM و C4 در بین تیمارها تفاوت معنی‌دار آماری نشان ندادند. نتایج این مطالعه نشان داد که استفاده از جیره حاوی پروبیوتیک‌‌های Lactobacillus acidophilus و Pediococcus pentosaceus می‌‌تواند تاثیرات مثبتی بر فراسنجه‌‌های رشد، خون‌‌شناسی و ایمنی بچه ماهی کپور معمولی داشته باشد 2 The aim of this study was to evaluate the effect of Lactobacillus acidophilus and Pediococcus pentosaceus  on hematological, immunological and growth parameters of common carp (Cyprinus carpio). 180 carp weighted 14±1.44 g were distributed in three treatments. Treatment 1: commercial diets with Lactobacilus acidophilus 1.5g/10Kg (1010CFUg-1), treatment 2: Pediococcus pentosaceus 1.5g/10Kg (1010CFUg-1) and treatment 3: commercial diets without probiotic diet were fed for 60 days. At the end of the experiment, 15 fish from each treatment were collected, hematological, immunological and growth parameters were measured. Based on the results, weight gain, neutrophil and monocyte percentages, lysozyme activity and C3 content in  treatments 2 and 3 were significantly higher than control. Hematocrit, RBC, hemoglobin, MCV, MCH in treatment 2 were significantly higher than other treatments. MCHC and lymphocyte percentage showed the highest values in treatment 3. There was no significant difference between IgM and C4 levels between treatments. The results of this study showed that the use of L. acidophilus and P. pentosaceus probiotics have positive effects on the growth parameters, hematological and immunological parameters of  juvenile common carp. 185 194 2016/05/72018/12/302019/01/202019/01/162018/12/32018/07/222019/02/82018/12/62019/01/92019/02/262018/11/192017/08/102019/02/262019/03/122019/01/232018/12/272019/01/17 1397/10/27 2019/06/102019/05/212019/07/202019/07/202019/06/12019/04/82019/06/122019/07/202019/07/202019/06/32019/07/202019/06/172019/07/202019/06/222019/07/202019/07/202019/07/20 1398/4/29 کمال اینانلو K. Inanloo دانش آموخته بیوتکنولوژی آبزیان، مرکز آموزش علوم و صنایع شیلاتی میرزا کوچک خان رشت ایران kamallvet2009@gmail.com سهیل علی نژاد S. Alinezhad موسسه آموزش و ترویج کشاورزی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران ایران Soheilalinezhad47@gmail.com عسگر زحمتکش A. Zahmatkesh : گروه شیلات، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان گیلان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران ایران aszahmat@yahoo.co.uk باقر امینیان فتیده B. aminian fatideh گروه شیلات، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان گیلان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران ایران Baminiran@gmail.com Common carp Probiotic Hematological Immunological Growth parameters کپور معمولی پروبیوتیک شاخص‌های خونی ایمنی رشد ##اسدی خمامی، س.، مورکی، ن. و ولیپور، ع.، 1396. تأثیر پروبیوتیک Pediococcus acidilactici بر رشد و شاخص‌های خونی بچه ماهی سیم Abramis brama orientalis . علوم و فنون شیلات، ۶ (۱) :۱-۱۲.##باعثی، ف.، آبرومند، ع.، ضیایی نژاد، س. و جواهری بابلی، م.، 1395. تأثیر لاکتوباسیل‌های پروبیوتیکی تجاری بر پارامترهای رشد، بقاء و شاخص‌های تغذیه‌ای ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). نشریه توسعه آبزی‌پروری، ۱۰ (۴):۳۹-۴۹.##باقری، ط. و فارسانی، ح.، 1395. اثر پروبیوتیک لاکتوباسیلوس اسیدوفیلوس بر شاخص‌های رشد و کارایی تغذیه، خون‌شناسی و فعالیت آنزیم‌های گوارشی ماهی سورم طلایی. پژوهش‌‌های ماهی‌شناسی کاربردی، 4(2): 95-105.##تیموریان، ب. س.، شعیبی عمرانی، ب. و شناور ماسوله، ع.، 1395. تأثیر پروبیوتیک لاکتوباسیلوس اسیدوفیلوس Lactobacillus acidophilus بر شاخص‌های رشد ماهی کویی. پایان‌نامه دکتری، دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرج.##چوبکار ن.، کاکولکی ش.، صحرایی ف.، آقاجانی ع.، رضایی منش م. و محمدی ف.، 1397. بررسی تاثیر غذای غنی شده با پروبیوتیک بر فراسنجه های رشد ماهی پرورشی قزل‌آلای رنگین کمان. مجله علمی شیلات ایران، ۲۷ (۵) :۱۱۵-۱۲۴. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.118089##حسینی، ع.، اورجی، ح.، یگانه، س. و شهابی، ح.، 1393. تأثیر پروبیوتیک پدیوکوکوس اسیدی لاکتیسی روی رشد، فاکتورهای خونی و سرمی در ماهی آزاد دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران، 2: 35-45. DOI: 10.22092/ISFJ.2014.103691##خالقی، م.