1398 29 1 117 174

بررسی روابط بین پارامترهای لیمنولوژیک و شاخص‌‌های کیفیت آب در سد آزاد سنندج به منظور فعالیت‌‌های شیلاتی Study on relationship between limnological parameters and water quality indices at Sanandaj Azad Dam due to fisheries activities 1 1 تعیین روابط بین عوامل زیستی و غیرزیستی و اثر آنها بر کیفیت آب و تغذیه‌‌گرایی، اهمیت زیادی در مدیریت و بهره‌‌وری بهینه از سدها دارد. لذا در مقاله حاضر، روابط فوق با تاکید بر نتایج آنالیز آماری یک و چند متغیره در سد آزاد سنندج مورد بررسی قرار گرفت. نمونه‌‌برداری به صورت ماهانه و در 5 ایستگاه طی سال‌‌های 95-1394، صورت گرفت. کلیه پارامترهای محیطی (دمای آب، شفافیت، کدورت،pH، DO، DO%،  BOD5 ، COD،‌ EC،‌ نیترات، فسفات، کلروفیل-آ) و میکروبی  (کل میکروب، کل کلیفرم، کلیفرم مدفوعی و استرپتوکوک مدفوعی) با روش استاندارد آنالیز گردید. در آزمون رگراسیون خطی گام به گام، ضریب تاثیرسطح تروفیک، شاخص کلروفیل-آ و شفافیت بر شاخص تروفیک کل بیش از شاخص تروفیک مواد مغذی بدست ‌‌آمد. طبق نتایج آزمون مولفه اصلی (PCA)، شاخص سطح تروفیک و غلظت کلروفیل-آ با جای‌‌گیری در مولفه اول مهمترین عوامل تاثیرگذار بر کیفیت آب سد بودند. در حالیکه شاخص کیفیت آب و پارامترهای آن (غلظت فسفر معدنی،‌ BOD5 و کلیفرم) با قرار گرفتن در مولفه دوم، در رتبه‌‌های بعدی اهمیت جای داشتند. از بین پارامترهای محیطی موثر بر کیفیت آب، درصد اشباعیت اکسیژن محلول و پس از آن BOD5 در اولویت‌‌های نخست قرار داشتند. در نتیجه، طبق مقادیر شاخص سطح تروفیک، این سد برای پرورش ماهیان مقاوم (کپورماهیان) مناسب است. به عبارتی، اگرچه بر اساس شاخص WQI، دریاچه سد آزاد برای پرورش آزاد ماهیان مناسب است، اما از دیدگاه شاخص تغذیه‌‌گرایی، شرایط چندان مطلوب نمی‌‌باشد. 2 Determining the relationship between biotic and abiotic factors and their effects on water quality and eutrophication plays important roles in managing and optimizing the efficiency of dams. Therefore, in the present article, the above relations with emphasis on the results of one-way and multivariate statistical analysis were investigated in Sanandaj Azad dam. Monthly Sampling was carried out in 5 stations in 2015-2016. All environmental parameters (Water temp.,Secchi disk, Turbidity, pH, DO, DO%, BOD5, COD, EC, NO3-, PO43-, Chl-a) and microbs (Total counts, Total coliform,  Fecal coliform and   Fecal Streptococcus) were analyzed based on standard methods. (According to the results, low numbers (less than 0.1 CFU / 100 ml),  of streptococcus and fecal coliform in all samples were a good sighn of fine water quality in terms of non-contamination with fecal (resistant and old) and (fresh) microbes. In the step wise linear regression test, the coefficient effect of trophic state, based on chlorophyll-a and transparency depth on the total trophic index was obtained more than the nutrients trophic index. According to the principal component analysis (PCA), the trophic state index and chlorophyll-a concentration (in the first component) were the most important factors on quality of the water. While the water quality index and its parameters (inorganic phosphorus, BOD5 and coliform) were included in the second component. Among the environmental parameters affecting the quality of water, the percentage of saturated dissolved oxygen and then BOD5 were in the first priority. As a conclusion, according to the the trophic state index, this dam is suitable for the development of rough fish (cyprinidae). In other words, according to the WQI index, the Azad Dam is suitable for farming of salmonids fish, but based on trophic stae index, condition is not very favorable. 1 11 2019/04/15 1398/1/26 2020/04/19 1399/1/31 حسن نصراله زاده ساروی Hassan Nasrollahzadeh Saravi پژوهشکده اکولوژِی دریای خزر ایران hnsaravi@gmail.com آسیه مخلوق Asieh Makhlough پژوهشکده اکولوژِی دریای خزر ایران asieh_makhlough@yahoo.com زهرا یعقوب زاده Zahra Yaghobzadeh پژوهشکده اکولوژِی دریای خزر ایران za_yaghoub@yahoo.com رضا صفری Reza Safari پژوهشکده اکولوژِی دریای خزر ایران safari1351@gmail.com حمید حسین پور Hamid Hosseinpour سازمان جهاد کشاورزی کردستان ایران hoseinpour_hamid@yahoo.com Water quality Trophic index Fishery activity Azad Dam- Sanandaj Kurdistan کیفیت آب شاخص تروفیک فعالیت شیلاتی سد آزاد سنندج کردستان ##استاندارد 1011، 1386. موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران. ویژگی‌‌های میکروبیولوژی آب. Zums.ac.ir/files/tarom-behdasht/pages/…/standard1011_ab.doc##استاندارد 3619، 1390. راهنمای پایش آلودگی میکروبی آبهای ساحلی، شناگاهی و مناطق تفریحی دریایی سازمان حفاظت محیط زیست، وزارت بهداشت درمان و آموزش پزشکی، معاونت محیط زیست دریایی، مرکز سلامت محیط و کار، 15 صفحه.##استاندارد 3759، 1375. موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران. جستجو و شمارش کلیفرم ها در آب به روش چند لوله ای. ISIRI 3759.html.##سازمان حفاظت محیط زیست. 1395. استاندارد کیفیت آب‌‌های ایران. معاونت محیط زیست انسانی دفتر آب وخاک. 14 صفحه، WWW.doe.ir/portal/file/?878240/استاندارد -کیفیت-آبهای-ایران.pdf##عالی شاملو، ا.ع.، ناصری، س. و ندافی، ک. 1383. پایش کیفی آب مخزن سد گیلارلو، مجله آب و فاضلاب، 15 (3:51): 22-27.##غیاثوند، ا.، 1387. کاربرد آمارو نرم افزارSPSS در تحلیل داده‌‌ها. نشر لویه، تهران. 325 صفحه.##محسن‌‌پور آذری، ع.. 1394. بررسی لیمنولوژیکی دریاچه سد بوکان. مرکز تحقیقات آرتمیای کشور. 85 صفحه.##مخلوق، آ.، نصراله‌‌زاده ساروی، ح.، پرافکنده، ف.، فضلی، ح.، میرزایی، ر.، حسین‌‌پور، ح.، کیهان‌‌ثانی، ع.ر. و دوستدار، م.، 1396. پایش کیفیت آب و پدیده تغذیه‌‌گرایی دریاچه سد آزاد سنندج با استفاده از شاخص کیفیت آب ایران و شاخص غنی شدگی کارلسون، مجله علمی شیلات ایران، 26 (2): 69-78.##نصراله‌‌زاده ساروی، ح.، مخلوق، آ.، واحدی، ف. و رضایی، م. 1394. بررسی روابط پارامترهای اکولوژیکی و تعیین شاخص‌های کیفیت آب سد مخزنی شهید رجایی (مازندران-ساری)، مجله علمی شیلات ایران. 24(4): 179-194. ##نصراله‌‌زاده ساروی، ح.، پرافکنده، ف.، فضلی، ح.، میرزایی، ر.، حسین‌‌پور، ح.، افرایی،م.ع.، نصراله‌‌تبار، ع.، مخلوق، آ. و واحدی، ن. a1396. مطالعه خصوصیات فیزیکوشیمیایی آب در دریاچه پشت سد آزاد سنندج به منظور فعالیت‌‌های شیلاتی. مجله علمی شیلات ایران، 25 (5): 143-157.##نصراله‌‌زاده ساروی، ح.، رامین، م.، واحدی ف.، مخلوق، آ. و دوستدار، م. b1396. تعیین پارامترهای موثر بر رودخانه ارس به روش آزمون مولفه اصلی. مجله آبزیان دریای خزر، 2 (3):1-10.##APHA (American Public Health Association), 2005. Standard method for examination of water and wastewater. American public health association publisher, 18thedition, Washington, USA.1113P.##Carlson, R.E., 1977. A trophic state index for lakes. Limnology and Oceanography, 22(2):361–369. DOI: jstor.org/stable/2834910.##Carlson, R.E. and Simpson, J., 1996. A Coordinator’s Guide to Volunteer Lake Monitoring Methods. North American Lake Management Society. 96P. ##Felip, M. and Catalan, J., 2000. The relationship between phytoplankton biovolume and chlorophyll in a deep oligotrophic lake: decoupling in their spatial and temporal maxima, Journal of Plankton Research, 22(1):91-105. DOI: org/10.1093/plankt/22.1.91.##Giovanardi, F., Cicero, A.M., Ferrari, C.R., Magaletti, E., Romano, E. and Rinaldi, A., 2002. Interrelationships between trophic index (TRIX) and productivity indicators in Italian marine–coastal waters: a tool for ## water quality evaluation and management. In: Brebia, C.A. (Ed.), Environment Problems in Coastal Regions IV. Wit-Press, Southampton, Boston, Greece, pp. 380–389 (Final Proceedings of the International Conference, Rhodes Island).##Hong, H., Qiu, J. and Liang, Y. 2010. Environmental factors influencing the distribution of total and fecal coliform bacteria in six water storage reservoirs in the Pearl River Delta Region, China. Journal of Environmental Sciences (China), 22(5):663–668. PMID: 20608500.##Klapwijk, P.S., 1988. Eutrophication of surface waters in the Dutch Polder Landscape. Hoogheemraadschap Van Rijnland Leiden Publisher, Holland, 223P.##Ling, T.Y., Tan, A.C., Nyanti, L., Sim, S.F., Grinang, J, Lee, K.S.P. and Ganyai, T., 2018. Seasonal variations in water quality of a tropical reservoir: considerations for cage aquaculture expansion. Aquaculture, Aquarium, Conservation & Legislation - International Journal of the Bioflux Society, 11(2):333-347. ISSN 1844-9166.##Rakocevis-Nedovic, J. and Hollert, H. 2005. Phytoplankton Community and Chlorophyll a as Trophic State Indices of Lake Skadar (Montenegro, Balkan). Environmental Science & Pollution Research, 12:146-152. DOI:org/10.1065/espr2005.04.##Saghi, H., Karimi, L., and Javid, A.H., 2015. Investigation on trophic state index by artificial neural networks (Case Study: Dez Dam of Iran). Applied Water Science, 5(2):127–136. DOI:org/10.1007/s13201-014-0161-2.##Siapatis, A., Giannoulaki, M., Valavanis, V.D., Palialexis, A., Schismenou, E., Machias, A. and Somarakis, S., 2008. Modelling potential habitat of the invasive ctenophore Mnemiopsis leidyi in Aegean Sea. Hydrobiologia, 612:281–295. DOI: 10.1007/s10750-008-9497-7.##Sladecek, V., 1979. The future of the saprobity system. Hydrobiologia, 25:518-537. DOI: 10.1007/BF00838511.##Taherioun, M., Karamous, M. and Baghvand, A., 2010. Development of an entropy- based fuzzy eutrophication index for reservoir water quality evaluation. Iranian journal of environmental health science engineering, 7(1):1-14.##WHO, 1996. Guidelines for Drinking-Water Quality, Health Criteria and Other Supporting Information. Geneva, 2nd ed., Italy. 42pp.##Yotinov, I., Lincheva, S., Kenderov, L., Schineider, I. and Topalova, Y., 2013. Evaluation of the self-purification in the waters of the micro-dams in the small hydro electric power plants (HEPPs) Lakatnik and Svrazhen: potential of the bioalgorithms. Bulgarian Journal of Agricultural Science, 19 (2):135–138. ##

شناسایی و رتبه‌‌بندی عوامل موثر بر صادرات محصولات شیلاتی ایران Determination and ranking the influencing factors on fishery products export in Iran 1 1 به منظور بهر‌‌ه‌‌مندی بیشتر از پتانسیل‌‌های صادرات غیرنفتی کشور، عوامل موثر بر صادرات محصولات شیلاتی با جستجو در منابع کتابخانه‌‌ای و همچنین مصاحبه با صاحب‌‌نظران شناسایی شدند. پس از طراحی پرسشنامه، روایی آن از طریق صادرکننده‌‌ها و صاحب‌‌نظران تایید شد. تجزیه و تحلیل اطلاعات دریافتی از پرسشنامه تکمیل شده توسط 35 نمونه آماری با استفاده از تکنیک رتبه‌‌بندی گرت صورت گرفت. طبق نتایج بدست آمده مهم‌‌ترین عوامل موثر بر صادرات آبزیان، به ترتیب شامل بهبود روابط تجاری بین‌‌المللی، اصلاح قوانین و مقررات داخلی گمرک، کاهش قیمت تمام شده و تورم، افزایش سطح استانداردهای تولید و فرآوری، امکان جذب سرمایه‌‌گذاری خارجی، رعایت مقررات و استاندارد‌‌های کیفی و بهداشتی مقصد، حضور موثر و تبلیغات ویژه در بازارهای جهانی، شناسایی و ارایه اطلاعات بازارهای هدف صادراتی و حمایت و نظارت دولت بودند. بنابراین دولت با حمایت موثر و روشن خود از بخش صادرات آبزیان می‌‌تواند ضمن جذب سرمایه‌‌گذاری خارجی، باعث بهبود روابط بین‌‌المللی، کاهش تورم و قیمت تمام شده گردد و زمینه اصلاح قوانین و مقررات گمرکی، شناخت کافی و حضور در بازارهای صادراتی و مقررات آن را برای بهبود و افزایش صادرات فراهم کند. 2 In order to make more use of non-oil exports potential of the country, factors affecting the export of fishery products were identified by searching in library resources as well as by interviewing experts. After designing the questionnaire, its validity was confirmed by the exporters and experts. After completing the questionnaire, the data was analyzed by 35 statistical samples using Garrett ranking technique. The most important factors affecting the export of fishery products include improving international trade relations, reforming domestic customs laws and regulations, reducing production cost and inflation, increasing standards of production and processing, the possibility of attracting foreign investment, observing regulations and standards destination's quality and health, effective presence and special promotions in global markets, identifying and providing information on target export markets, and government support and oversight, respectively. Thus, the government, with its strong support from the fish exports sector, can attract international investment, improve international relations, and reduce inflation and production cost. Also, the field of reforming customs regulations, adequate knowledge and presence in export markets and regulations will also help to improve and increase exports. 13 25 2019/04/152019/05/24 1398/3/3 2020/04/192020/04/19 1399/1/31 افشین عادلی afshin Adeli دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان ایران afshinadeli@gau.ac.ir هنگامه بایی Hengameh Baei دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان ایران bay.hengameh@gmail.com مهدی پندار Mehdi Pendar دانشگاه تهران ایران mpendar@ut.ac.ir Non-oil exports Trade Garrett’s ranking technique Fishery products Iran صادرات غیرنفتی تجارت تکنیک رتبه بندی گرت محصولات شیلاتی ایران ##اردکانی، ز.، یزدانی، س. و گیلان‌‌پور، ا.، 1389. تاثیر مقررات فنی و بهداشتی بر صادرات میگوی ایران. مجله تحقیقات اقتصاد کشاورزی، 2 ( 4)، 10-1. ##اسکندری، س.، و زراعت کیش، س.ی.، 1395. تاثیر ارزش افزوده و صادرات بخش شیلات بر متغییرهای اقتصادی بخش کشاورزی در ایران. مجله توسعه آبزی‌‌پروری، 10 (3)، 12-1. ##آثاری، س.ا.، فتاحی اردکانی، ا. و فهرستی ثانی، م.، 1396. بررسی عوامل موثر برتقاضای صادرات انار ایران. تحقیقات اقتصاد کشاورزی، 9(3)، 16-1.##پاسبان، ف.، 1385. بررسی عوامل موثر بر صادرات زعفران ایران. فصل‌‌نامه پژوهش‌‌های اقتصادی، 6 (2)، 15-1.##توحیدی، ن.، 1387. بررسی عوامل موثر بر صادرات میگو در ایران. پایان‌‌نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تربیت مدرس. دانشکده کشاورزی.##حسینی، س.ص. و همایون‌‌پور، م.، 1391. بررسی عوامل موثر بر صادرات محصولات کشاورزی ایران، فصلنامه اقتصاد کشاورزی، 6(4)، 16-1.##حقیقی، م.، و مختاری، پ.، 1384. تعیین وضعیت رقابت صنعت پرورش میگوی ایران در بازار‌‌های بین‌‌المللی بر اساس مدل الماس رقابت ملی مایکل پورتر. مجله دانش مدیریت، 18(2)، 71-55.##خلیلیان، ص. و فرهادی، ع.، 1381. بررسی عوامل موثر بر صادرات بخش کشاورزی ایران. فصلنامه اقتصاد کشاورزی و توسعه، (39)، 84-71.##رحمانی دیزگاه، م.، مرتضوی، س.ا. و موسوی، س.ح.، 1396. نقش رابطه انتقالی نرخ ارز در رفتار قیمت گذاری برای بازار صادرات میگو و خاویاردر ایران. فصلنامه اقتصاد کشاورزی، 11(4)، 125-107.##رضایی صومعه، ر. 1379. بررسی عوامل موثر بر صادرات پسته در ایران. پایان‌‌نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه تربیت مدرس، دانشکده کشاورزی.##سازمان توسعه و تجارت ایران، 1397. گزارش عملکرد تجارت خارجی کشور سال 1396. وزارت صنعت، معدن و تجارت. دفتر برنامه ریزی تجاری، گروه آمار. 18ص.##سازمان شیلات ایران، 1392. سالنامه آماری سازمان شیلات ایران 1391-1381. معاونت برنامه‌‌ریزی و مدریت منابع، دفتر برنامه ریزی و بودجه. 64 ص.##سازمان شیلات ایران، 1396 . سالنامه آماری سازمان شیلات ایران 1396-1391. معاونت برنامه‌‌ریزی و مدریت منابع، دفتر برنامه ریزی و بودجه. 64 ص.##شاه‌‌آبادی، ا.، جعفری، م. و امامی، ف.، 1398. تأثیر مدیریت راهبردی پایداری و محیط صادرات بر عملکرد صادرات خاویار ایران. مجله علمی شیلات ایران، 28(2)، 93-85. ##عادلی، ا.، 1393. تحلیل بازار عرضه قزل‌‌آلای رنگین کمان در ایران و جهان ، مجله شیلات دانشگاه آزاد اسلامی آزاد شهر. 8(2)، 81-88.##عادلی، ا.، 1397. مدیریت بهره برداری ماهیان خاویاری در سواحل ایرانی دریای خزر (1393-1306)، مجله علمی شیلات ایران، 27(1)، 179-171. ##عادلی،ا.، بایی، ه، 1398. تحلیل صادرات محصولات شیلاتی ایران (1393-1383). فصلنامه تولید و بهره برداری آبزیان. 8 (4): 33-43.##عاقل، ح.، یوسف‌‌زاده، س. و منصوری، ه.، 1387. بررسی عوامل موثر بر ارزش صادرات محصولات کشاورزی با تاکید بر استاندارد صادرات (پسته، بادام، زعفران، خرما و سیب). مجله علوم و صنایع کشاورزی. ویژه اقتصاد و توسعه کشاورزی، 22(1)، 125-135.##عزیزی، ج. و یزدانی، س.، 1385. بررسی صادرات پسته ایران، چالش‌‌ها و رهیافت‌‌ها. مجله تحقیقات اقتصادی، 74، 247-217.##فرهادی، ع.، 1380. بررسی آثار تجارت خارجی بر رشد اقتصادی ایران. مجله برنامه و بودجه، شماره 84 . ص 58-27.##فیض‌‌آبادی، ی.، غلام‌‌نژاد، م. و رمضانی، م.، 1388. بررسی عامل‌‌های موثر بر صادرات خاویار ایران. مجله تحقیقات اقتصاد کشاورزی، 1(1)، 16-1.##کاظم‌‌زاده، ل. و ابونوری، ع.ع.، 1385. برآورد توابع عرضه و تقاضای صادرات خرمای ایران با استفاده از الگوی سیستم معادلات همزمان. اقتصاد کشاورزی و توسعه، 14(54)، 124-103.##محمودزاده، م. و زیبایی، م.، 1383. بررسی عوامل موثر بر صادرات پسته ایران، یک تحلیل همجمعی. فصلنامه اقتصاد کشاورزی و توسعه، 12 )46)، 158-137.##محنت‌‌فر، ی. و خاکپور، ح.، 1384. ارزیابی میزان صادرات غیرنفتی و اثر آن بر رشد اقتصادی ایران:یک تحلیل تجربی. مجله اقتصادی، 5 (51 و52)، 111-91.##مرتضوی، س.ا.، جوادی یانبلاغ، ر. و وکیل‌‌پور، م.، 1393. عوامل تعیین‌‌کننده و پتانسیل‌‌های تجاری صادرات میگوی ایران در اتحادیه اروپا؛ به کارگیری مدل جاذبه. مجله تحقیقات اقتصاد کشاورزی، 6(3)، 41-21.##مقدسی، ر. و علی شاهی، م.، 1384. مطالعه عامل‌‌های مؤثر بر سهم ایران در بازار جهانی محصولات کشاورزی، پنجمین کنفرانس اقتصاد کشاورزی ایران. دانشگاه سیستان و بلوچستان زاهدان.##نجاتیان‌‌پور، ا. و اسماعیلی، ع.، 1393. شناسایی عوامل موثر بر صادرات محصولات صنایع غذایی استان خراسان رضوی: رویکرد دلفی فازی. مجله تحقیقات و توسعه کشاورزی ایران، 46(3)، 467-457.##نعیمی فر، ا. 1388. بررسی عوامل موثر بر صادرات محصولات در زیر بخش شیلات و ماهیگیری. ششمین کنفرانس اقتصاد کشاورزی ایران، 13ص.##Adeli, A. and Namdar, M., 2015. The Iranian Caviar and its Substitutes in the World Market. Ecopersia, 3 (1), 933-944.##Dhanavandan, S., 2016. Application of Garet ranking technique practical Approach. International Journal of Library and Information Studies, 6(3), 135-140.##FAO, 2016. Yearbook. Fisheries and Aquaculture Statistics, Aquaculture Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome, 204P.##FAO, 2019. Yearbook. Fishery and Aquaculture Statistics 2017/FAO annuaire. Statistiques des pêches et de l’aquaculture 2017/FAO anuario. Estadísticas de pesca y acuicultura 2017. Rome/Roma. 80P.##Gururaj, B., Satishkumar, M. and Aravinda Kumar, M.K., 2016. Analysis of factors affecting the performance of exports in India. International Journal of Agriculture, Environment and Biotechnology, 9(4), 613-616. DOI: 10.5958/2230-732X.2016.00079.6##Henson, S., Saqib, M. and Rajasenan, D., 2004. Impact of sanitary measures on exports of fishery products from India. The International Bank for Reconstruction and Development/The World Bank. www.worldbank.org.##Potelwa, Y.X., Lubinga, H.M. and Ntshangase, T., 2016. Factors influencing the growth of South Africa agricultural exports to world markets. European Scientific Journal, 12(34), 195-204. DOI: 10.19044/esj.2016.v12n34p195.##Sagitha, M., 2016. Export performance of marine fish products in India. International journal of Applied Research, 2(4), 504-506. ##

