1398 28 4 114 221

مقایسه تغییرات فیزیکوشیمیایی، میکروبی و حسی فیله‌‌های فیل ماهی (Huso huso) دودی طعم‌دهی شده با آب نمک و سس به مدت 30 روز در یخچال Comparison of physicochemical, microbial and sensory properties of Huso huso fillets smoked and flavored with brine and sauce for 30 days in the refrigerator 1 1 در مطالعه حاضر، تغییرات فیزیکوشیمیایی، میکروبی و حسی فیل ماهی پرورشی ( Huso huso) دودی طعم‌دهی شده با آب نمک و سس به مدت 30 روز در دمای یخچال مورد بررسی قرار گرفت. بدین منظور، فیل ماهی پرورشی پس از صید و آماده‌سازی، فیله شد. سپس فیله‌ها در آب نمک‌ اشباع با غلظت 34/6 درصد کلرید سدیم و سس مورد نظر، به مدت یک ساعت غوطه‌ور و به کمک دستگاه دودی‌کن صنعتی به روش گرم، دودی شدند. سپس نمونه‌ها بسته‌بندی و به مدت 30 روز در یخچال نگهداری شدند. نتایج نشان داد که میزان پروتئین در تیمار دودی سس‌گذاری شده (32/32-28/32 درصد) بیشتر از تیمار دودی آب نمک (29/28-84/27 درصد) بود و بین میزان TBA و ‎TVB-N نمونه‌ها تفاوت معنی‌داری مشاهده شد (‏05/0>p‎‏) بطوریکه بالاترین میزان TBA (03/2 میلی‌گرم مالون الدهید بر 1000 گرم چربی) و ‎TVB-N (9/25 میلی‌گرم ازت بر 100 گرم  نمونه) در پایان دوره نگهداری مربوط به نمونه دودی طعم‌دهی شده با سس گزارش شد. اما بین pH تیمارها تفاوت معنی‌داری مشاهده نشد (‏05/0<p‎‏). میزان بار باکتریایی کل و کلی‌فرم در طول دوره منفی ‏گزارش شد. اما رشد کپک در پایان دوره نگهداری در هر دو نمونه دودی طعم‌دهی شده با آب نمک (8 کلونی بر میلی‌لیتر نمونه) و سس (6 کلونی بر میلی‌لیتر نمونه) مشاهده شد. نتایج ارزیابی حسی حاکی از آن است که هر 2 نمونه در شرایط بسته‌بندی تفاوت چندانی نداشته است. بنابراین، بر اساس ارزیابی‌های حسی و میکروبی، عمر ماندگاری فیله دودی شده به روش گرم و طعم‌دهی شده با آب نمک و سس در بسته‌بندی‌های معمولی 20 روز تعیین شد. 2 In the present study, the physicochemical, microbial and sensory changes of Huso huso fillets smoked and flavored with brine and sauce for 30 days in the refrigerator were investigated. For this purpose, H.huso was filleted after harvesting and preparation. The fillets were immersed in saturated brine with a concentration of 6.34% NaCl and the sauce for one hour and smoked by hot smoky machine. Then, the samples were packed and stored for 30 days at refrigerator. The results showed that the percentage of protein in the smoked and flavored with sauce (32.28-32.32%) were higher than the brine treatment (27.84-28.29%), and there was a significant difference between TBA and TVB-N (p<0.05). So that, the highest levels of TBA (2.03 mg of malondialdehyde/1000 g of fat) and TVB-N (25.9 mg of nitrogen/100 g of sample) were reported at the end of the storage period for smoked and flavored with sauce (p<0.05); however, there was no significant difference between pH of treatments (p>0.05). The amount of total bacteria and coliform was negative during the period; but, mold was observed in both samples of smoked and flavored with brine (8 colonies per ml sample) and sauce (6 colonies per ml sample) at the end of storage period. The sensory evaluation results indicate that the both samples were not significantly different in terms of packaging. Therefore, based on sensory and microbiological evaluations, the shelf-life of hot smoked and flavored fillets with brine and sauce was 20 days in usual packages. 1 11 2018/12/3 1397/9/12 2019/07/20 1398/4/29 بهمن لطیفی B. Latifi مدیریت امور ماهیان خاویاری استان گیلان، شرکت مادر تخصصی خدمات جهاد کشاورزی، ‎‎بندر انزلی، ایران ایران b.latifi@yahoo.com@yahoo.com سید جواد ابوالقاسمی S.J. Abolghasemi گروه شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تالش، تالش، ایران ایران امیررضا شویک لو A.R. Shaviklo موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران ایران مینا احمدی M. Ahmadi پژوهشکده آبزی‌پروری آبهای داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران ایران ahmadimina64@yahoo.com یاسمن اعتمادیان Y. Etemadian باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران ایران y.etemadian@gmail.com ویدا قائمی V. Ghaemi دانشگاه زابل، دانشکده شیلات، زابل، ایران ایران vidaghaemi13394@gmail.com Hot smoking Flavored Fillet Cultured H. huso Shelf life دوددهی گرم طعم‌دهی فیله فیل ماهی پرورشی (H. huso) ماندگاری ##باباخانی لشکان، ا.، رضایی، م.، و رضایی، ک.، 1392. استفاده از عصاره جلبک قهوه ای سارگاسوم (Sargassum angustifolium) به منزله آنتی اکسیدان در نگهداری گوشت چرخ شده ماهی کیلکای معمولی (Clupeonella cultiventris). مجله منابع طبیعی ایران، 66 (1): 13-1.##بشارتی، ن.، و حسینی، س.، 1387. بررسی زمان ماندگاری ماهی سفید دودی شده به روش سنتی در یخچال و محیط طبیعی بر اساس شاخص شیمیایی TVB-N. اولین کنفرانس ملی علوم شیلات و آبزیان ایران. لاهیجان: 1-7.##پروانه، و.، 1374. کنترل کیفی و آزمایش‌های شیمیایی مواد غذایی. انتشارات دانشگاه تهران، ‌‌330صفحه.##رضایی، ک.، هدایتی فرد، م.، و فتاحی، ا.، 1392. شناسایی و استخراج هیدروکربن‌های چند حلقه ای آروماتیک از باقت ماهیان دودی و اثرات آن بر روی شاخص‌های کیفی، میکروبی و ترکیب اسید چرب. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران، 23 (108): 121-109.##رضوی شیرازی، ح.، 1386. تکنولوژی فرآوردههای دریایی، اصول نگهداری و فرآوری. انتشارات پارس نگار، جلد اول. 293صفحه.##ستاری، م.، 1383. ماهی شناسی سیستماتیک. انتشارات حق شناس، جلد دوم. 502 صفحه.##غفوری، ف.س.، شعبانی، ش.، و آخوندزاده بستی، ا.، 1397. مطالعه اثرات ضد باکتریایی عصاره جلبکChlorella vulgaris بر کیفیت ماهی RainbowTrout در دمای 4 درجه سلسیوس. علوم غذایی و تغذیه، 15(3): 64-51.##موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران.، 1371. ماهیان ، سخت پوستان و نرمتنان -راهنمای ارزیابی حسی. شماره 7431.##موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران.، 1387. میکروبیولوژی مواد غذایی و خوراک دام، روش ‌جامع برای کپک‌ها و مخمر ها. قسمت اول: روش شمارش کلی در فرآورده‌های با فعالیت آبی بیشتر ‌از 95 درصد،‌ شماره 10899-1.‌##موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران، 1386. میکروبیولوژی‌‎ ‎مواد‎ ‎غذایی‎ ‎و‎ ‎خوراک‎ ‎دام‎ – ‎آماده‎ ‎سازی‎ ‎آزمایه،‎ ‎سوسپانسیون‎ ‎اولیه‎ ‎ورقت‎‎های‎ ‎اعشاری‎ ‎برای‎ ‎آزمون‎ ‎های‎ ‎میکروبیولوژی. قسمت‎ ‎اول:‎ ‎مقررات‎ ‎کلی‎ ‎برای‎ ‎آماده‎سازی‎ ‎سوسپانسیون‎ ‎اولیه‎ ‎و‎ ‎رقت‎ ‎های‎ ‎اعشاری، شماره 8923-1. ‌##هدایتی فرد، م.، آریایی، پ.، و حسنی مقدم، ا.، 1395. اثر فرایند دودی سرد بر روی تولید هیدروکربن‌های چند حلقه‌ای آروماتیک (PAHs)، شاخص‌های کیفی، میکروبی و تغییرات اسیدهای چرب امگا–3، ماهی کپور Cyprinus carpio. نشریه علوم و فنون شیلات، 5(3): 93-73.##هدایتی فرد، م. و پورمولایی، ن.، 1395. مطالعه شاخصهای کیفیت، بار میکروبی و ترکیب اسیدهای چرب بافت ماهیان دودی سفید و کفال طلایی بازارهای شمال ایران ، فصلنامه علوم و صنا یع غذا یی، 13(57): 158-145. ##Al-Ghabshi, A., Al-Khadhuri, H., Al-Aboudi, N., Al-Gharabi, S., Al-Khatri, A., Al-Mazrooei, N. and Sukumaran Sudheesh, P., 2012. Effect of the freshness of starting material on the final product quality of dried salted shark. Advance Journal Food Science Technology, 4(2): 60–63.##AOAC., 2005. Official methods of analysis. William Horwitz, Ed, Washington, DC: AOAC International.##Arvanitoyannis, I.S. and Kotsanopoulos, K.V., 2012. Smoking of fish and seafood: history, methods and effects on Physical, nutritional and microbiological properties. Food Bioprocess Technol, 5(3): 831–853.##Bashir, K.M.I., Kim, J.S., An, J.H., Sohn, J.H. and Choi, J.S., 2017. Natural Food Additives and Preservatives for Fish-Paste Products, A Review of the Past, Present, and Future States of Research, Journal of Food Quality, 1-31. DOI:org/10.1155/2017/9675469. ##Beltran, A. and Moral, A., 1991. Changes in fatty acid composition of fresh and frozen sardine (Sardina pilchardus W.) during smoking. Food Chemistry, 42(1): 99-109. DOI: 10.1016/0308-8146(91)90010-L.##Bilgin, S., Unlusayin, M., Izci, L. and Gunlu, A., 2008. The determination of the shelf life and some nutritional components of gilthead seabream (Sparus aurata L., 1758) after cold and hot smoking. Turkish Journal Veterinary Animal Sciences, 32(1): 49-56.##Birkeland, S., Skara. T., Bjerkeng, B. and Røra, A.M.B., 2003. Product Yield and Gaping in Cold‐smoked Atlantic Salmon (Salmo salar) Fillets as Influenced by Different Injection‐salting Techniques. Journal of Food Science, 68(5): 1743-1748. DOI: 10.1111/j.1750-3841.2008.00850.x.##Burt, J.R., 1988. Fish smoking and drying, Philadelphia, PA: Elsevier Applied Science, xii, 166P.##Da Silva, L.V.A., 2002. Hazard analysis critical control point (HACCP), microbial safety, and shelf life of smoked blue catfish (Ictalurus furcatus). A thesis for Master of Science in the department of food science.110. ##Daramola, A., Fasakin, E.A. and Adeparusi, E.O., 2007. Changes in Physicochemical And Sensory Characteristics Of Smok-Dried Fish Species Stored At Ambient Temprature. African Journal of Food Agriculture, 7(6):1-16. ##Esaiassen, M., Ostli, J., Elvevoll, E.O., Joensen, S., Prytz, K. and Richardsen, R., 2004. Brining of cod fillets: influence on sensory properties and consumers liking. Food Quality and Preference, 15: 421-428. DOI:10.1016/j.foodqual.2003.07.001.##Eyabi, E.G.D., Hanson, S.W. and Barlow, P.J., 2001. Brine treatment, smoking and storage techniques: their effects on the microbial quality of smoked mackerel. The Journal of Food Technology in Africa, 6:59-62. DOI:10.4314/jfta.v6i2.19289.##FAO, 2012. The state of world fisheries and aquaculture. Rome, Italy: Publishing Policy and Support Branch Office of Knowledge Exchange, Research and Extension. ##Fentie, E.G. and Emire, S.A., 2013. Effect of Hot Smoking Process Parameters on Microbiological and Shelf Stability of Nile Tilapia (Oreocromis niloticus) Fillets. Journal of Food Processing and Technology, 4(1): 1-7. DOI: 10.4172/2157-7110.1000196.##Food Reference Website (FRW), 2004. Smoked fish: by Berberoglu, H. [Dec2004]. < Http: //www.foodreference.com/html/ artsmokedfish.html.##Gamal, F. Mohamed, Eman, M. Hegazy, and Abdellatef, M., 2011. Physicochemical Properties and Mycotoxins Contents of Tilapia Fish Fillets after Solar Drying and Storage. Global Veterinaria, 7(2):138-148.##Hafsteinsson, H., 1999. Interaction between raw material characteristics and smoking process on quality of smoked salmon: Technological Institute of Iceland. Project ID: FAIR961101##Hernández-Martínez, M., Gallardo-Velázquez, T., OsorioRevilla, G., Castañeda-Pérez, E. and Uribe-Hernández, K., 2015. Characterization of Mexican Fishes According to Fatty Acid Profile and Fat Nutritional Indices. International Journal of Food Properties, 19: 1401–1412. DOI: 10.1080/10942912.2015.1079787. ##Kilinc, B., Cakil, S., Csdun, A. and Sen, B., 2009. Effect of phosphate dip treatments on chemical، microbiological، color، textural، and sensory changes of rainbow trout (Onchoryncus mykiss) fillets during refrigerated storage. Journal of Food Product Technology, 18: 108-119. DOI:10.1080/10498850802581807.##Manju, S., Leema Jose, L.S., Gopal, T.K., Ravishankar, C.N. and Jose, L., 2007. Effects of sodium acetate treatment and vacuum packaging on chemical, microbiological, textural and sensory changes of pearl spot (Etroplus suratensis) during chill storage. Food Chemistry, 102(1): 27-32. DOI:10.1016/j.foodchem.2006.04.037.##Namulema, A., Muyonga, J.H. and Kaaya, A., 1999. Quality deterioration in frozen Nile perch (Lates niloticus) stored at –13 and – 27˚C. Food Research International, 32(2): 151-156. DOI:10.1016/S0963-9969(99)00066-6. ##Oğuzhan Yildiz, P., 2015. Effect of essential oils and packaging on hot smoked rainbow trout during storage. Journal of Food Processing and Preservation, 39: 806–815. DOI:10.1111/jfpp.12291.##Olayemi, F.F., Adedayo, M.R., Bamishaiye, E.I. and Awagu, E.F., 2011. Proximate composition of catfish (Clarias gariepinus) smoked in Nigerian stored products research institute (NSPRI): Developed kiln. International Journal of Fisheriesand Aquaculture, 3(5): 96-8.##Sallam, K.h.I., Ahmed, A.M., Elgazzar, M.M. and Eldaly, 2007. Chemical quality and sensory attributes of marinated Pacific saury (Cololabis saira) during vacuum-packaged storage at 4 °C. Food Chemistry, 102: 1061–1070. DOI: 10.1016/j.foodchem.2006.06.044.##Sikorski, Z.E., Haard, N., Motohiro, T. and Sun Pan, B., 1998. Quality, P89-115, In: Doe, P.E., (Ed.), Fish Drying and Smoking: Production and Quality, CRC Press, Technomic Pub, 250P.##Silva, B., Adetunde, O., Oluseyi, T., Olayinka, K. and Alo, B., 2011. Effects of the methods of smoking on the levels of polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) in some locally consumed fishes in Nigeria. African Journal of Food Science, 5(7): 384-391. ##Varlık, C., Gökoğlu, N. and Gün, H., 1993. Marinat üretiminde sıcaklığın sirke/tuz geçişi üzerine etkisi. Gıda, 18(4): 223–228.##Watts, B.M., Ylimaki, G.L. and Elias, L.G., 1989. Basic sensory methods for food evaluation. The International Development Research Center, Canada. UOC: 664.001.5:339.4.##Wretling, S., Eriksson, A., Eskhult, G.H. and Larsson, B., 2010. Polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) in Swedish smoked meat and fish. Journal of Food Composition and Analysis, 23(3): 264–272. DOI:10.1016/j.jfca.2009.10.003.##Yanar, Y., 2007. Quality changes of hot smoked catfish (Clarias gariepinus) during refrigerated storage. Journal of Muscle Foods, 18: 391–400. DOI:10.1111/j.1745-4573.2007.00094.x.##Yean, Y.S., Pruthiarenun, P., Doe, P., Motohiro, T. and Gopakumar, K., 1998. Dried and Smoked Fish Products, P47-89, In: Doe, P.E., (Ed.), Fish Drying and Smoking: Production and Quality, CRC Press, Technomic Pub, 250P.##Zareh, G., Porgholam, R., Shenavar, A., Jafari, A. and Saifzadeh, M., 2006. Quality assessment of various meat processing modes for meat from 2-year-old farmed Huso huso. Journal of Applied Ichthyology, 22(1): 422–426. DOI: 10.1111/j.1439-0426.2007.00999.x## ##

ساختار تاکسونومیک، پراکنش مکانی و روند تغییرات زمانی جمعیت اپندیکولارین‌ها در آبهای ساحلی شمال بوشهر – خلیج فارس Taxonomic structure, spatial distribution, and temporal variations of Appendicularian communities in coastal waters of Bushehr- Persian Gulf 1 1 اپندیکولارین‌ها از مهمترین گروههای جمعیت زئوپلانکتونی در دریاها و اقیانوسهای جهان بشمار می‌روند و بخش قابل توجهی از تولیدات و غذای مصرف کنندگان  ثانویه را تشکیل می‌دهند. لذا،  هدف از اجرای این تحقیق شناسایی و معرفی اپندیکولارین‌های آبهای خلیج فارس با تاکید بر الگوی پراکنش زمانی و مکانی در محدوده آبهای ساحلی شمال بوشهر قرار داده شد. اپندیکولارین‌ها در روزهای میانی و پایانی هر فصل، از اواسط تابستان 1396 لغایت بهار 1397  در خور فراکه، سه نقطه از محدوده مصب شیف، ایستگاه دریایی و مصب لشکری جمح‌آوری و در کلیه زمانهای نمونه برداری، عمق محل نمونه‌برداری، عمق شفافیت و پارامترهای فیزیکی درجه حرارت، pH، و شوری اندازه‌گیری شد. در نهایت در منطقه چهار گونه اپندیکولارین ، Oikopleura dioica      Oikopleura longicauda, و  Appendicularia sicula.  وsp  Fritillaria شناسایی گردید. بالاترین تراکم کل اپندیکولارین‌ها در ایستگاه دریا و اسفند ماه، با غالبیت  O. dioica  مشاهده شد. برای گونه های  O. dioica  ، فراوانی نسبی 80% گونه  O. longicauda, فراوانی نسبی 9/18درصد و گونه A. sicula،، فراوانی نسبی 06/1درصد محاسبه گردید. دو گونه غالب O. dioica و O. longicauda، الگوی پراکنش مکانی و رونذ تغییرات زمانی کاملاً متفاوت نشان دادند . برای گونه  sp. Fritillaria فراوانی نسبی 04/0درصد محاسبه و لذا به عنوان گونه نادر در منطقه معرفی گردید. بر اساس آزمون dbRDA (distance based Redundancy Analysis) ، عمق شفافیت مهمترین پارامتر موثر بر پراکنش گونه O. longicauda، عمق زیستگاه و شوری مهمترین عوامل اثرگذار بر الگوی پراکنش O. dioica و درجه حرارت پارامتر مرتبط باتراکم  A. sicula در منطقه مورد مطالعه مشخص گردید. 2 Appendicularians are the most important group among zooplankton communities, widely distributed in all the oceans and they are considered as one of the most important sources of productivity and food supplies for secondary consumers. So this study aimed to identify, introduce and assess the temporal and spatial variations of the Appendicularians in the Persian Gulf, restricted to coastal waters of northern part of Bushehr. Appendicularians were collected during seven sampling programs, from Frake river-estuary, three sites of large creek-estuary of the Shif, one site in the sea, and one site in the Lashkari creek-estuary, at middle and last day of each season, midsummer of 2016 to spring of 2017. During all surveys, depth of the sampling location, Secchi depth, water temperature, pH, and salinity were measured. Finally, 4 species were identified, Oikopleura dioica, Oikopleura longicauda Appendicularia sicula and Fritillaria sp. The highest total density was observed in the sea station at March, with dominance of O. dioica and a relative abundance of 80%, relative abundance of O. longicauda, A. sicula and Fritillaria sp. were calculated 18.9%, 1.06% and 0.04% respectively, so Fritillaria sp were introduced as rare species. Two species of O. dioica and O. longicauda demonstrated completely different spatial and temporal distribution pattern, and based on dbRDA (distance based Redundancy Analysis), transparency explains effectively the distribution pattern of O. longicauda, and also depth and salinity are the most important factors which explain the distribution pattern of O. dioica and temperature was correlated factor with abundances of A. sicula, in our study area. 13 22 2018/12/32018/08/5 1397/5/14 2019/07/202019/07/21 1398/4/30 رضوان موسوی ندوشن R. Mousavi Nadushan گروه شیلات و اکولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال ایران mousavi.nadushan@gmail.com منیر غیاث آبادی M. Ghiasabadi گروه شیلات و اکولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال ایران monir.ghiass84@yahoo.com Appendicularian Environmental parameters Distribution Pattern Bushehr Persian Gulf اپندیکولارین پارامترهای محیطی الگوی پراکنش بوشهر خلیج فارس ##امیدی، س، 1380. بررسی پساب های مزارع پرورش میگودر منطقه حله بوشهر و اثرات احتمالی آن بر محیط زیست دریایی(سال 1377). مجله علمی شیلات ایران. 10(3): 13-34.##نوری نژاد، م.، امیدی، س.، دلیرپور، غ.، محمدنژاد، ج.، انصاری، ه.،1396. تغییر ساختار ژئوپلانکتون ها و افزایش فراوانی ژله فیش ها در منطقه ساحلی بوشهر-دلوار. مجله علمی شیلات ایران، 27(1) : 99-106. ##Alldredge, A.L., 1977. House morphology and mechanisms of feeding in the Oikopleuridae (Tunicata, Appendicularia). Journal of Zoology, London, 181: 175–188.##Aravena, G. and Palma, S., 2002. Identificación taxonómica de las apendicularias capturadas en aguas epipelágicas de la zona norte de Chile (Tunicata, Appendicularia). Revista Chilena de Historia Natural, 75 (2):307-325.##Acuña, J.L. and Anadón, R., 1992. Appendicularian assemblages in a shelf area and their relationship with temperature. Journal of Plankton Research, 14: 1233–1250.##Bone, Q., 1998. The Biology of Pelagic Tunicates. New York: Oxford University Press, 340P.##Björberg, T.K.S. and Forneris, L., 1956a. On the uneven distribution of the copelata of the Fernando Noronha area. Boletim do ##Instituto Oceanográfico, São Paulo, 7: 105-111.##Björberg, T.K.S. and Forneris, L., 1956b. On the uneven distribution of the copelata of the Alcatrazes area. Boletim do Instituto Oceanográfico, São Paulo, 7: 113-115.##Campos, M.A.G., 2000. As apendiculárias da região compreendida entre Cabo Frio (RJ) e Cabo de Santa Marta Grande (SC). Tese de Mestrado, Universidade de São Paulo.##Capitanio, F.L., Pájaro, M. and Esnal, G.B., 2005. Appendicularians: an important food supply for the Argentine anchovy Engraulis anchoita in coastal waters. Journal of Applied Ichthyology, 21: 414-419.##Carvalho, P.F. and Bonecker, S.L.C., 2010. Seasonal and Spatial Variability of Appendicularian Density and Taxonomic Composition in the Caravelas Estuary (Northeastern Brazil) and Adjacent Coastal Area. Brazilian Archives of Biology and Technology, 53: 161- 169. DOI: 10.1590/S1516-89132010000100020##Dagg, M.J. and Brown, S.L., 2005. The potential contribution of fecal pellets from larvaceans Oikopleura dioica to vertical flux of carbon in a river dominated coastal margin. In: Gorsky G, MJ Youngbluth and D Deibel (eds). Response of marine ecosystems to global change, pp. 293-307. Contemporary Publishing International, Paris.##Deibel, D., 1998. Feeding and metabolism of Appendicularia. pp. 139–150 in Bone, Q. (ed.) The Biology of Pelagic Tunicates. New York: Oxford University Press 340 pp.##Esnal, G.B., 1999. Appendicularia. In: Boltovskoy, D. (ed.) South Atlantic Zooplankton. The Netherlands, Backhuys Publishers, pp. 1375-1398.##Fenaux, R., 1993. The classification of the Appendicularia (Tunicata): History and current state. Mémoires de l'Institut océanographique. 123P.##Flores-Coto, C., Añorve, L.S., Vázquez-Gutiérrez, F. and Sánchez-Ramírez, M., 2010. Mesoscale distribution of Oikopleura and Fritillaria (Appendicularia) in the Southern Gulf of Mexico: spatial segregation. Journal of Revista de Biología Marina Oceanografía, 45: 379-388, DOI: 10.4067/S0718-19572010000300002##Flood, P.R., Deibel, D. and Morris, C.C., 1992. Filtration of colloidal melanin from sea water by planktonic tunicates. Nature, 355, 630-632. DOI :10.1038/355630a0##Hansen, J.L.S., Kiorboe, T. and Alldredge, L., 1996. Marine snow derived from abandoned larvacean houses: sinking rates, particle content and mechanisms of aggregate formation. Marine Ecology Progress Series, 141: 205–215. DOI:10.3354/meps141205##Hopcroft, R.R. and Roff, J.C., 1998. Production of tropical larvaceans in Kingston Harbour, Jamaica: are we ignoring an important secondary producer. Journal of Plankton Research, 20: 557–569. DOI: 10.1093/plankt/20.3.557##Hopcroft, R.R., Roff, J.C. and Bouman, H.A., 1998. Zooplankton growth rates: the larvaceans Appendicularia, Fritillaria and Oikopleura in tropical waters. Journal of Plankton Research, 20, 539–555. DOI: 10.1093/plankt/20.3.539##Lambert, G., 2005. Ecology and natural history of protochordates. Canadian Journal of Zoology 83: 34-50. DOI:10.1139/z04-164.##Murray, J.W., Barber, R.T., Roman, M.R., Bacon, M.P. and Feely, R.A., 1994. Physical and biological-controls on carbon cycling in the equatorial Pacific. Science, 266: 58–65. DOI: 10.1126/science.266.5182.58##Nomura, H. and Murano, M., 1992. Seasonal variation of meso- and macrozooplankton in Tokyo Bay, central Japan. La mer, 30: 49–56 (in Japanese with English abstract).##Purcell, J.E., Sturdevant, M.V. and Galt, C.P., 2005. A review of appendicularians as prey of invertebrate and fish predators. In: Gorsky G, MJ Youngbluth and D Deibel (eds). Response of marine ecosystems to global change, pp. 359-435. Contemporary Publishing International, Paris.##Shiga, N., 1982. Regional and annual variations in abundance of an appendicularian Oikopleura labradoriensis in the Bering Sea and the northern North Pacific ocean during summer. Bulletin of the Plankton Society of Japan., 29, 119–128.##Shiganova, T., 2005. Changes in appendicularian Oikopleura dioica abundance caused by invasion of alien ctenophores in the Black Sea. Journal of Marine Biology, 85, 477-494. DOI: 10.1017/S0025315405011410##Smith, P.E. and Richardson, K.B., 1977. Standard techniques for plagic fish eggs and Larvae survey. Rome, FAO, Teqnichal paper: 175, 100P.##Tomitai, M., Shiga, N. and Ikeda, T., 2003. Seasonal occurrence and vertical distribution of appendicularians in Toyama Bay, southern Japan Sea. Journal of Plankton Research, 25(6): 579-589. DOI: 10.1093/plankt/fbz008##Uye, S. and Ichino, S., 1995. Seasonal variations in abundance, size composition, biomass and production rate of Oikopleura dioica (Fol) (Tunicata: Appendicularia) in a temperate eutrophic inlet. Journal of the Experimental Marine Biology and Ecology, 189: 1-11. DOI: 10.1016/0022-0981(95)00004-B## ##