، سلطانی، م. و حسینی شکرابی، پ.، 1397. اثر افزودن مخلوط پروبیوتیک Bacillus subtilis و Bacillus licheniformis (دی پرو آکوا) به جیره غذایی بر برخی شاخص‌های رشد، خونی و ایمنی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). زیست شناسی دریا، ۱۰ (۲) :۱۱-۲۰.##شیخ ویسی، ر., باقری, ط., سنچولی, ح. و هدایتی, س. ع. ا.، 1396 . اثرات سطوح مختلف پروبیوتیک Lactobacillus casei و نانوذرات نقره بر شاخص‌های رشد و ترکیب لاشه بچه ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). نشریه علمی پژوهشی فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان، 5(4): 82-93. 10.22124/JAPB.2018.6377.1122 DOI: ##کاهکش م. و رومیانی ل.، 1396. تاثیر خوراکی لاکتوباسیلوس کازئی و سطوح مختلف ایمونوژن بر عملکرد فاکتورهای ایمنی و خونی کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله علمی شیلات ایران، ۲p۶(۶) :۱۳۹-۱۵۰. DOI: 10.22092/ISFJ.2018.115841##مصلحی، ف.، ستاری، م.، خوش‌خلق، م.، شناور ماسوله، ع. و عباسعلی‌‌زاده، ع.، 1393. اثر پروبیوتیک پدیوکوکوس پنتوساسئوس (Pediococcus pentosaceus) بر عوامل رشد و ایمنی تاس‌ماهی سیبری (Acipenser baerii). علوم و فنون شیلات، ۳ (۴): ۸۱-۹۲.##Bairagi, A., Ghosh, K.S., Sen, S.K. and Ray, A.K., 2002. Enzyme producing bacterial flora isolated from fish digestive tracts. Aquaculture International, 10: 109–121. DOI: 10.1023/A:1021355406412##Blaxhall, P.C. and Daisley, K.W., 1973. Routine hematological methods for use with fish blood. Journal of Fish Biology, (5): 771-781. DOI: 10.1111/j.1095-8649.1973.tb04510.x##Chi, C., Jiang, B., Yu, X.B., Liu, T.Q., Xia, L. and Wang, G.X., 2014. Effects of three strains of intestinal autochthonous bacteria and their extracellular products on the immune response and disease resistance of common carp, Cyprinus carpio. Fish and Shellfish Immunology, 36: 9–18. DOI: 10.1016/j.fsi.2013.10.003##Das, A., Nakhro, K., Chowdhury, S. and Kamilya, D., 2013. Effects of potential probiotic Bacillus amyloliquifaciens FPTB16 on systemic and cutaneous mucosal immune responses and disease resistance of catla (Catla catla). Fish and Shellfish Immunology, 35: 1547–1553. DOI: 10.1016/j.fsi.2013.08.022##Drabkin, D.L.,1945. Crystallographic and optical properties of human Hemoglobin-a proposal for the standardation of Hemoglobin. American Journal of the Medical Sciences, 2: 268-270.## ##Giri, S.S., Sen, S.S. and Sukumaran, V., 2012. Effects of dietary supplementation of potential probiotic Pseudomonas aeruginosa VSG-2 on the innate immunity and disease resistance of tropical freshwater fish, Labeo rohita. Fish and Shellfish Immunology, 32: 1135–1140. DOI: 10.1016/j.fsi.2012.03.019##Gopalakannan, A. and Arul, V., 2011. Inhibitory activity of probiotic Enterococcus faecium MC13 against confers protection against hemorrhagic septicemia in common carp. Aquaculture International, 19(5):973-985. DOI: 10.1007/s10499-011-9415-2 ##Gupta, A., Gupta, P. and Dhawan, A., 2014. Dietary supplementation of probiotics affects growth, immune response and disease resistance of Cyprinus carpio fry. Fish and Shellfish Immunology, 41: 113–119. DOI: 10.1016/j.fsi.2014.08.023##Irianto, A. and Austin, B., 2002. Use of probiotics to control furunculosis in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Journal of Fish Diseases, 25: 333-342. DOI: 10.1046/j.1365-2761.2002.00375.x##Klinger, R.C., Blazer, V.S. and Echevarria, C., 1996. Effects of dietary lipid on the hematology of channel catfish, Ictalurus punctatus. Aquaculture, 147(3-4), 225-233. DOI: 10.1016/S0044-8486(96)01410-X##Merrifield, D.L., Dimitroglou, A., Bradley, G., Baker, R.T.M. and Davies, S.J., 2009. Probiotic applications for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss walbaum) I. Effects on growth performance, feed utilization, intestinal microbiota and related health criteria. Aquacalture Nutrition,10: 1365- 2095. DOI: 10.1111/j.1365-2095.2009.00689.x##Mohapatra, S., Chakraborty, T., Prusty, A.K., PaniPrasad, K. and Mohanta, K.N., 2014. Beneficial effects of dietary probiotics mixture on hemato-immunology and cell apoptosis of Labeo rohita fingerlings reared at higher water temperatures. PLoS ONE, 9(6): e100929. DOI: 10.1371/journal.pone.0100929##Nayak, S. K., 2010. Probiotics and immunity: A fish perspective. Fish and Shellfish Immunology, 29: 2-14. DOI: 10.1016/j.fsi.2010.02.017##Noh, S.H.; Han, K.; Won, T.H. and Choi, Y.J., 1994. Effect of antibiotics, enzyme, yeast culture and probiotics on growth performance of carp. Korean Journal of Animal Science, 36: 480-486.