1398 28 5 115 161

بررسی بیولوژی تکثیر مولدین و تکنیک پرورش لاروهای ماهی شانک زردباله (Acanthopagrus latus) در شرایط اسارت Investigation into reproductive biology and larval rearing technique of Acanthopagrus latus in captivity 1 1 در این تحقیق بیولوژی تکثیر مولدین و تکنیک پرورش لاروهای شانک زردباله در شرایط اسارت بررسی گردید. همچنین مراحل مختلف تکامل تخم و لاروها در یک دوره چهل و دو روزه شرح داده شد. قطر تخم‌های لقاح یافته بین 85/0-77/0 میلی‌متر بود. در دمای 20-19 درجه سانتیگراد تخم‌ها بعد از 32 ساعت تفریخ گردیدند. لاروهای تازه از تخم خارج گردیده، دارای میانگین وزنی 6/84 میکرو‌گرم و طول کل 87/1-76/1 میلی‌متر بودند. در پایان دوره چهل و دو روزه پرورش، لاروهای شانک زرد باله به وزن 5170 میکرو‌گرم و طول کل 6/12-1/12 میلی‌متر رسیدند. پر شدن کیسه شنای لاروها از هوا در طول هفته اول به خصوص از روز ششم بعد از تفریخ رخ داد. در این بررسی لاروها قادر به بلع و هضم روتیفر، ناپلی آرتمیا و خوراک فرموله استفاده شده بودند. در طول دوره پرورش تلفات بالایی حد فاصل بین روزهای بیستم تا سی­ام بعد از تفریخ مشاهده گردید. میانگین بازماندگی لاروها در انتهای این آزمایش 43 درصد بود. تکنیک مناسب بکارگرفته شده جهت تغذیه مولدین و لاروها در این تحقیق منجر شد که تخم‌ریزی مولدین، پرورش و متامورفیسم لاروها به بچه ماهی در شرایط اسارات با موفقیت انجام پذیرد. 2 In this study reproductive biology of brood stock and larvae rearing technique of Acanthopagrus latus was investigated. Also, different development stages of the egg and larvae in a period of 42 days are described. The diameters of fertilized eggs were 0.77-0.85 mm. The eggs hatched in 32 h between 19-21◦C. The newly hatched out larvae had mean body weight of 84.6 µg and total length of 1.76-1.87 mm. At the end of this study period, yellowfin seabream larval reached to 5170 µg mean body weight and standard length of 12.1-12.6 mm. Gulping the air and swim bladder inflation occurred during first week of larval life, especially as from the sixth day after hatching. In the current study larvae were able to ingest and digest rotifer, Artemia nauplii and microparticulate diet successfully. High mortality of larvae was observed between days 20 and 30 after hatching. Average survival rate of larvae was around %43, when the study finished at day 42 after hatching. The techniques used in this research to deal with yellowfin seabream brood stock and larvae were found to be suitable and led to successful spawning and larval’s metamorphosis into fry in captive condition. 1 12 2019/04/9 1398/1/20 2019/08/27 1398/6/5 بهزاد سروی B. Sarvi گروه شیلات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، تهران، ایران ایران bsarvi@ut.ac.ir غلامرضا رفیعی Gh.R. Rafiee گروه شیلات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، تهران، ایران ایران ghrafiee@ut.ac.ir جاسم غلفه مرمضی J. Ghofleh Marammazi پژوهشکده آبزی‌پروری جنوب کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران ایران jmarammazi06@gmail.com مجتبی ذبایح نجف آبادی M. Zabayeh Najafabadi پژوهشکده آبزی‌پروری جنوب کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران ایران zabayeh2005@gmail.com سید هادی سیدالحسینی S.H. SeyedAlhosseini دانشگاه آزاد اسلامی، واحد بندر عباس، بندرعباس، ایران ایران Hadihossini774@yahoo.com Egg Larval yellowfin seabream Development تخم لارو شانک زردباله تکامل ##بهمنی، م.، سروی غیاث آبادی، ا.، کاظمی، ر. ا. و سروی غیاث آبادی، ف.، 1388. مطالعه مراحل رشد و نمو جنینی ماهی شانک زردباله (Acanthopagrus latus). مجله علمی شیلات ایران، 18- (1):42-33. DOI: 10.22092/ISFJ.2009.115412 ##سروی، ب. و رفیعی، غ. ر.، 1394. معرفی یک گونه سریع الرشد و مناسب جهت پرورش در قفس در آب‌های خلیج فارس و دریای عمان. همایش ملی- منطقه‌ای آبزی‌پروری ماهیان دریایی: توسعه پایدار پرورش ماهی در قفس. 531-528.##سروی، ب.، متین‌فر، ع.، اسکندری، غ. و سِتی، ا. س.، 1388. بررسی امکان جایگزینی روتیفر با غذای میکروکپسوله در پرورش لارو ماهی شانک زردباله (Acanthopagrus latus). مجله علمی شیلات ایران، 18-(2): 66-53. DOI: 10.22092/ISFJ.2009.115445##سروی، ب.، متین‌فر، ع.، محمودزاده، ه.، اسکندری، غ. و عبدالله تبار، ی.، 1389. بررسی رفتار تغذیه‌ای لارو ماهی شانک زردباله (Acanthopagrus latus) در تغذیه با غذای زنده و خوراک فرموله. مجله علمی شیلات ایران، 19-(1): 64-51. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110283##سقاوی، ح.، 1381. گزارش نهایی تهیه و نگهداری مولدین شانک و صبیتی. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 64 صفحه.##عدلو، م. ن. و متین‌فر، ع.، 1390. تاثیر غنی سازی ناپلیوس آرتمیا فرانسیسکانا و ویتامین E بر میزان رشد، مرگ و میر و مقاومت در برابر استرس لارو شانک زردباله (Acanthopagrus latus). مجله علمی شیلات ایران، 20-(4): 106-97. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110027##Abrehouch, A., Idaomar, M., Ait, A. A., Nhhala, H. and Talbaoui, E. M., 2009. Broodstock feeding effects on spawning performances of Mediterranean red porgy (Pagrus pagrus) during two years. African Journal of Food Science, 8: 193-200##Moyano, F.J., Diaz, M., Alarcon, F.J. and Sarasquete, M.C., 1996. Characterization of digestive enzyme activity during larval development of gilthead seabream (Sparus aurata). Fish Physiology and Biochemistry, 15: 121-130. DOI: 10.1007/BF01875591##Nazemroaya, S., Yazdanparast, R., Nematollahi, M. A., Farahmand, H. and Mirzadeh, Q., 2015. Ontogenetic development of digestive enzymes in Sobaity sea bream sparidentex hasta larvae under culture condition. Aquaculture, 448: 545-551. DOI:10.1016/j.aquaculture. 2015.06.038.##Planas, M. and Cunha, I., 1999. Larviculture of marine fish: Problems and perspective. Aquaculture, 177: 171-190. DOI: 10.1016/ S0044-8486(99)00079-4##Ronnestad, I., Yufera, M., Ueberschar, B., Ribeiro, L., Saele, ø. and Boglione, C., 2013. Feeding behavior and digestive physiology in larval fish: current knowledge, and gaps and bottlenecks in research. Review in Aquaculture, 5: 59-98. DOI:10.1111/raq.12010##Sarvi, B., Matinfar, A., Mahmoudzadeh, H. and Eskandary, G. R., 2010. Replacing rotifers with a microparticle diet from first feeding in yellowfin seabream, Acanthopagrus latus, larvae. Aquaculture Research, 41:1614-1621. DOI:10.1111/j.1365-2109.2010.02492.x##Teng, S. K., El-Zahr, C., Al-Abdul-Elah, K. and Almatar, S., 1999. Pilot-Scale spawning and fry production of blue-fin pory, Sparidentex hasta, in Kuwait. Aquaculture, 178: 27-41. DOI:10.1016/S0044-8486(99)00039-3##Yufera, M. and Darias, M.J., 2007. The onset of exogenous feeding in marine fish larvae. Aquaculture, 268: 53-63. DOI:10.1016/ j.aquaculture.2007.04.050.## ##

تجزیه و تحلیل ساختار کامل ناحیه دی لوپ میتوکندریایی به همراه موتیف‌های تنظیمی در 4 گونه ماهیان خاویاری دریای خزر Analysis of complete structure of mitochondrial D-loop region with regulating motifs in four sturgeon species of the Caspian Sea 1 1 در این پژوهش قطعه کامل دی لوپ به همراه موتیف‌های تنظیمی آن در چهار گونه از ماهیان خاویاری دریای خزراز جنس Acipenser (چالباش A.Gueldenstadtii، قره برون A.persicus، شیپ A.nudiventris، اوزون برون A.stellatus) مورد بررسی قرار گرفت. استخراج  DNAبا استفاده از روش استات آمونیوم و واکنش PCR توسط یک جفت آغازگر اختصاصی جهت  تکثیر ناحیه کامل دی لوپ انجام گرفت. توالی‌یابی با استفاده از روش سنگر انجام شد. توالی تکراری مینی ستلایت در ناحیه بالادست دی لوپ و بعد از توالی کدکننده تی آر ان آ پرولین در همه گونه‌ها به جز شیپ مشاهده شد. نتایج نشان داد که واحدهای تکراری مرکزی 83-82 جفت بازی با 2/3 تکرار در چالباش و قره‌برون و 4/2 تکرار در اوزون‌برون سبب تنوع طول در این ناحیه شده است. علاوه بر این، توالی تکراری مرکزی، دو توالی تکراری دیگر با اندازه 39 و 43  جفت باز نیز در این بخش مشاهده شد  که این توالی ها نیز با 2/3  تکرار در این ناحیه وجود داشتند. طول ناحیه کنترلی در گونه‌های چالباش، قره‌برون، اوزون‌برون و شیپ به ترتیب برابر با 921، 870، 826 و 839 جفت باز بود. بررسی ساختار کلی ناحیه دی لوپ نشان داد که ناحیه کنترلی  ماهیان خاویاری شامل همولوگ‌هایی از بلوک‌های توالی محافظت شده CSB می‌باشد که واحد های تکراری مینی ستلایت در بالادست این بلوک‌ها واقع شده‌اند. حضور توالی‌های تکراری مینی ستلایت در ناحیه کنترلی دی لوپ اهمیت این نشانگرها را در برنامه‌های حفظ منابع ژنتیکی و غربالگری ماهیان خاویاری نشان می‌دهد. 2 In this study, analysis of complete structure of mitochondrial D-loop region with its regulatory motifs was investigated in four species of the Acipenser of Caspian sea (A. gueldenstadtii, A. persicus, A. stellatus, A. nudiventris). DNA extraction was done by acetate Ammonium method and PCR reaction were performed by a pair of specific primers for the complete amplification of D-loop along with sequences associated with tRNA-threonine and proline. Sequencing on amplified fragments were was done on both strands. Repetitive sequence of tandem repeat (mini-satellite) was observed in the upstream site of D-loop region after the sequence of tRNA proline in all species except the Ship. The results showed that the central repetitive units of 83-82 pairs with 3.2  repetitions in A. persicus  and A. gueldenstaedtii and 2.4  repetitions in A. stellatus were the reason for the length variation in this region. In addition to the central repeat sequences, there were two more repetitive sequences of 39 and 43 bp in this section, which were also present with 3.2  repetitions. But none of these repetitive sequences was observed in ship. The length of the control region in the A. gueldenstadtii, A. persicus, A. stellatus, A. nudiventris was 921, 870, 826 and 839 bp, respectively. The overall structure of the D-loop region showed that the sturgeon control region is similar to that of other fish, including the homologues of the CSB -conserved  blocks, which are located on the upstream of these blocks. According to the presence of tandem repeat (mini-satellite) in control D-loop region and also the importance of these markers in conservation programs for genetic resources it  may be possible to use them in screening of sturgeon species. 13 23 2019/04/92019/02/16 1397/11/27 2019/08/272019/08/4 1398/5/13 خدیجه دادخواه Kh. Dadkhah گروه علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران ایران Kdadkhah29@gmail.com قدرت رحیمی Gh. Rahimi گروه علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران ایران rahimimianji@yahoo.com ایوب فرهادی A. Farhadi گروه علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران ایران ayoub_farhadi@ymail.com Sequencing mitochondrial D-loop Sturgeon Tandom repeat Caspian sea توالی‌یابی دی لوپ میتوکندری ماهیان خاویاری مینی ستلایت دریای خزر ##Abhyankar, A., Park, H. B., Tonolo, G. and Luthman, H., 2009. Comparative sequence analysis of the non-protein-coding mitochondrial DNA of inbred rat strains. PloS one, 4(12), e8148. DOI: 10.1371/ journal.pone.0008148. ##Anderson, S., Bankier, A. T., Barrell, B. G., de Bruijn, M. H., Coulson, A. R., Drouin, J. and Schreier, P. H., 1981. Sequence and organization of the human mitochondrial genome. Nature, 290(5806), 457. ##Boscari, E., Barmintseva, A., Pujolar, J. M., Doukakis, P., Mugue, N. and Congiu, L., 2014. Species and hybrid identification of sturgeon caviar: a new molecular approach to detect illegal trade. Molecular ecology resources, 14(3), 489-498. DOI: 10.1111/ 1755-0998.12203##Broughton, R. E. and Dowling, T. E., 1997. Evolutionary dynamics of tandem repeats in the mitochondrial DNA control region of the minnow Cyprinella spiloptera. Molecular biology and evolution, 14(12), 1187-1196. DOI: 10.1093/oxfordjournals. molbev.a025728##Chakmehdouz Ghasemi, F., Pourkazemi, M., Yarmohammadi, M., Hasanzadeh Saber, M., Ghoroghi, A. and Azizzadeh Pormehr, L., 2014. Population genetic structure of Persian sturgeon (Acipenser persicus) between South Caspian Sea and Sefidrud River using DNA sequencing method. Iranian Scientific Fisheries Journal, 23(2), pp.11-20. DOI: 10.22092/ ISFJ.2014.103686##Çiftci, Y., Eroğlu, O. and Firidin, Ş., 2013. Heteroplasmy and length variation in the tRNApro-Dloop regions of three sturgeon species (A. stellatus, A. gueldenstaedtii and H. huso) from the Turkish coast of the Black Sea. Turkish Journal of Biochemistry/Turk Biyokimya Dergisi, 38(3). DOI: 10.5505/tjb.2013.70783 ##Congiu, L., Pujolar, J. M., Forlani, A., Cenadelli, S., Dupanloup, I., Barbisan, F. and Fontana, F., 2011. Managing polyploidy in ex situ conservation genetics: the case of the critically endangered Adriatic sturgeon (Acipenser naccarii). PloS one, 6(3), e18249. DOI: 10.1371/ journal.pone.0018249##Dugo, M. A., Kreiser, B. R., Ross, S. T., Slack, W. T., Heise, R. J. and Bowen, B. R., 2004. Conservation and management implications of fine‐scale genetic structure of Gulf sturgeon in the Pascagoula River, Mississippi. Journal of Applied Ichthyology, 20(4), 243-251. DOI: 10.1111/ j.1439-0426.2004.00572.x##Khoshkholgh, M., Pourkazemi, M., Nazari, S., and Azizzadeh Pormehr, L., 2011. Genetic diversity in the Persian sturgeon, Acipenser percicus, from the south Caspian Sea based on mitochondrial DNA sequences of the control region. Caspian Journal of Environmental Sciences, 9(1), 17-25.##Ludwig, A., May, B., Debus, L. and Jenneckens, I., 2000. Heteroplasmy in the mtDNA control region of sturgeon (Acipenser, Huso and Scaphirhynchus). Genetics, 156(4), 1933-1947##Lunt, D. H., Whipple, L. E. and Hyman, B. C., 1998. Mitochondrial DNA variable number tandem repeats (VNTRs): utility and problems in molecular ecology. Molecular Ecology, 7(11), 1441-1455. DOI: 10.1046/j.1365-294x.1998.00495.x##MCQuown, E.C., Sloss, B.L. and Sheehen, R.J., 2000.Microsatellite analysis of genetic variation in sturgeon .New primer sequences for Scaphyhinchus and Acipenser.transactions of the American fisheries society.129:1380.1388. ِDOI: 10.1577/1548-8659##Meyer, A., 1993. Evolution in mitochondrial and in fishes. Biochemistry and Molecular Biology of Fishes, 2. Molecular Biology Frontier.##Mugue, N. S., Barmintseva, A. E., Rastorguev, S. M., Mugue, V. N. and Barmintsev, V. A., 2008. Polymorphism of the mitochondrial DNA control region in eight sturgeon species and development of a system for DNA-based species identification. Russian Journal of Genetics, 44(7), 793-798.##Mugue, N., Barmintseva, A., Schepetov, D., Shalgimbayeva, G. and Isbekov, K., 2016. Complete mitochondrial genomes of the critically endangered Ship sturgeon Acipenser nudiventris from two seas. Mitochondrial DNA Part B, 1(1), 195-197. DOI: 10.1080/23802359.2016.1144103##Nielsen, E. E., Cariani, A., Mac Aoidh, E., Maes, G. E., Milano, I., Ogden, R. and Bekkevold, D., 2012. Gene-associated markers provide tools for tackling illegal fishing and false eco-certification. Nature communications, 3, 851. ##Ogden, R., Gharbi, K., Mugue, N., Martinsohn, J., Senn, H., Davey, J. W. and Sergeev, A., 2013. Sturgeon conservation genomics: SNP discovery and validation using RAD sequencing. Molecular Ecology, 22(11), 3112-3123. DOI: 10.1111/mec.12234 ##Pourkazemi, M., 2006. Caspian Sea sturgeon conservation and fisheries: past present and future. Journal of Applied Ichthyology, 22, 12-16. DOI: 10.1111/j.1439-0426.2007. 00923.x##Ravago, R. G., Monje, V. D. and Juinio-Meñez, M. A., 2002. Length and sequence variability in mitochondrial control region of the milkfish, Chanos chanos. Marine Biotechnology, 4(1), 40-50. DOI: 10.1007/ s10126-001-0076-4##Ray, D. A. and Densmore, L. D., 2003. Repetitive sequences in the crocodilian mitochondrial control region: Poly-A sequences and heteroplasmic tandem repeats. Molecular biology and evolution, 20(6), 1006-1013.##Raymakers, C. and Hoover, C., 2002. Acipenseriformes: CITES implementation from Range States to consumer countries. Journal of Applied Ichthyology, 18(4‐6), 629-638. DOI: 10.1046/j.1439-0426.2002. 00398.x##Rosenthal, H., Wei, Q., Chang, J., Bronzi, P. and Gessner, J., 2011. Conclusions and recommendations of the 6th International Symposium on Sturgeons (Wuhan, China, October 2009). Journal of Applied Ichthyology, 27(2), 157-161. DOI:10.1111/ j.1439-0426.2011.01755.x##Saitoh, K., Hayashizaki, K., Yokoyama, Y., Asahida, T., Toyohara, H. and Yamashita, Y., 2000. Complete nucleotide sequence of Japanese flounder (Paralichthys olivaceus) mitochondrial genome: structural properties and cue for resolving teleostean relationship. Journal of Heredity, 91(4), 271-278. DOI: 10.1093/ jhered/91.4.271##Satoh, T. P., Miya, M., Mabuchi, K., and Nishida, M., 2016. Structure and variation of the mitochondrial genome of fishes. Bmc Genomics, 17(1), 719. DOI: 10.1186/ s12864-016-3054-y##Shao, W., Wei, L., Li, L., Wang, H., Lin, Z. and Chen, J., 2014. Universal DNA primers for amplification complete mitochondrial genome for sturgeons. Conservation genetics resources, 6(2), pp.305-307. DOI 10.1007/s12686-013-0112-5##Shui, B. N., Han, Z. Q., Gao, T. X. and Miao, Z. Q., 2008. Tandemly repeated sequence in 5’end of mtDNA control region of Japanese Spanish mackerel Scomberomorus niphonius. African Journal of Biotechnology, 7(24).##Williot, P., Arlati, G., Chebanov, M., Gulyas, T., Kasimov, R., Kirschbaum, F. and Kim, Y., 2002. Status and management of Eurasian sturgeon: an overview. International Review of Hydrobiology: A Journal Covering all Aspects of Limnology and Marine Biology, 87(5‐6), 483-506. DOI: 10.1002/1522-2632(200211)87:5/6<483::AID-IROH483>3.0.CO;2-K## ##