بررسی کیفیت شیمیایی و باکتریایی سوریمی تهیه شده از ماهی کیلکای معمولی (Clupeonella cultriventris) حاوی عصاره پونه (Mentha pulegium) طی نگهداری در یخچال (1±4 درجه سانتی‌گراد) Assessment of chemical and bacterial quality of surimi produced from common Kilka (Clupeonella cultriventris) under pennyroyal (Mentha pulegium) extract during refrigerator storage (4±1°C) 1 1 در این تحقیق، تاثیر مقادیر مختلف عصاره پونه (0، 2 و  4 درصد  وزنی- حجمی) بر کیفیت شیمیایی و باکتریایی سوریمی حاصل از ماهی کیلکای معمولی طی مدت 15 روز نگهداری (1، 3، 6، 9، 12 و 15) در دمای یخچال (1±4 درجه سانتی‌گراد) مطالعه شد. آزمون‌های شیمیایی شامل شاخص پراکسید (PV)، تیوباربیتوریک اسید (TBA)، مجموع بازهای نیتروژنی فرار (TVB-N)، pH و آزمون‌های باکتریایی شامل شمارش باکتری‌های کل (TVC) و سرمادوست (PTC) هر 3 روز یکبار در نمونه‌ها با سه تکرار انجام شد. نتایج حاصل نشان داد در تیمار شاهد مقدار شاخص PV بطور معنی‌داری بالاتر از تیمارهای حاوی عصاره پونه بود بطوریکه از 64/0 در روز اول به 41/5 میلی اکی والان اکسیژن در روز 12 نگهداری افزایش یافت (05/0>p). میزان TBA و TVB-N در تیمار شاهد با گذشت زمان تا روز 15 نگهداری افزایش یافت بطوریکه در روز 15 مقادیر 43/0 میلی‌گرم مالون دی آلدهید برای TBA و 8/32 میلی‌گرم نیتروژن برای TVB-N ثبت گردید که افزایش معنی‌داری نسبت به تیمارهای حاوی عصاره پونه داشتند (05/0>p). مقدار pH در تمام طول دوره نگهداری در تیمار شاهد بطور معنی‌داری بالاتر از تیمارهای حاوی عصاره پونه بود بطوریکه مقدار آن از 14/7 در روز اول به 08/8 در روز 15 نگهداری رسید (05/0>p). تعداد باکتری‌های TVC و PTC طی مدت نگهداری در تیمارهای حاوی عصاره پونه بطور معنی‌داری کمتر از تیمار شاهد بود بطوریکه در تیمار شاهد مقادیر آن بترتیب از 55/3 و 25/3 به 64/6 و 96/5 CFU افزایش یافت (05/0>p)، ولی از حد مجاز10 Log7 فراتر نرفت. بر اساس یافته‌های این مطالعه تیمار حاوی عصاره پونه بویژه تیمار 4 درصد می‌تواند برای نگهداری سوریمی ماهی کیلکای معمولی در دمای یخچال در کوتاه مدت مورد استفاده قرار گیرد.   2 In this research, the pennyroyal extract (PE) effect was studied at different concentrations (0, 2 and 4% w/v) on chemical and bacterial quality of surimi produced from common Kilka over a period of 15 days (0, 3, 6, 9, 12 and 15 days) during refrigerator storage (4±1°C). The experiments was conducted to determine chemical tests including peroxide value (PV), thiobarbitoric acid (TBA), total volatile bases nitrogen (TVB-N), pH and total viable count (TVC) and psychrophilic count (PTC) as bacterial tests at 3 days intervals with triplicate. Findings showed that the PV content was significantly higher than that from control treatment as it was increased from 0.64 on the first day to 5.41 meq O2 on the 12th day (p<0.05). The TBA and TVB-N amounts were increased in the control treatment until 15th day so that it was recorded 0.43 mg malondialdehyde for TBA and 32.8 mg N for TVB-N on day 15  with a significant difference compared to those containing PE (p<0.05). The pH value was significantly higher in control than groups treated with PE during the whole storage period (p<0.05), with an increase from 7.14 at day 1 to 8.08 at day 15. The TVC and PTC bacteria from treated groups with PE were significantly lower than those from control wherein TVC and PTC bacteria were increased in the control from 3.55 to 3.25 to 6.64 and 5.96 log cfu/g, respectively (p>0.05); but it was remained lower than the proposed acceptable limit (7 log cfu/g). Based on the findings of the present study, 4% PE can use for enhance the shelf life of the common kilka surimi at refrigerator.   23 34 2018/12/32018/08/52019/01/13 1397/10/23 2019/07/202019/07/212019/07/28 1398/5/6 عباس زمانی A. Zamani دانشگاه ملایر ایران zamanibouzandan@yahoo.com آناهیتا غفاری A. Ghaffari دانشگاه ملایر ایران ana.ghafari.1998@gmail.com Surimi pennyroyal extract common kilka shelf life TVC سوریمی عصاره پونه کیلکای معمولی ماندگاری TVC ##اعتمادی، ح.، رضایی، م. و عابدیان کناری، ع.، 1387. پتانسیل آنتی باکتریایی و آنتی اکسیدانی عصاره رزماری (Rosmarinus officinalis) در افزایش عمر ماندگاری ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علوم و صنایع غذایی.، 5 (5) : 77-67.##پزشک، س.، رضایی، م. و حسینی، ه.،1390. اثر ضد باکتریایی و ضد اکسیداسیونی عصاره موسیر بر زمان ماندگاری ماهی قزل آلای رنگین کمان در شرایط نگهداری سرد (1±4 درجه سانتی گراد). مجله علوم تغذیه و صنایع غذایی ایران.، 6 (2): 19-11.##دهبندی،ع.، مطلبی، ع.، رضویلر، و. و پورغلام، ر.،1393. تاثیر نایسین Z بر برخی پارامترهای شیمیایی و باکتریایی مولد فساد در سوریمی ماهی کیلکا معمولی (Clupeonella cultriventris caspia) نگهداری شده در دمای 4 درجه سانتی گراد. مجله علمی شیلات ایران.، 23(3): 55-41. ##رضایی، م.، سحری، م.ع. و معینی، س. ،1385. ارزیابی کیفی چربی ماهی کیلکای آنچوی طی نگهداری و انجماد در دماهای مختلف. مجله علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی.، 10(4): 444- 435.##رضائیان، ح.، حسینی، و.، انوشه، ن. و فرجامی، ب.،1394. بررسی اثر عصاره چای سبز بر کیفیت شیمیایی و میکروبی سوریمی تهیه شده از ماهی(Hypophthalmichthys molitrix) کپور نقره‌ای. مجله بهره برداری و پرورش آبزیان.، 4(1): 119-109.##رضوی شیرازی، ح.، 1380. تکنولوزی فرآورده های دریایی. انتشارات نقش مهر. تهران.، ص 215-173.##زرگر، م.، یگانه، س.، رضوی، ه. و اجاق، م.،1393. تأثیر پوشش خوراکی کازئینات سدیم بر کیفیت ماهی قزل آلای رنگین کمان طی نگهداری در دمای یخچال (Oncorhynchus mykiss). فصلنامه علوم و صنایع غذایی.، 11(3) : 81-71. ##زمانی، ع.، رضائی، م. و مدنی، ر.،1390. اثرات برخی از عوامل بیوشیمیایی بر فعالیت آنزیم تریپسین روده و ضمائم پیلوریک کیلکای معمولی (Clupeonella cultriventris caspia) برای جلوگیری از پدیده هضم دیواره شکمی در محیط in vitro. مجله علمی شیلات ایران.، 20(4): 62-53. ##سازمان شیلات ایران، 1396. سالنامه آماری شیلاتی ایران، معاونت طرح و برنامه، سازمان شیلات ایران، تهران، 64 ص.##شعبانپور،ب.، ذوالفقاری، م.، فلاح زاده، س. و علی پور، غ.،1390. اثر عصاره آویشن شیرازی (Zataria multiflora Boiss) بر ماندگاری فیله قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) شور و بسته بندی شده در خلاء در شرایط یخچال: ارزیابی میکروبی، شیمیایی و خصوصیات حسی. مجله علوم و صنایع غذایی ایران.، 8 (4): 11-1.##فرجامی، ب. و حسینی، و.، 1394. بررسی اثر عصاره آویشن (Zataria multiflora) در کیفیت شیمیایی سوریمی تولیدشده از ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) طی نگهداری در یخچال. نشریه شیلات.، 68(3): 456- 447.##موسوی نسب، م.، مصباحی، غ. و مقصودی، ل.،1387. بررسی نقش محافظ سرمایی پکتین در سوریمی منجمد. نشریه علوم آب و خاک (علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی).، 12(4): 229-221. ##میزانی، م.،1383. بررسی عوامل موثر بر ویژگی های رئولوژیکی سوریمی. علوم غذایی و تغذیه.، 2(1): 35-23. ##یوسفی، ع.، موسوی نسب، م. و گواهیان، م.،1392. بررسی و مقایسه خصوصیات فیزیکی و شیمیایی و حسی کالباس تولید شده از سوریمی و گوشت چرخ شده ماهی سارم. مجله علمی شیلات ایران.،22(1): 170-157. ##Amegovu, A. K., Sserunjogi, M. L., Ogwok, P. and Makokha, V., 2012. Nucleotited degradation products, total volatile basic nitrogen, sensory and microbiological quality of nile pearch (Lates niloticus) fillets under chilled storage. Journal of Microbiology, Biotechnology and Food Sciences, 2 (2): 653-666. ##Arashisar, S., Hisar, O., Kaya, M. and Yanik, T., 2004. Effect of modified atmosphere and vacuum packaging on microbioligical and chemical properties of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fillets. International Journal of Food Microbiology, 97(2): 209-14. DOI:10.1016/ j.ijfoodmicro.2004.05.024 ##Bensid, A., Ucar, Y., Bendeddouche, B. and Ozogul, F., 2014. Effect of the icing with thyme, oregano and clove extracts on quality parameters of gutted and beheaded anchovy (Engraulis encrasicholus) during chilled storage. Food Chemistry, 145: 681–686. DOI: 10.1016/j.foodchem.2013.08.106##Connell, J.J. (Eds.)., 1990. Methods of assessing and selecting for quality. In Control of fish quality, (3rd ed). Oxford: Fishing News Books; pp.122–150.##Egan, H., Kirk, R.S. and Sawyer, R., 1997. Pearson’s chemical analysis of food, 9th Edition Longman Scientific and Technica, pp: 609-634.##Erkan, N., Ozden, O. and Inugur, M., 2007. The effects of modified atmosphere and vacuum packaging on quality of chub mackerel. International Journal of Food Science and Technology, 42: 1297–1304. DOI: 10.1111/j.1365-2621.2006.01325.x## ##EU/EC, 2008. Amending regulation (EC) No 2074/2005 as regards the total volatile basic nitrogen (TVB-N) limits. In: COMMUNITIES, T. C. O. T. E. (ed.) 1022/2008. Official journal of the European :::union:::.##FAO , 2016. Globefish highlights (3rd issue) ; International trade in aquaculture products. Quarterly issue including January - March Statistics. Rome, Italy,72P.##Frangos, L., Pyrgotou, N., Giatrakou, V., Ntzimani, A. and Savvaidis, I.N., 2010. Combined effects of salting, Oregano oil and vacuum-packaging on the Shelf Life of refrigerated trout fillets. Food Microbiology, 27(1), 115-121. DOI:10.1016/j.fm.2009.09.002##Gomes, H. A., Silva, E. N., Nascimento, M. R. L. and Fukuma H.T., 2003. Evaluation of the 2-thiobarbituric acid method for the measurement of lipid oxidation in mechanically deboned gamma irradiated chicken meat. Food Chemistry, 8: 433–437. DOI: 10.1016/S0308-8146(02)00499-5##Hernández, M.D., López, M.B., Álvarez, A., Ferrandini, E., García García, B. and Garrido, M.D., 2009. Sensory, physical, chemical and microbiological changes in aquacultured meagre (Argyrosomus regius) fillets during ice storage. Food Chemistry, 114: 237–245. DOI: 10.1016/j.foodchem. 2008.09.045.##Huss, H. H., 1995. Quality and quality changes in fresh fish. Rome: Food and Agriculture Organisation (FAO) of the United Nations.##ICMSF “International Commission on Microbiological Specification for Foods”., 1986. Microor ganisms in foods. 2. Sampling for microbiological analysis: principles and specific applications (2nd ed.). Buffalo, NY: University of Toronto Press.##Jeon, Y. J., Kamil, J. Y. and Shahidi, F., 2002. Chitosan as an edible invisible film for quality preservation of herring and atlantic cod. Journal of Agriculture and Food Chemistry, 50: 5167-78. DOI:10.1021/jf011693l.##Jeyakumari, A., Ninan, G., Joshy, C.G., Parvathy, U., Zynudheen, A.A. and Lalitha, K.V., 2016. Effect of chitosan on shelf life of restructured fish products from pangasius (Angasianodon hypophthalmus) surimi during chilled storage. Journal of Food Science and Technology, 53(4), pp.2099-2107. DOI: 10.1007/s13197-016-2174-3##Karimzadeh G., Gabrielyan B. and Fazli H., 2010. Population dynamics and biological characteristics of kilka species (Pisces:Clupeidae) in the southeastern coast of the Caspian Sea. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 9(3):422-433.##Kostaki, M., Giatrakou, V., Savvaidis, I.N. and Kontominas, M.G., 2009. Combined effect of MAP and thyme essential oil on the microbiological, chemical and sensory attributes of organically aquacultured sea bass (Dicentrarchus labrax) fillets. Food Microbiology, 26(5): 475-482. DOI:10.1016/j.fm.2009.02.008##Kumaraguruparan, R., Mohan, K.C., Abraham, S.K. and Nagini, S., 2005. Attenuation of N-methyl-N′-nitro-N-nitrosoguanidine induced genotoxicity and oxidative stress by tomato and garlic combination. Life Sciences, 76(19): 2247-2255. DOI:10.1016/j.lfs.2004.11.006##Kumolu-Johnson, C.A. and Ndimele, P.E., 2011.The antioxidative and antifungal effects of fresh garlic on the shelf-life of Hot Smoked Catfish (Clarias gariepinus, Burchell, 1822). World Applied Sciences Journal, 13(7): 1628-1634. DOI: 10.3923/jfas.2013.253.256##Kumudavally, K.V., phanindrakumar, H.S., Tabassum, A., Radhakrishna, K. and Bawa, A.S. 2008. Green tea-A potential preservative for extending the shelf life of freash mutton at ambient temperature (25 ± 2 °C). Food Chemistry, 107: 426-433. DOI: 10.1016/ j.foodchem. 2007.08.045##Lee, C. M., 1999. Surimi: Science and Technology.In: Francis, F.J. (ed), Wiley Encyclopedia of Food Science and Technology, John Wiley and Sons, New York. pp. 2229-2239.##Majumdar, R.K., Saha, A., Dhar, B., Maurya, P.K., Roy, D., Shitole, S. and Balange, A.K., 2015. Effect of garlic extract on physical, oxidative and microbial changes during refrigerated storage of restructured product from Thai pangas (Pangasianodon hypophthalmus) surimi. Journal of Food Science and Technology, 52(12): 7994-8003. DOI:10.1007/s13197-015-1952-7##Miraj, S. and Kiani, S., 2016. Study of pharmacological effect of Mentha pulegium: A review. Der Pharmacia Lettre, 9: 242-245.##Namulema, A., Muyonga, J.H. and Kaaya, A.N., 1999. Quality deterioration in frozen Nile perch (Lates niloticus) stored at -13 and -27°C. Food Research International, 32: 151-156. DOI: 10.1016/S0963-9969(99)00066-6##Raeisi, S., Sharifi-Rad, M., Shaban-Pour, B.,Ojagh, M. and Alishahi., A., 2015. Antioxidant and antibacterial effects of Nigella Sativa L. seed and Echinophora Platyloba Dc. leaf extracts on rainbow trout (Oncorhynchus Mykiss) fillets during refrigeration storage. International Journal of Biology, Pharmacy and Allied Sciences, 4(5): 3101-3114.##Sakanaka, S., Tachibana, Y. and Okada, Y., 2005. Preparation and antioxidant properties of extracts of Japanese persimmon leaf tea (kakinohacha). Food Chemistry, 89:569–575. DOI: 10.1016/j. foodchem. 2004.03.013##Sallam, K.I., 2007. Antimicrobial and antioxidant effects of sodium acetate, sodium lactate, and sodium citrate in refrigerated sliced salmon. Food Control, 18: 566–575. DOI: 10.1016/j.foodcont.2006.02.002##Shi, C., Cui, J., Yin, X., Luo, Y. and Zhou, Z., 2014. Grape seed and clove bud extracts as natural antioxidants in silver carp (Hypophthalmichthys molitrix) fillets during chilled storage: Effect on lipid and protein oxidation. Food Control, 40:134-139. DOI: 10.1016/j.foodcont.2013.12.001##Suvanich, V., Jahncke, M.L. and Marshall, D.L., 2000. Changes in selected chemical quality characteristics of channel catfish frame mince during chill and frozen storage. Journal of Food Science, 65(1): 24-29. DOI: 10.1111/j.1365-2621.2000.tb15950.x##Yildiz, M., Sener, E. and Gun, H., 2006. Effect of refrigerated storage on fillet lipid quality of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fed a diet containing different levels of DL a-tocopherol acetate. Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences, 30 (1):143-150.## ##

تأثیر سطوح مختلف ترکیب اسیدهای آلی خوراکی بر برخی شاخص‌های رشد و ترکیبات لاشه بچه ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) Effect of different levels of organic acids mixture on some growth parameters and carcass composition of common carp (Cyprinus carpio) juveniles 1 1 این پژوهش به منظور ارزیابی تأثیر سطوح مختلف ترکیب تجاری اسیدهای آلی (بایوترونیک تاپ 3) در جیره، بر شاخص­های رشد و ترکیبات لاشه بچه ماهیان کپور معمولی صورت گرفت. ماهیان با میانگین وزن 50 گرم در 12 مخازن فایبرگلاس با تراکم 15 عدد ماهی توزیع و طی مدت 60 روز با سطوح مختلف ترکیب اسیدهای آلی شامل: 0 (شاهد)، 1، 2 و 3 درصد خوراک غذادهی شدند. نتایج نشان داد، که بیشترین وزن نهایی بدن مربوط به تیمار 3 درصد (36/1±8/144 گرم) و کمترین وزن نهایی مربوط به تیمار شاهد بود. درحالی‌که بیشترین ضریب تبدیل غذایی مربوط به تیمارهای شاهد (05/0±78/2) و کمترین آن مربوط به تیمار 3 درصد (07/0±2/2) بود. بیشترین افزایش مقدار نرخ رشد ویژه در تیمار 3 (11/0±41/1 درصد) و کمترین آن مربوط به تیمار شاهد (02/0±85/0 درصد) بود. همچنین، ماهیان تغذیه شده با سطح 3 درصد ترکیب اسیدهای آلی بالاترین مقدار پروتئین خام (32/0±81/18 درصد) و پایین‌ترین مقدار چربی (14/0±28/3 درصد) را داشتند. با توجه به نتایج، به نظر می‌رسد استفاده از ترکیب تجاری اسیدهای آلی بایوترونیک تاپ 3 در سطح 3 درصد می‌تواند به‌عنوان یک محرک رشد در جیره ماهی کپور معمولی تأثیر مثبتی بر عملکرد رشد، نرخ بقاء و همچنین کیفیت لاشه داشته باشد. 2 This study was carried out to evaluate the effects of different levels of dietary commercial organic acids mixture (Biotronic® Top3) on growth performance and carcass composition of common carp juveniles. Fish with an average weight of 50g were stocked in 12 fiberglass tanks with 15 fish per tank density for 60 days and fed with 0 (control), 1, 2 and 3% of dietary organic acids mixture. Results showed that the highest body weight was observed in 3% treatment (144.8±1.36 g) and the lowest value was related to the control treatment. However, the highest feed conversion ratio was obtained in the control (2.78±0.05) and the lowest value was observed in the 3% treatment (2.2±0.07). The highest specific growth rate was observed in 3% treatment (1.41±0.11%) and the lowest value was related to the control treatment (0.85±0.02%). Also, fish fed with 3% organic acids mixture showed the highest levels of carcass crude protein (18.81±0.32%) and the lowest fat content (3.28±0.14%). According to the results, it seems that the organic acids mixture at level of 3% can be used as a growth promoter and has a positive effect on growth performance, survival rate and carcass quality of common carp. 35 43 2018/12/32018/08/52019/01/132019/03/28 1398/1/8 2019/07/202019/07/212019/07/282019/07/23 1398/5/1 سید پژمان حسینی شکرابی S.P. Hosseini Shekarabi دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات ایران hosseini.pezhman@yahoo.com سید بیژن سید علیخانی S.B. Seyedalikhani دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات ایران bijantaha@yahoo.com مهدی شمسایی مهرجان M. Shamsaie Mehrgan دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات ایران drshamsaie@gmail.com سید هادی سیدالحسینی S.H. Seyedalhosseini گروه شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد بندرعباس، هرمزگان، ایران ایران hadihossini774@yahoo.com حامد منوچهری H. Manouchehri گروه شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد بابل، بابل، ایران ایران Organic acid Survival rate Growth performance Carcass quality Common carp اسیدآلی رشد کیفیت لاشه کپور معمولی ##بهشتی، ن.، یگانه، س. و عادل، م.، 1397. مقایسه اثر بیهوش‌‌کننده اسانس اسطوخدوس (Lavandula angustifolia) با اسانس گل میخک (Eugenia caryophyllata) بر برخی شاخص‌‌های خونی و بیوشیمیایی سرم در ماهی جوان کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله علمی شیلات ایران، ۲۷ (۴): ۱۰۷-۱۲۱. DOI: 10.22092/ISFJ.2018.117733##حدیدی، س. و طاعتی، ر.، 1395. تأثیر سطوح مختلف مکمل اسیدی فایر بایوترونیک™ بر کارایی تغذیه و برخی از پارامترهای خونی و ایمنی ماهی اسکار تایگر (Astronotus ocellatus). مجله دامپزشکی ایران, 12(3): 32-41.##سلیمانی ‌ایرایی، م.، سجادی، م.، کرامت امیرکلایه، ع.، فرحی، ا. و کریم‌زاده، ص.، 1391. اثرات سطوح مختلف مکمل اسیدهای آلی برکارایی رشد، ترکیبات لاشه و شاخص‌های خونی بچه ماهیان قزل‌آلای رنگین‌کمان. مجله بهره‌برداری و پرورش آبزیان. 1(3): 1-14.##علیزاده، ح.، اورجی، ح.، فلاحتکار، ب. و عفت پناه، ا.، 1397. تأثیر سطوح مختلف اسید مالیک بر رشد و ترکیب لاشه بچه تاسماهی سیبری (Acipenser baerii). مجله علمی شیلات ایران، ۲۷ (۶): ۱-۱۲. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.118318##محمدی، ح. و منوچهری، ح.، 1396. بررسی اثر سطوح مختلف اسیدی فایر بایوترونیک اس.ای. فورت بر شاخص‌های رشد و تغذیه و ترکیبات لاشه بچه ماهی بارب حلب (Barbus Schwenfeldi). مجله علوم تکثیر و آبزی پروری، 4(12): 55-68.##AOAC, 1995. Official methods of analysis of official analytical chemists international, 4th ed. Association of official analytical chemists, Arlington, VA.USA.##Bekcan, S., Dogankaya, L. and Cakirogullari, G.C., 2006. Growth and body composition of European catfish (Silurus glanis) fed diet containing different percentages of protein. Aquaculture, 58:137-142. DOI: 10.10524/hhn.1995. 19170##Bentea, M.I., Radu M., Aurel Ş., Ionel T. and Erol-Florian, G., 2016. The Effects of prebiotic products (Actigen, Biotronic Top3) on the production and consumption indices in chickens. Bulletin UASVM Animal Science and Biotechnologies, 73(2): 197-201. DOI: 10.15835/buasvmcn-asb: 12237##Celik, K., Ersoy, I.E., Uzatici, A. and Erturk, M., 2003. The using of organic acids in California turkey chicks and its effects on performance before pasturing. International Journal of Poultry Science, 2 (6): 446 - 448. DOI: 10.3923/ijps. 2003.446.448##Ceylan, N. and Ciftci, I., 2002. The effects of some alternative feed additives for antibiotic growth promoters on the performance and gut microflora of broiler chicks. Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences, 27:727-733.##Dawood, M.A., Koshio, S. and Esteban, M.Á., 2018. Beneficial roles of feed additives as immunostimulants in aquaculture: a review. Reviews in Aquaculture, 10(4): 950-974. DOI: 10.1111/raq.12209## ##Diebold, G. and Eidelsburger, U., 2006. Acidification of diets as an alternative to antibiotic growth promoters. In: Barug D, de Jong J, Kies AK, Verstegen MWS, editors. Antimicrobial Growth Promoters. 1st ed. Wageningen Academic Publishers; Wageningen, Netherlands.##Eidelsburger, O., 1998. Recent advances in nutrition. Nottingham University press, Nottingham.##Hellweg, P., Tats, D., Manner, K., Vahjen, W. and Zentek, J., 2006. Impact of potassium diformate on the gut flora of weaned piglets. Proceedings of the Society of Nutrition Physiology, 1: 15-63.##Hirshfield, I.N., Terzulli, S. and O'Byrne, C., 2003. Weak organic acids: A panoply of effects on bacteria. Science Progress, 86: 245–269.##Irianto, A. and Austin, B., 2002. Use of probiotics to control furunculosis in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Fish Diseases, 25: 333-342. DOI: 10.1046/j.1365-2761.2002.00375.x##Kluge, H., Broz, J. and Eder, K., 2004. Studies on the effect of benzoic acid as a feed additive on performance parameters, Improve this translation, on balance, microflora and parameters of microbial metabolism in the digestive tract of weaned piglets, 8th session for pigs and Geflugelernahrung.##Kotzamanis, Y.P., Gisbert, E., Gatesoupe, F.J., Zambonino Infante, J. and Cahu, C., 2007. Effects of different dietary levels of fish protein hydrolysates on growth, digestive enzymes, gut microbiota, and resistance to Vibrio anguillarum in European sea bass (Dicentrarchus labrax) larvae. Comparative Biochemistry and Physiology-Part A: Molecular and Integrative Physiology, 147: 205-14. DOI: 10.1016/j.cbpa.2006.12.037##Luckstadt, C., 2008. Dietary organic acids as feed additive for tilapia (Oreochromis niloticus) culture. Program and Abstracts, 6th Conference of the Society of Ichthyology, 13–15 March 2008, Munich, Germany.##Menanteau-Ledouble, S., Ines K., Rui Alexandre G., Weberc, B., Abreu S.G. and El-Matbouli, M., 2017. Antimicrobial effect of the Biotronic® Top3 supplement and efficacy in protecting rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) from infection by Aeromonas salmonicida. Research in Veterinary Science, 114: 95–100. DOI: 10.1016/j.rvsc.2017.03.010##Riemensperger, A.V., Bachinger, D., Schaumberger, S., Urbaityte, R. and Pasteiner, S., 2012. The effect of an organic acid blend, cinnamaldehyde and a permeabilising substance on the inhibition of bacterial growth in vitro and growth performance of weaning pigs. Veterinary Zootech, 60: 59–66.##Ringo, E. and Strom, E., 1994. Microflora of Arctic charr, Salvelinus alpinus (L.): gastrointestinal microflora of free‐living fish and effect of diet and salinity on intestinal microflora. Aquaculture Research, 25: 623-629. DOI:10.1111/ j.1365-2109.1994.tb00726.x##Sudagar, M., Hosseinpoor, Z. and Hosseini, A. 2010. The use of citric acid as attractant in diet of grand sturgeon (Huso huso) fry and its effects on growing factors and survival rate. AACL Bioflux, 3: 311-316. Doi: ##Sugiura, S.H., Dong, F.M. and Hardy, R.W., 1998. Effects of dietary supplements on the availability of minerals in fish meal; preliminary observations. Aquaculture, 160: 283-303. DOI: 10.1016/S0044-8486(97) 00302-5##Wing-Keong, N., Koh, C.B., Sudesh, K. and Siti-Zahrah, A., 2009. Effects of dietary organic acids on growth, nutrient digestibility and gut microflora of red hybrid tilapia (Oreochromis sp.) and subsequent survival during a challenge test with Streptococcus agalactiae. Aquaculture Research, 40(13): 1490-1500. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2009.02249.x## ##

مقایسه عملکرد حسگرهای برموفنول آبی و برموکروزول سبز در تعیین فساد باکتریایی گوشت چرخ شده ماهی کیلکای معمولی (Clupeonella cultriventris caspia) نگهداری شده در یخچال Comparison of the performance of bromophenol blue and bromocresol green Sensors in determining the microbial spoilage of (Clupeonella cultriventris caspia) stored in the refrigerator 1 1 در این پژوهش یک حسگر بر پایه فیلم زیستی کیتوزان به همراه حسگرهای برموفنول آبی و برموکروزول سبز بر پایه کاغذ صافی به منظور تعیین کیفیت میکروبی گوشت چرخ شده ماهی کیلکای معمولی نگهداری شده در دمای یخچال استفاده شدند. شاخص بار باکتریایی کل (TVC) در روز صفر برابر با  Log CFU/gr473/3 بود که در انتهای دوره نگهداری به تعداد Log CFU/gr 497/6 تغییر کرد (05/0p<). تعداد باکتری­های سرمادوست (PTC) در ابتدای نگهداری Log CFU/gr 473/1 بود و در طول دوره نگهداری در یخچال روند افزایشی نشان داد و سپس به مقدار  Log CFU/gr516/7 رسید (05/0>p). شاخص بازهای ازته فرار (TVB-N) در ابتدای دوره نگهداری mg N/100g 01/7 بود که در انتهای نگهداری به mg N/100g 348/44 افزایش یافت (05/0>p). pH در طول نگهداری از 105/6 به 827/6 تغییر کرد (05/0>p). میزان همبستگی بین شاخص های میکروبی، شیمیایی و تغییر ارزش رنگ (ΔE) متفاوت بوده و بالاترین نتایج همبستگی در حسگر برموفنول آبی مشاهده شد که همبستگی آن با شاخص­­های باکتری­های سرمادوست، بار باکتریایی کل، کل بازهای ازته فرار و pH بترتیب 941/0، 989/0، 912/0 و 779/0 بود (p<0.05). بر اساس نتایج این تحقیق مشخص شد که همزمان با تغییرات میکروبی و شیمیایی درون بسته گوشت چرخ شده ماهی، حسگرها شروع به تغییر رنگ می‌کنند و کاهش کیفیت را به صورت تغییر رنگ نشان می­دهند.   2 In this study, a sensor based on chitosan biofilm with bromophenol blue and bromocresol green sensors based on filter paper were used to determine the bacterial quality of common Kilka fish mince in refrigerated temperature. The total viable bacterial count (TVCs) on day zero was 3.473 log CFU / gr, which at the end of the storage period was changed to 6.497 log CFU / gr (p <0.05). The psychrotrophic bacterial counts (PTCs) at the beginning storage time was a 1.473 log CFU / gr and increased during the refrigerated storage time and achieved to 7.516 log CFU / gr (p <0.05). Total volatile basic nitrogen (TVB-N) at the beginning of the storage period was 7.01mg N/100g, which increased to 44.348 mg N/100g at the end of the storage (p <0.05). The pH during storage time changed from 6.105 to 6.827 (p <0.05). The correlation among microbial, chemical and color change values (ΔE) was different, and the highest correlation was observed in bromophenol blue indicator, which correlates with TVCs, The PTCs, TVB-N and pH were 0.941, 0.989, 0.912 and 0.779, respectively (p <0.05). Based on the results of this study, it was found which bacterial and chemical changes spoilage in the minced fish package was simultaneous with the sensors color change and they show a quality decrease as form color change.   45 54 2018/12/32018/08/52019/01/132019/03/282019/04/22 1398/2/2 2019/07/202019/07/212019/07/282019/07/232019/05/19 1398/2/29 شهاب نقدی Sh. Naghdi دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی دانشگاه تربیت مدرس شهرستان نور- مازندران ایران shahab_naghdi@modares.ac.ir مسعود رضائی M. Rezaeei دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی دانشگاه تربیت مدرس شهرستان نور- مازندران ایران rezai_ma@modares.ac.ir نادر بهرامی فر N. Bahramifar دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی دانشگاه تربیت مدرس شهرستان نور- مازندران ایران n.bahramifar@modares.ac.ir Sensor freshness Chitosan Bacterial spoilage Chemical spoilage Mince fish حسگر تازگی کیتوزان فساد باکتریایی فساد شیمیایی گوشت چرخ شده ماهی ##استاندارد ملی ایران شماره 1028 ، 1386. گوشت و فرآورده‌های آن. اندازه گیری pH . صفحات 8-1.##بهرامی فر ، م., رومیانی ، ل., و عسکری ساری ، ا.، 1394. مطالعه تاثیر انواع بسته بندی برماندگاری فیله کپورعلفخوار (Ctenopharyngodon idella) در دمای یخچال 4 درجه سانتی گراد. مجله علمی شیلات ایران، 25(3): 72-63.‎##بهمنی، ذ., خانی پور، ع., ارومیه ای، ع., مطلبی، ع.، 1395. بررسی عملکرد شناساگر تازگی در بستهبندی هوشمند فیله قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) طی مدت نگهداری در یخچال. مجله علمی شیلات ایران ، 25(3): 121-132.##‎رضوی شیرازی، ح.، 1380 تکنولوژی فرآورده‌های دریایی. انتشارات نقش مهر. 292 صفحه.##سالنامه آماری سازمان شیلات ایران، 1395 . سازمان شیلات ایران معاونت برنامه ریزی و توسعه مدیریت، دفتر برنامه و بودجه. 64 صفحه.##مجدی‌نسب، م.، سپیدنامه، م.، نگهداری فر، م.، 1396. تشخیص فساد ماهی قزل آلا (Salmo trutta) در طول نگهداری با استفاده از یک سنسور رنگ سنجی کاغذی ساده. علوم و صنایع غذایی ایران، ۱۵ (۷۷) :۳۰۲-۲۹۳##Alasalvar, C., Shahidi, F., Miyashita, K. and Wanasundara, U., 2010. Seafood quality, safety, and health applications: an overview. Handbook of seafood quality, safety and health applications, pp.1-10.##Arashisar, Ş., Hisar, O., Kaya, M. and Yanik, T., 2014. Effects of modified atmosphere and vacuum packaging on microbiological and chemical properties of rainbow trout (Oncorynchus mykiss) ##fillets. International Journal of Food Microbiology, 97(2): 209-214. DOI: 10.1016 /j.ijfoodmicro.2004.05.024##Connell, J.J., 1990. Control of Fish Quality. Published by Fishing News Book. 3rd edition, 122-150##Dudnyk, I., Janeček, E.R., Vaucher-Joset, J. and Stellacci, F., 2018. Edible sensors for meat and seafood freshness. Sensors and Actuators B: Chemical, 259: 1108-1112. DOI: 10.1016/j.snb.2017.12.057##Gimenez, B., Roncales, P. and Beltran, J.A., 2002. Modified atmosphere packaging of filleted rainbow trout. Journal of the Science of Food and Agriculture, 82(10): 1154-1159. DOI: 10.1002/jsfa.1136##International Commission on Microbiological Specifications for Foods (ICMSF), 2002. Micro-organisms in foods 7, microbiological testing in food safety management. Kluwer/ Plenum /Springer, London.##Jorjani, S., 2014. Chemical composition and fatty acid profile of common kilka (Clupeonella cultriventris caspia(. Caspian Journal of Environmental Sciences, 12(1): 119-128. ##Kakaei, S. and Shahbazi, Y., 2016. Effect of chitosan-gelatin film incorporated with ethanolic red grape seed extract and Ziziphora clinopodioides essential oil on survival of Listeria monocytogenes and chemical, microbial and sensory properties of minced trout fillet. LWT-Food Science and Technology, 72: 432-438. DOI: 10.1016/j.lwt.2016.05.021##Kuswandi, B. and Nurfawaidi, A., 2017. On-package dual sensors label based on pH indicators for real-time monitoring of beef freshness. Food Control, 82: 91-100. Doi: 10.1016/j.foodcont.2017.06.028##Kuswandi, B., Wicaksono, Y., Abdullah, A., Heng, L.Y. and Ahmad, M., 2011. Smart packaging: sensors for monitoring of food quality and safety. Sensing and Instrumentation for Food Quality and Safety, 5(3-4), pp.137-146. DOI: 10.1007/s11694-011-.##Kuswandi, B., Larasati, T.S., Abdullah, A. and Heng, L.Y., 2012. Real-time monitoring of shrimp spoilage using on-package sticker sensor based on natural dye of curcumin. Food Analytical Methods, 5(4), pp.881-889. DOI: 10.1007/s12161-011-##Kuswandi, B., Damayanti, F., Jayus, J., Abdullah, A. and Heng, L.Y., 2015. Simple and low-cost on-package sticker sensor based on litmus paper for real-time monitoring of beef freshness. Journal of Mathematical and Fundamental Sciences, 47(3), pp.236-251. DOI: 10.5614%2Fj.math.fund.sci.2015.47.3.2##Listyarini, A., Sholihah, W., Imawan, C. and Fitriana, R., 2017. August. Colorimetrie method by using natural dye for monitoring fish spoilage. In 2017 International Seminar on Sensors, Instrumentation, Measurement and Metrology (ISSIMM) (pp. 141-145). IEEE. DOI: 10.1109/ISSIMM.2017.8124279##Mohan, C.O., Ravishankar, C.N. and Srinivasagopal, T.K., 2008. Effect of O2 scavenger on the shelf-life of catfish (Pangasius sutchi) steaks during chilled storage. Journal of the Science of Food and Agriculture, 88(3): 442-448. DOI: 10.1002/jsfa.3105##Ojagh, S.M., Rezaei, M., Razavi, S.H. and Hosseini, S.M.H., 2010. Development and evaluation of a novel biodegradable film made from chitosan and cinnamon essential oil with low affinity toward water. Food Chemistry, 122(1), pp.161-166. DOI: 10.1016/J.FOODCHEM.2010.02.033##Ovissipour, M., Rasco, B., Shiroodi, S.G., Modanlow, M., Gholami, S. and Nemati, M., 2013. Antioxidant activity of protein hydrolysates from whole anchovy sprat (Clupeonella engrauliformis) prepared using endogenous enzymes and commercial proteases. Journal of the Science of Food and Agriculture, 93(7):1718-1726. DOI: 10.1002/JSFA.5957##Perafkandeh, F. and Keymaram, F., 2012. Evaluation and determine the amount of recoverable reserves of Clupeonella cultriventris caspia (Svetovidov, 1941) in the the southern Caspian Sea, Journal of Marine Science and Technology, 11(3): 16-24.##Prietto, L., Mirapalhete, T.C., Pinto, V.Z., Hoffmann, J.F., Vanier, N.L., Lim, L.T., Dias, A.R.G. and da Rosa Zavareze, E., 2017. pH-sensitive films containing anthocyanins extracted from black bean seed coat and red cabbage. LWT, 80, pp.492-500. DOI: 10.1016/J.LWT.2017. 03.006 ##Silvestre, C., Duraccio, D. and Cimmino, S., 2011. Food packaging based on polymer nanomaterials. Progress in polymer science, 36(12), pp.1766-1782. DOI: 10.1016 J.PROGPOLYMSCI.2011.02.003 ##Varlik, C., Ugur, M., Gokoglu, N. and Gun, H., 1993. Quality control methods and principals for aquaculture. Istanbul Society of Food Technology, 17, 98. .##Zaragozá, P., Fernández-Segovia, I., Fuentes, A., Vivancos, J.L., Ros-Lis, J.V., Barat, J.M. and Martínez-Máñez, R., 2014. Monitorization of Atlantic salmon (Salmo salar) spoilage using an optoelectronic nose. Sensors and Actuators B: Chemical, 195, pp.478-485. DOI: 10.1016/J.SNB.2014.01.017##Zhai, X., Shi, J., Zou, X., Wang, S., Jiang, C., Zhang, J., Huang, X., Zhang, W. and Holmes, M., 2017. Novel colorimetric films based on starch/polyvinyl alcohol incorporated with roselle anthocyanins for fish freshness monitoring. Food hydrocolloids, 69, pp: 308-317. DOI: 10.1016/J.FOODHYD.2017.02.014. ## ##