##Rehŭlka, J., 2000. Influence of astaxanthin on growth rate, condition and some blood indices of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, 190: 27-47. DOI: 10.1016/S0044-8486(00)00383-5##Talas, Z. S. and Gulhan, M. F., 2009. Effects of various propolis concentrations on biochemical and hematological parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Ecotoxicology and Environmental Safety, 72: 1994-1998. DOI: 10.1016/j.ecoenv.2009.04.011 ##Thomas, L., 1998. Clinical laboratory diagnostics: Use and assessment of clinical laboratory results. TH-Books, Verlagsgesellschaft.##Wang, Y. B., 2007. Effect of probiotics on growth performance and digestive enzyme activity of the shrimp Penaeus vannamei. Aquaculture 269: 259-264. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2007.05.035##Weifen, L., Xiaoping, Z.,Wenhui, S., Bin, D., Quan, L., Luoqin, F. and Dongyou, Y., 2012. Effects of Bacillus preparations on immunity and antioxidant activities in grass carp (Ctenopharyngodon idellus). Fish Physiology and Biochemistry, 38: 1585–1592. DOI: 10.1007/s10695-012-9652-y##Wu, Z.Q., Jiang, C., Ling, F. and Wang, G.X., 2015. Effects of dietary supplementation of intestinal autochthonous bacteria on the innate immunity and disease resistance of grass carp (Ctenopharyngodon idellus). Aquaculture, 438: 105–114. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2014.12.041## ##

بررسی اثر مهارکنندگی عصاره‌های دی‌اتیل‌اتری و متانولی شقایق موکتی (Sarcophyton spp.) و ستاره دریایی (Pentaceraster spp.) بر باکتری‌های اشرشیاکلی (Escherichia coli) و باسیلوس سوبتیلیس (Bacillus subtilis) Evaluation of the effects of diethyl ether and methanol extracts of carpet anemone (Sarcophyton spp.) and starfish (Pentaceraster spp.) on E. coli and Bacillus subtilis bacteria 1 1 محیط زیست دریایی، منبع بسیاری از ترکیبات طبیعی زیست فعال است که خصوصیات ساختاری-شیمیایی آنها در سایر محصولات طبیعی گیاهان و جانوران خشکی‌زی مشاهده نمی‌شوند. این مطالعه به منظور بررسی و مقایسه خواص آنتی بیوتیکی عصاره‌های دی‌اتیل‌اتری و متانولی استخراج شده از ستاره دریایی و شقایق موکتی انجام شد. برای این تحقیق، ستاره دریایی و شقایق موکتی از منطقه جزیره لارک جمع آوری شدند و سپس عصاره‌گیری با استفاده از حلال‌های دی‌اتیل‌اتر و متانول انجام گردید. بررسی خواص آنتی بیوتیکی عصاره‌های به‌دست آمده بر باکتری‌های اشرشیاکلی (Escherichia coli) و باسیلوس سوبتیلیس (Bacillus subtilis) ابتدا با استفاده از روش انتشار در آگار جهت تعیین قطر هاله عدم رشد و سپس رقت لوله‌ای به منظور تعیین حداقل غلظت مهارکنندگی (MIC) و حداقل غلظت کشندگی باکتریایی (MBC) صورت گرفت. بر اساس نتایج بدست آمده، عصاره دی‌اتیل‌اتری استخراجِی از شقایق موکتی هیچ اثر مهارکنندگی و کشندگی بر باکتری‌های مورد آزمایش نداشت. در حالیکه عصاره دی اتیل اتری استخراجی از ستاره دریایی در غلظت 40 mg/ml بر باکتری اشرشیاکلی اثر مهارکنندگی رشد را نشان داد، اما قدرت کشندگی نداشت. این عصاره در غلظت‌های مورد نظر تأثیری بر مهار رشد و کشندگی باکتری باسیلوس سوبتیلیس نداشتند. عصاره متانولی استخراجی از ستاره دریایی در غلظت 30mg/ml  بر باکتری باسیلوس سوبتیلیس اثر مهارکنندگی رشد و در غلظت 50mg/ml  اثر کشندگی نشان داد ولی هیچ یک از غلظت های مورد آزمایش تأثیری بر باکتری اشرشیاکلی نداشتند. همچنین عصاره متانولی استخراجی از شقایق موکتی در غلظت 40mg/ml  برای باکتری اشرشیاکلی اثر مهارکنندگی رشد داشت، اما اثر کشندگی نشان نداد. در حالیکه هیچیک از غلظت‌های مورد آزمایش تأثیری بر باکتری باسیلوس سوبتیلیس نداشتند. همچنین بیشترین قطر هاله عدم رشد برای عصاره متانولی ستاره دریایی بر باکتری باسیلوس سوبتیلیس با قطر هاله عدم رشد 8/0±1/12 میلی‌متر ثبت گردید.  