بررسی اثرات پرورش میگو بر ساختار جمعیت بزرگ بی مهرگان کفزی در خور تیاب، هرمزگان، ایران Investigating on the effects of shrimp culturing on the structure of Macro-invertebrates Community in Tibab, Hormozgan, Iran 1 1 به منظور ارزیابی کیفی رسوبات از نظر آلودگی، نمونه‌برداری در حوضه آبهای تیاب به صورت فصلی به مدت یک سال از پاییز 94 لغایت تابستان 95 در چهار ایستگاه شامل ایستگاه اول در دهانه خور تیاب جنوبی، ایستگاه دوم بین تیاب جنوبی و شمالی متمایل به تیاب جنوبی، ایستگاه سوم واقع در شاخه فرعی کانال آبدهی وایستگاه چهارم در انتهای خور صورت گرفت. در طول این بررسی از مجموع 48 بار عملیات نمونه برداری تعداد 32025 فرد بنتوز و میانگین 661±696 فرد در متر مربع متعلق به 88 گونه شناسایی و شمارش شدند. بررسی مکانی تراکم ماکروبنتوزها که در چهار ایستگاه انجام شد نشان داد که ایستگاه چهار واقع در شاخه آبدهی خور با میانگین 1467 فرد در متر مربع دارای بیشترین تراکم و پس از آن ایستگاه سه واقع در شاخه فرعی کانال آبدهی، ایستگاه یک واقع در بین تیاب شمالی و تیاب جنوبی و ایستگاه دو، متمایل به تیاب جنوبی به ترتیب با تعداد 652، 393 و 223 فرد در متر مربع در رتبه‌های بعدی قرار دارند. بررسی شاخص‌ منحنی فراوانی-وزن (ABC) نشان داد که منحنی فراوانی در این شاخص در هر چهار ایستگاه در بالای منحنی وزن قرار دارد و شاخص w-Statistic  نیز با مقدار 33/4- در ایستگاه دو دارای کمترین مقدار است. نتایج حاصل از این تحقیق نشان داد که اگرچه در ایستگاه‌های دور از استخرهای پرورش میگو وضعیت تنوع بمراتب بیشتر از ایستگاه‌های نزدیک به پرورش میگوست، ولی مقادیر مربوط به تنوع زیستی نشان می‌دهد که تمام مناطق تحت تاثیر پساب‌های حاصل از استخرهای پرورش میگو هستند. 2 In order to qualitative evaluation of the sediment samples, the samples were seasonally taken in the Tiab basin for one year from autumn 1994 to summer 1995. Four stations were considered to be sampled that the first was between the south and north Tibet, the second station is located to the south Tiab and the third station located at the subbranch of the canal and the station 4 at the branch of estuary. Two ecological indicators based on macrobenthos community were used to calculate ABC and w-statistic indices. Spatial distribution of macrobenthos density at four stations showed that station 4 with an average of 1467 individual per square meters had the highest density, followed by station 3, 1 and 2, respectively, with 652, 393 and 223 individual per square meters in ranking are next. Amount of weight-based indices showed that the frequency curve in the ABC index is located on the top of the weight curve at all four stations and the w-statistic index with the lowest value is -0.433 at station 2. The results of this study showed that, although at stations far from shrimp breeding grounds, the diversity is more than those are close to shrimp farms, but biodiversity figures indicate that all areas are affected by effluent from shrimp pools. 25 36 2019/04/92019/02/162019/01/12 1397/10/22 2019/08/272019/08/42019/08/27 1398/6/5 کیوان اجلالی خانقاه K. Ejlali khanghah تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی ایران k_ejlali@yahoo.com شهره رشیدی Sh. Rashidi دانشگاه ازاد اسلامی واحد بندرعباس ایران shohrahrashidi@yahoo.com غلامعلی اکبرزاده Gh.A. Akbarzadeh تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی ایران mokhtabad20012002@yahoo.com سیامک بهزادی S. Behzadi پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران ایران Macrobenthos Indice Tiab Impact Shrimp ماکروبنتوز- شاخص- تیاب- پساب- میگو ##ابراهیمی م.، 1375. بررسی خصوصیات فیزیکو شیمیایی آبهای ساحلی استان هرمزگان (از منطقه دار سرخ تا یاسعیدو). موسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران. تهران. 52 صفحه.##اجلالی ک.، 1392. ارزیابی خطر اکولوژیک آلودگی رسوبات بر فون کفزیان در ناحیه ساحلی بندرعباس. رساله دکترای تخصصی. دانشگاه ازاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران. 135 صفحه.##اجلالی ک.، 1396. ارزیابی اکولوژیک اجتماعات ماکروبنتوز در خوریات مجاور با صید گاههای میگو در استان هرمزگان. گزارش نهایی. پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان. موسسه حقیقات شیلات ایران. 75 صفحه.##استکی ع. ع.، 1372. ساختار اکوسیستم‌ و متابولیسم‌جمعیت در استخرهای پرورش ماهی، پایان نامه دکترا، آکادمی علوم مجارستان، دانشگاه کوشوت دبرسن و انستیتو تحقیقاتی سارواش. 150 صفحه.##اکبرزاده غ.، 1383. بررسی اثرات زیست محیطی ناشی از فعالیت کارگاههای پرورش میگو در منطقه تیاب (استان هرمزگان). موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده خلیج فارس و دریای عمان، بندرعباس، 145 صفحه.##جهانی ن. نبوی س.م.ب. مدیسه-دهقانی س. و مرتضایی س.ر.، 1389. سنجش کیفی بار آلودگی آلی ناشی از آثرات احتمالی ناشی از فعالیت آبزی پروری در خور غزاله (خلیج فارس) رود کفزیان با استفاده از شاخص ABC . مجله علمی شیلات ایران. سال نوزدهم شماره 4 .##حیدری م.، 1396. اثرات ناشی از پساب‌های مزارع پرورش میگو بر اجتماعات ماکروبنتوز در خور تیاب. دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس .90 صفحه.##سایبانی م.، قادری د.، 1396. بررسی خور تیاب در جهت بهبود شرایط اقتصادی منطقه مکران. همایش ملی دریا، توسعه و منابع آب خلیج فارس و حوزه مکران. 16 صفحه. ##Adams S.M., 2002. Biological indicators of aquatic ecosystem stress. American Fisheries Society, Bethesda, Meryland, 644P.##Ansari Z.A., Ingole B. S., Banerjee G. and Parulekar A.H., 1986. Spatial and temporal changes in benthic macrofauna from Mandovi and Zuari estuaries of Marmugoa harbor, Goa (Central west coast of India ). Indian Journal of Geo-Marine Sciences, 23 (4), 225-231.##Barnes R.D., 1987. Invertebrate Zoology. Saunders College Publishing, 5th ed.##Basset, Y., 2001. Invertebrates in the canopy of tropical forests. How much do we know? Kluver academic publisher, 153: 87-107.## Beukema, J.J., 1988. An evaluation of the ABC-method (abundance/biomass comparison) as applied to macrozoobenthic communities living on tidal flats in the Dutch Wadden Sea. Marine Biology, 99(3):425-433 · October 1988. DOI: 10.1007/BF02112136 ##Black, D., 2001. Environmental Impacts of aquaculture. Academic press, USA./Canada: CRC Press, ISBN 0-84 23-0501-2, 213P.##Bruyne, R.H.D.E., 2003. The complete encyclopedia of shells .Reebo publication.325P.## ##Cai, W., Borja, Á. and Liu L., 2014. Assessing benthic health under multiple human pressures in Bohai Bay (China), using density and biomass in calculating AMBI and M-AMBI. Marine Ecology, 35(2): 180–192.##Clarke, K.R., 1990. Comparisons of dominance curves. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 138(1–2): 143–157.##Clarke, K.R. and Warwick, R.M., 2001. Chang in Marine Communities: An Approach to Statistical Analysis and Interpretation. 2nd edition. Plymouth, UK: PRIMER-E, 1–172##Claude N., 2002. Evolution of the Sweetness Receptor in Primates. I. Why Does Alitame Taste Sweet in all Prosimians and Simians, and Aspartame only in Old World Simians? DOI: 10.1093/chemse/20.5.573##Coeck, J., Vandelannote, A. Ysebootd, R. and Verheyen, R.F., 1993. Use of the abundan/biomass method for comoarison of fish communities in regulated and unregulated lowland rivers in Belgium. Regulated river: Resaerch and Management, 8, 73-82 ##Crayemeersch, J.A., Brummelhuis, E.B.M., Dimmers, W., Sistermans, W., 1998. Macrobenthos in het Rotterdamse havengebied (Nieuwe Waterweg, Beerkanaal, Calandkanaal). NIOO-CEMO Rapporten 1998-4.##Dauer, D.M., Luckenbach, M.W. and Rodi, A.J., 1993. Abundance biomass comparison (ABC method): effects of an estuarine gradient, anoxic/hypoxic events and contaminated sediments. Marine Biology, 116: 507–518##Dehghan-Madiseh, S., Nabavi, S.M.B., Ghofleh, M.J., Jahani, N. and Koochaknejad, E., 2012. Application of Abundance Biomass Curve in Ecological Health Assessment of Khure-Mussa (Northwest of the Persian Gulf). Journal of the Persian Gulf (Marine Science)/Vol. 3/No. 7/March 2012/9/1-10##Dierberg, F.E. and Kiattisimkul, W., 1996. Issues impacts and implications of shrimp aquaculture in Thiland, 20, 5 , pp.649-666.##Donald, T.B., Dance, S.P. Moolenbeek, R.G. and Oliver, P.G., 1995. Seashells of eastern Arabia. Motivate publishing. 344P.##Fauchald, C., 1977. The polychaete worms definition and keys to the orders familles and genera . Black well science. ##Grege, W.R. and pleijel, F., 2001.Polychaetes.Oxford University Press.42.analyses. Estuarine, Coastal and Shelf Science, 52. pp. 91-102.##Jones, A.B., Donohue, M.J.O. and Dennison, W.C., 2001. Assessing Ecological Impact of shrimp and sweage effluent : Biological indicator with standard water quality analyses. Estuarine, Coastal and shelf Science, 52. pp. 91-102.##Kumar, R.S., 2001. Intertidal zonation and seasonality of benthos in a tropical mangrove. International Journal of Ecology and Environmental Sciences, 27, 199–208.##Lotze, H.K., Lenihan, H.S., Bourque, B.J., Bradbury, R.H., Cooke, R.G., Kay, M.C., Kidwell, S.M., Kirby, M.X., Peterson, C.H., Jackson, J.B., Depletion, C., 2006. Degradation, and recovery potential of estuaries and coastal seas. Science, 2006, 312(5781):1806–1809.##Marques, J.C., Salas, F., Patricio, J., Teixeira, H. and Neto, J.M., 2009. Ecological indicators for coastal and estuarine environmental assessment. WITPress. 208 Pages.##Masood, E., 1997. Aquaculture: A soulution, or source of new problems ? Nature, No.6621, 109P.##McManus, J.W. and Pauly, D., 1990. Ecological stress: variations on a theme by R. M. Warwick. Marine Biology, 106: 305–308.##Michael, J., Philips, M. and Baird, G., 1995. Impact of Aquaculture on the environmental. Aquaculture, 8P.##Mohammed, S.Z., 1995., Observation on the benthic macrofauna of the soft sediment on western side of the Arabian Gulf (ROPME sea area) with respect to 1991Gulf war oil spill. Indian Journal of Marine Sciences, 24, 147–152.##Roonback P., 2001. Shrimp aquaculture-state of the art. Swedish EIA center, Reprot 1. Swedish University of Agriculture sciences (SLU), Uppsala. (ISBN 91-576-6113-8). 50P.##Samocha, T.M. and Lawrence, A.L., 1997. Shrimp farm’s effluent waters, environmental impact and potential treatment methods. Texas Agricultureal experiment station shrimp mariculture research. Ujnr Technical report No.22, pp.33-58.##Sansanayuth, P., Phadungchep, A., Ngammontha, S., Ngdagam, S., Sukasem, P., Hoshino, H. and Ttabucanon, M.S., 1996. Environmental research and Training center, pathumthani 12120, Thailand. Wat. Sci. Tech. Vol.34, No.11. pp. 93-98.##Snitvongs, A., 1995. Environmental Impacts of mariculture. Mrine fisheries Divisian, 89/1 sapanpla yannawa. Bankok, Thiland. pp.25-29.##Takarina, N.D. and Adiwibowo, A., 2011. Impact of heavy metals contamination on the biodiversity of marine benthic organisms in Jakarta Bay. University of Indonesia, Depok, 16424, West Java, Indonesia.##Warwick, R.M., 1986. A new method for detecting pollution effects on marine macrobenthic communities. Marine Biology, 92: 557–562##Wolfgang, S., 1986. Marine fauna and flora of Bermuda. A systematic guide to the identification of marine organisms.John willy and sons.741P. ##Zheng, B.H., Zhao, X.R, Liu, L.S., Li, Z.C., Lei, K., Zhang, L., Qin, Y.W., Gan, Z.F., Gao, S.Z. and Jiao, L.X., 2011. Effects of hydrodynamics on the distribution of trace persistent organic pollutants and macrobenthic communities in Bohai Bay. Chemosphere, 84(3):336–341##Zhou, H., Zhang, Z.N., Liu, X.S., Tu, L.H. and Yu, Z.S., 2007. Changes in the shelf macrobenthic community over large temporal and spatial scales in the Bohai Sea, China. Journal of Marine Systems, 67(3–4):312–321## ##

اثر تیمارهای هورمونی بر تخم ریزی و کیفیت لارو تولیدی ماهی شانک باله زرد عربی (Acanthopagrus arabicus) Effects of different hormones on induced spawning and larval quality of Arabian yellowfin seabream Acanthopagrus arabicus 1 1 در مطالعه حاضر به منظور ارتقاء بازده تولید ماهی شانک باله زرد عربی Acanthopagrus arabicus به عنوان یکی از گونه های مناسب برای پرورش در قفس اثر تزریق هورمون های HCG، LHRH-A2، عصاره هیپوفیز کپور و ترکیبی از هیپوفیز کپور و LHRH-A2 بر روی مولدین ماده مورد بررسی قرار گرفت. تیمارهای هورمونی و گروه کنترل در سه تکرار انجام شد که در هر تکرار 30 قطعه ماهی با نسبت جنسیت 1 به 1 وجود داشت. میانگین وزن نرها و ماده ها به ترتیب 310 و 675 گرم بود. در هر تکراری ماهیان ماده دو بار با دوز مشابه در فاصله زمانی 24 ساعت تزریق شدند. تخم ریزی در تمامی تانک ها اتفاق افتاد. همه تیمارهای هورمونی سبب شدند تخم ریزی زودتر و در بازه زمانی کوتاه تری اتفاق بیافتد. هماوری نسبی در تیمار هورمون ترکیبی به طور معنی داری از بقیه تیمارها بالا تر بود اما گروه کنترل و HCG کمترین هماوری نسبی را داشت (05/0>p). درصد تخم های شناور در تیمارهای مختلف و گروه کنترل تفاوت معنی داری را نشان نداد. هم چنین بازماندگی لاروها در روزهای 10 و 35 بین تیمارهای هورمونی با گروه کنترل اختلاف معنی داری نداشت. در این مطالعه چالش گرسنگی روی لاروهای سه روزه انجام شد، به طوری که درصد بازماندگی لاروها در 12، 24، 36، 48، 60 و 72 ساعت بعد از شروع چالش محاسبه شد. درصد بازماندگی لاروها بعد از شروع چالش گرسنگی در تیمارهای مختلف اختلاف معنی داری ثبت نشد. این مطالعه نشان داد که در القای تخم ریزی ماهی شانک زرد باله عربی، تزریق ترکیب هورمونی LHRH-A2 و CPE نسبت به هر کدام از این هورمون ها به تنهایی و هورمون HCG در ارتقاء کمیت تخم ها بدون تاثیر بر کیفیت آن ها موثرتر می باشد.   2 Arabian yellowfin sea bream (Acanthopagrus arabicus) is a candidate for cage culture. In this study to improve spawning performance (in quality and quantity) the effects of using human chorionic gonadotropin (HCG), Luteinizing hormone-releasing hormone analogues (LHRH-A2), carp pituitary extract (CPE) and a combination of CPE plus LHRH-A2 in females were investigated. The hormone treatments and control were tested in triplicates. Each replicate was stocked with 30 fish with a sex ratio of 1:1 and the average weights were 675g and 310g for females and males, respectively. In each trial, females were injected twice with the same dose in 24 hours between of either. Spawning occurred in all tanks and the use of all hormones successfully induced spawning in a shorter time. Relative fecundity was found to be significantly elevated in the mix treatment (p<0.05). Fish in the control group and HCG treatment showed the lowest relative fecundity. Buoyant egg percentage was not significantly affected by different hormones. Results of survival rate percentage in 10 and 35 DPH did not show any significant different between treatments and control group (p>0.05). Starvation challenge was designed for 3 DPH larvae. Survival rate of larvae in 12, 24, 36, 48, 60, 72 hours after starting challenge did not differ significantly among treatments (p>0.05). The present study revealed the best spawning performance of A. arabicus was achieved at a combination of CPE plus LHRH-A2, This hormone combination increases the quantity of produced eggs without affecting their quality. 37 46 2019/04/92019/02/162019/01/122019/03/1 1397/12/10 2019/08/272019/08/42019/08/272019/08/27 1398/6/5 سعید خرمیان S. Khoramian دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر ایران saekhoramian@gmail.com پریتا کوچنین P. Kochanian دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر ایران pkochanian@gmail.com وحید یاوری V. Yavari دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر ایران yavarivahid@yahoo.com امیر پرویز سلاطی A.P. Salati دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر ایران salatia@gmail.com Induce spawning Arabian yellowfin seabream Hormone treatment Spawning performance Gonadotropins القای تخم ریزی گنادوتروپین عملکرد تخم ریزی تیمار هورمونی شانک باله زرد عربی ##خدادادی، م.، انصاری، م.، پیغان، ر.، محمدی، غ. و رئیسی، م.، 1388. بررسی برخی پارامترهای سرمی مولدین ماهی بنی(Barbus sharpeyi) در فصل تولید مثل. مجله علوم و فنون دریایی خرمشهر، 8(2): 43-38 ##ستاری، م.، 1381. ماهی شناسی (1) تشریح و فیزیولوژی. انتشارات نقش مهر، 425 صفحه##محمدیان، ت.، سیلاوی، م.، حسینی، ا.، روحانی، س.، محمدی، ا. و حیدری، ب.، 1393. مقایسه تاثیر تزریق 3 مرحله ای هومون PG+LHRH-α2 با تزریق 2 مرحله ای عصاره هیپوفیز بر عملکرد تولید مثل ماهی بنی. مجله دامپزشکی ایران، 10(1): 95-85 ##مرمضی، ج. غ. و اسکندری، غ.، 1390. برنامه توسعه پنجم ماهیان دریایی شیلات ایران. موسسه تحقیقات شیلات ایران- پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور. 108 صفحه##Abu-Rezq, T.S., Al-Shimmari, J. and Dias, P., 1997. Live food production using batch culture and chemostat systems in Kuwait. Journal of Hydrobiology, 358, 173-8.##Abu-Rezq, T., Al-Abdul-Elah, K., El-Dakour, S. and Al-Marzouk, A., 2008. Final Report. The production of intergeneric hybrids from shaem and sobaity: Comparison of growth and survival performances. Aquaculture, Fisheries and Marine Sciences Division, Kuwait Institute for Scientific Research, Kuwait. KISR 9409: 1- 173.##Abu-Rezq, T., Al-Abdul-Elah, K., El-Dakour, S. and Al-Marzouk, A., 2013. Hybridization and Larval Rearing of Sparidentex hasta x Acanthopagrus latus and Reciprocals. The Open Marine Biology Journal, 7: 1-7##Ahmad, N., Siddiqui, P.J.A., Mir Khan, K., Ali, A., Khokhar, F. and Amir, S.A., 2018. Feeding frequency influences the growth performance of yellowfin seabream (Acanthopagrus arabicus) in cage culture. Iranian Journal of Fisheries Sciences, DOI: 10.22092/ijfs.2018.119513.## ##Bailey, K. M., Canino, M. F., Napp, J. M., Spring S. M. and Brown, A. L., 1995. Contrasting years of prey levels, feeding conditions and mortality of larval walleye pollock Theragra chalcogramma in the western Gulf of Alaska. Marine Ecology Progress Series, 119:11–23. DOI:10.3354/##meps119011##Barrero, M., Small, B.C., D’Abramo, L.R., Waldbieser, G.C., Hanson, L.A. and Kelly, A. M., 2008. Effect of carp pituitary extract and luteinizing hormone releasing analog hormone on reproductive indices and spawning of 3-year-old channel catfish. North American Journal of Aquaculture, 70 (2): 138–146. DOI: 10.1577/A06-072.1##Black, B. J. and Black, M., 2013. Efficacy of two exogenous hormones (GnRHa and HCG) for induction of spontaneous spawning in captive yellowfin bream, Acanthopagrus australis (Sparidae) and influence of sex ratio on spawning success. Aquaculture, 416-417: 105-110. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2013.08.036##Brzuska, E. and Adamek, J., 1999. Artificial spawning of European catfish, Silurus glanis L.: stimulation of ovulation using LHRH-a,Ovaprim and carp pituitary extract. Aquaculture Research, 30 (1): 59–64. DOI: 10.1046/j.1365-2109.1999. 00301.x##Brzuska, E. and Grzywaczewski, R., 1999. Artificial spawning of carp Cyprinus carpio L.: differences between the effects on reproduction in females of Israeli strain Dor-70 and its cross-breed treated with carp pituitary and Ovopel. Aquaculture Research, 30 (8): 559–570. DOI: 10.1046/j.1365-2109.1999.00350.x##Cabrita, E., Robles, V. and Herráez, M.P., 2009. Sperm quality assessment. In: Cabrita, E.,Robles, V., Herráez, M.P. (Eds.), Methods in Reproductive Aquaculture: Marine and Freshwater Species. Biology Series. CRC Press (Taylor and Francis Group), Boca Raton, Florida, USA, 93–148. DOI: 10.1201/ 9780849380549##Dhara, K. and Saha, N.C., 2013. Controlled breeding of Asian catfish Clarias batrachus using pituitary gland extracts and ovaprim at different temperatures, latency periods and their early development. Journal of Aquaculture Research and Development, 4 (4): 186.##Doustdar, M., Kaymaram, F., Seifali, M., Jamili, S. and Bani, A., 2018. Stock identification of Arabian yellow fin sea beream (Acanthopagrus arabicus) using shape of otolith in the Northern Persian Gulf and Oman sea. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 18 (11): 60-70 DOI: 10.22092/ijfs.2018.116366##Dunham, R.A., Lambert, D.M., Argue, B.J., Ligeon, C., Yant, D.R. and Liu, Z., 2000. Comparison of manual stripping and pen spawning for production of channel catfish _ blue catfish hybrids and aquarium spawning of channel catfish. North American Journal of Aquaculture, 62 (4): 260–265. DOI: 10.1577/1548-8454(2000) 062<0260:COMSAP>2.0.CO;2##El-Hawarry, W.N., Abd El-Rahman, S.H. and Shourbela, R.M., 2016. Breeding response and larval quality of African catfish (Clarias gariepinus, Burchell 1822) using different hormones/hormonal analogues with dopamine antagonist. Egyptian Journal of Aquatic Research, 42: 231-239 .DOI: 10.1016/j.ejar.2016.06.003##Esmaeili, H.R., Masoudi, M. and Mehraban, H.R., 2014. Assignment of Acanthopagrus population in the Persian Gulf drainage system of Iran to Acanthopagrus arabicus Iwatsuki, 21013, Perciformes: Sparidae. Iranian Society of Ichthyology, 1 (1): 23-28 DOI: 10.22034/iji.v1i1.49##Godfray, H.C.J., Beddington, J.R., Crute, I.R., Haddad, L., Lawrence, D., Muir, J.F., Pretty, J., Robinson, S., Thomas, S.M. and Toulmin, C., 2010. Food security: the challenge of feeding 9 billion people. Science, 327(5967): 812-818. DOI: 10.1126/science.1185383##Haniffa, M.A.K. and Sridhar, S., 2002. Induced spawning of spotted murrel (Channa punctatus) and catfish (Heteropneustes fossilis) using human chorionic gonadotropin and synthetic hormone (ovaprim). Veterinarski Arhiv, 72 (1): 51–56. ##Heilig, G.K., Gerland, P., Andreev, K., Li, N., Gu, D., Spoorenberg, T., Ravinuthala, S., Hossain, M.B., Rahman, M.M., Sarwer, M.G., Ali, M.Y., Ahamed, F., Rahman, S., Fulanda, B., Rahman, M.M., Subba, B.R. and Hossain, M.Y., 2013. Comparative study of carp pituitary gland (PG) extract and synthetic hormone ovaprim used in the induced breeding of stinging catfish, Heteropneustes fossilis (Siluriformes: Heteropneustidae). Our Nature, 10 (1): 89–95.##Hossain, M.Y., Ahmed, Z.F., Leunda, P.M., Jasmine, S., Oscoz, J., Miranda, R. and Ohtomi, J., 2006. Condition, length–weight and length–length relationships of the Asian striped catfish Mystus vittatus (Bloch, 1794) (Siluriformes: Bagridae) in the Mathabhanga river, southwestern Bangladesh. Journal of Applied Ichthyology, 22 (4): 304–307. DOI: 10.1111/j.1439-0426.2006.00803.x##Iwatsuki, Y., 2013. Review of the Acanthopagrus latus complex (Perciformes: Sparidae) with descriptions of three new species from the Indo-West Pacific Ocean. Journal of Fish Biology, 83: 64–95. DOI: 10.1111/jfb.12151##Karimi, S., Kochanian, P., Salati, A.P. and Gooraninejad, S., 2014. Plasma sex steroids and gonadosomatic index variations during ovarian development of female wild yellowfin seabream (Acanthopagrus latus). Ichthyological Reserch, 61: 68-75. DOI: 10.1007/s10228-013-0378-3##Kjorsvik, E., Mangor-Jensen, A. and Holmefjord, I., 1990. Egg quality in fishes. In: Blaxter, J.H.S., Southward, A.J. (Eds.), Advances in Marine Biology. Academic Press Ltd., New York, 71–113.##Kucharczyk, D., Luczynski, M., Kujawa, R. and Czerkies, P., 1997. Effect of temperature on embryonic and larval development of bream (Abramis brama L.). Aquatic Science, 59: 214–224. DOI: 10.1007/BF02523274##Leu, M.Y. and Chou, Y.H., 1996. Induced spawning and larval rearing of captive yellowfin porgy, Acanthopagrus latus (Houttuyn). Aquaculture, 143: 155–166. DOI: 10.1016/0044-8486(96)01272-0##Pavlidis, M., 2000. Recent advances in reproductional aspects of Dentex dentex. Cahiers Options M´editerran´eennes, 47:169–175.##Peter, R.E., Lin, H.R. and Van Der Kraak, G., 1988. Induced ovulation and spawning of cultured freshwater fish in China: advances in application of GnRH analogues and dopamine antagonists. Aquaculture, 74(1): 1–10. DOI: 10.1016/0044-8486 (88)90080-4##Richter, C.J.J., Viveen, W.J.A.R., Eding, E.H., Sukkel, M., Rothuis, A.J., Van Hoof, M.F.P.M., Van Den Berg, F.G. and Van Oordt, P.G.W.J., 1987. The significance of photoperiodicity, water Temperature and an Inherent Endogenous Rhythm for the production of viable eggs by the African catfish Clarias gariepinus., Aquaculture, 63(1987) 169-185. DOI: 10.1016/0044-8486(87)90057-3##Sahoo, S.K., Giri, S.S., Chandra, S. and Sahu, A.K., 2007. Spawning performance and egg quality of Asian catfish Clarias batrachus (Linn.) at various doses of human chorionic gonadotropin (HCG) injection and latency periods during spawning induction. Aquaculture, 266(1): 289–292. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2007.02.006##Salami, A.A., Fagbenro, O.A., Edibite, L. and Fagbemiro, S.O., 1994. Induced spawning of the African catfish Clarias gariepinus using non-piscine pituitary extracts. Journal of the World Aquaculture Society, 25(1): 166–168. DOI: 10.1111/ j.1749-7345.1994.tb00816.x##Siddiqui, P.J., Ali amir, SH. and Masroor, R., 2014. The sparid fishes of Pakistan, with new distribution records. Zootaxa 3857(1). Mangolia Press. DOI: 10.11646/ zootaxa.0000.0.0##Zakeri, M., Marammazi, J.G., Kochanian, P., Savari, A., Yavari, V. and Haghi, M., 2009. Effects of protein and lipid concentrations in broodstock diets on growth, spawning performance and egg quality of yellowfin sea bream (Acanthopagrus latus). Aquaculture, 295: 99-105. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2009 .06.026##Zaki, M.I., Aziz, F.K. and El-Absawy, M.E., 2007. Induce spawning and larval rearing of Gilthhead sea bream (Sparus aurata) collected from fish farms. Egyptian Journal of Aquaculture Research, 33 (1) 418-433.##Zohar, Y. and Mylonas, C.C., 2001. Endocrine manipulations of spawning in cultured fish: from hormones to genes. Aquaculture, 197 (1): 99–136. DOI: 10.1016/B978-0-444-50913-0.50009-6## ##