اثرات حمام عصاره‌ هیدروالکلی گزنه (Urtica dioica) بر شاخص‌های ایمنی و خونی ماهی قزل آلای رنگین کمان(Oncorhynchus mykiss)آلوده شده با قارچ ساپرولگنیا Bathing effects of nettle (Urtica dioica) hydroalcoholic extract on immunological and hematological indices in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) infected with Saprolegnia fungal 1 1 این مطالعه با هدف کاربرد عصاره هیدرو‌الکلی گزنه درکنترل بیماری ساپرولگنیوز و بررسی تأثیر آن برفراسنجه های خونشناسی، بیوشیمیایی سرم و ایمنی  قزل‌آلای رنگین کمان آلوده شده با ساپرولگنیا انجام شد. 180 قطعه ماهی قزل الای رنگین کمان با میانگین وزن 27/0±22 گرم در 6  تیمار آزمایشی به طور تصادفی تقسیم بندی شدند. گروه‌های آزمایشی ابتدا با فلس برداری از ناحیه ساقه دمی مستعد بیماری شدند و سپس با زئوسپور ساپرولگنیا (با دوز105×3 زئوسپور در هر لیتر) به مدت 4 ساعت حمام داده شدند. ماهیان پس ازآلوده سازی در تانک‌های100 لیتری قرار گرفتند و چهار تیمار بترتیب50 ، 100، 150 و 200 میلی‌گرم بر لیتر عصاره هیدرو‌الکلی گزنه روزانه به مدت 1 ساعت در طول 1 هفته دریافت کردند. در پایان یک هفته حمام دهی با غلظت‌های مختلف عصاره هیدروالکلی گزنه (هفته اول) و در پایان یک هفته پس از قطع حمام‌دهی (هفته دوم)، افراسنجه‌های خون‌شناسی (گلبول قرمز، گلبول سفید، هماتوکریت و هموگلوبین)، فراسنجه‌های بیوشیمیایی سرم (آلبومین، گلبولین و توتال‌ پروتئین) و فراسنجه‌های ایمنی (فعالیت لیزوزیم، سیستم کمپلمان و فعالیت انفجارتنفسی) و همچنین درصد تلفات در تمامی تیمارها بررسی شدند.  نتایج بدست آمده نشان داد میزان100 میلی‌گرم بر لیتر عصاره‌ هیدروالکلی گزنه سبب افزایش معنی‌دار فراسنجه های خون‌شناسی، بیوشیمیایی سرم و ایمنی ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان مبتلا به ساپرولگنیوز می‌شود (05/0>p). همچنین دوزهای50 ،150 و200 میلی‌گرم بر لیتر عصاره هیدروالکلی گزنه با افزایش مقاومت ماهیان در برابر ساپرولگنیوز باعث کاهش معنی‌دار تلفات نسبت به تیمار کنترل شدند. از اینرو، استفاده از عصاره هیدروالکلی گزنه با دوز 100 میلی گرم بر لیتر با روش حمام درمانی جهت بهبود شاخص‌های خون شناسی و ایمنی و همچنین کنترل ساپرولگنیوز در ماهی قزل‌آلای ‌رنگین‌کمان توصیه می‌گردد. 2 The aim of this study was to investigate the effects of nettle (Urtica dioica) hydroalcoholic extract (NHE) on saprolegniasis control, serum biochemistry, immunological and hematological indices of rainbow trout infected with Saprolegnia. Rainbow trout (n=180, weight=22±0.27g) were randomly distributed in six treatments. Experimental groups were first made prone to the disease by scaling the caudal peduncle, and then were exposed to bathing with S. zoospores (3×105/L) for 4 hours. After infection, fish were stocked in 100 L tanks and received four treatments (50, 100, 150, and 200 mg/L of NHE) daily for 1 hour during 1 week. At the one-week bathing with NHE (first week), and a week after the bathing (second week), parameters of hematology [red blood cells (RBCs), white blood cells (WBCs), hematocrit, and hemoglobin], serum biochemistry (albumin, globulins, and total protein), immunity parameters (lysozyme activity, complement system, and respiratory burst activity), and mortality rate were examined in all treatments. Results showed that 100 mg/L of NHE significantly increased hematological, serum biochemical and immunity parameters in rainbow trout infected with saprolegnia (p< 0.05). Also, doses 50, 150 and 200 mg/L of NHE significantly reduced mortality rate with increasing fish resistance to saprolegniasis compared the control. Hence, the use of NHE at a dose of 100 mg/L with bath therapy is recommended to improve hematological and immunological parameters, and to control of saprolegniasis in this species. 55 67 2018/12/32018/08/52019/01/132019/03/282019/04/222019/04/29 1398/2/9 2019/07/202019/07/212019/07/282019/07/232019/05/192019/07/27 1398/5/5 نرگس عالیشاه N. Alishah گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران ایران n.alishah69@gmail.com فرید فیروزبخش F. Firouzbakhsh گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران ایران f.firouzbakhsh@yahoo.com زیبنده محرابی Z. Mehrabi گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران ایران zi_mehrabi@yahoo.com Nettle Hematology Saprolegniasis Bath therapy Rainbow trout گزنه خون‌شناسی ساپرولگنیوز قزل‌آلای‌رنگین‌کمان حمام‌درمانی ##Adel, M., Pourgholam, R., Zorriehzahra, S.J. and Ghiasi, M., 2015.The effect of different level of Mentha piperita on some of the hematological, biochemical and immune parameters of Oncorhynchus mykiss. Iranian Scientific Fisheries Journal, 24(1):37-46.DOI: 10.22092/ISFJ.2014.103049.##Akbay, P., Basaran, A.A., Undeger, U. and Basaran, N., 2003. In vitro immunomodulatory activity of flavonoid glycosides from Urtica dioica. Phytotherapy Research: An International Journal Devoted to Pharmacological and Toxicological Evaluation of Natural Product Derivatives, 17(1):34-37. DOI:10.1002/ptr. 1068.##Allardice, P., 1993. A-Z of companion planting. Harper Collins Publishers, UK. 208P. ##Amirkhani, N. and Firouzbakhsh, F., 2015. Protective effects of basil (Ocimum basilicum) ethanolic extract supplementation diets against experimental Aeromonas hydrophila infection in common carp (Cyprinus carpio). Aquaculture Research, 46(3):716-724. DOI:10.1111/are. 12217.## ##Awad, E. and Austin, B., 2010. Use of lupin, Lupinus perennis, mango, Mangifera indica, and stinging nettle, Urtica dioica, as feed additives to prevent Aeromonas hydrophila infection in rainbow trout,Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Journal of fish diseases, 33(5):413-420. DOI:10.1111/j.1365-2761.2009.01133.x.##Awad, E., Austin, D. and Lyndon, A.R., 2013. Effect of black cumin seed oil (Nigella sativa) and nettle extract (Quercetin) on enhancement of immunity in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Aquaculture, 388:193-197. DOI:10.1016/j.aquaculture.2013.01.008.##Barton, B.A., Weirter, G.S. and Schreck, C.B., 1985. Effect of prior acid exposure on physiological responses of juvenile rainbow trout (Salmo gairdneri) to acute handling stress. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 42(4): 710-717. DOI:10.1139 /f85-091.##Binaii, M., Ghiasi, M., Farabi, S.M.V., Pourgholam, R., Fazli, H., Safari, R., Alavi ,S.E., Taghavi, M.J and Bankehsaz, Z,. 2014 .Biochemical and hemato-immunological parameters in juvenile beluga (Huso huso) following the diet supplemented with nettle (Urtica dioica). Fish and Shellfish Immunology, 36(1): 46-51. DOI:10.1016/j.fsi. 2013.10.001.##Bombardelli, E .and Morazzoni, P, 1997. Urtica dioica L. Fitoterapia 68(5): 387-402.##Borchers, AT., Keen ,C.L., Stern , J.S. and Gershwin , M.E., 2000. Inflammation and Native American medicine: the role of botanicals. The American Jjournal of Clinical Nutrition, 72(2): 339-347. DOI:10.1093/ajcn/ 72.2.339.##Borges, A., Scotti, L.V., Siqueira, D.R., Jurinitz, D.F. and Wassermann, G.F., 2004. Hematologic and serum biochemical values for jundiá (Rhamdia quelen). Fish Physiology and Biochemistry, 30(1): 21-25. DOI: 10.1007/ s10695-004-5000-1.##Bradford, M.M., 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72(1-2): 248-254. DOI:10.1016/0003-2697 (76)90527-3.##Bruno, D.W. and Woo, B.P., 1994. Viral, Bacterial and Fungal Infections. Edited by P.T.K 4. Woo and D.W. Bruno. CABI Publishing, Waling ford, Oxon, UK. pp 599-559.##Cataldi, E., Di Marco, P., Mandich, A. and Cataudella, S., 1998. Serum parameters of Adriatic sturgeon Acipenser naccarii (Pisces: Acipenseriformes): effects of temperature and stress. Comparative Biochemistry and Physiology - Part A Molecular and Integrative Physiology, 121(4): 351-354. DOI:10.1016/ S1095-6433(98)10134-4.##Catoni, C., Schaefer, H.M. and Peters, A., 2008. Fruit for health: the effect of flavonoids on humoral immune response and food selection in a frugivorous bird. Functional Ecology, 22(4): 649-654. DOI: 10.1111/j.1365-2435.2008. 01400.x.##Cummings, A.J. and Olsen, M,. 2011. Mechanism of action of stinging nettles. Wilderness and Environmental Medicine, 22(2): 136-139. DOI:10.1016/j.wem.2011.01.001.##Douglass, J.W. and Jane, K.W., 2010. Schalm’s Veterinary Hematology. John Wiley and Sons, Blackwell Publishing Ltd, 1232P.##Dügenci, S.K., Arda, N. and Candan, A., 2003. Some medicinal plants as immunostimulant for fish. Journal of Ethnopharmacology, 88(1): 99-106. DOI:10.1016/S0378-8741(03)00182-X.##Ebrahimzadeh Mousavi, H., Rohani, M.S., Khowsravi, A.R., Mehrabi, Y. and Basti,A ., 2006. The Evaluation of Eucaliptus camaldolensis Dehnh. Esscence Application in Control of Fungal Pollution of Trout Eggs. Journal of Medicinal Plants, 4(20): 42-47. ## Firouzbakhsh, F., Afsarian, M.H., Hooshangi, S. and Badali, H., 2014. Evaluation of in vitro antifungal activity of Foeniculum, Achillea, Satureja, Cinnamomum and Artemisia against Saprolegnia parasitica. Arak Medical University Journal, 17(5):60-69. DOI:10.1111/ j.1365-2109.2012.03261.x.##Firouzbakhsh, F., Zolfaghari,A., Mehrabi, Z. and Khalesi, M.K., 2015 .In vitro antifungal activity of Nettle (Urtica dioica) and Basil (Ocimum basilicum) extracts on Saprolegnia parasitica. Journal Animal Environment, 7(3): 211-216.##Gabor, E.F., Şara, A. and Barbu,A., 2010. The effects of some phytoadditives on growth, health and meat quality on different species of fish. Scientific Papers Animal Science and Biotechnologies, 43(1):61-65.##Gabriel, N.N., Qiang, J., He, J., Ma, X.Y., Kpundeh, M.D. and Xu, P. 2015. Dietary Aloe vera supplementation on growth performance, some haemato-biochemical parameters and disease resistance against Streptococcus iniae in tilapia (GIFT). Fish and Shellfish Immunology, 44(2): 504-514. DOI:10.1016/j.fsi.2015.03.002.##Ghosh, A.K., Hirasawa, N. and Ohuchi, K., 2001. Enhancement by histamine of vascular endothelial growth factor production in granulation tissue via H2 receptors. British Journal of Pharmacology, 134(7): 1419-1428. DOI:10.1038/sj.bjp.0704372.##Graham, MS., Haedrich, R.L. and Fletcher, G.L,. 1985. Hematology of three deep-sea fishes: a reflection of low metabolic rates. Comparative and Biochemstry and Physiology. Part A: Comparative Physiology, 80(1): 79-84. DOI:10.1016/0300-9629(85)90682-6.##Gülçin, I., Küfrevioǧlu, Ö.İ., Oktay, M. and Büyükokuroǧlu, M.E., 2004. Antioxidant, antimicrobial, antiulcer and analgesic activities of nettle (Urtica dioica L.). Journal of Ethnopharmacology, 90(2-3): 205-215. DOI:10.1016/j.jep.2003.09.028.##Harikrishnan, R., Balasundaram, C. and Heo,M.S., 2010. Herbal supplementation diets on hematology and innate immunity in goldfish against Aeromonas hydrophila. Fish Fish and Shellfish Immunology, 28(2): 354-361. DOI:10. 1016/j.fsi.2009.11.013.##Houston, A.H. and Rupert, R., 1976. Immediate response of the hemoglobin system of the goldfish, Carassius auratus, to temperature change. Canadian Journal of Zoology, 54(10): 1737-1741.DOI:10.1139/z76-201. ##Houston, A.H., 1990. Blood and circulation. In: Schreck, C.B. and Moyle, P.B., (eds.) Methods for fish biology. American Fisheries Society, Bethesda, MD, USA. pp 273-334.##Karimi Pashaki, A., Ghasemi, M., Zorrieh Zahra, S.J., Shrif Rohani, M. and Hosseini, S.M., 2019. Effect of diets containing aqueous-alcoholic extract of olive leaf (Olea eurcpaea L.) on growth performance and some blood and immune parameters in common carp (Cyprinus carpio) fingerlings. Iranian Scientific Fisheries Journal, 27(2):71-80. DOI:10.220092/ISFJ. 2018.116698.##Kumari, J., Sahoo, P.K., Swain, T., Sahoo, S.K., Sahu, A.K. and Mohanty, B.R., 2006. Seasonal variation in the innate immune parameters of the Asian catfish (Clarias batrachus). Aquaculture, 252(2-4): 121-127. DOI:10.1016/j.aquaculture.2005.07.025. ##Lim, C., Klesius, P.H., Li, M.H. and Robinson, E.H., 2000. Interaction between dietary levels of iron and vitamin C on growth, hematology, immune response and resistance of channel catfish (Ictalurus punctatus) to Edwardsiella ictaluri challenge. Aquaculture, 185(3-4):313-327. DOI:10.1016/S0044-8486(99)00352-X.##Matsuyama, H., Tanaka, K., Nakao, M. and Yano, T., 1988. Characterization of the alternative complement pathway of carp. Developmental and Comparative Immunology, 12(2): 403-408. ‌DOI: 10.1016/ 0145-305X(88)90015-8.##Mehrabi, Z., Firouzbakhsh, F., Rahimi-Mianji, G. and Paknejad, H., 2019. Immunostimulatory effect of Aloe vera (Aloe barbadensis) on non-specific immune response, immune gene expression, and experimental challenge with Saprolegnia parasitica in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, 500 :.330-338.DOI: 10.1016/j.aquaculture.2019.01.025##Meyer, F.P. and Jorgenson, T.A., 1983. Teratological and other effects of malachite green on development of rainbow trout and rabbits. Transactions of the American Fisheries Society, 112(6): 818-824. DOI:10.1577/1548-8659(1983)112%3C818:TAOEOM%3E2.0.CO;2.##Miligan, CL. and Wood, C.M., 1982. Disturbances in haematology, fluid volume distribution and circulatory function associated with low environmental pH in the rainbow trout, Salmo gairdneri. Journal of Experimental Biology, 99(1): 397-415.##Naghdi badi, H. and Makizadeh Tafti, M., 2007. A review on Thymus species Journal of Medical Plants,7: 1-13.##Nayak, S.K., Swain, P., Nanda, P.K., Dash, S., Shukla, S., Meher, P.K. and Maiti, N.K., 2008. Effect of endotoxin on the immunity of Indian major carp, Labeo rohita. Fish and Shellfish Immunology, 24(4): 394-399. DOI:10.1016/j.fsi.2007.09.005.##Ngugi, C.C., Oyoo-Okoth, E., Mugo-Bundi, J., Orina, P.S., Chemoiwa, E.J. and Aloo, P.A ., 2015. Effects of dietary administration of stinging nettle (Urtica dioica) on the growth performance, biochemical, hematological and immunological parameters in juvenile and adult Victoria Labeo (Labeo victorianus) challenged with Aeromonas hydrophila. Fish and Shellfish Immunology, 44(2): 533-541. DOI:10.1016/ j.fsi.2015.03.025.##Numata, Y., Terui, T., Okuyama, R., Hirasawa, N., Sugiura, Y., Miyoshi, I., Watanabe, T., Kuramasu, A., Tagami, H.and Ohtsu, H., 2006. The accelerating effect of histamine on the cutaneous wound-healing process through the action of basic fibroblast growth factor. Journal of Investigative Dermatology, 126(6): 1403-1409. DOI:10.1038/sj.jid. 5700253.##Peters, J.r. T., 1995. All about albumin: biochemistry, genetics, and medical applications. Academic press.San Diego, California, USA. 434P.##Peyghan, R., Khadjeh, G.H. and Enayati, A., 2014. Effect of water salinity on total protein and electrophoretic pattern of serum proteins of grass carp, Ctenopharyngodon idella. In Veterinary research forum: an international quarterly journal(Vol. 5, No. 3, p. 225). Faculty of Veterinary Medicine, Urmia University, Urmia, Iran, 5(3):225-229. ##Pietta, P. and Simonetti, P., 1998. Dietary flavonoids and interaction with endogenous antioxidants. IUBMB Life, 44(5): 1069-1074. DOI:10.1080/15216549800202132.##Randall, C., Meethan, K., Randall, H. and Dobbs, F., 1999. Nettle sting of Urtica dioica for joint pain—an exploratory study of this complementary therapy. Complementary Therapies in Medicine, 7(3): 126-131. DOI:10.1016/S0965-2299(99)80119-8.##Rohani, MS., Ebrahimzadeh, MH., Khosravi, A.R., Mokhayer, B., Mirzargar, S.S. and Mehrabi, Y.E., 2006. Evaluation of Geranium herbarum escence application in control of fungal contamination in rainbow trout eggs. Iranian Journal of Veterinary Medicine, 61(3): 269-272.##Saeidi Asl, M.R., Adel, M., Caipang, C.M.A. and Dawood, M.A., 2017. Immunological responses and disease resistance of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) juveniles following dietary administration of stinging nettle (Urtica dioica). Fish and Shellfish Immunology, 71:230-238. DOI: 10.1016/j.fsi.2017.10.016. Epub 2017 Oct 7.##Sahoo, P.K., Kumari, J. and Mishra, B.K., 2005. Non‐specific immune responses in juveniles of Indian major carps. Journal of Applied Ichthyology, 21(2): 151-155. DOI:10.1111/j.1439-0426.2004.00606.x.##Sakai, M., 1999. Current research status of fish immunostimulants. Aquaculture, 172(1-2): 63-92. DOI:10.1016/S0044-8486(98)00436-0.##Secombes, C.J. and Fletcher, T.C., 1992. The role of phagocytes in the protective mechanisms of fish. Journal of Fish Diseases, 2: 53-71. DOI:10.1016/0959-8030(92)90056-4.##Stoskopf, M.K., 1993. Fish medicine. WB Sanders Company, Pilladelphia. USA. 220P.##Tapwal, A., Garg, S., Gautam, N., Kumar, R., 2011. In vitro antifungal potency of plant extracts against five phytopathogens . Brazilian Archives of Biology and Technology, 54(6): 1093-1098. .DOI:10.1590/S1516-89132011000600003. ##Tavares‐Dias, M. and Moraes, F.R.D., 2007. Leukocyte and thrombocyte reference values for channel catfish (Ictalurus punctatusRaf), with an assessment of morphologic, cytochemical, and ultrastructural features. Veterinary Clinical Pathology, 36(1): 49-54. DOI:10.1111/j.1939-165X.2007.tb00181.x.##Wetherilt, H., 1992. Evaluation of Urtica species as potential sources of important nutrients. In Developments in Food Science, 29: 15-25. DOI:10.1016/B978-0-444-88834-1.50007-7.##Zahran, E.and Risha, E., 2013. Protective role of adjuvant and potassium permanganate on oxidative stress response of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) challenged with Saprolegnia ferax. SpringerPlus, 2(1): 94. DOI:10.1186/2193-1801-2-94.##Zanuzzo, F.S., Biller-Takahashi, J.D. and Urbinati, E.C., 2012. Effect of Aloe vera extract on the improvement of the respiratory activity of leukocytes of matrinxa during the transport stress. Rev. Revista Brasileira de Zootecnia, 41(10): 2299-2302. DOI:10.1590/S1516-35982012001000023. ##Zanuzzo, F.S., Zaiden, S.F., Senhorini, J.A., Marzocchi-Machado, C.M.and Urbinati, E.C., 2015. Aloe vera bathing improved physical and humoral protection in breeding stock after induced spawning in matrinxã (Brycon amazonicus). Fish and Shellfish Immunology, 45(1): 132-140. DOI:10.1016/ j.fsi.2015.02.017.##Zhu, Q.Y., Huang, Y. and Chen, Z.Y., 2000. Interaction between flavonoids and α-tocopherol in human low density lipoprotein. Journal of Nutritional Biochemistry, 11(1): 14-21. DOI:10.1016/S0955-2863(99)00065-0. ## ##

تأثیر سطوح مختلف شوری و منابع کربن در سیستم تولید توده زیستی (Biofloc) Effects of different salinity levels and carbon sources in biofloc production system 1 1 مواد آلی کربن‏دار و میزان شوری از فاکتورهای کلیدی در سیستم بدون تعویض آب با تولید توده زیستی هستند. در مطالعه حاضرT تولید توده زیستی تحت تأثیر سطوح مختلف شوری در سه سطح (10، 21 و 32 ppt) و منابع کربن (ملاس و آرد گندم) در سیستم بدون تعویض آب مطالعه شد. آزمایش در مرکز تکثیر و پرورش آبزیان، بندر کلاهی، میناب، هرمزگان به مدت چهار هفته در ظروف فایبرگلاس 300 لیتری انجام گردید. کمترین میزان اکسیژن محلول (68/5 میلی­گرم در لیتر)، آمونیاک (29/0 میلی­گرم در لیتر) و بیشترین میزان نیترات (68/12 میلی­گرم در لیتر) در تیمار ملاس با شوری  ppt32 به دست آمد. تفاوت معنی­داری در برخی از مقادیر پارامترهای کیفی آب شامل اکسیژن محلول، pH، آمونیاک و نیترات بین تیمارهای مختلف مشاهده شد (05/0>p). آنالیز ترکیبات بیوشیمیایی توده زیستی کاهش در میزان پروتئین و افزایش در میزان خاکستر با افزایش شوری نشان داد. میزان چربی در توده­های زیستی ملاس کمتر از توده­های زیستی آرد گندم بود و اختلاف معنی­داری داشت (05/0>p). نتایج تحقیق نشان داد که نوع منبع کربن و میزان شوری بر پارامترهای کیفی آب و ارزش غذایی توده­های زیستی در سیستم بدون تعویض آب تاثیر می‏گذارد. 2 Carbonaceous organic matter and water salinity are the key factors in zero water exchange system with biofloc production. In the present study, production of biofloc in different water salinities and carbon sources was investigated in zero water exchange system. For this purpose, three levels of salinity (10, 21 and 32 ppt) and two types of carbon source (molasses and wheat flour) were considered in zero water exchange system. The experiment was conducted in tanks with water volume of 300L for 4 weeks in propagation and cultivation aquatics center located in Bandar Kolahi, Minab, Hormozgan province. Minimum dissolved oxygen (5.68 mg/l) and NH3 (0.29 mg/l) and maximum NO3 (12.68 mg/l) obtained in the tanks with molasses, as carbon source, and 32ppt water salinity. Some of water phsicochemical parameters including dissolved oxygen, pH, NH3 and NO3 were measured regularly and significant differences were observed among the different treatments (p<0.05). The analysis of the biochemical composition of the bioflocs showed a decrease in protein and an increase in ash content along with increase in water salinity. Lipid content in molass biofloc was significantly lower than the wheat flour biofloc (p<0.05). The results showed that type of carbon source and value of salinity would be effective on water quality parameters and nutrition value of bioflocs in zero water exchange system. 69 78 2018/12/32018/08/52019/01/132019/03/282019/04/222019/04/292019/04/11 1398/1/22 2019/07/202019/07/212019/07/282019/07/232019/05/192019/07/272019/07/27 1398/5/5 محمدحسین خانجانی mohammad hossein khanjani دانشگاه جیرفت ایران m.h.khanjani@gmail.com Biofloc Carbon sources Salinity Zero water exchange system توده زیستی منابع کربن شوری سیستم بدون تعویض آب ##خانجانی، م.ح.، سجادی، م.م.، علیزاده، م. و سوری نژاد، ا.، 1395. تولید و ارزیابی بیوفلوک به‌منظور به‌کارگیری در سیستم پرورشی بدون تعویض آب. نشریه توسعه آبزی پروری، سال دهم، شماره اول، صفحات، 42-33.##خانجانی، م.ح.، سجادی، م.م.، علیزاده، م.، سوری نژاد، ا. 1394. تاثیر نسبتهای مختلف غذادهی بر کیفیت آب، عملکرد رشد و بقاء پست لاروهای میگوی سفید غربی (Litopenaeus vannamei Boone, 1931) با استفاده از تکنولوژی بیوفلوک. مجله علمی شیلات ایران، سال بیست و چهار، شماره دوم، صفحات، 28 – 13.##خانجانی، م.ح.، علیزاده، م. و رفیعی پور، ا.، 1395. توسعه آبزی پروری پایدار با استفاده از فنآوری توده سازی زیستی. بهره برداری و پرورش آبزیان، جلد پنجم، شماره دوم، صفحات، 72-45. ##خانجانی، م.ح.، علیزاده، م.، سجادی، م.م.، سوری نژاد، ا. 1394. تاثیر منابع مختلف کربن بر کیفیت آب، عملکرد رشد و بقاء میگوی سفید غربی (Litopenaeus vannamei Boone, 1931) در سیستم پرورشی بدون تعویض آب. مجله علمی شیلات ایران، سال بیست و چهار، شماره سوم، صفحات، 91 – 77.##AOAC, 2005. Official methods of analysis. Association of official analytical chemists, INC., Arlington, Virginia, USA. 245P.##Avnimelech, Y., 1999. Carbon/nitrogen ratio as a control element in aquaculture systems. Aquaculture, 176: 227–235. DOI:10.1016/S0044-8486(99)00085-X.##Avnimelech, Y., 2007. Feeding with microbial flocs by tilapia in minimal discharge bio-flocs technology ponds. Aquaculture, 264: 140-147. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2006.11.025##Avnimelech, Y., 2009. Biofloc Technology: A Practical Guide Book. World Aquaculture Society, Baton Rouge, Louisiana, USA. 182P.##Avnimelech, Y. and Kochba, M., 2009. Evaluation of nitrogen uptake and excretion by tilapia in biofloc tanks, using N-15 tracing. Aquaculture, 287: 163–168. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2008.10.009. ##Avnimelech, Y., 2012. Biofloc Technology: A Practical Guide Book, 2nd Edition. The World Aquaculture Society, Baton Rouge, Louisiana, United States. 272p.##Azim, M.E. and Little, D.C., 2008. The biofloc technology (BFT) in indoor tanks: water quality, biofloc composition, and growth and welfare of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture, 283: 29-35. DOI:10.1016/j.aquaculture.2008.06.036.##Burford, M.A.; Thompson, P.J.; Bauman, R.H. and Pearson, D. C., 2004. The contribution of flocculated material to shrimp Litopenaeus vannamei nutrition in a high-intensive zero-exchange system. Aquaculture, 232: 525-537. DOI:10. 1016/S0044-8486(03)00541-6.##Crab, R., Chielens, B., Wille, M., Bossier, P. and Verstraete, W., 2010. The effect of different carbon sources on the nutritional value of bioflocs, a feed for Macrobrachium rosenbergii postlarvae. Aquaculture Research, 41(4): 559-567. DOI:10.1111/j.1365-2109.2009.02353.x.##De Schryver, P., Crab R., Defoirdt, T., Boon N. and Verstraete, W., 2008. The basics of bioflocs technology: the added value for aquaculture. Aquaculture, 277: 125-137. DOI:10.1016/j.aquaculture.2008.02.019.##De Schryver, P., Sinha, A.K., Kunwar, P.S., Baruah, K. and Verstraete, W., 2010. Poly-beta-hydroxybutyrate (PHB) increases growth performance and intestinal bacterial range-weighted richness in juvenile European sea bass, Dicentrarchus labrax. Applied Microbiology and Biotechnology, 86: 1535-1541. DOI: 10.1007/s00253-009-2414-9.##Decamp, O., Cody, J., Conquest, L., Delanoy, G. and Tacon, A.G.J., 2003., Effect of salinity on natural community and production of Litopenaeus vannamei (Boone) within experimental zero-water exchange culture systems. Aquaculture Research, 34: 345-355. DOI: 10.1046/j.1365-2109.2003.00842.x.##Emerenciano, M., Cuzon G., Goguenheim, G.J., Gaxiola G. and Aquacop., 2013. Floc contribution on spawning performance of Blue shrimp Litopenaeus stylirostris. Aquaculture Research, 44: 75–85. DOI:10.1111/j.1365-2109.2011. 03012.x.##Emerenciano, M., Gaxiola, G. and Cuzon, G., 2013. Biofloc technology (BFT): a review for aquaculture application and animal food industry. In: Matovic MD (ed.) Biomass Now – Cultivation and Utilization, In Tech, Queen’s University, Belfast, Canada, pp. 301–328. ##Gao, L., Shan, H.W., Zhang, T.W., Bao, W.Z. and Ma, S.J., 2012. Effects of carbohydrate addition on Litopenaeus vannamei intensive culture in a zero-water exchange system. Aquaculture, 342: 89–96. DOI:10.1016/j.aquaculture.2012.02. 022.##Hakanson, L., 2006. The relationship between salinity, suspended particulate matter and water clarity in aquatic systems. Ecological Research, 21: 75-90. DOI: 10.1007/s11284-005-0098-x.##Hargreaves, J.A., 2006. Photosynthetic suspended-growth systems in aquaculture. Aquacultural Engineering, 34: 344–363.##Ju, Z.Y., Forster, I., Conquest, L.; Dominy, W., Kuo, W.C. and Horgen, F.D., 2008. Determination of microbial community structures of shrimp floc cultures by biomarkers and analysis of floc amino acid profile. Aquaculture Research, 39:118-133. DOI:10.1111/j.1365-2095.2007.00559.x##Khanjani, M. H., Sajjadi, M. M., Alizadeh, M., Sourinejad, I., 2017. Nursery performance of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei Boone, 1931) cultivated in a biofloc system: the effect of adding different carbon sources. Aquaculture Research, 48 (4):1491-1501. DOI:10.1111/are. 12985 .##Khanjani, M. H., Sajjadi, M. M., Alizadeh, M., Sourinejad, I., 2017. Study on nursery growth performance of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei Boone, 1931) under different feeding levels in zero water exchange system. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 15 (4): 1465-1484##Kumar, S., Anand, P.S.S., De D., Deo, A.D., Ghoshal, T.K., Sundaray, J.K., Ponniah, A.G., Jithendran, K.P., Raja, R.A., Biswas, G. and Lalitha, N., 2017. Effects of biofloc under different carbon sources and protein levels on water quality, growth performance and immune responses in Black tiger shrimp Penaeus monodon (Fabricius, 1978). Aquaculture Research, 48(3): 1168-1182. DOI:10. 1111/are.12958.##Lopez-Elias, J.A., Moreno-Arias, A., Miranda-Baeza, A., Martinez-Cordova, L.R., Rivas-Vega, M.E. and Marquez-Rios, E., 2015. Proximate composition of bioflocs in culture systems containing hybrid Red Tilapia fed diets with varying levels of vegetable meal inclusion. North American Journal of Aquaculture, 77:102–109. DOI: 10.1080/15222055. 2014.963767.##Maicá, P.F., de Borba, M.R., Martins, T.G. and Junior, W.W., 2014. Effect of salinity on performance and body composition of pacific white shrimp juveniles reared in a super-intensive system. Revista Brasileira de Zootecnia, 43(7): 343-350. DOI:10.1590/S1516-35982014000700001.##McIntosh, B.J., Samocha, T.M., Jones, E. R., Lawrence, A.L., McKee, D.A., Horowitz, S. and Horowitz, A., 2000. The effect of a bacterial supplement on the high-density culturing of Litopenaeus vannamei with low-protein diet on outdoor tank system and no water exchange. Aquacultural Engineering, 21: 215-227. DOI: 10.1016/S0144-8609(99) 00030-8.##MOOPAM., 1999. Manual of oceanographic observations and pollutants analysis methods (Third Edition). The Regional Organisation for the Protection of the Marine Environment (ROPME), Kuwait. ##Tacon, A.G.J., 2000. Shrimp feeds and feeding regimes in zero exchange outdoor tanks. The Advocate April: 15-16.##Valle, B.C.S., Dantas, Jr., Silva, J.F.X., Bezerra, R.S., Correia, E.S., Peixoto, S.R.M. and Soares, R.B., 2015. Replacement of fish meal by fish protein hydro lysate and biofloc in diets of Litopenaeus vannamei postlarvae. Aquaculture Nutrition, 21: 105–112. DOI: 10.1111/anu.12149.##Wang, C., Pan, L., Zhang, K., Xu, W., Zhao, D. and Mei, L., 2016. Effects of different carbon sources addition on nutrition composition and extracellular enzymes activity of bioflocs, and digestive enzymes activity and growth performance of Litopenaeus vannamei in zero-exchange culture tanks. Aquaculture Research, 47(10): 3307-3318. DOI:10. 1111/are.12784.##Wasielesky, W., Atwood, H., Stokes, A. and Browdy, C. L., 2006. Effect of natural production in a zero exchange suspended microbial floc based super-intensive culture system for white shrimp Litopenaeus vannamei. Aquaculture, 258: 396-403. DOI:10.1016/j. aquaculture.2006.04.030.## ##