نتایج تحقیق حاضر نشان داد که عصاره متانولی استخراجی از ستاره دریایی دارای اثر مهارکنندگی رشد بیشتر و نیز اثر کشندگی بر باکتری  باسیلوس سوبتیلیس بود. در حالیکه عصاره متانولی استخراجی از شقایق موکتی دارای قدرت مهار کنندگی رشد بر باکتری اشرشیاکلی بود. در نتیجه، عصاره متانولی ستاره دریایی در مهار رشد باکتری باسیلوس سوبتیلیس و عصاره متانولی شقایق موکتی در مهار رشد باکتری اشریشیاکلی مؤثر بودند. 2 Marine environment is the main source of natural bioactive products whose chemical-structural properties are not similar with other natural products of plants and other inland organisms. The present study was carried out to evaluate antibiotic properties of diethyl ether and methanol extracts of two marine species including starfish and carpet anemone. The samples of starfish and carpet anemone were collected from the Lark Island coasts. Extraction was done using diethyl ether and methanol solvents and antibiotic properties analysis on Escherichia coli and Bacillus subtilis were evaluated using agar diffusion method. Then tube dilution to determine the minimum inhibitory concentration (MIC) and minimum bactericidal concentration (MBC). According to the results, diethyl ether extract from carpet anemone had no inhibitory effect on E. coli bacteria. While, starfish methanol extract (40 mg/ml) showed a growth inhibitory effect on E. coli bacteria. The starfish methanol extract (30 and 50 mg/ml) had a growth inhibitory effect on B. subtilis bacteria. Carpet anemone methanol extract (40 mg/ml) cause a growth inhibitory effect on E. coli, but did not have a deleterious effect. Starfish methanol extract showed the highest growth inhibitory effect on B. subtilis and created a growth inhibitory circle zoon (12.1±0.8 mm diameter). The results showed that the methanolic extract of the starfish has higher growth inhibitory effect on the two studied bacterial species. In conclusion, methanolic extracts of the starfish were effective in inhibiting the growth of Bacillus subtilis bacteria and methanolic extract of carpet anemone in inhibiting E. coli bacteria growth. 195 205 2016/05/72018/12/302019/01/202019/01/162018/12/32018/07/222019/02/82018/12/62019/01/92019/02/262018/11/192017/08/102019/02/262019/03/122019/01/232018/12/272019/01/172018/11/16 1397/8/25 2019/06/102019/05/212019/07/202019/07/202019/06/12019/04/82019/06/122019/07/202019/07/202019/06/32019/07/202019/06/172019/07/202019/06/222019/07/202019/07/202019/07/202019/07/17 1398/4/26 مرضیه منصورلکورج M. Mansurlakuraj گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج ایران m.m_lakuraj@ymail.com کامران رضایی توابع K. Rezaei Tavabe گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج ایران krtavabe@ut.ac.ir علیرضا میرواقفی A.R. Mirvaghefi گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج ایران avaghefi@ut.ac.ir ملیکا ناظمی M. Nazemi پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران. ایران melikanazemi@yahoo.com محمدعلی نعمت الهی M.A. Nematolahi گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج ایران malahi@ut.ac.ir مجتبی جهاندیده M. Jahandideh دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان ایران mojtaba.jahandide@gmail.com Antibacterial Agar diffusion Carpet anemone starfish MIC MBC قطر هاله عدم رشد حداقل غلظت کشندگی حداقل غلظت مهار کنندگی ستاره دریایی شقایق موکتی ##Alves, R.R. and Rosa, I.L., 2007. Zootherapy goes to town: the use of animal-based remedies in urban areas of NE and N Brazil. Journal of Ethnopharmacology, 113: 541–555. DOI: 10.1016/j.jep.2007.07.015##Alves, R.R. and Alves, H.N., 2011. The faunal drugstore: animal-based remedies used in traditional medicines in Latin America. Journal of Ethnobiology and Ethnomedicine, 10: 1746–4269. DOI: 10.1186/1746-4269-7-9##Banister K. and Campbell A., 1985. Encyclopedia of underwater life. Oxford shire: Andromeda Oxford Limited, Oxford, 287P.