تاثیر استفاده برخی از عصارهای گیاهی بر رشد و تغذیه، آنزیم‌های گوارشی و پارامترهای ایمنی ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss) The effect of some herbal extracts on nutrition and growth performance, digestive enzymes activity and immune parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) 1 1 تاثیر عصاره­ های کونوکارپوس (Conocarpus erectus L.)، پالونیا (Paulownia fortunei) و مخلوط آنها (%50 کونوکارپوس+ %50 پالونیا) بر کارایی رشد و تغذیه، فعالیت آنزیم­های گوارشی و ایمنی غیر اختصاصی ماهی قزل ­آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss) مورد مطالعه قرار گرفت. ماهیان به 4 گروه تغذیه­ ای با رژیم غذایی %0 (T1)، %1 عصاره کونوکارپوس (T2)، %1  عصاره پالونیا (T3) و مخلوط آنها (T4) به­مدت 30 روز تقسیم شدند.  180 قطعه ماهی (09/4±57 گرم) به طور تصادفی در 12 آکواریوم 70 لیتری قرار گرفتند که به 3 تیمار و 1 شاهد تقسیم شدند. عملکرد رشد ماهیان در همه تیمارهای تغذیه شده با عصاره‌های گیاهی در مقایسه با شاهد افزایش معنی ­دار آماری داشت (05/0p<)؛ بیشترین مقدار در تیمار 4 بدست آمد. ضریب تبدیل غذایی (FCR) در تیمارهای آزمایشی نسبت به تیمار شاهد بهبود یافت. سطوح آنزیم های گوارشی افزایش معنی­ داری در تیمار 3 ماهی تغذیه شده با %1 عصاره پالونیا در مقایسه با سایر تیمارها و شاهد نشان داد. اختلاف معنی­ داری بین تیمارهای آزمایشی مختلف و شاهد در سطح پروتئین و آلبومین سرم خون ماهی وجود نداشت (05/0p>) در حالیکه مقادیر گلوکز و هموگلوبین در ماهیان مصرف کننده عصاره گیاهی افزایش معنی­ داری آماری داشتند. نتایج این آزمایش نشان داد که استفاده از عصارهای کنوکارپوس و پالونیا در جیره ماهی قزل ­آلای رنگین­ کمان منجر به بهبود رشد، آنزیم­های گوارشی و ایمنی غیر اختصاصی خون ­شود. 2 The effects of Conocarpus erectus, Paulownia fortunei extracts and their mixture (50%+50%) on the growth performance, digestive enzymes activity and non-specific immunity of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) were studied. Fish were divided into 4 four experimental groups fed diets with 0% (T1), 1% of conocarpus extract (T2), 1% of paulownia extracts (T3) and their mixture (T4) for 30 days. One- hundred and eighty fish (57.00± 4.09 g) were randomly stocked in twelve 70-L Aquarium assigned into three treatments and a control group. The growth performance was significantly increased in all herbal extracts fed fish compared to the control (P < 0.05); the highest value was obtained by treatment 4. The food conversion ratio (FCR) was improved in all experimental treatments compared to control. The digestive enzymes levels revealed significant increment in fish fed 1% Paulownia extract (T3) in comparison with the other treatments and control. There were no significant difference in protein and albumin levels of fish blood serum in different experimental treatments and control (P > 0.05). While, glucose and hemoglobin levels were significantly increased in fish fed diets containing plant extract. The results of this experiment showed that the use of conocarpus and paulownia extracts can improve the growth, digestive enzymes and non-specific immunity of the O. mykiss. 47 56 2019/04/92019/02/162019/01/122019/03/12019/03/20 1397/12/29 2019/08/272019/08/42019/08/272019/08/272019/08/6 1398/5/15 محمد خادمی حمیدی M. Khademi Hamedi گروه شیلات، دانشکده علوم کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه کنبد کاووس، ایران ایران mohammadkhademi110@gmail.com حسین آدینه H. Adineh گروه شیلات، دانشکده علوم کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه کنبد کاووس، ایران ایران adineh.h@gmail.com محمد هرسیج M. Harsij گروه شیلات، دانشکده علوم کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه کنبد کاووس، ایران ایران m_harsij80@yahoo.com حسنا قلیپور کنعانی H. Gholipour kanani گروه شیلات، دانشکده علوم کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه کنبد کاووس، ایران ایران gholipourk@gmail.com Rainbow trout Plant extracts Growth Digestive enzymes activity Non-specific immunity ماهی قزل‌آلای رنگین کمان عصاره‌های گیاهی رشد فعالیت آنزیم‌های گوارشی ایمنی غیر اختصاصی ##پورغلام، ر.، شریف روحانی، م.، صفری، ر.، سعیدی، ع.ا.، بینایی، م.، نجفیان، ر. 1392. اثر عصاره سرخار گل (Echinacea purpurea) بر برخی شاخص های ایمنی و بازماندگی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) در برابر با استرپتوکوک. مجله علمی شیلات ایران، ۲۲ (۳): 12-۱.##صفری، ر.، واحدی امیری، ف.، شعبانی، ع.، حسینی فر، س.ح.، کلنگی میانده، ح. 1397. اثرات عصاره هیدروالکلی گیاه آنغوزه(Ferula assafoetida) در جیره غذایی بر بیان ژن‌های مرتبط با ایمنی (TNF-alpha) و (IL1B) در ماهی گورخری (Daniorerio). فیزیولوژی و تکوین جانوری، 11 (3): 66-55.##عادل، م.، پورغلام، ر.، ذریه زهرا، س.ج.، قیاسی، م. 1394. تاثیر سطوح مختلف عصاره نعناع فلفلی بر برخی شاخص‌های خونی، بیوشیمیایی و ایمنی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران، ۲۴ (۱): 46-37. DOI: 10.22092/ISFJ.2014.103049##عمادی، ح.، نگارستان، ح.، حیدری، م.س. 1395. بررسی اثرات آرد هسته دانه انار (Punica granatum) بر فراسنجه‌های رشد ماهی قزل‌آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران، 25 (4): 176- 171.DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110309##نجفی، ز.، اورجی، ح.، یگانه، س.، کرامت امیرکلایی، ع.ص. 1397. تأثیر عصاره‌ی الکلی یونجه (Medicago sativa) بر عملکرد رشد، مصرف غذا، ترکیب بدن و برخی از فراسنجه‌های سرمی بچه‌ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران، ۲۷ (۵): 9-1. DOI: 10.22092/ISFJ. 2018.1022092##American Public Health Association (APHA), 1998. In: Clescert, L., Greenberg, A., Eaton, A. (Eds.), Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater. 20th edition. Washington, USA.##Banaee, M., Sureda, A., Mirvaghefi, A.R. and Rafei, G.R., 2011. Effects of longterm silymarin oral supplementation on the blood biochemical profile of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish Physiology and Biochemistry, 37: 885-896. DOI: 10.1007/s10695-011-9486-z##Baroon, Z. and Mohamed, A.R., 2012. Nutritional evaluation and trial of ensiled conocarpus greenery residue. Explore Agriculture, 48 (1): 138–147.##Bashir, M., Uzair, M. and Chaudhry, B.A., 2015. A review of phytochemical and biological studies on conocarpus erectus combretaceae. Pakistan Journal of Pharmaceutical Research, 1:1.##Beare–Rogers, J. L., Nera, E. A. and Heggtveit, H. A., 1971. Cardiac lipid changes in rats fed oils containing longchain fatty acids. Canadian Institute of Food Science and Technology Journal, 4: 120-124.##Borges, A., Scotti, L.V., Siqueira, D.R., Jurinitz, D.F. and Wassermann, G.F., 2004. Hematologic and serum biochemical values for jundia (Rhamdia quelen). Fish Physiology and Biochemistry, 30: 21-25.## ##Cahu, C.L., Zambonino-Infante, J.L., Quazuguel, P. and Le Gall, M.M. 1999. Protein hydrolysate vs. fish meal in compound diets for 10-day old sea bass Dicentrarchus labrax larvae. Aquaculture, 171: 109- 119.##Ellis, A.E., 1990. Lysozyme assays. In: Stolen, J.S., Fletcher, T.C., Anderson, D.P., Robertson, B.S., Van Muiswinkel, publication. pp. 101-103.W.B. (eds.). Techniques in Fish Immunology. Fair Haven, NJ, USA: SOS. ##Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO), 2018. The State of World Fisheries and Aquaculture. Fisheries and Aquaculture Department, Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome, IT.##Goel, G. Puniya, A.K. Aguilar, C.N. and Singh, K., 2005. Interaction of gut microflora with tannins in feeds. Naturewissensechaften. 92(11): 497-503.##Haghighati, F., Jafari, S. and BEYT, E.J., 2003. Comparison of antimicrobial effects of ten Herbal extracts with chlorhexidine on three different oral pathogens; an in vitro study. Hakim Research Journal, 71-76.##Iijima, N., Tanaka, S. and Ota, Y., 1998. Purfication and characterization of bile salt activated Lipase from the hepatopancreas of red sea bream (Pagrus major). Journal of Fish Physiology and Biochemistry, 18: 59-69.##Jimenez, L., Rodrı´guez, A., Ferrer, J.L., Pe´rez, A. and Angulo, V. 2005. La Paulownia: una planta de ra´pido crecimiento como materia prima para lafabricacio´n de papel. Afinidad, 62 (516): 100-105.##Okoth, E.O., Muchiri, M. and Ngugi, C.C., 2016. Effects of dietary levels of essential oil (EO) extract from bitter lemon (Citrus limon) fruit peels on growth, biochemical, haemato-immunological parameters and disease resistance in Juvenile Labeo victorianus fingerlings challenged with Aeromonas hydrophila. 1-13.DOI:10.1111/ are.13062##Prasad, G. and Charles, S., 2010. Haematology and leucocyte enzyme cytochemistry of a threatened yellow catfish (Horabagrus brachysoma). Fish Physiology and Biochemistry, 36: 435-443. DOI: 10.1007/s10695-009-9313-y##Rungruangsak‐Torrissen, K., Rustad, A., Sunde, J., Eiane, S.A., Jensen, H.B., Opstvedt, J., Nygard, E., Samuelsen, T.A., Mundheim, H. and Luzzana, U., 2002. In vitro digestibility based on fish crude enzyme extract for prediction of feed quality in growth trials. Journal of the Science of Food and Agriculture, 82: 644-654.##Silva, N. and Fernandes Júnior, A., 2010. Biological properties of medicinal plants: a review of their antimicrobial activity. Journal of Venomous Animals and Toxins including Tropical Diseases, 16: 402-13.##Wang, Q., Meng, X., Zhu, L., Xu, Y., Cui, W., He, X. and Zhu, R., 2019. A polysaccharide found in Paulownia fortunei flowers can enhance cellular and humoral immunity in chickens. International Journal of Biological Mmacromolecules, pp. 213-219. DOI:10.1016/j.ijbiomac.2019. 01.168##Worthington, C.C., 1993. Worthington Enzyme Manual. Enzymes and related Biochemicals Worthington Chemical. New Jersey. USA. 730 P.## ##

بررسی اثرات بلندمدت و کوتاه‌مدت تغییرات بارندگی بر ارزش افزوده بخش آبزی‌پروری و شیلات ایران Investigating of the long-term and short-term effects of rainfall changes on the value added of Iranian aquaculture and fisheries sector 1 1 فعالیت‌های اقتصادی انسان سبب بروز اثرات جانبی محیط زیستی فراوان شده است که می‌توان از تغییرات اقلیمی به عنوان مهم­ترین این اثرات جانبی اشاره کرد. یکی از مولفه‌های تغییرات اقلیمی، تغییر الگوی بارش، پراکنش زمانی و مکانی بارش و همچنین کاهش میزان بارندگی است. با توجه به اهمیت نهاده آب در فعالیت‌های اقتصادی و به خصوص بخش کشاورزی و شیلات، در مطالعه حاضر، اثر تغییر بارندگی بر ارزش افزوده بخش شیلات در کوتاه‌مدت و بلندمدت مورد بررسی قرار گرفته است. برای این منظور از روش خودرگرسیون با وقفه‌های توزیعی استفاده شده است. نتایج این مطالعه نشان داد که میزان بارندگی در کوتاه‌مدت و بلندمدت اثر مثبت و معنی‌داری بر ارزش افزوده بخش شیلات دارد. همچنین بارندگی از طریق بهبود وضعیت دسترسی به منابع آب سطحی و زیرزمینی، اثر غیرمستقیم بر بهبود ارزش افزوده بخش شیلات دارد. با توجه به نتایج پیشنهاد می‌شود در مناطق بحرانی درگیر تغییرات اقلیمی، محدودیت‌های جهت صید ماهی اعمال گردد. همچنین برای تعدیل و سازگاری بخش آبزی‌پروری کشور نسبت به شوک‌های ناشی از کاهش بارندگی و تغییرات اقلیمی، زمینه بروزرسانی تکنولوژی و روش تولید از طریق ارائه تسهیلات بانکی و تأمین مالی فراهم گردد. 2 Human economic activities have caused many environmental impacts that can be attributed to climate change as the most important side effects. One of the components of climate change is the change in rainfall pattern, time and space distribution of rainfall, and also the reduction of rainfall. Considering the importance of water inputs in economic activities, especially agriculture and fisheries, in the present study, the effect of rainfall change on the value added of the fisheries sector in the short and long term has been studied. For this purpose, the Auto-Regressive Distributed Lag model (ARDL) has been used. The results of this study indicate that rainfall in the short and long run has a positive and significant effect on the added value of the fisheries sector. Rainfall by improving access to surface water and groundwater resources has indirect effects on improving the value added of the fisheries sector. According to the results, it is suggested that fish catch limits be applied in critical areas affected by climate change. Also, in order to adjust and adapt the country's aquaculture sector to shocks caused by rainfall and climate change, the field of technology and production improvement should be provided through providing banking and financing facilities. 57 66 2019/04/92019/02/162019/01/122019/03/12019/03/202019/05/12 1398/2/22 2019/08/272019/08/42019/08/272019/08/272019/08/62019/08/7 1398/5/16 حمید بلالی Hamid Balali دانشگاه بوعلی سینا ایران dr.hamidbalali@gmail.com نادر مهرگان N. Haj Abedi دانشگاه بوعلی سینا ایران mehregannader@yahoo.com نازنین حاج عابدی N. Mehrgan دانشگاه بوعلی سینا ایران nazaninhajabedy@gmail.com مصطفی بنی اسدی M. Bani Asadi دانشگاه بوعلی سینا ایران baniasadi.m65@gmail.com Climate Change Rainfall Change Water Resources Fisheries Sector ARDL Model تغییرات اقلیمی تغییرات بارندگی منابع آب بخش شیلات مدل ARDL ##امیری،ک.، بانی، ع.، علیجانپور، ن.، بساط‌نیا، ن. و هادیفر، ع.، 1393. تأثیر عوامل محیطی بر مقدار صید در واحد تلاش صیادی و پراکنش کیلکا (Pisces:Clupeidae) در جنوب غربی دریای خزر (بندر انزلی). مجله بوم‌شناسی آبزیان، 4(3): 102-98.##ترابی آزاد، م. و زاهدی، ر.، 1382. نقش تغییر اقلیم بر جریان‌های خلیج فارس. فصلنامه علوم و تکنولوژی محیط زیست، 4: 52-43.##حاج عابدی، ن.، 1397. اثرات بارندگی و آب‌‌‌های زیرزمینی برعملکرد محصولات کشاورزی و زیربخش‌‌‌های آن. پایان‌نامه کارشناسی‌ارشد، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا همدان.##خانجانی، م.ح.، 1398. تأثیر سطوح مختلف شوری و منابع کربن در سیستم تولید توده زیستی (Biofloc). مجله علمی شیلات ایران، 28(5): 79-69. DOI:10.22092/ISFJ.2019.119415.##رادفر، ف. و گرگین، س.، 1394. تأثیر دمای سطحی، فشار و سرعت جریان باد بر صید در واحد تلاش ماهی هامور معمولی Epinephelus coioides (Hamilton, 1822)، مطالعه موردی سواحل خوزستان (خلیج فارس). پژوهش‌های ماهی شناسی کاربردی، 3(1): 38-29.##زمانی، ع. و خواجوی، م.، 1398. بررسی عملکرد رشد و میزان فعالیت آنزیم‌های پروتئازی بچه ماهی قزل‌آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) تغذیه شده با سطوح مختلف پروتئین تک‌یاخته. مجله علمی شیلات ایران، 20(5): 116-103. DOI:10.22092/ISFJ. 2019.119786.##فلاحی، ا. و خلیلیان، ص.، 1388. بررسی رابطه بلندمدت عوامل تولید و ارزش افزوده بخش کشاورزی با به کارگیری رهیافت هم گرایی. مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی، 16(1): 350-339.##کوچکی، ع. و نصیری محلاتی، م.، 1395. تأثیر تغییر اقلیم بر کشاورزی ایران: 2- پیش‌بینی تولید محصولات زراعی و راهکارهای سازگاری. پژوهش‌های زراعی ایران، 14(1): 20-1. DOI: 10.22067/gsc.v14i1.51157.##محمدی، ح.، عزیزی، ق.، خوش اخلاق، ف. و رنجبر، ف.، 1396. تحلیل روند شاخص‌‌‌های حدی بارش روزانه در ایران. نشریه پژوهش‌‌‌های جغرافیای طبیعی، 49(1): 37-21. DOI:10.22059/jphgr.2017.61577.##محمودزاده، م.، موسوی، م.ح. و پاک‌نهاد، ف.، 1394. حسابداری رشد ارزش افزوده در صنایع تولیدی ایران با تأکید بر فناوری اطلاعات. فصلنامه مدلسازی اقتصادی، 9(4): 64-41.##نظری، م.، 1391. بررسی آثار اقتصادی تغییر اقلیم بر زیربخش کشاورزی ایران. رساله دکتری، دانشکده اقتصاد و توسعه کشاورزی، دانشگاه تهران.##نوفرستی، م.، 1387. ریشۀ واحد و هم‌جمعی در اقتصاد سنجی. تهران: انتشارات مؤسسه خدمات رسا.##Bigelow, K.A., Bogg, C.H. and He, X., 1999. Environmental effects on swordfish and blue shark catch rates in the US North Pacific Longline Fishery. Fisheries Oceanography, 8(3): 178-198. DOI:10.1046/j.1365-2419.1999.00105.x. ##Cochrane, K., De Young, C., Soto, D. and Bahri, T., 2009. Climate change implications for fisheries and aquaculture, Overview of current scientific knowledge. Food and Agriculture Organization of the United Nation (FAO), Fisheries and Aquaculture Technical Paper 530, Rome, 2009.##Dickey, D.A. and Fuller, W.A., 1981. The likelihood ratio statistics for autoregressive time series with a unit root. Econometrica, 49: 1057–1072. DOI:10.2307/1912517.## ##Gregory, P.J., Ingram, J.S.I. and Brklacich, M., 2005. Climate change and food security. Philosophical Transactions of the Royal Society, 360: 2139–2148. DOI:10.1098/ rstb.2005.1745.##IPCC, 2007. Summary for policymakers. In M.L. Parry, O.F. Canziani, J.P. Palutikof, P.J. v. d. Linden & Hanson, C.E, eds. Climate change 2007: impacts, adaptation and vulnerability. Contribution of working group II to the Fourth Assessment Report of the Intergovernmental Panel on Climate Change, pp. 7–22. Cambridge, UK, Cambridge University Press.##Lan, k., Evans, K. and lee, M., 2013. Effects of climate variability on the distribution and fishing conditions of yellowfin tuna (Thunnus albacares) in the western Indian Ocean. Climatic Change, 119: 63-77. DOI:10.1007/ s10584-012-0637-8.##Lehodey, P., Bertignac, M., Hampton, J., Lewis, A. and Picaut, J., 1997. El Niño Southern Oscillation and tuna in the western Pacific. Nature, 389: 715–718. DOI: 10.1038/39575. ##Olayide, O. E., Tetteh, I. K. and Popoola, L., 2016. Differential impacts of rainfall and irrigation on agricultural production in Nigeria: Any lessons for climate-smart agriculture? Agricultural Water Management, 178: 30-36.‌ DOI:10.1016/j.agwat.2016.08. 034. ##Pesaran, M.H. and Shin, Y., 1995. An autogressive distributed lag modelling approach to cointegration analysis. DAE Working Paper 9514, University of Cambridge.##Pesaran, M.H. and Shin, Y., 1996. Co-integration and speed of convergence to equilibrium. Journal of Econometrics, 71: 43-117. DOI:10.1016/0304-4076(94)01697-6.##Pondella, D.J., Stephens, J.S. and Craig, M.T., 2002. Fish production of a temperate artificial reef based on the density of embiotocids. ICES Journal of Marine Science, 59: 88–93. DOI:10.1006/ jmsc.2002.1219. ##Solow, R.M., 1956. A contribution to the theory of economic growth. Quarterly Journal of Economic, 70: 65-94. DOI:10.2307/1884513.##Song, L., Zhang, Y., Xu, L., Jiang, W. and Wang, J., 2008. Environmental preferences of longlining for yellowfin tuna (Thunnus albacares) in the tropical high seas of the Indian Ocean. Fisheries Oceanography, 17(4): 239 – 253. DOI: 10.1111/j.1365-2419.2008.00476.x.##Sugimoto, T., Kimura, S. and Tadokoro, K., 2001. Impact of El Niño events and climate regime shift on living resources in the western North Pacific. Progress in Oceanography, 49: 119–127. DOI: 10.1016/S0079-6611(01) 00018-0.##Tian, Y., Kidokoro, H., Watanabe, T. and Iguchi, N., 2008. The late 1980s regime shift in the ecosystem of Tsushima Warm Current in the Japan/East Sea: evidence from historical data and possible mechanisms. Progressive in Oceanography, 77: 127–145. DOI:10.1016/j.pocean.2008.03.007.##Torres-Orozco, E., Muhlia-Melo, A., Trasviña, A. and Ortega-Garcia, S., 2006. Variation in yellowfin tuna (Thunnus albacares) catches related to El Niño-Southern Oscillation events at the entrance to the Gulf of California. Fish Bull, 104(2): 197–203 ## ##