مطالعه تأثیر فاکتورهای اکولوژیک مختلف بر تنوع و پراکنش فیتوپلانکتون‌های سواحل جنوبی دریایی خزر (استان مازندران) The Effect of Different Ecological Parameters on the species diversity and Distribution of Phytoplankton in the South Coast of Caspian Sea (Mazandaran Province) 1 1 این تحقیق به مطالعه تآثیر فاکتورهای اکولوژیک بر تنوع و تراکم فیتوپلانکتون ها در سواحل جنوبی دریایی خزر می پردازد. نمونه برداری از 5 ایستگاه در نواحی رامسر، نوشهر، نور، فریدونکنار و میانکاله ( از سطح و اعماق 3 و 5 متری) از سال 1394 تا 1395 انجام شد. مجموعاً؛ 56 گونه فیتوپلانکتون متعلق به 5 شاخه جلبک ها شناسایی شدند که ماکزیمم تراکم و زی توده در گونه های Skletonema costatum ، Thalassionema nitzschioides، Nitzschia acicularis، Pseudonitzschia seriata وMelosira moniliformis مشاهده شدند. میانگین زی توده فیتوپلانکتون ها به ترتیب 106×7/2±3/12 عدد در متر مکعب و 4/7±6/35 میلی گرم در متر مکعب بود، که بیشترین میزان تراکم در فصل زمستان برابر106×4/4±1/19 عدد در متر مکعب مشاهده شد. بیشترین و کمترین شاخص تنوع شانون در فصول مختلف بین 97/1 و 84/1 بود. سیلیس؛ دما و نیتروژن نقش مهمی در تراکم فیتوپلانکتون ها بویژه دیاتومه ها؛ سیانوفیتا و پیروفیتا ایفا می کنند. مطالعه اخیر نشان داد که نسبت بالایNP  در فصل زمستان و خصوصیات همراه با استراتژی مناسب گونه های کلروفیتا از دلایل مهم و مطلوب برای افزایش جمعیت آنها است. 2 This research was conducted to evaluate the effect of ecological factors on diversity and density of phytoplankton in Caspian Sea. Sampling was carried out from 5 stations included of Ramsar, Nowshar, Noor, Fereydunkenar and Miankaleh (Amirabad) regions (surface, 3 and 5 m depths) from 2016 to 2017. The totals of 56 species belong to 5 phyla of algae division were identified which maximum density and biomass were observed in Skletonema costatum, Thalassionema nitzschioides, Nitzschia acicularis, Pseudonitzschia seriata and Melosira moniliformis. Density and biomass of phytoplankton showed that the mean of biomass was 12.3±2.7×106 cell/m3 and 35.6±7.7 mg/m3, respectively, with the highest average density in winter (19.1±4.4 ind.m-3). The highest and lowest Shannon index was 1.97 and 1.84 in different seasons respectively. Silica, temperature and inorganic nitrogen play an important role in density of algae especially diatoma, cyanophyta and pyrrophyta. The recent study showed that a high N:P ratio in winter and characteristics along with a suitable strategy for Chlorophyta species are important and desirable reasons for increasing their populations. 27 35 2019/04/152019/05/242019/06/2 1398/3/12 2020/04/192020/04/192020/04/19 1399/1/31 معصومه شمس کهریزسنگی masoumeh shams kahrizsangi دانشگاه شهید اشرفی ایران shamsshiva80@gmail.com فواد البودویرج foaad albodviraj دانشگاه خرمشهر ایران foaad.albod@gmail.com صدرالدین قائم مقامی sadroddin ghaemmaghami دانشگاه خرمشهر ایران s_sadra2003@yahoo.com ابوالقاسم روحی Abolghasem roohi پژوهشکده دریای خزر ایران roohi_ark@yahoo.com Phytoplankton Density Biomass Caspian Sea فیتوپلانکتون تراکم زی توده دریای خزر ##حسینی، س.ع.، گنجیان، ع.، مخلوق،آ.، 1390. هیدرولوژی و هیدروبیولوژی حوزه جنوبی دریای خزر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، ایران، 504 صفحه.##فارابی، م.و.؛ فضلی، ح.؛ واردی، س.ا.، 1390. طرح پروژه هیدرولوژی، هیدروبیولوژی و آلودگی های زیست محیطی حوزه جنوبی دریای خزر. ساری: پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، 346 صفحه.##فضلی، ح.، فارابی، م.و.، دریانبرد، غ.ر.، 1389. پروژه تجزیه و تحلیل داده های هیدرولوژی و هیدروبیولوژی دریای خزر. ساری. پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، 286 صفحه.##گنجیان‌، ع.، حسینی، س.‌ع.، خسروی، م. و کیهان ثانی، ع.، 1387. بررسی‌ تراکم‌ و پراکنش‌ گروه های‌ عمده‌ فیتوپلانکتونهای‌ حوضه‌ جنوبی‌ دریای‌ خزر. مرکز تحقیقات‌ شیلاتی‌ استان‌ مازندران‌. مجله علمی شیلات ایران. 2 (7): 95-107. ##لالویی، ف؛ زلفی نژاد.، ک.، هاشمیان، ع .، سالاروند، غ.، قانع، ا. و طالبی، د.،1383. هیدرولوژی و هیدرو بیولوژی و آلودگیهای زیست محیطی اعماق کمتر از 10 متر حوضه جنوبی دریایی خزر. پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، ساری. 394 صفحه.##مخلوق، آ.، نصراله زاده، ح.س.، پورغلام، ر و رحمتی، ر.، 1390. معرفی گونه های سمی و مضر جدید فیتوپلانکتون در آبهای سواحل ایرانی حوزه جنوبی دریای خزر، مجله علوم زیستی واحد لاهیجان. 5 (2): 77-93.##Atici, T. and Shams, M., 2017. Most abundance Diatom Taxa of rivers in Turkey and Iran. International Journal of Botany Research (IJBR), 7(5): 9-14. ##Bagheri, S., Mansor, M., Turkoglu, M., Makaremi, M., Omar, W.M.W. and Negaresta, H., 2012. Phytoplankton species composition and abundance in the southwestern Caspian Sea. Ekoloji Dergisi, 21(83): 32-43. Doi: 10.5053/ekoloji.2012.834.##Bagheri, S. and Fallahi, M., 2014. Checklist of phytoplankton taxa in the Iranian waters of the Caspian Sea. Caspian Journal of Environment Science, 12(1): 81-97.##Cox, E.J., 1996. Identification of freshwater diatoms from live material. Chapman and Hall, London. 158P.##Desikachary, T.V., 1959. A monograph on cyanophyta. Indian Council of Agricultural Research Publication, New dehli., 185P.##Dumont, H., 1995. Ecocide in the Caspian Sea. Nature, 337, 673–674.##Gowen, N., O'Donovan, M., Casey, I., Rath, M., Delaby, L. and Stakelum, G., 2003. The effect of grass cultivars differing in heading date and ploidy on the performance and dry matter intake of spring calving dairy cows at pasture. Animal Research, 52 (4): 321-336. Doi:10.1051/animres:2003025.##Nasrollahzadeh Saravi, H., Pourariya, A. and Nowrozi, B., 2015. Phosphorus forms of the surface sediment in the Iranian coast of the Southern Caspian Sea. Caspian Journal of Environment Science, 13(2):141-151. Doi:10.22113/jmst.2015.11554.##Nasrollahzadeh, H.S., Zubir, B.D., Foong, S.Y. and Makhlough, A., 2008. Trophic status of the Iranian Caspian Sea based on water quality parameters and phytoplankton diversity. Continental Shelf Research, 28: 1153– 1165. Doi: 10.1016/j. csr.2008.02.015.##Newel, C.E., 1977. Marine plankton. Hutchinsson of London, 410P.##Newell, G.E. and Newell, R.C., 1977. Marine plankton: a practical guide: Hutchinson press, London. 210P.## ##Patrick, R. and Reimer, C.W., 1975. The diatoms of the United States. Philadelphia Monogr. Academic National Science. pp. 1335-1342.##Prescott, G.W., 1984. How know the freshwater algae. University of Montana, U.S.A. 293P. ##Reynolds, C.S., Huszar, V., Kruk, C., Flores, L.N. and Melo, S., 2002. Towards a functional classification of the freshwater phytoplankton. Journal of Plankton Research, 24(5):417-428. Doi: 10.1093/plankt/24.5.417.##Roohi, A., Kideys, A., Sajjadi, A., Hashemian, A., Pourgholam, R., Fazli, H., Ganjian Khanari, A. and Eker-Develi, E., 2010. Changes in biodiversity of phytoplankton, zooplankton, fishes and macrobenthos in the southern Caspian Sea after the invasion of the ctenophore Mnemiopsis leidyi. Biological Invasions, 12: 2343–2361. https://www.researchgate.net/225339322_Changes_in_biodiversity.##Shams, M. and Afsharzadeh, S., 2007. Taxonomic study of Diatoms in Zayandeh Rood Dam Lake. Iranian Journal of Botany (Rostaniha), 8(2): 160-175. Rostaniha.areo.ir/article_101798.html##Shams, M., Afsharzadeh, S. and Atici, T., 2012. Seasonal variation in phytoplankton communities in Zayandeh Rood Dam Lake (Isfahan- Iran). Turkish Journal of Botany, 36 (6): 715-726. Doi: 10.3906/bot-1104-19.##Sorina, A., 1987. Phytoplankton manual. Unesco, Paris, 140P. ##Soylu, E.N. and Gonulol, A., 2010. Functional classification and composition of phytoplankton in Liman Lake. Turkish Journal of Fisheris Aquatic Science, 10: 53-60. Doi: 10.4194/trjfas.2010.010.##Tahami, F.S., 2017. Study on dynamic of phytoplankton in the southern part of Caspian Sea. Fisher and Oceanology Journal, 2(1): 1-7. Doi: 10.19080/OFOAJ.2017.02.555577.##. ##

بررسی اثرات استفاده از باکتریوفاژ AHɸ3 در میزان بازماندگی ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss) آلوده به باکتری آئروموناس هیدروفیلاAeromonas hydrophila) ) در شرایط درون‌تنی (in vivo) Effect of using AHɸ3 bacteriophage in the survival rate of Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) contaminated with Aeromonas hydrophila in in vivo condition 1 1 باکتری آئروموناس هیدروفیلا عامل بروز سپتی‌سمی در ماهیان آبهای شیرین و شور است. در حال حاضر، یکی از مهمترین مشکلات در زمینه مدیریت بهداشتی برخی از مزارع تکثیر و پرورش ماهیان، کنترل و پیشگیری از سندرم سپتی‌سمی باکتریایی ناشی از این باکتری می‌باشد. تحقیق حاضر با هدف بررسی یافتن راهی برای کنترل و از بین بردن باکتری مزبور با استفاده از باکتریوفاژ جهت افزایش میزان بازماندگی ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان آلوده به باکتری آئروموناس هیدروفیلا صورت گرفته است. در این تحقیق که طی سال‌های 98- 1397 انجام شد و360 عدد ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان با وزن حدود 2±15 گرم در 24 آکواریوم، در گروه‌های 15 تایی با 3 تکرار انتخاب و با رقت‌های4-10 و 8-10 باکتری آئروموناس هیدروفیلا (تهیه شده از استوک حاوی 108×5/1 (CFU/ mL به‌ صورت داخل صفاقی و غوطه‌وری در آب آلوده گردیدند و سپس در معرض غلظت mL/Pfu 3-10 باکتریوفاژ AHɸ3 جداسازی شده از آب استخرهای پرورش ماهی استان کرمان قرار گرفتند. بیشترین تاًثیر باکتریوفاژ در میزان بازماندگی ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان زمانی بود که از رقت 8-10 باکتری و mL/Pfu 3-10 باکتریوفاژ AHɸ3 به ‌صورت غوطه‌وری استفاده گردید. سایر عوامل محیطی مانند اکسیژن، pH، دما، شوری برای تمامی تیمارها یکسان بود. بین گروه شاهد و تیمارها در هر دو حالت (تزریق درون صفاقی و غوطه‌وری) تفاوت معنی‌دار بود (05/0(P≤. داده‌های حاصله با استفاده از نرم افزار 21  SPSSآنالیز و با استفاده از آزمون آماری دانکن تجزیه و تحلیل شدند. نتایج بررسی حاضر نشان داد که یکی از راههای مناسب و کاربردی جهت افزایش میزان زنده مانی ماهیان قزل‌آلای رنگین کمان در مقابل بیماری‌های باکتریائی، استفاده از باکتریوفاژها می‌باشد. این بررسی با تاکید بر نیاز به تحقیقات بیشتر در زمینه استفاده از فاژ درمانی در حوزه آبزیان به‌ عنوان یک استراتژی ضد‌ میکروبی می‌باشد که جنبه‌های مختلف را از دیدگاه‌های محیط زیستی و بهداشتی ارائه می‌دهد. 2 Aeromonas hydrophila bacteria causes septicemia in saline and fresh water fishes. One of the most important problems in the field of health management in some fish farming centers is controlling the bacterial septicemia syndrome caused by this bacterium. The purpose of this study was to find a way to control and eliminate the bacteria using bacteriophage to increase the survival rate of rainbow trout, infected with Aeromonas hydrophila bacteria. In this research was carried out in the years 2018-19, 360 rainbow trout weighing 15±2 grams in 24 aquariums were selected in 15 groups with 3 replications. They were contaminated with a concentration of 10-4 and 10-8 Aeromonas hydrophila (prepared from stock containing 1.5× 108 CFU / ml, both intraperitoneally and immersed in water. Then they were exposed to 10-3 PFU/ ml AHɸ3 bacteriophage isolated from rainbow trout farming pools of Kerman province. Temperature, pH, Oxygen, Salinity was controlled for all treatments. There was a significant difference between the control group and the treatments in both cases (intraperitoneal injection and immersion) (P <0.05). The results indicated that the highest effect of bacteriophage on survival rate and reduction of rainbow trout losses was observed when the concentration of 10-8 bacteria and 10-3 PFU/ ml bacteriophage AHɸ3 were immersed. The data were analyzed using SPSS 21 software and Duncan statistical test. Suitable and applied to increase the survival rate of rainbow trout against disease bacteria is the use of bacteriophages.   37 48 2019/04/152019/05/242019/06/22019/08/31 1398/6/9 2020/04/192020/04/192020/04/192020/01/1 1398/10/11 لاله یزدانپناه گوهرریزی Laleh Yazdanpanah-Goharrizi کرمان بلوار شهید صدوقی مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی کرمان ایران l.yazdanpanah@areeo.ac.ir فرخ رخ بخش زمین Farokh Rokhbakhsh-Zamin دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرمان ایران rokhbakhsh@gmail.com جلیل ذریه زهرا Jalil Zorriehzahra تهران موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران Zorrieh@yahoo.com نادیا کاظمی پور Nadia Kazemipour کرمان کیلومتر 5 جاده جوپار دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرمان گروه میکروبیولوژی ایران nadia_kazemi@yahoo.com بابک خیرخواه Babak Kheirkhah کرمان کیلومتر 5 جاده جوپار دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرمان گروه میکروبیولوژی ایران babakkheirkhah@yahoo.com Aeromonas hydrophila Survival rate Bacteriophage Rainbow trout In vivo آئروموناس هیدروفیلا زنده‌مانی باکتریوفاژ قزل‌آلای رنگین‌کمان درون تنی ##نم نبات، ر.، فیروز‌بخش، ف.، مقدس، م. و نوراشرف‌الدین، س. ن.، 1393. بررسی میزان آلودگی باکتری آئروموناس هیدروفیلا در بافت کبد ماهیان قزل‌آلای رنگین‌کمان مزارع پرورشی استان اصفهان. کنفرانس بین المللی توسعه پایدار، راهکارها و چالش‌ها با محوریت کشاورزی، منابع طبیعی، محیط زیست و گردشگری، 12-1.##Abedon, S.T., 2017. Information phage therapy research should report. Pharmaceuticals, 10, 43. 1-17, Doi: 10.3390/ph10020043.##Addy, H.S., Azizi, N.F. and Mihardjo, P.A., 2016. Detection of bacterial wilt pathogen and isolation of its bacteriophage from banana in lumajang area, Indonesia. International Journal of Agronomy, 1-7. Doi: 10.1155/2016/5164846. ##Austin, B. and Austin, D.A., 2012. Bacterial fish pathogens. Springer: 652P.##Chaikeeratisak, V., Nguyen, K., Khanna, K., Brilot, A.F., Erb, M.L., Coker, J.K., Vavilina, A., Newton, G.L., Buschauer, R. and Pogliano, K., 2017. Assembly of a nucleus like structure during viral replication in bacteria. Science, 355, 194–197, Doi: 10.1126/science.aal2130. ##Cheng, K., Zhang, D., Deng, J. and Zhao, Y., 2015. Isolation and characterization of an Aeromonas puncatata bacteriophage. Journal of Biomedical Engineering, 9: 185-187, Doi: 10.2174/1874120701509010185. ##Cruzpapa, D.M.A.D., Candare, C.M.G., Cometa, G.L.S., Gudez, D.E.G. and Guevara, A.M.I.T., 2014. Aeromonas hydrophila Bacteriophage UP87: An Alternative to Antibiotic Treatment for Motile Aeromonas Septicemia in Nile Tilapia (Oreochromis niloticus). Philippines Agricultural Scientist Journal, 97: 96-101.##Danish, J., Malika, J., Sokolova, K., Vinnera, F., Mancusoa, S., Cinquerruia, G.T., Vladisavljevica, R.J., Clokieb, J., Gartonb, A., Stapleya, G.F. and Kirpichnikova, A., 2017. Formulation, stabilisation and encapsulation of bacteriophage for phage therapy. Advances in Colloid and Interface Science, 249, 100-133. ##Doss, J., Culbertson, K., Hahn, D., Camacho, J. and Barekzi, N., 2017. A review of phage therapy against bacterial pathogens of aquatic and terrestrial organisms. Viruses, 9: 50, Doi: 10.3390/v9030050. ##Drulis-Kawa, Z., Majkowska-Skrobek, G., Maciejewska, B., Delattre, A.S. and Lavigne, R., 2015. Learning from bacteriophages Advantages and limitations of phage and phage encoded protein applications. Current Protein and Peptide Science, 13(8), 699–722, Doi: 10.2174/138920312804871193.##Easwaran, M., Dananjaya, S.H.S. and Park, S.C., 2017. Characterization of bacteriophage pAh-1 and its protective effects on experimental infection of Aeromonas hydrophila in Zebrafish (Danio rerio). Journal of Fish Diseases. 40, 6, 841, Doi. 10.1111/jfd.12536.## ##Elbreki, M., Ross, R.P., Hill, C., Omahony, J., McAuliffe, O. and Coffey, A., 2014. Bacteriophages and their derivatives as biotherapeutic agents in disease prevention and treatment. Journal of Viruses, 1–2, Doi. 10.1155/2014/382539##Erez, Z., Steinberger-Levy, I., Shamir, M., Doron, S., Stokar-Avihail, A., Peleg, Y., Melamed, S., Leavitt, A., Savidor, A. and Albeck, S., 2017. Communication between viruses’ guides lysis–lysogeny decisions. Nature Journal, 541:488–493, Doi: 10.1038/nature21049.##Gary, R., 2014. Bacteriophage remediation of bacterial pathogens in aquaculture: a review of the technology. Bacteriophage, 4:4, DOI: 10.4161/21597081.##Golkar, Z., Bagasra, O. and Pace, D.G., 2014. Bacteriophage therapy: A potential solution for the antibiotic resistance crisis. The Journal of Infection in Developing Countries, 8:129–136, Doi: 10.3855/jidc.3573.##Haq, I.U., Chaudhry, W.N., Akhtar, M.N., Andleeb, S. and Qadri, I., 2012. Bacteriophages and their implications on future biotechnology: A review. Virology Journal, 9:9, Doi: 10.1186/1743-422X-9. ##Hoang, H.A. and Ngalep, X.T.T., 2019. Selection of phages to control Aeromonas hydrophila, an infectious agent in striped catfish. Biocontrol Science, 24(1):23-28, Doi: 10.4265/bio.24.23.##Jun, J.W., Kim, J.H., Shin, S.P., Han, J.E., Chai, J.Y. and Park, S.C., 2018. Protective effects of the Aeromonas phages pAh1-C and pAh6-C against mass mortality of the cyprinid loach (Misgurnus anguillicaudatus) caused by Aeromonas hydrophila. Aquaculture, 416: 289–295, Doi: 10.3390/antibiotics7010016.##Kim, J., Son, J., Choi, Y., Choresca, C., Shin, S., Han, J., Jun, J., Kang, D., Oh, C. and Heo, S., 2012. Isolation and characterization of a lytic Myoviridae bacteriophage pas-1 with broad infectivity in Aeromonas salmonicida. Current Microbiology. 64:418–426, Doi: 10.1007/s00284-012-0091-x. ##Le, T.S., Nguyen, T.H., Vo. H.P., Doan, V.C., Nguyen, H.L., Tran, M.T., Tran, T.T., Southgate, P.C. and Kurtboke, D.I., 2018. Protective Effects of Bacteriophages against Aeromonas hydrophila Species Causing Motile Aeromonas Septicemia (MAS) in Striped Catfish. Antibiotics. 25, 7(1). 16, Doi: 10.3390/antibiotics7010016.##Mariem, M.A. and Jamalludeen, N.M., 2015. Isolation and characterization of bacteriophage against methicillin resistant Staphylococcus aureus. Journal of Medical Microbiology and Diagnosis, 5: 213, Doi: 10.4172/2161-0703.1000213.##Meaden, S. and Koskella, B., 2013. Exploring the risks of phage application in the environment. Frontiers in Microbiology, 4:358, Doi: 10.3389/fmicb. ##Moori Bakhtiari, N., Peyghan, R., and Monzavi, S.F., 2017. Determination of isolated Aeromonas hydrophila antibiotic resistance profile from farmed common carp (Cyprinus carpio) in khuzestan province. Iranian Scientific Fisheries Journal, 25, 5, DOI: 10.22092/ISFJ. 110313##Nobrega, F.L., Costa, A.R., Kluskens, L.D. and Azeredo, J., 2015. Revisiting phage therapy: New applications for old resources. Trends in Microbiology, 23:185–191, Doi: 10.1016/j.tim.##Oliveira, J., Castilho, F., Cunha, A. and Pereira, M.J., 2012. Bacteriophage therapy as a bacterial control strategy in aquaculture. Aquaculture International, 20:879-910, Doi: 10.1007/s10499-012-9515-7.##Panos, G., Kalatzis, I.D., Danie, C., Pantelis, K. and Mathias, M., 2018. Bacteriophage Interactions with Marine Pathogenic Vibrios: Implications for Phage Therapy. Antibiotics, 7, 15, Doi: 10.3390/antibiotics7010015.##Panos, G., Roberto, B., Constantina, K. and Pantelis, K., 2016. Isolation and Characterization of Two Lytic Bacteriophages, φSt2 and φGrn1; Phage Therapy Application for Biological Control of Vibrio alginolyticus in Aquaculture Live Feeds. PLoS ONE, 11 (3), Doi:10.1371/journal.pone.##Penades, J.R., Chen, J., Quiles-Puchalt, N., Carpena, N. and Novick, R.P., 2015. Bacteriophage mediated spread of bacterial virulence genes. Current Opinion in Microbiology, 23:171–178, Doi: 10.1016/j.mib.##Rahmani, R., Zarrini, G., Sheikhzadeh, F. and Aghamohammadzadeh, N., 2015. Effective phages as green antimicrobial agents against antibiotic-resistant hospital Escherichia coli. Jundishapur Journal Microbiology, 8. Doi: 10.5812/jjm.17744.##Richards, G.P., 2014. Bacteriophage remediation of bacterial pathogens in aquaculture. A review of the technology. Bacteriophage: 4.##Rohit, K., Veena, P., Lalit, S., Lata, S., Neha, S., Dimpal, T., Atul, K., Singh and Prabhati, K. Sahoo. 2016. Pathological Findings of Experimental Aeromonas hydrophila Infection in Golden Mahseer (Tor putitora). Fisheries and Aquaculture Journal, 7(1): 1-6.##Salmond, G.P. and Fineran, P.C., 2015. A century of the phage: Past, present and future. Nature Reviews Microbiology, 13:777–786, Doi: 10.1038/nrmicro3564. ##Samal, K.S., Das, K.B. and Pal, B.B., 2014. Isolation, biochemical characterization, antibiotic susceptibility study of Aeromonas hydrophila isolated from freshwater fish. International journal of current microbiology and applied sciences, 3: 259-267.##Sanmukh, S.G., Meshram, D.B., Paunikar, W.N. and Swaminathan, S., 2012. Interactions of fishes with pathogenic micro-organisms and application of phages for their control: a review. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 22:567-74, Doi.org/10.1007/s11160-012-9257-7.##Schmelcher, M. and Loessner, M.J., 2014. Application of bacteriophages for detection of foodborne pathogens. Bacteriophage, 4:e28137, Doi: 10.4161/bact.28137. ##Seed, K.D., 2015. Battling Phages: How bacteria defend against viral attack. PLoS Pathogens; 11, Doi: 10.1371/journal.ppat. ##Seyit, A. and Abdolkadir. C., 2004. Systemic infection of Aeromonas hydrophila in Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): Gross pathology, Bacteriology, Clinical Pathology, Histopathology and Chemotherapy. Journal of Animal and Veterinary Advances, 3(12): 810-819.##Tuan, S., Le, T.h., Hien, N., Hong, P., Van, C.D., Hong, L., Nguyen, M., Minh, P., Southgate, C. and Ipek, K.D., 2018. Protective effects of bacteriophages against Aeromonas hydrophila causing motile Aeromonas septicemia (MAS) in striped catfish. Antibiotics, 7, 16, Doi: 10.3390/antibiotics7010016.##Wang, Y., Barton, M., Elliott, L., Li, X., Abraham, S., Odea, M. and Munro, J., 2017. Bacteriophage therapy for the control of Vibrio harveyi in greenlip abalone (Haliotis laevigata). Aquaculture, 473:251–258, Doi: 10.1016/j.aquaculture.##Yazdanpanah-Goharrizi, L., Rokhbakhsh-Zamin, F., Zorriehzahra, J., Kazemipour, N. and Kheirkhah, B., 2020. Effect of using AHɸ3 bacteriophage in the survival rate of Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) contaminated with Aeromonas hydrophila in in vivo condition. Iranian Journal Fisheries Science, 29, 1. ##Zorriehzahra, S.M.E.J., 2008. Aetiology agents of fry mortality syndrome in the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in Iran. University Putra Malaysia, Ph.D Thesis, 280P. ##