##Bell, J.J. and Smith, D., 2004. Ecology of sponge assemblages (Porifera) in the Wakatobi region, south-east Sulawesi, Indonesia: richness and abundance. Journal of the Marine Biological Association, 84: 581- 591. DOI: 10.1017/S0025315404009580h##Borbon, H., Valdes, S., Alvarado, M.J., Soto, R. and Vega, I., 2016. Antimicrobial properties of sea anemone Anthopleura nigrescens from Pacific coast of Costa Rica. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 6: 418-421. DOI: 10.1016/j.apjtb.2016.01.014##Carter, A.P., Clemons, W.M., Brodersen, D.E., Morgan-Warren, R.J., Wimberly, B.T. and Ramakrishnan, V., 2000. Functional insights from the structure of the 30S ribosomal subunit and its interactions with antibiotics. Nature, 407: 340–348. DOI: 10.1038/35030019##Choi, G.H., Kim, B.A., Park, C.I. and Kim, Y.Y., 2010. The effect of phytosphingosine isolated from Asterina pectinifera on cell damage induced by mite antigen in HaCaT cell and ##antibacterial activity against Staphylococcus aureus. African Journal of Biotechnology, 9(6): 920-926. ##Crowther A.L., 2011. Animal biodiversity: an outline of higher-level classification and survey of taxonomic richness. Zootaxa, 3148: 165-91.##Devi, P., Wahidullah, S., Rodrigues, C. and Souza, L.D., 2010. The sponge-associated bacterium Bacillus licheniformis SAB1: a source of antimicrobial compounds. Marine drugs, 8: 1203-1212. DOI: 10.3390/md8041203##Emadi, H., 2008. Saltwater Aquarium fishes. Aquaculture Scientific Publications, Tehran, 262P.##FAO, 2012. Field Identification Guide to the Living Marine Resources of Kenya, Italy, Rome, 422P. ##Farjami, B., Nematollahi, M.A., Moradi, Y., Irajian, G.R. and Nazemi, M., 2014. Study of antibacterial effect of the extracts of the Sea Cucumber (Holothuria leucospilota) of Persian Gulf on the Escherichia coli. Iranian Journal of Medical Microbiology, 8: 27-33.##Franklin, T.J. and Snow, GA., 2005. Biochemistry and molecular biology of antimicrobial drug action. 6th edition, New York, Springer press. 135 pp.##Hafezieh, M., 2018. Antioxidant properties of phenol compounds in brown seaweed, Sargassum ilicifolium of Iranian shore coast of Oman sea . isfj, 26 (5) :13-21. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.114048##Haug T., Kjuul, A.K., Styrvold, O.B., Sandsdalen, E., Olsen, Q.M. and Stensvåg, K., 2002. Antibacterial activity in Strongylocentrotus droebachiensis (Echinoidea), Cucumaria frondosa (Holothuroidea), and Asterias rubens (Asteroidea). Journal of Invertebrate Pathology, 81: 94-102. DOI: 10.1016/S0022-2011(02)00153-2##Mayer, A.M.S., Rodriguez, A.D.R., Berlinck, G.S. and Fusetani, N., 2011. Marine compounds with antibacterial, anticoagulant, antifungal, anti-inflammatory, antimalarial, antiprotozoal, antituberculosis, and antiviral activities; affecting the immune and nervous system, and other miscellaneous mechanisms of action. Comparative Biochemistry and Physiology, Part C, 153: 191-222. DOI: 10.1016/j.cbpc.2010.08.008##Moghadasi, Z., Jamili, S., Shahbazzadeh, D., Mosaffa, N., Pooshang Bagheri, K., 2017. Studing the effect of aqueous extract of the Persian Gulf carpet anemone (Stichodactyla haddoni) on breast cancer cell line in vitro. Isfj, 26 (2) :37-46. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.113482##Nabipoor, I., 2008. Marine medicine. Bushehr University of Medical Sciences and Health Services, Bushehr Medicine Journal, 8: 155-167. ##Nabipoor, I., Najafi, A. and Bolkheyr, A., 2010. Persian Gulf Pharmaceutical mollusks, Bushehr University of Medical Sciences and Health Services, Technical report, 61 pp.