مطالعه عوامل خطر ساز درکارگاههای تکثیر و پرورش قزل آلا براساس پارامترهای محیطی آب در رودخانه هراز Study on risk factors in rainbow trout breeding and rearing farms based on water environmental parameters in the Haraz River 1 1 این مطالعه به تغییرات پارامترهای محیطی کیفیت آب رودخانه هراز به ­عنوان عوامل خطرساز مزارع قزل آلا پرداخته­است. تعداد 84 نمونه آب در6 ایستگاه واقع درکارگاه پرورش ماهی قزل­آلا طی هفت ماه طی سال­های 97-1396 جمع‌آوری شد. اندازه­گیری پارامترها با روش­های استاندارد تیتراسیون و اسپکتروفتومتری انجام گرفت. طبق نتایج، دامنه تغییرات دمای آب (0/17-0/4 درجه سانتی‌گراد)، دمای هوا (0/28-0/5 درجه سانتی‌گراد)، اکسیژن محلول (24/14-36/7 میلی­گرم بر لیتر)، اکسیژن خواهی بیولوژیک (80/20-20/0 میلی­گرم بر لیتر)، اکسیژن خواهی شیمیایی (40/41-50/3 میلی­گرم بر لیتر)، هدایت الکتریکی (650-345 میکروزیمنس­برسانتیمتر)، کدورت (NTU  81-2)، کل مواد جامد معلق (72/0-01/0 گرم بر لیتر)، pH (15/8-98/6)، فسفرکل/فسفر(15/0-01/0 میلی­گرم بر لیتر)، فسفات (20/0-01/0 میلی­گرم بر لیتر)، آمونیم (313/0-020/0 میلی­گرم بر لیتر)، آمونیاک (36/4-14/0 میکروگرم برلیتر)، نیتریت (21/0-01/0 میلی­گرم بر لیتر)، تعداد کلیفرم مدفوعی (CFU/100ml30000-9) و شاخص کیفیت آب (IRWQISC) (5/98-5/48)  بوده است. نتایج براساس آزمون رگرسیون گام به گام نشان داد که عوامل خطرساز کیفیت آب در رودخانه هراز پارامترهای کلیفرم مدفوعی، فسفات،کدورت و اکسیژن خواهی بیوشیمیایی بوده­است و کلیفرم مدفوعی، ضریب تاثیر (ضریب بتا) بیشتری در مقایسه با سایر پارامترها داشتند (05/0p<). در نتیجه، طبق میانگین ایستگاهی شاخص کیفیت (کمتر از 55)، آب رودخانه هراز برای پرورش ماهی قزل­آلا آلوده و بحرانی است اما برای پرورش ماهی مقاوم و حیات وحش دارای شمارش میکروبی قابل­قبول است. همچنین علاوه بر تغییر فصلی پارامترهای محیطی و میزان بارندگی، نحوه مدیریت کارگاه­ها نیز در حفظ کیفیت آب اهمیت دارد. 2 This study was carried out to determine the water environmental parameters as risk factors for rainbow trout breeding and rearing farms in the Haraz River. 84 water samples were collected at 6 stations during seven months in 2017-2018. Water samples were analyzed by standard titration and spectrophotometry. Results showed that the range of water  temperature (4.0-17.0◦C), weather temperature (5.0-28.0◦C), dissolved oxygen (7.36-14.24 mg/l), BOD5 (0.20-20.80 mg/l), COD (3.50-41.40 mg/l), electro-conductivity (345-650 µS/cm), turbidity (2-81 NTU), TSS (0.01-0.72 g/l), pH (6.98-8.15), TP/P (0.01-0.15 mg/l), PO43- (0.01-0.20 mg/l), NH4+ (0.02-0.31 mg/l), NH3 (0.14-4.36 µg/l), NO2- (0.01-0.21 mg/l), fecal coliform (9-30000 CFU/100ml) and water quality index (48.5-98.5) were changed. The results of the stepwise regression analysis indicated that the risk factors of water quality in the Haraz River were fecal coliform, phosphate, turbidity, and BOD5 parameters, and fecal coliform had a higher coefficient factor (beta coefficient) than other parameters (p<0.05). As a result, according to the average water index of stations (less than 55), water of the Haraz River is contaminated and critical to breeding and rearing trout, but it has acceptable microbial count for fish farming and wildlife. In addition to seasonal conditions such as environmental conditions and rainfall, the way of pound managing has been effective in maintaining water quality. 67 78 2019/04/92019/02/162019/01/122019/03/12019/03/202019/05/122019/04/6 1398/1/17 2019/08/272019/08/42019/08/272019/08/272019/08/62019/08/72019/08/10 1398/5/19 حسن نصراله زاده ساروی H. Nasrollahzadeh Saravi پژوهشکده اکولوژِی دریای خزر ایران hnsaravi@gmail.com مریم قیاسی M. Ghiasi پژوهشکده اکولوژِی دریای خزر ایران ghiasimaryam4@gmail.com رضا صفری R. Safari پژوهشکده اکولوژِی دریای خزر ایران safari1351@gmail.com آسیه مخلوق A. Makhlough پژوهشکده اکولوژِی دریای خزر ایران asieh_makhlough@yahoo.com عبداله نصراله تبار A. Nasrollahtabar پژوهشکده اکولوژِی دریای خزر ایران tabar_3744@yahoo.com ولی اله محمدزاده V. Mohammadzadeh اداره کل شیلات مازندران ایران mohamadzadeh111@yahoo.com عسگری منعمی A. Monemi اداره کل شیلات مازندران ایران monemi111@yahoo.com Environmental parameters Water Risk factors Trout pounds Haraz River پارامترهای محیطی آب عوامل خطر ساز کارگاه قزل آلا رودخانه هراز‌ ##باقری، م.، فرزان، م.، طالبی،‌م.ع.، کرمی،‌م. و منصوری، پ. 1396. مقایسه پارامترهای کیفی آب رودخانه‌های صمصامی و دیناران با استانداردهای کیفی آب برای پرورش ماهی. مجله علمی شیلات ایران، ۲۶ (۴) :۲۵-۳۵. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.113897##خلجی، م.، ابراهیمی، ع.، متقی،‌ ا.، اسداله، س. و هاشمی نژاد، ه.، 1395. ارزیابی کیفیت آب دریاچه سد زاینده رود با استفاده از شاخص WQI . مجله علمی شیلات ایران، ۲۵ (۵) :۵۱-۶۳. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110314##کیان ارثی،ف.، رامین،م.، دهقان مدیسه،س.، اسماعیلی،ف.، سبز علیزاده،س.، خلفه نیل ساز، م.، بنی طرفی زادگان، ج.، صفی خانی،ح.، آلبوعبید،ص. و مرتضوی،س.ع.،1392. پروژه مطالعات پسابهای کشاورزی و آبهای لب شور منطقه اهواز و خرمشهر به منظور فعالیتهای آبزی پروری.پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور،157صفحه.##گرجی‌پور ع. اسدی، م. حسن‌پور، م.، 1386. بررسی لیمنولوژیک رودخانه زهره در استان کهگیلویه و بویر احمد، پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان، شماره 74.##محمودی، س.، بنایی، م.، شوکت، پ.، نوری، ا. و موسوی ده موردی، ل.، 1396. آسیب‌شناسی بافتی به عنوان شاخص زیستی در ارزیابی کیفیت آب مزارع پرورش ماهیان قزل‌آلای رنگین‌کمان در امتداد چشمه برم لردگان. مجله علمی شیلات ایران، ۲۶ (۲) :۱۳۱-۱۳۸. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.113491##میرزاجانی، ع.ر.، 1389. مطالعه دریاچه سد خاکی توده بین استان زنجان به منظور امکان آبزی پروری. پژوهشکده آبزی پروری آبهای داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، 80 صفحه.##نصیری، ر.، 1388. آموزش گام به گام SPSS17. مرکز فرهنگی نشر گستر،. تهران، 344 صفحه.##واردی، س.ا.، 1386. بررسی تاثیر متقابل فعالیت های تولیدی بر اکوسیستم های حوضه دریای خزر، فعالیت 1-مزراع تکثیر و پرورش رودخانه هراز. انتشارات موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، 139 صفحه.##Anon. 2000. National Nutrient Guidance for Rivers and Streams. U.S. EPA. http://www.epa.gov/ost/criteria/nutrient/guidance/rivers/index.html (accessed February, 2003).##APHA, 2005. Standard Methods for the Examination of water and Wastewater, American Public Health Association, Seventeenth Edition. 1113P.##Bash, J., Berman, C. and Bolton, S. 2001. Effects of Turbidity and Suspended Solids on Salmonids. Final Research Report Research Project T1803, Task 42. Washington State Transportation Commission. USA, 173p.##CEC (Commission of European Communities).1978. Council Directive of 18 July 1978 on the quality of fresh waters needing protection or improvement in order to support fish life, (78/659/EEC). Official Journal, L/222, 1-10. ##Clabby, K.J., Bowman, J.J., Lucey, J., McGarrigle, M.L., and Toner, P.F., 1992. Water Quality in Ireland 1987-1990. Environmental Research Unit, Dublin.##EPA. 2013. National Rivers and Streams Assessment 2008–2009: A Collaborative Survey (Draft). Washington, DC: Office of Wetlands, Oceans, and Watersheds, Office of Research and Development, U.S. Environmental Protection Agency (28 February 2013). Available: http://goo.gl/HHa3PH [accessed 29 October 2014].##EPA. 2014. Nutrient Pollution > The Problem [website]. Washington, DC: office of Water, U.S. Environmental Protection Agency (updated 16 March 2014). Available: http://www2.epa.gov/nutrientpollution/problem [accessed 29 October 2014].##GEF, 2006. Water Quality in the Kura-Aras River Basin, RER/03/G41/A/1G/31: Reducing Trans-boundary Degradation of the Kura-Aras River Basin, 45p.##House, M.A. and Ellis, J.B., 1987.The Development of Water Quality Indices for Operational Management. Water Science Technology, 19(9):145-154. DOI:10.2166/wst. 1987.0076.##LaDon, S.,1999. A Fish Farmer,s Guide to Underestanding Water Quality.lllinois-Indiana Sea Grant Program Purdue University.9pp.##Maitera O.N., Ogugbuaja V.O. and Barminas J.T., 2010. An assessment of the organic pollution indicator levels of River Benue in Adamawa State, Nigeria. Journal of Environmental Chemistry and Ecotoxicology, 2(7):110-116. DOI: 10.5897/JECE.##Prasad, B.S.R.V., Srinivasu, P.D.N., Sarada Varma, P., Raman, A.V. and Santanu, R., 2014. Dynamics of Dissolved Oxygen in Relation to Saturation and Health of an Aquatic Body: A Case for Chilka Lagoon, India. Journal of Ecosystems, Article ID 526245, 17 pages DOI:10.1155/2014/526245.##UNECE, 1994. Standard Statistical Classification of Surface Freshwater Quality for the Maintenance of Aquatic Life. In: Readings in International Environment Statistics, United Nations Economic Commission for Europe, United Nations, New York and Geneva.## USEPA (United States Environmental Protection Agency), 1978. Water quality indices: A survey of indices used in the United States, Washington, D.C.20460, USA.## ##Wasielesky, W., Atwood, H., Stokes, A. and Browdy, C.L., 2006. Effect of natural production in a zero exchange suspended microbial floc based super-intensive culture system for White shrimp Litopenaeus vannamei. Aquaculture, 258: 396-403. DOI:10.1016/ j.aquaculture.2006.04.030. ## ##

تاثیر برخی از منابع مختلف کربوهیدراتی بر عملکرد رشد، شاخص های بدنی و فعالیت آنزیم گوارشی آمیلاز در ماهی پنگوسی Pangasiandon hypopthalmus Effect of different dietary carbohydrate source on growth performance, body indices and activity of digestive enzyme (amylase) of Pangasiandon hypopthalmus 1 1 در مطالعه حاضر اثر هفت نوع کربوهیدرات خوراکی بر عملکرد رشد، مصرف خوراک و میزان فعالیت آنزیم هضمی آمیلاز ماهی پنگوسی به مدت ۱۲ هفته مورد بررسی قرار گرفت. نتایج آزمایش نشان داد که ماهیان تغذیه شده با جیره دکسترین و نشاسته سیب زمینی عملکرد رشد بهتری را نسبت به ماهیان تغذیه شده با سایر جیره‌های آزمایشی بجز ماهیان تغذیه شده با جیره حاوی نشاسته گندم داشتند. میزان چربی احشایی ماهیان تغذیه شده با نشاسته گندم و ذرت به صورت معنی­داری بیشتر از میزان چربی احشایی ماهیان تغذیه شده با نشاسته سیب زمینی، آلفا و وکسی مایز بود. همچنین فعالیت آنزیم آمیلاز ماهیان تغذیه شده با نشاسته گندم بیشتر از فعالیت آنزیم آمیلاز ماهیان تغذیه شده با جیره‌های حاوی نشاسته آلفا، نشاسته ساگو، دکسترین و نشاسته سیب زمینی بود. به طور کلی، نتایج مطالعه حاضر نشان داد که دکسترین و نشاسته سیب زمینی منابع مناسبی برای رشد ماهی پنگوسی و مطالعات بعدی در زمینه نیازهای تغذیه­ای این ماهی می­باشند. 2 In the present study, the effect of seven dietary carbohydrate sources on growth performance, feed utilization and amylase activity of Pangasiandon hypopthalmus was evaluated for 12 weeks. Fish subjected to diets containing raw dextrin and potato starch showed a significantly (p< 0.05) higher growth rate than those fish consuming other experimental diets, except wheat starch diet. Furthermore, fish fed with wheat and corn starch showed significantly higher (p<0.05) Interaperitoneal fat value than that of fish fed with potato, Alfa and waxy maize starch. Moreover, fish fed with wheat starch had significantly higher (p<0.05) amylase activity than that of those subjected to other experimental diets, except corn and waxy maize diets. Overall, this study showed that the raw forms of dextrin starch and potato were suitable dietary carbohydrate sources for further scientific studies on the carbohydrate utilisation of P. hypophthalmus. 79 88 2019/04/92019/02/162019/01/122019/03/12019/03/202019/05/122019/04/62019/03/12 1397/12/21 2019/08/272019/08/42019/08/272019/08/272019/08/62019/08/72019/08/102019/08/10 1398/5/19 مهدی آسمانی M. Asemani موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران mehdi.asemani@yahoo.com ابوالفضل سپهداری A. Sepahdari موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران asepahdari@yahoo.com محمود حافظیه M. Hafezieh موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران jhafezieh@yahoo.com شهرام دادگر Sh. Dadgar موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران shdadgar@yahoo.com Pangasiandon hypopthalmus carbohydrate sources growth enzyme activity ماهی پنگوسی منابع کربوهیدرات رشد فعالیت آنزیمی ##باقری، س.، مرادی، م.، عباسی، ک.، میرزاجانی، ع.و رامین، م.، ۱۳۹۴. گزارش تکمیلی ماهیان دریاچه چیتگر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، پژوهشکده آبزی پروری آبهای داخلی کشور. ۹۱ صفحه.##باقری، س.، عباسی، ک.، مرادی، م.، میرزاجانی، ع.و رامین، م.، ۱۳۹۵. مطالعه تنوع گونهای و فراوانی ماهیان دریاچه شهدای خلیج فارس، چیتگرـ تهران. مجله علمی شیلات ایران. ۲۵ (۳): ۲۴-۱۵. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110254##AOAC, 1997. Animal feeds. Chapter 4. In: Official Methods of Analysis Association of official Analytical Chemists International (ed. by P.A. Cunniff), 16th edn. Vol. 1, pp. 1–3. AOAC, Arlington, VA, USA.##Arnesen, P., Krogdahl, A. and Sundby, A., 1995. Nutrient digestibilities, weight gain and plasma and liver levels of carbohydrate in Atlantic salmon (Salmo salar, L.) fed diets containing oats and maize. Aquaculture Nutrition, 1(3): 151-158. DOI:10.1111/j.1365-2095.1995.tb00039.x## ##Asemani, M., Sepahdari, A., Hafezieh., M. and Dadgar, S., 2018. Effect of different carbohydrate-to-lipid ratios elicits on growth, feed utilization, lipid deposition and lipogenic enzyme activity of striped catfish (Pangasianodon hypophthalmus, Sauvage, 1878) fingerlings. Iranian Journal of Fisheries Science. (Article in press). DOI:10.22092/ijfs.2018.117924 ##Bradford, M.M., 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72(1): 248-254. DOI:10.1016/ 0003-2697(76)90527-3##Brauge, C., Medale, F. and Corraze, G., 1994. Effect of dietary carbohydrate levels on growth, body composition and glycaemia in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, reared in seawater. Aquaculture, 123(1): 109-120. DOI:10.1016/0044-8486 (94)90123-6##Cui, X.J., Zhou, Q.C., Liang, H.O., Yang, J. and Zhao, L.M., 2010. Effects of dietary carbohydrate sources on the growth performance and hepatic carbohydrate metabolic enzyme activities of juvenile cobia (Rachycentron canadum Linnaeus.). Aquaculture Research, 42(1): 99-107. DOI:10.1111/j.1365-2109.2010.02574.x##Da, C.T., Lundh, T. and Lindberg, J.E., 2013. Digestibility of dietary components and amino acids in animal and plant protein feed ingredients in striped catfish (Pangasianodon hypophthalmus) fingerlings. Aquaculture Nutrition, 19 (5): 741-750. DOI:10.1111/anu.12021##Enes, P., Panserat, S., Kaushik, S. and Oliva-Teles, A., 2009. Nutritional regulation of hepatic glucose metabolism in fish. Fish Physiology and Biochemistry, 35(3): 519-539. DOI:10.1007/s10695-008-9259-5##Enes, P., Peres, H., Couto, A. and Oliva-Teles, A., 2010. Growth performance and metabolic utilization of diets including starch, dextrin, maltose or glucose as carbohydrate source by gilthead sea bream (Sparus aurata) juveniles. Fish Physiology and Biochemistry, 36(4): 903-910. DOI:10.1007 /s10695-009-9366-y##French, D., 1973. Chemical and physical properties of starch. Journal of Animal Science, 37(4): 1048-1061. DOI:10.2527/ jas1973.3741048x##Hamid, N., Mahayat, M. and Hashim, R., 2011. Utilization of different carbohydrate sources and starch forms by bagrid catfish (Mystus nemurus) (Cuv and Val). Aquaculture Nutrition, 17(2): 10-18. DOI:10.1111/j.1365-2095.2009.00713.x##Hemre, G.I., Mommsen, T. and Krogdahl, Å., 2002. Carbohydrates in fish nutrition: effects on growth, glucose metabolism and hepatic enzymes. Aquaculture Nutrition, 8(3): 175-194. DOI:10.1046/j.1365-2095.2002.00200.x##Hung, S.S., Fynn-Aikins, F.K., Lutes, P.B. and Xu, R., 1989. Ability of juvenile white sturgeon (Acipenser transmontanus) to utilize different carbohydrate sources. Journal of Nutrition, 119: 727-733. DOI:10.1093/jn/119.5.727##Krogdahl, Å., Hemre, G.I. and Mommsen, T., 2005. Carbohydrates in fish nutrition: digestion and absorption in postlarval stages. Aquaculture Nutrition, 11(2): 103-122. DOI:10.1111/j.1365-2095.2004. 00327.x##Lanari, D., Poli, B.M., Ballestrazzi, R., Lupi, P., D'Agaro, E. and Mecatti, M., 1999. The effects of dietary fat and NFE levels on growing European sea bass (Dicentrarchus labrax L.). Growth rate, body and fillet composition, carcass traits and nutrient retention efficiency. Aquaculture, 179 (1): 351-364. DOI:10.1016/S0044-8486(99) 00170-2##Lee, S.M., Kim, K.D. and Lall, S.P., 2003. Utilization of glucose, maltose, dextrin and cellulose by juvenile flounder (Paralichthys olivaceus). Aquaculture, 221(1): 427-438. DOI:10.1016/S0044-8486(03)00061-9##Li, J.N., Wang, C.A., Luo, L., Wang, L.S., Xu, Q.Y. and Zhao, Z.G., 2016. Effects of dietary glucose and starch levels on the growth, haematological indices and hepatic hexokinase and glucokinase mRNA expression of juvenile mirror carp (Cyprinus carpio). Aquaculture nutrition. Aquaculture Nutrition. 22: 550-558. DOI:10.1111/anu.12278##Manners, D., 1974. The structure and metabolism of starch. Essays in biochemistry, 37 (10): 37-71. DOI:1974; 10:37-71.##Muñoz-Ramirez, A.P., 2005. Utilizac¸a˜o de carboidratos digestı´veisem dietas para pacu, Piaractus mesopotamicus (HOLMBERG, 1887). Master,s Thesis, Aquaculture Center, Sa˜o Paulo State University, Jaboticabal, SP, Brazil.##NRC (National Research Council), 1993. Nutrient Requirements of Fish. National Academy Press, Washington, DC, 112 pp.##Planchot, V., Colonna, P. and Buleon, A., 1997. Enzymatic hydrolysis of α-glucan crystallites. Carbohydrate Research, 298(4): 319-326. DOI:10.1016/S0008-6215 (96)00317-5##Ren, M., Habte-Tsion, H.M., Xie, J., Liu, B., Zhou, Q. and Ge, X., 2015. Effects of dietary carbohydrate source on growth performance, diet digestibility and liver glucose enzyme activity in blunt snout bream, Megalobrama Amblycephala. Aquaculture, 438:75–81. DOI:10.1016/ j.aquaculture.2015.01.008##Suarez, M., Hidalgo, M., Gallego, M.G., Sanz, A. and De la Higuera, M., 1995. Influence of the relative proportions of energy yielding nutrients on liver intermediary metabolism of the European eel. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Physiology, 111(3): 421-428. DOI:10.1016/0300-9629(95) 00035-6##Tan, Q., Xie, S., Zhu, X., Lei, W. and Yang, Y., 2006. Effect of dietary carbohydrate sources on growth performance and utilization for gibel carp (Carassius auratus gibelio) and Chinese longsnout catfish (Leiocassis longirostris Günther). Aquaculture Nutrition, 12(1): 61-70. DOI:10.1111/j.1365-2095.2006.00382.x##Tian, L., Liu, Y., Hung, S., Deng, D., Yang, H., Niu, J. and Liang, G.Y., 2010. Effect of feeding strategy and carbohydrate source on carbohydrate utilization by Grass Carp (Ctenopharyngodon idella). American Journal of Agricultural and Biological Sciences, 5(2): 135. DOI: 10.3844/ajabssp. 2010.135.142##Wilson, R.P. and Poe, W.E., 1987. Apparent inability of channel catfish to utilize dietary mono-and disaccharides as energy sources. The Journal of Nutrition, 117 (2): 280-285. DOI:10.1093/jn%2F117.2.280 ##Wilson, R., 1994. Utilization of dietary carbohydrate by fish. Aquaculture, 124 (1): 67-80. DOI:10.1016/0044-8486(94) 90363-8##Worthington, C. C., 1993. Worthington enzyme manual: enzymes and related biochemicals: Worthington Biochemical Corporation.##Zhu, H., Jiang, Q., Wang, Q., Yang, J., Dong, S. and Yang, J., 2013. Effect of Dietary Carbohydrate‐to‐lipid Ratios on Growth Performance, Body Composition, Hepatic Enzyme Activities, and Digestive Enzyme Activities of Juvenile Australian Redclaw Crayfish, Cherax quadricarinatus (von Martens). Journal of the World Aquaculture Society, 44: 73-186. DOI:10. 1111/jwas.12024 ## ##