بررسی انعطاف‌پذیری ریختی شکل بدن ماهی کاراس (Carassius gibelio) به زیستگاه‌های آبی جاری و ساکن با استفاده از روش ریخت‌سنجی هندسی Phenotypic plasticity of the body shape in Prussian carp (Carassius gibelio), in response to lentic and lotic habitats using geometric morphometric technique 1 1 این تحقیق با هدف بررسی انعطاف‌پذیری ریختی شکل بدن جمعیت‌‌های ماهی کاراس(Carassius gibelio)  در سیستم‌‌های آب ساکن و جاری با استفاده از روش ریخت‌‌سنجی هندسی به اجرا درآمد. برای این ‌منظور تعداد 119 قطعه ماهی از رودخانه سفیدرود (30 عدد)، دریاچه آلاگل (37 عدد)، دریاچه پشت سد خداآفرین روی رودخانه ارس (21 عدد) و رودخانه ماشکیل (31 عدد) صید شدند. برای استخراج داده‌های شکل بدن در روش ریخت‌سنجی هندسی، از سمت چپ سطح جانبی نمونه‌ها عکس‌برداری و بر روی تصاویر دوبعدی در نرم افزار TpsDig2، تعداد 15 نقطه لندمارک تعریف شده، رقومی گردیدند. سپس داده‌های حاصل پس از آنالیز پروکراست، براساس روش‌‌های چند متغیره تجزیه به مولفه‌‌های اصلی، تجزیه همبستگی کانونی، واریانس چند متغیره آنالیز خوشه‌ای مورد تحلیل قرار گرفتند. نتایج تفاوت معنی‌داری بین شکل ‌بدن جمعیت‌های مورد مطالعه نشان داد (001/0p<). براساس نتایج، جمعیت‌‌های دریاچه‌‌های آلاگل و سد خداآفرین دارای بدنی مرتفع‌تر و سر نسبتاً کوچک‌‌تر و جمعیت‌‌های رودخانه‌‌های سفیدرود دارای بدنی مرتفع‌تر ولی همانند جمعیت رودخانه ماشکیل دارای سر بزرگ‌تر بودند. همچنین تحلیل خوشه‌ای دو جمعیت دریاچه‌‌های آلاگل و پشت سد خداآفرین را در یک شاخه و جمعیت‌های رودخانه‌‌های سفیدرود و ماشکیل را در شاخه دیگری قرار داد که بیانگر جدایی جمعیت‌های آب جاری و جمعیت‌های آب ساکن دریاچه‌ای می‌باشد. نتایج نشان داد که شکل بدن در ماهی کاراس از الگوی کلی وابسته به نوع زیستگاه تبعیت می‌‌کند.   2 This research was conducted to study the phenotypic plasticity of the body shape in Carassius gibelio inhabiting lentic and lotic water bodies using geometric morphometric technique. For this purpose, a total of 119 specimens were collected from Sefid River (n=30), Alagol Lake (n=37), Khoda-Afarin dam Lake (n=21) and Mashkil River (n=31). To extracting body shape data in geometric morphometric method, the left side of specimens were photographed and 15 defined landmark-points were digitized on 2D images using TpsDig2 software. Data after general procratus analysis was analyzed using PCA, CVA, MANOVA and cluster analysis. The results showed a significant differences in the body shape between studied populations (p<0.001). Based on the results, populations of the Alagol and Khoda-Afarin dam lakes had deeper body and smaller head, and those of Sefid River had deeper body, but similar to the Mashkil population had larger head. In addition, Alagol and Khoda-Afarin dam lakes populations were placed together in same clad and those of the Sefid and Mashkil rivers in another clade, indicating the separation of populations inhabiting lentic and lotic habitats. The results also showed that the body shape of C. gibelio changes based on type of type of habitat. 49 58 2019/04/152019/05/242019/06/22019/08/312019/04/10 1398/1/21 2020/04/192020/04/192020/04/192020/01/12020/04/19 1399/1/31 سهیل ایگدری Soheil Eagderi دانشگاه تهران ایران soheil.eagderi@ut.ac.ir عطا مولودی صالح Atta Mouludi-Saleh دانشگاه تهران ایران atta.mouludisaleh@ut.ac.ir سولماز احمدی Solmaz Ahmadi گروه شیلات، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز ایران solmaz.ahmadi@yahoo.com نرگس جواد زاده Narges Javadzadeh گروه شیلات، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز ایران nargesjavadzadeh@yahoo.com Geometric Morphometric Golden fish Water current Damming Adaption ریختسنجی هندسی طلایی کاراس جریان آب سدسازی سازگاری ##احمدی، س.، ایگدری، س.، . و جوادزاده، ن. 1395. مطالعه انعطاف‌‌پذیری ریختی شکل بدن ماهی کاراس (Carassius auratus) مطالعه موردی جمعیت‌‌های رودخانه سفیدرود و دریاچه آلاگل. فصلنامه علمی پژوهشی اکوبیولوژی تالاب، 8 (1): 115-107.##اسحق زاده، ح.، ایگدری،س.، پورباقر، ه. و کاظمی، ر. 1391. مقایسه شکل در پیش لاروهای سالم و تلف شده فیل ماهی (Huso huso) و الگوهای بد شکلی با استفاده از روش ریخت سنجی هندسی. مجله علمی شیلات ایران. ۲۱ (۲): 9-1. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110050.##باقری، ط.، عبدلی، ا. و هدایتی، ع.ا. 1389. بررسی سن و رشد ماهی کاراس (Carassius auratus) در مصب رودخانه گرگان. مجله زیست شناسی ایران، 23 (6): 849-843.##کیوانی، ی.، نصری، م.، عباسی، ک. و عبدلی، ا. 1395. اطلس ماهیان آبهای داخلی ایران. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. 218 صفحه.##Adams, D.C. and Funk, D.J., 1997. Morphometric inferences on sibling species and sexual dimorphism in Neochlamisus bebbianae leaf beetles: multivariate applications of the thin-plate spline. Systematic Biology, 46: 180-194. DOI: 10.1093/sysbio/46.1.180##Andersson, J., Frank, J. and Tony, S., 2005. Interactions between predator-and diet-induced phenotypic changes in body shape of crucian carp. Environmental Biology of Fishes, 273: 431-437. DOI: 10.1098/rspb.2005.3343. ##Blake, R.W., 1984. Fish locomotion. Journal of Ichthyology, 13: 58-68.##Bookstein, F.L., 1987. Landmark methods for forms without landmarks: morphometrics of group differences in outline shape. Medical Image Analysis, 1(3):225-243. DOI: 10.1016/S1361-8415(97)85012-8.## ##Bookstein, F.L., 1991. Morphometric Tools for Landmark Data: Geometry and Biology. Cambridge University Press.##Bronmark, C. and Miner, J.G., 1992 Predator-inducedphenotypic change in body morphology in crucian carp. Science, 258: 1348-1350. DOI: 10.1126/science.258.5086.1348. ##Carpenter, K.E., 1996. Morphometric pattern and feeding mode in emperor fishes (Lethrinidae, Perciformes). In Advances in morphometrics, (pp. 479-487). Springer, Boston, MA. DOI: 10.1007/978-1-4757-9083-2_41.##Cech, J.J. and Moyle, P.B., 2000. Fishes: an introduction to ichthyology. Uppersaddle River, NJ: Prentice Hall.##Coad, B.W., 2019. Fresh water fishes of Iran. Available at http://www.briancoad.com.##Costa, C. and Cataudella, S., 2007. Relationship between shape and trophic ecology of selected species of Sparids of the Caprolace coastal lagoon (Central Tyrrhenian Sea). Environmental Biology of Fishes, 78(2): 115-123. DOI: 10.1007/s10641-006-9081-9. ##Darcy, G.H., 1985. Synopsis of biological data on the sand perch, Diplectrum formosum (Pisces, Serranidae). NOAA Technical Report NMFS, 26: 1-21.##Esmaeili, H.R., Sayyadzadeh, G., Eagderi, S. and Abbasi, K., 2018. Checklist of freshwater fishes of Iran. FishTaxa, 3(3): 1-95##Graf, W.L., 1999. Dam nation: A geographic census of American dams and their large‐scale hydrologic impacts. Water Resources Research, 35(4): 1305-1311. DOI: 10.1029/1999WR900016. ##Guill, J.M., Hood, C.S. and Heins, D.C., 2003. Body shape variation within and among three species of darters (Perciformes: Percidae). Ecology of Freshwater Fish, 12(2): 134-140. DOI: 10.1034/j.1600-0633.2003.00008.x. ##Haas, T.C., Blum, M.J. and Heins, D.C., 2010. Morphological responses of a stream fish to water impoundment. Biology Letters, 6(6): 803-806. DOI: 10.1098/rsbl.2010.0401. ##Hendry, A.P., Taylor, E.B. and McPhail, J.D., 2002. Adaptive divergence and the balance between selection and gene flow: lake and stream stickleback in the Misty system. Evolution, 56(6): 1199-1216. DOI: 10.1111/j.0014-3820.2002.tb01432.x. ##Holopainen, I.J., Aho, J., Vornanen, M. and Huuskonen, H., 1997. Phenotypic plasticity and predator effects on morphology and physiology of crucian carp in nature and in the laboratory. Journal of Fish Biology, 50(4): 781-798. DOI: 10.1111/j.1095-8649.1997.tb01972.x. ##Kuliev, Z.M., 1988. Morphometric and ecological characteristics of Caspian Vimba (Vimba vimba persa). Journal of IchthyolgyIchthyology, 28: 29-37.##Langerhans, R.B., Layman, C.A., Langerhans, A.K. and DeWitt, T.J., 2003. Habitat-associated morphological divergence in two Neotropical fish species. Biological Journal of Linnean Society, 80: 689-698. DOI: 10.1111/j.1095-8312.2003.00266.x. ##Langerhans, R.B. and Reznick, D.N., 2010. Ecology and evolution of swimming performance in fishes: predicting evolution with biomechanics. Fish locomotion: an eco-ethological perspective, 220: 248.##Lattuca, M.E., Battini, M.A. and Macchi, P.J., 2007. Trophic interactions among native and introduced fishes in a northern Patagonian oligotrophic lake. Journal of Fish Biology, 72(6): 1306-1320. DOI: 10.1111/j.1095-8649.2008.01796.x. ##Robinson, B.W. and Wilson, D.S., 1994. Character release and displacement in fishes: a neglected literature. The American Naturalist, 144(4): 596-627. DOI: 10.1086/285696. ##Robinson, B.W. and Parsons, K.J., 2002. Changing times, spaces, and faces: tests and implications of adaptive morphological plasticity in the fishes of northern postglacial lakes. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 59(11): 1819-1833. DOI: 10.1139/f02-144. ##Vogel, S., 1994. Life in moving fluids: the physical biology of flow. Princeton University Press.##Vøllestad, L.A., Varreng, K. and Poleo, A.B.S., 2004. Body depth variation in crucian carp Carassius carassius: an experimental individual‐based study. Ecology of Freshwater Fish, 13(3): 197-202. DOI: 10.1111/j.1600-0633.2004.00048.x.##Webb, P.W., 1984. Form and function in fish swimming. Scientific American, 251: 72-75.##West-Eberhard, M.J., 1989. Phenotypic plasticity and the origins of diversity. Annual Review of Ecology and Systematics, 20: 249–278.##Winemiller, K.O., 1992. Ecological divergence and convergence in freshwater fishes. National Geographic Research, 8(3): 308-327.##Zelditch, M., 2004. Geometric morphometric for biologists: a primer. Elsevier Academic Press, New York. 437P. ##

بررسی کاربرد توالی‌یابی ناحیه کنترلی (D loop) DNA میتوکندریایی در مطالعه تنوع ژنتیکی جمعیت‌های تاسماهی ایرانی (Acipenser persicus Borodin, 1897) دریای خزر Application of mitochondrial DNA sequences of the control region in genetic variability of Persian sturgeon (Acipenser percicus) Populations from the Caspian Sea 1 1 هدف از تحقیق حاضر بررسی تعیین ساختار ژنتیک جمعیت تاسماهی ایرانی (Acipenser persicus) دریای خزر با روش توالی­یابی قطعه ناحیه کنترلی DNA میتوکندریایی بود. برای این منظور، تعداد 45 نمونه باله تاسماهی ایرانی از آب­های ساحلی مناطق مختلف دریای خزر جمع­آوری گردید. ناحیه کنترلی با استفاده از روش PCR تکثیر و توالی­ یابی با استفاده از روش استاندارد انجام پذیرفت. تعداد 12هاپلوتیپ متفاوت در بین نمونه­های بررسی شده، مشاهده گردید. تنوع هاپلوتایپی و نوکلئوتیدی در نمونه­ ها به­ترتیب برابر با 037/0 ± 795/0 و 0046/0 ± 0062/0 بدست آمد. بیشترین تعداد هاپلوتایپ (7 عدد) در بین نمونه­های رودخانه سفیدرود بود که از این تعداد 3 هاپلوتایپ A، B و E  اختصاصی بوده و در سایر مناطق مشاهده نشدند. نتایج تجزیه و تحلیل شاخص تثبیت (FST) بر اساس روش دوپارامتری و آنالیز واریانس مولکولی (AMOVA) نشان داد که نمونه ­های رودخانه سفیدرود با نمونه­ های مناطق روسیه و آذربایجان اختلاف معنی­داری دارند (001/0 > P) و در نهایت وجود سه جمعیت شناسایی گردید. با توجه به تنوع بالای موجود در ناحیه کنترلی، توالی این ناحیه می­تواند به عنوان یک نشانگر مناسب برای شناسایی و تعیین واحدهای حفاظتی و مدیریتی ذخایر جمعیت­های احتمالی تاسماهی ایرانی به کار گرفته شود و همچنین می تواند اطلاعات ارزشمندی از کاربرد روش­های مولکولی را به منظور ژنتیک حفاظت این گونه ارائه نماید. 2 Direct mitochondrial DNA (mtDNA) control region sequencing analysis was used to investigate population genetic structure of Persian sturgeon (Acipenser persicus) in the Caspian Sea. A total of 45 specimens were collected from different locations of the Caspian Sea. mtDNA control region was amplified using PCR. Direct sequencing was performed according to a standard method. The results showed that 12 haplotypes were observed among 45 samples in the method. The highest numbers of haplotypes were observed in the Sefidrud River in which 3 haplotypes A, B and E among them were specific for the river and were not observed in the other locations. The average haplotype diversity (h) and nucleotide diversity (π) were 0.795±0.037 and 0.0062±0.0046, for control region sequencing, respectively. The results of Fst based on kimura- 2 parameters method and analysis of molecular variance (AMOVA) demonstrated that most variations occurred among the samples, and between samples of the Sefidrud and Russia and Azerbaijan are statistically significant (P<0.0001). Therefore, three distinct populations including Sefidrud, Russia and Azerbaijan were identified. As mtDNA control region is a highly variable segment, it may be used as a potential marker for identifying populations and for determining their management and conservation units, leading to the useful application of molecular markers in investigating conservation genetics of the Persian sturgeon. 59 70 2019/04/152019/05/242019/06/22019/08/312019/04/102013/02/25 1391/12/7 2020/04/192020/04/192020/04/192020/01/12020/04/192020/04/19 1399/1/31 سجاد نظری Sajad Nazari مرکز تحقیقات ژنتیک و اصلاح نژاد ماهیان سردآبی شهید مطهری یاسوج ایران sajadnazari13@gmail.com محمد پورکاظمی Mohammad Pourkazemi موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور ایران Pkazemi@yahoo.com مجیدرضا خوش خلق Majidreza Khoshkholgh دانشگاه گیلان ایران majidrzagu@yahoo.com Acipenser persicus mitochondrial DNA genetic variation Caspian Sea تاسماهی ایرانی Acipenser persicus توالی یابی DNA میتوکندریایی دریای خزر ##بیک دوردی، پ. 1376. شناسایی پروتئین های سرم خون ماهی قره برون و تعیین درصد آلبومین و گلوبولین های آن با استفاده از روش الکتروفورز با استات سلولز. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تربیت مدرس. دانشکده علوم دریایی نور. 106 صفحه.##پروانه، امیر. 1373. تعیین نژادهای مختلف تاسماهی ایرانی با استفاده از الکتروفورز سرم خون. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد شمال تهران. 114 صفحه.##پورکاظمی،م.، 1387. طرح جامع ارزیابی ساختار ژنتیکی تاسماهیان دریای خزر. گزارش نهایی پروژه موسسه تحقیقات شیلات ایران. انستیتو تحقیقات بین المللی ماهیان خاویاری دکتر دادمان. 354 صفحه.##توکلی، م.، پرافکنده حقیقی، ف.، خوشقلب،م.، کیمرام،ف و تقوی، الف.1389. ارزیابی ذخایر تاسماهی ایرانی (Acipenser persicus) در حوضه جنوبی دریای خزر طی سالهای 88-87. مجله علمی شیلات ایران.شماره 1، سال نوزدهم، بهار 1389. صفحه 8-1.##چکمه دوز قاسمی، ف؛ پورکاظمی، م؛ یارمحمدی ، م؛ حسن زاده صابر، م؛ غرقی، الف؛ عزیززاده، ل. 1393. ساختار ژنتیکی و جمعیتی تاسماهی ایرانی (Acipenser persicus) سواحل جنوبی دریای خزر و رودخانه سفیدرود با استفاده از روش توالی یابی DNA. مجله علمی شیلات ایران. 23 (2)، 21-11.##خوش خلق، م. 1385، بررسی تنوع ژنتیکی تاسماهی ایرانی و روسی (Acipenser persicus و Acipenser guldenstaedti) دریای خزر با استفاده از روش مایکروستلایت. پایان نامه دکترای تخصصی شیلات، دانشگاه منابع طبیعی گرگان. 150 صفحه.##لالویی، ف. 1375. بررسی چگونگی مهاجرت ماهیان خاویاری به رودخانه های تجن و گرگانرود. مجله علمی شیلات ایران.شماره 4، سال پنجم، زمستان 1375. صفحه 30-17.##عطایی، ف. 1381. بررسی تنوع ژنتیکی تاسماهی ایرانی (Acipenser persicus) در رودخانه سفیدرود بااستفاده از روش مولکولی PCR-RFLP روی mtDNA و اطلاعات مورفولوزیکی. پایان نامه کارشناسی ارشد علوم جانوری، دانشکده علوم پایه، دانشگاه شهید بهشتی، 157 صفحه. ##Avise J.C. 1994. Molecular Markers, Natural History, and Evolution. Chapman and Hall, New York, NY. 511 pp.##Barshad G, Marom S, Cohen T, et al. 2018.Mitochondrial DNA transcription and its regulation: an evolutionary perspective. Trends in Genetics, 34:682–692. ##Billard, R., & Lecointre, G. 2001. Biology and conservation of sturgeon and paddlefish. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 10, 355–392. Kluwer Academic Publishers, Netherlands##Cvijanovic G., Adnadevic T.B., Lenhardt M.B., Maric S., 2015. New data on sterlet (Acipenser ruthenus L.) genetic diversity in the Middle and Lower Danube sections, based on mithocondrial DNA analyses. Genetika 47, 1051-1062.##Excoffier L., Smouse P.E., and Quattro J.M. 1992. Analysis of molecular variance inferred from metric distances among DNA haplo‌types: application to human mitochondrial DNA restriction data. Genetics 131, 479-49l. ##Felsenstein J., 1995. PHYLIP, Phylogeny inference package, version 3.57c. Department of Genetics, SK-50, University of Washington, Seattle.##Grunwald , C., Maceda , L, Waldman, J.R ., Stabile, J & Wirgin, I., 2008. Conservation of Atlantic sturgeon Acipenser oxyrinchus oxyrinchus: delineation of stock structure and distinct population segments. Conservation Genetics 9:1111–1124##Johnson, B., Kemp, B., & Thorgaard, G., 2018. Increased mitochondrial DNA diversity in ancient Columbia River basin Chinook salmon Oncorhynchus tshawytscha. PLoS ONE, 13, e0190059.##Khoshkholgh, M., Nazari, S., Pourkazemi, M., 2013. Population structure of Persian sturgeon (Acipenser persicus Borodin, 1897) populations in the southern part of Caspian Sea. Iranian Journal of Animal Biosystematics ,9 (1), 29-39.##Khoshkholgh, M and Nazari, S., 2019. The genetic diversity and differentiation of narrow-clawed crayfish Pontastacus leptodactylus (Eschscholtz, 1823) (Decapoda: Astacidea: Astacidae) in the Caspian Sea Basin, Iran as determined with mitochondrial and microsatellite DNA markers. Journal of Crustacean Biology, 39 (2), 112–120.##Kottelat, M., Gesner, J. & Freyhof, J. 2009. Acipenser persicus. In: IUCN 2010. IUCN Red List of Threatened Species. Version 2010.4. http://www.iucnredlist.org.##Kowalchuk, G. A., F. J. de Bruijn, I. M. Head, A. D. Akkermans, and J. D. van Elsas. 2004. Molecular microbial ecology manual (MMEM), 2nd ed., vol. 1. Kluwer Academic Publishing, London, United Kingdom.##Kretz, K. A., and J. S. O’Brien. 1993. Direct sequencing of polymerase chain reaction products from low melting temperature agarose. Methods in Enzymology 218:72–79.##Kumar S, Tamura K. & Nei M., 2008 MEGA3: integrated software for molecular evolutionary genetics analysis and sequence alignment. Brief Bioinformatics 5, 150–163.##Lagunova V.S. 2001. Natural reproduction of the Persian sturgeon (Acipenser persicus) in the lower Volga river. In: "Problems of research and sustainable use of marine natural resources". Astrakhan. P.118-124.##Liua Z.J. & J.F. Cordes. (2004). DNA marker technologies and their applications in aquaculture genetics. Aquaculture 238, 1 –37.##Moghim M., Kor D., Tavakolieshkalak M. & Khoshghalb M.B. (2006). Stock status of Persian sturgeon (Acipenser persicus,Borodin 1897) along the Iranian coast of the Caspian Sea. Journal of Applied Ichthyology 22, 99-107.##Moghim M., Heist E. J. Tan S. G. Pourkazemi M. Siraj S. S. ; Panandam J. M. ; Pourgholam R. Kor D. Laloei F . Taghavi M. J., 2012. Isolation and characterization of microsatellite loci in the Persian sturgeon (Acipenser persicus, Borodin, 1897) and cross-species amplification in four commercial sturgeons from the Caspian Sea. Iranian Journal of Fisheries Sciences. 11(3) 548-558.##Nei, M. 1972. Genetic distance between population. Am. Naturalist. pp. 283-242.##Nei, M., and Tajima, F., 1981. DNA polymorphism detectable by restriction endonucleases. Genetic 97: 145-163.##Ong T.L., Stabile J., Waldman J.R. and Wirgin I., 1996. Genetic divergence of Atlantic and Gulf of Mexico sturgeon based on sequence analysis of the mtDNA control region. Copeia 1996, 464–469.##Pourkazemi, M. 1996. Molecular and biochemical genetic analysis of sturgeon stocks from the south Caspean sea. Ph. D. thesis. University of Wales. Swansea, UK##Pourkazemi, M., Skibinski, D. O & Bear more, A. 1999. Application of mtDNA D-Loop region for the study of Russian sturgeon population structure from Iranian coastline of the Caspian sea. Journal of Applied Ichthyology 15, 23-28.##Pourkazemi, M. 2006. Caspian Sea sturgeon Conservation and Fisheries: Past present and Future. Journal of Applied Ichthyology 22 (Suppllement 1). 12-16.##Pourkazemi, M., Nazari, S., Khoshkholgh, MR., and Azizzadeh, L., 2012. Genetic Relationships among Populations of the Persian sturgeon, Acipenser percicus, in the south Caspian Sea Detected by Mitochondrial DNA–Restriction Fragment Length Polymorphisms. Caspian Journal of Environmental Sciences. 10(2).215-226.##Putilina L.A. and E.N. Artyukhin. 1985. Some features of Persian sturgeon migration in the lower Volga river. Ibid. P. 32-34.##Rastorguev, S., Mugue, N., Volkov, A & Barmintsev, V. 2008. Complete mitochondrial DNA sequence analysis of Ponto-Caspian sturgeon species. Journal of Applied Ichthyology 24 (Suppllement 1), 46–49.##Rezvani Gilkolaei, S. & Skibinski, D. O. F., 1999. Polymerase chain reaction (PCR) and direct sequencing of mtDNA from the ND5/6 gene region in Persian sturgeon Acipenser persicus from the southern Caspian Sea. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 1:23-34. ##Roques, S., Berrebi, P., Rochard, E., & Accolas, M., 2018. Genetic monitoring for the successful restocking of species with low diversity: The case of the critically endangered European sturgeon, Acipenser sturio. Biological Conservation, 221, 91– 102.##Sambrook, J., Fritsch, E. F. & Maniatis, T. 1989. Molecular Cloning: a Laboratory Manual, 2nd edn. Cold Spring Harbor, NY: Cold Spring Harbor Laboratory.##Shedko, S.V., Miroshnichenko, I.L., Nemkova, G.A., et al. 2015. Mitochondrial DNA sequence variation, demographic history, and population structure of Amur sturgeon Acipenser schrenckii Brandt, 1869, Russian Journal of Genetics 51 (2), 169—183.##Shedko, S. V., 2019. Causes of the Excess of Frequency of SCH34 Mitotype in Population of Amur Sturgeon Acipenser schrenckii (Acipenseridae) Based on the Analysis of Complete Mitochondrial Genomes. Russian Journal of Genetics, 55(7), 922–926. ##Vecsei P. & Artyukhin E. 2001. Threatened fishes of the world: Acipenser persicus Borodin, 1897 (Acipenseridae) Environmental Biology of Fishes 61, 160.##Waldman, J., Alter, S.E., Peterson, D., 2019. Contemporary and historical effective population sizes of Atlantic sturgeon Acipenser oxyrinchus oxyrinchus. Conservation Genetics 20: 167–184.##Weir B.S. & Cockerham C.C. 1984. Estimating F-statistics for the analysis of population structure. Evolution 38, 1358–1370.##White, DJ. Wolff, Pierson J N M. and Gemmell N J., 2008 Revealing the hidden complexities of mtDNA inheritance. Molecular Ecology 17, 4925–4942.##Wirgin I., Waldman J.R., Rosko L., Gross R., Collins M.R., Rogers S.G. & Stabile J. 2000. Genetic structure of Atlantic sturgeon popula‌tions based on mitochondrial DNA control region sequences. Transactions of the American Fisheries Society129, 476-486. ##Wirgin I., Waldman J., Stabile, J., Lubinski, B. & King T., 2002. Comparison of mitochondrial DNA control region sequence and microsatellite DNA analyses in estimating population structure and gene flow rates in Atlantic sturgeon Acipenser oxyrinchus. Journal of Applied Ichthyology 18, 313–319.##Wirgin I., Grunwald C., Carlson E., Stabile J., Peterson D. & Waldman J. 2005. Range-wide population structure of shortnose sturgeon Acipenser brevirostrum based on sequence analysis of the mitochondrial DNA control region. Estuaries 28, 406-421.##Wirgin I., Grunwald C., Stabile J., & Waldman J. 2009. Delineation of discrete population segments of shortnose sturgeon Acipenser brevirostrum based on mitochondrial DNA control region sequence analysis. Conservation Genetics 11:1011–1024.##Wirgin I, Roy NK, Maceda L, Mattson M., 2018. DPS and population origin of sub-adult Atlantic sturgeon in the Hudson River. Fisheries Research 207:165–170. ##