##Nazemi, M. and Pishevarzad, F., 2011. Antibacterial investigation of Axinella sinoxea sponge extracts from the Persian Gulf Lark Island. Journal of Aquatic Biology, 4: 54-65. DOI: 10.3354/ame019279##Qaralleh, H., Idid, S., Susanti, D., Taher, M. and Khleifat, K., 2010. Antifungal and antibacterial activities of four Malaysian sponge species (Petrosiidae). Journal de Mycologic Medicale, 20: 315-320. DOI: 10.1016/j.mycmed.2010.10.002##Rocha, J., Peixe, L., Gomes, N.C.M. and Calado, R., 2011. Cnidarians as a source of new marine bioactive compounds – an overview of the last decade and future steps for bioprospecting. Marine Drugs, 9: 1860-1886. DOI: 10.3390/md9101860##Ros, U., Edwards, M.A., Epand, R.F., Lanio, M.E., Schreier, S. and Yip, C.M., 2013. The sticholysin family of pore-forming toxins induces the mixing of lipids in membrane domains. Biochim Biophys Acta, 1828: 2757-2762. DOI: 10.1016/j.bbamem.2013.08.001##Sharma, A. and Sharma, K., 2011. Should solubility and zone of inhibition be the only criteria for selection of solvent in antimicrobial assay? Advances in Biological Research, 5: 241-247. ##Thangaraj. S., Bragadeeswaran, S., Suganthi, K. and Sri-kumar, N., 2011. Antimicrobial properties of sea anemone Stichodactyla mertensii and Stichodactyla gigantea from Mandapam coast of India. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 28: 43-46. DOI: 10.1016/S2221-1691(11)60120-2##Villanova, P.A., 2004. Methods for dilution antimicrobial susceptibility tests for bacteria that grow aerobility. National Committee for Clinical laboratory standards (NCCLS), USA. 3rd ed. Approved standard M7-A. 98P.##Villasin J. and Pomory, C.M., 2000. Antibacterial activity of extracts from the body wall of Parastichopus parvimensis (Echinodermata: Holothuroidea). Fish and Shellfish Immunology, 10: 46-57. DOI: 10.1006/fsim.2000.0265. ##

یافته علمی: بررسی آلودگی میکروبی میگوهای تجاری بازار شهر اهواز Investigation of Microbial contamination of commercial shrimps at Ahvaz Market 1 1 هدف از انجام مطالعه ی حاضر بررسی کارایی روش بسته بندی در خلا در وضعیت آلودگی میکروبی فیله ی ماهیان بسته بندی شده موجود در بازار اهواز می باشد. به منظور بررسی آلودگی میکروبی میگوهای تجاری در بازار اهواز، 8 گونه‌ی متداول موجود شامل شامل ببری سبز Penaeus semisulcatus، هندی سفید Penaeus indicus، صورتی جنوبیPenaeus farfante ، شاه میگو Penulirus homarus، موزی Penaeus merguiensis، کیدیParapenaopsis stylifra ، سرتیز Metapenaeus affinis، وانامی Litopenaeus vanamei  استفاده گردید. جهت بررسی آلودگی میکروبی این میگوها از بافت عضله نمونه برداری شد. دو خانواده باکتریایی (Vibrionaceae و Streptococcaceae) مشتمل بر 2 جنس و 3 گونه جداسازی شدند. بیشترین گونه جدا شده Streptococcus faecalis با درصد فراوانی 5/61% و کمترین میزان فراوانی مربوط به Vibrio alginolyticus با میزان فراوانی 7/7% بود. میگوی صورتی جنوبی با میزان آلودگی Vibrio parahaemolyticus به میزان 103× 5/4 دارای بالاترین میزان آلودگی بود. همچنین وجود یک گونه قارچ از شاخه Ascomycota با نام Penicillium expansum از خانواده Trichocomaceae مشاهده گردید. با توجه به اینکه 25% نمونه های مورد مطالعه دارای آلودگی باکتریایی بودند به نظر می رسد که نظارت دقیق و مستمر بر بیماری زاهای احتمالی V. parahaemolyticus، به منظور ارزیابی در معرض خطر بودن سلامت انسان از طریق مصرف غذاهای دریایی، لازم و ضروری می باشد. 2 The aim of present study was to assess the susceptibility of vacuum packaging in prevention of microbial contamination of packaged fish fillets at Ahvaz market. In order to evaluate the microbial contamination of commercial shrimps at Ahvaz market, 8 common species has been used as follow: Penaeus semisulcatus, Penaeus indicus, Penaeus farfante, Penulirus homarus, Penaeus merguiensis, Parapenaopsis stylifra, Metapenaeus affinis, and Litopenaeus vanamei. For Identification of microbial contamination of sampled shrimps, the muscle tissue has been observed. Two bacterial family (Vibrionaceae and Streptococcaceae) including 2 genus and 3 species has been identified. The most abundant species was Streptococcus faecalis with frequency of 61.5% and the lowest frequent species was Vibrio alginolyticus (7.7%). No bacterial contamination has been detected in Penulirus homarus and Metapenaeus affinis. Penaeus farfante with the 4.5×103 contamination of Vibrio parahaemolyticus was the most contaminated species. In study of organs for detection of fungi, Penicillium expansum from Phylum Ascomycota, Family of Trichocomaceae has been detected. Due to the contamination of of studied specimens it should be noted that precise and continuous monitoring of possible pathogenicity of V. parahaemolyticus in order to evaluate the health risk of consuming sea food would be necessary.  