سن، رشد و مقدار زی‌توده ماهی سفید (Rutilus frisii, Kamensky, 1901) در آبهای ایرانی دریای خزر Age, growth and biomass of the Kutum (Rutilus frisii, Kamensky., 1901) in Iranian waters of the Caspian Sea 1 1 این تحقیق به‌ منظور تعیین ترکیب طولی، سنی، محاسبه پارامترهای رشد و مرگ‌و‌میر و محاسبه مقدار زی‌توده ماهی سفید در آبهای ایرانی دریای خزر طی سال بهره‌برداری 97ـ1396 انجام شد. داده‌های زیست‌سنجی این مطالعه از ترکیب صید شرکت‌های تعاونی صیادی پره در استان‌های گیلان، مازندران و گلستان گردآوری گردید. میانگین (± انحراف معیار) طول چنگالی و وزن کل ماهی سفید بترتیب 9/6±4/37 سانتی‌متر و 4/418±8/729 گرم محاسبه شد. دامنه سنی ماهیان سفید 11-2 ساله بوده و بیش از 4/73 درصد از ترکیب سنی را ماهیان 4-3 ساله با میانگین (± انحراف معیار) طول چنگالی بترتیب 8/5±8/33 و 2/6±0/39 سانتی‌متر دارا بودند. ضریب همبستگی طول چنگالی و وزن کل 96/0 و مقادیر a و b بترتیب 012/0 و 99/2 محاسبه شد. مقدار ضریب رشد سالانه (K)، طول بی‌نهایت (∞L) و سن در طول صفر (t0) به‌ترتیب 21/0 بر سال، 4/61 سانتی‌متر و 54/0- سال و پارامترهای مرگ ‌و‌ میر کل (Z)، طبیعی (M) و صیادی (F) بترتیب 76/0، 38/0 و 38/0 محاسبه شد. مقدار زی‌توده ماهی سفید حدود 7/27437 تن محاسبه و برآورد گردید. به رغم افزایش تولید و رهاسازی بچه ماهیان سفید در سال‌های اخیر، مقدار زی‌توده این گونه در آبهای ایرانی دریای خزر روندی کاهشی داشته است. 2 This study was conducted to determination length and age composition, growth and mortality parameters and estimate biomass of Kutum in the Iranian coastal waters of the Caspian Sea from 2017 to 2018. The biometrics data were collected from the fishing cooperatives in the Guilan, Mazandaran and Golestan provinces. The mean (± SD) of fork length and total weight were obtained 37.4±6.9 cm and 729.8±418.4 gr respectively. The range of age was from 2 to 11 year and fish with 3 to 4 years comprised up to 73.4 percent. The mean (± SD) of fork length for 3 and 4 age groups were 33.8±5.8 and 39.0±6.2 cm respectively. In length – weight relationship a, b and r2 were calculated 0.012, 2.99 and 0.96. K value, L∞ and t0 were calculated 0.21 (/year), 61.4 cm and -0.54 respectively. Mortality parameters such as Z, M and F were calculated 0.76, 0.36 and 0.36 respectively. The biomass of kutum estimated 27437.7 tons. 79 87 2018/12/32018/08/52019/01/132019/03/282019/04/222019/04/292019/04/112019/05/14 1398/2/24 2019/07/202019/07/212019/07/282019/07/232019/05/192019/07/272019/07/272019/07/28 1398/5/6 غلامرضا دریانبرد Gh.R. Daryanabard پژوهشکده اکولوژی دریای خزر ایران daryanabard@yahoo.com حسن فضلی H. Fazli پژوهشکده اکولوژی دریای خزر ایران hn_fazli@yahoo.com سید امین اله تقوی مطلق S.A. Taghavi Motlagh موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران s_taghavimotlagh@hotmail.com غلامعلی بندانی Gh.A. Bandani مرکز تحقیقات ذخایر آبزیان آبهای داخلی ایران banda_gh@yahoo.com اکبر پورغلامی مقدم A. Poorgholami Moghadam پژوهشکده آبزی پروری آبهای داخلی ایران pourgholami_yas@yahoo.com Kutum Growth and mortality parameters Biomass Caspian Sea ماهی سفید پارامترهای رشد مرگ‌و‌میر زی‌توده دریای خزر ##استکی، ع.، 1383. بوم شناسی ماهیان. مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 244 ص.##افشین‌نیا، م.، 1378. روش های آماری و کاربرد آن در علوم. طراحان ناشر. 626 ص.##پرافکنده، ف.، دریانبرد، غ.، کیمرام، ف. و فضلی، ح.، 1396. ضوابط و معیارهای تعیین شروع و خاتمه فصل صید ماهیان استخوانی به روش پره. موسسه تحقیقاتی علوم شیلاتی کشور. 47 ص.##پیری، م.، رضوی‌صیاد، ب.، غنی‌نژاد، د. و ملکی‌شمالی، م.، 1378. ماهیان استخوانی دریای خزر (آبهای ایران) گذشته، حال، آینده توسعه پایدار. مرکز تحقیقات شیلاتی گیلان.##دریانبرد، غ.، 1392. بررسی برخی از شاخص‌های بیولوژیکی ماهیان استخوانی در سواحل جنوبی دریای خزر. موسسه تحقیقاتی علوم شیلاتی کشور. 132 ص.##دریانبرد، غ.، 1397. ارزیابی ذخایرماهی‌سفید در آب‌های ایرانی‌دریای‌خزر (96ـ1394). موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 67 ص.##دفتر برنامه‌ریزی و بودجه.، 1396. سالنامه آماری سازمان شیلات ایران 1395ـ1391. سازمان شیلات ایران. 64 ص.##رضوی‌صیاد، ب.، 1369. ارزیابی و مدیریت ذخایر ماهیان استخوانی و اقتصادی دریای مازندران. مرکز تحقیقات شیلات استان گیلان. 86 ص.##عبدالملکی، ش.، غنی‌نژاد، د.، بورانی، م.، پورغلامی، ا.، دریانبرد، غ. و بندانی، غ.، 1384. ارزیابی‌ ذخایر ماهیان استخوانی‌ دریای خزر درسال‌ 84ـ1383. مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 145 ص.##فضلی، ح.، 1390. ارزیابی ذخایر ماهیان استخوانی در سواحل جنوبی دریای‌خزر (89ـ1386). موسسه تحقیقات شیلات ایران. 90 ص.##فضلی، ح.، 1394. پویایی جمعیت ماهیان استخوانی حوضه جنوبی دریای خزر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 72 ص.##نوعی، م.، غنی نژاد، د. و مقیم، م.، 1370. ارزیابی‌ ذخایر ماهیان‌ استخوانی‌ دریای‌ خزر در سال‌ 70ـ1369. مرکز تحقیقات‌ شیلاتی استان گیلان. 88 ص.##وثوقی، غ. و مستجیر، ب.، 1371. ماهیان آب شیرین. انتشارات دانشگاه تهران. 317 ص.##Afraei, M. A., Abdolmaleki, Sh., Najafpour, Sh., Bani, A., Pourgholam. R., Nasrolahzadeh. H. and Fazli, H., 2011. The environmental effect on spawning time, length at maturity and fecundity of Kutum (Rutilus frisii kutum, Kamensky., 1901) in southern part of Caspian Sea, Iran. Iranica Journal of Energy and Environment, 2 (4): 374-381. DOI: 10.5829/idosi.ijee.2011.02.04.3097##Biswas, S. P., 1993. Manual of methods in fish biology. South Asian publishers PVT Ltd, New Delhi. 157 p.##Ferid-Pak, F., 1968. Fertility of the kutum Rutilus frisi kutum (Kamensky). Problems of Ichthyology, 8(1): 61-68. ##Gayaniolo, F. C., Sparre, P. and Pauly, D., 1996. The FAO-ICLARM stock assessment tools (FISAT). Users guide. FAO. Computerized Information Series (Fisheries) No. 8. Rome, FAO. 126 p.##Gheshlaghi, P., Vahabnejad, A. and TaghaviMotlagh, S. A., 2012. Growth parameters, mortality rates, yield per recruit, biomass, and MSY of Rutilus frisii kutum, using length frequency analysis in the Southern parts of the Caspian Sea. Iranian Journal of Fisheries Science, 11 (1): 48-62. ##King, M., 2007. Fisheries biology, assessment and management. Second edition, Blackwell publishing, Singapore. 382 p.##Pauly, D., 1980. On the interrelationships between natural mortality, growth parameters and mean environmental temperature in 175 fish stock. Journal of Marine Science, 39 (2): 92-175. DOI: 10.1093/icesjms/39.2.175##Ricker, W.E., 1975. Computation and interpretation of biological statistics of fish populations. Bulletin of the Fisheries Research Board of Canada. 400 p.##Sabir, A., 1992. An introduction to fresh water fishery biology. University Grants commission, H-9 Islamabad, Pakistan. pp. 97-106.## ##Sparre, P., Ursin, E. and Venema, S. C., 1989. Introduction to tropical fish stock assessment. Part 1. Manual. FAO fish. Tech. Pap., 306/1. 333p.##Von Bertalanffy, L., 1938. A quantitative theory of organic growth. Human Biology. 10 (2): 181-213. ##Walters, J.C. and Martell J.D.S., 2004. Fisheries ecology and management. Princeton University Press, 399 P.##Zhang, C.I. and Sullivan, P.J., 1988. Biomass-based cohort analysis that incorporates growth. Transactions of American Fisheries Society, 117: 180-189. DOI: 10.1577/1548-8659(1988)117<0180:BBCATI>2.3.CO;2 ## ##

تامین نیازهای تغذیه‌ای دام و انسان از فانوس‌ماهیان Supplying nutritional needs of livestock and humans from lanternfishes 1 1 در یک قرن گذشته، از فرآورده‌هایی مانند پودر‌ و روغن ماهی، سیلاژ ماهی و غیره در خوراک ‌دام استفاده شده است. کشور ما از چند دهه‌ گذشته از واردکنندگان پودر ماهی بوده و هست و برای افزایش تولید داخلی و کاهش واردات، تلاش‌های بسیاری انجام شده است. مطالعات گسترده برای استفاده از ماهیان میان‌زی ریز (فانوس‌ماهیان) در دریای عمان از جمله‌ی این کوشش‌ها بوده است. فانوس‌ماهیان از ذخایر بکر و دست نخورده‌‌ای هستند که برای استفاده از آن‌ها جهت مصرف انسانی و خوراک‌دام پژوهش‌های زیادی انجام شده است. توسعه‌ نیافتن صید و فرآوری فانوس‌ماهیان در ایران- با توجه به حجم سرمایه‌گذاری‌های انجام شده- دلایل مختلفی از جمله شناخت ناکافی از این ماهیان دارد. این مقاله با مرور آخرین یافته‌های پژوهشی، ضمن معرفی این آبزی و بیان ویژگی‌های پروتئین و چربی آن، به ضرورت استفاده از آن در خوراک دام و مصرف انسانی می‌پردازد. 2 In the last century, products such as fishmeal, fish oil, and silage, etc. have been used in animal feed. In the past few decades, our country has been importing fishmeal. Therefore, many efforts have been made to increase domestic production and to reduce the imports. Extensive studies have been conducted on the use of small mesoplagic (lanternfish) in the Oman Sea as a part of these efforts. The lanternfishes are untapped resources, which many researchers have been carried out about their application in human foods and animal feeds. Despite of the volume of investments made by the government, the slow development of the catching and processing of the lanternfishes in Iran has various reasons, including inadequate knowledge of this fish. This article, introduces this fish and its protein and fat properties by reviewing the latest research findings, and emphasizes the necessity of using it in animal feed and human food. 89 101 2018/12/32018/08/52019/01/132019/03/282019/04/222019/04/292019/04/112019/05/142018/06/20 1397/3/30 2019/07/202019/07/212019/07/282019/07/232019/05/192019/07/272019/07/272019/07/282019/07/27 1398/5/5 امیررضا شویک لو A.R. Shaviklo موسسه تحقیقات علوم دامی ایران shaviklo@gmail.com یزدان مرادی Y. Moradi موسسه تحقیقات علوم شیلاتی ایران ymorady@yahoo.com : Lanternfish Myctophid fish meal human consumption فانوس ماهیان میکتوفیده پودرماهی مصرف انسانی ##اولیائی، ن.، موسوی‌نسب، م.، قربانی، م.، صادقی ماهونک، ع.، مقصودلو، ی. 1394. بررسی ترکیبات شیمیایی و ویژگی‌های عملکردی پروتئین ایزوله شده از فانوس‌ماهی (Benthosema pterotum) با استفاده از روش تغییر pH. مجله علمی شیلات ایران. جلد 24، شماره 1: 35-25. DOI: 10.22092/ISFJ.2014.103048##آفتاب سوار، ی.، 1374. آنالیز کمی و کیفی پودر ماهی میکتوفیده، مرکز تحقیقات شیلاتی دریای عمان، سازمان آموزش و تحقیقات شیلات، بندرعباس.##بحری، ا.، افخمی م.، احسان‌پور، م.، مخلصی، ا.، 1394. ﻓﺎﻧﻮس ﻣﺎﻫﻴﺎن :ذﺧﺎﺋﺮ ﻋﻈﻴﻢ اسیدهای چرب در دریای عمان. اقیانوس شناسی شماره 3: 11-.17 ##سرحدی، ن.، طاهری، ع.، معتمدزادگان، ع.، 1392. بررسی محتوای اسیدهای چرب و مواد معدنی در استخوان ماهی ساردین پهلوطلایی، کیلکای آنچووی و موتو ماهی، شیلات: مجله منابع طبیعی ایران، 67-4: 545-533.##شویک‌لو ا. 1373. وضعیت تولید پودر ماهی در ایران. گزارش فنی معاونت صید و صنایع شیلاتی، شرکت سهامی شیلات ایران، تهران.##شویک‌لو، ا.، 1396. بهینه‌سازی فرآیند تولید و ساخت ایزوله‌ی پروتئین ماهی برای کاربردهای خوراکی. طرح ملی شماره 92044844. صندوق حمایت از پژوهشگران و فناوران. معاونت علمی و فنی ریاست جمهوری، تهران.##شویک‌لو، ا.، رفیع‌پور، ف.، 1390. بررسی امکان‌پذیری ساخت فرآورده‌های باارزش افزوده از فانوس‌ماهیان (گزارش نمونه‌سازی‌های اولیه) . مرکز ملی تحقیقات فرآوری آبزیان، موسسه‌ی تحقیقات علوم شیلاتی کشور.##عادلی، ا.، بقایی، ف.، 1395. بررسی تولید و بازار پودر ماهی در توسعه آبزی پروری. نشریه توسعه آبزی پروری، 10، 3، 149-137.##عظیمی، ع.، حسینی، ع.، سوداگر، م.، اصلان پرویز، ح.، 1390. اثر جایگزینی پودر گاماروس با بخشی از پودرماهی کیلکای دریای خزر بر عملکرد رشد، ضریب تبدیل غذایی و بقا بچه‌ماهیان قزل‌آلای رنگین کمان. مجله علمی شیلات، 20، 3: 74-63. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110008##کیایی، م.، مدیر صانعی، م.، فرخوی، م.، 1380. بررسی ارزش غذایی پودر ماهی حاصله از فانوس‌ماهیان (ماهیان میکتوفیده) دریای عمان و مقایسه آن با پودرهای ماهی وارداتی آنچووی پرو . مجله‌ی علمی چکاوک شماره 10: -118 129. ##ولی نسب، ت.؛ حسینی شکرابی، پ.1390. الگوی رشد و تعیین سن روزانه فانوس ماهی Benthosema pterotum در دریای عمان. مجله علمی شیلات ایران. ۲۰-۱ :۱60-۱47. DOI: 10.22092/ISFJ.2017. 109983##ولی‌نسب، ت.، آفتاب‌سوار، ی.، 1378. امکان‌سنجی صید اقتصادی قانوس ماهیان (میکتوفیده) جهت تولید آرد ماهی و ارزیابی کمی و کیفی آن. مجموعه مقالات سمینار علمی-کاربردی فرآوری آبزیان (میگو، کنسرو، پودرماهی) در دانشگاه تهران. شرکت سهامی شیلات ایران، تهران.##Ariyawansa, S., 2000. The evaluation of functional properties of fish meal. United Nations University-Fisheries Training Programme, Reylyavik, Iceland.##Aygul, K. and Mehmet, C. 2008. Amino acid composition of blue crab (Callinectes sapidus) from the north eastern Mediterranean Sea. Journal of Applied Biology Science, 2(1): 39-42.##Balu, S. and Menon, N.G. 2006. Lantern fish-A potential deep sea resource. Marine Ecosystem, 5: 3-5.##Belitze, H.D., grosch, W, Schieberle, P. 2009. Food Chemistry, 4th Ed., pp. 211–218, Springer-Verlag, Berlin, Germany.##Chai, H.J., Chan, Y.L., Li, T.L., Chen, Y.C., Wu, C.H. Shiau, C.Y. and Wu, C.J., 2012. Composition characterization of myctophids (Benthosema pterotum): Antioxidation and safety evaluations for myctophids protein hydrolysates. Food Research International, 46: 118-126. DOI:10.1016/j.foodres.2011.12.008. ##El-Mowafi, A. Nanton, D. and Berntssen, M., 2010. Evaluation of lantern fish (Benthosema Pterotum) as marine source in fish feeds: nutrient composition and contaminants assessment. Proc. of the 3rd Global Fisheries and Aquaculture Research Conference. Foreign Agricultural Relations (FAR), Egypt, 29th Nov. – 1st Dec., (2010) pp. 12 - 23##FAO, 1997. Lanternfishes: a potential fishery in the northern Arabian Sea. Available: http://www.fao.org/ docrep/003/w4248e/ w4248e34.htm. Last visit: September 2008##FAO, 1986. The production of fish meal and oil. Food and Agriculture organization of the United Nations. Rome, Italy.##Gjosaeter, J. and Kawaguchi, K., 1980. A review of the world resources of mesopelagic fish, FAQ Fisheries Technical Papers, 193, FAO, Rome ##GLOBEC, 1993. Implementation Plan and Workshop Report for US GLOBEC Studies in the Arabian Sea, US Global Ocean Ecosystems Dynamics, Report No: 9, US GLOBEC, Davis, CA, USA: 105 p. ##Gopakumar, K., 1997. Amino acid composition of muscle proteins of Indian food fish and shellfish, In: Biochemical Composition of Indian Food Fishes (Gopakumar K., Ed.), 2nd edn., p. 9-17, Central Institute of Fisheries Technology, Cochin ##Gopakumar, K., Nair, K.G.R., Nair, P.G. V., Nair, A.L., Radhakrishnan, A.G. and Nair, P.R., 1983. Studies on lantern fish Benthosema pterotum biochemical and microbiological investigations. Fisheries Technology, 20: 17-19. ##Haque, A., Peterson, H.A., Larsen, J.T. and Opstvedt, J., 1981. Fish meal and oil from lantern fish (Myctophidae) with special emphasis on protein quality. Journal of Science of Food and Agriculture, 32: 61-70. DOI:10.1002/jsfa.2740320110##Johannesson, K., Valinasab, T. 1994. Stock assessment of demersal resources with Acoustic method in Oman Sea. Technical Report, Iran Fisheries Research Institute.##Koizumi, K., Hiratsuka, S. and Saito, H., 2014. Lipid and fattry acids of three edible myctophids: High levels of icosapentaenoic and docosahexaenoic acids. Journal of Oleo Science, 63 (5): 461-470. DOI: 10.5650/jos.ess13224##Lea, M.A., Nichols, P.D. and Wilson, G., 2002. Fatty acid compositions of lipid rich myctophids and mackerel icefish (Champsocephalus gunnari) - Southern Ocean food web implications, Polar Biology, 25: 843 - 854. DOI:10.1007/s00300-002-0428-1##Lekshmy, N.A., Arul, J. M., Mathew, P.T., Gopakumar, K., 1983. Studies on lantern fish (Benthosema pterotum) II. Nutritional Evaluation, Fisheries Technology, 20: 17-19.##Moosavi-Nasab, M., Mohammadi, R. and Oliyaei, N., 2018. Physicochemical evaluation of sausages prepared by lantern fish (Benthosema pterotum) protein isolate. Food Science and Nutrition, 6:617–626. DOI: 10.1002/fsn3.583.##Moradi, G., 2001. Handling and processing of lanternfish, report of the trilateral workshop on lanternfish in the Gulf of Oman, FAQ Fisheries Report No: 665, FAQ, Rome: 8P. ##Moreira, A.B., Visentainer, J.V., Souza, N.E. and Matsushita, M., 2001. Fatty acids profile and cholesterol contents of three Brazilian Brycon freshwater fishes. Journal of Food Composition and Analysis, 14: 565–574. DOI: 10.1006/jfca.2001.1025.##Nair, L.A., Arul, J.M., Mathew, P.T. and Gopakumar, K., 1983. Studies on lanternfish (Benthosema pterotum) II. Nutritional evaluation. Fisheries Science, 20(1):20–23. ##Noguchi, S.F., 2004. Utilisation of the resources of lantern fish as fisheries products, In: More Efficient Utilization of Fish and Fishery Products (Sakaguchi, M., Ed.), pp. 63-66, Elsevier, Amsterdam, Netherlands. ##Oxley, A., Bogevik, A.S., Henderson, R.J., Waagbo, R., Tocher, D.R. and Olsen, R.E., 2009. Digestibility of Calanus finmarchicus wax esters in Atlantic salmon (Salmo salar) freshwater presmolts and seawater postsmolts maintained at constant water temperature. Aquaculture Nutrition, 15: 459-469. DOI: 10.1111/j.1365-2095.2008.00611.x.##Phleger, C.F., Nichols, R.D. and Virtue, R., 1997. The lipid, fatty acid and fatty alcohol composition of the myctophid fish Electrona antartica: high level of wax esters and food chain implications. Antarctic Science, 9: 258-265. DOI:10.1017/S0954102097000345.##Phleger, C.F., Nelson, M.M., Mooney, B.D. and Nichols, P.D., 1999. Wax esters versus triacylglycerols in myctophid fishes from the Southern Ocean. Antarctic Science, 11(4):436–444. DOI:10.1017/S0954102099000565.##Saito, H. and Murata, M., 1996. The high monoene fatty acids in the lipids of some midwater fishes: family Myctophidae, Lipids, 31: 757-763. DOI:10.1007/BF02522892.##Saito, H. and Murata, M., 1998. Origin of the monoene fats in the lipid of midwater fishes: relationship between the lipids of myctophids and those of their prey. Marine Ecology Progress Series, 168: 21-33. DOI: 10.3354/meps168021. ##Seo, H.S., Endo, Y., Fujimoto, K., Watanabe, H. and Kawaguchi, K., 1996. Characterization of lipids in myctophid fish in the sub-arctic and tropical Pacific Ocean. Fisheries Science, 62(3): 447-453. DOI: 10.2331/fishsci.62.447.##Seo, H.S., Endo, Y., Muramoto, K., Fujimoto, K., Moku, K. and Kawaguchi, K., 1998a. Amino acid composition of proteins in myctophid fishes in the subarctic and tropical Pacific Ocean. Fisheries Science, 64(4): 652-653. DOI: 10.2331/fishsci.64.652. ##Shaviklo, A.R., 2012. Developing value-added products from lantern fish. INFOFISH International, 2: 42-46.##Shaviklo, A.R., 2012b. Sensory attributes of wet and dry fish proteins recovered from lanternfishes (myctophids), the European Conference on Sensory and Consumer Research 9-12 September, 2012 Bern, Switzerland (Poster presentation).##Shaviklo, A.R. and Rafipour, F., 2013. Surimi and surimi seafood from whole ungutted myctophid mince. LWT. Journal of Food Science and Technology, 54 (2) 463-468. DOI: 10.1016/j.lwt.2013.06.019.##Shaviklo, A.R., 2017. Myctophid as human food. World Seafood Congress 10-13 Sep. 2017. Reykjavik, Iceland (Oral presentation).##Teutscher, F., 2001. Options for utilization of lanternfish (Benthosema pterotum, Myctophidae) in the Gulf of Oman, Report of the Trilateral Workshop on Lanternfish in the Gulf of Oman, FAO Fisheries Report 665, FAO, Rome.##Valinassab, T., 2005. Biomass distribution and pattern of myctophids in the Oman Sea. Iranian Journal of Fisheries Science, 4(2):101–110. ##Valinassab, T., Pierce, G.J. and Johannesson, K., 2007. Lantern fish (Benthosema petrotum) resources as a target for commercial exploitation in the Oman Sea. Journal of Applied Ichthyology, 23:573–577. DOI: 10.1111/j.1439-0426.2007.01034.x.## ##

بررسی عملکرد رشد و میزان فعالیت آنزیم‌های پروتئازی بچه ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss) تغذیه شده با سطوح مختلف پروتئین تک‌یاخته Assessment of growth performance and proteolytic enzymes activity of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fry fed by different levels of single cell protein 1 1 در مطالعه حاضر، تأثیر جایگزینی آرد ماهی با پروتئین تک یاخته باکتریایی بر عملکرد رشد و فعالیت آنزیم­های پروتئازی (پپسین، تریپسین و پروتئاز قلیایی) بچه ماهی قزل­آلای رنگین­کمان (Oncorhynchus mykiss) (وزن متوسط: 55/0± 51/2 گرم) برای ­مدت 6 هفته بررسی شد. پنج جیره آزمایشی با سطوح جایگزینی صفر(A)، 25 (B)، 50 (C)، 75 (D) و 100 % (E) آرد ماهی همسان از نظر پروتئین و انرژی با پروتئین تک سلولی تهیه گردید. بررسی شاخص­های افزایش وزن بدن، نرخ رشد نسبی، نسبت کارایی پروتئین، نسبت کارایی چربی و نسبت کارایی غذا نشان داد این شاخص‌ها در جیره آزمایشی C به طور معنی‌داری بالاتر از سایر تیمارها بودند (05/0p<). ضریب تبدیل غذایی در جیره آزمایشی C و E بترتیب کمترین و بیشترین مقدار را نشان داد و اختلاف معنی­داری با سایر تیمارها مشاهده گردید (05/0p<). میزان نرخ بقاء در جیره‌های آزمایشی 100 % بود. بیش­ترین میزان فعالیت آنزیم­های تریپسین و پروتئاز قلیایی ضمائم پیلوریک و روده در ماهیان تغذیه شده با جیره آزمایشی C مشاهده شد که نسبت به جیره‌های غذایی D و E اختلاف معنی­داری را نشان داد (05/0>p). هم­چنین بالاترین فعالیت آنزیم پپسین معده در جیره C مشاهده شد که با سایر جیره‌ها به استثناء جیره B دارای اختلاف معنی داری بود (05/0>p). براساس نتایج حاصل از عملکرد رشد و فعالیت آنزیم­های پپسین، تریپسین و پروتئاز قلیایی جیره حاوی 50 %پروتئین تک یاخته نسبت به سایر جیره‌ها می‌تواند برای رشد ماهی قزل‌آلای رنگین­کمان مناسب باشد.   2 The present study was conducted to evaluate the effect of fish meal replacement with single cell protein on growth performance and proteolytic enzymes activity of pepsin, trypsin and alkaline protease in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fry (weight: 2.51±0.55g) for 6 weeks. Five experimental diets were prepared with replacement levels of 0 (A), with 25% (B), 50% (C), 75% (D) and 100% (E) of fish meal with microbial protein as isonitrogenous and isoenergetic. Parameters of body weight gain, relative growth rate, protein, lipid and feed efficiency ratio in diet C were significantly the higher than other treatments (p<0.05), while feed conversion ratio was shown the highest and the lowest values in diet C and E, respectively , with a significant difference than those from other treatments (p<0.05). The survival rate was 100 % in the diets. The highest activity of trypsin and alkaline protease enzymes from pyloric caeca and intestine was observed in diet C, which showed a significant difference compared to D and E diets (p<0.05). Also, pepsin had significantly the highest activity in C diet than that from other diets exception for B diet (p<0.05). The findings of growth performance and pepsin, trypsin and alkaline protease activity were revealed the diet containing 50% single cell protein could be appropriate for rainbow trout growth.   103 115 2018/12/32018/08/52019/01/132019/03/282019/04/222019/04/292019/04/112019/05/142018/06/202019/03/11 1397/12/20 2019/07/202019/07/212019/07/282019/07/232019/05/192019/07/272019/07/272019/07/282019/07/272019/07/28 1398/5/6 عباس زمانی A. Zamani گروه علوم و مهندسی شیلات، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، همدان، ایران ایران zamanibouzandan@yahoo.com مریم خواجوی M. Khajavi گروه علوم و مهندسی شیلات، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، همدان، ایران ایران marykhajavi@yahoo.com Fish meal Single cell protein Protease Growth performance Oncorhynchus mykiss آرد ماهی پروتئین تک یاخته پروتئاز شاخص‌های رشد Oncorhynchus mykiss ##آلبوغبیش،م.، محمدی آذرم،ح.، یاوری، ذاکری، م.، 1394. اثر جایگزینی پودر ماهی با کنجاله سویا و مخمر نانوایی بر عملکرد رشد و تغذیه ماهیان جوان بنی Mesopotamichthys sharpeyi . مجله پژوهش‌های جانوری، 28(2): 145-136.##بی‌بی‌کم، ص.، عابدیان، ع.، یونسی، ح.، 1389. تولید پروتئین تک‌یاخته با استفاده از کشت باکتریLactobacillus acidophilus و قارچ Aspergillus niger از پساب کارخانه آرد ماهی کیلکا (استیک‌ واتر(. مجله علمی شیلات ایران، 19(4): 32- 21.##زمانی،ع.، حاجی مرادلو، ع.، مدنی، ر.، جوهری، ع.، کلباسی، م.ر.، فرهنگی، م.، 1385. مقایسه فعالیت برخی آنزیم‌های گوارشی در معده، ضمائم پیلوریک و روده ماهیان دیپلوئید و تریپلوئید ماده قزل آلای رنگین کمان. مجله علمی شیلات ایران، 15(2):36- 29.##سازمان شیلات ایران، 1396. سالنامه آماری شیلاتی ایران، معاونت طرح و برنامه، سازمان شیلات ایران، تهران، 64 ص.##موحد راد، ف.، حاجی مرادلو، ع.، زمانی، ع.، کلنگی، ح.، 1397. بررسی اثر جایگزینی پودر ماهی با آکوپرو ( کنجاله سویای فرآوری شده) بر عملکرد رشد و فعالیت آنزیم‌های گوارشی در بچه ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان(Oncorhynchus mykiss) . مجله علمی شیلات ایران، 27(2): 59-47.##Aas, T. S., Grisdale-Helland, B., Terjesen, B. F. and Helland, S. J., 2006 a. Improved growth and nutrient utilization in Atlantic salmon (Salmo salar) fed diets containing a bacterial protein meal. Aquaculture, 259: 365–376. DOI:10.1016/j.aquaculture.2006.05.032## ##Aas, T. S., Hatlen, B., Grisdale-Helland, B., Terjesen, B. F., Bakke-McKellep, A. M. and Helland, S. J., 2006 b. Effects of diets containing a bacterial protein meal on growth and feed utilisation in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, 261: 357–368. DOI:10.1016/j.aquaculture.2006.07.033##AES (Agriculture and Environmental Services), 2013. Fish to 2030: Prospects for Fisheries and Aquaculture. World Bank Report Number 83177-GLB.Pp 102. http://www.fao.org/3/ i3640e/ i3640e.pdf##Alvarez, R. and Enriquez, A., 1988. Nucleic acid reduction in yeast. Applied Microbiology and Biotechnology, 29 (2–3): 208–210. DOI:10.1007/BF01982903##Anson, M.L., 1938.The estimation of Pepsin,Trypsin, Papain and Cathepsin with Hemoglobin. Journal of General Physiology, 22: 79-89.DOI: 10.1085/jgp.22.1.79##AOAC., 2005. Official Method 950.89 Horwitz, W., Latimer, G. (Eds). Official Methods of Analysis of AOAC International, 18th Edition, Association of Official Analytical Chemists, Gaithersburg, USA.##Banerjee, S., Azad, S. A., Vikineswary, S., Selvaraj, O. S. and Mukherjee, T. K., 2000. Phototrophic bacteria as fish feed supplement. Asian Australasian Journal of Animal Science, 13: 991–994. DOI:10. 5713/ajas.2000.991##Bligh, E.G. and Dyer, W.J., 1959. A rapid method for total lipid extraction and purification. Canadian Journal of Biochemistry and Physiology, 37: 911-917. DOI: 10.1139/o59-099##De, D., Ghoshal, T.K., Biswas, G., Mukherjee, S., Kumar, S., Anand, P.S.S., Raja, R.A. and Vijayan, K.K., 2018. Evaluation of growth performance in Mugil cephalus l. juveniles fed diets incorporated with fermented plant feedstuffs replacing fishmeal or diets supplemented with fish gut bacteria. Journal of Food Processing and Technology, 9(4): 728 – 736. DOI: 10.4172/2157-7110.1000728##Deguara,S., Jauncey, K. and Agius,C., 2003. Enzyme activities and pH variations in the digestive tract of gilthead sea bream. Journal of Fish Biology, 62:1033-1043. DOI:10. 1046/j.1095-8649.2003.00094.x##Dharmaraj, S. and Dhevendaran, K., 2014. Effect of Actinobacteria as a single cell protein on growth performance of Xiphophorus helleri. International Journal of Aquatic Biology, 3(1):19-24. DOI: 10.22034/ijab.v3i1.42##Dhevendaran, K., Karthikeyan, S. and VedhaHari, B.N., 2013. Microbial single cell protein (scp) for the growth and food conversion efficiency of selected ornamental fish, Xyphophorous helleri. International Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences, 5(3): 166–169. ##Erlanger, B., Kokowsky, N. andCohen, W.,1961.The preparation and properties of two new chromogenic substrates of trypsin. Archive Biochemistry Biophysics, 95: 271-278.##Faust, U., 1987. Production of microbial biomass. In: Fundamentals of Biotechnology. VCH Publishers, Weinheim, pp. 601–622. ##Feedipedia., 2015. Single cell protein. Animal Feed Resourc‌es Information System, —INRA CIRADAFZ and FAO© 2012–2015.##Gatlin III, D.M., Barrows, F.T., Brown, P., Dabrowski, K., Gaylord, T.G., Hardy, R.W., Herman, E., Hu, G., Krogdahl, A., Nelson, R. and Overturf, K., 2007. Expanding the utilization of sustainable plant products in aquafeeds: a review. Aquaculture Research, 38(6): 551-579. DOI:10.1111/j.1365-2109.2007.01704.x##Hamza, N., Mhetli, M., Khemis, I. B., Cahu, C. and Kestemont, P., 2008. Effect of dietary phospholipid levels on performance, enzyme activities and fatty acid composition of pikeperch (Sander lucioperca) larvae. Aquaculture, 275(1): 274-282. DOI:10.1016/ j.aquaculture.2008.01.014##Hardy, R.W., Patro, B., Pujol‐Baxley, C., Marx, C.J. and Feinberg, L., 2018. Partial replacement of soybean meal with Methylobacterium extorquens single‐cell protein in feeds for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum). Aquaculture Research, 49(6): 2218-2224. DOI:10.1111/are.13678##Heidarieh, M., Mirvaghefi, A.R., Akbari, M., Sheikhzadeh, N., Kamyabi‐Moghaddam, Z., Askari, H. and Shahbazfar, A.A., 2012. Evaluations of Hilyses™, fermented S accharomyces cerevisiae, on rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) growth performance, enzymatic activities and gastrointestinal structure. Aquaculture Nutrition, 19(3): 343-348. DOI:10.1111/j.1365-2095.2012.00973.x##Kaushik, S.J. and Luquet, P.,1980. Influence of bacterial protein incorporation and of sulphur amino acid supplementation to such diets on growth of rainbow trout, Salmo gairdnerii Richardson. Aquaculture, 19: 163–175. DOI:10.1016/0044-8486(80)90017-4##Kiessling, A. and Askbrandt, S., 1993. Nutritive value of two bacterial strains of single-cell protein for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, 109: 119–130. DOI:10.1016/0044-8486(93)##Krogdahl, A., Penn, M., Thorsen, J., Refstie, S. and Bakke, A.M., 2010. Important antinutrients in plant feedstuffs for aquaculture: an update on recent findings regarding responses in salmonids. Aquaculture Research, 41(3): 333-344. DOI:10.1111/j.1365-2109 .2009 .02426.x##Kurbanoglu, E.B., 2001. Production of single-cell protein from ram horn hydrolysate.Turkish Journal of Biology, 25(4): 371-377.##Laranja, J. L. Q., Ludevese-Pascual, G. L., Amar, E. C., Sorgeloos, P., Bossier, P., and De Schryver, P., 2014. Poly-b-hydroxybutyrate (PHB) accumulating Bacillus spp. improve the survival, growth and robustness of Penaeus monodon (Fabricius, 1798) postlarvae. Veterinary Microbiology, 173: 310–317. DOI:10.1016/j.vetmic.2014.08.011##Lemieux, H., Blier, P. and Dutil, J.D., 1999. Do digestive enzymes set a physiological limit on growth rate and food conversion efficiency in the Atlantic cod (Gadus morhua)? Fish Physiology and Biochemistry, 20: 293-303. DOI:10.1023/A:1007791019523##Li, P., Lawrence, A. L., Castille, F. L. and Gatlin, D. M., 2007. Preliminary evaluation of a purified nucleotide mixture as a dietary supplement for Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei (Boone). Aquaculture Research, 38: 887-890. DOI:10.1111/j.1365-2109. 2007.01761.x##Lowry, O. H., Rosebrough, N. J., Farr, A. L. and Randall, R. J., 1951. Protein measurement with the Folin phenol reagent. Journal of Biological Chemistry,193(1): 265-275. ##Manju, K.G. and Dhevendaran, K., 2002. Influence of Azolla sp. incorporated feeds on the growth, conversion efficiency and gut flora of O. mossambicus. Journal of Aquaculture in the Tropics, 17 (3): 221-230.##Manuel, B.F.G. and Edoghotu, J. A., 2017. Wheat Bran Grown Brewer’s Yeast (Saccharomyces cerevisioe) as Feed for Clarias gariepinus Fingerlings: Carcass Analysis and Growth Performance. Journal of Natural Sciences Research, 7(2): 75-80.##Merrifield, D.L., Dimitroglou, A., Foey, A., Davies, S.J., Baker, R.T.M., Bogwald, J., Castex, M. and Ringo, E., 2010. The current status and future focus of probiotic and prebiotic applications for salmonids. Aquaculture, 302: 1-18. DOI:10.1016/ j.aquaculture .2010.02.007##Nasseri, A., Rasoul-Amini, S., Morowvat, M. and Ghasemi, Y., 2011. Single cell protein: production and process. American Journal of Food Technology, 6(2): 103-116. DOI:10.3923 /ajft.2011.103.116##Nayak, J., Viswanathan Nair, P., Ammu, K. and Mathew, S., 2003. Lipase activity in different tissues of four species of fish: rohu (Labeo rohita Hamilton), oil sardine (Sardinella longiceps Linnaeus), mullet (Liza subviridis Valenciennes) and Indian mackerel (Rastrelliger kanagurta Cuvier). Journal of the Science of Food and Agriculture, 83(11): 1139-1142. DOI:10.1002/jsfa.1515##Nayak, S.K., 2010. Probiotics and immunity: a fish perspective. Fish and shellfish immunology, 29(1) 2-14. h DOI:10.1016/j.fsi.2010.02.017##NRC (National Research Council), 1993. Nutrient Requirements of Fish. National Academy Press, Washington DC, USA. ##Oliva-Teles, A., Enes, P. and Peres, H., 2015. Replacing fishmeal and fish oil in industrial aquafeeds for carnivorous fish. In Feed and feeding practices in aquaculture (pp. 203-233). Woodhead Publishing.##Olsen, R.L. and Hasan, M.R., 2012. A limited supply of fishmeal: Impact on future increases in global aquaculture production. Trends in Food Science and Technology, 27(2):120-128. DOI:10.1016/j.tifs.2012.06.003##Overland, M., Karlsson, A., Mydland, L.T., Romarheim, O.H. and Skrede, A., 2013. Evaluation of Candida utilis, Kluyveromyces marxianus and Saccharomyces cerevisiae yeasts as protein sources in diets for Atlantic salmon (Salmosalar). Aquaculture, 402–403:1–7.##Romarheim, O. H., Overland, M., Mydland, L. T., Skrede, A. and Landsverk, T., 2011. Bacteria grown on natural gas prevents soybean mealinduced enteritis in Atlantic salmon. The Journal of Nutrition, 141: 124–130. DOI:10.3945/jn.110.128900##SOFIA., 2018. The State of the World Fisheries and Aquaculture. FAO Fisheries and aquaculture Department, Rome.227P. ##Sultana, S., Ali, M.E. and Ahamad, M.N.U., 2018. Gelatine, collagen, and single cell proteins as a natural and newly emerging food ingredients. In Preparation and Processing of Religious and Cultural Foods (pp. 215-239).Wood head Publishing.##Tacon, A.G.J. and Metian, M., 2008. Global overview on the use of fish meal and fish oil in industrially compounded aquafeeds: Trend and future prospects. Aquaculture, 285: 146-152. DOI:10.1016/j.aquaculture.2008.08.015Get ##Tacon, A. G. J., Hasan, M. R. and Metian, M., 2011. Demand and supply of feed ingredients for farmed fish and crustaceans: Trends and prospects. In: FAO fisheries technical paper, Vol. 564. Rome: FAO##Tewary, A. and Patra, B.C., 2011. Oral administration of baker’s yeast (Saccharomyces cerevisiae) acts as a growth promoter and immunomodulator in Labeo rohita (Ham.). Journal of Aquaculture Research and Development, 2(1):1-7. DOI:10.4172/2155-9546.1000109##Trejo‐Escamilla, I., Galaviz, M.A., Flores‐Ibarra, M., Alvarez Gonzalez, C.A. and Lopez, L.M., 2017. Replacement of fishmeal by soya protein concentrate in the diets of Totoaba macdonaldi (Gilbert, 1890) juveniles: effect on the growth performance, in vitro digestibility, digestive enzymes and the haematological and biochemistry parameters. Aquaculture Research, 48(8): 4038-4057. DOI:10.1111/are.13225##Wache, Y., Auffray, F., Gatesoupe, F.J., Zambonino, J., Gayet, V., Labbe, L. and Quentel, C., 2006. Cross effects of the strain of dietary Saccharomyces cerevisiae and rearing conditions on the onset of intestinal microbiota and digestive enzymes in rainbow trout, Onchorhynchus mykiss, fry. Aquaculture, 258(1-4): 470-478. DOI:10.1016/ j.aquaculture.2006.04.002##Wadhwa, M. and Bakshi, M.P.S., 2016. Application of waste-derived proteins in the animal feed industry. In Protein Byproducts (pp. 161-192). Academic press.##Walter, H.E., 1984. Proteinases: methods with hemoglobin, casein and azocoll as substrates. In: Bergmeyer, H.U. Ed. Methods of Enzymatic Analysis, vol. V. Verlag Chemie, Weinheim. 270–277. ## ##