ارزیابی تولید سوخت بیودیزل از میکروجلبک در یک فتوبیوراکتور و تعیین برخی از خواص فیزیکی و شیمیایی آن Evaluation of biodiesel production from micro-algae in a photobioreactor and study of its physical and chemical properties 1 1 بیودیزل متیل استر یا اتیل استر روغن­های طبیعی می­باشد که شباهت زیادی به گازوئیل دارد و می‌تواند به عنوان یک سوخت جایگزین در موتورهای دیزل استفاده شود. دراین تحقیق تولید بیودیزل از میکروجلبک در یک فتوبیوراکتور و برخی خواص فیزیکی و شیمیایی آن مورد بررسی قرار گرفت. در این پژوهش مخلوط میکروجلبک کشت داده شده از آب راکد، در یک فتوبیوراکتور در دو شدت نور 8000 و 16000 لوکس پرورش و میزان بیومس تولید شده مقایسه شد. بیومس تولیدی از نور 8000 لوکس پس از جداسازی و خشک شدن تحت فرایند ترانس استریفیکاسیون مستقیم قرارگرفته و بیودیزل تولید گردید. آنالیز پروفایل اسیدهای چرب تشکیل دهنده بیودیزل با استفاده از GC/MS تعیین گردید. برخی از خصوصیات بیودیزل تولید شده نظیر چگالی، نقطه ابری شدن، نقطه ریزش و نقطه انجماد مورد مطالعه قرار گرفت. حداکثر نرخ رشد ویژه در شدت نور8000 لوکس 7/0 (در روز) و در شدت نور16000 لوکس 59/0 (در روز) بود. علاوه بر این، ‌زمان دو برابر شدن سلول ها و میزان تولید بیومس در شدت نور 8000 لوکس نسبت به شدت نور 16000 لوکس برتری داشت. نتایج GC/MS نشان داد که 59/57 درصد وزن خشک میکروجلبک متشکل از انواع لیپید بوده و بیودیزل حاصل از ترانس استریفیکاسیون آن، حاوی 31/50 % اسید چرب اشباع و 69/49% اسید چرب غیراشباع بود. اسیدهای چرب اشباع پالمیتیک (C16:0) با 16/39%، اسیداستئاریک (C18:0) 65/9%، اسیدآراشیدیک (C20:0) 79/0%، اسید مارژریک (C17:0)71/0% و اسیدهای چرب غیراشباع لینولئیک(C18:2) با 40/27 درصد، اسیداولئیک (C18:1) با 04/20 و اسید پالمیتولئیک (C16:1) 25/2 درصد بیودیزل تولیدی را تشکیل دادند. چگالی بیودیزل تولید شده برابر با 853/0 گرم بر سانتیمتر مکعب و نقطه ابری شدن و نقطه ریزش آن 3- و 10-  درجه سانتی‌گراد بود. نتایج تحقیق نشان داد که امکان کشت میکروجلبک در فتوبیوراکتور با به حداقل رساندن هزینه و زمان وجود دارد. همچنین پروفایل اسیدهای چرب و خواص فیزیکی بیودیزل تولید شده، حاکی از آن بود که بیودیزل حاصل از میکروجلبک دارای کیفیت بالایی بوده و روش تبادل استری مستقیم می‌تواند گزینه مناسبی جهت تولید بیودیزل، نسبت به سایر روش‌ها باشد.   2 Biodiesel methyl ester or ethyl ester is a natural oil that is very similar to diesel and can be used as an alternative fuel for diesel engines. Micro-algae are able to produce and store high amounts of lipids. In this research, the production of biodiesel fuel from microalgae was investigated in a biofilm and some of its physical and chemical properties were determined.this study, a mixture of microalgae cultured from stagnant water was compared in a photobioreactor at two light intensities of 8000 and 16000 lux and the amount of biomass produced. The biomass produced under the light intensity of 8000 lux after isolation and drying was subjected to a direct trans-esterification process and biodiesel was produced.Analysis of biodiesel constituents of fatty acids was determined using GC / MS. Some biodiesel characteristics, such as density, cloudy point, spin point, and freezing point, were also studied. The light intensity of 8000 lux was superior to the magnitude of doubling of cells, specific growth rate and biomass production compared to 16000 lux light intensity, and was used to produce microalgae biomass. The results of GC / MS showed that biodiesel resulting from transesterification of lipid micro-algae contained 50. 31% saturated fatty acid and 49.69% unsaturated fatty acid. Pallic acid saturated fatty acids (C16: 0) with 39.16%, acetatanic acid (C18: 0), 65.6%, arachidic acid (0.72% C20: 0%), margaric acid (0.17% C17: 0%) and acids The unsaturated linoleic fat (C18: 2) with 27.47%, acidulic acid (C18: 1) with 20.04 and palmitoleic acid (C16: 1) formed 25.2% biodiesel. The produced biodiesel was 0.853 g / cm3 and the cloud was cloudy and its dropping point was 3- and 10 ° C.The results of the study showed that the microalgae culture in the photobiovert can be minimized by minimizing the cost and time. Also, fatty acid profiles and biodiesel physical properties indicated that the micro-algae biodiesel was of high quality and direct steady-state exchange could be a good option for producing biodiesel, as compared to other methods.   71 80 2019/04/152019/05/242019/06/22019/08/312019/04/102013/02/252019/03/25 1398/1/5 2020/04/192020/04/192020/04/192020/01/12020/04/192020/04/192020/04/19 1399/1/31 طیبه موذنی tayebeh Moazzeni دانشگاه پیام نور Iran tayebemoazzeni@yahoo.com مریم صدرنیا maryam sadrnia دانشگاه پیام نور ایران msadrnia@yahoo.com رضا حاجی حسینی reza Hajihosseini دانشگاه پیام نور ایران hajihosseini@yahoo.com Biodiesel Microalgae Photobioreactor بیودیزل میکروجلبک فتوبیوراکتور ##ترکیان بلداجی م.، نجفی ب. و حجازی م.ا. 1389. تولید بیودیزل از ریزجلبک Chlorella vulgaris و تعیین برخی از خواص فیزیکی و شیمیایی آن. مجله علوم پایه.99-110 :(78/1) دانشگاه آزاد اسلامی##سیف آبادی، س.ج.، امینی خوئی، ز. و رمضانپور،ز.، 1389. اثر شدت و دوره های نور بر رشد و زیتوده میکرو جلبک Chlorella vulgaris. مجله علمی شیلات ایران. ۱۳۸۹; ۱۹ (۳) : 20-11 DOI:10.22092/ISFJ.2017.109952##مشهدی میغانی, ح.، الماسی، م.، باخدا، ح. و محسنی فر، م.، ۱۳۸۷. مقایسه خصوصیات فیزیکی و شیمیایی متیل استر روغن سویا به عنوان بیودیزل با سوخت دیزل مرسوم در ایران، پنجمین کنگره ملی مهندسی ماشینهای کشاورزی و مکانیزاسیون، مشهد، انجمن مهندسی ماشین های مکانیزاسیون ایران، دانشگاه فردوسی مشهد کشاورزی و COI: NCAMEM05_107 ##Andersen R. A., Kawachi M. 2005. Traditional Microalgae Isolation Techniques, Biology, DOI:10.1016/b978-012088426-1/50007-x##Brennan, L. and Owende, P., 2010. Biofuels from Microalgae— A Review of Technologies of Production, Processing and Extraction of Biofuels and Co-Products. Renewable and Sustainable Energy Reviews, 14, 2, pp DOI:10.1016/j.rser.2009.10.009##Canakci M., Sanli H., 2008. Biodiesel production from various feed stocks and their effects on the fuel properties, Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology, Volume 35, Issue 5, pp 431–441, DOI: 10.1007/s10295-008-0337-6 ##Cheirsilp, B. and Torpee, S., 2012. Enhanced growth and lipid production of microalgae under mixotrophic culture condition: Effect of light intensity, glucose concentration and fed batch cultivation. Bioresource Technology, 110, 510–516. DOI: 10.1016/j.biortech.2012.01.125##Chioccioli, M., Hankamer, B. and Ross, I.L., 2014. Flow Cytometry Pulse Width Data Enables Rapid and Sensitive Estimation of Biomass Dry Weight in the Microalgae Chlamydomonas reinhardtii and Chlorella vulgaris. PLoS ONE, 9(5): e97269. doi:10.1371/journal.pone.0097269. ##Chisti , Y., 2007. Biodiesel from microalgae. Biotechnology Advances, 1221, 15(3), 194-326. doi:10.1016/j.biotechadv.2007.02.001##Ehimen, E.A., Sun, Z.F., Carrington, C.G., 2010. Variables affecting the in situ transesterification of microalgae lipids. Fuel, 89, 677–684. DOI: 10.1016/j.fuel.2009.10.011## ##Feng, D., Chen, Z., Xue, S. and Zhang, W., 2011. Increased lipid production of the marine oleaginous microalgae Isochrysis zhangjiangensis (Chrysophyta) by nitrogen supplement. Bioresource Technology, pp. 6710-6716. DOI:10.1016/j.biortech.2011.04.006##Gouveia, L., 2011. Microalgae as a Feedstock for Biofuels, SprimgerBriefs in Microbiology.##Gunawan, S., Maulana, S., Anwar, K. and Widjaja, T., 2011. Rice bran, a potential source of biodiesel production in Indonesia. Industrial Crops and Products, 33(3): 624-62. DOI:10.1016/j.indcrop.2010.12.027.##Hidalgo P., Toro C., Ciudad G., Navia R., 2013. Advances in direct trans esterification of microalgal biomass for biodiesel production, Reviews in Environmental Science and BioTechnology, Volume 12, Issue 2, pp 179–199, DOI: 10.1007/s11157-013-9308-0##Huang, G., Chen, F., Wei, D., Zhang, X. and Chen, G., 2010. Biodiesel production by microalgal biotechnology. Applied Energy, 87(1), 38–46. DOI.org/10.1016/j.apenergy.2009.06.016##Johnson m., Zhiyou W., 2009. Production of Biodiesel Fuel from the Microalga Schizochytrium limacinum by Direct Transesterification of Algal Biomass Energy Fuels, 23, 10, 5179-5183, doi.org/10.1021/ef900704h##Kilham, S. Kreeger, D., Lynn, S., Goulden, C. and Herrera, L., 1998. COMBO:a defined freshwater culture medium for algae and zooplankton. Hydrobiologia, 377:147–159 DOI: 10.1023/A:1003231628456##Knothe, G., 2008. “Designer” Biodiesel: Optimizing Fatty Ester Composition to Improve Fuel Properties. Energy & Fuels, -.##Rawat, I., Kumar, R.R., Mutanda, T. and Bux, F., 2013. Biodiesel from microalgae : A critical evaluation from laboratory to large scale production. Applied Energy, 103, 444–467. doi.org/10.1016/j.apenergy.2012.10.004##Richmond A., 2004. Principles for attaining maximal microalgal productivity in photobioreactors: an overview, Hydrobiologia, Volume 512, Issue 1–3, pp 33–37, DOI:10.1023/B:HYDR.0000020365.06145.36##Strickland, J.D.H. and Parsons, T.R. ,1972. A Practical Hand Book of Seawater Analysis. Fisheries Research Board of Canada Bulletin 157, pp 143–157##Tang, D., Han, W., Li, P., Miao, X. and Zhong, J., 2011. CO2 biofixation and fatty acid composition of Scenedesmus obliquus and Chlorella pyrenoidosa in response to different CO2 levels. Bioresource Technology, 102, 3071–3076. doi:10.1016/j.biortech.2010.10.047##Velasco, L., Carreram S. and Barros, J., 2016. Isolation, culture and evaluation of Chaetoceros muelleri from the Caribbean as food for the native scallops, Argopecten nucleus and Nodipecten nodosus. Latin American Journal of Aquatic Research, 44(3): 557-568. DOI: 10.3856/vol44-issue3-fulltext-14.##Wahlen, D. Bradley, Robert M. Willis and Lance, C. Seefeldt., 2011. Biodiesel production by simultaneous extraction and conversion of total lipids from microalgae, cyanobacteria, and wild mixed-cultur. Bioresource Technology, 102, 2724–2730. DOI:10.1016/j.biortech.2010.11.026##Wang, L., Min, M., Li, Y. and Chen, P., 2010. Cultivation of Green Algae Chlorella sp. in Different Wastewaters from Municipal Wastewater Treatment Plant. Applied Biochemistry and Biotechnology, D s ##

بررسی فون ماهیان و عوامل محیطی موثر بر تنوع زیستی در رودخانه زرینه‌‌رود، حوضه دریاچه ارومیه (استان آذربایجان غربی) Investigation of fish fauna and environmental factors influencing biodiversity in the Zarineh River, Urmia Lake basin (West Azerbaijan Province) 1 1 تنوع زیستی ماهیان در رودخانه‌‌ها تحت تاثیر عوامل محیطی مختلف قرار دارد. گاهی شدت این تاثیرات محیطی بحدی است که منجر به ایجاد زیستگاه‌‌های نامطلوب برای گونه‌‌های ماهی می‌‌شود و تنوع زیستی آنها را کاهش می‌‌دهد. مطالعه حاضر با هدف تعیین مهمترین عوامل محیطی موثر بر تنوع زیستی ماهیان در رودخانه زرینه‌‌‌‌رود به اجرا درآمد. لذا، در شهریور 1397، 7 ایستگاه جهت نمونه‌‌برداری از ماهیان در طول رودخانه‌‌زرینه‌‌رود انتخاب شدند. نمونه‌‌برداری از هر ایستگاه از 30 متر با 3 تکرار و در مجموع از 90 متر طول رودخانه بر اساس روش یک‌‌رفت با استفاده از دستگاه الکتروشوکر انجام شد. همزمان با نمونه‌برداری، عوامل محیطی شامل دمای آب، سرعت جریان آب، دبی، عمق و ارتفاع از سطح دریا نیز در هر کدام از ایستگاه‌های مورد مطالعه اندازه‌‌گیری و ثبت شدند. در مجموع، 404 نمونه ماهی از رودخانه زرینه‌‌رود صید شدند که متعلق به 11 گونه بودند. شاخص‌‌های تنوع زیستی شامل شانون- وینر، مارگالف، سیمپسون، غناء گونه‌‌ای، غالبیت و یکنواختی (همگنی) که با استفاده از نرم‌‌افزارهای BiodiversityPro و PAST تعیین شدند. به ‌‌منظور تعیین عوامل محیطی موثر بر شاخص‌‌های تنوع زیستی و گونه‌‌های ماهی از آنالیز Canonical Correspondence Analysis استفاده شد. بر اساس نتایج حاصله، دما، ارتفاع از سطح دریا و سرعت جریان آب بترتیب به ‌‌عنوان عوامل محیطی موثر بر تنوع گونه‌‌ای ماهیان در رودخانه زرینه‌‌رود شناخته شدند. علاوه بر این، عمق، سرعت جریان آب و دبی نیز موثرترین عوامل محیطی بر فراوانی گونه‌‌های ماهی تشخیص داده شدند. 2 The biodiversity of fish in the rivers is affected by various environmental factors. Occasionally, the severity of these environmental impacts is such that it leads to undesirable habitats for fish species and reduces biodiversity. The present study aimed to determine the most important environmental factors affecting the biodiversity of fish in the Zarineh River. For this purpose, in September 2018, seven stations were selected for fish sampling along the Zarineh River. Fish sampling from each station was carried out at 30 m with 3 replications (90 m in total) along the river according to the one-way method using an electrofishing device. In addition, environmental factors including water temperature, velocity, discharge, depth and altitude/elevation above sea level were also recorded at all stations. In total, 404 specimens were caught from the Zarineh River that belonged to 11 species. In this study, diversity indices including shannon–wiener, margalef, simpson, species richness, dominance and evenness were determined using Biodiversity Pro and PAST softwares. Canonical Correspondence Analysis was used to determine the environmental factors affecting the biodiversity and fish species. Based on the results, temperature, altitude/elevation above sea level, and water velocity were identified as environmental factors affecting the biodiversity of fish in the Zarineh River, respectively. In addition, depth, velocity and discharge were also identified as the most effective environmental factors on the abundance of fish species. 81 91 2019/04/152019/05/242019/06/22019/08/312019/04/102013/02/252019/03/252019/06/25 1398/4/4 2020/04/192020/04/192020/04/192020/01/12020/04/192020/04/192020/04/192020/04/19 1399/1/31 علیرضا رادخواه Ali Reza Radkhah گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران ایران radkhahalireza@yahoo.com سهیل ایگدری Soheil Eagderi گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران ایران soheil.eagderi@ut.ac.ir هادی پورباقر Hadi Poorbagher گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران ایران fish7569804@gmail.com یحیی شمس Yahia Shams گروه مدیریت، دانشکده محیط زیست و انرژی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم تحقیقات، تهران، ایران ایران alirezaradkhah@ut.ac.ir Diversity Environmental Factors Biological Index Zarineh River تنوع عوامل محیطی شاخص زیستی زرینه‌‌رود ##احمدی، س.، ایگدری، س. و جوادزاده، ن.، 1395. مطالعه انعطاف‌‌پذیری ریختی شکل بدن ماهی کاراس (Carrassius auratus) مطالعه موردی جمعیت‌‌های رودخانه سفیدرود و دریاچه آلاگل. اکوبیولوژی تالاب، 8 (27): 115-107.##افرائی بندپی، م.ع.، فضلی، ح. و شهلاپور، ش.، 1397. شناسایی و تنوع گونه‌‌ای ماهیان در خلیج گرگان. مجله علمی شیلات ایران، ۲۷ (۲): 69-61. DOI: 10.220092/ISFJ.2018.116697##حسن‌‌لی، ع.م.، 1379. روش‌‌های گوناگون اندازه‌‌گیری آب (هیدرومتری). انتشارات دانشگاه شیراز. 265 صفحه.##رادخواه، ع.ر. و ایگدری، س.، 1394. نخستین گزارش حضور گونه تیزه‌‌کولی (Hemiculter leucisculus Basilewsky, 1855) در رودخانه زرینه‌‌رود (حوضه دریاچه ارومیه) و برخی خصوصیات زیستی آن. مجله بوم‌‌شناسی آبزیان، ۴ (۴) :۱۲۱-۱۱۶.##رادخواه، ع.ر.، ایگدری، س.، پورباقر، ه. و حسینی، س.و.، 1397. مروری بر پراکنش گونه غیربومی آمورچه (Pseudorasbora parva) در آبهای داخلی ایران و بررسی اثرات اکولوژیکی آن. کنفرانس حفاظت از ماهیان بومزاد اکوسیستم‌‌های آبهای داخلی ایران، گروه شیلات (دانشگاه تهران) و انجمن ماهی‌‌شناسی ایران، کرج، 28 آذرماه 1397، ص 236-226.##رحمانی، ح.، رستمی، پ. و حق‌‌پرست، س.، 1397. تاثیر پارامترهای محیطی بر تنوع زیستی ماهیان رودخانه لاویج، شهرستان نور، استان مازندران. نشریه علمی-پژوهشی پژوهش‌‌های ماهی‌‌شناسی کاربردی، 6 (2): 30-13.##رضامند، ع. و پاتیمار، ر.، 1396. بررسی شاخص‌های تولیدمثلی ماهی تیزه کولی Hemiculter leucisculus (Basilewsky, 1855) در رودخانه گرگانرود. نشریه بهره‌‌برداری و پرورش آبزیان، 6 (2): 67-59. DOI: 10.22069/japu.2017.13266.1364##طباطبائی، ن.، هاشم‌زاده سقرلو، ا.، ایگدری، س. و زمانی فرادنبه، م.، 1393. عوامل تعیین کننده در زیستگاه انتخابی ماهی Paracobitis iranica (Nalbant and Bianco, 1998) در رودخانه کردان، حوضه دریاچه نمک. مجله بوم‌‌شناسی آبزیان، ۳ (۴) :۹-۱.##عبدلی، ا.، کد، ب. و نادری، م.، 1379. معرفی گونه Rhinogobius similis, Gill 1895 از خانواده گاوماهیان (Gobiidae) به عنوان یک گونه جدید غیربومی ماهیان آب شیرین ایرانی. مجله علمی شیلات ایران، 9(1): 76-73. DOI: 10.22092/isfj.2000.115918##قاسمی، ح. و رامین م.، 1391. مطالعه تنوع وغنای گونه‌ای ماهیان رودخانه‌‌های حوضه شرق دریاچه ارومیه. مجله علمی شیلات ایران، 21 (4) :74-67. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110088.##مصطفوی، ح.، 1385. تنوع زیستی ماهیان رودخانه تالار استان مازندران. نشریه محیط‌‌شناسی. 32 (40): 135-127.##Bain, M.B., 1995. Habitat at the local scale: multivariate patterns for stream fishes. Bulletin Francais de la Peche et de la Pisciculture (France) 337/338/339:165-177.##CLC., 2019. Conservation Law Center. https://conservationlawcenter.org/fresh-water-ecosystems. Cited 20 June, 2019.##Coad, B.W., 1998. Systematic biodiversity in the freshwater fishes of Iran. Italian Journal of Zoology (Modena). 65 (supplement): 101-108. DOI: 10.1080/11250009809386802.## ##Degani, G., Herbst, G.N., Ortal, R., Bromley, H.J., Levanon, D., Netzer, Y., Harari, N. and Glazman, H., 1993. Relationship between current velocity, depth and the invertebrate community in a stable river system. Hydrobiologia, 263(3):163-172. DOI: 10.1007/BF00006267.##Dudgeon, D., Arthington, A.H., Gessner, M.O., Kawabata, Z.I., Knowler, D.J. and et al., 2006. Freshwater biodiversity: Importance, threats, status and conservation challenges. Biological Reviews of the Cambridge Philosophical Society, 81: 163-182. DOI: 10.1017/S1464793105006950.##Esmaeili, H.R., Sayyadzadeh, G., Eagderi, S. and Abbasi, K., 2018. Checklist of freshwater fishes of Iran. FishTaxa, 3: 1-95.##Ferreira, K.M., 2007. Biology and ecomorphology of stream fishes from the Rio Mogi-Guaçu basin, Southeastern Brazil. Neotropical Ichthyology, 5(3): 311-326. DOI: 10.1590/S1679-62252007000300012.##Gorman, O.T. and Karr, J.R., 1978. Habitat structure and stream fish communities. Ecology, 59: 507-515. DOI: 10.2307/1936581.##Grando, C., 2000. Ecology of Communidades the Paradigm of Freshwater Pisces. University of Seville Secretariat Publications, Sevilla.##Langerhans, R.B., Layman, C.A., Langerhans, A.K. and DeWitt, T.J., 2003. Habitat-associated morphological divergence in two Neotropical fish species. Biological Journal of the Linnean Society, 80: 689-698. DOI: 10.1111/j.1095-8312.2003.00266.x.##Margalef, R., 1958. Temporal succession and spatial heterogeneity in phytoplankton. In: Perspectives in Marine biology, Buzzati-Traverso (ed.), Univ. Calif. Press, Berkeley, pp. 323-347.##N’Zi, K.G., Yao, S.S., Bi, G.G. and Ndouba, V., 2015. Update of ichthyofauna diversity and ecological status of a coastal River Nero (Cote d’Ivoire – West Africa). Saudi Journal of Biological Sciences, 22: 265–273. DOI: 10.1016/j.sjbs.2014.11.007.##Negi, R.K. and Mamgain, S., 2013. Species Diversity, Abundance and Distribution of Fish Community and Conservation Status of Tons River of Uttarakhand State, India. Journal of Fisheries and Aquatic Science, 8: 617-626. DOI: 10.3923/jfas.2013.617.626. ##Palardy, J.E. and Witman, J.D., 2011. Water flow drives biodiversity by mediating rarity in marine benthic communities. Ecology Letters, 14(1):63-68. DOI: 10.1111/j.1461-0248.2010.01555.x.##Pusey, B.J., Arthington, A.H. and Read, M. G., 1993. Spatial and temporal variation in fish assemblage structure in the Mary River, south-eastern Queensland: the influence of habitat structure. Environmental Biology of Fishes, 37: 355–380. DOI: 10.1007/BF00001996. ##Radkhah, A.R., Eagderi, S. and Mousavi-Sabet, H., 2016. First record of the exotic species Hemiculter leucisculus (Pisces: Cyprinidae) in southern Iran. Limnetica, 35(1): 175-178. DOI: 10.23818/limn.35.14.##Radkhah, A.R., Eagderi, S. and Poorbagher, H., 2017. Habitat effects on morphological plasticity of Saw-belly (Hemiculter leucisculus) in the Zarrineh River (Urmia Lake basin, Iran). Journal of BioScience and Biotechnology, 6(1): 37-41.##Sarkar, U.K., Pathak, A.K., Tyagi, L.K., Srivastava, S.M., Singh, S.P. and Dubey, V.K., 2013. Biodiversity of freshwater fish of a protected river in India: comparison with unprotected habitat. Revista de Biología Tropical, 61(1): 161-72. DOI: 10.15517/rbt.v61i1.10942.##Shannon, C.E. and Wiener, W., 1949. Themathematical theory of communication. Urbana, University of Illinois Press, 177P.##Simpson, E.H., 1949. Measurement of diversity. Nature, 163:688. DOI: 10.1038/163688a0.##Súarez, Y.R., Junior, M.P. and Catella, A.C., 2004. Factors regulating diversity and abundance of fish communities in pantanal lagoons, Brazil. Fisheries Management and Ecology, 11:45-50. DOI: 10.1111/j.1365-2400.2004.00347.x.##Taylor, C.M., Holder, T.L., Fiorillo, R.A., Williams, L.R., Thomas, R.B. and Warren, J.R., 2006. Distribution, abundance and diversity of stream fishes under variable environmental conditions. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 63(1): 43-54. DOI: 10.1139/F05-203.##Tejerina-Garro, F.L., Maldonado, M., Ibañez, C., Pont, D., Roset, N. and Oberdorff, T., 2005. Effects of Natural and Anthropogenic Environmental Changes on Riverine Fish Assemblages: a Framework for Ecological Assessment of Rivers. Brazilian Archives of Biology and Technology, 4 (1): 91-108. DOI: 10.1590/S1516-89132005000100013.##Toppo, S., Rahman, H. and Haque, N., 2011. Fish Biodiversity as an Indicator of Riverine Status of Sikkim. Information and Public Relations Department Government of Sikkim, India, pp. 221-232.##Wootton, R.J., 1991. Ecology of teleost fishes. Chapman and Hall. 404P.##Zamani Faradonbe, M., Eagderi, S. and Poorbagher, H., 2017. Niche overlap in fish assemblages inferred from canonical correspondence analysis: A case study with the Totkabon River, North of Iran. Ege Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 34(2): 151-156. DOI:10.12714/egejfas.2017.34.2.06.##Zareian, H., Esmaeili, H.R., Zamanian Nejad, R. and Vatandoust, S., 2015. Hemiculter leucisculus (Basilewsky, 1855) and Alburnus caeruleus Heckel, 1843: new data on their distributions in Iran. Caspian Journal of Environmental Sciences, 13(1): 11-20. ##