207 211 2016/05/72018/12/302019/01/202019/01/162018/12/32018/07/222019/02/82018/12/62019/01/92019/02/262018/11/192017/08/102019/02/262019/03/122019/01/232018/12/272019/01/172018/11/162018/11/13 1397/8/22 2019/06/102019/05/212019/07/202019/07/202019/06/12019/04/82019/06/122019/07/202019/07/202019/06/32019/07/202019/06/172019/07/202019/06/222019/07/202019/07/202019/07/202019/07/172019/07/20 1398/4/29 پردیس پروین P. Parvin گروه زیست شناسی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد دزفول ایران Zkhoshnood@yahoo.com زهرا خوشنود Z. Khoshnood گروه زیست شناسی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد دزفول ایران ZKhoshnood@gmail.com Shrimp Microbial Contamination Fungal Contamination. میگو آلودگی میکروبی آلودگی قارچی ##تخم افشان، م.، و تمجیدی، ب. 1382. علائم ظاهری و آسیب شناسی بافتی بیماری لکه سفید White Spot Syndrome Disease (WSSD) در میگوی پرورشی سفید هندی در استان خوزستان. مجله علمی شیلات ایران. ۱۲ (۲): ۱۵-۲۸.##حسین خضری، پ. بررسی فلور قارچی میگوی سفید هندی (Penaeus indicus) در مزارع پرورش میگو واقع در سایت حله – بوشهر، 1383. مجله علمی شیلات ایران. 13 (4): 169-178. (DOI): 10.22092/ISFJ.2004.113795##حسینی آغوزبنی، ح.، حاجی رضایی، س. 1394. تاثیر پرورش توام میگوی سفید غربی (Litopenaeus vannamei) و ماهی کفال خاکستری (Mugil cephalus) بر تنوع و شیوع گونه های باکتری جنس ویبریو در مزارع پرورش میگو. نشریه توسعه آبزی پروری، 9 (1): 25-31. ##Basti, A.A., Misaghi, A., Zahraei Salehi, T. and A. Kamkar, 2006. Bacterial pathogens in fresh, smoked and salted Iranian fish. Food Control, 17: 183-188. DOI: 10.1016/j.foodcont.2004.10.001##Iranian National Standard, 2011. Food and animal feed microbiology, a general method for search and detection of entropathogenic species of Vibrio. Part I: Identification of Vibrio parahemplythicus and Vibrio chlorea. Standard and Industrial Research Institute of Iran, Tehran. 89P. ##Rahimi Gharamirshamlu, G., Ejhdehakoshpour, A. and Shakoori, A., 2015. Study of ecology of Vibrio in water supply channel and culture pools of Litopenaeus vennamei at Guatr corporation. Thesis in Marine Biology, Sailing and Marine Science University of Chabahar, Marine Science College, Guatr Corporation.##Razavilar, V., and Rezvani, S., 2004. Microbial risk assessment of Persian caviar during processing and cold storage. Developments in Food Science, 42: 441-446. DOI: 10.1016/S0167-4501(04)80043-8 ##Salehi, A., 1999. Study of Culture management statistics of Shrimp culture farms of Tiab. Final report of Fisheries Research Organization of Iran. 21P.##Wong, H., Liu, S., Chien-Shun, C., Mitsuaki, N., Lee, B., Orasa, S., Nair, G. B., Charles, A. K., and Hatsumi, T. 2007. Pulsed-field gel electrophoresis typing scheme for Vibrio parahaemolyticus isolates from fifteen countries. International Journal of Food Microbiology, 114: 280–287. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2006.09.024 ##Zarei, M., Pourmahdi Borujeni, M., Jamnejad, A. and M. Khezrzadeh, 2012. Seasonal prevalence of Vibrio species in retail shrimps with an emphasis on Vibrio parahaemolyticus. Food Control 107-109. DOI:10.1016/jfoodcont.2011.10.024## ##

یافته علمی: میزان دقت اندازه‌گیری‌های ماهواره‌ای در تعیین الگوی شوری و دمای سطحی خلیج فارس با استفاده از روش آماری A Study to determine the accuracy of satellite measurements for the salinity pattern and surface temperature of Persian Gulf using statistical method 1 1 این مقاله با هدف تعیین الگوی شوری و دمای سطحی آب خلیج فارس با استفاده از داده‌های سنجنده­  AMSU-B بر ماهواره NOAA-16 مورد مطالعه قرار گرفته است. روش رگرسیون خطی چندگانه در نرم افزار آماری R بر داده‌های سنجنده AMSU-B و داده میدانی اجرا شده است که  بر اساس نتایج  بدست آمده، ضریب تعیین (R2)  برای شوری و دما بترتیب برابر با 85/0 و 94/0 بود. همچنین خطای (RMSE) بین داده‌های ماهواره و داده‌‌های میدانی برای شوری 045/0و دما 12/0 می‌باشد که حاکی از آن است که داده‌‌های ماهواره سنجنده AMSU-B برای تعیین الگوی شوری و دمای سطحی آب در این مطالعه دقت کافی دارد .   