بررسی فعالیت آنتی‌‌فولینگ عصاره‌‌های خیار دریایی (Stichopus herrmanni) در آزمایشگاه و عملکرد آنها در پوششهای رزین اپوکسی در محیط دریا Antifouling activity of sea cucumber (Stichopus herrmanni) extracts in laboratory and its performance in resin epoxy coats in the sea environment 1 1 توسعه مواد آنتی‌‌فولینگ طبیعی و دوستدار محیط‌‌زیست یک جایگزین مناسب برای حل مشکل جهانی فولینگ دریایی محسوب می‌‌شود. در تحقیق حاضر فعالیت ضد‌‌باکتریایی، ضد‌‌میکروجلبکی، ضد‌‌بارناکل و آنتی‌‌فولینگی عصاره‌‌های غیرقطبی، نیمه‌‌قطبی و قطبی سه بخش مختلف بدن (دیواره بدن، لوله گوارش و درخت تنفسی) خیار‌‌دریایی Stichopus herrmanni بررسی گردید. سنجش فعالیت‌‌ مهاری عصاره‌‌های ان‌‌ هگزانی، اتیل‌‌استاتی و متانولی در آزمایشگاه بر علیه پنج سویه باکتری، دو گونه میکروجلبک و لارو بارناکل آزمایش شد. جهت بررسی عملکرد آنتی‌‌فولینگی، عصاره‌‌ها به پوشش رزین اپوکسی اضافه شده و به مدت سه ماه در دریا جاگذاری شدند. براساس نتایج، عصاره اتیل‌‌استاتی دیواره بدن با کمترین غلظت مهاری (MIC) در مقابله با باکتری S. aureus (500/0 میلی‌‌گرم بر میلی‌‌لیتر) و میکروجلبک I. galbana (125/0 میلی‌‌گرم بر میلی‌‌لیتر) و کمترین غلظت کشنده متوسط (LC50) در مقابله با لارو بارناکل (061/0 میلی‌‌گرم بر میلی‌‌لیتر) دارای بهترین عملکرد بازدارندگی در بین عصاره ها بود. در پایان دوره سه ماهه آزمایش، پنل پوشش دهی شده حاوی 4% عصاره اتیل‌‌استاتی دیواره بدن دارای کمترین وزن نهایی (51/5±67/189 گرم) و کمترین درصد پوشش فولینگ (76/74%) در بین همه پنل‌‌ها بود (05/0>P). با توجه به فعالیت آنتی‌‌فولینگی مناسب عصاره اتیل‌‌استاتی دیواره بدن S. herrmanni، استفاده از آن به عنوان جایگزین بالقوه طبیعی در رنگ‌‌های آنتی‌‌فولینگ قابل پیشنهاد است.   2 Development of natural and environmentally friendly antifouling agents is a suitable alternative to solve the global marine fouling problem. In the current study, antibacterial, anti-micro algal, anti-barnacle and antifouling activity of non-polar, semi-polar and polar extracts from three parts of the sea cucumber, Stichopus herrmanni, body (i.e. body wall, digestive tract and respiratory tree) were studied. The inhibitory activity assay of n-hexan, ethyl acetate and methanol extracts were evaluated against five bacterial strains, two microalgae species and barnacle larvae. In order to investigate the antifouling performance, the extracts were added to a resin epoxy coats and exposed in the sea water for the duration of three months. Based on Results, the ethyl acetate extract of the body wall with the lowest MIC against S. aureus (0.500 mg/ml) and I. galbana (0.125 mg/ml), and the lowest LC50 against barnacle larvae (0.061 mg/ml), showed the best inhibitory activity. After three months treatment, the coated panels containing 4% extract of ethyl acetate from body wall had the lowest final weight (189.67 ± 5.51 g) and lowest fouling cover percentage (74.76%) among all the panels (P<0.05). Regarding the high antifouling activity of ethyl acetate extract from the body wall of the sea cucumber S. herrmanni, it is recommended as a potential natural alternative for the antifouling coats.   89 99 2019/04/92019/02/162019/01/122019/03/12019/03/202019/05/122019/04/62019/03/122019/06/10 1398/3/20 2019/08/272019/08/42019/08/272019/08/272019/08/62019/08/72019/08/102019/08/102019/08/11 1398/5/20 مهرنوش دریا M. Darya دانشگاه گیلان ایران mehrnooshd12@yahoo.com مسعود سجادی M. Sajjadi دانشگاه گیلان ایران mmsajjadi@hotmail.com مرتضی یوسف زادی M. Yousefzadi دانشگاه هرمزگان ایران morteza110110@gmail.com ایمان سوری نژاد I. Sourinejad دانشگاه هرمزگان ایران i_sourinezhad@yahoo.com معروف زارعی M. Zarei دانشگاه هرمزگان ایران maaroof1357@yahoo.com Secondary Metabolites Sea Cucumber Antifouling Resin epoxy متابولیت‌های ثانویه خیار دریایی آنتی‌فولینگ رزین اپوکسی ##دیبا، گ.، جمیلی، ش. و رمضانی، ا.، 1395. بررسی خاصیت آنتی اکسیدانی خیار دریایی Holothuria parva در دو حالت خشک (آبدهی شده) و تازه. مجله علمی شیلات ایران، 25(4): 87-77. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110300##سالاری، ز.، سوری نژاد، ا.، ناظمی، م. و یوسف زادی، م.، 1397. بررسی فعالیت ضد‌ باکتریایی ساپونین استخراج شده از خیار دریایی گونه (Stichopus hermanni) جمع آوری شده از خلیج فارس . مجله علمی شیلات ایران، ۲۷(۱): 69-59. DOI: 10.22092/ISFJ.2018.116406##Bers, A.V., D’Souza, F., Klijnstra, J.W., Willemsen, P.R. and Wahl, M., 2006. Chemical defence in mussels: Antifouling effect of crude extracts of the periostracum of the blue mussel Mytilus edulis. Biofouling, 22: 251–259 . DOI: 10.1080/08927010600901112##Datta, D., Nath Talapatra, S. and Swarnakar, S., 2015. Bioactive Compounds from Marine Invertebrates for Potential Medicines – An Overview. International Letters of Natural Sciences, 34: 42–61. DOI: 10.18052/www. scipress.com/ILNS.34.42##Edwards, C.D., Pawluk, K.A. and Cross, S.F., 2015. The effectiveness of several commercial antifouling treatments at reducing biofouling on finfish aquaculture cages in British Columbia. Aquacultur Reserch, 46: 2225–2235. DOI: 10. 1111/are.12380.## ##Feng, D.Q., Ke, C.H., Lu, C.Y. and Li, S.J., 2009. Herbal plants as a promising source of natural antifoulants: Evidence from barnacle settlement inhibition. Biofouling, 25: 181–190. DOI: 10.1080/08927010802669210##Joshi, M., Mukherjee, A., Misra, S. and Ramesh, U., 2015. Need of Natural Biocides in Antifouling Paints for Prevention of Marine Pollution. International Journal of Innovative Research and Development, 4: 43–49.##Kitano, Y., Akima, C., Yoshimura, E. and Nogata, Y., 2011. Anti-barnacle activity of novel simple alkyl isocyanides derived from citronellol. Biofouling, 27: 201–205. DOI: 10.1080/08927014.2011.553282##Li, Y.X., Wu, H.X., Xu, Y., Shao, C.L., Wang, C.Y. and Qian, P.Y., 2013. Antifouling Activity of Secondary Metabolites Isolated from Chinese Marine Organisms. Marine Biotechnology, 15: 552–558. DOI: 10.1007/ s10126-013-9502-7##Lin, X.Y., Lu, C.Y. and Ye, Y., 2009. Toxicity of crude extracts from several terrestrial plants to barnacle larvae on mangrove seedlings. Ecological Engineering, 35: 502–510. DOI: 10.1016/j.ecoleng.2008.04.013##Liu, H., Chen, S.Y., Guo, J.Y., Su, P., Qiu, Y.K., Ke, C.H. and Feng, D.Q., 2018. Effective natural antifouling compounds from the plant Nerium oleander and testing. International Biodeterioration and Biodegradation, 127: 170–177. DOI: 10.1016/j.ibiod.2017.11.022##Mashjoor, S. and Yousefzadi, M., 2017. Holothurians antifungal and antibacterial activity to human pathogens in the Persian Gulf. Journal of Medical Mycology, 27: 46–56. DOI: 10.1016/j.mycmed.2016.08.008##Mert Ozupek, N. and Cavas, L., 2017. Triterpene glycosides associated antifouling activity from Holothuria tubulosa and H. polii. Regional Studies in Marine Science, 13: 32–41. DOI: 10.1016/j.rsma.2017.04.003##Purcell, S., Samyn, Y. and Conand, C., 2012. Commercially important sea cucumbers of the world. FAO Species Catalogue for Fishery Purposes No. 6. FAO, Rome. 155 p.##Rajan, R., Selvaraj, M., Palraj, S. and Subramanian, G., 2016. Studies on the anticorrosive and antifouling properties of the Gracilaria edulis extract incorporated epoxy paint in the Gulf of Mannar Coast, Mandapam, India. Progress in Organic Coatings, 90: 448–454. DOI: 10.1016/j.porgcoat.2015.11.008##Ralston, E. and Swain, G., 2009. Bioinspiration - The solution for biofouling control?. Bioinspiration and Biomimetics, 4: 015007. DOI: 10.1088/1748-3182/4/1/015007##Saltan, G. and Bahadr, Ö., 2012. Column Chromatography for Terpenoids and Flavonoids, in: Chromatography and Its Applications. In Tech, pp. 13–50. DOI: 10. 5772/36680##Schultz, M.P., Bendick, J.A., Holm, E.R. and Hertel, W.M., 2011. Economic impact of biofouling on a naval surface ship. Biofouling, 27: 87–98. DOI: 10.1080/08927014.2010. 542809##Soliman, Y.A., Mohamed, A.S. and NaserGomaa, M., 2014. Antifouling activity of crude extracts isolated from two Red Sea puffer fishes. Egyptian Journal of Aquatic Research, 40: 1–7. DOI: 10.1016/j.ejar.2014.01.002##Suresh, M., Iyapparaj, P. and Anantharaman, P., 2016. Antifouling Activity of Lipidic Metabolites Derived from Padina tetrastromatica. Applied Biochemistry and Biotechnology, 179: 805–818. DOI: 10.1007/ s12010-016-2032-9##Thakur, N.L., Thakur, A.N. and Müller, W.E.G., 2005. Marine natural products in drug discovery. Natural Product Radiance, 4: 471–477.##Vanden Berghe, D.A. and Vlietinck, A.J., 1991. Screening methods for antibacterial and antiviral agents from higher plants, in: Dey, P.., Harbone, J.. (Eds.), Methods in Plant Biochemistry. Academic press, London, pp. 47–69.##Wang, J., Su, P., Gu, Q., Li, W.D., Guo, J.L., Qiao, W., Feng, D.Q. and Tang, S.A., 2017. Antifouling activity against bryozoan and barnacle by cembrane diterpenes from the soft coral Sinularia flexibilis. International Biodeterioration and Biodegradation, 120: 97–103. DOI: 10.1016/j.ibiod.2017.02.013##Xie, Q., Pan, J., Ma, C. and Zhang, G., 2019. Dynamic surface antifouling: mechanism and systems. Soft Matter, 15: 1087–1107. DOI: 10.1039/C8SM01853G##Xin, X., Huang, G., Zhou, X., Sun, W., Jin, C., Jiang, W. and Zhao, S., 2017. Potential antifouling compounds with antidiatom adhesion activities from the sponge-associated bacteria, Bacillus pumilus. Journal of Adhesion Science and Technology, 31: 1028–1043. DOI: 10.1080/01694243.2016.1242219##Yang, C., Sun, W., Liu, S. and Xia, C., 2015. Comparative effects of indole derivatives as antifouling agents on the growth of two marine diatom species. Chemistry and Ecology, 31: 299–307. DOI: 10.1080/02757540.2015. 1022536 ## ##

استخراج و خالص‌سازی آنزیم تریپسین از روده ماهی سفید (Rutilus frisii kutum) و محاسبه پارامترهای سینتیک و نیمه عمر آن Extraction and purification of Trypsin from intestine of Caspian kutum (Rutilus frisii Kutum) and Calculation of its Kinetic parameters and Half Life 1 1 در دهه‌های اخیر بازیافت و شناسایی آنزیم های گوارشی از ماهیان توجه زیادی را به خود جلب کرده است و کاربردهای جدیدی نیز برای این آنزیم ها در برخی از صنایع، از قبیل صنعت غذا و صنایع شوینده تعریف شده است. یکی از این آنزیم‌های استخراجی تریپسین است که در این پژوهش با استفاده از روش سه مرحله‌ای استخراج با بافر Tris–HCl 50 میلی مولار (حاوی 10 میلی مولارCaCl2  با pH 5/7)، ترسیب با سولفات آمونیوم60% اشباع و کروماتوگرافی غربالی Sephadex G-75 از روده ماهی سفید استخراج و خالص‌سازی شد و در نتیجه آن بازده 52% و میزان تخلیص 78/25 برابر (fold) بدست آمد. پارامترهای سینتیکی Vmax و Km با استفاده از معادله میکائیلس-منتن برای سوبسترای BAPNA بترتیب 9958/2 میکرومول بر میلی‌گرم در دقیقه و 5350/0 میلی‌مول محاسبه گردید و Kcat نیز S-1 2568/6  بدست آمد. نیمه عمر تریپسین روده ماهی سفید نیز با استفاده از تبدیل نمودار فعالیت آنزیم (دقیقه) به نمودار لگاریتم طبیعی و محاسبه شیب آن برابر با 72/58 دقیقه برای سوبسترای BAPNA محاسبه شد. نتایج نشان داد که تریپسین روده ماهی سفید با سهولت و هزینه کم قابل جداسازی و خالص‌سازی است و از لحاظ سینتیکی کارایی بالاتری نسبت به تریپسین تجاری (خوک) دارد و قابلیت استفاده را در صنایع غذایی، صنایع شیلات، تهیه محیط کشت میکروبی و همچنین کاربرد درتحقیقات بیوتکنولوژی دارد. 2 In recent decades, recovery and identification of digestive enzymes from fish has attracted much attention and new applications for these enzymes have been defined in some industries, such as the food and detergent industries. One of these recovered enzymes is Trypsin, which in this study was extracted and purified from the intestine of Caspian kutum using a three-step extraction method with 50 mM Tris-HCl buffer (containing 10 mM CaCl2 pH 7.5), 60% ammonium sulfate precipitation and Sephadex G-75 gel chromatography. The Result was an enzyme with 52% yield and a purity of 25.78-fold. The kinetic parameters of Vmax and Km for BAPNA substrate were calculated using the Michaelis-Menten equation and were 2.9958 µmol/mg.min and 0.5350 mM respectively and Kcat was 6.2568 S-1. The kutum Trypsin’s half-life was also calculated as 58.72 min for BAPNA substrate using the conversion of the enzyme activity graph (in minutes) to natural logarithmic graph and determining its slope. The results showed that it is easy and economical to extract and purify Trypsin from intestine of Caspian kutum and it is kinetically more effective than commercial Trypsin. It is suitable for use in the food industries, fish processing industry, culture media production as well as application in biotechnology research. 101 110 2019/04/92019/02/162019/01/122019/03/12019/03/202019/05/122019/04/62019/03/122019/06/102018/05/25 1397/3/4 2019/08/272019/08/42019/08/272019/08/272019/08/62019/08/72019/08/102019/08/102019/08/112019/08/27 1398/6/5 زهره حاسبی Z. Hasebi گروه علوم و صنایع غذایی، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی ساری ایران zhasebi@yahoo.com علی معتمدزادگان A. Motamedzadegan گروه علوم و صنایع غذایی، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی ساری ایران amotgan@yahoo.com رسول مدنی R. Madani گروه بیوتکنولوژی مؤسسۀ تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی ایران madanirasool@gmail.com عباس زمانی A. Zamani گروه شیلات دانشکدۀ منابع طبیعی و محیط زیست دانشگاه ملایر ایران a.zamani@malayeru.ac.ir kutum Trypsin Half-life BAPNA ماهی سفید تریپسین نیمه عمر BAPNA ##دریانبرد، غ.، فضلی، ح.، تقوی مطلق، س. ا. ا.، بندانی، غ.، پورغلامی مقدم، ا.، 1398. سن، رشد و مقدار زی‌توده ماهی سفید (Rutilus frisii, Kamensky., 1901) در آبهای ایرانی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. 28 (4) :79-87. (DOI: 10.22092/ISFJ.2019.119433)##زمانی ع.، رضایی م.، مدنی ر.، 1390. اثرات برخی از عوامل بیوشیمیایی بر فعالیت آنزیم تریپسین روده و ضمائم پیلوریک کیلکای معمولی (Clupeonella cultriventris caspia) برای جلوگیری از پدیده هضم دیواره شکمی در محیط in vitro. مجله علمی شیلات ایران. ۲۰ (۴) :۵۳ -62. (DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110023)##عبدلی ا.، نادری م.، 1387. تنوع زیستی ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر. انتشارات علمی آبزیان، تهران : 137-140##Abd, A.S. and Ghaninezhad, D., 2007. Stock assessment of the Caspian Sea in Kutum (Rutilus frisii Kutum) Iranian coastal waters of the Caspian Sea. ##Ahsan, M.N. and Watabe, S., 2001. Kinetic and structural properties of two isoforms of trypsin isolated from the viscera of Japanese anchovy, Engraulis japonicus. Journal of protein chemistry, 20(1): 49-58. DOI:10.1023/A: 1011005104727##Ben Khaled, H., Bougatef, A., Balti, R., Triki‐Ellouz, Y., Souissi, N. and Nasri, M., 2008. Isolation and characterisation of trypsin from sardinelle (Sardinella aurita) viscera. Journal of the Science of Food and Agriculture, 88(15): 2654-2662. DOI:10.1002/jsfa.3386##Bougatef, A., Souissi, N., Fakhfakh, N., Ellouz-Triki, Y. and Nasri, M., 2007. Purification and characterization of trypsin from the viscera of sardine (Sardina pilchardus). Food Chemistry, 102(1): 343-350. DOI:10.1016/j.foodchem. 2006.05.050##Burgess, R.R., 2009. Chapter 20 Protein Precipitation Techniques. In R. R. Burgess and M. P. Deutscher (Eds.). Academic Press. Methods in Enzymology, 463: 331-342. ##Cancre, I., Ravallec, R., Van Wormhoudt, A., Stenberg, E., Gildberg, A. and Le Gal, Y., 1999. Secretagogues and growth factors in fish and crustacean protein hydrolysates. Marine Biotechnology, 1(5): 489-494. DOI:10.1007/ PL00011805 ##Castillo-Yánez, F.J., Pacheco-Aguilar, R., García-Carreño, F.L. and de los Ángeles Navarrete-Del, M., 2005. Isolation and characterization of trypsin from pyloric caeca of Monterey sardine Sardinops sagax caerulea. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology, 140(1): 91-98. DOI:10.1016/j.cbpc.2004.09.031 ##Chaplin, M.F. and Bucke, C., 1990. Enzyme Technology: Cambridge University Press.##Ghaninejad, D., Abdolmalaki, S. and Kuliyev, Z.M., 2010. Reproductive biology of the golden grey mullet, Liza aurata in the Iranian coastal waters of the Caspian Sea. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 9(3): 402-411. ##Kanno, G., Kishimura, H., Ando, S., Klomklao, S., Nalinanon, S., Benjakul, S. and Saeki, H., 2011. Structural properties of trypsin from cold-adapted fish, arabesque greenling (Pleurogrammus azonus). European Food ## ##Research and Technology, 232(3): 381-388. DOI:10.1007/s00217-010-1404-6##Khantaphant, S. and Benjakul, S., 2010. Purification and characterization of trypsin from the pyloric caeca of brownstripe red snapper (Lutjanus vitta). Food Chemistry, 120(3): 658-664. DOI:10.1016/j.foodchem.2009.09.098##Ktari, N., Khaled, H. B., Nasri, R., Jellouli, K., Ghorbel, S. and Nasri, M., 2012. Trypsin from zebra blenny (Salaria basilisca) viscera: Purification, characterisation and potential application as a detergent additive. Food Chemistry, 130(3): 467-474. DOI:10.1016/ j.foodchem.2011.07.015##Lineweaver, H. and Burk, D., 1934. The determination of enzyme dissociation constants. Journal of the American Chemical Society, 56(3): 658-666. DOI:10.1021/ja01318a036 ##Lowry, O.H., Rosebrough, N.J., Farr, A.L. and Randall, R.J., 1951. Protein measurement with the Folin phenol reagent. Journal of biological Chemistry, 193(1): 265-275. ##Michaelis, L. and Menten, M.L., 1913. Die kinetik der invertinwirkung. Biochemische Zeitschrift, 49(333-369): 352. ##Nasri, R., Sila, A., Ktari, N., Lassoued, I., Bougatef, A., Karra-Chaâbouni, M. and Nasri, M., 2012. Calcium dependent, alkaline detergent-stable trypsin from the viscera of Goby (Zosterisessor ophiocephalus): Purification and characterization. Process Biochemistry, 47(12): 1957-1964. DOI:10.1016/ j.procbio.2012.07.002 ##Pazhang, M., Mehrnejad, F., Pazhang, Y., Falahati, H. and Chaparzadeh, N., 2016. Effect of sorbitol and glycerol on the stability of trypsin and difference between their stabilization effects in the various solvents. Biotechnology and applied biochemistry, 63(2): 206-213. DOI: 10.1002/bab.1366 ##Shahidi, F. and Kamil, Y.J., 2001. Enzymes from fish and aquatic invertebrates and their application in the food industry. Trends in Food Science and Technology, 12(12): 435-464. DOI:10.1016/S0924-2244(02)00021-3 ##Simpson, B.K., 2000. Digestive proteinases from marine animals. Food science and technology-new york-marcel dekker, 191-214. ##Souza, A.A., Amaral, I.P., Santo, A.R.E., Carvalho, L.B. and Bezerra, R.S., 2007. Trypsin-like enzyme from intestine and pyloric caeca of spotted goatfish (Pseudupeneus maculatus). Food Chemistry, 100(4): 1429-1434. DOI:10.1016/j.foodchem.2005.12.016##Van Hau, P. and Benjakul, S., 2006. Purification and characterization of trypsin from pyloric caeca of bigeye snapper (Pricanthus macracanthus). Journal of Food Biochemistry, 30(4): 478-495. DOI:10.1111/j.1745-4514. 2006.00089.x##Villalba-Villalba, A.G., Ramírez-Suárez, J.C., Valenzuela-Soto, E.M., Sánchez, G.G., Ruiz, G.C. and Pacheco-Aguilar, R., 2013. Trypsin from viscera of vermiculated sailfin catfish, Pterygoplichthys disjunctivus, Weber, 1991: Its purification and characterization. Food Chemistry, 141(2): 940-945. DOI:10.1016/ j.foodchem.2013.03.078##Whitaker, J.R., Voragen, A.G. and Wong, D.W., 2003. Handbook of food enzymology: Marcel Dekker.##Wingfield, P., 1998. Protein Precipitation Using Ammonium Sulfate. Current Protocols in Protein Science, 13(1): A.3F.1-A.3F.8. DOI: 10.1002/0471140864.psa03fs13##Zamani, A., Rezaei, M., Madani, R. and Habibi Rezaie, M., 2014. Trypsin enzyme from viscera of common kilka (Clupeonella cultriventris caspia): purification, characterization, and its compatibility with oxidants and surfactants. Journal of Aquatic Food Product Technology, 23(3): 237-252. DOI:10.1080/10498850.2012. 712630. ##