اثر آلفالیپوئیک اسید بر رشد، ترکیب بدن و فعالیت برخی آنزیم‌‌های آنتی‌‌اکسیدانی در بافت عضله، کبد و روده ماهی قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان (Oncorhynchus mykiss) Effect of alpha-lipoic acid on growth, body composition and activity of some antioxidant enzymes in muscle, liver and intestine of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) 1 1 هدف از مطالعه حاضر بررسی مکمل آلفالیپوئیک اسید (ALA) به عنوان یک منبع آنتی‌‌اکسیدانی است. در این آزمایش ماهیان                 قزل آلای رنگین کمان با میانگین وزن 02/0± 16/22 گرم در چهار تیمار با سه تکرار به مدت هشت هفته مورد بررسی قرار گرفتند. جیره‌‌های آزمایشی شامل: شاهد (جیره تجاری فاقد مکمل)، mg/kg500 ALA، mg/kg1000 ALA و جیره حاوی mg/kg1500 ALA بودند. پس از پایان هشت هفته، فاکتورهای رشد، ترکیب عضله ماهی، میزان آنزیم‌‌های گلوتاتیون- اس-ترانسفراز (GST)، گلوتاتیون (GSH) و فعالیت آنزیم کاتالاز (CAT) در بافت عضله، کبد و روده اندازه‌‌گیری شدند. نتایج فاکتورهای رشد نشان داد که درصد افزایش وزن، افزایش طول و نرخ رشد ویژه بین تیمارهای مختلف معنی‌‌دار بود (p<0.05) و بیشترین میزان در تیمارهای حاوی 500 و 1000 میلی‌گرم بر کیلوگرم ALA مشاهده شد. نتایج ترکیب لاشه قزل‌‌آلا تغذیه ‌‌شده با ALA نشان‌دهنده تفاوت معنی‌‌دار در پروتئین و ماده خشک بود (p<0.05) ، و تیمار حاوی غلظت‌‌ 1500 ALA بیش‌ترین پروتئین و ماده خشک لاشه را نشان داد. علاوه بر این، اثر غلظت‌‌های مختلف آلفا لیپوئیک اسید بر میزان فعالیت آنزیم‌‌های GST، GSH و CAT در بافت های عضله، کبد و روده معنی‌‌دار بود (p<0.05). در عضله، با افزایش غلظت ALA میزان آنزیم کاتالاز نیز افزایش یافت. همچنین، بیش‌ترین و کمترین مقدار آنزیم GSH و GST به ترتیب در تیمار حاوی غلظت 1000 و شاهد مشاهده شد. در بافت روده و کبد، فعالیت آنزیم‌‌های GSH،  GST و CAT در تیمارهای حاوی ALA بیشتر از شاهد بود. با توجه به نتایج رشد، افزایش پروتئین لاشه و بهبود فعالیت آنزیم‌‌های آنتی‌‌اکسیدانی بواسطه ALA، استفاده از این مکمل با غلظت 1000 میلی‌گرم بر کیلوگرم توصیه می‌‌گردد. 2 The aim of the present study was to evaluate alpha lipoic acid (ALA) supplementation as an antioxidant source. In this experiment, rainbow trout with average weight of 22.16 ± 0.02 g were studied in four treatments with three replications for eight weeks. Experimental diets included control (non-supplemented commercial diet), 500 mg/ kg ALA, 1000mg/ kg ALA and diets containing 1500 mg/ kg ALA. After eight weeks, growth parameters, fish muscle composition, levels of glutathione-S-transferase (GST), glutathione (GSH) and catalase (CAT) activity were measured in muscle, liver and intestine. The results of growth factors showed that percentage of weight gain, length increase and specific growth rate were significantly (p<0.05) different between treatments and highest in 500 and 1000 mg/ kg ALA. Results of rainbow trout carcass fed with ALA showed a significant difference in protein and dry matter (p<0.05), and treatment containing 1500 ALA concentration showed the highest carcass protein and dry matter. In addition, the effect of different concentrations of alpha lipoic acid on the activity of GST, GSH and CAT enzymes in muscle, liver and intestinal tissues was significant (p<0.05). In muscle, CAT increased with increasing ALA concentration. Also, the highest and lowest amounts of GSH and GST were observed at 1000 and control concentrations, respectively. In the intestinal and liver tissues, the activity of GSH, GST and CAT enzymes was higher in treatments containing ALA. Considering the results of growth, increase of carcass protein and improvement of antioxidant enzymes activity by ALA, it is recommended to use this supplement at a concentration of 1000 mg/ kg.  93 104 2019/04/152019/05/242019/06/22019/08/312019/04/102013/02/252019/03/252019/06/252019/09/1 1398/6/10 2020/04/192020/04/192020/04/192020/01/12020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/19 1399/1/31 حجت اله بی نیاز Hojatolla Biniaz گروه شیلات ، واحد بندرعباس ، دانشگاه آزاد اسلامی ، بندرعباس ، ایران ایران rahmanih25@gmail.com علیرضا سالارزاده alireza Salarzadeh گروه شیلات ، واحد بندرعباس ، دانشگاه آزاد اسلامی ، بندرعباس ، ایران ایران reza1375bandar@yahoo.com شایان قبادی Shayan Ghobadi گروه شیلات ، واحد بابل ، دانشگاه آزاد اسلامی ، بابل ، ایران ایران alvinmark237@gmail.com فلورا محمدی زاده Flora Mohammadi Zadeh گروه شیلات ، واحد بندرعباس ، دانشگاه آزاد اسلامی ، بندرعباس ، ایران ایران mina93732@gmail.com امیر حسین اسماعیلی Amir Hossein Esmaeili گروه شیلات ، واحد بابل ، دانشگاه آزاد اسلامی ، بابل ، ایران ایران azhirbandar2017@gmail.com Alpha-lipoic acid Oncorhynchus mykiss Growth Carcass composition Antioxidant activity آلفالیپوئیک اسید Oncorhynchus mykiss رشد ترکیب لاشه فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی ##Abei, H., 1974. Catalase methods enzymatic analysis.Verlog. Chemi Weinheim. pp. 673-678. DOI:10.1016/b978-0-12-091302-2.50032-3 ##Alian, D., Enamorad, O., Atila, C., Martin, S., Juliana, A., Flore, S., Macelo Borges, T., Sergiane, S., Caldas., Ednei, G., Primel., and Monserrat, J.M., 2015. Biochemical responses over time in common carp Cyprinus carpio (Teleostei, Cyprinidae) during fed supplementation with α-lipoic acid. Comparative Biochemistry and Physiology, Part A, 188:9-16. DOI:10.1016/j.cbpa.2015.05.023 ##AOAC, 2005. Official Methods of Analysis. (16th ed). Association of Official Analytical Chemists, Washington DC, USA. DOI:10.1016/0924-2244(95)90022-5 ##Caylaka, E., Aytekin, M. and Halifeoglu, I., 2008. Antioxidant effects of methionine, a-lipoic acid, N-acetylcysteine and homocysteine on lead-induced oxidative stress to erythrocytes in rats. Experimental and Toxicologic Pathology, 60:289-294. DOI:10.1016/j.etp.2007.11.004 ##Celada, J.D., Fuertes, J.B., Carral, J.M., Sáez-Royuela, M., González, Á. and González-Rodríguez, A., 2013. Effects of vitamin C in practical diets on survival and growth of juvenile crayfish (Pacifastacus leniusculus Dana, Astacidae) from the onset of exogenous feeding. Aquaculture Nutrition, 19:110-116. DOI:10.1016/j.aquaculture.2013.01.028 ##Ellman, G.L.,1959. Tissue sulphydryl groups. Arch Biochem Biophys. 82:70-77.##Francis, S., Delgoda, R. and Young, R., 2012. Effects of embryonic exposure to α-lipoic acid or ascorbic acid on hatching rate and development of zebrafish (Danio rerio). Aquaculture Research, 43: 777-788. DOI:10.1111/j.1365-2109.2011.02889.x ##Gul, S., Belge-Kurutas, E., Yıldız, E., Sahan, A. and Doran, F., 2004. Pollution correlated modifications of liver antioxidant systems and histopathology of fish (Cyprinidae) living in Seyhan Dam Lake, Turkey. Environment International, 30:605-609. DOI:10.1016/s0160-4120(03)00059-x ##Habig, W.H. and Jakoby, W.B., 1981. Assays for differentiation of glutathione S-transferases. Methods in Enzymology, 77:398-405. DOI:10.1016/s0076-6879(81)77053-8 ##Hardy, R.W., 2002. Rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. In:Webster, C.D., Lim, C. (Eds.),Nutrient Requirements and Feeding of Aquaculture Fish. Centre for Agriculture and Bioscience International (CABI) Publishers, New York, pp. 184-202. DOI:10.1079/9780851995199.0184 ##Hidalgo, M.C., Exposito, A., Palma, J.M. and Higuera, M., 2002. Oxidative stress generated by dietary Zn-deficiency: studies in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). The International Journal of Biochemistry & Cell Biology, 34:183-193. DOI:10.1016/s1357-2725(01) 00105-4 ##Khanna, S., Atalay, M., Leaksonen, D.E., Gul, M., Roy, S. and Sen, C.K., 1999. α -Lipoic acid supplementation: tissue glutathione homeostasis at rest and after exercise. Journal of Applied Physiology, 86:1191-1196. DOI:10.1152/jappl.1999.86.4.1191 ##Kim, M.S., Park, J.Y., Namkoong, C., Jang, P.G., Ryu, J.W., Song, H.S., Yun, J.Y., Namgoong, I.S., Ha, J., Park, I.S., Lee, I.K., Viollet, B., Youn, J.H., Lee, H.K. and Lee, K.U., 2004. Anti-obesity effects of alpha-lipoic acid mediated by suppression of hypothalamic AMP-activated protein kinase. Nature Medicine,10:727-733. DOI:10.1038/nm1061 ##Klein, R.D., Borgesa, V.D., Rosaa, C.E., Colaresa, E.P., Robaldoc, R.B., Martinez, P.E. and Bianchinia, A., 2017. Effects of increasing temperature on antioxidant defense system and oxidative stress parameters in the Antarctic fish Notothenia coriiceps and Notothenia rossii. Journal of Thermal Biology, 68(Pt A),110-118. DOI:10.1016/j.jtherbio.2017.02.016##Kütter, M.T., Monserrat, J.M., Primel, E.G., Caldas, S.S. and Tesser, M.B., 2012. Effects of dietary a -lipoic acid on growth, body composition and antioxidant status in the Plata pompano Trachinotus marginatus (Pisces, Carangidae). Aquaculture, 368:29-35. DOI:10.1016/j.aquaculture.2012.09.010 ##Kütter, M.T., Monserrat, J.M., Santos, R.A. and Tesser, M.B., 2013. Dose-response effects of the antioxidant α-lipoic acid in the liver and brain of pompano Trachinotus marginatus (Pisces, Carangidae). Journal of Applied Ichthyology, 29:1123-1128. DOI:10.1111/jai.12137 ##Lobato, R.O., Manske, S.N., Wasielesky, W., Fattorini, D., Regoli, F., Monserrat, J.M. and Ventura-Lima, J., 2013. The role of lipoic acid in the protection against of metallic pollutant effects in the shrimp Litopenaeus vannamei (Crustacea, Decapoda). Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology, 165:491-497. DOI:10.1016/j.cbpa.2013.03.015 ##Longaray-garcia, M., Flores, J.A., Külkamp-Guerreiro, I.C., Guterres, S.S., Pereira, T.C.B., Bogo, M.R. and Monserrat, J.M., 2013. Modulation of antioxidant and detoxifying capacity in fish Cyprinus carpio (Cyprinidae) after treatment with nanocapsules containing lipoic acid. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology, 165:468-475. DOI:10.1016/j.cbpa.2013.02.004 ##Mani, R., Meena, B., Valivittan, K. and Suresh, A., 2014. Glutathione-S-transferase and catalase activity in different tissues of marine catfish Arius arius on exposure to cadmium. International Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences, 6:326-332.##Monserrat, J.M., Ventura, J.L., Ribas Ferreira, J.L., Acosta, D., Garcia, M.L., Ramos, P.B., Moraes, T.B., dos Santos, L.C. and Amado, L.L., 2008. Modulation of antioxidant and detoxification responses mediated by lipoic acid in the fish Corydoras paleatus (Callychthyidae). Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology, 148:287-292. DOI:10.1016/j.cbpc.2008.06.011 ##Pharm, R.T. Gardner, J.L. and Gallagher, E.P., 2002. Conjugation of 4-hydroxynonenal by largemouth bass (Micropterus salmoides) glutathione S-transferases. Marine Environmental Research, 54:291-295. DOI:10.1016/s0141-1136(02)00179-4 ##Rao, V.J., 2006. Sublethal effects of an organophosphorus insecticide (RPR-II) on biochemical parameters of tilapia, Oreochromis mossambicus. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology, 143(4):492-498. DOI:10.1016/j.cbpc.2006.05.001 ##Roztamzad, H., Shabanpour, B., Kashaninejad, M. and Shabani, A., 2010. Inhibitory impact of natural antioxidant (ascorbic acid and citric acid) and vacuum packaging on lipid oxidation in frozen Persian sturgeon fillets, Iranian Journal of Fisheries Sciences, 9:279-292.##Sahin, M., Sagfldic, G., Elmas, O., Akpınar D., Derin, N., Aslan, M., Agar, A., Alicigzel, Y. and Yargicogfllu, P., 2006. Effect of chronic restraint stress and alpha-lipoic acid on lipid peroxidation and antioxidant enzyme activities in rat peripheral organs. Pharmacological Research, 54:247-252. DOI:10.1016/j.phrs.2006.05.007 ##Sanchez, W., Palluel, O., Meunier, L., Coquery, M., Porcher, J.M. and Ait-Aissa, S., 2005. Copper-induced oxidative stress in three-spined stickleback: relationship with hepatic metal levels. Environmental Toxicology and Pharmacology, 19:177-183. DOI:10.1016/j.etap.2004.07.003 ##Santos, R.A., Caldas, S., Primel, E.G., Tesser, M.B. and Monserrat, J.M., 2016. Effects of lipoic acid on growth and biochemical responses of common carp fed with carbohydrate diets. Fish Physiology and Biochemistry , 42:1699-1707. DOI:10.1007/s10695-016-0250-2. https://doi.org/10.1007/s10695-016-0250-2 ##Shen, Q.W., Jones, C.S., Kalchayanand, N., Zhu,M.J. and Du, M., 2005. Effect of dietary α-lipoic acid on growth, body composition,muscle pH, and AMP-actived protein kinase phosphorylation in mice. Journal of Animal Science, 83:2611-2617. DOI:10.2527/2005.83112611x ##Terjesen, B.F., Park, K., Tesser, M.B., Portella, M.C., Zhang, Y. and Dabrowski, K., 2004. Lipoic acid and ascorbic acid affect plasma free amino acids selectively in the teleost fish Pacu (Piaractus mesopotamicus). The Journal of Nutrition, 134:2930-2934. DOI:10.1093/jn/134.11.2930 ##Trattner, S., Pickova, J., Park, K.H., Rinchard, J. and Dabrowski, K., 2007. Effects of α-lipoic and ascorbic acid on the muscle and brain fatty acids and antioxidant profile of the South American pacu Piaractus mesopotamicus. Aquaculture, 273:158-164. DOI:10.1016/j.aquaculture.2007.09.025 ##Trenzado, C.E., Morales, A.E., Palma, J.M. and De la higuera, M., 2009. Blood antioxidant defenses and hematological adjustments in crowded/uncrowded rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fed on diets with different levels of antioxidant vitamins and HUFA. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology, 149:440-447. DOI:10.1016/j.cbpc.2008.10.105 ##Wahli, T., Verlhac, V., Girling, P., Gabaudan, J. and Aebischer, C., 2003. Influence of dietary vitamin C on the wound healing process in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, 225: 371-386. DOI:10.1016/s0044-8486(03)00302-8 ##Wang, Y., Xiaojie, L., Yuming, G., Lawrence, C. and Xinfu, G., 2010. α-lipoic acid increase energy expenditure by enhancing adenosine monophosphate-actived protein kinase-peroxisome proliferators-actived receptor-γ coativator 1-α signaling in skeletal muscle of aged mice. Metabolism-Clinical and Experimental, 59: 967-976. DOI:10.1016/j.metabol.2009.10.018 ##Zhang, W., Chen, Q., Mai, K., Xu, W., Wang, X. and Liufu, Z., 2010. Effects of dietary α-lipoic acid on the growth and antioxidative responses of juvenile abalone Haliotis discus hannai Ino. Aquaculture Research, 41:781-787. DOI:10.1111/j.1365-2109.2010.02592.x ##

تاثیر محرک‌‌ ایمنی زایموزان بر رشد و مقاومت آرتمیا فرانسیسکانا (Artemia fransiscana) در برابر عفونت باکتری‌‌های Vibrio campbellii و Vibrio proteolyitcus در سیستم آزمایش گنوتوبیوتیک (Gnotobiotic) The effect of zymosan immunostimulant on artemia growth and resistance to vibrio infection in a gnotobiotic artemia test system 1 1 یکی از روش­‌های جدید پیشگیری و کنترل بیماری­های آبزیان استفاده از انواع محرک‌­های ایمنی در سیستم گنوتوبیوتیک برای درک مکانیسم­‌های درگیر در تعاملات میزبان- میکروب می­باشد. مطالعه حاضر به منظور بررسی تاثیر محرک­‌ ایمنی زایموزان بر رشد و مقاومت آرتمیا فرانسیسکانا (Artemia fransiscana) در برابر عفونت باکتری­‌های بیماری­زای Vibrio campbellii و Vibrio proteolyitcus در آبزیان در شرایط گنوتوبیوتیک صورت گرفت. ناپلی­ آرتمیا با باکتری کشته شده LVS3 حدود 109  5/10 سلول بر لوله فالکون در هر روز غذادهی شد (تیمار شاهد). زایموزان به ­صورت روزانه به مقدار 6/30 میکروگرم به هر فالکون در تیمارهای آزمایشی اضافه شد. در روز سوم پاتوژن­های V. campbellii  و V. proteolyitus  در تراکم cell/ml 106  5 اضافه گردیدند. در روز ششم زایموزان باعث افزایش معنی‌دار درصد بازماندگی روزانه آرتمیا در برابر V. campbellii (53/1±49/54) نسبت به تیمار شاهد (87/9±72/31)، درصد نسبی بازماندگی (08/0±80) نسبت به تیمار شاهد (17/0±47) و زیست­توده کل تولید شده برحسب میلی متر در فالکون (18/0±17/21) نسبت به تیمار شاهد (46/4±04/9) گردید (05/0>p). زایموزان اگرچه در برابر V. proteolyitcus باعث افزایش درصد بازماندگی روزانه، درصد نسبی بازماندگی و زیست­توده کل تولید شده نسبت به گروه شاهد شد، اما نتوانست اختلاف معنی داری ایجاد کند (05/0<p). در آرتمیاهای چالش داده شده با V. campbellii و V. proteolyitcus، طول فردی آرتمیا هرچند تحت تاثیر زایموزان قرار گرفت اما نسبت به تیمار شاهد دارای تفاوت معنی­دار نبود (P>0.05). به طور کلی، نتایج نشان داد که استفاده از زایموزان به عنوان محرک ایمنی می­تواند باعث افزایش مقاومت آرتمیا نسبت به عفونت ویبریو در محیط گنوتوبیوتیک شود. 2 One of the most useful methods of increasing resistance through impact on the aquatic immune system is trying  to boost the immune system through various ways such as vaccination and the use of immune enhancers such as immune stimulants, probiotics and glucan compounds etc. Modern fish farming systems are common. The use of immunostimulants in gnotobiotic system is one of the new methods to prevent and control the aquatic diseases by realizing the mechanisms involved in host-microbe interactions. This study was designed to investigate the effect of zymosan immunostimulant on Artemia fransiscana growth and resistance to Vibrio campbellii and Vibrio proteolyticus infections in a gnotobiotic system. Artemia nauplii were fed with killed LVS3, about 10.5×109 cells per falcon tube per day (control). Zymosan was added in an amount of 30.6 mcg per falcon tube daily in experimental treatments. On the third day, V. campbellii and V. proteolyitus pathogens were added at 5 ×10 6 cell /ml. On the sixth day of the experiment, zymosan increased the percentage of daily survival against V. campbellii (54.49±1.53) compared with control (31.72±9.87), relative percentage of survival (80±0.08) compared with control (47±0.17) and total biomass production (21.17±0.18) compared with control (9.04±4.46) (p<0.05). Although zymosan increased the percentage of daily survival, the relative percentage of survival and total biomass production against V. proteolyticus compared with the control, but the differences were not significant (p>0.05). Zymosan also had positive impact on the individual length of challenged artemia with V. campbellii and V. proteolyticus, however that was not significant compared with the control (p>0.05). In conclusion, the results revealed that the zymosan as an immunostimulant could increase the artemia resistance against vibrio infections in gnotobiotic environment. 105 116 2019/04/152019/05/242019/06/22019/08/312019/04/102013/02/252019/03/252019/06/252019/09/12019/05/18 1398/2/28 2020/04/192020/04/192020/04/192020/01/12020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/19 1399/1/31 مه لقا کرمی شیرازی Mahlegha Karami Shirazi دانشگاه هرمزگان ایران mahshirazi@yahoo.com ایمان سوری نژاد Iman Sourinejad دانشگاه هرمزگان ایران i_sourinezhad@yahoo.com سیاوش سلطانیان Siavash Soltanian دانشگاه شیراز ایران siyavashsoltanian@yahoo.com Artemia Gnotobiotic system Vibrio Zymosan Survival آرتمیا سیستم گنوتوبیوتیک Vibrio زایموزان بازماندگی ##ایمان‌پور، م.ر.، سلاقی، ز.، روحی، ز.، بیک‌زاده، آ. و داودی‌پور، ع.، 1394. اثر مکمل گیاهی سنگروویت بر رشد، پارامترهای بیوشیمیایی خون، بازماندگی و مقاومت در برابر تنش شوری بچه‌ماهیان کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله علمی شیلات ایران، 24 (3): 22-13. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110190 ##شیخ‌اسدی، م.، ذریه زهرا، س.ج.، رفیعی پور، ا.، یزدان پناه، ل. و سیرپور، ق. 1397. تأثیر افزودن سطوح مختلف مکمل پودر زیره سبز (Cuminum cyminum) بر شاخص های رشد، بازماندگی و ترکیبات شیمیایی لاشه میگوی سفید غربی (Litopenaeus vannamei). مجله علمی شیلات ایران، 27 (3): 121-130. DOI: 10.22092/ISFJ.2018.117059 ##Ai, Q., Mai, K., Zhang, L., Tan, B., Zhang, W., Xu, W. and Li, H., 2007. Effects of dietary β-1, 3 glucan on innate immune response of large yellow croaker, Pseudosciaena crocea. Fish and Shellfish Immunology, 22(4): 394-402. DOI: 10.1016/j.fsi.2006.06.011.## ##Bachere, E., 2003. Anti-infectious immune effectors in marine invertebrates: potential tools for disease control in larviculture. Aquaculture, 227(1-4): 427-438. DOI: 10.1016/S0044-8486(03)00521-0.##Barman, D., Nen, P., Mandal, S.C. and Kumar, V., 2013. Immunostimulants for aquaculture health management. Journal of Marine Science: Research and Development, 3: 134. DOI: 10.4172/2155-9910.1000134.##Cardenas, W. and Dankert, J.R., 1997. Phenoloxidase specific activity in the red swamp crayfish Procambarus clarkii. Fish and Shellfish Immunology, 7(5): 283-295. DOI: 10.1006/fsim.1997.0083.##Chang, C.F., Su, M.S., Chen, H.Y. and Liao, I.C., 2003. Dietary b-1,3-glucan effectively improves immunity and survival of Penaeus monodon challenged with white spot syndrome virus. Fish and Shellfish Immunology, 15(4): 297-310.##Chang, C.F., Su, M.S., Chen, H.Y., Lo, C.F., Kou, G.H. and Liao, I.C., 1999. Effect of dietary β-1, 3-glucan on resistance to white spot syndrome virus (WSSV) in postlarval and juvenile Penaeus monodon. Diseases of Aquatic Organisms, 36(3): 163-168. DOI: 10.3354/dao036163.##Dalmo, R.A. and Bøgwald, J., 2008. ß-glucans as conductors of immune symphonies. Fish and shellfish Immunology, 25(4): 384-396. DOI: 10.1016/j.fsi.2008.04.008.##Dugenci, S.K., Arda, N. and Candan, A., 2003. Some medicinal plants as immunostimulant for fish. Journal of Ethnopharmacology, 88(1): 99-106. DOI: 10.1016/S0378-8741(03)00182-X.##Freimund, S., Sauter, M., Kappeli, O. and Duller, H., 2003. A new non-degrading isolation process for 1, 3-b-glucan of high purity from bakers yeast Saccharomyces cerevisiae. Carbohydrate Polymers, 54(2): 159-171. DOI: 10.1016/S0144-8617(03)00162-0.##Here, J., Gordon, S. and Brown, G.D., 2004. Dectin-1 and its role in the recognition of β-glucans by macrophages. Molecular Immunology, 40(12): 869-876.##Itami, T., Asano, M., Tokushige, K., Kubono, K., Nakagawa, A., Takeno, N., Nishimura, H., Maeda, M., Kondo, M. and Takahashi, Y., 1998. Enhancement of disease resistance of kuruma shrimp, Penaeus japonicus, after oral administration of peptidoglycan derived from Bifidobacterium thermophilum. Aquaculture, 164(1-4): 277-288. DOI: 10.1016/S0044-8486(98)00193-8.##Keith, I.R., Paterson, W.D., Airdrie, D. and Boston, L.D., 1992. Defense mechanisms of the American lobster (Homarus americanus): vaccination provided protection against gaffkemia infections in laboratory and field trials. Fish and Shellfish Immunology, 2(2): 109-119. DOI: 10.1016/S1050-4648(05)80040-3.##Marques, A., Dhont, J., Sorgeloos, P. and Bossier, P., 2006. Immunostimulatory nature of b-glucans and bakers yeast in gnotobiotic Artemia challenge tests. Fish and Shellfish Immunology, 20(5): 682-692. DOI: 10.1016/j.fsi.2005.08.008.##Soltanian, S., François, J.M., Dhont, J., Arnouts, S., Sorgeloos, P. And Bossier, P., 2007. Enhanced disease resistance in Artemia by application of commercial beta-glucans sources and chitin in a gnotobiotic Artemia challenge test. Fish and Shellfish Immunology, 23(6): 1304-1314.##Sorgeloos, P., Dhert, P. and Candreva, P., 2001. Use of the brine shrimp, Artemia spp., in marine fish larviculture. Aquaculture, 200(1-2): 147-159. DOI: 10.1016/S0044-8486(01)00698-6.##Sung, H.H., Kou, G.H. and Song, Y.L., 1994. Vibriosis resistance induced by glucan treatment in tiger shrimp (Penaeus monodon). Fish Pathology, 29(1): 11-17. DOI: 10.3147/jsfp.29.11.##Sung, H.H., Yang, Y.L. and Song, Y.L., 1996. Enhancement of microbicidal activity in the tiger shrimp Penaeus monodon via immunostimulation. Journal of Crustacean Biology, 16(2): 278-284. DOI: 10.1163/193724096X00063.##Tizard, I.R., Carpenter, R.H., McAnalley, B.H. and Kemp, M.C., 1989. The biological activities of mannans and related complex carbohydrates. Molecular Biotherapy, 1(6): 290-296.##Toi, H.T., Boeckx, P., Sorgeloos, P., Bossier, P. and Van Stappen, G. 2014. Co-feeding of microalgae Strains. Applied and Environmental Microbiology, 65: 2527-2533.##Triantaphyllidis, G., Abatzopoulos, T. and Sorgeloos, P., 1998. Review of the biogeography of the genus Artemia (Crustacea, Anostraca). Journal of Biogeography, 25(2): 213-226. DOI: 10.1046/j.1365-2699.1998.252190.x.##Vici, V., Singh, I.B. and Bhat, S.G., 2000. Application of bacterins and yeast Acremonium dyosporiito protect the larvae of Macrobrachium rosenbergii from vibriosis. Fish and Shellfish Immunology, 10(6): 559-563. DOI: 10.1006/fsim.2000.0278. ##