2 The aim of this paper is to determine the sea surface salinity (SSS) and temperature (SST) of Persian Gulf by using the AMSU-B sensor data of NOAA-16 satellite. A multiple linear regression method was used by statistical computing software R on AMSU-B data and in-situ data. Based on the results, the correlation coefficient (R2) for salinity and temperature was 0.85 and 0.94, respectively. Also, the Root Mean Square Error (RMSE) between satellite and ‘in-situ’ data are 0.045 psu for SSS and 0.12 for temperature. This indicates that in this study the AMSU-B satellite data for determining the salinity pattern and surface temperature is accurate enough. 213 217 2016/05/72018/12/302019/01/202019/01/162018/12/32018/07/222019/02/82018/12/62019/01/92019/02/262018/11/192017/08/102019/02/262019/03/122019/01/232018/12/272019/01/172018/11/162018/11/132018/10/14 1397/7/22 2019/06/102019/05/212019/07/202019/07/202019/06/12019/04/82019/06/122019/07/202019/07/202019/06/32019/07/202019/06/172019/07/202019/06/222019/07/202019/07/202019/07/202019/07/172019/07/202019/07/20 1398/4/29 مهدی محمد مهدی زاده M.M. Mehdizadeh دانشگاه هرمزگان ایران mehdizadeh@hormozgan.ac.ir مریم دبستانی M. Dabestani دانشگاه هرمزگان ایران dabestani.au@gmail.com ابوالحسن غیبی A.H. Gheybi دانشگاه هرمزگان ایران abolhassang@yahoo.com جعفر عزیزپور J. Azizpour مرکز اقیانوس شناسی دریای خزر (نوشهر) ایران azizpour@inio.ac.ir SSS SST AMSU-B sensor data Statistical computing software R Persian Gulf SSS SST داده های سنجنده AMSU-B نرم افزار آماری R خلیج فارس ##امینی .ی. علیپور. ع. سال1395. برآورد آب معادل برف در استان کرمان جهت مدیریت منابع آب با استفاده از داده‌‌های سنجش از دور مایکروویو غیر فعال به روش شبکه های عصبی مصنوعی و تکنیک های رگرسیون چندگانه . فصلنامه علمی- پژوهشی اطلاعات جغرافیایی « سپهر»." 26(102): 67-80.##بختیارکیا. س و قیالو.ع. 1395. برآورد الگوریتم شوری سطح آب دریای عمان با استفاده از تصاویر سنجنده MODIS . اولین کنفرانس ملی سنجش از دور و سیستم اطلاعات جغرافیایی در علوم زمین.شیراز. آبان##Dorgham, M.M., 1989. Environmental conditions and phytoplankton distribution in the Persian Gulf. Marine Biology, 31(182): 36-53.##Klemas, V., 2011. Remote sensing of sea surface salinity: an overview with case studies. Journal of Coastal Research, 27(5), 830–838. West Palm Beach (Florida), ISSN 0749-0208.##Korosov, A., F. Counillon, and J. A. Johannessen.، 2015. Monitoring the spreading of the Amazon freshwater plume by MODIS, SMOS, Aquarius, and TOPAZ. J. Geophys. Res. Oceans, 120: 268–283. doi: 10.1002/ 2014JC010155. ##Marghany, M. and Mazlan, H., 2011. Retrieving seasonal sea surface salinity from MODIS satellite data using a Box-Jenkins algorithm, Geoscience and Remote Sensing Symposium, 2011 IEEE International, IGARSS 2011, 24-29 July 2011, p 2017 – 2020.##Marghany, M. and Ramlan, N.E.B., 2014. Simulation of Tsunami effects on Sea Surface Salinity using MODIS satellite data during 2004 tsunami, IOP Conference Series Earth and Environmental Science 02/2014; 18(1):012004. DOI: 10.1088/1755-1315/18/1/012004## Qing, s., Zhang, J., Cui, T. and Bao, Y., 2013. Retrieval of sea surface salinity with MERIS and MODIS data in the Bohai Sea. Remote Sensing of Environment, 136: 117–125. ##Weng, F., Ferraro, R.R. and Grody, N.C., 2000. Effects of AMSU cross-scan asymmetry of brightness temperatures on retrieval of atmospheric and surface parameters, in Microwave Radiometry and Remote Sensing of the EarthɅs Surface and Atmosphere, edited by P. Pampaloni and S. Paloscia, pp. 255–262. VSP, Zeist, Netherlands, 2000.##Wong, M., Kwan, S. H. L., Young, J. K., Nichol, J., Zhangging, L. and Emerson, N., 2007. Modeling of suspended solids and sea surface salinity in Hong Kong using Aqua/MODIS satellite images. Korean Journal of Remote Sensing, 23(3): 161–169. ## ##