لیست به‌روز شده و پراکنش جغرافیایی ماهیان در استان کهگیلویه و بویراحمد Updated checklist and geographical distribution of fishes in Kohgiluyeh and Boyer-Ahmad Province 1 1 مطالعه حاضر با هدف ارزیابی تنوع گونه­ای و پراکنش جغرافیایی ماهیان استان کهگیلویه و بویراحمد و ارائه لیست به‌روز شده ماهیان در این استان، انجام پذیرفت. نمونه‌برداری‌ها از رودخانه­های بشار، زهره، سمه و مارون در حوضه آبریز دجله در سرتاسر استان طی سال‌های 1396 و 1397 انجام شد. درمجموع 27 گونه ماهی متعلق به 18 جنس و 5 خانواده، شامل ده گونه بومزاد، چهارده گونه بومی و سه گونه غیربومی شناسایی شدند. از این میان 9 گونه ماهی افزون بر آخرین لیست منتشرشده ماهیان استان، گزارش شد. همچنین نقاط داغ تنوع زیستی ماهیان در استان شناسایی شدند، تهدیدات تنوع زیستی ماهیان استان مورد بررسی قرار گرفت و جهت حفاظت از این تنوع زیستی غنی راهکارهایی ارائه شده است.   2 The present study aimed to investigate the biodiversity and distribution of fishes in Kohgiluyeh and Boyer-Ahmad Province, and providing an updated checklist of fishes in this province. Samplings were done in the Bashar, Zohreh, Semmeh and Maroun rivers drainages troughout this province during 2017-2018. Overal, 27 specices belonging to 18 genera and 4 families were identified, including ten endemic, fourteen native and three exotic species. From these, 9 more species are listed for the province comparing the previous checklist. Also, ichthyodiversity hotspots in the province were introduced, ichthyodiversity threats were investigated and some protection solutions are suggested.   111 119 2019/04/92019/02/162019/01/122019/03/12019/03/202019/05/122019/04/62019/03/122019/06/102018/05/252019/05/16 1398/2/26 2019/08/272019/08/42019/08/272019/08/272019/08/62019/08/72019/08/102019/08/102019/08/112019/08/272019/08/27 1398/6/5 یاسر فاطمی Yaser Fatemi دانشگاه هرمزگان ایران y.fattemi@gmail.com مختار عموئی mokhtar Amoei دانشگاه چابهار ایران amoie.mokhtar@gmail.com سید حامد موسوی ثابت Seyed hamed mousavi sabet دانشگاه گیلان ایران mosavii.h@gmail.com Biodiversity the Tigris River drainage Zagros Cyprinidae تنوع زیستی حوضه آبریز دجله زاگرس کپورماهیان ##Alizadeh-Sabet, H., 2014. Ichthiofauna of Jarahi river in the Kohgiluyeh and Boyer-Ahmad and Khuzestan Province. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 12(1): 1-14.##Alvan, H.N., Zareian, H. and Esmaeili, H.R., 2016. Capoeta coadi, a new species of cyprinid fish from the Karun River drainage, Iran based on morphological and molecular evidences (Teleostei, Cyprinidae). ZooKeys, 572: 155–180. Doi: 10.3897/zookeys.572.7377##Askari, Gh. and Shabani, A., 2013. Genetic diversity evaluation of Paraschistura bampurensis (Nikolskii, 1900) in Shapour and Berim Rivers (Iran) using microsatellite markers. African Journal of Fisheries Science, 1(2): 11-15. Doi: 10.5897/JCBG12.007##Askari, Gh., Shabani, Ali. and Rezaei, H.R., 2013a. Genetic diversity of Garra rufa (Berg, 1914) in the Kohgiluyeh and Boyer-Ahmad province by using microsatellite marker. Journal of animal environment, 4(4): 123-132. (in Persian)##Askari, Gh., Shabani, A. and Rezaei, H.R., 2013b. Genetic diversity of Garra persica (Berg, 1914) in the Kohgiluyeh and Boyer-Ahmad province by using microsatellite marker. Journal of animal environment, 5(4): 39-47. (in Persian).## ##Bagenal, T., 1978. Methods for assessment of fish production in fresh water, 3rdedtion. Oxford, London, UK. 365P.##Esmaeili, H.R., Sayyadzadeh, G., Eagderi, S. and Abbasi., 2018. Checklist of freshwater fishes of Iran. FishTaxa, 3(3): 1-95.##Freyhof, J., Esmaeili, H.R., Sayyadzadeh, G. and Geiger, M., 2014. Review of the crested loaches of the genus Paracobitis from Iran and Iraq with the description of four new species (Teleostei: Nemacheilidae). Ichthyological Exploration of Freshwaters, 25(1): 11-38.##Gandomkar, S., Daneshvar, F. and Aurangi, M., 2014. Modeling the Relationship between Human Climate Biology and Elevation (Case Study: Kohgiluyeh and Boyerahmad Province). Quarterly Journal of Tourism. Geographical Journal of Tourism Space, 4(13): 41-57. (in Persian)##Ganjoor, M., Zorriehzahra, S., Mehrabi, M., Ghaedi, A., Ghasemi, M. and Rastiannasab A., 2017. Continuous health monitoring and disapproval of IHN (Infectious Hematopoietic Necrosis Virus) presence in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) broodstock by cell culture and molecular methods (RT-PCR) from 2012 to 2016 in the suburb of Yasuj (Iran). Iranian Scientific Fisheries Journal, 26(4):189-193. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.113967##Hosseini, S.A., Zahra, S.J., Sepahdari, A., Salahi, M.M. and Kazemi, E., 2019. Comparison of perfish solution efficiency with malachite green and formalin on fungal contamination control of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) eggs in incubation stage. Iranian Scientific Fisheries Journal, 28(4): 177-187. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.119394##Koraee, N., 2014. Natural and Historical Geography of Kohgiluyeh and Boyerahmad Province. 1st edition. Arvann, Tehran, Iran. 874 p.(in Persian)##Nelson, J.S., Grande, T.C. and Wilson, M.V., 2016. Fishes of the world. John Wiley and Sons, 4st edition Inc. New York, USA. 601P.##Tabiee, O., Boustani, F., Vatandoust, S., 2014. The ichthyofauna of the Beshar River in Kohkiluyeh and Boyer-Ahmad Province, southwest Iran. Iranian Journal of Animal Biosystematics, 10(1): 29-35. https://doi.org/10.22067/ijab.v10i1.30757##Taylor, C.M., Holder, T.L., Fiorillo, R.A., Williams, L.R., Thomas, R.B. and Warren, J.R., 2006. Distribution, abundance and diversity of stream fishes under variable environmental conditions. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 63(1): 43-54. DOI: 10.1139/f05-203##Youngs, W. and Robson, O., 1978. Estimation of population number and mortality rates In: Bagenal, T.B., (Ed.). Methods for assessment of fish production in freshwater. Third edition. Blackwell Scientific Publication, London, UK. pp. 137-164.##Zamaniannejad, R., Esmaeili, H.R and Tabiee, O., 2015. The ichthyofauna of headwaters of three riverine systems in Kohgiluyeh and Boyer-Ahmad Province in southwest of Iran. Iranian Journal of Science and Technology, 39: 117-121. DOI: 10.22099/ijsts.2015.3008##Zargham-Pourboyerahmad, R., 2015. The most important herbs of Fourth land, Kohgiluyeh and Boyerahmad province. 1st Agricultural education research, Tehran, Iran. 190 p. (in Persian)## ##

تاثیر غنی سازی جیره با جلبک پادینا (Padina astraulis Hauck) بر شاخص‌‌های ایمنی سرم خون ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) در مواجهه با نانو اکسید روی Effect of dietary enrichment of Padina algae (Padina astraulis Hauck) on serum immune indices of Common carp Cyprinus carpio in exposure to zinc oxide nanoparticle 1 1 استفاده از محرک‌‌های ایمنی نظیر جلبک‌‌ها در بالا بردن ایمنی نقش اساسی دارد. از سویی، وجود نانوذرات بر وضعیت فیزیولوژیک ماهیان اثر‌‌گذار بوده و باعث کاهش عملکرد ایمنی ماهیان می‌‌شود. از اینرو، هدف از این تحقیق بررسی تاثیر غنی سازی جیره با جلبک پادینا (Padina astraulis Hauck) بر شاخص‌‌های ایمنی سرم خون ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) در مواجهه با نانو اکسید روی بود. تعداد 250 بچه‌‌ماهی کپور معمولی به‌‌مدت 42 روز در چهار گروه، جیره  فاقد جلبک (تیمار 1، شاهد)، غذای حاوی درصدهای مختلف جلبک در جیره شامل 5/0 درصد جلبک (تیمار 2)، غذای حاوی 1 درصد جلبک ( تیمار3) و غذای حاوی 2 درصد جلبک (تیمار 4) تقسیم شدند. سپس به آب مخازن هر کدام از گروه‌ها، 50 درصد غلظت کشنده نانو اکسید روی (5/1 میلی گرم بر لیتر) به‌‌مدت چهارده روز اضافه ‌شد. نتایج تحقیق حاضر نشان داد که در مجموع تیمارهای آزمایشی بر میزان پروتئین‌‌کل، ایمونوگلوبولین، آلبومین سرم خون تاثیر معنی‌‌داری داشت (05/0P<)، ولی بر شاخص گلوکز سرم خون تاثیر معنی‌‌داری نداشت (05/0P>). هم‌‌چنین تیمارهای آزمایشی بر میزان آسپارتات ترانسامیناز (AST)، آلکالین فسفاتاز (ALP) و آلانین ترانسامیناز (ALT) سرم خون ماهی تاثیر معنی‌‌داری داشت (05/0P<)؛ میزان این شاخص‌‌ها در اثر تیمارهای تغذیه شده با جلبک پادینا به‌‌طور معنی‌‌داری افزیش یافت. همچنین میزان این شاخص‌‌ها در تیمار در معرض نانو اکسید روی و در تیمارهای ترکیب نانو اکسید روی و جلبک نیز افزایش معنی‌‌داری یافت. با توجه به نتایج تحقیق حاضر می‌‌توان نتیجه گرفت که بنظر می‌‌رسد جلبک پادینا تا حدی توانسته اثر کاهشی نانو اکسید روی را بر شاخص پروتئین کل و ایمونوگلوبولین سرم خون را بهبود ببخشد که نیاز به تحقیقات بیشتر در این زمینه است.     2 The use of immune stimulants such as algae has a key role in enhancing of immunity. On the other hand, the presence of nanoparticles affects the physiological status of fish and reduces their immune function. Therefore, the purpose of this study was to investigate the effect of enrichment of diet with algae on carp serum immune parameters in exposure to zinc oxide. 250 common carp were divided in four groups for 42 days, algae-free (treatment 1, control), food containing 0.5% algae (treatment 2), food containing 1% algae (treatment 3) and food containing 2% algae (treatment 4), then 50% of acute concentration of zinc oxide nanoparticles (1.5 mg/l) was added to each of the groups over a period of fourteen days. The results of this study showed that in general, experimental treatments had a significant effect on serum protein, immunoglobulin and serum albumin levels (P<0.05), but there was no significant effect on serum glucose (P>0.05). Also, experimental treatments had a significant effect on ASA, ALP and ALT levels (P<0.05). The significantly increased rate of these indices was due to treatments fed with algae. Also, these indices increased significantly in treatment of zinc oxide and also in zinc with algae group. Experimental treatments did not had a significant effect on blood glucose level (P>0.05). It can be concluded that Padina algae may partially improve the reducing effect of nano-oxide on serum total protein and immunoglobulin levels, which requires further research in this regard.   121 129 2019/04/92019/02/162019/01/122019/03/12019/03/202019/05/122019/04/62019/03/122019/06/102018/05/252019/05/162019/03/1 1397/12/10 2019/08/272019/08/42019/08/272019/08/272019/08/62019/08/72019/08/102019/08/102019/08/112019/08/272019/08/272019/09/3 1398/6/12 سپیده غنی sepideh Ghani دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران ایران mehrdadi2009@gmail.com سعید مداح saeid maddah دانشکده محیط زیست، دانشگاه تهران، تهران، ایران ایران maddah.insf@gmail.com سید علی اکبر هدایتی Aliakbar Hedayati دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران ایران hedayati@gau.ac.ir فرحناز کاکاوند farhnaz kakavand دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران ایران kakavand1393@gmail.com عاطفه ایری atefeh iri دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران ایران iri1375@yahoo.com حبیب اله سنچولی habib sanchooli دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران ایران habibsanchooli@yahoo.com روح اله شیخ ویسی ruhollah sheikh veisi دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران ایران roholla_veisi@yahoo.com Algae Aquatic Resistance Improvement Metal Nanoparticles آبزی بهبود مقاومت نانو ذرات فلزی جلبک ##رادگهر، ن.1390. تفسیر بیوشیمی بالینی . انتشارات ایل آرمان .چاپ اول . صفحات 740.##ستاری، م.، شاهسونی، د. و شفیعی، ش. 1382. ماهی‌‌شناسی2. نشر حق‌‌شناس. 597صفحه.##سهلی، م.، 1397. اثرات سطوح مختلف سدیم آلژینات با وزن مولکولی پایین بر عملکرد رشد، شاخص‌های ایمنی غیراختصاصی سرم و بیان ژن‌های مربوط به ایمنی در ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio)، پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، 77 صفحه.##طاعتی، ر و نوعی تعادلی، ح. 1394. تعیین عملکرد رشد و برخی از پارامترهای خونی و ایمنی ماهی کپور معمولی تغذیه شده با سطوح مختلف کارواکرول، آنتول و لیمونن. گروه شیلات، واحد تالش، دانشگاه آزاد اسلامی، تالش، ایران. مجله علمی- پژوهشی زیست شناسی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. 6(25): 35-42.##فروردین، ش.، کلنگی میاندره، ح.، شعبانی، ع.، حسینی فر، ح. و رمضان‌‌پور، س. 1396. اثرات جیره حاوی گالاکتوالیگوساکارید بر بیان ژن درگیر در اشتها (گرلین) و برخی پارامترهای ایمنی سرم و رشد ماهی قرمز (Carassius auratus gibelio)، نشریه فناوری های نوین در توسعه آبزی پروری، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد آزادشهر. 11(2): 13-28.##محمودی، ن.، عابدیان کناری، ع. و سلطانی، م. 1387 .تاثیر سطوح مختلف نوکلئوتید جیره بر شاخص‌‌های رشد، بقا و آنزیم‌‌های کبدی ماهی آزاد دریای خزر .Salmotrutta caspicus مجله علمی شیلات ایران، 17(4): 123-132.##هدایتی، ع.، جهانبخشی، ع. و قادری رمازی، ف. 1392. سم شناسی آبزیان، جلد اول، چاپ اول،ص 70-76.##Choi, Y.H., Lee, B.J. and Nam, T.J., 2015. Effect of dietary inclusion of Pyropia yezoensis extract on biochemical and immune responses of olive flounder Paralichthys olivaceus. Aquaculture, 435: 347-353. Doi:10.1016/j.aquaculture.2014.10.010.##Christ-Crain M., Meier Cpuder J., Staub J., Huber P. and Keller, U., 2004. Changes in liver function correlate with the improvement of lipid profile after restoration of euthyroidism inpatients with subclinical hypothyroidism. Experimental and Clinical Sciences: International Online Journal for Advances in Science, 3:1-9. DOI: 10.17877/DE290R-14916.##Drotman R. and Lawhan G., 1987. Serum enzymes are indications of chemical induced liver damage. Drug and Chemical Toxicology, 1: 163-171. DOI: 10.3109/01480547809034433.##Fleurence, J., Moran ais, M., Dumay, J., Decottingnies, P., Turpin, V., Munier, M., GarciaBueno, N. and Jaouen, P., 2012. What are the prospects for using seaweed in human nutrition and for marine animals raised through aquaculture? Trends Food Science and Technology, 27: 57-61. Doi: 10.1016/j.tifs.2012.03.004.##Gong, P., Li, H., He, X., Wang, K., Hu, J., Tan, W. and Yang, X., 2007. Preparation and antibacterial activity of Fe3O4@ Ag nanoparticles. Nanotechnology, 18(28): 285604.‌ Doi: /10.1088/0957-4484/18/28/285604.##Hoseinifar, S.H., Sharifian, M., Vesaghi, M.J., Khalili, M. and Esteban, M.Á., 2014. The effects of dietary xylooligosaccharide on mucosal parameters, intestinal microbiota and morphology and growth performance of Caspian white fish (Rutilus frisii kutum) fry. Fish & shellfish immunology, 39(2): 231-236. DOI: 10.1016/j.fsi.2014.05.009.## ##Houng-Yung, C., Yu-Chun, C., Li-Chi, H. and Meng-Hsien, C., 2014. Dietary zinc requirements of juvenile grouper, Epinephelus malabaricus. Aquaculture, 432: 360-364. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2014.05.020.##John, P.J., 2007. Alteration of certain blood parameters of freshwater teleost Mystus vittatus after chronic exposure to Metasystox and Sevin. Fish Physiology Biochemistry, 33: 15-20. DOI: 10.1111/jwas.12373.##Mustafa, M.G., Takeda, T., Umino, T., Wakamatsu, S. and Nakagawa, H., 1994. Effects of Ascophyllum and Spirulina meal as feed additives on growth performance and feed utilization of red Sea bream, Pagrus major. Journal of the Faculty of Applied Biological Sciences, 33: 125-132. Doi: 10.15027/24679.##Park, E.J., Bae, E., Yi, J., Kim, Y., Choi, K. and Lee, S.H., 2010. Repeated-dose toxicity and inflammatory responses in mice by oral administration of silver nanoparticles. Environmental Toxicology and Pharmacology, 30(2): 162-168. DOI: 10.1016/j.etap.2010.05.004.##Riche, M., 2007. Analysis of refractometry for determining total plasma protein in hybrid striped bass (Morone chrysops × M. saxatilis) at various salinities. Aquaculture, 264: 279–284. Doi:10.1016/j.aquaculture.2006.12.018.##Stoimenov, P.K., Klinger, R.L., Marchin, G.L., and Klabunde, K.J., 2002. Metal oxide nanoparticles a bactericidal agents. Langmuir, 18: 6679-6686. Doi: 10.1021/la0202374.##Yousefi Babadi, V., Najafi, L., Najafi, A., Gholami, H. and Beigi, M.E., 2013. Evaluation of iron oxide nanoparticles effects on tissue and enzymes of liver in rats. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Sciences, 23(4): 13226-13229.##Zhao, L., Hernandez-Viezcas, J.A., Peralta-Videa, J.R., Bandyopadhyay, S., Peng, B., Munoz, B., Keller, A.A. and Gardea-Torresdey, J.L., 2013. ZnO nanoparticle fate in soil and zinc bioaccumulation in corn plants (Zea mays) influenced by alginate. Environmental Science: Processes and Impacts, 15(1): 260-266. DOI: 10.1039/C2EM30610.##Zheng, J.L., Luo, Z., Zhu, Q.L., Hu, W., Zhuo, M.Q., Pan, Y.X., Song, Y.F. and Chen, Q.L., 2014. Different effect of dietborne and waterborne Zn exposure on lipid deposition and metabolism in juvenile yellow catfish Pelteobagrus fulvidraco. Aquatic Toxicology, 159: 90-98. DOI: 10.1016/j.aquatox.2014.12.003. ##