اثر اسیدی فایر سدیم دی فرمات (NDF) و سیتریک اسید بر پارامترهای رشد، خونی و ایمنی بچه ماهی قزل آلای رنگین (Oncorhynchus mykiss) Effects of sodium diformate and citric acide on growth performance, immune and hematological parameters of the juvenile Oncorhynchus mykiss 1 1  این مطالعه با هدف بررسی اثر سطوح مختلف اسیدی فایر سدیم دی فرمات (NDF) و سیتریک اسید بر پارامتر های رشد، تغذیه، ایمنی و خونی((RBC,MCV, HCT, MCHC,HB,WBC بچه ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) انجام شده است. تعداد 630 بچه ماهی قزل آلای رنگین کمان با میانگین وزن 72/0± 55/16 گرم تهیه و به طور تصادفی در قالب هفت گروه با سه تکرار (هر تکرار 30 عدد ماهی) تقسیم به مدت 60 روز با جیره های آزمایشی تغذیه شدند. گروههای ۱، ۲ و ۳ به ترتیب حاوی 2/0، 4/0 و 6/0 درصد اسیدی فایر سدیم دی فرمات(NDF) و گروههای ۴، ۵ و 6 حاوی 2/0، 4/0 و 6/0 درصد ترکیبی اسیدی فایرهای سدیم دی فرمات(NDF) (به میزان ۱/0، ۲/0 و ۳/0 درصد) و اسید سیتریک (به میزان ۱/0، ۲/0 و ۳/0 درصد) به نسبت برابر در جیره غذایی بودند. جیره گروه کنترل بدون اسیدی فایر بود. نتایج نشان داد اکثریت پارامترهای رشد (% BWI، CF، SGR، FCR، FER، PER) و خونی در گروه ها تغذیه شده با اسیدی فایر نسبت به گروه شاهد اختلاف معنی‌داری داشتند (P<0.05). کمترین ضریب تبدیل غذایی(FCR) با میزان ۲/۰±۱ در گروه 4 (2/0درصد ترکیبی سدیم دی فرمات(NDF) و اسید سیتریک) و بیشترین آن در گروه شاهد ۱۷/۰±۳۹/۱ بود (P<0.05). بیشترین میزان پارامترهای خونی ((RBC, MCHC, HCT, ,HB, در گروه 5 بدون اختلاف معنی‌دار با گروه ۴ (P>0.05) و اختلاف معنی‌دار با گروه شاهد بود (P<0.05). تعداد گلبولهای سفید تحت تاثیر اسیدی فایرها قرار نگرفتند و اختلاف معنی‌داری با گروه شاهد نداشتند (P>0.05). پارامترهای ایمنی نشان داد پارامترهای پروتئین کل، IgM سرم، قدرت باکتری کشی سرم در گروه ۴ با تاثیر مثبت استفاده اسیدی فایر در خوراک نسبت به گروه شاهد قرار گرفته‌اند (P<0.05). افزودن ترکیبی اسیدی فایر سدیم دی فرمات (NDF) و سیتریک اسید به میزان ۲/0 درصد (گروه ۴) به جیره غذایی بچه ماهیان قزل آلای رنگین کمان سبب بهبود پارامترهای رشد و ایمنی می گردد و تاثیر مثبتی بر کاهش ضریب تبدیل غذایی(FCR) دارد. 2 Recently use of Acidifier (group of organic acids) increased in aquaculture. The purpose of this study was to evaluate the effects of acidifier (sodium diformate and citric acide) on growth performance, nutrition indices, immune and hematological parameters of the juvenile Oncorhynchus mykiss. A total of 630 juvenile Oncorhynchus mykiss (16.55 ± 0.72) randomly divided into seven experimental treatments (Three replicates each). All groups fed with experimental diet for 60 days. Bioassay conducted in first day and after sixty days and then growth parameters were investigated. The experimental diets were contain 0.2, 0.4 and 0.6 % sodium diformate(NDF) and 0.2, 0.4 and 0.6 %, combination of NDF and citric acid with equal ratio. Diet control was without acidifier. Results showed that almost all growth and hematological parameters were increased in fed groups with 0.2 % supplemented food with NDF and citric acid compare to the control group. The best FCR showed in the groups fed with 0.2 % (P<0.05). Although haematological parameters of fish in groups fed by 0.2, 0.4 and 0.6 %, NDF and citric acid changed significantly after 60 days of feeding with experimental, no changed were observed in WBC value among the groups (P>0.05). The results show that the immunological parameters including, total serum protein, immunoglobulin and bactericidal activity serum were affected significantly at Acidifier (p<0.05) while Lysozyme activity serum and albumin was not affected (P>0.05).  The results of this study indicated that 0.2 %, NDF and citric acid in the diet could be a useful food supplement and can be used to improve the growth parameters and immunity system in juvenile Oncorhynchus mykiss. 117 129 2019/04/152019/05/242019/06/22019/08/312019/04/102013/02/252019/03/252019/06/252019/09/12019/05/182019/02/10 1397/11/21 2020/04/192020/04/192020/04/192020/01/12020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/19 1399/1/31 محمد جواد محمدی Mohammad Javad Mohammadi1 دانشگاه علوم دریایی خرمشهر ایران mohammadimjm@gmail.com ابراهیم رجب زاده قطرمی ebrahim rajabzadeh ghatrami دانشگاه علوم دریایی خرمشهر ایران rajabzadeh48@gmail.com مهدی سلطانی دانشگاه تهران ایران msoltani@ut.ac.ir علیرضا قائدی مرکز تحقیقات ژنتیک و اصلاح نژاد ماهیان سردآبی شهید مطهری ایران aliangler@gmail.com مجتبی علیشاهی دانشگاهشهید چمران اهواز ایران alishahimoj@gmail.com Acidifier Oncorhynchus mykiss Growth performance Immune parameters Hematological parameters اسیدی فایر قزل آلای رنگین کمان پارامترهای رشد پارامترهای ایمنی پارامترهای خونی ##اصغرزاده، ص. 1394. تعیین عملکرد رشد, برخی از شاخص های خونی و واکنش های ایمنی اختصاصی و غیر اختصاصی بچه ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) تغذیه شده با اسیدی فایر بایوترونیک. پایان نامه دوره کارشناسی ارشد رشته مدیریت کشاورزی، دانشگاه آزاد اسلامی- واحد رشت، 92 صفحه. ##جافرنوده، ع. توکمه چی، ا. نجدگرامی، ا. ح. حاجی مرادلو، ع. ح. نوری، ف. 1394. بررسی اثرات سینرژیستی اسید آلی پتاسیم سوربات و پروبیوتیک لاکتوباسیلوس کازئی (Lactobacillus casei) بر شاخص های رشد و خونی، ترکیب لاشه و فلور میکروبی روده در بچه ماهی قزل آلای رنگین کمان . نشریه پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. دوره چهارم، شماره اول، صفحه 59- 74. URL: http://jair.gonbad.ac.ir/article-۱-۱۲۴-fa.html##حدیدی، س. طاعتی، ر. 1395. تأثیر سطوح مختلف مکمل اسیدی فایر بایوترونیک ™ بر کارایی تغذیه و برخی از پارامترهای خونی و ایمنی ماهی اسکار تایگر (Astronotus ocellatus). مجله دامپزشکی ایران، دوره دوازدهم، شماره 3. صفحه 32- 41. https://dx.doi.org/10.22055/ivj.2016.34438##مهرابی، ی. 1378. مطالعه مقدماتی اثر بیهوشی پـودر گل میخک (Syzygium aromaticum) بر روی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجلـــه پـــژوهش و سازندگی، 42: 160-162. doi: 10.22092/vj.1998.112953##Abdel–Fattah, S.A., EI-Sanhoury, M.H., EI-Mednay, N.M. and Abdul-Azeem F., 2008. Thyroid activity of broiler chicks fed supplemental organic acids. International. Poultry Science Journal, 7: 215–222. DOI: 10.3923/ijps.2008.215.222##Bagenal, T., 1978. Methods for assessment of fish production in fresh waters. Blackwell Science Inc. 384P.##Barnhart, R.A., 1969. Effects of certain variables on hematological characteristics of rainbow trout (Salmo garidneri). Transactions of the American Fisheries Society, 98: 411-418. DOI:10.1577/1548-8659(1969)98[411:EOCVOH]2.0.CO;2##Benfey, T.J., Biron, M., 2000. Acute stress in triploid rainbow trout (Oncorhynchus mykiss).and brook trout (Salvelinus fontinalis). Aquaculture, 184: 167-176. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(99)00314-2##Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology. South Asian Publisher, New Delhi India, 142P. ##Brenes, A.A., Viveros, I., Arija, C., Centeno, M. and Bravo, C., 2003. The effect of citric acid and microbial phytase on mineral utilization in broiler chicks. Animal Feed Science and Technology, 110: 201−219. https://doi.org/10.1016/S0377-8401(03)00207-4## ##Canibe, N., Engberg, R.M. and Jensen B.B., 2002. An overview of the effect of organic acids on gut flora and gut health. Danish Institute of Agricultural Sciences, Research Centre Foulum, Denmark.##Castillo, S., Rosales, M., Pohlenz, C. and Gatlin, D.M., 2014. Effects of organic acids on growth performance and digestive enzyme activities of juvenile red drum Sciaenops ocellatus. Aquaculture, 433, pp. 6 -12. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2014.05.038##Celik, K., Ersoy, I.E., Uzatici, A. and Erturk, M., 2003. The using of organic acids in California turkey chicks and its effects on performance before pasturing. International Journal of Poultry Science, 2(6): 446 - 448. DOI: 10.3923/ijps.2003.446.448##Ceylan, N. and Ciftci, I., 2002. The effects of some alternative feed additives for antibiotic growth promoters on the performance and gut microflora of broiler chicks. Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences, 27:727-733. http://journals.tubitak.gov.tr/veterinary/issues/vet-03-27-3/vet-27-3-33-0205-38.pdf##Chik-Boon, K., Nicholas, R., Abdullah, S.Z. and Wing-Keong, N., 2016. Effects of a dietary organic acids blend and oxytetracycline on the growth, nutrient utilization and total cultivable gut microbiota of the red hybrid tilapia, Oreochromis sp., and resistance to Streptococcus agalactiae. Aquaculture Research, 47, pp. 357–369. https://doi.org/10.1111/are.12492##Christiansen, R. and Luckstad, C., 2008. Effects of different dosages of potassium diformate in fishmeal on the performance of Atlantic salmon (Salmo salar). Was Conference, Busan, Korea.##Deng, D.F., Hemreb, G.I., Storebakkenc, T., Shiaud, S.Y. and Hung, S.S., 2005. ## Utilization of diets with hydrolyzed potato starch, or glucose by juvenile white sturgeon (Acipenser transmontanus), as affected by Maillard reaction during feed processing. Aquaculture, 248: 103–109.## DOI:10.1016/j.aquaculture.2005.04.010##Dibner,J.J. and Buttin, P., 2002. Use of organic acids as a model to study the impact of gut microflora on nutrition and metabolism. Journal of Applied Poultry Research, 11: 453-463. https://doi.org/10.1093/japr/11.4.453##Durgawale, P., Kanase, S., Shukla, P.S. and Sontakke, S., 2005. Asensitive and economical modified method for estimation of cerebrospinal fluid proteins. Indian Journal of Clinical Biochemistry, 20, 174–177. DOI:10.1007/BF02867422##Ebrahimnezhad, Y., Maheri-Sis, N., Aghajanzadeh-Golshani, A., Ghiasi Galekandi, J., Sarikhan, M. and darvishi, A., 2012. Effect of combination of citric acid and microbial phytase on the serum concentreation and digestibility of some minerals in broiler chickns. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 10: 1819-1878. DOI:10.3923/ajas.2012.189.195##Ellis, A.E., 1990. Lysozyme assays. In: Stolen, J.S.; Fletcher, T.C.; Anderson, D.P.; Roberson, B.S.; van Muiswinkel, W.B. (eds.), Techniques in fish immunology. New Jersey. SOS Publications, pp. 101-113.##Feldman, B.F., Zinkl, J.G. and Jian N.C., 2000. Schalm’s veterinary hematology. Lippincott Williams and Wilkins publication, Canada: 1120-1125. ##Fox, H.E., White, S.A., Koa, M.F. and Fernald, R.D., 1997. Stress and dominance in a social fish. Journal of Neuroscience, 16(17): 6463–6469. Doi: 10.1523/JNEUROSCI.17-16-06463.1997##Goldenfarb, P.B., Bowyer, F.P., Hall, T. and Brosious E., 1971. Reproducibility in the hematology laboratory: the microhematocrit determination. American Journal of Clinical Pathology, 56: 35–39. https://doi.org/10.1093/ajcp/56.1.35##Hu, F., Hepburn, H.R., Li, Y., Chen, M., Radloff, S.E. and Daya, S., 2005. Effects of ethanol and water extracts of propolis (bee glue) on acute inflammatory animal models. Journal of Ethnopharmacology, 100: 276-283. DOI:10.1016/j.jep.2005.02.044##Huang, S.S., Fu, C.H.L., Higgs, D.A., Balfry, S.K., Schulte, P.M. and Brauner, C.J., 2008. Effects of dietary canola oil level on growth performance, fatty acid composition and ion regulatory development of spring Chinook salmon par, Oncorhynchus tshawytscha. Aquaculture, 274: 109-117. DOI:10.1016/j.aquaculture.2007.11.011##Huyghebaert, G., 2003. Replacement of the antibiotics in poultry. Eastern Nutrition Conference.##Kajita, Y., Sakai, M., Atsuta, S. and Kobayash, M., 1990. The immunomodulatory effects of levamisole on rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Fish Pathology, 25:93-98. Doi: https://doi.org/10.3147/jsfp.25.93##Keiffer, J.D., 2000. Limits to exhaustive exercise in fish. Comparative Biochemistry & Physiology, 126: 161-179.##Kesarcodi-Watson, A., Kaspar, H., Lategan, M.J., Gibson, L., 2008. Probiotics in aquaculture: The the need, principles and mechanisms of action and screening processes. Aquaculture, 274: 1-14. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2007.11.019##Khaled, M., 2015. Effect of organic acid salt supplementation on growth performance and feed utilization in practical diets of hybrid tilapia (♀ o. niloticus x ♂ o. aureus) fingerlings. Egyptian Journal of Animal Production, 52(1):81- 88. https://www.esap1961.org/reserachgenerator/uploads/1453317335.pdf##Korkea-aho, T.L., Heikkinen, J., Thompson, K.D., Wright, A. and Austin, B., 2011. Pseudomonas sp. M174 inhibits the fish pathogen Flavobacterium psychrophilum. Applied Microbiology, 111: 266–277. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2011.05044.x##Kotzamanis, Y.P., Gisbert, E., Gatesoupe, F.J., Zambonino Infante, J. and Cahu C., 2007. Effects of different dietary levels of fish protein hydrolysates on growth, digestive enzymes, gut microbiota, and resistance to Vibrio anguillarum in European sea bass (Dicentrarchus labrax) larvae. Compa Bioch and Physi-Part A: Molecular and Integrative Physiology,147: 205-14. DOI:10.1016/j.cbpa.2006.12.037##La Ragione, R.M. and Woodward M.J., 2003. Competitive exclusion by Bacillus subtilis spores of Salmonella enterica serotype Enteritidis and Clostridium perfringens in young chickens. Veterinary Microbiology, 94: 245-256. DOI:10.1016/s0378-1135(03)00077-4##Liebert, F., Mohamed, K. and Lückstädt, C., 2010. Effects of diformates on growth and feed utilization of all male Nile Tilapia fingerlings (Oreochromis niloticus) reared in tank culture. XIV International Symposium on Fish Nutrition and Feeding, Qingdao, China, Book of Abstracts.190P.##Lim, C., Luckstadt, C. and Klesius, P.H., 2010. Review: use of organic acids, salts in fish diets. Global Aquacult Advocate, 5: 45–6. http://www.wfish.de/fulltext/GAA-2010.pdf##Lowry, O.H., Rosebrough, N.J., Farrand, A.L. and Randall R.J., 1951. Protein measurement with the folin phenol reagent. Journal of Biological Chemistry, 193, 265–275. http://www.jbc.org/content/193/1/265.full.pdf##Luckstadt, C., 2007. Effect of organic acid containing additives in worldwide aquaculture-Sustainable production the non-antibiotic way, pp. 71-77. In: Acidifiers in Animal Nutrition-A Guide for Feed Preservation and Acidification to Promote Animal Performance. Nottingham University Press, Nottingham.##Luckstadt, C., 2008a. The use of acidifiers in fish nutrition. CAB Reviews: Perspectives in Agriculture, Veterinary Science, Nutrition and Natural Resources, 3: 1–8. DOI:10.1079/PAVSNNR20083044##Luckstadt, C., 2008b. Effect of dietary potassium diformate on the growth and digestibility of Atlantic salmon Salmo salar. Proceedings of the thirteenth International Symposium on Fish Nutrition and Feeding, June 1–5, Florianopolis, Brazil. pp. 179.##Luckstadt, C., Greiffenstein, N. and Dari, R., 2014. Effect of dietary sodium diformate in broilers on the productivity index against a positive control. Conference on International Research on Food Security, Natural Resource Management and Rural Development organized by the Czech University of Life Sciences Prague.##Luckstadt, C., Senkoylu, N., Akyurek, H. and Agma, A., 2004. Acidifier- a modern alternative for anti- biotic free feeding in livestock production, with special focus on broiler production. Veterinarija ir Zootechnika, 27, 91-93. https://vetzoo.lsmuni.lt/data/vols/2004/27/pdf/luckstadt.pdf##Luckstadt, C. and Theobald, P., 2009. Effect of a formic acid-sodium formate premixture on Salmonella, Campylobacter and further gut microbiota in broilers. Proceedings and Abstracts of the 17th European Symposium on Poultry Nutrition: 246.##Luskova, V., 1998. Factors affecting haematological indices in free-living fish populations. Acta Veterinary Brno, 67: 249-250. https://doi.org/10.2754/avb199867040249##Mazurkiewicz, J., Przybyl, A. and Golski, J., 2008. Evaluation selected feeds differ ing in dietary lipids levels in feeding juveniles of Wells catfish (Silurus glanis). ALEP, 38, 91 - 96. ##Morken, T., Kraugerud, O.F., Barrows, F.T., Sorensen, M., Storebakke, T. and Overland, M., 2011. Sodium diformate and extrusion temperature affect nutrient digestibility and physical quality of diets with fish meal and barley protein concentrate for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, 317, 138–145. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2011.04.020##Omosowone, O., Adekunle Dada, A. and Eunice, A., 2014. Effects of dietary supplementation of fumaric acid on growth performance of african catfish clarias gariepinus and aeromonas sobria challenge. Croatian Journal of Fisheries, 2015, 73, 13 – 19. http://dx.doi.org/10.14798/73.1.782##Omosowone, O.O., Dada, A.A. and Adeparusi, E.O., 2018. Comparison of dietary butyric acid supplementation effect on growth performance and body composition of Clarias gariepinus and Oreochromis niloticus fingerlings. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 7(2) 403-412. DOI:10.22092/IJFS.2018.115901.##Roed, KH., Fjalestad, K.T. and Stromsheim, A., 1993. Genetic variation in lysozyme activity and spontaneous haemolytic activity in Atlantic salmon (Salmo salar). Aquaculture; 114, 19–31. https://doi.org/10.1016/0044-8486(93)90247-V##Romano, N., Koh, C.B. and Ng, W.K., 2015. Dietary microencapsulated organic acids blend enhances growth, phosphorus utilization, immune response, hepatopancrea tic integrity and resistance against Vibrio harveyi in white shrimp ( Litopenaeus vannamei ). Aquaculture , 435,228-236.‌‌ https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2014.09.037##Sudagar, M., Hosseinpoor, Z. and Hosseini, A., 2010. The use of citric acid as attractant in diet of grand sturgeon (Huso huso)fry and its effects on growing factors and survival rate. AACL Bioflux.3:311-316. ##Tacon, A.G.J. and Akiyama, D.M., 1997. Feed ingredients. In: D’Abramo, L.R., Conklin, D.E., Akiyama, D.M. (Eds.), Crustacean Nutrition. Advances in World Aquaculture, vol. 6, World Aquaculture Society, Baton Rouge, LA, USA: 411-472.##Wing-Keong, N., Chik –Boon, C., Kumar, S. and Siti Zahrah, A., 2009. Effects of dietary organic acids on growth, nutrient digestibility and gut microflora of red hybrid tilapia (Oreochromis sp.) and subsequent survival During a challenge test with (Streptococcus agalactiae). Aquaculture Research, 40, 1490-1500. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2009.02249.x##Wing-Keong, N. and Chik-Boon, K., 2016. The utilization and mode of action of organic acids in the feeds of cultured aquatic animals Reviews in Aquaculture, pp. 1–27. https://doi.org/10.1111/raq.12141##Zhou, Z., Liu, Y., Wang, P., He, S., Yao, B., Gao, X. and Wang, X., 2008. The effects of dietary potassium diformate on growth performance, feed conversion and intestinal microbiota of hybrid tilapia. Book of Abstracts XIII International Symposium Fish Nutrition and Feeding, June 1-5, Brazil, 193.##Zhou, Z., Liu, Y. He, S., Shi, P., Gao, X., Yao, B. and Ringo, E., 2009. Effects of dietary potassium diformate (KDF) on growth diformate (KDF) on growth performance, feed conversion and intestinal bacterial community of hybrid tilapia (Oreochromis niloticus x O. aureus). Aquaculture, 291:89–94. Https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2009.02.043##Zhu, Y., Qiu, X., Ding, Q., Duan, M. and Wang, C., 2014. Combined effects of dietary phytase and organic acid on growth and phosphorus utilization of juvenile yellow catfish Pelteobagrus fulvidraco. Aquaculture, 430: 1–8. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2014.03.023 ##