تاثیر پساب شهری بر ساختار ماهیان در رودخانه سقز، استان کردستان Effect of urban wastewater on fish community in the Saghez River, Kurdestan Provience 1 1 در این تحقیق تاثیر پسآب شهرستان سقز بر تنوع و پراکنش ماهیان رودخانه سقز استان کردستان در چهار ایستگاه مختلف شامل: 1) ایستگاه سد چراغ‌ویس، 2) ایستگاه قبل از ورود پسآب به رودخانه، 3) ایستگاه بعد از ورود پسآب به رودخانه و 4) ایستگاه قبل از ورود رودخانه به سد شهید کاظمی از تیر تا مهر ماه 1396 مورد بررسی قرار گرفت. برای بررسی تنوع زیستی از شاخص‌‌های شانن-وینر، سیمپسون، و مارگالف و برای تعیین ارتباط بین عوامل محیطی (فاکتورهای فیزیکی و شیمیایی) و فراوانی گونه‌های ماهی از آنالیز CCA استفاده شد. براساس نتایج گونه Capoeta gracilis بیشترین تعداد حضور را در تمام ایستگاه‌‌ها نشان داد ولی بیشترین و کمترین تعداد گونه‌‌های ماهی به ترتیب متعلق به ایستگاه‌‌های 4 و 2 بود. خانواده Cyprinidae بیشترین فراوانی و خانواده Nemacheilidae و Sisoridae هر کدام با یک گونه کمترین تعداد ماهیان صید شده را دارا بودند. بالاترین شاخص مارگالف، شانون –وینر و سیمپسون در ایستگاه 4 مشاهده شد. اگر چه از نظر شاخص تنوع سیمپسون دو ایستگاه 3 و 4 مشابه هم بودند. از نظر ارتباط شاخص‌‌های تنوع زیستی با فاکتورهای فیزیکی و شیمیایی، شاخص غالبیت گونه‌ای سیمپسون با درصد نیترات، فسفات و مقدار BOD5 و شاخص تنوع گونه‌ای شانون – وینر با نیترات، فسفات، آمونیاک و BOD5 همبستگی مثبت نشان دادند. از سویی، هر دو شاخص مذکور با مقدار اکسیژن محلول همبستگی منفی داشتند. در جمع‌‌بندی می‌‌توان گفت پسآب شهرستان سقز با افزایش مقادیر نیترات و فسفات آب رودخانه سقز سبب حذف بعضی گونه‌‌ها و حضور گونه‌‌های گیاهخوار شده است و بدین طریق بر جمعیت گونه‌‌های ماهی رودخانه سقز تاثیرگذار بوده است. بنابراین، توصیه می‌‌شود پسآب شهرستان سقز قبل از ورود به رودخانه تصفیه گردد تا ضمن بهره‌‌برداری پایدار از تخریب چشم‌‌اندازهای طبیعی اکوسیستم‌‌های رودخانه‌‌ای جلوگیری گردد. 2 In this research, the effects of urban wastewater on the diversity and distribution of fish in the Saghez River, Kurdistan province, were investigated at four different stations including 1) the station of the Cheragveis dam, 2) the station before the wastewater into the river, 3) the station after the entry of wastewater into the river; and 4) the station before the river to the Kazemi dam during Jully to September of 2017. The Shanon-winer, Margalof and Simpsoon indices were used for calculationg the species diversity and the correlation between physicochemical factors and species diversity and frequency of fish species were analyzed using CCA analysis in Canoco software. The results showed that the species Capoeta gracilis showed the highest aboundance in all 4 stations, but the maximum and minumum number of fish species belonged to stations 4 and 2, respectively. The cyprinidae family with 12 species and subspecies and 96.2% of the total number of fish were observed at all stations. The Nemacheilidae and Sisoridae families with one species had the lowest aboundance. Based on the results of biodiversity indices, the highest Margalf, Shannon-wiener and Simpson index was observed at station 4. However, for the Simpson index, two stations 3 and 4 were similar. In terms of correlation between biodiversity indices and physicochemical factors, there were correlations between Simpson dominance index with nitrate, phosphate, and BOD5 , Shannon-wiener index with nitrate, phosphate, ammonia and BOD5. On the other hand, both indices showed a high correlation with the dissolved oxygen. The highest positive correlation was found between the frequency of C. auratus and nitrate, phosphate, ammonium and BOD. In conclusion, effluent of the city Saghez has increased the amount of nitrate and phosphate in the river, which has resulted in the removal of some species and the presence of herbivorous species, thus influencing the population of the Seghez River fish species. Therefore, it is recommended that the effluent of the city Saghez should be treated before entering the river, in order to prevent permanent destruction of natural ecosystems. 117 128 2018/12/32018/08/52019/01/132019/03/282019/04/222019/04/292019/04/112019/05/142018/06/202019/03/112019/01/29 1397/11/9 2019/07/202019/07/212019/07/282019/07/232019/05/192019/07/272019/07/272019/07/282019/07/272019/07/282019/09/8 1398/6/17 زانیار فتحی Z. Fathi دانشگاه ارومیه ایران zanyar.fathi1392@gmail.com نصراله احمدی فرد N. Ahmadifard دانشگاه ارومیه ایران N.ahmadifard@urmia.ac.ir Ecological indeces Saghez river Species diversity fish abundance شاخص‌های اکولوژیکی رودخانه سقز تنوع گونه‌یی فراوانی ماهی ##ابراهیمی، ع.، فتحی، پ.، قدرتی، ف.، نادری‌‌ جلودار، م. و پیرعلی زفره‌‌ئی، ا.ر.، 1396. ارزیابی ‌کیفیت آب رودخانه تجن با استفاده از شاخص‌های کیفی و زیستی. مجله علمی شیلات ایران، 26(5): 151-139##اجتهادی، ح.، سپهری، ع. و عکافی، ح. ر.، 1388. روش‌‌های اندازه‌‌گیری تنوع زیستی. انتشارات دانشگاه فردوسی مشهد، 228ص.##بناگر، غ.، کرمی، م.، حسن‌زاده کیابی، ب. و قاسمپوری، س.، 1387،. بررسی فراوانی و تنوع زیستی گونه‌‌های ماهیان رودخانه هراز در استان مازندران. مجله علوم محیطی، 6(2): 32-21##بیوکانی، س.، امینی، ش. و سرخوش، ج.، 1390. بررسی ماهیان رودخانه گاماسیاب استان کرمانشاه و تاثیر آلودگی بر پراکنش آنها. فصلنامه علمی-پژوهشی زیست شناسی جانوری، 3(4): 28-15.##تقوی‌نیا، م. و ولایت‌زادع، م.، 1394. بررسی فراوانی و تنوع گونه ای ماهیان رودخانه شور، استان خوزستان، دانشگاه گنبد کاووس. نشریه پژوهش های ماهی شناسی کاربردی، 3(3): 58-47##تقیان،ح.، شاهپوری، م.، محمدی‌کردخیلی، و.، علی‌زاده مرزناکی، ع.، 1394. بررسی تنوع زیستی و فراوانی و پراکنش ماهیان رودخانه دینورآب استان کرمانشاه. فصلنامه علوم تکثیر و آبزی‌پروری، 3(7) 42-29##جعفرزاده، ن.، فتایی، ا.ب، حاتمی، غ. ر.، شریعت، س. م.، 1393. زیست سنجی و طبقه بندی کیفی رودخانه بالخلو براساس شاخص بیولوژیک (فون ماهیان). علوم و تکنولوژی محیط زیست، 16: 459-450##دقیق روحی، ج.، 1382. راهنمای رنگی برای شناسائی میدانی ماهیان آب شیرین. ترجمه، انتشارات موج سبز. 120ص## دلشاد، م.، احمدی فرد، ن.، آتشبار، ب. و کمالی، م.، 1397. بررسی کیفیت آب رودخانه قره‌سو اردبیل در محدوده کارگاه‌های پرورش ماهی قزل‌‌آلای رنگین‌کمان. مجله علمی شیلات ایران، 27(2): 12-1##سخایی، ن.، دوست شناس، ب. و موبد، پ.، 1396. تعیین کیفیت سلامت زیستی رودخانه بهمن شیر با استفاده از شاخص های نایگارد-پالمر و ساپروبیک. مجله علمی شیلات ایران، 26(5): 166-153##صادقی‌نژاد ماسوله، ا، مهرانی، ر، ریاحی‌فر، م، علیزاده ثابت، ح.، 1386. گزارش نهایی طرح تحقیقاتی شناسایی ماهیان بومی رودخانه گاماسیاب همدان، موسسه تحقیقات شیلات ایران، تهران 96 ص.##عباسی، ک، نیک سرشت، ک، نوروزی، ه.، 1388. شناسایی و بررسی جمعیت ماهیان تالاب‌های آق‌گل، پیرسلمان و مناطق تالابی رودخانه‌های گاماسیاب و حرم‌آباد استان همدان، مجله علمی تخصصی تالاب، دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز، 1(1):90- 71.##عباسی، ک.، میرزاجانی ، ع.، مرادی چافی ، م. و صیاد بورانی، م.، 1397. ماهی سفید رودخانه‌‌ای (Squalius turcicus) گونه بومی مناسب برای آبزی پروری )بررسی موردی در دریاچه تهم، استان زنجان(. فصلنامه علوم آبزی پروری پیشرفته، 2(2) 43-53##عبدلی، ا. 1378. ماهیان آبهای داخلی ایران. انتشارات موزه طبیعت و حیات وحش ایران. 378 صفحه.##علیزاده مرزناکی، ع.، شجاعی کاوان، ل.، تقیان، ح. و شهریاری، ر.، 1395. تنوع زیستی و فراوانی ماهیان رودخانه گاوه رود کرمانشاه. علوم تکثیر و آبزی پروری، 4(8): 84-69 ##فرهنگی، م.، حسینی، س.غ.، جعفریان ح.، قربانی، ر.، هرسیج، م. و سوداگر، م.، 1396. مطالعه اثرات پرورش ماهیان خاویاری بر پراکنش، تراکم و توده زنده بزرگ بی مهرهگان در خلیج گرگان. فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری، 9(4): 354-347##کمانگر، ب. و قادری، ا. 1394. گزارش نهایی طرح تهیه بانک دی ان ای بارکدینگ ذخایر ماهی استان کردستان. استانداری کردستان. 67 صفحه##محسن پور آذری، ع.، 1395. بررسی لیمنولوژیک سد بوکان. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی ایران. 82 ص##مهندسین مشاور آساراب. 1387. گزارش پایه مطالعات لیمنولوژی و ارزیابی ذخائر سد شهید کاظمی. 97 صفحه##میررسولی، ا.، نظام، ش.، خارا ،ح. و قربانی، ر.، 1391. تاثیر پساب کارگاههای پرورش ماهی قزلآلای رنگین کمان بر روی بزرگ بی‌‌مهرگان کفزی رودخانه زرین گل. مجله توسعه آبزی پروری، 6(2): 92-81 ##Ahmadshah, M., Vipin Vyas, N. and Shalini Yadav, B., 2017. Fish biodiversity and its periodic reduction: a case study of river narmada in central india. In : Environmental Pollution. Springer, Singapore, pp. 193-206##Amarasinghe, U., 1992. Recent trends in the inland fishery of Sri Lanka. FAO Fisheries Report: 84-105##Berg, L.S., 1948. Freshwater fishes of U.S. S.R. and adjacent countries, Trady Institute Academic, Nauk U.S.S.R (Tran. To English, 1962), 2(3):1510P.##Camargo, J.A., Gonzalo, C. and Alonso, A., 2011. Assessing trout farm pollution by biological metrics andindices based on aquatic macrophytes and benthic macroinvertebrates: a case study. Ecology Indicators, 11: 911-917. DOI:10.1016/j.ecolind.2010.10.001##Caramel, B.P., Moraes, M.d.A.B., do Carmo, C.F., Vaz-dos-Santos, A.M., Tabata, Y.A., Osti, J.A.S., Ishikawa, C.M., Cerqueira, M.A.S. and Mercante, C.T.J., 2014. Water quality assessment of a trout farming effluent, Bocaina, Brazil. Journal of Water Resource and Protection, 6: 909-915. DOI: 10.4236/jwarp.2014.610086##Coad, B.W., 1998. Systematic biodiversity in the freshwater fishes of Iran. Italian Journal of Zoology, 65: 101-108. DOI: 10.1080/11250009809386802##Coad B.W., 2010. The fresh water fishes of Iran. [Cited June 2016]. Available from: www.briancoad.com.##Coad, B.W. 2013. Freshwater fishes of Iran. http://www.briancoad.com. ##Ding, Y., Wu, Z., Zhu, Z. and Yan J., 2018. Species composition, trend of biodiversity variation and conservation of the fish in Lijiang River (in China). Environmental Biology of Fishes, 101(5): 675–685, DOI: 0.1007/s10641-018-0717-3##EPA., 1996. Safe drinking water act amendments of 1996: General guide to provisions. EPA/810/S/96/001. Washington, D.C.: EPA, Office of Water.##Esmaeili, H.R., Mehraban, H., Abbasi, K., Keivany, Y. and Coad, B.W., 2017. Review and updated checklist of freshwater fishes of Iran: Taxonomy, distribution and conservation status. Iranian Journal of Ichthyology, 4: 1-114 DOI: 10.7508/iji.2017 ##Galib S.M., Mohsin A.B.M., Parvez M.T., Lucas M.C., Chaki N., Arnob S.S., Hossain M.I. and Islam M.N., 2018. Municipal wastewater can ##result in a dramatic decline in freshwater fishes: a lesson from a developing country. Knowlede and Management of Aquatic Ecosystems, 419:37-49 pp. DOI:10.1051/kmae/2018025##Gutmann R., Catherine, B. and Robert, J., 2018. Quantifying trophic interactions and niche sizes of juvenile fishes in an invaded riverine cyprinid fish community. Ecology of Freshwater Fish, 27 (4): 976–987. DOI:10.1111/eff.12408. ISSN 1600-0633##Hashemi, S., Ghorbani, R., Kymaram, F., Hossini, S.A., Eskandari, G., and Hedayati, A., 2016. Relationship of physicochemical factors with fish biomass and production in Shadegan Wetland, Iran. Biodiversitas Journal of Biological Diversity, 17: 515-522. DOI: 10.13057/biodiv/d170218##Hynes H.B.N. and Pentelow F.T.K., 1960. The biology of polluted waters: Liverpool university press Liverpool.##Keesing F., Belden L.K., Daszak P., Dobson A., Harvell C.D., Holt R.D., Hudson P., Jolles A., Jones K.E. and Mitchell C.E., 2010. Impacts of biodiversity on the emergence and transmission of infectious diseases. Nature, 468(7324): 647- 652. DOI: 10.1038/nature09575##Krebs, C.J., 1999. Ecological methodology. 2nd Ed. Addison Wesley Longman, Menlo Park, California, USA##Laird, L.M., and Needham, T., 1988. Salmon and trout farming. Ellis Horwood Limited (UK), 271pp##Lek, S., and Guégan, J.-F. 2012. Artificial neuronal networks: Application to Ecology and Evolution: Springer Science and Business Media, 219P.##Ludwig, J.A and Reynolds, J.F. 1988 Statistical (Ecology Aprimer on methods and computing) johm wiley and Son.pub., Toronto.##Maillard, V.M., Boardman, G.D., Nyland, J.E. and Kuhn, D.D., 2005. Water quality and sludge characterization at raceway-system trout farms. Aquacultural Engineering. 33: 271-284. DOI:10.1016/j.aquaeng.2005.02.006##Mason, C.F., 2002. Biology of freshwater pollution. New Jersey: Prentice Hall, : Pearson Education. 400 p p.##Moss, B., 2007. Water pollution by agriculture. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences, 363(1491):659-666. DOI:10.1098/rstb.2007.2176##Ngoye, E. and Machiwa, J.F., 2004. The influence of land-use patterns in the Ruvu river watershed on water quality in the river system. Physics and Chemistry of the Earth, 29: 1161–1166. DOI: 10.1016/j.pce.2004.09.002##Papahn F., Rezaei M., Eskandari G.R. and Rasekhi A.A., 2013. Study of Fish population of Hawr Al-Azim Wetland. Journal of wetlands, Islamic Azad University Ahvaz Branch, 16: 33-40.##Sabater S., Barceló D., De Castro-Català N., Ginebreda A., Kuzmanovic M., Petrovic M., Picó Y., Ponsatí L., Tornés E. and Muñoz I., 2016. Shared effects of organic microcontaminants and environmental stressors on biofilms and invertebrates in impaired rivers. Environmental Pollution, 210:303-314. DOI:10.1016/j.envpol.2016.01.037##Schwartz, M.F. and Boyd, C.E., 1994. Channel catfish pond effluents. Progressive Fish-Culturist. 56: 273-281. DOI:10.1577/1548-8640(1994)056<0273:CCPE>2.3.CO;2##Sheldon A.L., 1968. Species Diversity and longitudinal succession in stream fishes. Ecology, 49: 193-198. Doi: 10.2307/1934447##Simpson, G.G., 1964. Species diversity of North American recent mammals. Systematic Zoology, 13: 57-73. DOI: 10.2307/2411825##Standard methods, 2005. Standard methods for the examination of water and wastewater. American Public Health Association; American Water Works Association; Water Environment Federation. Washington, D.C.: APHA-AWWA-WEF##Sterner, R.W. and Hessen, D.O., 1994. Algal nutrient limitation and the nutrition of aquatic herbivores. Annual Review of Ecology and Systematics, 25: 1-29, DOI: 10.1146/annurev.es.25.110194.000245##Taylor, C.M., Holder, T.L., Fiorillo, R.A., Williams, L.R., Thomas, R.B. and Warren, J.R., 2006. Distribution, abundance and diversity of stream fishes under variable environmental conditions. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 63 (1): 43-54, DOI:10.1139/f05-203##Ter Braak, C.J. and Verdonschot, P.F., 1995. Canonical correspondence analysis and related multivariate methods in aquatic ecology. Aquatic Sciences, 57: 255-289. DOI:10.1007/BF00877430##Vörösmarty C.J., McIntyre P.B., Gessner M.O., Dudgeon D., Prusevich A., Green P., Glidden S., Bunn S.E., Sullivan C.A. and Liermann C.R., 2010. Global threats to human water security and river biodiversity. Nature, 467(7315):555-561, DOI:10.1038/nature09440##Wootton, R.J., 1991. Ecology of teleost Fish. Chapman and Hall, First edition, 404P ## ##

پرورش توام مرحله نوزادگاهی میگوی پا سفید غربی ( (Litopenaeus vannamei با تراکم های مختلف جلبک قرمز (Gracilaria corticata) Integrated culture of Litopenaeus vannamei postlarvae with different densities of red sea weed (Gracilaria corticata) 1 1 پرورش توام مرحله نوزادگاهی میگوی پاسفید غربی (Litopenaeus vannamei)  با تراکم های مختلف جلبک قرمز (Gracilaria corticata) در یک دوره پرورش 30 روزه از 25 تیرماه تا 25 مرداد ماه 1397 مورد آزمایش قرار گرفت. چهار تیمار شامل پرورش  پست لارو (PL15) میگوی پاسفید غربی با تراکم 2000 عدد پست لارو در متر مربع بدون جلبک (تیمار 1T) و توام با جلبک گراسیلاریا با تراکم های 400 ، 800 و 1200 گرم در متر مکعب (تیمار های 2T، 3T و 4T) و  تیمارپرورش جلبک گراسیلاریا با تراکم 400 گرم در متر مکعب، بدون میگو(5T) مورد مقایسه قرار گرفتند. بر اساس نتایج بدست آمده، بیشترین درصد بازماندگی،  بیشترین نرخ رشد ویژه و بالاترین وزن نهائی میگوی L. vannamei  (05/3±33/95 درصد ، 02/0±26/12 و 88/47±7/543 میلی‌گرم) در تیمار 4T مشاهده شد که به طور معنی‌داری از تیمارهای 1T و2T  بالاتر بود( 05/0>P). بیشترین نرخ رشد ویژه جلبکG. corticata (08/0± 37/2) و بیشترین درصد افزایش وزن (02/5 ±50/103 درصد)  در تیمار 2T و کمترین میزان نرخ رشد ویژه جلبک  G. corticata (10/0±23/0) و کمترین درصد افزایش وزن 15/3±08/7 درصد)در تیمار 5T مشاهده شد. این پژوهش بوضوح نشان داد که پرورش جلبک قرمز G.corticata در تانک‌های  نوزادگاهی میگوی L. vannamei  می‌تواند منجر به افزایش پارامترهای رشد و درصد بازماندگی پست لارو ­گردد و این افزایش با میزان تراکم جلبک در تانک‌ها ارتباط مستقیم و معنی‌داری دارد.   2 Integrated culture of Litopenaeus vannamei postlarvae with different densities of Gracilaria corticata was examined during a 30-day period from July 17 to August 16,  2018. Four  treatments of nursing the whiteleg  shrimp L. vannamei  post larvae (PL15) at a density of 2000 Pl/m2 integrated with  different densities of red sea weed (0, 400 , 800  and 1200 g algae/m2) (T1,T2, T3 and T4) plus a control treatment, culturing of red algae Gracilaria corticata at a density of 400 g without shrimp (T5) were compared. Based on the results, the survival rate, the specific growth rate(SGR) and the final weight  of L. vannamei  (95.33±3.05, 12.26±0.02 and 543.7±47.88) in  treatment T4  were significantly higher than the treatments T1 and T2 (p<0.05). The maximum SGR of G. corticata  (2.37±0.88) and the highest percentage of weight gain (WG) (103.5 ± 5.02%) was observed in treatment T2. The minimun SGR  (0.23±0.10) and the minimum WG (7.08±3.15%) was observed in treatment T5. This research clearly showed that culturing of red algae G.corticata  in the nursery tanks of  L. vannamei  post larvae could lead to increase the growth parameters and survival rate of post larvae and the increasing in these parameters were significantly related to the density of algae in tanks.   129 138 2018/12/32018/08/52019/01/132019/03/282019/04/222019/04/292019/04/112019/05/142018/06/202019/03/112019/01/292019/05/5 1398/2/15 2019/07/202019/07/212019/07/282019/07/232019/05/192019/07/272019/07/272019/07/282019/07/272019/07/282019/09/82019/07/30 1398/5/8 حجت اله فروغی فرد H. Fourooghifard پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات ، اموزش و ترویج کشاورزی(areeo)، بندر عباس ایران ایران fourooghifard@yahoo.com محمدرضا زاهدی M.R. Zahedi پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات ، اموزش و ترویج کشاورزی(areeo)، بندر عباس ایران ایران zahedi2138@gmail.com کیومرث روحانی قادیکلائی K. Roohani Ghadikolaee پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات ، اموزش و ترویج کشاورزی(areeo)، بندر عباس ایران ایران roohani2001ir@yahoo.com مریم معزی M. moezzi پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات ، اموزش و ترویج کشاورزی(areeo)، بندر عباس ایران ایران maryammoezzi1360@yahoo.com عیسی عبدالعلیان E. Abdolalian پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات ، اموزش و ترویج کشاورزی(areeo)، بندر عباس ایران ایران abdolalian1969@yahoo.com Postlarvae nursery Growth parameters Survival rate Litopenaeus vannamei Gracilaria corticata مرحله نوزادگاهی پارامتر های رشد درصد بازماندگی Gracilaria corticata Litopenaeus vannamei ##اکبری، ح.، آفتابسوار، ی.، ملکوتی، م.، تمدنی جهرمی، س.، اجلالی خانقاه، ک.، 1383. پرورش جلبک قرمز گراسیلاریا(Gracilaria corticata) در حوضچه های فایبرگلاس و استخراج آگار از آن، مجله علمی شیلات ایران، (3)13: 38 – 27.##فرهودی، آ.، سوری نژاد، ا.، نفیسی بهابادی، م.، سجادی، م.م.، سالار زاده، ع.، 1396. تأثیر جایگزینی نسبی آرد ماهی با جلبک قرمز دریایی Gracilaria pygmaea بر عملکرد رشد، شاخص‌های خونی و بیوشیمیایی سرم خون ماهی باس دریایی آسیایی (Lates calcarifer (Bloch, 1790، مجله علمی شیلات ایران، (3)26: 89- 77. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.113524##Afsharnasab M., Matinfar A., Mohamadi D.M., Ghavampour A., Seyed M., S.R., Sabz Alizadeh S., Pazir K., Faghih G.H., Haghnejat M. and Ghasemi S., 2008. Growth and survival rates, mean weight, food conversion ratio and total harvest in cultured shrimp Litopenaeus vannamei in Iran. Iranian Scientific Fisheries Journal, 17(3): 15–22.##Boyd, C.E. and Green, B.W., 2002. Coastal water quality monitoring in shrimp farming areas, an example from honduras. Report prepared under the World Bank, NACA, WWF and FAO Consortium Program on Shrimp Farming and the Environment. Work in Progress for Public Discussion. Published by the Consortium.##Briggs, M., Funge-Smith, S., Subasinghe. R. and Phillips, M., 2004. Introductions and movement of Penaeus vannamei and Penaeus stylirostris in Asia and the Pacific. RAP publication, Bangkok, Thailand.##Carreon-Lagoc, J., 1989. Nursery ponds in prawn farming. Aqua Farm News, 7: 13-15.##Devi, I.R.P. and Gowri, V.S., 2007. Biological treatment of aquaculture discharge waters by seaweeds. Journal of Industrial Pollution Control, 23(1): 135-140.##FAO, 2016. Fishery and Aquaculture Statistics. Food and Agriculture Organization of the United Nations. Rome.##Foroughifard, H., Tazikeh, E. and Akbari, H., 2005. Assessing the effects of urea and TMRL media on laboratory cultivation of Gracilaria corticata, (in persian). Iranian Scientific Fisheries Journal, 14(1): 87-98.##Fourooghifard, H., Matinfar, A., Mortazavi M.S., Roohani Ghadikolaee K. and Mirbakhsh M., 2017. Growth parameters of whiteleg shrimp Litopenaeus vannamei and red seaweed Gracilaria corticata in integrated culturing method under zero water exchange system. Aquaculture Research, 48 (10), 5235-5242. DOI: 10.1111/are.13335##Hirono, Y., 1983. Preliminary report on shrimp culture activities in Ecuador. Journal of the World Mariculture Society, 14: 451-457. DOI: 10.1111/j.1749-7345.1983.tb00097.x ##Hung, L. and Quy, O., 2013. On-farm feeding and feed management in whiteleg shrimp (Litopenaeus vannamei) farming in Viet Nam On farm feeding and feed management in whiteleg shrimp (Litopenaeus vannamei) farming in Viet Nam. In M.R. Hasan and M.B. New, eds. On-farm feeding and feed management in aquaculture. FAO Fisheries and Aquaculture Technical Paper No. 583. Rome, FAO : 337–357.##Lazur, A., 2007. Growout pond and water quality management. JIFSAN (Joint Institute for Safety and applied Nutrition) Good Aquacultural Practices Program, University of Maryland, Symons Hall, College Park, MD 20742##McHugh, D., 2003. A guide to the seaweed industry FAO Fisheries Technical Paper 441. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome.## Qian, H., Kornegay, E.T., Conner Jr, D.E., 1996. Adverse effects of wide calcium: phosphorus ratios on supplemental phytase efficacy for weanling pigs fed two dietary phosphorus levels. Journal of Animal Science. 74 (6): 1288-1297. DOI: 10.2527/1996.7461288x.##Rebello, J., Ohno, M., Critchley, A. and Sawamura, M., 1996. Growth rates and agar quality of Gracilaria gracilis (Stackhouse) Steentoft from Namibia, Southern Africa. Botanica Marina, 39: 273-280. DOI: 10.1515/botm.1996.39.1-6.273##Ricker, W.E., 1975. Computation and interpretation of biological statistics of fish populations. Bulletin of Fisheries Research Board of Cannada, 191: 1- 382.##Sánchez‐Romero, A., Miranda‐Baeza, A., Rivas‐Vega, M.E., López‐Elías, J.A., Martínez‐Córdova, L.R. and Tejeda‐Mansir, A., 2016. Development of a model to simulate nitrogen dynamics in an integrated shrimp–macroalgae culture system with zero water exchange. Journal of the World Aquaculture Society, 47(1): 129-138. DOI: 10.1111/jwas.12242##Seema, C. and Jayasankar, R., 2005. Removal of nitrogen load in the experimental culture system of seaweed and shrimp. Journal of the Marine Biological Association of India, 47: 150-153.##Silva, E., Silva, J., Ferreira, F., Soares, M., Soares, R. and Peixoto, S., 2015. Influence of stocking density on the zootechnical performance of Litopenaeus vannamei during the nursery phase in a biofloc system. Boletim do Instituto de Pesca, 41: 777-783.##Singh, A., Ramakrishna, T. and Murthy, M.S., 1980. Some ecological observations on two agarophytes from India. Hydrobiologia, 75: 185-188. DOI: 10.1007/bf00007432##Troell, M., Rönnbäck, P., Halling, C., Kautsky, N. and Buschmann, A., 1999. Ecological engineering in aquaculture: use of seaweeds for removing nutrients from intensive mariculture. Journal of Applied Phycology, 11(1): 89-97. DOI: 10.1023/A:1008070400208##Zhang, B., Lin., W., Huang, J., Wang, Y. and Xu, R., 2010. Effects of artificial substrates on the growth, survival and spatial distribution of Litopenaeus vannamei in the intensive culture condition. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 9(2): 293-304. DOI: 10.22092/IJFS.2018.11407## ##