مطالعه تاثیر شوری‌های مختلف محیطی بر سلول های کلراید آبشش ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) به روش ایمونوهیستوشیمی و فراساختاری Immunohistochemical and ultrastructural study of the effect of different salinities on gill chloride cells of Cyprinus Carpio 1 1 تعداد 120 قطعه ماهی کپور معمولی به مدت دو هفته در تیمار با شوری­های  ppt 4، ppt 8، ppt 12 و آب شیرین با سه تکرار قرار داده شدند. در پایان دوره جهت مطالعات هیستومورفولوژی نمونه­هایی از آبشش با  ضخامت µ4 تا µ 6 تهیه شد. همچنین برای مطالعات ایمونوهیستوشیمی و فراساختاری نمونه­های مورد نظر برداشت گردید. نتایج حاکی از آن بود که در موضع فیلامنتی بیشترین تعداد سلول­های کلراید مربوط به شوری ppt 8 و کمترین تعداد در تیمار شاهد، بزرگترین اندازه در شوری ppt 12 و کوچکترین متعلق به شوری ppt 4 گزارش گردید. در موضع لاملایی یشترین تعداد سلول­های کلراید در شوری ppt 4 و کمترین در تیمار شاهد بدون تغییر در اندازه مشاهده شد. در مطالعات ایمونوهیستوشیمی سلول­های کلراید به تعداد زیاد در اپیتلیوم فیلامنتی و به تعداد کمتر در اپیتلیوم لاملایی در شوری­های مختلف در قسمت رأسی، پایه و بین لاملاها روی فیلامنت بین لاملایی حضور داشتند. بر اساس مطالعات فراساختاری غشاء رأسی سلول­های کلراید شامل فرورفتگی­های عمیق، کم عمق و برآمده بود. به طور کلی، قدرت تحمل و سازش پذیری کپور معمولی نسبت به تغییرات شوری محیط، بدلیل ایجاد تغییرات سریع در سلول­های کلراید جهت تنظیم میزان ورود و خروج آب و الکترولیت­ها بالا بود بطوریکه گونه مورد نظر توانست نسبت به تغییرات شوری­های محیطی خود را تطبیق و ادامه حیات دهد.   2 120 specimens of common carp were treated in salt water with 4ppt, 8ppt, 12ppt treatments and freshwater with three replications for 2 weeks. For histomorphology study in the end of the period  thickness of 4μ to 6μ were prepared. Also samples were collected for immunohistochemical and ultrastructural studies. Results showed that at the filament position, the highest and lowest number of chloride cells belonged to 8 ppt salinity and control treatment, respectively. Also at this position, the largest size of the cells belonged to the salinity of 12 ppt and the smallest size belonging to 4 ppt. At the lamellar site, the highest number of chloride cells belonged to 4 ppt salinity and the lowest number belonged to the control treatment without changing in the size. In immunohistochemical studies for Na⁺/K⁺-ATPase localization, it was found that chloride cells were high in filament epithelium and few in the lamellar epithelium in different salinities. These cells were present with intense immunofluorescence in the apex, base, and between inter lamellar filament. According to the electron microscopy studies, the membrane of the chloride cells of the gill of common carp showed that different apical morphologies as the deep hole, shallow basin and wavy convex. In general, range of tolerance and adaptation of common carp is high to salinity changes due to rapid changes in chloride cells in the direction of entering and leaving water and electrolytes. So that, this species was able to adapt to the changes in environmental different salinity and to survive. 131 141 2019/04/92019/02/162019/01/122019/03/12019/03/202019/05/122019/04/62019/03/122019/06/102018/05/252019/05/162019/03/12019/02/15 1397/11/26 2019/08/272019/08/42019/08/272019/08/272019/08/62019/08/72019/08/102019/08/102019/08/112019/08/272019/08/272019/09/32019/09/3 1398/6/12 زهرا بصیر Zahra Basir دانشگاه شهید چمران اهواز ایران z.basir@scu.ac.ir رحیم پیغان Rahim Peyghan دانشگاه شهید چمران اهواز ایران peyghan@yahoo.com Salinity Gill Cyprinus carpio Immunohistochemistry Ultrastructural شوری آبشش کپور معمولی ایمونوهیستوشیمی فراساختاری ##اینانلو، ک.، علی نژاد، س، زحمتکش، ع و امینیان فتیده، ب.، 1398. مقایسه اثر جیره‌های حاوی پروبیوتیک‌‌های Lactobacillus acidophilus و Pediococcus pentosaceus بر شاخص‌های رشد، خون‌‌شناسی و ایمنی بچه ماهی کپور معمولی C‌yprinus carpio)). مجله علمی شیلات ایران، ۲۸ (۳) :۱۸۵-۱۹۴. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.119392##باصری ارغوانی، ح.، عسکری ساری، ا و جواهری بابلی، م.، 1398. تاثیر افزودن اتیلن دی آمین تترا استیک اسید به جیره غذایی بر کاهش میزان عناصر سنگین در گوشت ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله علمی شیلات ایران، 28(3): 1-12. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.119104##جمیلی، م.، 1370. بررسی میزان تحمل نسبی ماهی بنی B‌arbus sharpeyi) ) در مقابل تغییرات شوری. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه ازاد اسلامی واحد اهواز ،73ص.##قاضی لو، ا.، 1387. مطالعه تغییر تعداد سلولهای کلراید اپیتلیوم آبششی در ماهی زروک در پاسخ به افزایش شوری. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر ، 63 ص.##Blanco Garcia, A., Partridge, G. J., Flik, G., Roques, J. A. qnd Abbink, W., 2015. Ambient salinity and osmoregulation, energy metabolism and growth in juvenile yellowtail kingfish (Seriola lalandi Valenciennes 1833) in a recirculating aquaculture system. Aquaculture Research, 46: 2789–2797. DOI: 10.1111/are.12433.##Bodinier, C., Lorin-Nebel, C., Charmantier. G. and Boulo, V., 2009. Influence of salinity on the localization and expression of the CFTR chloride channel in the ionocytes of juvenile Dicentrarchus labrax exposed to seawater and freshwater. Comparative Biochemistry & Physiology A, 53:345-351. DOI: 10.1016/j.cbpa.2009.03.011.##Brauner, C.J., Gonzalez, R.J. and Wilson, J.M., 2012. Extreme environments: hypersaline, alkaline, and ion-poor waters. In Fish physiology , 32: 435-476. Academic Press. DOI: 10.1016/j.devcel.2012.10.015.##Choi, J.H., Lee, K.M., Inokuchi, M. and Kaneko, T., 2011. Morphofunctional modifications in gill mitochondria-rich cells of Mozambique tilapia transferred from freshwater to 70% seawater, detected by dual observations of whole-mount immunocytochemistry and scanning electron microscopy. Comparative Biochemistry & Physiology A, 158 (1): 132-142. DOI: 0.1016/j.cbpa.2010.09.019.##Cruz, S.A., Chao, P.L. and Hwang, P.P., 2013. Cortisol promotes differentiation of epidermal ionocytes through Foxi3 transcription factors in zebrafish (Danio rerio). Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology, 164(1): 249–257. DOI: 10.1016/j.cbpa.2012.09.011. ##Drake, P., Coleman, L. and Vogwill, R., 2013. The response of semi-arid ephemeral wetland plants to flooding: linking water use to hydrological processes. Ecohydrology, 6: 852-862. DOI: 10.1002/eco.1318.##Duggan, M., Connolly, R., Whittle, M., Curwen, G. and Burford M., 2014. Effects of freshwater flow extremes on intertidal biota of a wet-dry tropical estuary. Marine Ecology Progress Series, 502: 11-23. DOI: 10.3354/meps10719.##Duncan, W.P., Silva, N.F. and Fernandes, M.N., 2011. Mitochondrion-rich cells distribution, Na+/K+-ATPase activity and gill morphometry of the Amazonian freshwater stingrays (Chondrichthyes: Potamo-trygonidae). Fish Physiology and Biochemistry, 37: 523–531. DOI: 10.1086/605458.##Evans, D., 2009. Teleost fish osmoregulation: what have we learned since August Krogh, Homer Smith, and Ancel Keys. American Journal of Regulatory, Integrative and Comparative Physiology, 295: 704-713. DOI: 10.1152/ajpregu.90337.2008.##Fielder, D.S., Allan, G.L., Pepperall, D. and Pankhurst, P.M., 2007. The effects of changes in salinity on osmoregulation and chloride cell morphology of juvenile Australian snapper, Pagrus auratus. Aquaculture, 272(1-4): 656-666. ##Fridman, S., Bron, J.E. and Rana, K.J., 2011. Ontogenetic changes in location and morphology of chloride cells during early life stages of the Nile tilapia, Oreochromis niloticus adapted to fresh and brackish water. Journal of Fish Biology, 79: 597–614. DOI: 10.1111/j.1095-8649.2011.03043.x.##Gonzalez, R.J., Brauner, C.J., Wang, Y.X., Richards, J.G., Patrick, M.L., Xi, W., Matey, V. and Val, A.L., 2010. Impact of ontogenetic changes in branchial morphology on gill function in Arapaima gigas. Physiological and biochemical zoology, 83, 322–332. DOI: 10.1086/648568.##Gravel, A., Wilson, j. and vijayan, M., 2009. Non-steroidal anti-inflammatory drugs disturb the Osmoregulatory, metabolic and cortisol responses associated with sea water exposure in rainbow trout, Comparative Biochemistry and Physiology, 149: 481-490. DOI: 10.1016/j.cbpc.2008.11.002.##Hiroi, J. and McCormick, S. D., 2012. New insights into gill ionocyte and ion transporter function in euryhaline and diadromous fish. Respiratory Physiology & Neurobiology, 184: 257–268. DOI: 10.1016/j.resp.2012.07.019.##Huang, C.Y., Lin, C.P. and Lin, H.C., 2011. Morphological and biochemical variations in the gills of 12 aquatic airbreathing anabantoid fish. Physiological and biochemical zoology, 84, 125–134. DOI: 0.1086/658996.##Kaneko, T., Watanabe, S. and Lee, K.M., 2008. Functional morphology of mitochondrion-rich cells in euryhaline and stenohaline teleosts. Aqua-BioScience Monographs, 1:1–62. DOI: 10.5047/absm.2008.00101.0001.##Kazemi, R., Bahmani, M., Krayushkina, L.S., Pourkazemi, Pourkazemi, M., Ogorzalek, A., 2003. Changes in blood serum osmalarity and ultrastructure of gill chloride cell in young Persian sturgeon Acipenser persicus (Borodin) of different sizes during adaptation to sea water. Zoologica Poloniae, 48(1–4), pp.5-30.##Khodabandeh, S., Khoshnood, Z. and Mosafer, S., 2009b. Immunolocalization of Na+, K+‐ATPase‐rich cells in the gill and urinary system of Persian sturgeon, Acipenser persicus, fry. Aquaculture Research, 40(3), pp.329-336. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2008.02097.x.##Khodabandeh, S., Shahriarimoghaddm, M., Abtahi, B., 2009a. Changes in chloride cell abundance, Na+, K+-ATPase immunolocalization and activity in the gills of golden grey mullet, Liza aurata, fry during adaptation to different salinities. Yakhteh Medical Journal, 49-54. DOI: af97/3f078f7dc7d07404.##Perry, S.F., Fletcher, C., Bailey, S., Ting, J., Bradshaw, J., Tzaneva, V. and Gilmour, K.M., 2012. The interactive effects of exercise and gill remodeling in goldfish (Carassius auratus). Journal of Comparative Physiology B, 182:935–945. DOI: 10.1016/j.cbpa.2008.04.214.##Saillant, E., Fostier, A., Haffray, P., Menu, B. and Chatain, B., 2003. Saline preferendum for the European sea bass, Dicentrarchus labrax, larvae and juveniles: effect of salinity on early development and sex determination. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 287, 103–117. DOI: 10.1016/S0022-0981(02)00502-6.##Shen, I.D., Chiu, Y.H., Lee, T.H. and Hwang, P.P., 2007. Localization of Chloride Transporters in Gill Epithelia of the Grass Pufferfish, Takifugu niphobles. Journal of the Fisheries Society of Taiwan, 34 (1), 87-100. DOI: 10.1242/jeb.00895.##Tang, C. and Lee, T., 2013. Freshwater acclimation induces stress responses and expression of branchial Na+/K+-ATPase and proliferating cell nuclear antigen in Takifugu niphobles. Journal of Experimental Zoology Part A: Ecological Genetics and Physiology, 319; 409–421. DOI: 10.1002/jez.1804.##Tse, W.K.F., Au, D.W.T. and Wong, C.K.C., 2006. Characterization of ion channel and transporter mRNA expressions in isolated gill chloride and pavement cells of seawater acclimating eels. Biochemical and Biophysical Research Communications, 346: 1181–1190. DOI: 10.1242/jeb.034785.##Yang, W.K., Kang, C.K., Chang, C.H., Hsu, A.D., Lee, T.H. and Hwang, P.P., 2013. Expression profiles of branchial FXYD proteins in the brackish Medaka Oryzias dancena: a potential saltwater fish model for studies of osmoregulation. Plos One. 8, e55470. DOI: 10.1371/journal.pone.0055470.## ##

تأثیر استفاده از پروبیوتیک Lactococcus lactis (PTCC 1403) و کیتین در جیره بر فاکتورهای خونی، بیوشیمیایی سرم و باکتری‌های دستگاه گوارش ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio L.) Effect of probiotic Lactococcus lactis (PTCC 1403) and chitin on blood and serum biochemical parameters and intestine bacteria of Common carp (Cyprinus carpio) 1 1 هدف از این تحقیق بررسی اثر استفاده از پروبیوتیکLactococcus lactis subsp. lactis  و کیتین بر فاکتورهای خونی، سرمی و باکتری­های دستگاه گوارش در جیره غذایی ماهی کپور معمولی بود. برای این منظور تعداد 360 قطعه بچه‌ماهی با وزن 5/1±12 گرم به صورت تصادفی در تانک‌های آزمایشی با تیمارهای طراحی شده بر اساس ترکیب کیتین با سطوح مختلف صفر، 1 و 2 درصد و پروبیوتیک صفر و 2 درصد (g/CFU107 × 1) در جیره غذایی توزیع و به مدت 8 هفته (56 روز) پرورش داده شدند. تیمارهای آزمایش شامل شاهد (تیمار 1)، پروبیوتیک 2 درصد (تیمار 2)، کیتین 1 درصد (تیمار 3)، کیتین 2 درصد (تیمار 4)، پروبیوتیک 2 درصد+کیتین 1 درصد (تیمار 5) پروبیوتیک 2 درصد+کیتین 2 درصد (تیمار 6) بود. در پایان آزمایش، فاکتورهای خونی شامل گلبول قرمز (RBC)، میانگین حجم گلبول قرمز (MCV)، میانگین هموگلوبین در گلبول قرمز (MCH)، میانگین غلظت هموگلوبین در گلبول قرمز (MCHC)، هماتوکریت (Hb)، هماتوکریت (HCT)، گلبول سفید (WBC)، لنفوسیت، ائوزینوفیل، منوسیت، فاکتورهای بیوشیمیایی سرم خون شامل پروتئین کل، آلبومین، گلوکز، کلسترول و تری‌گلیسرید و بار باکتریایی روده تعیین شدند. نتایج نشان داد که در RBC، MCV، MCH، MCHC، هموگلوبین، هماتوکریت، منوسیت در بین تیمارها اختلاف معنی‌داری مشاهده نشد (05/0<p)، اما بیشترین میزان WBC در تیمارهای 5 و 3 (به­ترتیب103 mm3 66/1±03/18، 49/1±86/16)، ، لنفوسیت در تیمارهای 5 و 2 (بترتیب 58/4±40/70، 65/2±00/65) و ائوزینوفیل در تیمارهای 3 و 6 (بترتیب 16/1±67/2، 58/0±67/1) مشاهده شد. در هیچ کدام از فاکتورهای بیوشیمیایی سرم بین تیمارهای آزمایشی و تیمار شاهد تفاوت معنی‌داری مشاهده نشد (05/0<p)، اما بین تیمارهای حاوی پروبیوتیک و کیتین یا مخلوط آنها تفاوت معنی‌داری مشاهده شد (05/0>p). بار باکتریایی روده ماهیان در تیمارهای مختلف بجز تیمار 6 بیشتر از تیمار شاهد بود (05/0>p) که بیشترین بار باکتریایی در تیمار 4 (CFU/g  17/25±33/653) مشاهده شد. به طور کلی، می‌توان گفت که استفاده از 2 درصد پروبیوتیک و یک درصد کیتین و استفاده توأم آنها می‌تواند گلبول سفید و بار باکتریایی روده را بهبود بخشد.  2 The aim of the current study was to evaluate the effect of dietary Lactococcus lactis subsp. lactis and chitin on blood and serum biochemical parameters and intestine bacteria of common carp. To do the experiment, 360 juvenile carp with mean initial weight of 12±1.5 g were randomly distributed in the fiberglass tanks designed based on different levels of chitin 0, 1 and 2% and probiotic 0 and 2% (1 ×107CFU/g) in diet and the experiment lasted for eight weeks. The experimental treatments were including control (treatment 1), probiotic 2% (treatment 2), chitin 1% (treatment 3), chitin 2% (treatment 4), probiotic 2% + chitin 1% (treatment 5) and probiotic 2% + chitin 1% (treatment 6). On the end of the experiment, blood parameters including red blood cell (RBC), Mean corpuscular volume (MCV), mean corpuscular hemoglobin (MCH), mean corpuscular hemoglobin concentration (MCHC), hemoglobin (Hb), hematocrit (HCT), white blood cell (WBC), lymphocyte, eosinophil and monocyte, serum biochemical parameters including total protein, albumin, glucose, cholesterol, triglyceride and intestinal bacterial colony were determined. The results showed that RBC, MCV, MCH, MCHC, Hb, HCT, thrombocyte, monocyte had no significant difference among treatments (p>0.05), But, maximum level of WBC in treatments 5 and 3 (18.03±1.66, 16.86±1.49 103 mm3, respectively), lymphocyte in treatments 5 and 2 (70.40±4.58, 65.00±2.65, respectively) and eosinophil in treatments 3 and 6 (2.67±1.16, 1.67±0.58, respectively) were observed. Biochemical parameters showed no significant difference among experimental treatments and control, but, there were significant difference among the diets containing probiotic and chitin or/and a mixture of probiotic and chitin (p<0.05). The intestinal bacterial colony in all treatments except treatment 6 was more than the control (p<0.05). The maximum bacterial colony count was observed in treatment 4 (653.33±25.17 CFU/g). In conclusion, it seems the addition 2% probiotic, 1% chitin and a mixture of them can improve white blood cells and intestinal bacterial colony in common carp.   143 156 2019/04/92019/02/162019/01/122019/03/12019/03/202019/05/122019/04/62019/03/122019/06/102018/05/252019/05/162019/03/12019/02/152019/07/7 1398/4/16 2019/08/272019/08/42019/08/272019/08/272019/08/62019/08/72019/08/102019/08/102019/08/112019/08/272019/08/272019/09/32019/09/32019/09/4 1398/6/13 حسین برغمان Hossein Barghaman دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری ایران hossein371kb@gmail.com سکینه یگانه Sakineh Yeganeh دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری ایران skyeganeh@gmail.com عبدالصمد کرامت امیرکلایی Abdolsamad Keramat Amirkolaie دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری ایران amirkola@yahoo.com Common carp Lactococcus lactis Blood parameters Bacterial colony کپور معمولی Lactococcus lactis کیتین شاخص‌های خونی بار باکتریایی روده ##اکبری نرگسی، ع.، فلاحتکار، ب. و محمدی، م.1398. عملکرد رشد و شاخص های خونی در ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss): بررسی اثر اختصاصی پروبیوتیک در مولدین نر. مجله علمی شیلات ایران، 28(3): 113-10. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.119 093 ##ایری، ی.، حافظیه، م.، حق پناه، ع.، خوشباور رستمی، ح.، فره وی، ب.، کر، ع.، کر، ن.م. و لکزائی، ف.، 1394. اثر پری‌بیوتیک الیگوفروکتوز بر عملکرد رشد، بازماندگی و شاخصهای خونی بچه ماهی ازون برون (Acipenser stellatus). مجله علمی شیلات ایران، 24(1): 107-97.## ایمان‌پور، م. و روحی، ز.، 1394. اثر پروبیوتیک چند سویه (پریمالاک) بر عملکرد رشد، پارامترهای بیوشیمیایی خون، بازماندگی و مقاومت در برابر تنش شوری در بچه‌ ماهیان سفید (Rutilus kutum). مجله علمی شیلات ایران، 24(2): 102-95.##خادمی حمیدی، م.، آدینه، ح.، هرسیج، م. و قلی‌پور کنعانی، ح. 1398. تاثیر استفاده برخی از عصارهای گیاهی بر رشد و تغذیه، آنزیمهای گوارشی و پارامترهای ایمنی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران، 28(5): 57-47. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.119525 ##ستاری، م.، شاهسونی، د. و شفیعی، ش.، 1382. ماهی شناسی (2) سیستماتیک. نشر حق‌شناس، 502 ص##Abu-Elala, N., Marzouk, M. and Moustafa, M., 2013. Use of different Saccharomyces cerevisiae biotic forms as immune-modulator and growth promoter for Oreochromis niloticus challenged with some fish pathogens. International Journal of Veterinary Science and ## Medicine, 1: 21–29. DOI: 10.1016/j.ijvsm.2013.05.001##Adel, M., El-Sayed, A.M., Yeganeh, S., Dadar, M. and Giri, S.S., 2017a. Effect of Potential Probiotic Lactococcus lactis Subsp. Lactis on Growth Performance, Intestinal Microbiota, Digestive Enzyme Activities, and Disease Resistance of Litopenaeus vannamei. Probiotics and Antimicrobial Proteins, 9(2):150-156. DOI: 10.1007/s12602-016-9235-9.##Adel, M., Lazado, C.C., Safari, R., Yeganeh, S. and Zorriehzahra, M.J., 2017b. Aqualase, a yeast-based in-feed probiotic, modulates intestinal microbiota, immunity and growth of rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Aquaculture Research, 48: 1815–1826. DOI: 1111/are.13019.##Adel, M., Safari, R., Yeganeh, S., Binaii, M., Ghiasi, M. and Ahmadvand, S., 2017c. Effect of dietary GroBiotic®‐A supplementation as a prebiotic on the intestinal microflora, growth performance, haemato‐serological parameters, survival rate and body composition in juvenile beluga (Huso huso Linnaeus, 1754). Aquaculture Nutrition, 23(3): 492-499. DOI: 10.1111/anu.12417.##Adel, M., Safari, R., Yeganeh, S., Satheesh Kumar, P. and Safaie, P., 2017d. Hematological and Biochemical Profile of Pike Breeders (Esox lucius Linneaus, 1758) from the Anzali Wetland, Caspian Sea. Proceedings of the National Academy of Sciences, India Section B: Biological Sciences, 87(4):1271–1276. DOI: 10.1007/s40011-015-0704-9##Adel, M. Yeganeh, S. Dawood, M.A.O. Safari, R. and Radhakrishnan, S., 2017e. Effects of Pediococcus pentosaceus supplementation on growth performance, intestinal microflora and disease resistance of white shrimp, Litopenaeus vannamei. Aquaculture Nutrition, 23(6): 1401-1409. DOI: 10.1111/anu.12515##Akrami, R., Hajimoradloo, A., Matinfar, A. and Abedian Kinari, A.M., 2009. Effect of dietary prebiotic inulin on growth performance, intestinal microflora, body composition and hematological parameters of juvenile beluga, Huso huso (Linnaeus, 1758). Journal of the World Aquaculture Society, 40: 771–779. DOI: 10.1111/j.1749-7345.2009.00297.x##Akrami, R., Razeghi Mansour, M., Ghobadhi, S.h., Ahmdifar, E., Shaker Khoshroudi, M. and Moghimi Haji, M.S., 2013b. Effect of prebiotic mannan oligosaccharide on hematological and blood serum biochemical parameters of cultured juvenile great sturgeon (Huso huso Linnaeus, 1754). Journal of Applied Ichthyology, 29: 1214–1218. DOI: 10.1111/jai.12245.##AOAC, 2005. Official methods of analysis of AOAC International. AOAC International.##Askarian, F., Kousha, A., Salma, W. and Ringø, E., 2011. The effect of lactic acid bacteria administration on growth, digestive enzyme activity and gut microbiota in Persian sturgeon (Acipenser persicus) and beluga (Huso huso) fry. Aquaculture Nutrition, 17(5): 488-497. DOI: 10.1111/j.1365-2095.2010.00826.x##Babin, P.J. and Vernier, J.M., 1989. Plasma lipoproteins in fish. Journal of Lipid Research, 30(4): 467 - 489.##Beck, B.R., Kim, D., Jeon, J., Lee, S.M., Kim, H.K., Kim, O.J., Lee, J.I., Suh, B.S., Do, H.k., Lee, K.H., Holzapfel, W.H., Hwang, J.Y., Kwon, M.G. and Song, S.K., 2015. The effects of combined dietary probiotics Lactococcus lactis BFE920 and Lactobacillus plantarum FGL0001 on innate immunity and disease resistance in olive flounder (Paralichthys olivaceus). Fish and Shellfish Immunology, 42: 177-183. DOI: 10.1016/j.fsi.2014.10.035.##Boonthai, T., Vuthiphandchai, V. and Nimrat, S., 2011. Probiotic bacteria effects on growth and bacterial composition of black tiger shrimp (Penaeus monodon). Aquaculture Nutrition, 17:634–644. DOI: 10.1111/j.1365-2095.2011.00865.x.##Choct, M., 1996. Increased small intestinal fermentation is partly responsible for the nutritive activity of non-starch polysaccharides in chickens: British Poultry Science, 37(3): 609-621 DOI: 10.1080/00071669608417891.##Choct, M., 1997. Feed Non-Starch Polysaccharides: Chemical Structures and Nutrition Signiticance. Feed Milling International, 13-26.##Choct, M. and Kocher, A. 2000. Non-starch carbohydrates: Digestion and its secondary effects in monogastrics. Proceedings of the Nutrition Society, 2: 31-38.##Danulat, E., 1987. Digestibility of chitin in cod, Gadus morhua, in vivo. Helgoläinder Meeresunters, 41:425-436. DOI: 10.1007/BF02365402.##Drabkin, D.L., 1945. Crystallographic and optical properties of human hemoglobin-a proposal for the standardization of hemoglobin. American Journal of the Medical Sciences, 209(2): 268-270. ##Edwards, C., 1990. Mechanisms of action of dietary fibre on small intestinal absorption and motility. In New Development‘s in Dietary Fiber, pp. 95104 (I. Furda and C. J. Brine, editors(. New York: Plenum Press.##Gibson, G.R. and Roberfroid, M.B., 1995. Dietary modulation of the human colonic microbiota: introducing the concept of prebiotics. Journal of Nutrition, 125(6):1401-12. DOI: 10.1093/jn/125.6.1401.##Gotto, A.M., 1992. Hypertriglyceridemia: risks and perspectives. American Journal of Cardiology, 70: 19H-25H. DOI: 10.1016/0002-9149(92)91086-j.##Harikrishnan, R., Kim, J.S., Balasundaram, C. and Heo, M.S., 2012. Dietary supplementation with chitin and chitosan on haematology and innate immune response in Epinephelus bruneus against Philasterides dicentrarchi. Experimental Parasitology, 131: 116–124. DOI: 10.1016/j.exppara.2012.03.020.##Harper, H., 1993. Text book of a review of physiological chemistry. Lange medical publication, California.##Hoseinifar, S.H., Mirvaghefi, A., Merrifield, D.L., Mojazi Amiri, B., Yelghi, S. and Darvish Bastami, K., 2011. The study of some haematological and serum biochemical parameters of juvenile beluga (Huso huso) fed oligofructose. Fish Physiology and Biochemistry, 37: 91–96. DOI: 10.1007/s10695-010-9420-9.##Hoston, A.H., 1990. Blood and circulation. In: Shreck CB, Moyle PB. Methods in fish biology. Bethesda, Maryland: American Fisheries Society, 273-335.##Jafarpour, A. and Gorczyca, E.M., 2009. Rheological characteristics and microstructure of common carp (Cyprinus carpio) Surimi and Kamaboko gel. Food Biophysics, 4(3): 172-179. DOI: 10.1007/s11483-009-9115-x##Kori-Siakpere, O., Ake, J.E.G. and Idoge, E., 2005. Haematological characteristics of the African##snakehead, Parachanna obscura. African Journal of Biotechnology, 4: 527-530##Kühlwein, H., Merrifield, D.L., Rawling, M.D., Foey, A.D. and Davies, S.J., 2014. Effects of dietaryβ-(1,3)(1,6)-D-glucan supplementation on growth performance, intestinal morphology and haemato-immunological profile of mirror carp (Cyprinus carpio L.). Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 98: 279–289. DOI: 10.1111/jpn.12078##Lowry, O.H., Rosebrough, N.J., Farr, A.L. and Randall, R.J., 1952. Protein measurement with folin phenol reagent. Biological Chemistry, 193-256.##Marguerite, R., 2006. Chitin and chitosan: Properties and applications. CERMAV-CNRS, affiliated with Joseph Fourier University, BP53, 38041 Grenoble Cedex 9, France. DOI: 10.1016/j.progpolymsci.2006.06.001##Mehrabi, F., Khalesi, M.K. and Hazaie, K., 2018. Effects of Pre- and Probiotics on Growth, Survival, Body Composition, and Hematology of Common Carp (Cyprinus carpio L.) Fry from the Caspian Sea. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 18: 597-602. DOI: 10.4194/1303-2712-v18_4_11##Mishra, S., Hardacre, A. and Monro, J., 2012. Food structure and carbohydrate digestibility. In: Carbohydrates - Comprehensive studies on glycobiology and glycotechnology, pp, 289–316. Chang, C.-F., Ed., InTech. DOI: 10.5772/51969##Misra, C.K., Das, B.K., Mukherjee, S.C. and Pattnaik, P., 2006. Effect of long term administration of dietary beta-glucan onimmunity, growth and survival of Labeo rohita fingerlings. Aquaculture, 255: 82–94. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2005.12.009Get ##Nikoskelainen, S., Salminen, S., Bylund, G. and Ouwehand, A.C., 2001. Characterization of the##properties of human-and dairy-derived probiotics for prevention of infectious disease in fish.##Applied and Environmental Microbiology, 67(6): 2430-2435. DOI: 10.1128/AEM.67.6.2430-2435.2001##Nikoskelainen, S., Ouwehand, A.C., Bylund, G., Salminen, S. and Lilius, E.M., 2003. Immune enhancement in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) by potential probiotic bacteria##(Lactobacillus rhamnosus). Fish and Shellfish Immunology, 15: 443-452. DOI: 10.1016/S1050-4648(03)00023-8##Panigrahi, A., Kiron, V., Kobayashi, T., Puangkaew, J., Satoh, S. and Sugita, H., 2004. Immune responses in rainbow trout Oncorhynchus mykiss induced by a potential probiotic bacteria Lactobacillus rhamnosus JCM 1136. Veterinary Immunology and Immunopathology, 102: 379-388. DOI: 10.1016/j.vetimm.2004.08.006##Rashidova, S., Milusheva, R.Y., Voropaeva, N.L., Pulatova, S.R., Nikonovich, G. and Ruban, I.N., 2004. Isolation of Chitin from a Variety of Raw Materials, Modification of the Material, and Interaction of its Derivatives with Metal Ions. Chromatographia, 59: 783-786. DOI: 10.1365/s10337-004-0290-0##Razdan, A. and Pettersson, D., 1994. Effect of chitin and chitosan on nutrient digestibility and plasma lipid concentrations in broiler chickens. British Journal of Nutrition, 72: 211-288. DOI: 10.1079/bjn19940029##Ringø, E, Myklebustd, R, Mayhewe, T.M. and Olsen, R.E., 2007. Bacterial translocation and pathogenesis in the digestive tract of larvae and fry. Aquaculture, 268:251–264. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2007.04.047##Sakata, T., 1990. Microflora in the digestive tract of fish and shellfish. In: Lesel R (ed) Microbiology in Poecilotherms. Elsevier, Amsterdam, pp. 171–176##Schley, P.D. and Field, C.J., 2002. The immune enhancing effects of dietary fibers and prebiotics. British Journal of Nutrition, 87: 221–230. DOI: 10.1079/BJNBJN/2002541##Selenius, O., Korpela, J., Salminen, S. and Gallego, C.G., 2018. Effect of Chitin and Chitooligosaccharide on In vitro Growth of Lactobacillus rhamnosus GG and Escherichia coli TG. Applied Food Biotechnology, 5(3):163-172. DOI: 10.22037/afb.v%vi%i.20468##Shalaby, A.M., Khattab, Y.A. and Abdel Rahman, A.M., 2006. Effects of Garlic (Allium sativum) and chloramphenicol on growth performance, physiological parameters and survival of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Journal of Venomous Animals and Toxins including Tropical Disease, 12: 172–201. DOI: 10.1590/S1678-91992006000200003 ##Shiau, S.Y. and Yu, Y.P., 1999. Dietary supplementation of chitin and chitosan depresses growth in tilapia, Oreochromis niloticus× O. aureus. Aquaculture, 179(1): 439-446. DOI: 10.1016/S0044-8486(99)00177-5##Sinha, A.K., Kumar, V., Makkar, H.P.S., De Boeck, G. and Becker, K., 2011. Non-starch polysaccharides and their role in fish nutrition – A review. Food Chemistry, 127: 1409–1426. DOI:10.1016/j.foodchem.2011.02.042##Stull, V.J., Finer, E., Bergmans, R.S., Febvre, H.P., Longhurst, C., Manter, D.K., Patz, J.A. and Weir T.L., 2018. Impact of Edible Cricket Consumption on Gut Microbiota in Healthy Adults, a Double-blind, Randomized Crossover Trial. Scientific Reports, 8:10762. DOI: 10.1038/s41598-018-29032-2.##Svetina, A., Matasin, Z., Tofant, A., Vucemilo, M. and Fijan, N., 2002. Haematology and some blood chemical parameters of young carp till the age of three years. Acta Veterinaria Hungarica, 50: 459–467. DOI: 10.1556/AVet.50.2002.4.8##Taati, R., Soltani, M., Bahmani, M. and Zamini, A.A., 2011. Growth performance, carcass composition, and immunophysiological indices in juvenile great sturgeon (Huso huso) fed on commercial prebiotic Immunoster. Iranian Journal of Fisheries Science, 10: 324–335.##Taati, R., Abolghasemi, S.J., Tatina, M. and Nasri Tajan, M., 2012. Influence of prebiotic Immunowall on growth performance, body composition and immunophysiological variables in juvenile great sturgeon, Huso huso. Annals of Biological Research, 3: 4435–4441.##Tavares-Dias, M. and Moraes, F.R., 2007. Haematological and biochemical reference intervals for farmed channel catfish. Journal of Fish Biology, 71: 383–388. DOI: 10.1111/j.1095-8649.2007.01494.x##Trinder, P., 1969. Determination of glucose concentration in the blood. Annals of Clinical Biochemistry, 6, 24.##Wang, Y., FU, L. and LIN, J., 2012. Probiotic (Bacillus coagulans) cells in the diet benefit the white shrimp Litopenaeus vannamei. Journal of Shellfish Research, 31:855–860. DOI: 10.2983/035.031.0333##Williams, B.A., Bosch, M.W., Awati, A., Konstantinov, S.R., Smidt, H., Akkermans, A.D.L., Verstegen, M.W.A. and Tamminga, S., 2005. In vitro assessment of grastointestinal tract (GIT) fermentation in pigs: fermentable substrates and microbial activity. Animal Research, 54: 191-202. DOI: 10.1051/animres:2005011##Wotton, I.D. and Freeman, H., 1982. Microanalysis in Medical Biochemistry. Churchill, New York, USA.##Yadav, K., Bhardwaj, A., Kaur, G., Iyer, R., De, S., and Malik, R.K., 2009. Potential of Lactococcus lactis as a probiotic and functional lactic acid bacteria in dairy industry. International Journal of Probiotics and Prebiotics, 4(3): 219-228.##Yarmohammadi, M., Shabani, A., Pourkazemi, M., Soltanloo, H. and Imanpour, M.R., 2012. Effect of starvation and re‐feeding on growth performance and content of plasma lipids, glucose and insulin in cultured juvenile Persian sturgeon (Acipenser persicus Borodin, 1897). Journal of Applied Ichthyology, 28(5): 692-696. DOI: 10.1111/j.1439-0426.2012.01969.x##Yeganeh, S., Adel, M., Ahmadvand, Sh., Ahmadvand, Sh. and Velisek, J., 2016. Toxicity of organic selenium (Selemax) and its effects on haematological and biochemical parameters and histopathological changes of common carp (Cyprinus carpio L., 1758). Toxin Reviews, 207-213. DOI:10.1080/15569543.2016.1213749.##Yen, M., Yang, J. and Mau, J., 2009. Physicochemical characterization of chitin and chitosan from crab shells. Carbohydrate Polymers, 75(1): 15-21. DOI: 10.1016/j.carbpol.2008.06.006##Zhou, X., Wang, Y., Yao, J. and Li, W., 2010. Inhibition ability of probiotic, Lactococcus lactis, against A. hydrophila and study of its immunostimulatory effect in tilapia (Oreochromis niloticus). International Journal of Engineering, Science and Technology, 2(7): 73-80.##Zhou, Z., Karlsen, Q., He, S., Olsen, R.E., Yao, B. and Ringø, E., 2012. The effect of dietary chitin on the autochthonous gutbacteria of Atlantic cod (Gadus morhua L.). Aquaculture Research, 44(12): 1889–1900. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2012.03194.x##Ziaei-Nejad, S., Rezaei, M.H., Takami, G.A., Lovett, D.L., Mirvaghefi, A.R. and Shakouri, M., 2006. The effect of Bacillus spp. bacteria used as probiotics on digestive enzyme activity, survival and growth in the Indian (Fenneropenaeus indicus). Aquaculture, 252: 516-524. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2005.07.021 ## ##