تأثیر مکمل غذایی پودر فلفل قرمز تند (Capsicum annuum) بر شاخص‌های رشد، میزان بقاء، فراسنجه‌های خونی و برخی از پاسخ‌های ایمنی بچه ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) Effect of dietary supplementation of red chili pepper (Capsicum annuum) powder on growth parameters, survival rate, hematological indices and some immunity responses of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fry 1 1 به منظور بررسی تأثیر خوراکی پودر فلفل قرمز تند بر برخی پارامترهای رشد، بقاء فراسنجه‌های خونی و پاسخ‌های سیستم ایمنی ماهیان قزل‌آلای رنگین‌کمان، تعداد 240 عدد بچه ماهی (میانگین وزن 33/0±69/15 گرم) در 12 مخزن (هر مخزن 20 عدد ماهی) به صورت تصادفی تقسیم شد و به مدت 45 روز با مقادیر 0، 1، 3 و 5 درصد پودر فلفل قرمز تند (Capsicum annuum) در غذا (هر کدام با 3 تکرار) مورد تغذیه قرار گرفتند. نتایج شاخص‌های رشد نشان داد، بالاترین مقدار افزایش وزن بدن و نرخ رشد ویژه در تیمار 5 درصد نسبت به سایر تیمارها مشاهده شد (05/0>P). کمترین مقدار ضریب تبدیل غذایی بصورت همزمان در تیمارهای تغذیه شده با 3 و 5 درصد فلفل قرمز مشاهده شد. همچنین شاخص وضعیت بین تیمارها اختلاف معنی­داری نشان نداد (05/0<P). بیشترین میزان بقا مربوط به تیمارهای 3 و 5 درصد فلفل بود و این شاخص در تیمار 1 و شاهد اختلاف معنی‌داری نداشت (05/0<P). بیشترین تعداد گلبول‌های قرمز در تیمار 3 و 5 درصد مشاهده شد (05/0>P). بیشترین درصد هماتوکریت در تیمار 5 درصد فلفل مشاهده شد (05/0>P). بیشترین تعداد گلبول‌های سفید در تیمارهای تغذیه شده با فلفل قرمز در مقایسه با شاهد مشاهده شد. بیشترین درصد لنفوسیت‌ها در تیمار 5 درصد مشاهده شد. بیشترین میزان فعالیت لیزوزیم، C3 و IgM در تیمار 5 درصد فلفل مشاهده شد که با سایر تیمارها دارای اختلاف معنی­دار بود (05/0>P). همچنین میزان C4 در تیمارهای تغذیه شده با فلفل نسبت به تیمار شاهد افزایش معنی‌داری داشت (05/0>P). بطورکلی، مکمل‌سازی جیره غذایی تجاری ماهی قزل آلا با 5 درصد پودر فلفل قرمز تند سبب بهبود عملکرد رشد، بهره‌وری تغذیه و سیستم ایمنی بچه ماهیان قزل آلا گردید.   2 To investigate the effect of red spicy pepper on growth, blood parameters and immune responses of rainbow trout, 240 fingerlings (mean weight 15.69±0.33 g) were randomly distributed into 12 tanks (20 individuals per tank) and they were fed with 0, 1, 3, and 5% red chili pepper (Capsicum annuum) powder in their diet (each with three replicates) for 45 days. The results of growth indices showed that the highest level of body weight gain and specific growth rate were observed in 5% treatment compared to the other treatments (P<0.05). The lowest value of the feed conversion ratio was observed in treatments fed 3% and 5% red pepper. In addition, no significant differences were observed in the condition factor among the treatments (P<0.05). The highest survival rate was observed in 3% and 5% pepper treatments and this index was not significantly different between the treatment 1 and control (P<0.05). The highest number of red blood cells was observed in 3 and 5% treatments (P<0.05). The highest percentage of hematocrit was observed in 5% pepper treatment (P<0.05). The highest white blood cell was related to the fish fed with red pepper-supplemented diets compared to the control group. The highest percentage of lymphocytes was observed in 5% pepper treatment. The highest levels of lysozyme activity, C3, and IgM were observed in 5% pepper treatment, which was significantly different from other treatments (P<0.05). Also, C4 level significantly increased in the pepper-fed treatments (P<0.05). Overall, supplementing rainbow trout diet with 5% spicy red pepper powder improved growth performance, nutrition efficiency and immune system of rainbow trout fry. 131 140 2019/04/152019/05/242019/06/22019/08/312019/04/102013/02/252019/03/252019/06/252019/09/12019/05/182019/02/102019/09/10 1398/6/19 2020/04/192020/04/192020/04/192020/01/12020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/19 1399/1/31 مهدی شمسایی مهرجان Mehdi Shamsaie Mehrjan دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات ایران shamsaie@srbiau.ac.ir سید پژمان حسینی شکرابی Seyed Pezhman Hosseini Shekarabi دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات ایران hosseini@srbiau.ac.ir مهدی محجوب زردست Mehdi Mahjob Zardest دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات ایران drshamsaie@gmail.com نگار محمدی Negar Mohammadi دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات ایران negar.gigi70@yahoo.com Blood indices Growth Immunostimulant Oncorhynchus mykiss Red pepper قزل آلای رنگین کمان فلفل قرمز رشد شاخص‌های خونی محرک ایمنی ##سالنامه آماری شیالت ایران، 1396. دفتر برنامه ریزی گروه آمار و مطالعات توسعه شیلاتی، سالنامه آماری سازمان شیلات ایران، 73 ص.##کمالی، م.، جرجانی، س.، قلیچی، ا. و کمالی، م.، 1397. تأثیر فلفل قرمز و زنجبیل بر شاخص‌های رشد، تغذیه، بازماندگی و ترکیب لاشه ماهی اسکار (Astronotus ocellatus)، نشریه توسعه آبزی پروری،12(4)، 107-120.##نراقی، م.، شمسایی مهرجان، م.، رجبی اسلامی، ه. و حسینی شکرابی، س. پ.، 1397. تأثیر مکمل‌سازی رژیم غذایی با پودر جلبک نانوکلروپسیس (Nannochloropsis oculata) بر برخی شاخص‌های خونی بچه ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان. مجله علمی شیلات ایران، ۲۷ (۶)، ۱۰۵-۱۱۳. Doi: 10.22092/ISFJ.2019.118400##حسینی شکرابی، س. پ.، سیدبیژن، س. ع.، شمسایی مهرجان، م.، سیدالحسینی س. ه. و منوچهری، ح.، 1398. تأثیر سطوح مختلف ترکیب اسیدهای آلی خوراکی بر برخی شاخص‌های رشد و ترکیبات لاشه بچه ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله علمی شیلات ایران، ۲۸ (۴)، ۳۵-۴۳. ##Doi: 10.22092/ISFJ.2019.119410 ##Behnke, R.J., 1992. Native trout of western North America. Bethesda, MD: American Fisheries Society Monograph, USA, 275 P.##Clerton, P., Troutaud, D., Verlhac, V., Gabaudan, J. and Deschaux, P., 2001. Dietary vitamin E and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) phagocyte functions: effect on gut and on head kidney leucocytes. Fish and Shellfish Immunology, 11(1), 1-13. Doi: 10.1006/fsim.2000.0287##FAO., 2019. Fishery and Aquaculture Statistics yearbook. Food and Agriculture Organization of the United Nations. Rome, Italy, 80 P.##Feldman, B.F., Zinkl, J.G. and Gian, N.C., 2000. Schalm’s veterinary hematology. Lippincott Williams & Wilkins publication, Philadelphia. USA.##Galina, J., Yin, G., Ardo, L. and Jeney, Z., 2009. The use of immunostimulating herbs in fish. An overview of research. Fish Physiology and Biochemistry, 35(4), 669-676. Doi: 10.1007/s10695-009-9304-z##Gocer, M., Yanar, M., Kumlu, M. and Yanar, Y., 2006. The effects of red pepper, marigold flower, and synthetic astaxanthin on pigmentation, growth, and proximate composition of Penaeus semisulcatus. Turkish Journal of Veterinary Animal Science, 30(4), 359-365.##Huh, J.H., Kang, B.C., Nahm, S.H., Kim, S., Ha, K.S., Lee, M.H. and Kim, B.D., 2001. A candidate gene approach identified phytoene synthase as the locus for mature fruit color in red pepper (Capsicum spp.). Theoretical and Applied Genetics, 102(4), 524-530. Doi: 10.1007/s001220051677##Ingle de la Mora, G., Arredondo-Figueroa, J.L., Ponce-Palafox, J.T., Barriga-Soca, I.D.A. and Vernon-Carter, J. E., 2006. Comparison of red chili (Capsicum annuum) oleoresin and astaxanthin on rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fillet pigmentation. Aquaculture, 258(1-4), 487-495. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2006.04.005##Maniat, M., Ghotbeddin, N., Ghatrami, E. and Azaram, H., 2014. Effect of different levels of paprika on some growth factors, survival and biochemical body composition of benni fish (Mesopotamichtys sharpey). Academic Journal of Science, 3, 223-229.##Moon, H.Y.L. and Gatlin, D.M., 1994. Effects of dietary animal proteins on growth and body composition of the red drum (Sciaenops ocellatus). Aquaculture, 120(3-4), 327-340. Doi: 10.1016/0044-8486(94)90089-2##Niu, Z., Fu, J., Gao, Y. and Liu, F., 2008. Influence of paprika extract supplement on egg quality of laying hens fed wheat-based diet. International Journal of Poultry Science, 7(9), 887-889. Doi: 10.3923/ijps.2008.887.889##Parrino, V., Kesbiç, O.S., Acar, Ü. and Fazio, F., 2019. Hot pepper (Capsicum sp.) oil and its effects on growth performance and blood parameters in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Natural Product Research, 19, 1-5. Doi: 10.1080/14786419.2018.1550769##Piedecausa, M.A., Mazón, M.J., García, B.G. and Hernández, M.D., 2007. Effects of total replacement of fish oil by vegetable oils in the diets of sharpsnout seabream (Diplodus puntazzo). Aquaculture, 263(1-4), 211-219. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2006.09.039##Rahman, M.M., Khosravi, S., Chang, K.H. and Lee, S.M., 2016. Effects of dietary inclusion of astaxanthin on growth, muscle pigmentation and antioxidant capacity of juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Preventive Nutrition and Food Science, 21(3), 281-293.##Rana, K.J., Siriwardena, S. and Hasan, M.R., 2009. Impact of rising feed ingredient prices on aquafeeds and aquaculture production (No. 541). Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO). Rome, Italy.##Santos-Bocanegra, E., Ospina-Osorio, X. and Oviedo-Rondon, E.O., 2004. Evaluationxanthophylls extracted from Tagetes erectus (marigold flower) and Capsp. (red pepper paprika) as a pigment for egg yolks compared with synthetic pigments. International Journal of Poultry Science, 3(11), 685-689. Doi: 10.3923/ijps.2004.685.689##Segner, H., Arend, P., Von Poeppinghausen, K. and Schmidt, H., 1989. The effect of feeding astaxanthin to Oreochromis niloticus and Colisa labiosa on the histology of the river. Aquaculture, 79, 381-390. Doi: 10.1016/0044-8486(89)90480-8##Sheikhzadeh, N., Nofouzi, K., Delazar, A. and Oushani, A.K., 2011. Immunomodulatory effects of decaffeinated green tea (Camellia sinensis) on the immune system of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and Shellfish Immunology, 31(6), 1268-1269. Doi: 10.1016/j.fsi.2011.09.010##Sim, K.H. and Sil, H.Y., 2008. Antioxidant activities of red pepper (Capsicum annuum) pericarp and seed extracts. International Journal of Food Science and Technology, 43(10), 1813-1823.##Soltani, M., Lymbery, A., Song, S.K. and Hosseini Shekarabi, S.P., 2019. Adjuvant effects of medicinal herbs and probiotics for fish vaccines. Reviews in Aquaculture, 11(4), 1325-1341. Doi: 10.1111/raq.12295##Srinivasan, K., 2016. Biological activities of red pepper (Capsicum annuum) and its pungent principle capsaicin: a review. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 56(9), 1488-1500. Doi: 10.1080/10408398.2013.772090##Talebi, M., Khara, H., Zoriehzahra, J., Ghobadi, S., Khodabandelo, A. and Mirrasooli, E., 2013. Study on effect of red bell pepper on growth, pigmentation and blood factors of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). World Journal of Zoology, 8 (1), 17-23.##Torrissen, O.J., 1984. Pigmentation of salmonids-effect of carotenoids in eggs and start-feeding diet on survival and growth rate. Aquaculture, 43, 185–193. Doi: 10.1016/0044-8486(84)90021-8##Torrissen, O.J., Hardy, R.W. and Shearer, K.D., 1989. Pigmentation of salmonids-carotenoid deposition and metabolism. Review of Aquatic Sciences, 1, 209-225. Doi: 10.1016/0044-8486(89)90478-X##Torrissen, O.J. and Christiansen, R., 1995. Requirements for carotenoids in fish diets. Journal of Applied Ichthyology, 11(3‐4), 225-230. Doi: 0.1111/j.1439-0426.1995.tb00022.x##Torrissen, O.J., Hardy, R.W., Shearer, K.D., Scott, T.M. and Stone, F.E., 1996. Effect of dietary lipid on apparent digestibility coefficients for canthaxanthin in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, 88 (3-4), 351-362. Doi: 10.1016/0044-8486(90)90160-O##Yanar, M., Büyükçapar, H.M. and Yanar, Y., 2016. Effects of hot and sweet red peppers (Capsicum annuum) as feed supplements on pigmentation, sensory properties and weight gain of rainbow trout (Onchorhynchus mykiss). Annals of Animal Science, 16(3), 825-834. Doi: 10.1515/aoas-2016-0011##Yanar, Y., Büyükçapar, H., Yanar, M. and Göcer, M., 2007. Effect of carotenoids from red pepper and marigold flower on pigmentation, sensory properties and fatty acid composition of rainbow trout. Food Chemistry, 100(1), 326-330. Doi: 10.1016/j.foodchem.2005.09.056 ##

پیش‌ بینی قیمت دو گونه از محصولات شیلات جنوب ایران با تأکید بر روش‌های نوین اقتصاد‌سنجی Forecasting the price of two species of fishery products in southern of Iran with emphasis on new econometric methods 1 1 شیلات ایران به عنوان یکی از زیربخش‌های حوزه کشاورزی و منابع طبیعی، سهم قابل توجهی در اقتصاد کشور دارد. بروز نوسانات شدید قیمتی طی دوره‌های اخیر، سرمایه‌گذاری و برنامه‌ریزی را در این بخش با مشکل مواجه نموده است. هدف از انجام این تحقیق، تعیین مناسب‌ترین مدل پیش‌بینی قیمت محصولات شیلات با استفاده از مدلهای سری زمانی خودرگرسیون میانگین متحرک انباشته، شبکه عصبی مصنوعی با وقفه زمانی و الگوی ترکیبی از دو روش مذکور است. داده‌های مورد استفاده در این تحقیق مربوط به قیمت عمده فروشی دو محصول ماهی شیر و ماهی حلوا سیاه از فروردین‌ماه 1380 لغایت شهریور‌ماه 1397 می‌باشد. بر اساس یافته‌های تحقیق، مدل خودرگرسیون میانگین متحرک انباشته در مقایسه با روش شبکه عصبی مصنوعی و روش ترکیبی، عملکرد ضعیفی در پیش‌بینی قیمت هر دو محصول از خود نشان داد. در کل نیز روش ترکیبی نسبت به دو روش خودرگرسیون میانگین متحرک انباشته و شبکه عصبی مصنوعی عملکرد بهتری در پیش‌بینی قیمت محصولات داشت. بر همین اساس لازم است تا در بررسی و پیش‌بینی قیمت این محصولات از روش‌های غیر خطی استفاده نمود. همچنین با توجه به بهبود عملکرد پیش‌بینی مدل ترکیبی با افزایش افق پیش‌بینی، می‌توان از این مدل در برنامه‌ریزی‌های بلند‌مدت استفاده نمود. 2 As one of the sub-sectors of agriculture and natural resources, Iranian fisheries has a significant contribution in the economy of the country. Recently, planning and investment in the fisheries sector have been difficult duo to the sharp fluctuations in price of products. This paper aims at determine and choosing the most appropriate fishery product price prediction model using autoregressive integrated moving average, time-delayed artificial neural network and combined pattern of the two above-mentioned methods. The data used in this research is related to the wholesale price of two products of the fishery (Seer fish and Black Pomfret fish), from April 2001 to September 2018. It was found that the ARIMA model showed a weak performance in predicting the price of both products in comparison with the artificial neural network method. And also, the hybrid method was more effective in forecasting the price of products than the other two methods. In conclusion, it is necessary to use nonlinear methods to forecast the prices of fishery products. Also, hybrid model can be used in long-term planning due to improved performance prediction with increasing forecast horizon. 141 152 2019/04/152019/05/242019/06/22019/08/312019/04/102013/02/252019/03/252019/06/252019/09/12019/05/182019/02/102019/09/102019/10/1 1398/7/9 2020/04/192020/04/192020/04/192020/01/12020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/19 1399/1/31 محسن محمدی Mohsen Mohammadi گروه اقتصاد و مدیریت کشاورزی، دانشگاه پیام نور، تهران، ایران ایران as.mohsen.mohammadi@gmail.com سعید یزدانی Saeed Yazdani گروه اقتصاد کشاورزی، دانشکده اقتصاد و توسعه کشاورزی، دانشگاه تهران،‌ کرج، ایران ایران syazdani@ut.ac.ir غلامرضا یاوری Gholamreza Yavari گروه اقتصاد و مدیریت کشاورزی، دانشگاه پیام نور، تهران، ایران ایران gr.yavari@gmail.com محسن مهرآرا Mohsen Mehr Ara گروه اقتصاد، دانشکده اقتصاد، دانشگاه تهران،‌ تهران، ایران ایران mmehrara@ut.ac.ir Price forecasting Seer fish Black pomfret fish Fisheries economics پیش‌بینی قیمت ماهی شیر ماهی حلوا سیاه اقتصاد شیلات ##اکبری، ا.، شارعی حداد زاده، م. و مهرابی بشرآبادی، ح.، 1392. پیش بینی صادرات خرمای ایران با استفاده از روش های اقتصاد سنجی و هوش مصنوعی. مجله تحقیقات اقتصاد کشاورزی. 3: 99-120##پورجعفری مقدم، م. و صیامی عراقی، ا.، 1391. ارزیابی مدل‌های اقتصادسنجی با روش‌های مبتنی بر ریاضیات. مجله اقتصادی (دوماهنامه بررسی مسائل و سیاستهای اقتصادی). 12 (4 و 5): 157-170##جلائی، س.، ع، پاکروان، م. گیلانپور، ا. اثنی عشری، ه. و مهرابی بشرآبادی، ح.، 1389. پیش بینی صادرات محصولات کشاورزی ایران: کاربرد مدلهای رگرسیونی و شبکه عصبی مصنوعی. اقتصادکشاورزی و توسعه. 72 (18): 115-138##حسینی، ع. و عنایتی، ش.، 1397. کارایی ابزار صید بکار برده شده در صید ماهی شیر (Scombromoros commerson) با تاکید بر تورهای گوشگیر در دریای عمان- آبهای ساحلی استان سیستان و بلوچستان . مجله علمی شیلات ایران. ۲۷ (۳): ۱۳۱-۱۴۰. DOI: 10.22092/ISFJ.2018.117174##خداپرست شیرازی، ج. و صادقی، ز.، 1395. پیش‌بینی تولید آبزیان دریایی در ایران با استفاده از روش ARIMA و شبکه عصبی مصنوعی. مجله تحقیقات اقتصاد کشاورزی. 8 (3): 145-166##دهقانی بیدگلی، ز.، 1396. یادگیری آسان شبکه‌های عصبی مصنوعی در MATLAB. انتشارات آتی نگر، تهران، ایران. ص10-11 ##سراوانی، م. و دهمرده قلعه نو، ن.، 1394. مکانیزم انتقال قیمت و اثر آن بر حاشیه بازار ماهیان آب‌های جنوب ایران. فصلنامه علوم اقتصادی. 32 (9): 25-43##سراوانی، م. و کیخا، ا ع.، 1396. تحلیل انتقال قیمت در بازار ماهیان دریایی و پرورشی شمال ایران. تحقیقات اقتصاد کشاورزی. 9 (4): 209-230##عادلی، ا. و میرباقری، و ا.، 1397. سنجش آگاهی دانشجویان رشته شیلات نسبت به فواید مصرف آبزیان. مجله علمی شیلات ایران. ۲۷ (۶) :۷۹-۹۱. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.118325##معاونت برنامه‌ریزی و بودجه سازمان شیلات ایران.، 1390. سالنامه آماری سازمان شیلات ایران 1379-1389. سازمان شیلات ایران، تهران، ایران##معاونت برنامه‌ریزی و بودجه سازمان شیلات ایران.، 1396. سالنامه آماری سازمان شیلات ایران 1382-1396. سازمان شیلات ایران، تهران، ایران##مهرابی بشرآبادی، ح. و کوچک زاده، س.، 1388 . مدلسازی و پیش‌بینی صادرات محصولات کشاورزی ایران: کاربرد شبکه‌های عصبی مصنوعی. مجله اقتصاد و توسعه کشاورزی. 23 (1): 49-58##موسوی جهرمی، ی. و غلامی، ا.، 1395. مدل ترکیبی شبکه عصبی با الگوی ARIMA جهت پیش‌بینی مالیات بر ارزش افزوده بر مصرف بنزین در ایران. فصلنامه پژوهشهای اقتصادی (رشد و توسعه پایدار). 2: 99-116##میگلی نژاد، ا.، 1391. شیلات و آبزیان کشور؛ چالش‌ها و پتانسیل‌ها گزارش راهبردی شماره 151. مرکز تحقیقات استراتژیک. تهران، ایران. ص13##نریمانی، ا. و نریمانی. ر.، 1395. تحلیل سری‌های زمانی با استفاده از Eviews و Matlab. انتشارات ناقوس، تهران، ایران. ص 15-14##Bloznelis, D., 2018. Short‐term salmon price forecasting. Journal of Forecasting, 37(2), 151-169. Doi:10.1002/for.2482##Duan, Q., Zhang, L., Wei, F., Xiao, X. and Wang, L., 2017. Forecasting model and validation for aquatic product price based on time series GA-SVR. Transactions of the Chinese Society of Agricultural Engineering, 33(1), 308-314. Doi:10.11975/j.issn.1002-6819.2017.01.042##Jha, G. K. and Sinha, K., 2013. agricultural price forecasting using neural network model: an innovative information delivery system. Agricultural Economics Research Review, 26(2). 229-239##Khashei, M., Bijari, M. and Ardali, G.A.R., 2009. Improvement of auto-regressive integrated moving average models using fuzzy logic and artificial neural networks (ANNs). Neurocomputing, 72(4-6), 956-967. Doi: 10.1016/j.neucom.2008.04.017##Khashei, M. and Bijari, M., 2011. A novel hybridization of artificial neural networks and ARIMA models for time series forecasting. Applied Soft Computing, 11, 2664-2675. DOI:10.1016/j.asoc.2010.10.015##Kim, H.J. and Shin, K.S., 2007. A hybrid approach based on neural networks and genetic algorithms for detecting temporal patterns in stock markets. Applied Soft Computing, 7(2), 569-576. Doi: 10.1016/j.asoc.2006.03.004##Li, G.Q., Xu, S.W. and Li, Z.M., 2010. Short-term price forecasting for agro-products using artificial neural networks. Agriculture and Agricultural Science Procedia, 1, 278-287. Doi: 10.1016/j.aaspro.2010.09.035. ##McLeod, A.I. and Li, W.K., 1983. Diagnostic checking ARMA time series models using squared residual autocorrelations. Journal of Time Series Analysis, 4: 269-273. Doi: 10.1111/j.1467-9892.1983.tb00373.x##Merino, G., Barange, M., Blanchard, J. L., Harle, J., Holmes, R., Allen, I. and Jennings, S., 2012. Can marine fisheries and aquaculture meet fish demand from a growing human population in a changing climate?. Global Environmental Change, 22(4), 795-806. Doi: 10.1016/j.gloenvcha.2012.03.003##Natale, F., Hofherr, J., Fiore, G., and Virtanen, J., 2013. Interactions between aquaculture and fisheries. Marine Policy, 38, 205-213. Doi: 10.1016/j.marpol.2012.05.037##Pinheiro, C.A.O. and Senna, V.D., 2017. Multivariate analysis and neural networks application to price forecasting in the Brazilian agricultural market. Ciência Rural, 47(1). Doi:10.1590/0103-8478cr20160077##Rusiman, M.S., Hau, O.C., Abdullah, A.W., Sufahani, S.F. and Azmi, N.A., 2017. An analysis of time series for the prediction of Barramundi (Ikan Siakap) price in Malaysia. Far East Journal of Mathematical Sciences, 102(9), 2081-2093. Doi:10.17654/MS102092081##Taskaya-Temizel, T. and Casey, M.C., 2005. A comparative study of autoregressive neural network hybrids. Neural Networks, 18(5-6), 781-789. Doi:10.1016/j.neunet.2005.06.003##Troell, M., Naylor, R.L., Metian, M., Beveridge, M., Tyedmers, P.H., Folke, C. and Gren, Å., 2014. Does aquaculture add resilience to the global food system?. Proceedings of the National Academy of Sciences, 111(37), 13257-13263. Doi:10.1073/pnas.1404067111##Tseng, F.M., Yu, H.C. and Tzeng, G.H., 2002. Combining neural network model with seasonal time series ARIMA model. Technological forecasting and social change, 69(1), 71-87. Doi:10.1016/S0040-1625(00)00113-X##Wang, D., Yue, C., Wei, S. and Lv, J., 2017. Performance analysis of four decomposition-ensemble models for one-day-ahead agricultural commodity futures price forecasting. Algorithms, 10(3), 108. Doi:10.3390/a10030108##Xiong T., Li Ch. and Bao Y., 2017. An improved EEMD-based hybrid approach for the short-term forecasting of hog price in China. Agric. Econ. – Czech, 63: 136-148. Doi:10.17221/268/2015-AGRICECON##Zou, H.F. Xi, G.P. Yang, F.T. and Wang, H.Y., 2007. An investigation and comparison of artificial neural network and time series models for Chinese food grain price forecasting. Neurocomputing. 70: 2913-2923. Doi:10.1016/j.neucom.2007.01.009 ##