تهیه سس از میگوی ژاپنی (Macrobrachium nipponense) منجمد تالاب انزلی و ارزیابی کیفیت میکروبی، شیمیایی، حسی و مدت زمان ماندگاری آن در دمای یخچال (4 درجه سانتی‌گراد) Preparation of frozen Macrobrachium nipponense sauce from Anzali wetland and evaluation of its microbial, chemical, sensory and shelf life at 4oC 1 1 تحقیق حاضر با هدف تهیه سس از میگوی ژاپنی منجمد تالاب انزلی، بررسی کیفیت و زمان ماندگاری آن در دمای یخچال انجام شد. این تحقیق شامل ۴ تیمار از میگو بانضمام سوربیتول، برنج پخته و سوکرالوز بود. سایر ترکیبات یکسان بودند. میگو عمل آوری شده با نمک خالص به عنوان شاهد بود. پراکسید (میلی اکی والان گرم/کیلوگرم روغن)، TBRS (میلی گرم/کیلوگرم)، TVB-N (میلی‌گرم/100 گرم) و pH در تیمارهای برنج ۶۵/۱–۸۵/۰، ۹۹/۰–۱۴/۰، ۸۷/۶۸–۴/۲۳ و ۹۹/۶–۰۱/۶،  سوربیتول ۹۴/۱–۹۳/۰، ۵۲/۱–۳۶/۰، ۱۲/۶۴–34/۲۶ و ۹۷/۶–۰۵/۶ ، سوکرالوز ۴۵/۱–۷۲/۰، ۹۵/۰–۱۰/۰، ۸۲/۶۴–۵۰/۱۲ و ۵۰/۶–۳۱/۵ و شاهد ۹۵/۲–۱۳/۱، ۸۴/۱–۷۲/۰، 16/۷۳-۶4/۲۳ و ۳۵/۷–۳۵/۵ بودند. شمارش باکتری­های تیمارها در حد مجاز بود. در تیمار برنج طعم و مزه (۳۷/۴) و پذیرش کلی (۲۵/۴) در مقایسه با سایر تیمارها افزایش معنی­دار نشان دادند (۰۵/۰>p). پروتئین و جذب نمک بین تیمارهای آزمایشی و شاهد تفاوت معنی‌دار نشان دادند (۰۵/۰>p). تیمار سوربیتول بیشترین رطوبت (۱۲/۲۴ درصد) را داشت. تولید سس در تیمار برنج (۳۸۰ میلی لیتر) بیشترین و در تیمار سوربیتول (۲۲۰ میلی لیتر) کمترین مقدار بود (۰۵/۰>p). تیمارهای برنج و سوربیتول به مدت پنج ماه ولی شاهد و سوکرالوز به مدت چهار و شش ماه کیفیت مطلوبی داشتند. با توجه به نتایج، برنج پخته برای تهیه سس میگو پیشنهاد می‌شود. 2 The present study was conducted to evaluate sauce production of frozen Macrobrachium nipponense from Anzali wetland and determined its quality and shelf life during storage period at 4oC. The treatments included sorbitol, cooked rice and sucralose. The other components were same. Shrimp processed by pure salt was as control. Peroxide (meq/kgoil), TBRS (mg/kg), TVB-N (mg/100g) and pH were in rice: 0.85-1.65, 0.14-0.99, 23.54-68.87 and 6.01-6.99, sorbitol: 0.93–1.94, 0.36-1.52, 26.34-64.12 and 6.05-6.97, sucralose: 0.72-1.45, 0.10–0.95, 12.50-64.82 and 5.31-6.50 and control treatments: 1.13-2.95, 0.72-1.84, 23.64-73.16 and 5.35-7.35. The bacterial counts of the treatments were acceptable. In rice treatment, taste (4.37) and overall acceptance (4.25) showed a significant increase compared to other treatments (p<0.05). Protein and salt absorption showed differences between experimental and control treatments (p<0.05). Sorbitol treatment had the highest moisture (12.24%). Sauce production was highest in rice (380 ml) and lowest in sorbitol (220 ml) treatments. Rice, sorbitol, sucralose and control treatments had high quality for five, five, six and four months. Given the results, cooked rice is suggesting for shrimp sauce production. 139 149 2018/12/32018/08/52019/01/132019/03/282019/04/222019/04/292019/04/112019/05/142018/06/202019/03/112019/01/292019/05/52019/04/20 1398/1/31 2019/07/202019/07/212019/07/282019/07/232019/05/192019/07/272019/07/272019/07/282019/07/272019/07/282019/09/82019/07/302019/09/8 1398/6/17 مینا سیف زاده M. Sciefzadeh موسسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران m_seifzadeh_ld@yahoo.com Anzali wetland Shrimp sauce Shelf life Macrobrachium nipponense تالاب انزلی سس میگو مدت زمان ماندگاری میگوی ژاپنی ##بندانی، غ.، ۱۳۹۰. شناسایی وضعیت پراکنش میگوی ماکروبراکیوم (Macrobrachium nipponense)در اکوسیستم‌های آب شیرین و باریکه ساحلی دریای خزر استان گلستان. تهران، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، ۱۱۱ صفحه.##شکیب، ع.، موسوی نسب، م.، 1392. تهیه سس ماهی ساردین رنگین کمان خشک شده و بررسی خواص شیمیایی و حسی آن. مجله علمی شیلات ایران، ۶۰- ۴۹: ۲۲ .##طاهری، ع.، جلالی نژاد، س.، حسینی، و.، احمدی، آ.، ناصری، ف.، 1393. بررسی جمعیت باکتری‌های سس ماهی ایرانی (مهیاوه). مجله پژوهشی دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی، ۲۸۰ - ۲۷۳: ۱۹.##مویدی، غ.، موسوی‌نسب، م.، ۱۳۹۲. بررسی تغییرات ترکیبات نیتروژنی، میکروبی و الگوی الکتروفورز در حین فرآیند تخمیر مهیاوه، سس ماهی سنتی ایران. مجله علمی شیلات ایران، ۱۶۳ - ۱۴۷: ۲۲ . ##AOAC, 2005. Official Methods of Analysis Manual, 18thed., Association of Official Analytical Chemists International. Washington D.C., USA.##Codex alimentarius, 2013. Standard for fish sauce, Codex standard 302-2011. Codex. Washington D.C., USA. ##FAO, 1986. FAO food and nutrition paper manuals of food quality control food analysis: Quality, adulteration, and tests of identity. Rome food and agriculture organization. Washington D.C., USA.##FAO, 2018. The state of word fisheries and aquaculture. FAO. Washington D.C., USA. 227P.##Feldsine, F., Abeyta, C. and Andrews, W.H., 2002. AOAC international methods committee guidelines for validation of qualitative and quantitative food microbiological official methods of analysis. Journal of AOAC International, 85: 1188-1200. ##Ghayovan, S., Rao, R.M., Liuzzo, J.A. and Khan, M.A., 1983. Chemical characterization and sensory evaluation of a dietary sodium-potassium fish sauce. Journal Agricultural Food Chemistry, 31: 859-863. DOI: 10.1021/jf00118a047.## Gilbert, S.W., 2013. Applying the Hedonic Method. National Institute of Standards and Technology Technical Note 1811. Washington D.C., USA. 32P. Ibrahim, S.M., 2010. Utilization of gambusia for fish sauce production. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 10:169-172. DOI : 10.4194/trjfas.2010.0202##Kilinc, B., Cakli, S., Tolasa, S. and Dincer, T., 2005. Chemical, microbiological and sensory changes associated with fish sauce processing. Izmir: Ege University.##Kim, J.S., Shahidi, F. and Heu, M.S., 2003. Characteristics of salt fermented sauces from shrimp processing byproducts. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 51: 784-92 · DOI: 10.1021/ jf020710j##Kraemer, E.O. and Stamm, A.J., 1924. Mohr’s Method for the Determination of Silver and Halogens in other than Neutral Solutions. Journal American Chemistry ##Society, 46: 2707- 2709. DOI:10.1021/ ja01677a014##Lopetcharat, K. and Park, J.W., 2002. Characteristics of fish sauce made from Pacific whiting and surimi by-products during fermentation stage. Journal of Food Science, 67:511-516. DOI:10.1111/ j.1365-2621.2002.tb10628.x##Moeeni, S. and Koochekian, A., 2003. Production of fish sauce from Casian sea Kilka with use of traditional, microbial and enzymatic methods. Iranian Scientific Fisheries Journal, 12: 79– 94. ##Mueda, R.T., 2015. Physico-chemical and color characteristics of salt fermented fish sauce from anchovy Stolephorus commersonii. Aquaculture, Aquarium, Conservation and Legislation. International Journal of the Bioflux Society, 8: 565- 572.##Pak, C.S., 2005. Stability and quality of fish oil during typical domestic application. A thesis. Wonsan: University of Fisheries.##Reerueangchai, P., Suwannarat, Y. and Hinsui, J., 2019. Chemical and Microbiological Changes during Shrimp Seasoning Fermentation Using Seafood Processing Waste. Paper presented at the 3 rd International Conference on Nutrition and Food Sciences, Cenetri Publishing Group, Paris, 15 – 16 Apr 2019.##Sanchez, P.C., 2008. Philippine fermented foods: principles and technology. A thesis. The University of the Philippines Press.##Seifzadeh, M., 2014. Effects of whey protein edible coating on bacterial, chemical and sensory characteristics of frozen common kilka. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 13: 477-491. ##Shih, I.L., Chen, L.G., Yu, T.S., Chang, W.T. and Wang, S.L., 2003. Microbial reclamation of fish processing wastes for the production of fish sauce. Enzyme and Microbial Technology, 33: 154–162. DOI: 10.1016/S0141-0229(03)00083-8##Tournas, V., Stack, M.E., Mislivec, P.B., Koch, H. A. and Rbandler, R., 2001. Yeasts, molds and mycotoxin. FDA, 11P.##Tungkawachara, S., Park, J.W. and Choi, Y.J., 2003. Biochemical properties and consumer acceptance of Pacific whiting fish sauce. Journal of Food Science, 68:855-860. DOI:10.1111/j.1365-2621.2003. tb08255.x##Zarei, M., Najafzadeh, H., Eskandari, M.H., Enayati, A., Gharibi, D. and Fazlara, A., 2012. Chemical and microbial properties of mahyaveh, a traditional Iranian fish sauce. Food control, 23: 511–514. DOI:10.1016/ j.foodcont.2011.08.023## ##

اثر عصاره پلی ساکارید جلبک الوا (Ulva rigida) بر فعالیت آنزیم‌‌های گوارشی و فراسنجه‌‌های بیوشیمیایی میگوی پاسفید غربی (Litopeneaus vannamei) Effect of water soluble polysaccharides extracts of algae (Ulva rigida) on the activity of digestive enzymes and biochemical parameters of Litopenaeus vanname shrimp 1 1 این مطالعه به بررسی اثر عصاره پلی ساکارید محلول در آب جلبک الوا (Ulva rigida) بر فعالیت آنزیم‌‌های گوارشی و فراسنجه‌های بیوشیمیایی میگوی پاسفید غربی (Litopeneaus vannamei) پرداخته است. پست لارو میگوها با متوسط وزن 1/0±1 گرم با 4 رژیم غذایی ( با سه تکرار) حاوی 0، 5/0، 1و 5/1 گرم جلبک الوا بر کیلوگرم غذا به ‌‌مدت 60 روز تغذیه شدند. نتایج این مطالعه نشان داد که عصاره پلی ساکارید جلبک الوا بر فعالیت آنزیم‌‌های گوارشی موثر است. بهترین فعالیت آنزیم‌‌های گوارشی در میگوهای تغذیه شده با 5/1 گرم عصاره جلبک الوا بر کیلوگرم غذا مشاهده شد. در رژیم‌‌های حاوی سه سطح عصاره جلبک الوا میزان گلوکز، کلسترول، تری گلیسیرید، آسپارتات آمینوترانسفراز، آلانین آمینوترانسفراز و آلکالین فسفاتاز بi صورت معنی‌‌داری کاهش یافت (05/0>p). سطح پروتئین تام و گلوبولین در میگوهای تغذیه شده با 1 و 5/1 گرم عصاره جلبک بر کیلوگرم غذا به‌‌ طور معنی‌‌داری بیشتر از تیمار شاهد بود (05/0>p). از اینرو، استفاده از عصاره پلی ساکارید محلول در آب جلبک الوا در سطح 5/1 گرم بر کیلوگرم غذا برای بهبود عملکرد آنزیم‌‌های گوارشی، متابولیسم چربی و قند و سیستم ایمنی غیر اختصاصی در میگوی پاسفید غربی پیشنهاد می‌‌گردد.  2 This study was carried out to investigate the effect of water-soluble polysaccharides extract of algae Ulva rigida (WPU) on the activity of digestive enzymes and biochemical parameters of shrimp (Litopenaeus vannamei). Three replicate groups of shrimp (1.0±0.1g) were fed by four diets containing included, 0 or control, 0.5, 1 and 1.5 g/kg of WPU for 60 days. The results of this study showed that WPU was effective on the activity of digestive enzymes of L. vannamei. The best the activity of digestive enzymes were observed in shrimp that fed with 1.5 g/kg of WPU diet. Regarding biochemical parameters, the diets supplemented with three levels of WPU reduced glucose, cholesterol, triglyceride, aspartat aminotransferase, alanin aminotransferase and alkaline phosphatase in experimental shrimps. Also, protein and globulin levels of shrimp receiving WPU at 1.0 and 1.5 level were significantly higher than those fed control treatment. In conclusion, the incorporation of water-soluble polysaccharides from green algae U. rigidaat 1.5 g/kg doses improves function of digestive enzymes, carbohydrate and lipid metabolisms and nonspecific immunity in shrimp L. vannamei. 151 162 2018/12/32018/08/52019/01/132019/03/282019/04/222019/04/292019/04/112019/05/142018/06/202019/03/112019/01/292019/05/52019/04/202019/01/8 1397/10/18 2019/07/202019/07/212019/07/282019/07/232019/05/192019/07/272019/07/272019/07/282019/07/272019/07/282019/09/82019/07/302019/09/82019/07/17 1398/4/26 پریا اکبری P. Akbary دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار ایران paria.akbary@gmail.com رها فدایی راینی R. Fadaei Rayeni دانشگاه جیرفت ایران pariaakbary1355@gmail.com Digestive enzymes Ulva algae Biochemical parameters Litopeneaus vannamei Water soluble polysaccharide آنزیم‌های گوارشی جلبک الوا فراسنجه های بیوشیمیایی میگوی پاسفید غربی پلی ساکاریدهای محلول در آب ##Akbary, P. and Aminikhoei, Z., 2018. Effect of polysaccharides extracts of algae Ulva rigida on growth, antioxidant, immune response and resistance of shrimp, Litopenaeus vannamei against Photobacterium damselae. Aquaculture Research, 49:2503–25101. DOI: 10.1111/are.13710.##Akbary, P., Debashi, F. and Fadaii Rareni, R., 2019. Study of blood biochemical and liver antioxidant parameters changes in grey mullet, Mugil cephalus fed with red seaweed Jania adhaerens J.V. Lamouroux extract. Iranian Scientific Fisheries Journal, 28(4):23-34. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.119078##Akbary, P., MollaZei, E. and Aminikhoe, Z., 2018. Effect of dietary supplementation of Ulva rigida C. Agardh extract on several of physiological parameters of grey mullet, Mugil cephalus (Linnaeus). Iranian Journal of Aquatic Animal Health, 4(1): 59-68. DOI: 10.29252/ijaah.4.1.59##Alam, S.M.N., Pokrant, B., Yakupitiyage, A. and Phillips, M.J., 2007. Economic returns of disease affected extensive shrimp farming in southwest Bangladesh. Aquaculture International, 14: 363–370. DOI: 10.1007/s10499-007-9100-7##Ali, A., 2000. Probiotics in fish farming. Evaluation of a bacterial mixture. Thesis, Swedish University of Agricultural Sciences. Umea, Sweden##Amar, E.C., Kiron, V., Satoh, S. and Watanabe, T., 2004. Enhancement of innate immunity in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) associated with dietary intake of carotenoids from natural products. Fish and Shellfish Immunology, 16: 527-537. DOI: 10.1016/j.fsi.2003.09.004##Atli, G. and Canli, M., 2010. Response of antioxidante systemof freshwater fish Oreochromis niloticus to acute and chronic metal (Cd, Cu, Cr, Zn, Fe) exposures. Ecotoxicology and Environmental Safety, 73: 1884-1889. DOI:10.1016/j.ecoenv.2010.09.005##Banaee, M., Sureda, A., Mirvaghefi, A.R. and Rafei, G.R., 2011. Effects of long-term silymarin oral supplementation on the blood biochemical profile of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish Physiology and Biochemistry, 37: 887-896. DOI: 10.1007/s10695-011-9486-z##Choi, Y.H., Lee, B.J. and Nam, T.J., 2015. Effect of dietary inclusion of Pyropia yezoensis extract on biochemical and immune responses of olive flounder Paralichthys olivaceus. Aquaculture, 435: 347-353. DOI:10.1016/j.aquaculture.2014. 10.010 ##Chojnacka, K., Agnieszka, S., Zuzanna, W. and Tuhy, E., 2012. Biologically Active Compounds in Seaweed Extracts - the Prospects for the Application. The Open Conference Proceedings Journal, 3: 20-28. DOI: 10.2174/1876326X01203020020##Debashi, F., 2017. Effect of red seaweed, Jania adhaerens extract on the growth performance, feed utilization, body composition and digestive enzymatic activities of grey mullet Mugil cephalus. Thesis. Marine Sciences Department, Chabahar Maritime University. 60P. (In Persion)##Ferreira, L.G., Noseda, M.D., Gonçalves, A.G., Ducatti, D.R.B., Fujii, M.T. and Duarte, M.E.R., 2012. Chemical structure of the complex pyruvylated and sulfated agaran from the red seaweed Palisdaa flagellifera (Ceramiales, Rhodophyta). Carbohydrate Research, 347: 83-94. DOI: 10.1016/j.carres.2011.10.007.##Francis, G., Makkar, H.P.S. and Becker, K., 2001. Antinutritional factors present in plant-derived alternate fish feed ingredients and their effects in fish. Aquaculture, 199:197–227. DOI: 10.1016/S0044-8486(01)00526-9##Furne, M., Hidalgo, M.C., López, A., García-Gallego, M., Morales, A.E., Domenzain, A., Domezain, J. and Sanz, A., 2005. Digestive enzyme activities in Adriatic sturgeon Acipenser naccarii and rainbow trout Oncorhynchus mykiss. A comparative study. Aquaculture, 250(1-2): 391-398. DOI:10.1016/j.aquaculture.2005. 05.017##Guillaume, J. and Choubert, G., 2001. Digestive physiology and nutrient digestibility in fishes. In: Guillaume, J., Kaushik, S., Bergot, P.,Me’ tailler, R. (Eds.), Nutrition and Feeding of Fish and Crustaceans. Springer, London, UK, pp. 27–56.##John, P.J., 2006. Alteration of certain blood parameters of freshwater teleostMystus vittatusafter chronic exposure to Metasystox and Sevin. Fish Physiology Biochemistry, 33:15–20. DOI: 10.1007/s10695-006-9112-7##Kaleeswaran, B., Ilavenil, S. and Ravikumar, S., 2012. Changes in biochemical, histological and specific immune parameters in Catla catla (Ham.) by Cynodon dactylon (L.). Journal of King Saud University – Science, 24(2): 139-152. DOI:10.1016/j.jksus.2010.10.001##Kanjana, K., Radtanatip, T., Asuvapongpatana, S., Withyachumnarnkul, B. and Wongprasert, K., 2011. Solvent extracts of the red seaweed Gracilaria fisheri prevent Vibrio harveyi infections in the black tiger shrimp Penaeus monodon. Fish and Shellfish Immunology, 30(1): 389–396. DOI:10.1016/j.fsi.2010.11.016.##Khalafalla, M.M. and El-Hais, A.M.A., 2015. Evaluation of Seaweeds Ulva rigida and Pterocladia capillaceaas dietary Supplements in Nile Tilapia Fingerlings. Journal of Aquaculture Research and Development, 6(3): 1-5. DOI: 10.4172/2155-9546.1000312##King, J., 1972. Practical clinical enzymology. 2nd ed, London: the University of Michigan press, P. 250-286.##Leung, K.M.Y. and Dudgeon, D., 2008. Ecological risk assessment and management of exotic organisms associated with aquaculture activities. In: Understanding and Applying Risk Analysis in Aquaculture (Bondad-Reantaso, M.G., Arthur, J.R. and Subasinghe, R.P. eds), pp. 67–100. ##Li, Y.X. and Kim, S.K., 2011. Utilization of seaweed derived ingredients as potential antioxidants and functional ingredients in the food industry: An Overview. Food Science Biotechnology, 20: 1461-1466. DOI: 10.1007/s10068-011-0202-7##Madibana, M.J., Mlambo, V., Lewis, B. and Fouché, C., 2017. Effect of graded levels of dietary seaweed (Ulvasp.) on grow hematological and serum biochemical parameters in dusky Argyrosomus japonicus, sciaenidae. Egyptian Journal of Aquatic Research, 107:1-5. DOI:10.1016/j.ejar.2017.09.003##Manilal, A., Selvin, J. and George, S., 2012. In vivo therapeutic potentiality of red seaweed, Asparagopsis (Bonnemaisoniales, Rhodophyta) in the treatment of Vibriosis in Penaeus monodon Fabricius. Saudi Journal of Biological Science, 19(2): 165–175. DOI: 10.1016/j.sjbs.2011.12.003##Mohamed, S., Hashim, S.N. and Rahman, A.H., 2012. Seaweeds: A sustainable functional food for complementary and alternative therapy. Trends Food Science Technology, 23: 83-96. DOI:10.1016/j.tifs.2011.09.001##Mollazaei, E., 2017. Effect of different levels of dietary supplementation of Ulva rigida extract on growth performance, body chemical compositions and digestive enzymes in grey mullet, Mugil cephalus Linnaeus 1758. Thesis. Marine Sciences Department, Chabahar Maritime University. 60P. (In Persion).##Morshedi, V., Nafisi Bahabadi, M., Sotoudeh, E., Azodi, M. and Hafezieh, M., 2017. Nutritional evaluation of Gracilaria pulvinata as partial substitute with fish meal in practical diets of barramundi (Lates calcarifer). Journal of Applied Phycology, 2: 1-11. DOI :10.1007/s10811-017-1199-y.##Mousavi Nadushan, R. and Hellat, R., 2019. Production of iron-chelating proteinous hydrolysate from freshwater prawn, Macrobrachium nipponense. Iranian Scientific Fisheries Journal, 28 (1):1-16. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.118537##Natalia, Y., Hashim, R., Ali, A. and Chong, A., 2004. Characterization of digestive enzymes in a carnivorous ornamental fish, the Asian bony tongue Scleropages formosus (Osteoglossidae). Aquaculture, 233(1-4): 305–320. DOI:10.1016/j. aquaculture.2003.08.012##Osman, M.E.H., Aboshady, A.M. and Elshobary, M.E., 2013. Production and characterization of antimicrobial active substance from some macro algae collected from Abu- Qir bay (Alexandria) Egypt. African Journal Biotechnology, 12(49):6847-6858. DOI: 10.5897/AJB10.2150##Paul, J.J.P. and Devi, S.D.K.S., 2013. Seasonal variability of Ulva species (Green seaweed) in Tirunelveli region, the southeast coast of Tamil Nadu, India. Research Journal of Marine Science, 1(1):14-17.##Peixoto, M.J., Svendsen, J.C., Malte, H., Pereira, L.F., Carvalho, P., Pereira, R., Gonçalves, J.F. and Ozório, R.O., 2016. Diets supplemented with seaweed affect metabolic rate, innate immune, and antioxidant responses, but not individual growth rate in European seabass (Dicentrarchus labrax). Journal of Applied Phycology, 28: 2061–2071. DOI: 10.1007/s10811-015-0736-9##Potty, H.V., 1996. Physio-chemical aspects, physiological functions,nutritional importance and technological significance of dietary fibres a critical appraisal. Journal of Food Science and Technology, 33: 1–18.##Quezada-Rodríguez, P.R. and Fajer-Ávila, E.J., 2017. The dietary effect of ulvan from Ulva clathrata on hematological-immunological parameters and growthof tilapia (Oreochromis niloticus). Journal of Applied Phycology, 29:423–431. DOI: 10.1007/s10811-016-0903-7##Rifai, N., Bachorik, P.S. and Albers, J.J., 1999. Lipids, lipoproteins and apolipoproteins. In: Burtis CA, Ashwood ER, editors. Tietz Textbook of Clinical Chemistry. 3rd ed. Philadelphia: W. B. Saunders Company, 809P.##Rudtanatip, T., Withyachumnarnkul, B. and Wongprasert, K., 2015. Sulfated galactans from Gracilaria fisheri bind to shrimp haemocyte membrane proteins and stimulate the expression of immune genes. Fish and Shellfish Immunology, 47(1): 231–238. DOI: 10.1016/j.fsi.2015.09.006##Souza, B.W.S., Cerqueira, M.A., Bourbon, A.I., Pinheiro, A.C.Martins, J.T., Teixeira, J.A., Coimbra, M.A. and Vicente, A.A., 2012. Chemical characterization and antioxidantactivity of sulfated polysaccharide from the red seaweed Gracilaria birdiae. Food Hydrocolloid Journal, 27: 287-292. DOI:10.1016/j.foodhyd.2011.10.005##Svetina, A., Matasin, Z., Tofant, A., Vucemilo, M. and Fijan, N., 2002.Haematology and some blood chemical parameters of young carp till the age of three years. Acta Veterinary Hung, 50: 459–467. DOI: 10.1556/AVet. 50.2002.4.8##Tabarsa, M., Rezaei, M., Ramezanpour, Z. and Waaland, J.R., 2012. Chemical compositions of the marine algae Gracilaria salicornia (Rhodophyta) and Ulva lactuca (Chlorophyta) as a potential food source. Journal of Science Food Agriculture, 92:2500–2506. DOI: 10.1002/jsfa.5659##Talpur, A.D., 2014. Mentha piperita (Peppermint) as feed additive enhanced growth performance, survival, immune response and disease resistance of Asian seabass,Lates calcarifer (Bloch) against Vibrio Harvey iinfection. Aquaculture, 420-421: 71-78. DOI:10.1016/j.aquaculture. 2013.10.039##Thomas, L., 1998. Clinical Laboratory Diagnostics. 1st ed. Frankfurt: TH-Books Verlagsgesellschaft, 652P.##Wijesekara, I., Pangestuti, R. and Kim, S.K., 2011. Biological activities and potential health benefits of sulfated polysaccharides derived from marine algae. Carbohydrate Polymer, 84: 14-21. DOI:10.1016/j.carbpol.2010.10.062##Wijesinghe, W.A.J.P. and Jeon, Y.J., 2012. Enzyme-assistant extraction (EAE) of bioactive components: A useful approach for recovery of industrially important metabolites from seaweeds: A review. Fitoterapia, 83: 6-10. DOI: 10.1016/j.fitote.2011.10.016##Wongprasert, K., Rudtanatip, T. and Praiboon, J., 2014. Immunostimulatory activity of sulfated galactans isolated from the red seaweed Gracilaria fisheri and development of resistance against white spot syndrome virus (WSSV) in shrimp. Fish and Shellfish Immunology, 36(1): 52–56. DOI:10.1016/j.fsi.2013 .10.010##Zeinab, A.K., Aly, M.S., Faiza, A.K. and Fatma, E.M., 2015. Effect of Spirulina platensisand Lactobacillus rhamnosuson growth and biochemical performance of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus) fingerlings. International Journal of Current Microbiology Applied Science, 4(4): 747-763.## ##