یافته علمی: تجمع عناصر فلزی (مس، روی، سرب و نیکل) در بافت‌های عضله، کبد، کلیه و آبشش ماهی انجک (Schizocypris altidorsalis) در چاه نیمه‌های سیستان Survey of some metal elements (Cu, Zn, Ni, Pb) accumulation in muscle, liver, kidney and gill of Schizocypris altidorsalis in Chahnimeh reservoirs of Sistan 1 1 این تحقیق به منظور مطالعه­ ی الگوی تجمع عناصر فلزی مس، روی، نیکل و سرب در بافت­های مختلف ماهی انجک Schizocypris altidorsalis در چاه نیمه­ های سیستان بود. بدین منظور40 عدد ماهی انجک (20 عدد در زمستان 1393 و 20 عدد در بهار 1394) به صورت تصادفی از چاه نیمه­ های سیستان تهیه گردید. پس از تهیه نمونه­ ها، بافت­های کبد، کلیه، عضله و آبشش هر یک از نمونه­ ها جداسازی شدند. پس از جداسازی بافت­ها و هضم توسط اسید نیتریک غلیظ، غلظت هر یک از فلزات بر حسب میکروگرم بر گرم وزن خشک اندازه­ گیری شد. نتایج نشان داد که میزان تجمع در فصل زمستان برای فلزات مس، روی، سرب و نیکل در بافت عضله به ترتیب 39/1±01/43، 63/0±08/143، 53/0±01/8 و18/0±13/1 میکروگرم بر گرم وزن خشک و در فصل بهار میزان این فلزات برای بافت عضله به ترتیب 50/1±90/42، 02/3±04/141، 56/1±07/7 و22/0±32/4 میکروگرم بر گرم وزن خشک می­باشد. در مجموع بیشترین مقادیر عناصر مس و روی در بافت کبد و سرب و نیکل در بافت آبشش اندازه­ گیری شد. همچنین نتایج نشان داد میزان تجمع عناصر فلزی مانند مس، روی و سرب در بافت عضله از حد مجاز استانداردهای جهانی WHO, FAO بالاتر بوده ولی میزان نیکل کمتر از استاندارد FDA می باشد. 2 This research aims to study is the pattern of  metal elements accumulation including copper, zinc, nickel and lead in the muscle, gills, liver and kidney of Schizocypris altidorsalis, in Chahnimeh reservoirs of Sistan. For this purpose, 40 samples were collected randomly from the population in winter and spring (20 samples each season). In the next phase of the research, muscle, gill, liver and kidney tissues of the samples were cut out for further study. Then, the concentrations of heavy metals were measured using atomic absorption. The samples were already prepared and treated by nitric acid of high concentration. The results of the study showed that concentrations of copper, zinc and nickel in muscle tissue in winter season were 43.01±1.39, 143.08±0.63, 8.01±0.53 and 1.13±0.18 µgr.gr-1 dry weight, respectively. Also these results in spring were 42.90±1.50, 141.04±3.02, 7.07±1.56 and 4.32±0.22 µgr.gr-1 dry weight respectively. Totally, the highest amount of copper and zinc elements in the liver tissue and lead and nickel elements were measured in gill tissue. Finally, the results of the current research showed that the concentrations of these metals in muscle tissues are higher than limits set by FAO and WHO standards. But, the concentration of nickel was lower than FDA standard.   157 161 2019/04/92019/02/162019/01/122019/03/12019/03/202019/05/122019/04/62019/03/122019/06/102018/05/252019/05/162019/03/12019/02/152019/07/72019/05/27 1398/3/6 2019/08/272019/08/42019/08/272019/08/272019/08/62019/08/72019/08/102019/08/102019/08/112019/08/272019/08/272019/09/32019/09/32019/09/42019/08/5 1398/5/14 نرگس میرنیا N. Mirnia دانشگاه زابل ایران mirnia.69@gmail.com جواد میردار هریجانی J. Mirdar Harijani دانشگاه زابل ایران javadmirdar@uoz.ac.ir احمد قرایی A. Gharaei دانشگاه زابل ایران agharaei551@uoz.ac.ir مهین ریگی M. Rigi دانشگاه زابل ایران mahin.rigi@uoz.ac.ir Metal elements Schizocypris altidorsalis Sistan’s Chahnimeh reservoirs عناصر فلزی ماهی انجک چاه نیمه های سیستان ##بندانی، غ.، خوشباور رستمی، ح.، یلقی، س.، شکرزاده، م. و نظری، ح. 1394. سطح فلزات سنگین (سرب، کادمیوم، کروم و روی) در بافت عضله و کبد ماهی کپور (Cyprinus carpia) سواحل استان گلستان. مجله علمی شیلات ایران، 4: 10-1.##بهشتی، م.، عسگری ساری، ا.، خدادادی، م و ولایت زاده، م. 1389. اندازه‌گیری و مقایسه غلظت فلزات سنگین (Cu, Fe, Zn, Mn) در اندام‌های مختلف ماهی بیاح (Liza abu) در رودخانه دز استان خوزستان، مجله تالاب،6 :79-71 ##خیرور، ن. و دادالهی سهراب، ع. 1389. غلظت فلزات سنگین در رسوبات و ماهی شیربتBarbus grypus) ) در اروند رود. مجله علوم و تکنولوژی محیط زیست، 12 (2): 131-123.##صادقی، م.، مورکی، ن.، ابدالی، س. و فرزادمهر، م. ۱۳۹۰. بررسی تجمع فلزات سنگین (نیکل، کادمیوم و سرب) در بافت های کبد و عضله ماهی قباد (Scomberomorus guttatus) در بندرعباس (استان هرمزگان). زیست شناسی دریا، ۳ (۴) :۶۵-۷۱.##صدوق نیری، ع.، عطاران گ.، شکوری، آ.، احمدی، ر. و رحیمی، ر. 1388. آسیب زیست محیطی ناشی از فلزات سنگین بر ماهی صبور (Tenualosa ilisha) در شمال غرب خلیج فارس ایران. همایش بین المللی خلیج فارس.##عسگری ساری، ا .، ولایت زاده، م .، خدادادی، م. و کاظمیان، م. 1389. مقدار فلزات جیوه، سرب و کادمیوم در اندام‌های ماهی بیاح (Liza abu) رودخانه‌های دز و بهمنشیر. مجله دانشکده بهداشت و انستیتو تحقیقات بهداشتی، 3: 12-1. ##کوسج، ن.، جعفریان، ح.، رحمانی، ع.، پاتیمار، ع. و قلی پور، ح. ۱۳۹5 مطالعه و اندازه گیری برخی عناصر فلزی (سرب، نیکل، روی، مس و آهن) در بافت عضله میگو سفید سرتیز (Metapenaeus affinis) در استان هرمزگان. مجله علمی شیلات ایران۲۶ (۱) :۱۷۹-۱۸۹.##لکزایی، ف.، بابایی، ه. و خداپرست، س.ح. 1394. سنجش فلزات سنگین (سرب،کادمیم، روی و مس) در بافت کبد و عضله ماهی کفال طلائی در دو منطقه حوضه جنوب غربی دریای خزر (کیاشهر و تالش). نشریه توسعه آبزی پروری، 9(3):58-51.##مهدی آبکنار، ع.، یحیوی، م.، بحری، ا. ه. و جعفریان، ح. 1397. مطالعه تجمع زیستی فلزات سنگین سرب، مس، جیوه و کادمیوم در بافت عضله ماهی کفشک زبان گاوی (Cynoglossus arel)، جلبک قهوه‌ای سارگاسوم (Sargassum illicifolium) و رسوبات سطحی سواحل شمالی دریای عمان. فصلنامه محیط زیست جانوری، 10(2): 115-128.##Bahnasawy, M., Khidr, A. A. And Dheina, N. 2009. Seasonal variations of heavy metals concentrations in mullet, Mugil cephalus and Liza ramada (Mugilidae) from Lake Manzala, Egypt. Journal of Applied Sciences Research, 5: 845-852. DOI: 10.21608/ejabf.2009.2034##Coad, B.W. and Keyzer- devil, N. 2005. On the validity of the species in the snow- trout genus Schizocypris regan, 1914 (Cyprinidae: Actinoptergii). Zoology in the Middle East, 35: 35-42. DOI:10.1080/ 09397140.2005.10638101.## ##Dural, M., Goksu, M. Z. L. and Derisi, B. 2006. Bioaccumulation of some heavy metals in different tissues of labrax dicentrarchus L., 1758, Sparus aurata L., 1758, and Mugil cephalus L., 1758, from the Camlic Lagoon of the eastern cost of Mediterranian (Turkey). Journal of Environmental Monitoring and Assessmen,118: 65-74. DOI: 10.1007/ s10661-006-0987-7##Fernandes, C., Fontainhas, A., Peixoto, F. and Salgado. M.A., 2007. Bioaccumulation of heavy metals in Liza saliens from the Esmoriz- Paranos coastal lagoon, Partual. Ecotoxicology and Environmental Safety, 66: 426-431. DOI:10.1016/j.ecoenv.2006. 02.007##Food and Agriculture Organization/ World Health Organization (FAO/ WHO), 1992. Food standards programme. Codex Alimentarius Commission, 2:114-190.##Ikem, A. and Egiebor, N. O., 2005. Assessment of trace elements in canned fishes (mackerel, tuna, salmon, sardines and herrings) marketed in Georgia and Alabama (United States of America). Journal of Food Composition and Analysis, 18: 771-787. DOI:10.1016/j.jfca.2004.11.002##Kamal, J., Elnabris Shareef, K. and Muzyed Nizam, M. 2013. Heavy metal concentrations in some commercially important fishes and their contribution to heavy metals exposure in Palestinian people of Gaza Strip (Palestine). Journal of the Association of Arab Universities for Basic and Applied Sciences, 13: 44-51. DOI:10. 1016/j.jaubas.2012.06.001##Mojtahid, M., Jorissen, F. and Pearson, T. H. 2008. Comparison of benthic macrofaunal responses to foraminifera and organic pollution in the Firth of Clyde Bull (Scatland). Marina Pollution Bulletin, 56: 42-76. DOI:10.1016/j.marpolbul.2007.08. 018##Nabavi, M. B., Hosseini, M., Parsa, Y., Asfaram, A. and Ravanpykar, A. 2014. Assessment of PCBs, heavy metals (Cd, Co, Ni, Pb), mercury and methyl mercury content in four fish commonly. Environmental Risk Assessment and Health Science, 6: 119- 126. DOI:10.1007/s13530 -014-0196-7##UNEP., 2006. History of environment change in the Sistan Basin, based on satellite image analysis. 1970-2005.##Van- Duijn, I. R.C. 2000. Diseases of fishes. Narendra publishing House. Dehli, India. 450p.##Wei, Y., Zhang, J., Zhang, D. and T.U., T. and Luo, L. 2014. Metal concentrations in various fish organ of different fish Species from Poyang Lake, China. Ecotoxicology and Environmental Safety, 104: 1182-188. DOI:10.1016/j.ecoenv.2014.03.001##Zhang, Z., He, Li, J. and Wu, Z. 2007 . Analysis of heavy metals of muscle and intestine tissue in fish in Banana section of Chongqing from three Gorges reservoir, China. Journal of Environmental Study, 16: 949-958.## ##