تاثیر دما، pH، نمک، اسانس برگ نارنج و بسته‌‌بندی اتمسفر تغییر یافته در کنترل باکتری Salmonella typhimurium در برگر کپور نقره‌‌ای Effect of temperature, pH, salt, leaf citrus essential oil and modified atmosphere packaging in control of Salmonella typhimurium in Burger fish 1 1 این پژوهش با هدف تاثیر دما، pH، نمک، اسانس نارنج (Citrus aurantium L.) و بسته‌‌بندی اتمسفر تغییر یافته (50 درصد دی اکسیدکربن، 45 درصد نیتروژن و 5 درصد اکسیژن) در کنترل باکتری Salmonella typhimurium در برگر کپور نقره‌‌ای در سال 97-1396 انجام شد. در این پژوهش pH در سطوح 5/5، 6 و 5/7، دما در سه سطح 4، 25 و 37 درجه سانتی‌گراد، نمک در سه سطح 0، 5/1 و 3 درصد و اسانس نارنج در سطوح 0، 025/0 و 05/0 درصد درنظر گرفته شد. روند رشد این گونه در برگر در pH 5/5، 6 و 5/7 در دماهای 4، 35 و 37 درجه سانتی‌گراد طی 12 روز نگهداری افزایش یافت. در pH 5/7 با نمک 5/1 درصد و 3 درصد و اسانس نارنج 025/0 درصد و 05/0 درصد در دماهای 4، 25 و 37 درجه سانتی‌گراد در روزهای ششم، هشتم، دهم و دوازدهم رشد باکتری S. typhimurium افزایش یافت. همچنین در pH 6 با نمک 5/1 درصد و اسانس نارنج 025/0 درصد در روزهای هشتم، دهم و دوازدهم در دمای 25 و 37 درجه سانتی‌گرد رشد این باکتری زیاد بود. در دمای 4 درجه سانتی‌‌گراد در pH 5/5 با نمک 5/1 درصد و اسانس نارنج 05/0 درصد، pH 5/5 و 6 با نمک 3 درصد و اسانس نارنج 05/0 درصد، pH 5/5 با نمک 3 درصد و اسانس نارنج 025/0 درصد در روزهای هشتم، دهم و دوازدهم عدم رشد باکتری S. typhimurium مشاهده گردید. اسانس گیاه نارنج در سطح 05/0 درصد در دمای 4 درجه سانتی‌گراد، نمک 3 درصد و pH 5/5  قدرت کنترل رشد باکتری S. typhimurium را در برگر ماهی داشت. 2 The aim of this study was to determine the effect of temperature, pH, salt, Citrus aurantium eseential oil and modified atmosphere packaging (50% carbon dioxide, 45% nitrogen and 5% oxygen) on control of Salmonella typhimurium was carried out in 1996-97. In this research, pH was adjusted at 5.5, 6 and 7.5, temperature at 4, 25 and 37 ºC, salt at three levels 0, 1.5 and 3 %, and citrus essential oil at 0, 0.025 and 0.05%. S. typhimurium growth was increased in fish burger at pH 5.5, 6 and 7.5 at 4, 25 and 37 ° C, during 12 days of storage. Bacterial growth was increased at pH 7.5 with 1.5% and 3% salt and 0.025% and 0.05% citrus essential oil at 4, 25 and 37 ° C, respectively, on days 6, 8, 10 and 12. Growth was also observed at pH 6 with 1.5% salt and 0.025% citrus essential oil on days 8, 10 and 12 at 25 and 37 ° C. At 4 ° C at pH 5.5 with 1.5% salt and citrus oil 0.05%, pH 5.5 and 6 with 3% salt and citrus oil 0.05%, pH 5.5 with salt 3% and 0.025% citrus essential oil were not observed of growth of bacterial on the 8th, 10th and 12th days. Citrus essential oil at 0.05% level at 4 ° C, 3% salt and pH 5.5 had the ability to control Salmonella typhimurium growth in fish burger. 163 176 2018/12/32018/08/52019/01/132019/03/282019/04/222019/04/292019/04/112019/05/142018/06/202019/03/112019/01/292019/05/52019/04/202019/01/82019/02/16 1397/11/27 2019/07/202019/07/212019/07/282019/07/232019/05/192019/07/272019/07/272019/07/282019/07/272019/07/282019/09/82019/07/302019/09/82019/07/172019/08/18 1398/5/27 لاله رومیانی L. Roomiani گروه شیلات، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران l.roomiani@yahoo.com مهرنوش تدینی M. Tadayoni گروه علوم و صنایع غذایی، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران m.t.tadayoni@gmail.com Fish burger Modified atmosphere packaging Citrus aurantium L. Salmonella typhimurium برگر ماهی اتمسفر تغییر یافته اسانس نارنج Salmonella typhimurium ##اجاق، س.م.، عبداله زاده، ا.، شعبانپور، ب.، کردجزی، م. و خسروی قلعه، ر.، 1395. کارآیی مواد زیست‌فعال تولیدی از باکتری Lactococcus lactis همراه با اسانس‌های گیاهی، نمک و اسید استیک جهت کنترل Listeria monocytogenes در مدل مایع و گوشت چرخ شده Hypophthalmichthys molitrix. نشریه فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان، 4 (4): 110-89.##ایزدی، ز.، مدرس ثانوی، س.م.ع.، سروش زاده، ع.، اثنی عشری، م. و داوودی، پ.، 1392. اثر ضد میکروبی اسانس گیاهان دارویی بابونه آلمانی و بابونه کبیر. مجله ارمغان دانش، مجله علمی پژوهشی دانشگاه علوم پزشکی یاسوج، 18 (1): 43-31.##بهنام، خ.، محمدی ثانی، ع. و اسماعیل پور، م.، 1396. تعیین ترکیبات شیمیایی و خاصیت ضد میکروبی اسانس ریشه شلغم شیرازی در شرایط آزمایشگاهی. مجله میکروب شناسی مواد غذایی، 3 (3): 40-31.##پاسبانی، ا. و امیری، ص.، 1396. بررسی تأثیر پوشش خوراکی عصاره آلوئه‌ورا همراه با نانو ذرات چربی جامد حاوی اسانس روغنی زنیان بر عمر نگه‌داری گوشت تازه گاو. مجله علوم و صنایع غذایی ایران، 12 (2): 86-75.##چوبکار، ن.، آخوندزاده بستی، ا.، ساری، ع.، گندمی، ح. و امامی راد، ا.م.، 1391.بررسی تأثیر اسانس آویشن شیرازی (Zataria multiflora Boiss) و نیسین بر کنترل کیفیت فیله‌‌های سبک شور ماهی کپور نقره‌‌ای (Hypophthalmichthys molitrix). فصلنامه گیاهان دارویی، 11 (2): 215-205.##رضاییان، ح.، حسینی، س.و.، مطلبی مغانجویی، ع.ع. و میرواقفی، ع.ر.، 1393. اثر عصاره خیار دریایی (Holothuria leucospilota) بر کیفیت شیمیایی فیله ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) طی نگهداری در یخچال (1±4 درجه سانتیگراد). مجله بهره برداری و پرورش آبزیان، 3 (3): 36-27.##رضوی شیرازی، ح.، 1380. تکنولوژی فرآورده‌‌های دریایی (علم فرآوری جلد دوم). انتشارات نقش مهر، چاپ اول. 292 صفحه.##سلیمانی، ع.، وریدی، م.ج.، صادقی ماهونک، ع. و نصیری محلاتی، م.، 1391. بررسی ترکیبات شیمیایی ماهی پوزانک و ارزیابی تغییرات رطوبت و نمک بافت آن طی روش های نمک زنی و خشک کردن. فصلنامه علوم و صنایع غذایی ایران، 8 (2): 120-115.##شعبانپور، ب.، ذوالفقاری، م.، فلاح زاده، س. و علی پور، غ.، 1390. اثر عصاره آویشن شیرازی بر ماندگاری فیله قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان شور و بسته‌‌بندی شده در خلاء در شرایط یخچال. علوم و صنایع غذایی، 33 (1): 11-1. ##عزیزخانی، ف. و توریان، ف.، 1395. بررسی تأثیر اسانس زنیان (Carum Copticum) بر رشد و بیان ژنی انتروتوکسین‌های A و C Staphylococcus aureus در سوریمی ماهی کیلکا (Clupeonella cultriventriscaspia). مجله علوم و فنون شیلات، 5 (1): 152-141.##علیزاده، ش. و رومیانی، ل.، 1396. ارزیابی شاخص های شیمیایی، میکروبی و زمان ماندگاری برگر تلفیقی (کپور نقره ای ـ گوشت مرغ) در طول مدت نگهداری در شرایط انجماد. مجله میکروب شناسی مواد غذایی، 3 (3): 29-19.##علیزاده، ه.، قیامی‌‌راد، م. و ابراهیمی‌‌اصل، س.، 1392. اثر ضدباکتریایی عصاره الکلی شلغم بر روی تعدادی از باکتری‌‌های بیماری‌‌زا. مجله پزشکی دانشگاه علوم پزشکی تبریز، 35 (6): 79-74.##فهیم دژبان، ی.، 1387. فرآوری محصولات شیلاتی. انتشارات مهر النبی. چاپ اول. قائمشهر. 291 صفحه.##لطیفی، ب.، ابوالقاسمی، س.ج.، شویک لو، ا.ر.، احمدی، م.، اعتمادیان، ی. و قائمی، و.، 1398. مقایسه تغییرات فیزیکوشیمیایی، میکروبی و حسی فیله‌‌های فیل ماهی دودی طعم دهی شده با آب نمک و سس به مدت 30 روز در یخچال. مجله علمی شیلات ایران. 28 (4): 12-1. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.119397##هادی زاده، ز.، مورکی، ن. و معینی، س.، 1393. اثر نمک سود کردن بر روی زمان ماندگاری ماهی سارم دهان بزرگ (Scomberoides commersonnianus). مجله علمی شیلات ایران، 23 (3): 139-129.##Bezic, N., Skocibusić, M., Dunkić, V. and Radonić, A., 2002. Composition and antimicrobial activity of Tanacetum parthenium L.essential oil. Journal of Ethnopharmacoloy, 74(1): 123-134. DOI: 10.1002/ptr.1290.##Boskovic, M., Djordjevic, J., Ivanovic, J., Janjic, J., Zdravkovic, N., Glisic, M., Glamoclija, N., Baltic, B., Djordjevic, V. and Baltic, M., 2017. Inhibition ofSalmonellaby thyme essential oil and its effect onmicrobiological and sensory properties of minced pork meat packaged undervacuum and modified atmosphere. International Journal of Food Microbiology, 258: 58-67. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2017. 07.011.##Burt, S., 2004. Essential oils: their antibacterial properties and potentialapplications in foods: a review. International Journal of Food Microbiology, 94 (3): 223-253. DOI: 10.1016/ j.ijfoodmicro.2004.03.022##Cai, L., Cao, A., Li, T., Wu, X., Xu, Y. and Li, J., 2015. Effect of the fumigating with essential oils on the microbiological characteristics and quality changes of refrigerated turbot Scophthalmus maximus fillets. Food Bioprocess Technology, 8: 844-853. DOI: 10.1007/s11947-014-1453-0##Ellouze, I., Abderrabba, M., Sabaou, N., Mathieu, F., Lebrihi, A. and Bouajila, J., 2012. Season’s variation impact on Citrus aurantium leaves essential oil: chemical composition and biological activities. Journal Food Science, 77(9): 173-180. DOI: 10.1111/ j.1750-3841.2012.02846.x ##Etemadi, H., Rezaei, M. and Abediyan, A., 2008. Anti-bacterial and antioxidant potential of extracts of rosemary (Rosmarinus officinalis) on the shelf-life of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal Food Science, 5: 67-77.## ##Fabry, W., Hames, E. and Locatell, J., 2007. Antimicrobial activities of methanol extracts of Matricariachamomilla, depending on location and seasonal variation. Food Chemical, 100: 559-564.##Fan, W., Chi, Y. and Zhang, S., 2008. The use of a tea polyphenol dip to extend the shelf life of silver carp (Hypophthalmicthys molitrix) during storage in ice. Food Chemistry, 108:148–153. DOI: org/10.1016/j.foodchem.2007.10.057##Fan, W., Sun, J., Chen, Y., Qiu, J., Zhang, Y., Chi, Y., 2009. Effects of chitosan coating on quality and shelf-life of silver carp during frozen storage. Food Chemistry, 115: 66–70. DOI: org/10.1016/j.foodchem.2008.11.060##Fournomiti, M., Kimbaris, A., Mantzourani, I., Plessas, S., Theodoridou, I., Papaemmanouil, V., Kapsiotis, I., Panopoulou, M., Stavropoulou, E., Bezirtzoglou, E.E. and Alexopoulos, A., 2015. Antimicrobial activity of essential oils of cultivated oregano (Origanum vulgare), sage (Salvia officinalis), and thyme (Thymus vulgaris) against clinical isolates of Escherichia coli, Klebsiella oxytoca, and Klebsiella pneumoniae. Microbial Ecology in Health Disease, 26: 23289. DOI: 10.3402/ mehd.v26.23289.##Grau, F.H. and Vanderlinde, P.B., 1990a. Growth of Listeria monocytogenes vacuum packaged beef. Journal of Food Protection, 53:739–741. DOI: 10.4315/0362-028X-53.9.739##Grau F.H. and Vanderlinde, P.B., 1990b. Growth of Listeria monocytogenes on vacuum packaged beef. Journal of Food Protection, 53(9):739–741. DOI: 10.4315/0362-028X-53.9.739##Hashemi, M., Ehsani, A., Jazani, N.H., Aliakbarlu, J. and Mahmoudi, R., 2013. Chemical composition and in vitro antibacterial activity of essential oil and methanol extract of Echinophora platyloba DC against some of food borne pathogenic bacteria. Veterinary Research Forum, 4 (2): 123-127.##Hwanhlem, N., Jaffres, E., Dousset, X., Pillot, G., Choiset, Y., Haertle, T., Kittikun, A. and Ghobert, J.M., 2015. Application of a nisin Zproducing Lactococcus lactis subsp. lactis KT2W2L isolated from brackish water for biopreservation in cooked, peeled and ionized tropical shrimps during storage at 8°C under modified atmosphere packaging. European Food Research and Technology, 240 (6): 1259–1269. DOI: 10.1007/s00217-015-2428-8##Kirbaslar, F.G., Tavman, A., Dulger, B. and Turker, G., 2009. Antimicrobial activity of Turkish Citrus peel oils. Pakistan Journalof Botany, 41: 3207–3212. DOI: abs/10.1002/ffj. 2730010409##Lakshmanan, R., Shakila, R.J. and Jeyasekaran, G., 2002. Changes in the halophilic amine forming bacterial flora during salt-drying of sardines (Sardinellla gibbosa). Food Research International, 35: 541–546. DOI: 10.1016/ S0963-9969(01)00154-5##Liu, Ch., Mou, J. and Su, Y., 2016. Behavior of Salmonella and Listeria monocytogenes in raw Yellowfin tuna during cold storage. Foods, 5:2-9. DOI:10.3390/ foods5010016.##Mahgoub, S.A., El-Mekkawy, R.M., El- Hack, M.E.A., El- Ghareeb, W.R., Suliman, G.M., Alowaimer, A.N. and Swelum, A.A., 2019. Inactivation of Listeria monocytogenes in ready‑to‑eat smoked turkey meat by combination with packaging atmosphere, oregano essential oil and cold temperature. AMB ٍExpress, 9:1-9. DOI: 10.1186/s13568-019-0775-8 ##Majnooni, M.B., Mansouri, K., Gholivand, M.B., Mostafaie, A., Mohammadi-Motlagh, H.R., Afnanzade, N.S., Abolghasemi, M.M. and Piriyaei, M., 2012. Chemical composition, cytotoxicity and antioxidant activities of the essential oil from the leaves of Citrus aurantium L. African Journal of Biothecnology, 11(2): 498-503. DOI: 10.5897/AJB11.1449##Meira, N.V.B., Holley, R.A., Bordina, K., deMacedo, R.E.F. and Luciano, F.B., 2017. Combination of essential oil compounds and phenol acids against Escherichia coli O157:H7 in vitro and in dry-fermented sausage production. International Journal of Food Microbiology, 260: 59-64. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2017. 08.010##Mileski, K., Dzamic, A., Ciric, A., Grujic, S., Ristic, M., Matevski V. and Marin, P., 2014. Radical scavenging and antimicrobial activity of essential oil and extracts of Echinophora sibthorpiana Guss from Macedonia. Archives of Biological Sciences, 66(1): 401-413. DOI: 10.2298/ABS1401401M##Palmer, A.S., Steward, J. and Fyfe, L. 2001. The potential application of plant essential oils as natural preservatives in soft cheese. Food Microbiology, 18: 463-470. DOI: 10.1006/fmic. 2001.0415##Raeisi, S., Sharifi-Rad, M., Young Quek, S., Shabanpour, B. and Sharifi-Rad, J., 2016. Evaluation of antioxidant and antimicrobial effects of shallot (Allium ascalonicum L.) fruit and ajwain (Trachyspermum ammi (L.) Sprague) seed extracts in semi-fried coated rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fillets for shelf-life extension. LWT - Food Science and Technology, 65: 112-121. DOI: 10.1016/j.lwt. 2015.07.064##Rodrigues, M.J., Ho, P., Lpez-Caballero, M.E., Vaz-Pires, P. and Nunes, M.L., 2003. Characterization an identification of microflora from soaked cod and respective salted raw materials. Food Microbiology, 20: 471–481. Doi: org/10.1016/S0740-0020 (02)00086-2 ##Rohbein, H. and Oehlenschlager, J., 2009. Fishery Products.Wiley-Blackwell Pub.477 P. DOI: SH335.5.Q35F58##Rojas-Grau, M.A., Tapia, M.S., Rodrıguez, F.J., Carmona, A.J., and Martin-Belloso, O., 2007. Alginate and gellanbased edible coatings as carriers of antibrowning. Food Hydrocolloids, 21: 118-27. DOI: 10.1016/j.foodhyd.2006.03. 001 ##Ross, T., Dalgaard, P. and Tienungoon, S., 2000. Predictive modelling of the growth and survival of Listeria in fishery products. International Journal of Food Microbiology, 62: 231–245. DOI: 10.1016/S0168-1605 (00)00340-8##Rozman, T. and Jersek, B., 2009. Antimicrobial activity of rosemary extracts (Rosmarinus officinalis L.) against different species of Listeria. Acta Agriculture Slovenica, 93 (1): 51–58. DOI: 10.2478/v10014-009-0007-z ##Sarrou, E., Chatzopoulou, P., Dimassi-Theriou, K. and Therios, I., 2013.Volatile constituents and antioxidant activity of peel, flowers and leaf oils of Citrus aurantium L. growing in Greece. Molecules Journal, 18: 10639-10647. DOI: org/10.3390/molecules180910639##Sobrino-Lopez, A. and Martin-Belloso, A., 2008. Use of nisin and other bacteriocins for preservation of dairy products. International Dairy Journal, 18: 329–343. DOI: 10.1016/ j.idairyj.2007.11.009##Sonbol, F., Ibrahim, S.M. and Mohamed, B.M., 1992. Antimicrobial activity of oil of bitter orange. Alexandria Journal of Pharmaceutical Science, 9: 107–109.##Sparkman, O.D., 2005. Identification of essential oil components by gaschromatography /quadrupole mass spectroscopy. Journal of the American Society for Mass Spectrometry, 16(11): 1902-1903. ##Tajkarimi, M.M., Ibrahim, S.A. and Cliver, D.O., 2010. Antimicrobial herb and spice compounds in food. Food Control, 21: 1199–1218. DOI: 10.1016/j.foodcont.2010.02.003##Tassou, C., Koutsoumanis, K. and Nychas, G.J.E., 2000. Inhibition of Salmonella entritidis and Staphylococcus aureus in nutrient broth by mintessential oil. International Journal of Food Research, 33: 273-380. DOI: 10.1016/S0963-9969 (00) 00047-8##Tauxe, R.V., 2002. Emerging foodborne pathogens. International Journal of Food Microbiology, 78: 3–41. DOI: 10.1016/S0168-1605(02)00232-5##Trabelsi, D., Ammar, A.H., Bouabdallah, F. and Zagrouba, F., 2014. Antioxidant and antimicrobial activities of essential oils and metabolic extracts of Tunisian Citrus aurantium L. Journal Environmental Science Toxicology and Food Technology, 8(5): 18-27.##Van Haute, S., Raes, K., Van der Meeren, P. and Sampers, I., 2016. The effect of cinnamon, oregano and thyme essentialoils in marinade on the microbial shelf life of fish andmeat products. Food Control, 68: 30-39. DOI: 10.1016/j.foodcont.2016.03.025##Vernam, A.H. and Evans, M.G., 1991. Foodborne Pathogens. Wolf Pub Lth., pp: 235-265.##Wei, A. and Shibamoto, T., 2010. Antioxidant/lipoxygenase inhibitory activities and chemical compositions of selected essential oils. Journal of Agriculturaland Food Chemistry, 58: 7218-7225. DOI: 10.1021/ jf101077s##Winkler, K., Wackers, F.L., Termorshuizen, A.J. and Lenteren, J.C., 2010. Assessing risks and benefits of floral supplements in conservation biological control. Bio-Control, 55: 719–727. DOI: 10.1007/s10526-010-9296-8##World Health Organization (WHO), 2002. WHO Traditional Medicine Strategy 2002–2005. World Health Organization Geneva.##Zaouali, Y., Bouzaine, T. and Boussaid, M., 2010. Essential oils composition in two Rosmarinus officinalis L. varieties and incidence for antimicrobial and antioxidant activities. Food and Chemical Toxicology, 48: 3144–3152. DOI: 10.1016/j.fct.2010.08.010##Zhou, G.H., Xu, X.L. and Liu, Y., 2010. Preservation technologies for fresh meat: A review. Meat Science, 86: 119–128. DOI: 10.1016/j.meatsci.2010.04.033 ##

مقایسه اثرسنجی محلول پرفیش با مالاشیت سبز و فرمالین در کنترل آلودگی قارچی تخم ماهی قزل آلای رنگین کمان در مراحل مختلف تفریخ Comparison of perfish solution efficiency with malachite green and formalin on fungal contamination control of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) eggs in incubation stage 1 1 این پژوهش در پاییز و زمستان سال 1395 در مرکز تحقیقات ژنتیک و اصلاح نژاد ماهیان سردآبی شهید مطهری یاسوج وابسته به مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور انجام گرفت. هدف انجام این مطالعه، تعیین کارایی محلول پرفیش در مهار و کاهش تلفات ناشی از آلودگی قارچی تخم‌های ماهی قزل‌‌آلای رنگین کمان در مراحل مختلف انکوباسیون، در مقایسه با مالاشیت سبز و فرمالین بود. به این منظور از تراف‌‌های کالیفرنیایی (ابعادcm70×35×20) با عمق cm20، ارتفاع آب cm10و دبی 4 تا 6 لیتر در دقیقه استفاده گردید. سپس تخم لقاح یافته ماهی قزل‌‌آلای رنگین کمان به تراف‌‌ها به تعداد 700 عدد در هر تراف انتقال یافت. در این بررسی 9 تیمار (پرفیش 15، 37، 75، 150، 300 میلی گرم در لیتر، مالاشیت 2میلی گرم در لیتر ، فرمالین 1000 میکرولیتر در لیتر، شاهد مثبت و منفی) با سه تکرار مورد آزمایش قرار گرفتند. نتایج بدست آمده حاکی از آن بود که تیمار مالاشیت سبز، فرمالین و پرفیش 75 میلی‌‌گرم در لیتر به ترتیب با 94/1 ± 38/69، 05/8± 99/64 و 72/4 ± 76/63 دارای بالاترین درصد چشم‌‌زدگی در بین تیمارهای آزمایشی بودند. همچنین میزان تخم‌‌گشایی در تیمار پرفیش 75 میلی‌‌گرم در لیتر با میانگین 6/0 ± 80/95 دارای بیشترین مقدار بود، این در حالی است که این میزان با نتایج بدست آمده از درصد تخم‌‌گشایی تیمارهای پرفیش 37 میلی‌‌گرم در لیتر (18/3±8/80)، شاهد مثبت (8/2 ± 66/90) و منفی (78/1 ± 39/91) دارای اختلاف معنی‌‌دار می باشد. کمترین میزان ناهنجاری (شامل نقص در اسکلت، کیسه زرده و ...) در لاروها نیز در تیمار فرمالین (15/1 ± 33/3) و بیشترین میزان ناهنجاری نیز در تیمار پرفیش 15 میلی‌‌گرم در لیتر (08/2 ± 33/5) مشاهده گردید ولی اختلاف معنی‌‌داری بین تیمارها وجود نداشت. مجموع نتایج حاصل از تحقیق حاضر حاکی از آن است که استفاده از پرفیش 75 میلی‌‌گرم در لیتر دارای مخاطرات و تلفات کمتری در مقایسه با مالاشیت سبز می‌‌باشد و می‌‌تواند به عنوان ترکیب جایگزین مناسب جهت مقابله با آلودگی‌‌های قارچی (ساپرولگنیا) تخم ماهی قزل‌‌آلای رنگین کمان عمل نماید. 2 This research was conducted in autumn and winter 2016 in Shahid Motahary Coldwater Fishes Genetic and Breeding Research Center. In this study, comparison of Perfish solution efficiency with malachite green and formalin on fungal contamination control of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) eggs in incubation stage was done. For this porpuse the California incubators (20 × 35 × 30 cm) with depth of 20 cm, the height of water on the egg, 10 cm and water flow rate 4 to 6 liters per minute were used. Then the number of 700 fertilized eggs transported to each incubator tray. In this study, 9 treatments (perfish 15, 37, 75, 150, 300 ppm; malachite 2ppm; formalin 1000ppm; positive control and negative control) were tested with 3 replications. The highest Percentage of Eyed eggs in treatment of green malachite, formalin and perfish 75 ppm were observed respectively with 69.38±1.94, 64.99±8.05 and 63.76±4.72. The highest of hatching rate were observed in treatment of perfish 75 ppm (95.8±.6). Treatments of formalin and perfish 15 were showed the lowest (3.33±1.15) and highest (5.33±2.08) of larva deformity respectively, without the Significant difference among the experimental treatments. Finally the results showed that the best and more effective dose of Perfish was 75ppm in 30 min. furthermore with involving all aspects Perfish solution is a suitable new compound for the prevention of fungal contamination during the incubation period of Rainbow trout eyed eggs. 177 186 2018/12/32018/08/52019/01/132019/03/282019/04/222019/04/292019/04/112019/05/142018/06/202019/03/112019/01/292019/05/52019/04/202019/01/82019/02/162018/10/7 1397/7/15 2019/07/202019/07/212019/07/282019/07/232019/05/192019/07/272019/07/272019/07/282019/07/272019/07/282019/09/82019/07/302019/09/82019/07/172019/08/182019/07/17 1398/4/26 سید عبدالحمید حسینی S.A. Hosseini مرکز تحقیقات ژنتیک و اصلاح نژاد ماهیان سردآبی شهید مطهری یاسوج ایران hoseiniabdolhamid@gmail.com سید محمدجلیل ذریه زهرا M.J. Zorriehzahra مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران zorrieh@yahoo.com ابوالفضل سپهداری A. Sepahdari مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران asepahdari@yahoo.com محمدمیثم صلاحی M.M. Salahi مرکز تحقیقات ژنتیک و اصلاح نژاد ماهیان سردآبی شهید مطهری یاسوج ایران mmsalahi.a@gmail.com اسماعیل کاظمی E. Kazemi مرکز تحقیقات ژنتیک و اصلاح نژاد ماهیان سردآبی شهید مطهری یاسوج ایران esmaeil.kazemi.1986@gmail.com Fungal contamination Rainbow trout Incubation period Perfish آلودگی قارچی قزل‌آلای رنگین کمان دوره انکوباسیون پرفیش ##ابطحی، ب. نظری، م. رسولی، ع و شفیع زاده، پ. 1383. مقایسه شاخص درمانی داروهای ضدقارچی فرمالین، سبزمالاشیت و پرمنگنات پتاسیم در تاس ماهی ایرانی. مجله پژوهش و سازندگی. شماره 67، صفحات 49-42.##جلالی، ب و میار، م. 1394. بیماریهای ماهیان قزل آلا و آزاد. انتشارات نوربخش، 256ص. ##کنیه، ف. زراعت پیشه، ف و حسن احمدی، ا. 1397. بررسی کارایی حذف آمونیاک از پساب مزارع پرورش قزل آلای رنگین کمان توسط زغال لیلکی، اسکلت مرجان و پشم فولاد. مجله علمی شیلات ایران. سال 27 شماره 6: صفحات 57-47. 10.22092/ISFJ.2019.118389: DOI##متفقی، ف. جوادی، ا و علامه، س.ک. 1396. بررسی وجود مالاشیت گرین در گوشت ماهیان پرورشی، قزل آلای رنگین کمان و کپور معمولی در مناطق شمال، جنوب، هراز و شهرکرد. مجله علمی شیلات ایران. سال 27 شماره 1: 138-131. 10.22092/ISFJ.2018.116454: DOI.##مرادی، ع.، شاهمرادی، م.، قائمی، ع.، تبرایی، ع.، شش پلی، م.، بازوری، م. و کوهساری، ه.، 1387. طیف اثر ضدباکتریایی پراستیک اسید (پرسیدین). مجله طبیب شرق، دوره 11 شماره 1، صفحات 48-39.##Arndt, C., Gaill, F. and Felbeck, H., 2001. Anaerobic sulfur metabolism in thiotrophic symbioses. Journal of Experimental Biology, 204, 741-750.##Atanasov, A., Rusenova, N., Staykov, Y., Nikolov, G., Pavlov, A., Stratev, D. and Raichev, E., 2011. Chemical surface disinfection of fungal type fish egg incubators. Agricultural science and technology, 3: 21-284.##Barnes, M.E., Ewing, D.E., Cordes, R.J. and Young, G.L., 1998. Observations on hydrogen peroxide control of Saprolegnia spp. during rainbow trout egg incubation. The Progressive Fish-Culturist, 60(1): 67-70. DOI: 10.1577/1548-8640.## ##Bly, J.E., Lowson, L.A., Dale, D.J., Szalai, A.J., Durborow, R.M. and Clem, L.W., 1992. Winter Saprolegniasis in channel catfish. Diseases of Aquatic Organisms,13: 155-164. DOI: 10.3354/dao013155.##EPA (United States Environmental Protection Agency), 1993. Hydrogen Peroxide and Peroxyacetic Acid U.S. Environmental Protection Agency. URL accessed on 11 November 2006.##Geffen, A.J. and Evans, J.P., 2000. Sperm traits and fertilization success of male and sexreversed female rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, 182: 61–72. DOI: 10.1016/S0044-8486(99)00248-3. ##Hussein, M.M.A. and Hatai, K., 2002. Pathogenicity of Saprolegnia species associated with outbreaks of salmonid saprolegniasis in Japan. Fisheries Science, 68: 1067–1072. DOI: 10.1046/j.1444-2906.2002.00533.x. ##Jolivet-Gougeon, A., Sauvager, F., Bonnaure-Mallet, M., Colwell, R.R. and Cormier, M., 2006. Virulence of viable but nonculturable S. Typhimurium LT2 after peracetic acid treatment. International Journal of Food Microbiology. 112: 147-152. DOI:10.1016/j.ijfoodmicro. ##Kitis, M., 2004. Disinfection of wastewater with peracetic acid: a review. Environment International, 30: 47–55. DOI: 10.1016/S0160-4120(03)00147-8.##Kjorsvik, E., Mangor-Jensen, A. and Holmefjord, I., 1990. Egg quality in fishes. Advances in Marine Biology, 26: 71–113. DOI: 10.1016/S0065-2881(08)60199-6.##Meyer, F.P., 1991. Aquaculture disease and health management. Journal of Animal Science, 69: 4201-4208.##Pottinger T.G. and Day J.G., 1999. A Saprolegnia parasitica challenge system for rainbow trout: assessment of pyceze as an anti-fungal agent for both fish and ova. Disease of Aquatic Organism, 36: 129–141. DOI: 10.3354/dao036129 .##Sharifpour, I., Kakoolaki, S., Mehrabi, M.R., Gheyasi, M. and Najjar Lashkari, S., 2016. Evaluation of the effects of different concentrations of neutral anolyte on fungal infected eggs in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in comparison with green malachite. Iranian Journal Fisheries Sciences, 15(1): 91-99.##Stampi, S., De Luca, G. and Zanetti, F., 2001. Evaluation of the efficiency of peracetic acid in the disinfection of sewage effluents. Journal of Applied Microbiology, 91: 833–838. DOI:10.1046/j.1365-2672.2001.01451.x. ##Straus, D.L., Meinelt, T., Farmer, B.D., Mitchell, A.J., 2012. Peracetic acid is effective for controlling fungus on channel catfish eggs. Journal of Fish Diseases, 35: 505–511. DOI: 10.1111/j.1365-761.2012.01383.x.##Swaef, E., den Broeck, W., Dierckens, K. and Decostere, A., 2015. Disinfection of teleost eggs: a review. Reviews in Aquaculture, 7: 1–21. DOI: 10.1111/raq.12096.##Treasurer, J.W., Cochrane, E. and Grant, A., 2005. Surface disinfection of cod Gadus morhua and haddock Melanogrammus aeglefinus eggs with bronopol. Aquaculture, 250: 27–35. DOI: 10.1016/j.##Zawada, A., Polechoñski, R. and Bronowska, A., 2014. Iodine disinfection of sea trout, Salmo trutta (L.), eggs and the effect on egg surfaces. Archives of Polish Fisheries, 22: 121-126. DOI: 10.2478/aopf-2014-0011. ## ##

رفتار تغذیه ای لارو ماهی فلاور (Blood Parrot × Texas Cichlid) با تغذیه از Ceriodaphnia quadrangula و ناپلیوس Artemia franciscana در شرایط روشنایی و تاریکی Larval feeding behavior of Flower fish larva (Blood Parrot × Texas Cichlid) fed Ceriodaphnia quadrangula and Artemia franciscana nauplii in light and dark conditions 1 1 استفاده از غذاهای پلانکتونی بخصوص زئوپلانکتون نقش مهمی در دوران آغازین تغذیه لاروی دارد. یکی از مهم­ترین روش­ها در ارزیابی عملکرد تغذیه­ای لاروها، اندازه گیری میزان بلع است. در این مطالعه  لاروهای 20 و 40 روزه ماهی فلاور (بترتیب 6 و 18 میلی گرم وزن خشک) با سه طعمه زنده زئوپلانکتونی شامل Ceriodaphnia quadrangula، ناپلیوس Artemia franciscana و ترکیبی از مخلوط برابر (با نسبت 1:1 از نظر تعداد) در سه تراکم 2، 5 و10 طعمه در هر میلی‌لیتر در شرایط تاریکی و روشنایی تغذیه شدند. نتایج نشان داد نرخ بلع C. quadrangula در تراکم 2، 5 و 10 طعمه در میلی‌لیتر برای لاروهای 20 روزه فلاور بترتیب 05/37، 68/11 و 13/16 در شرایط روشنایی و 82/83، 73/18 و 26/22 طعمه بر ساعت به ازای هر لارو در شرایط تاریکی است در حالیکه برای لاروهای 40 روزه بترتیب 92/17، 76/60 و 62/23 در شرایط روشنایی و 79/29، 35/58 و 23/37 طعمه بر ساعت در شرایط تاریکی بدست آمد. از سوی دیگر، نرخ بلع ناپلیوس A. franciscana برای لاروهای20 روزه فلاور 2/139، 13/158 و 200 در شرایط روشنایی و 72/36، 7/53 و 81/192 طعمه برساعت در شرایط تاریکی، در حالیکه در لاروهای 40 روزه 79/117، 22/181 و 241 در روشنایی و 17/125، 4/89 و 26/128 طعمه بر ساعت بدست آمد. نتایج نرخ بلع طعمه مخلوط در لارو 20 روزه 35/40، 51/41 و 75/41  در روشنایی و 98/56، 72/25 و 93/18 طعمه بر ساعت در شرایط تاریکی بود در حالیکه در لارو 40 روزه بترتیب 3/143، 57/183 و 84/180 در روشنایی و 15/112، 25/181 و 29/205 طعمه بر ساعت بدست آمد. با افزایش تراکم و افزایش سن لاروها میزان بلع افزایش یافت. نرخ بلع ویژه C. quadrangula، ناپلیوس A. franciscana و مخلوط برابر آنها در لاروهای20 روزه بترتیب 4/5-5/2، 23/2-54/0 و 12/2-87/0 درصد وزنی در ساعت و در لارو 40 روزه 27/5-37/1، 88/0-34/0 و 85/1-7/0 درصد وزنی در ساعت بود. شاخص  انتخاب (ٍElectivity index, E) برای طعمه مخلوط با افزایش سن لاروها تمایل کمتر به مصرف ناپلیوس آرتمیا دارد. بر اساس رفتارتغذیه­ای لارو ماهی فلاور قابلیت پرورش را با هر دو طعمه زنده دارد. اما ناپلیوس آرتمیا عملکرد تغذیه­ای مناسب‌تری داشت. 2 Use of planktonic diets especially zooplankton are important in first larval feeding period in fishes. One of the methods for evaluation of larval feeding performance is measuring ingestion rate. In this study, three different live foods, Ceriodaphnia quadrangula, Artemia franciscana nauplii, and combination (1:1 in number) of C. quadrangula and nauplii A. franciscana in light and dark conditions were offered to Flower fish larvae viz 20 (6 mg dry weight) and 40 days (d) (18 mg dry weight) after haching at different prey densities of 2, 5 and 10 ind./ml. Results showed that 20-d larvae of Flower consumed C. quadrangula at a rate of 11.68–43.82 ind./h, A. franciscana nauplii at 36.72–200 ind./h, and mixture of C. quadrangula and A. franciscana nauplii at 18–57 ind./h. Results showed that ingestion C. quadrangula at density of 2, 5 and 10 in./ml for 20-days larvae were 37.05, 11.68 and 16.13 at light, respectively,  and 83.82, 18.73 and 22.26 prey/h/larvae at dark; while for 40-days larvae were 17.92, 60.76 and 23.62 at light, respectively, and 29.79, 58.35 and 37.23 prey/h/larvae at dark. Correspondingly, ingestion of A. franciscana for 20-d  larvae were 139.2, 158.13 and 200  at light, and 36.72, 53.7 and 192.81 prey/h/larvae at dark, these amounts for 40-d larvae were 143.3, 183.57 and 180.84 at light, and 112.15, 181.25 and 205.29 prey/h/larvae at dark. The ingestion  rate increased with increasing age larvae and increasing prey density. The weight specific ingestion (WSI) of C. quadrangula, A. franciscana and its combination ranged 2.5-5.4, 0.54-2.23 and 0.87-2.12 % weight/h for 20-d larvae and 1.37-5.27, 0.34-0.88 and 0.70-1.85% weight/h  for 40-d larvae. The WSI decreased with increasing age larvae. The electivity indices (E) indicating lower tendency towards nauplii of A. franciscana consumption. Based on feeding behaviour, Flower fish larvae could be cultured with two live prey, but suitable feeding performance obtained with nauplii of A. franciscana. 187 197 2018/12/32018/08/52019/01/132019/03/282019/04/222019/04/292019/04/112019/05/142018/06/202019/03/112019/01/292019/05/52019/04/202019/01/82019/02/162018/10/72018/09/17 1397/6/26 2019/07/202019/07/212019/07/282019/07/232019/05/192019/07/272019/07/272019/07/282019/07/272019/07/282019/09/82019/07/302019/09/82019/07/172019/08/182019/07/172019/09/8 1398/6/17 امیدوار فرهادیان O. Farhadian دانشگاه صنعتی اصفهان ایران omfarhad@cc.iut.ac.ir سجاد پهلوانی S. Pahlevani دانشگاه صنعتی اصفهان، دانشکده منابع طبیعی ایران sajjadpahlevani@yahoo.com نصرالله محبوبی صوفیانی N. Mahboobi Soofiani دانشگاه صنعتی اصفهان، دانشکده منابع طبیعی ایران soofiani@cc.iut.ac.ir Ingestion rate Ceriodaphnia quadrangula Artemia franciscana Flower fish میزان بلع Ceriodaphnia quadrangula ناپلیوسArtemia franciscana ماهی فلاور ##ارجبینی، م. 1390. آکواریوم و ماهیان زینتی نمادی از طبیعت زیر آب. انتشارات نقش مهر، تهران. 68 و 114ص.##حاجی میررحیمی، س. د.، دادگر، ش. 1395 . بررسی موانع و راهکارهای توسعه صنعت ماهیان زینتی در ایران » مورد مطالعه: استان مرکزی « . مجله علمی شیلات ایران. سال 25، شماره 3: 133-147. DOI: 10.22092/ISFJ.20170110265 ##محمدپور، ی.، شاپوری، م. ، سادات صادقی، م.، غلامی، ش. 1398. مقایسه اثر جیره غذایی بیومار و کرم خاکی بر شاخص های رشد و بازماندگی ماهی اسکار (Asteronotus ocellatus). مجله علمی شیلات ایران. سال بیست و هشت/ شماره 2:39-48. DOI: 10.22092/ISFJ2019.118907.##Alam, M.J., 1992. Moina micrura (Kurz) as a Live Substitute for Artemia sp. in Larval Rearing of Macrobrachium rosenbergii (De Man), Doctoral Thesis, Faculty of Fisheries and Marine Science, University Pertanian Malaysia, 214P. ## ##Chakrabarti, R. and Jana, B.B., 1990. Food preferences and selection by common carp Cyprinus carpio fry underdifferent feeding regimes. Journal of Applied Ichthyology, 6: 223-230. DOI: 10.1111/j.1439-0426.1990. tb00582.x.##Chu, K.H. and Shing, C.K., 1986. Feeding behavior of the shrimp, Metapenaeus ensis, on Artemia nauplii. Aquaculture, 58: 175–184. DOI: 10.1016/0044-8486(86)90083-9.##Cunha, I. and Plansa, M., 1999. Optimal prey size for early turbot larvae (Scophthalmus maximus) based on mouth and ingested prey size. Aquaculture, 175: 103-110. DOI:10.1016/S0044-8486(99)00040-X ##Downing, G. and Litvak, M.K., 1999. The effect of photoperiod, tank color and light intensity on growth of larval haddock. Aquaculture International, 7: 369-382. DOI: 10.1023/A:1009204909992.##Farhadian, O., Yusoff, F.M. and Arshad, A., 2007. Ingestion rate of postlarvae penaeus monodon fed Apocyclups dengizicus and Artemia, Aquaculture, 269: 265-270. DOI:10.1016/j.aquaculture.2007.05.034##Farhadian, O., Kharamannia, R., Mahboobi Soofiani, N. and Ebrahimi Dorche, E., 2014. Larval feeding behavior of Angel fish Pterophyllum scalare (Cichlidae) fed copepod Eucyclops serrulatus and cladoceran Ceriodaphnia quadrangula. Aquaculture Research, 45: 1212-1223. DOI: 10.1111/are.12065.##Flores-Burgos, J., Sarma, S.S.S. and Nandini, S., 2003. Population growth of zooplankton (Rotifers and Cladocerans) fed Chrorella vulgaris and Senedesmus acutus in different proportions. Acta Hydrochim. Hydrobiologia, 31: 240-248. DOI: 10.1002/ aheh.200300488##Garcia-Ulloa, M. and Gomez-Romero, H.J., 2005. Growth of angel fish Pterophyllum scalare juveniles fed inert diets. Advances En Investigation Agropecuaria, 9: 49-60. DOI. 10.1007/s40995-017-0318-6##Hunt von Herbing, I. and Gallager, S.M., 2000. Foraging behavior in early Atlantic cod larvae (Gadus morhua) feeding on a protozoan (Balanion sp.) and a copepod nauplius (Pseudodiaptomus sp.). Marine Biology, 136: 591-602. DOI: 10.1007/ s002270050719##Lim, L. C., Dhert, P. and Sorgeloos, P., 2003. Resent developments in the application of live feeds in the freshwater ornamental fish culture. Aquaculture, 227: 319-331. DOI: 10.1016/S0044-8486(03) 00512-X##Schiopu, D., George, S.B. and Castell, J., 2006. Ingestion rates and dietary lipids affect growth and fatty acid composition of Dendraster excentricus larvae. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 328: 47-75. DOI: 10.1016/j.jembe.2005. 06.019##Yufera, M. and Darias, M.G., 2007. The exogenous feeding in marine fish larvae. Aquaculture 268: 53-63. DOI: 10.1016/ j.aquaculture##Yufera, M., Pascual, E., Polo, A. and Sarasquete, M.C., 1993. Effect of starvation on the feeding ability of gilthead sea bream (Sparus aurata L.) larvae at first feeding. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 169: 259-272. DOI: 10.1016/0022-0981(93)90196-U##Zar, J.H., 1984. Bioststistical analysis, 2nd edition. Prentice Hall Inc., Englewood Cliffs, New York, USA. 718P. DOI: 10.4236/ijcm.## ##

اثرات تغذیه با منابع مختلف مکمل روی بر تغییرات آنزیمی و یونی پلاسمای سمینال مولدین قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) Effects of feeding with different sources of zinc supplements on seminal plasma enzymatic and ionic changes in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) broodstock males 1 1 در پژوهش حاضر اثر تغذیه با منابع مختلف روی شامل فرم معدنی، آلی و نانو بر تغییرات آنزیمی و یونی پلاسمای سمینال مولدین قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان بررسی گردید. تعداد 108 قطعه مولد نر با میانگین وزنی 45/93±2138 گرم، طی 16 هفته در قالب چهار تیمار با افزودن 40 میلی‌‌گرم در کیلوگرم روی معدنی (تیمار یک)، نانو ذره روی (تیمار دو)، روی آلی (تیمار سه) به جیره و در تیمار کنترل بدون افزودن مکمل روی به جیره تغذیه شدند. بر اساس یافته‌‌های مربوط به تأثیر جیره‌‌های مختلف بر آنزیم‌‌های پلاسمای سمینال، کمترین میزان آنزیم ALT، AST، LDH و SOD در تیمار تغذیه شده با مکمل معدنی روی بدست آمد که با تیمار کنترل که دارای بیشترین مقدار بود، اختلاف معنی‌‌داری داشت (05/0>p). اختلاف معنی‌‌داری در میزان آنزیم ALP بین تیمارهای مختلف مشاهده نگردید (05/0<p). میزان آنزیم‌‌های کاتالاز و گلوتاتیون پراکسیداز بین تیمارهای مختلف اختلاف معنی‌‌داری نداشت (05/0<p). در مورد تأثیر مکمل‌‌های مختلف روی بر ترکیبات غیر آلی پلاسمای سمینال نیز مشاهده شد که یون فسفر تحت تأثیر مکمل‌‌های مختلف روی قرار نگرفت (05/0<p) اما مقایسه میانگین مقادیر منیزیم (mg/dl 37/0±63/2) و کلسیم (mg/dl 15/0±23/7) نشان‌‌دهنده افزایش معنی‌‌دار مقادیر این یون‌‌ها در تیمار تغذیه شده با مکمل معدنی روی، نسبت به تیمار کنترل بود (05/0>p). در مجموع، با توجه به نقش کاهشی روی معدنی در مقادیر ترانس‌آمینازها و نقش افزایشی آن در مقادیر ترکیبات غیر‌‌آلی منیزیم و کلسیم در پلاسمای سمینال، این ریز مغذی ضروری می‌‌تواند به‌‌ عنوان کاندیدای مناسبی برای تحقیقات بیشتر در جهت بهبود کیفیت اسپرم مولدین نر قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان از طریق افزودن به جیره غذایی در نظر گرفته شود.   2 In the present study, the effects of feeding with different sources of zinc supplements including mineral, nanoparticulate, and organic forms on the enzymatic and ionic changes of seminal plasma in rainbow trout broodstocks were investigated. A total of 108 broodstock males with mean weight of 2138±93.45 g were fed during 16 weeks in four treatments with adding 40 mg. kg-1 of 1. Mineral zinc supplement, 2. Zinc nanoparticles supplement, 3. Organic zinc supplement, 4. Broodstocks fed with control diet with no adding of zinc supplement. According to the findings related to the effect of different rations on seminal plasma enzymes, the lowest levels of ALT, AST, LDH and SOD enzymes were recorded in fish fed with mineral zinc supplement. These values were significantly different compared to the control with the highest levels (p˂0.05). There was no significant difference in ALP value between different treatments (p>0.05). Catalase and glutathione peroxidase enzyme values were not significantly different between treatments (p>0.05). Regarding the effect of different zinc supplements on inorganic compounds of seminal plasma, it was observed that the phosphor ion was not affected by these supplements (p>0.05) but a comparison between magnesium and calcium mean values (2.63±0.37 mg/dl and 7.23±0.15 mg/dl, respectively) in different treatments indicated a significant increase of these ion values in fish fed with mineral zinc supplement compared to the control (p˂0.05). In conclusion, regarding the decreasing effect of mineral zinc on the transaminases values and its increasing effect on the inorganic compounds values of magnesium and calcium in seminal plasma, this essential micronutrient could be considered and further investigated as an appropriate dietary supplement for improving the sperm quality of rainbow trout male broodstock.   199 208 2018/12/32018/08/52019/01/132019/03/282019/04/222019/04/292019/04/112019/05/142018/06/202019/03/112019/01/292019/05/52019/04/202019/01/82019/02/162018/10/72018/09/172019/05/24 1398/3/3 2019/07/202019/07/212019/07/282019/07/232019/05/192019/07/272019/07/272019/07/282019/07/272019/07/282019/09/82019/07/302019/09/82019/07/172019/08/182019/07/172019/09/82019/08/11 1398/5/20 اسماعیل کاظمی E. Kazemi دانشگاه هرمزگان ایران esmaeil.kazemi.1986@gmail.com ایمان سوری نژاد I. Sourinejad دانشگاه هرمزگان ایران i_sourinezhad@yahoo.com علیرضا قائدی A.R. Ghaedi موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران alirezaghaedi@ifro.ir سید علی جوهری S.A. Johari دانشگاه کردستان ایران sajohari@gmail.com زهرا قاسمی Z. Ghasemi دانشگاه هرمزگان ایران zghasemi446@yahoo.com Rainbow trout broodstock Food ration Mineral zinc Seminal plasma enzymes مولد قزل آلای رنگین کمان جیره غذایی روی معدنی آنزیم های پلاسمای سمینال ##محمدی، ز. و رجبی اسلامی، ه. ۱۳۹۵. تاثیر مکمل معدنی نانوذره اکسید منگنز بر عملکرد رشد و یاخته های خونی بچه ماهی انگشت قد قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss Walbaum 1792). مجله علمی شیلات ایران، ۲۵ (۳): ۲۱۵-۱۹۹.##نظری، ک.، شمسایی مهرجان، م.، ایلا، ن.، شریف پور، ع. و کمالی، ا. ۱۳۹۶. اثرات سلنیوم آلی و معدنی بر عوامل رشد، پارامترهای خونی و ایمنی شناسی بچه ماهیان قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران، ۲۶ (۳): ۱۳۸-۱۲۹.##Agarwal, A., Gupta, S. and Sikka, S., 2006. The role of free radicals and antioxidants in reproduction. Current Opinion in Obstetrics and Gynecology, 18: 325-332. DOI: 10.1097/01. gco.0000193003.58158.4e.##Apines, M.J., Satoh, S., Kiron, V., Watanabe, T., Nasu, N. and Fujita, S., 2001. Bioavailability of amino acids chelated and glass embedded zinc to rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fingerlings. Aquaculture Nutrition, 7: 221-228. DOI: 10.1046/j.1365-2095.2001.00178.x.##Babson, A.L. and Babson, S.R., 1973. Kinetic colorimetric measurement of serum lactate dehydrogenase activity. Clinical Chemistry, 19: 766-769.##Bratz, K., Gölz, G., Riedel, C., Janczyk, P., Nöckler, K. and Alter, T., 2013. Inhibitory effect of high-dosage zinc oxide dietary supplementation on Campylobacter coli excretion in weaned piglets. Journal of Applied Microbiology, 115(5): 1194-1202. DOI: 10. 1111/ am.12307.##Burtis, C., Ashwood, E. and Bruns, D., 2012. Tietz Textbook of Clinical Chemistry and Molecular Diagnostics, 5th Edition ed. Elsevier.##Cocchia, N., Pasolini, M.P., Mancini, R., Petrazzuolo, O., Cristofaro, I., Rosapane, I., Sica, A., Tortora, G., Lorizio, R., Paraggio, G. and Mancini, A., 2011. Effect of sod (superoxide dismutase) protein supplementation in semen extenders on motility, viability, acrosome status and ERK (extracellular signal-regulated kinase) protein phosphorylation of chilled stallion spermatozoa. Theriogenology, 75: 1201-1210. DOI: 10.1016/j.theriogenology.##Ehrhardt, V., Appel, W. and Paschen, K., 1992. Evakuierung eines Xylidyl-Blau- Reagenz zur Bestimmung von Magnesium. Wiener Klinische Wochenschrift, 104: 5-11.## ##Gammanpila, M., Yakupitiyage, A. and Bart, A., 2007. Evaluation of the effects of dietary vitamin C, E and Zinc supplementation on reproductive performance of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Sri Lanka Journal of Aquatic Sciences, 12: 39-60. DOI: 10.4038/ sljas.v12i0.2213.##Goth, L., 1991. A simple method for determination of serum catalase activity and revision of reference range. Clinica Chimica Acta, 196(2-3): 143-151.##He, S. and Jenkins, K., 2004. Activation of sperm motility in striped bass via a CAMP-independent pathway. Theriogenology, 61: 1487-1498. DOI: 10.1016/j.theriogenology. 2003. 8.015.##Jiang, M., Wu, F., Huang, F., Wen, H., Liu, W., Tian, J., Yang, C. and Wang, W., 2016. Effects of dietary Zn on growth performance, antioxidant responses, and sperm motility of adult blunt snout bream, Megalobrama amblycephala. Aquaculture, 464: 121-128. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2016.06.025.##Khosrowbeygi, A. and Zarghami, N., 2007. Levels of oxidative stress biomarkers in seminal plasma and their relationship with seminal parameters. BMC Clinical Pathology, 7: 6. DOI: 10.1186/1472-6890-7-6.##Kind, P. and King, E., 1954. Estimation of plasma phosphatase by determination of hydrolysed phenol with amino-antipyrine. Journal of Clinical Pathology, 7: 322.##Kucukbay, Z., Yazlak, H., Sahin, N. and Tuzcu, M., 2006. Zinc picolinate supplementation decreases oxidative stress in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, 257: 465-469. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2006.03.005.##Lahnsteiner, F., Berger, B., Weismann, T. and Patzner, R.A., 1998. Evaluation of semen quality of the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) by sperm motility, seminal plasma parameters and spermatozoa metabolism. Aquaculture, 163(1-2): 163-181. DOI: 10.1016/ S0044-8486(98)00243-9.##Lin, S., Lin, X., Yang, Y., Li, F. and Luo, L., 2013. Comparison of chelated zinc and zinc sulfate as zinc sources for growth and immune response of shrimp (Litopenaeus vannamei). Aquaculture, 406-407: 79-84. DOI: 10.1016/ j.aquaculture.2013.04.026.##Maage, A., Julshamn, K. and Berge, G.E., 2001. Zinc gluconate and zinc sulphate as dietary zinc sources for Atlantic salmon. Aquaculture Nutrition, 7: 183-187. DOI: 10.1046/j.1365-2095.2001.00170.x.##Marklund, S. and Marklund, G., 1974. Involvement of the superoxide anion radical in the autoxidation of pyrogallol and a convenient assay for superoxide dismutase. European Journal of Biochemistry, 47: 469-474.##Morita, M., Fujinoki, M. and Okuno, M., 2005. K+-independent initiation of motility in chum salmon sperm treated with an organic alcohol, glycerol. Journal of Experimental Biology, 208: 4549-4556. DOI: 10.1242/jeb.01921.##NRC, 2011. Nutrient Requirement of Fish and Shrimp, National Research Council, Washington, DC, USA, 77.##Ogino, C. and GY, Y., 1978. Requirement of rainbow trout for dietary zinc. Bulletin of the Japanese Society for the Science of Fish, 44: 1015-1018.##Reitman, S. and Frankel, S., 1957. A colorimetric method for the determination of serum glutamic oxalacetic and glutamic pyruvic transminases. American Journal of Clinical Pathology, 28: 56-63.##Roca, J., Rodri´Guez, M.J., Gil, M.A., Carvajal, G., Garcia, E.M., Cuello, C., Vazquez, J.M. and Martinez, E.A., 2005. Survival and in vitro fertility of boar spermatozoa frozen in the presence of superoxide dismutase and/or catalase. Journal of Andrology, 26(1): 15-24.##Rurangwa, E., Kime, D.E., Ollevier, F. and Nash, J.P., 2004. The measurement of sperm motility and factors affecting sperm quality in cultured fish. Aquaculture, 234: 1-28. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2003.12.006.##Shahpar, Z. and Johari, S.A., 2018. Effects of Dietary Organic, Inorganic, and Nanoparticulate Zinc on Rainbow Trout, Oncorhynchus mykiss Larvae. Biological Trace Element Research, DOI: 10.1007/s12011-018-1563-z.##Swain, P.S., Rao, S.B.N., Rajendran, D., Dominic, G. and Selvaraju, S., 2016. Nano zinc, an alternative to conventional zinc as animal feed supplement: A review. Animal Nutrition, 2(3): 134-141. DOI: 10.1016/j.aninu. 2016.06.003.##Tabares, J., Rufz, T., Arboleda, L. and Olivera, M., 2007. Effect of some ions on sperm activation in Brycon henni (Eigenmann 1913). Acta Biológica Colombiana, 12(1): 87-98.##Tan, B. and Mai, K., 2001. Zinc methionine and zinc sulfate as sources of dietary zinc for juvenile abalone, Haliotis discus hannai Ino. Aquaculture, 192(1): 67-84. DOI: 10.1016/ S0044-8486(00)00435-X.##Thompson, E.D., Mayer, G.D., Walsh, P.J. and Hogstrand, C., 2002. Sexual maturation and reproductive zinc physiology in the female squirrelfish. The Journal of Experimental Biology, 205: 3367-3376.##Watanabe, T., Kiron, V. and Satoh, S., 1997. Trace minerals in fish nutrition. Aquaculture, 151(1-4): 185-207. DOI: 10.1016/S0044-8486(96)01503-7.##Yamaguchi, S., Miura, C., Kikuchi, K., Celino, F.T., Agusa, T., Tanabe, S. and Miura, T., 2009. Zinc is an essential trace element for spermatogenesis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 106(26): 10859-10864. DOI: 10.1073/ pnas.0900602106.##Zhao, C.Y., Tan, S.X., Xiao, X.Y., Qiu, X.S., Pan, J.Q. and Tang, Z.X., 2014. Effects of dietary zinc oxide nanoparticles on growth performance and antioxidative status in broilers. Biological Trace Element Research, 160(3): 361-367. DOI: 10.1007/s12011-014-0052-2. ## ##

یافته علمی: مطالعه تنوع، تراکم و غلظت فیتوپلانکتونی در تنش تابستانی پارامترهای زیست‌محیطی مطالعه موردی: تالاب بین‌المللی گمیشان) Study of diversity, density and phytoplankton concentration in summer stress of environmental parameters (Case Study: Gomishan international wetland) 1 1 تالاب بین‌المللی گمیشان در جنوب شرقی دریای‌خزر قرار دارد و متأثر از اقلیم دریای‌خزر و آب ‌و‌ هوای خشک و نیمه‌بیابانی دشت ترکمن‌صحرا می‌باشد. به دلیل ورود رسوبات حمل شده توسط رودخانه گرگان‌رود همراه با جریانات آب دریای‌خزر که به سمت تالاب حرکت دارد، جهت جریان آب تالاب تا حدود تقریباً ۱۳ کیلومتری از جنوب به شمال و بعد از آن از شمال به جنوب می‌باشد. اطلاعات کمی در مورد این منطقه وجود دارد، انتظار می‌رود که تعداد جلبک‌ بالای 15000 سلول نشان‌دهنده احتمالی شکوفایی فیتوپلانکتونی در آب باشد که ممکن است اثرات زیبایی‌شناسی یا بهداشتی رخ دهد. 2 In this study, relationship between summer dynamics of chlorophyll a, nutrient, temperature, pH, salinity, dissolved oxygen, phytoplankton diversity and density are investigated in Gomishan wetland. Based on results, 5 branches of phytoplankton (13 genus and 15 species) has identified in summer. Cyanophyta and Bacillariophyta have the most phytoplankton diversity and Chlorophyta and Cyanophyta have the most cell density. At 4, 5 and 6 stations under the influence of agricultural drainage, urban and industrial wastewaters, the blooming of Cyanobacteria and Chlorophyta has occurred. The eutrophic level obtained eutrophic (mild) and hypereutrophic at these stations. Pearson correlation result shows that log Chla is significant with salinity at the level of p <0.05 and is significant with water temperature and orthophosphate at the level of p <0.01. According to the results, limited exchange of the Caspian Sea water has an effective role on environmental stress of the area that includes increased nutrient concentrations, temperature, salinity, concentration and density of the algal harmful species. To preventing harmful algal blooms, wastewater treatment from the primary pollution sources and using of aerobic stabilization ponds in the presence of resistant microalgae including chlorella, chlamydomonas and chroococcus is suggested. 209 215 2018/12/32018/08/52019/01/132019/03/282019/04/222019/04/292019/04/112019/05/142018/06/202019/03/112019/01/292019/05/52019/04/202019/01/82019/02/162018/10/72018/09/172019/05/242018/09/22 1397/6/31 2019/07/202019/07/212019/07/282019/07/232019/05/192019/07/272019/07/272019/07/282019/07/272019/07/282019/09/82019/07/302019/09/82019/07/172019/08/182019/07/172019/09/82019/08/112019/07/20 1398/4/29 سپیده عمرانی S. Omrani دانشگاه آزاد تنکابن ایران omsepideh@yahoo.com وحید خیرابادی V. Kheyrabadi اداره کل محیط زیست گلستان ایران khierabadi@yahoo.com اکرم علی اکبریان قناتی A. Ali Akbarian Ghanati 1- دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران ایران akbarian.akram@yahoo.com Environmental stresses Gomishan wetland Phytoplankton diversity and density Nutrients تالاب گمیشان تنش‌های زیست‌محیطی تنوع و تراکم فیتوپلانکتون عناصر مغذی ##رمضان‌نژاد قادی، ر.، 1388. اهمیت اکولوژیک و اقتصادی اوگلناها. وبلاگ جلبک‌شناسی. ##عمرانی، س.، 1395. اندازه‌گیری محتوای عصاره رنگدانه‌ کلروفیل (a،b،c) و همبستگی پارامترهای هیدرولوژیکی در تابستان (مطالعه موردی: تالاب بین‌المللی گمیشان). مجله علمی شیلات ایران. 25 (5): 171-179.##گزارش برنامه مدیریت زیست‌بومی تالاب‌های استان گلستان.، 1396. تأثیرات احداث کانال جدید آبرسان سایت پرورش میگو بر روند هیدرولوژیک پهنه آبی نیمه شمالی تالاب بین‌المللی گمیشان با ‌استفاده ‌از تصاویر ماهواره‌ای سازمان ملی فضانوردی آمریکا"USGS - NASA . افکار نیوز، شناسه خبر :۶۴۴۵۶۳.##مزروعی، ب.، سادات‌نقوی، ن. و افشارزاده، س.، ۱۳۹۰. جداسازی سیانوباکتری‌های مقاوم به سیانور از پساب صنعتی. نخستین همایش ملی جلبک شناسی ایران، داشگاه شهید بهشتی، تهران. ص63-73.##AWWA, 2010. American Water Works Association .Algae: Source to treatment, manual of water supply practices, M57 First Edition.##Bazzuri M.E., Gabellone N.A. and Solari L.C. 2010. Seasonal variation in the phytoplankton during an intensive sampling period in a saline lowland river (Buenos Aires. Argentina). River Research and Applications, 26:766-778. DOI: 10.1002/rra.1294.##Bodeanu, N. and Ruta, G., 1998. Development of the planktonic algae in the Romanian Black Sea sector in 1981-1996. In: Reguera B.; Blanco J.; Fernández M.L. and Wyatt T (Ed). Harmful Algae. Xunta de Galicia and intergovernmental oceanographic commission of UNESCO, Paris, France, pp. 188-191.##Edler, L. and Hageltorn, M., 1990. Identification of the causative organism of a DSP-outbreak on the Swedish west coast. In: Graneli E.; Sundstrom B. and Anderson D. M (Ed). In Toxic marine phytoplankton, Elsevier, New York, pp. 345-349. ##EPA, 2010. Ambient Water Quality Criteria for Dissolved Oxygen, Water Clarity and Chlorophyll a for the Chesapeake Bay and its Tidal Tributaries: Technical Support for Criteria Assessment Protocols Addendum, EPA 903-R-10-002 CBP/TRS 301/10.##Gibson, G., Carlson, R., Simpson, J., Smeltzer, E., Gerritson, J., Chapra, S., Heiskary, S., Jones, J. and Kennedy, R., 2000. Nutrient criteria technical guidance manual: Lakes and reservoirs. U.S. Environmental Protection Agency, EPA- 822-B00-001.##Havens, K.E. and Walker, W.W., 2002. Development of a total phosphorus concentration goal in the TMDL Process for Lake Okeechobee, Florida (USA). Lake and Reservoir Management, 18(3): 227-238. DOI: 10.1080/07438140209354151.##Jeffrey, S.W. and Humphrey, G.F., 1975. New spectrophotometric equations for determining chlorophylls a, b, c1 and c2 in higher plants, algae and natural phytoplankton. Biochemie und Physiologie der Pflanzen, 167: 191-194. DOI: 10.1016/S0015-3796 (17)30778-3.##Kahru, M., 1997. Using satellites to monitor large-scale environmental change: A case study of cyanobacteria blooms in the Baltic Sea. In: Kahru M. and Brown C.W (Ed). Monitoring algal blooms: New techniques for detecting large-scale environmental change. Springer, Berlin, pp. 43-61.##Melbourne Water, 2005. Constructed Shallow Lake Systems, Design Guidelines for Developers, Version 2, November 2005. WSUD Engineering Procedures.## Moncheva, S. and Parr, B., 2010. Manual for phytoplankton sampling and analysis in the Black Sea. UNDP-GEF publication, FP7, No: 226592, 67P.##Naumann, E., 1929. The scope and chief problems of regional limnology. Internationale Revue der Gesamten Hydrobiologie und Hydrographie, 21: 423-444. DOI: 10.1002/iroh.19290220128. ## Ozyavas, A. and Khan, S.D., 2012. The driving forces behind the Caspian Sea mean water level oscillations. Environmental Earth Sciences, 65:1821-1830. DOI: 10.1007/s12665-011-1163-0.##Phillips, P., Pietiläinen, O.P., Carvalho, L., Solimini, A., Lyche, Solheim, A. and Cardoso, A.C., 2008. Chlorophyll-a-nutrient relationships of different lake types using a large European dataset. Aquatic Ecology, 42: 213-226. DOI: 10.1007/s10452-008-9180-0. ##Reed, R.H., Chudek, J.A., Foster R. and Stewart, W.D.P., 1984. Osmotic adjustment in cyanobacteria from hypersaline environments. Archives of Microbiology, 138(4): 333-337. DOI: 10.1007/BF00410900.##Schindler, D.W. and Hecky, R.E., 2009. Eutrophication: more nitrogen data needed. Science, 324 (5928):721-722. DOI: 10.1126/science.324_721b.##Van Vuuren, S.J., Taylor, J., Gerber, A. and van Ginkel, C., 2006. Easy identification of the most common freshwater algae: A Guide for identification of microscopic algae in South African Freshwater. Resource Quality Services (RQS), Vanderbijlpark, South Africa. 111-193.##WALPA, 2012. Washington State Lake Protection Association, Nostoca Algae Laboratory Report, In: Bruun K. Bainbridge Island, Washington, D.C. US. ## ##

یافته علمی: بررسی شکل شناختی لانه‌های خرچنگ Ocypode rotundata (Miers, 1882) در سواحل جنوب‌غربی جزیره قشم Morphological survey of the burrows of the ghost crab Ocypode rotundata (Miers, 1882) in the southwestern Qeshm Island 1 1 در پژوهش حاضر رفتار لانه‌سازی خرچنگ Ocypode rotundata به مدت یک‌سال از بهمن 1393 لغایت دی 1394 در سواحل جنوب‌غربی جزیره قشم مورد مطالعه قرار گرفت. در مجموع، 9 ساختار تشخیص داده شد که شامل لانه‌های I شکل، J شکل، y شکل با انشعاب کوتاه، y شکل، مارپیچی، مارپیچی با پیچیدگی زیاد، لنگر شکل، J شکل با دو انشعاب و y شکل با دو انشعاب بودند. با توجه به نتایج به دست آمده، لانه‌های I شکل، J شکل، y شکل و مارپیچی شکل در تمام فصول سال و لانه‌های مارپیچی با پیچیدگی زیاد تنها در بازه زمانی فصل بهار تا تابستان مشاهده شدند. پراکنش تمامی لانه‌ها در هر دو منطقه مورد مطالعه در ساحل دیده شد به طوری که با گذر از منطقه زیر خط ساحلی و فاصله گرفتن از دریا به سمت منطقه بالای خط ساحلی، قطر، طول و عمق لانه‌های مورد بررسی افزایش یافت و فراوانی آنها با کاهش در تعداد در بالای خط ساحلی مواجه شد. نتایج نشان داد که خرچنگ نر تمایل بیشتری به حفر لانه‌های J شکل، مارپیچی شکل و لانه‌های مارپیچی با پیچیدگی زیاد نسبت به خرچنگ ماده دارد. در مقابل، جنس ماده تمایل بیشتری برای حفر لانه‌های y شکل نسبت به جنس نر داشت. تمایل به ساخت لانه‌های I شکل برای هر دو جنس به نسبت برابر مشاهده شد. 2 In this study burrowing behavior of Ocypode rotundata investigated on southwest beaches of Qeshm Island, Persian Gulf, Iran, from February 2015 to January 2016. 9 shapes were recognized which included: single tube burrows, J-shaped, y-shaped with a short branch, y-shaped, spiral burrow, complex burrows, anchor-shaped, J-shaped with two branches, y-shaped with two branches. According to results, single tube burrows, J-shaped, y-shaped and spiral burrow observed in all of seasons whilst, complex burrows observed just during spring to summer. Distribution of burrows occurred in foreshore and backshore studied zone. With crossing of foreshore to backshore, diameter, length and depth of burrows increased while, abundance of burrows showed reduction in number. On the other hand, results showed that male crabs would like to dig J-shaped, spiral and complex burrows. Conversely, built y-shaped burrows in female crabs were more than male crabs. However, crabs of both sexes were found in single tube burrow with similar proportion in the present study. 217 221 2018/12/32018/08/52019/01/132019/03/282019/04/222019/04/292019/04/112019/05/142018/06/202019/03/112019/01/292019/05/52019/04/202019/01/82019/02/162018/10/72018/09/172019/05/242018/09/222019/01/2 1397/10/12 2019/07/202019/07/212019/07/282019/07/232019/05/192019/07/272019/07/272019/07/282019/07/272019/07/282019/09/82019/07/302019/09/82019/07/172019/08/182019/07/172019/09/82019/08/112019/07/202019/04/24 1398/2/4 مجتبی نادری M. Naderi دانشگاه پیام نور ایران Mojtabanaderi1364@yahoo.com فاطمه پیشه ورزاد F. Pishehvarzad دانشگاه تهران ایران fatemeh.pishehvarzad@gmail.com Burrowing Ocypode rotundata Carapace width Qeshm Island. لانه سازی Ocypode rotundata پهنای کاراپاس جزیره قشم. ##زاهدی، ف.، کامرانی، ا.، سوری نژاد، ا. و مومنی، م.، 1392. پویایی جمعیت خرچنگ روح Ocypode rotundata در سواحل جزر و مدی بندر جاسک در استان هرمزگان. پایان نامه، دانشگاه هرمزگان.##Al-Kholy, A.A., 1959. Larval stage of four Branchyuran crustacean (from the Red sea). Marine Biological Station, 10: 239-246.##Bertness, M.D., 1985. Fiddler crab regulation of Spartina alterniflora production on a New England salt marsh. Ecology, 66: 1042-1055. DOI: 10.2307/1940564.##Chakrabarti, A., 1981. Burrow patterns of Ocypode ceratophthalma (Pallas) and their environmental significance. Journal of Palaeontology, 55: 431–441.##Chan, B.K.K., Chan, K.K.Y. and Leung P.C.M., 2006. Burrow architecture of the ghost crab Ocypode ceratophthalma on a sandy shore in Hong Kong. Hydrobiologia, 560: 43-49. DOI: 10.1007/s10750-005-1088-2.##De, C., 2005. Biophysical model of intertidal beach crab burrowing: application and significance. Ichnos, 12: 11–29. DOI: 10.1080/10420940590914471.##Farrow, G.E., 1971. Back reef and lagoonal environment of Aldabra Atoll, distinguished by their crustacean burrows. In: Stoddart D. R, Yonge C.M., (eds) Regional Variation in Indian Ocean Coral Reefs. Proceedings of the Symposium of the Zoological Society of London: 455–500.##Hill, G.W. and Hunter R.E., 1973. Burrows of the ghost crab Ocypode quadrata (Fabricius) on the barrier islands, south-central Texas coast. Journal of Sedimentary Petrology, 43: 24–30. DOI: 10.1306/ 74D726CB- 2B21-11D7-8648000102C1865D.## Jackson, L.F., Smale, M.J. and Berry, P.F., 1991. Ghost crabs of the genus Ocypode (Decapoda, Brachyura, Ocypodidae) of the east coast of South Africa. Crustaceana, 61:280-286. DOI: 10.1163/156854091 X00164##Lim, S. and Heng, M.M.S., 2007. Mangrove micro-habitat influence on bioturbative activities and burrow morphology of the fiddler crab, Uca annulipes (H. Milne Edwards, 1837) (Decapoda, Ocypodidae). Crustaceana, 80: 31-45. DOI: 10.1163/156854007779696488.##Naderi, M., Hosseini, S.A., Hedayati, A.A., Pazooki, J., Zare, P. and Lastra M., 2018. Reproductive biology of Ghost crab Ocypode rotundata (Decapoda, Ocypodidae) of Qeshm Island (Persian Gulf). Crustaceana Journal, 91: 1039-1059. DOI: 10.1163/15685403-00003804.##Naderi, M., Zare, P., Lastra, M. and Pishehvarzad F., 2018. First record of ghost crab Ocypode sinensis (Dai Song and Yang, 1985) (Decapoda: Brachyura: Ocypodidae) from Qeshm Island, Persian Gulf, Iran. Cahiers de Biologie Marine, 59: 527-531. DOI: 10.21411/CBM.A. 51F168A3.##Naderloo, R., Ebrahimnezhad, S. and Sari, A.R., 2015. Annotated checklist of the decapod crustaceans of the Gulf of Oman, northwestern Indian Ocean. Zootaxa, 3: 397–412. DOI: 10.11646/zootaxa.4028.3.5##Yong, A.Y.P., Lim, S.S.L., Kaenphet, A. and Tantichodok O., 2011. Evidence of precision engineering in the excavation of Ocypode ceratophthalmus burrows on the west and east coasts of Thailand. Crustaceana, 84: 749–761. DOI: 10.1163/001121611X577882.## ##