تعیین قابلیت هضم ظاهری اجزای متداول مورد استفاده در ساخت خوراک فیلماهی (Huso huso) جوان Determination of apparent digestibility of the common ingredients used in the feed of juvenile Huso huso 1 1 قابلیت هضم ماده خشک، پروتئین، چربی و انرژی منابع پودر ماهی (پودر ماهی کیلکا، بچ، جنوب و ترکیبی)، برخی از منابع جانوری (آرد ضایعات مرغ، آرد گوشت و استخوان و آرد خون)، منابع گیاهی با مقدار پروتئین زیاد (آرد گلوتن گندم و ذرت) و منابع گیاهی با مقدار پروتئین کم (آرد گندم، آرد ذرت، آرد کانولا، سویای فرآوری شده و کنجاله سویا) در فیلماهی جوان با میانگین وزن35/23 ± 42/160 گرم مورد بررسی قرار گرفت. جیره‌‌های آزمایشی بر اساس70 درصد محتوای اجزای غذایی جیره پایه و افزودن جزء غذایی آزمایش‌‌شونده به میزان 30 درصد فرموله شدند. به تمامی جیره‌ها یک درصد اکسید کروم به عنوان نشانگر غیر مستقیم اضافه شد. ماهیان به ‌‌مدت 8 هفته در تانک‌‌های 500 لیتری فایبرگلاس پرورش و دو بار در روز تا حد سیری تغذیه گردیدند. جمع‌‌آوری مدفوع نیم تا یک ساعت پس از تغذیه از طریق سیفون مدفوع در کف تانک صورت گرفت. نتایج نشان داد پودر ماهی کیلکا دارای بیشترین قابلیت هضم پروتئین بود (94 درصد)، اما اختلاف معنی‌‌دار آماری در قابلیت هضم پودر ماهی بچ، جنوب و ترکیبی (93-89 درصد) با گلوتن گندم و ذرت (94-89 درصد)، سویای ‌‌فرآوری‌‌شده و کنجاله سویا (87-82 درصد) و آرد ضایعات مرغ (81 درصد) مشاهده نشد (P>0.05). بیشترین قابلیت هضم چربی متعلق به پودر ماهی بچ بود (92 درصد) و بعد از آن پودر ماهی کیلکا (91 درصد)، پودر ماهی جنوب (90 درصد)، پودر ماهی ترکیبی (89 درصد) و آرد ضایعات مرغ (83 درصد) قرار داشتند (P<0.05). مطالعه حاضر نشان داد که منابع گیاهی فرآوری ‌‌شده قابلیت هضمی همانند آرد ماهی دارند، هر چند که می‌‌توان آرد ضایعات مرغ و کنجاله سویا را به عنوان جایگزین احتمالی آرد ماهی جهت فرمولاسیون جیره اقتصادی فیلماهی در نظر گرفت. 2 Apparent digestibility of dry matter, crude protein, crude lipid and gross energy for fish meal (kilka fish meal, mixture fish meal, batch fish meal and south fish meal), some of the animal sources (poultry by product, meat and bone meal, blood meal cow), plant sources with high protein (wheat gluten and corn gluten) and plant sources with low protein (wheat meal, corn meal, canola meal, prepared soybean meal and soy bean meal) in juvenile Huso huso (160.42 ± 23.35 g) were investigated. Experimental diets were formulated based on 70% of the content of the reference diet and adding 30% of the ingridient test. One percent of chromium oxide was added as an indirect marker to all diets. Fish were reared in fiberglass tanks (500 L- 1) for 8 weeks and fed satiation two times daily. Collction of settlement faecal were carrird out half or one hour after feeding via siphon deposited on the tank floor. Reslts indicated that Kilka fish meal had the highest protein digestibility (94%), but significant differences in the digestibility of batch, South and Combined fish meal (93 to 89%) with wheat gluten and corn (94 to 89%), prepared soybean meal and soybean meal (87% to 82%) and poultry by product (81%) were not found (P>0.05). The highest lipid digestibility was found in batch fish meal (92%), followed by kilka fish meal (91%), south fish meal (90%), combined fish meal (89%) and poultry by product (83%) (P <0.05). Current study showed that prepared plant sources have digestibility such as fish meal, although poultry by product and soy bean meal can be considered as a possible alternative to fish meal for the formulation of commercial diet in Huso huso juvenile. 153 164 2019/04/152019/05/242019/06/22019/08/312019/04/102013/02/252019/03/252019/06/252019/09/12019/05/182019/02/102019/09/102019/10/12019/07/13 1398/4/22 2020/04/192020/04/192020/04/192020/01/12020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/19 1399/1/31 میرحامد سید حسنی Hamed SayedHassani دانشگاه گیلان ایران mirhamedhassani@yahoo.com مسعود سجادی Masoud Sajjadi دانشگاه گیلان ایران mmsajjadi@hotmail.com بهرام فلاحتکار Bahram Falahatkar دانشگاه گیلان ایران falahatkar@guilan.ac.ir ایوب یوسفی Ayoub Yousefi 2- موسسه تحقیقات بین‌المللی تاسماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران. ایران ayoub2222002@yahoo.com Huso huso Reference diet Fish meal Plant sources Animal sources Digestibility فیلماهی جیره رفرنس آرد ماهی منابع گیاهی منابع جانوری قابلیت هضم ##ولی پور، م.، اوجی فرد، آ.، حسینی، ع.ف ستوده، آ.، باقری، د.، 1397. اثر جایگزینی پودر ماهی با پودر لارو سوسک زرد (Tenebriomolitor) برعملکردرشد، شاخص‌های خون‌شناسی و برخی از پارامترهای ایمنی غیراختصاصی بچه ماهیان قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران، 28 (2) 27-13.DOI: 118906.2019.ISFJ/22092.10##Akiyama, D.M., Dominy, W.G. and Lawrence A.L., 1992. Penaeid shrimp nutrition. Developments in Aquaculture and Fisheries Science, 23:535–568. DOI: org/10.1111/j.1365-2109.2001.00528.x.##Allan, G.L., Rowland, S.J., Parkinson, S., Stone, D.A.J. and Jantrarotai, W., 1999. Nutrient digestibility for juvenile silver perch Bidyanus bidyanus: development of methods. Aquaculture, 170, 131–145. DOI: 10.1016/s0044-8486(98)00397-4 ##Allan, G.L., Parkinson, S., Booth, M.A., Stone, D.A.J., Rowland, S.J., Frances, J. and Warner-Smith, R., 2000. Replacement of fish meal in diets for Australian silver perch, Bidyanus bidyanus: I digestibility of alternative ingredients. Aquaculture, 186: 293–310. DOI:org/10.1016/S0044-8486(99)00380-4.##AOAC., 2005. Official method of Analysis. 18th Edition, Association of Officiating Analytical Chemists, Washington DC, 526 pp## Bureau, D.P., Harris, A.M. and Cho, C.Y., 1999. Apparent digestibility of rendered animal protein ingredients for rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture, 180: 345–358. DOI: org/ 10. 1016 /S0044-8486(99)00210-0##Catacutan, M.R., Eusebio, P.S. and Teshima, S.I., 2003. Apparent digestibility of selected feedstuffs by mud crab, Scylla serrate. Aquaculture, 216: 253–261. DOI: org/10.1016/S0044-8486(02)00408-8.## ##Cho, C.Y., Slinger, S.J. and Bayley, H.S., 1982. Bioenergetic of salmonid species: energy intake, expenditure and productivity. Comparative Biochemistry and Physiology, 37B: 25-41. DOI:org /10. 1016 /0305-0491(82)90198-5.##Ginindza, J., 2011. Effect of Protein Levels on Nutrient and Energy Digestibility in Diet of Arctic Charr, Salvelinus alpinus. United Nations University Fisheries, Training Programme, Iceland, 30 pages. ##Glencross, B.D., Hawkins, W.E. and Curnow, J.G., 2003. Evaluation of canola oils as alternative lipid resources in diets for juvenile red seabream, Pagrus auratus. Aquaculture Nutrition, 9: 305– 315. DOI:org/10.1046/j.1365-2095.2003.00257.x##Glencross, B.D., Booth, M. and Allan, G.L., 2007. A feed is only as good as its ingredients – a review of ingredient evaluation strategies for aquaculture feeds. Aquaculture Nutrition, 13: 17–34. DOI:org/10.1111/j.1365-2095.2007.00450.x##Guttieri M.J., Bowen D., Dorsch J.A., Souza E. and Raboy V., 2004. Identi¢cation and characterization of a low phytic acid wheat. Crop Science, 44,418-424.##Hajen, W.E., Higgs, D.A., Beames, R.M. and Dosanjh, B.S., 1993. Digestibility of various feedstuffs by post-juvenile chinook salmon, Oncorhynchus tshawytscha in sea water. Measurement of digestibility. Aquaculture, 112: 333–348. DOI:org/10.1016/0044-8486(93)90393-D##Heinitz, M.C., Lemme, A. and Schulz, C., 2016. Apparent nutrient, energy and amino acid digestibilities of common feed ingredients for carp diets, Cyprinus carpio. Aquaculture Nutrition, 22: 1065-1078. DOI:org/10.1111/anu.12324##Jobling, M., 1994. Fish Bioenergetics. Vol. 13, Chapman and Hall, London, UK.##Liu, H., Wu, X., Zhao, W., Xue, M., Guo, L., Zheng, Y. and Yu, Y., 2008. Nutrients apparent digestibility coefficients of selected protein sources for juvenile Siberian sturgeon, Acipenser baerii Brandt, compared by two chromic oxide analyses methods. Aquaculture Nutrition, 15: 650–656. DOI:org/10.1111/j.1365-2095.2008.00634.x##Liu, H., 2013. Apparent Digestibility of 12 Protein-Origin Ingredients for Pacific White Shrimp Litopenaeus vannamei. American Fisheries Society, 75:90–98. DOI:org/10.1080/15222055 .2012 .71 6019##Lovell, R. T., 1989. Nutrition and Feeding of Fish. Van Nostrant-Reinhold, New York, USA.##Medale, F., Gorraze, G. and Kaushik, S.J., 1995. Nutrition of farmed Siberian sturgeon. A review of our current knowledge. In: Proceedings of the Third International Symposium on Sturgeons (Gershanovic, A.D., Smith, T.I.J. Eds.), pp. 289–298. VNIRO Publishing, Moscow.##Menghe, H., Edwin, H., Robinson, R., Daniel, F. and Penelope, M., 2012. Evaluation of corn gluten feed and cottonseed meal as partial replacements for soybean meal and corn in diets for pond-raised hybrid catfish, Ictalurus punctatus × Ictalurus furcatus. Journal of the World Aquaculture Society, 43: 107-113. DOI: 1111/j.1749-7345.2011.00542.x##Mirzakhani, M.Z., Abedian Kenari, A. and Motamedzadegan M. A., 2018. Prediction of apparent protein digestibility by in vitro pH-stat degree of protein hydrolysis with species-specific enzymes for Siberian sturgeon, Acipenser baerii, Brandt 1869. Aquaculture, 496: 73-78. DOI:org/10 .1016 /j.aquaculture .2018.07.014.##Naylor, R.L., Hardy, R.W., Bureau, D.P., Chiu, A., Elliott, M. and Farrell, A. P., 2009. Feeding aquaculture in an era of finite resources. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 106: 15103-15110. DOI: 10.1073/pnas.0905235106.##Nengas, L., Alexis, M., Davies and S.J., 1999. High inclusion levels of poultry meals and related by-product in diets for gilthead sea bream, Sparus aurata L. Aquaculture, 179: 13 –23. DOI:org /10 .1073 /pnas.0905235106.##NRC, 2011. Nutrient requirements of fish and shrimp. Washington: The National Academies Press. 506 pp##Parsons, C.M., Castanon, F. and Han, Y., 1997. Protein and amino acid quality of meat and bone meal. Poultry Science, 76: 361–368. DOI:org/10.1093/ps/76.2.361##Pfeffer, E., Al-Sabty, H. and Haverkamp, R., 1992. Studies on lysine requirements of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss fed wheat gluten as only source of dietary protein. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 67: 74–82. DOI:org/10. 1111/j.1439-0396.1992.tb00585.x.##Rawles, S.D., Thompson, K.R., Brady, Y.I., Metts, L.S., Gannam, A.L., Twibell, R.G. and Webster, D., 2010. Comparison of two faecal collection methods for protein and amino acid digestibility coefficients of menhaden fish meal and two grades of poultry by‐product meals for market‐size sunshine bass (Morone chrysops × M. saxatilis). Aquaculture Nutrition, 16: 81-90. DOI: 10.1111. j.1749-45.2006. 00034.x##Refstie, S., Svihus, B., Shearer, K.D. and Storebaken, T., 1999. Nutrient digestibility in Atlantic salmon and broiler chickens related to viscosity and non-starch polysaccharide content in different soybean products. Animal Feed Science and Technology, 79: 331-345. DOI: 10.1016/S0377-8401(99)00026-7##Safari, O., Naserzadeh, M. and Mohamadi Arani, M., 2014. Digestibility of selected feedstuffs in subadult Caspian great sturgeon, Huso huso using settlement collection and stripping methods. Aquaculture Nutrition, 22: 293-303. DOI:org/10.1111/anu.1224##Silva, T.S.C., Moro, G.V., Silva, T.B.A., Dairiki, J.K. and Cyrino, J.E.P., 2013. Digestibility of feed ingredients for the striped surubim, Pseudoplatystoma reticulatum. Aquaculture Nutrition,19: 491-498. DOI:org/10.1111/anu.12000.##Tusche, K., Arning, S., Wuertz, S., Susenbeth, A. and Schulz, C., 2012. Wheat gluten and potato protein concentrate promising protein sources for organic farming of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture, 344–349: 120–125. DOI:org/10.1016/j.aquaculture.2012.03.009##Wang, X. and Parsons, C.M., 1998. Effect of raw material source, processing systems, and processing temperatures on amino acid digestibility of meat and bone meals. Poultry Science, 77: 834–841. DOI: 10.1093/ps/77.6.834##Williams, K.C., Patterson, B.D., Barlow, C.G., Ford, A. and Roberts, R., 2003. Potential of meat meal to replace fish meal in extruded dry diets for barramundi, Lates calcarifer Bloch, II. Organoleptic characteristics and fatty acid composition. Aquaculture Research, 34: 33–42. DOI:org/ 10.1046/j.1365-2109.2003.00786.x##Yun, B., Xue, M., Wang, J., Sheng, H., Zheng, Y. and Wu, X., 2014. Fishmeal can be totally replaced by plant protein blend at two protein levels in diets of juvenile Siberian sturgeon, Acipenser Baerii Brandt. Aquaculture Nutrition, 20: 69-78. DOI:org/10.1577/1548- 659 (1978) 40 [51:MOFCAN]2.0.CO;2##Zhang, Y.C., Li, D.F., Fan, S.J., Piao, X.S., Wang, J.T. and Han, I.K., 2002. Effects of casein and protein-free diets on endogenous amino acid losses in pigs. Asian-Australas. Journal of Animal Science, 15: 1634–1638. DOI:org/10.5713/ajas.2002.1634 ##

یافته علمی: تاثیر استفاده از آنتن منشعب دافنی پولکس (Daphnia pulex) غنی شده با جیره‌های مختلف غذایی بر رشد و بقاء لارو ماهیان دم شمشیری (Xiphophorus helleri) و گوپی (Poecilia reticulata) The effect of Daphnia pulex enriched with various dietary rations on the growth and survival rates of Swordtail fish (Xiphophorus helleri) and Guppy (Poecilia reticulata) larvae 1 1 موفقیت در مرحله ابتدایی پرورش لاروها موجب رشد سریع تر، سلامت بهتر و افزایش درصد بقاء بچه ماهیان در مراحل بعدی پرورش و بعد از رهاسازی می­گردد (بابایی و همکاران، 1390؛ چوبیان و همکاران، 1392). از اینرو، بدست آوردن جیره غذایی مناسب جهت عبور از مرحله تغذیه از کیسه زرده تا تغذیه فعال، افزایش درصد بقاء و بازماندگی ماهیان در مرحله لاروی، قابلیت دسترس بودن آسان و قابل هضم بودن برای بدست آوردن موفقیت در پرورش لارو آبزیان بسیار حائز اهمیت است (چوبیان و همکاران، 1392). میزان اسیدهای چرب ضروری اسید ایکوزا پنتانوئیک (EPA) و اسید دکوزا هگزانوئیک (DHA) در دافنی­ها کم می­باشد. لذا، استفاده از تکنیک­هایی که بتواند سبب افزایش میزان اسیدهای مذکور در آنها گردد، بسیار مهم و ضروری است. یکی از مسائلی که استفاده از دافنی­ها را حائز اهمیت میسازد، امکان غنی‌سازی راحت با موادی نظیر اسیدهای چرب ضروری، اسیدهای آمینه ضروری و ویتامین­ها است (Girri et al., 2002). هدف از انجام این پژوهش، بررسی تغییرات میزان بقاء و رشد لارو ماهیان آکواریومی دم شمشیری و گوپی تغذیه شده با دافنی پولکس (Daphnia pulex) غنی شده با جلبک اسیلاتوریا آفریکانوم و روغن­های کانولا و ماهی طی دوره مطالعه بوده است.   2 In this study, specific weight and length growth and survival rates of Swordtail fish (Xiphophorus helleri) and Guppy (Poecilia reticulata) larvae using three feeding treatments including Daphnia pulex+O. africanum, D. pulex+O. africanum+Canola oil and D. pulex+Oscillatoria africanum+Fish oil were investigated. The results showed that the mean (±SE) specific growth rate of Guppy fish larvae were 6.11±0.9, 5.84±1.4 and 5.6±1.2 g and for Swordtail fish larvae were 2.3±0.4, 4.14±1.7 and 4.5±0.8 g, respectively. Also, the specific length growth rates of Guppy fish larvae were 1.2±0.35, 1.4±0.25 and 1.1±0.3 cm and for Swordtail fish larvae were 1.8±0.3, 2.4±0.45 and 2.6±0.6 cm, respectively. The survival rate (%) of Swordtail fish larvae were 35.33, 41.11 and 46.62% while for Guppy fish larvae were 46.12, 81.41 and 94.63%, respectively.  165 168 2019/04/152019/05/242019/06/22019/08/312019/04/102013/02/252019/03/252019/06/252019/09/12019/05/182019/02/102019/09/102019/10/12019/07/132019/02/12 1397/11/23 2020/04/192020/04/192020/04/192020/01/12020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192019/08/19 1398/5/28 طیبه عنایت غلامپور T. Enayat Gholampour دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان ایران t.enayat111@gmail.com مجتبی پولادی M. Pouladi دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان ایران mojtabafishery1987@gmail.com ابراهیم ستوده E. Sotoudeh دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران ایران e.sotoudeh@yahoo.com سید علی اکبر هدایتی S.A.A. Hedayati دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان ایران marinebiology1@gmail.com Ornamental fish larvae Daphnia pulex Oscillatoria africanum Fish oil Canola oil لارو ماهیان آکواریومی دافنی پولکس جلبک اسیلاتوریا آفریکانوم روغن ماهی روغن کانولا ##بیرانوند، م.، قائنی، م. و ولایت زاده، م.، 1394. تاثیر مکمل جلبک اسپیرولینا (Spirulina sp.) بر رشد و تغذیه ماهی زبرا دانیو .(Danio rerio Hamilton, 1822) یافته های نوین در علوم زیستی، 2(3): 215-207. DOI: 10.21859/acadpub.nbr.2.3.207##چوبیان، ف.، رمضانپور، ز.، نوروز فشخامی، م.ر.، حدادی مقدم، ک.، پژند، ذ. و جلیل پور، ج.، 1397. بهبود ترکیب اسیدهای چرب دافنی (Daphnia longspina) با استفاده از غنی سازی زیستی. فصلنامه علوم آبزی پروری پیشرفته، 2(3): 44-35. ##Abedian Kenari, A., Mozanzadeh, M. and Pourgholam, R., 2011. Effects of total fish oil replacement to vegetable oils at two dietary lipid levels on the growth, body composition, haemato-immunological and serum biochemical parameters in Caspian brown trout (Salmo trutta caspius). Aquaculture Research, 42: 1131-1144. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2010.02701.x##Drew, M.D., Ogunkoya, A.E., Janz, D.M. and Van Kessel, A.G., 2007. Dietary influence ofreplacing fish meal and oil with canola protein concentrate and vegetable oils on growth performance, fatty acid composition and organochlorine residues in ## ##rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, 267: 260-268. DOI: 10.1016/ j.aquaculture.2007.01.002.##Farhadian, O., Khanjani, M.H., Keivany, Y. and Ebrahimi, Dorche E., 2012a. Culture experiments with a fresh-water cladoceran, Ceriodaphnia quadrangular (O. F.Muller, 1785), as suitablelive food for Mayan cichlid (Cichlasoma urophthalmus Gunther1862) larvae. Brazilian Journal of Aquatic Science and Technology, 16: 1–11.##Gordon Bell, J., Mcevoy, J., Tocher, D.R., Mcghee, F., Campell, P.J. and Sargent, J.R., 2001. Replacement of fish oil with rapeseed oil in diets of Atlantic salmon (salmo salar) affects tissue lipid composition and hepatocyte fatty acid metabolism. Journal of Nutrition, 131: 1535-1543. DOI: 10.1093/jn/131.5.1535. ##Torfi Mozanzadeh, M., Agh, N., Yavari, V., Marammazi, G., Mohammadian, T. and Gisbert, E., 2016. Partial or total replacement of dietary fish oil with alternative lipid sources in silvery-black porgy (Sparidentex hasta). Aquaculture, 451: 232–240. DOI: 10.1016/j.aquaculture. 2015.09.022.##Turchini, G.M., Ng, W.K. and Tocher, D.R., 2011. Fish oil replacement and alternative lipid sources in aquaculture feeds. CRC Press. Taylor & Francis Group, 522 p. DOI: 10.1201/9781439808634 ##

یافته علمی: ارزیابی ریسک خطر فلزات سنگین برای مصرف‌کنندگان میگوی سفید هندی (Penaeus indicus) Risk assessment of heavy metals for the consumers of Indian white shrimp (Penaeus indicus) 1 1 در مطالعه حاضر برآورد خطر فلزات سنگین مس (Cu)، آهن (Fe)، سرب (Pb)، کادمیوم (Cd)، قلع (Sn)، آرسنیک (As) و جیوه (Hg) در مصرف کنندگان میگوی سفید هندی صید شده از سواحل مختلف چابهار مورد بررسی قرار گرفت. 180 عدد میگو از سواحل کنارک، بریس و گواتر (شهرستان چابهار) در سال 1396 صید گردید. نمونه‌ها در آزمایشگاه خشک، هضم و در ادامه غلظت فلزات با دستگاه جذب اتمی اندازه‌گیری گردید. برآورد میزان ورود روزانه فلز به بدن مصرف کنندگان و تخمین میزان خطر در مصرف کننده با استفاده از روش ارائه شده توسط سازمان بهداشت جهانی انجام شد.  در میان فلزات مختلف، آهن با 72/2 میکروگرم/ گرم بیش‌ترین و جیوه با 01/0 کمترین میزان تجمع را داشت. ترتیب تجمع در بافت خوراکی میگو به صورت Fe، Cu، Sn، As، Pb، Cd و Hg بود. بالاترین میزان ورود روزانه (میکروگرم/ کیلوگرم فرد/ روز) به میزان 531/0 در فلز آهن و کمترین میزان آن برای جیوه 002/0 ثبت گردید. بالاترین تخمین میزان خطر (THQ)، ناشی از فلز آرسنیک و به میزان 20/0 بود، در حالی که کم­ترین میزان خطر به میزان 0006/0 ناشی از فلز قلع به دست آمد. میزان تخمین میزان خطر  برای تمامی فلزات و هم چنین مجموع میزان خطر (TTHQ) از 1 کمتر بود. نتایج نشان داد که در حال حاضر مصرف‌کنندگان میگوی سفید هندی با میزان مصرف محاسبه شده در معرض هیچ گونه خطر ناشی از تجمع فلزات مس، آهن، سرب، کادمیوم، قلع، آرسنیک و جیوه در میگو نمی‌باشند. 2 In the present study, the rise assessment of heavy metals includes copper(Cu), iron(Fe), cadmium(Cd), sternum(Sn), arsenic(As) and mercury(Hg) for the consumers of Indian white shrimp caught from different coasts of Chabahar was evaluated.  In 2017, 180 shrimp specimens were caught from the coasts of Konarak, Beris and Gwadar (Chabahar Province). In the laboratory, the samples had dried, digested and subsequently the metals concentration was measured using spectrophotometer. The estimated daily intake of metals to the body of the consumers and the target hazard quotient were done based on the method, developed by the World Health Organization. Among different metals, iron had the highest concentration with 2.72 μg/g, while the lowest accumulation of metals was recorded for mercury with 0.01 μg/g. The ranking order of metals accumulation in the muscle of shrimp were as Fe, Cu, Sn, As, Pb, Cd, Hg. The highest amount of daily intake (μg metal/kg person/ day) was observed for arsenic (0.20) while the lowest was for Tin(sn) (0.0006). Target hazard quotient (THQ) and total target hazard quotient (TTHQ) for all metals were lower than 1. The results showed there is not any health risk for the consumers of Indian white shrimp due to accumulation of copper, iron, cadmium, stannum, arsenic and mercury in the shrimp. 169 174 2019/04/152019/05/242019/06/22019/08/312019/04/102013/02/252019/03/252019/06/252019/09/12019/05/182019/02/102019/09/102019/10/12019/07/132019/02/122019/11/26 1398/9/5 2020/04/192020/04/192020/04/192020/01/12020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192020/04/192019/08/192020/04/21 1399/2/2 مهران لقمانی mehran loghmani دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار ایران loghmani.mehran@gmail.com سلیم شریفیان salim sharifian دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار ایران salim@gmail;.coom Heavy metals Risk assessment Consumer Indian white shrimp فلزات سنگین ارزیابی خطر مصرف‌کننده میگوی سفید هندی ##مردوخی، س.، حسینی، س.و. و حسینی، س.م.، 1392. ارزیابی خطر جیوه ناشی از مصرف ماهی شوریده (Otolithes ruber) در خلیج فارس:مطالعه موردی بندر ماهشهر. فصلنامه علوم و فنون شیلات، 2(3):55-43.##Alipour, H., Pourkhabbaz, A. and Hassanpour, M., 2015. Estimation of potential health risks for some metallic elements by consumption of fish, Water Qual Expos Health, 7:179-185. Doi.org/10.1007/s12403-014-0137-3.##Henry, C.B., Mulanda, C.A. and Njiru, J., 2019. Ovarian Development of the Penaeid Shrimp Penaeus Indicus (Decapoda): A Case for the Indian Ocean Coastal Waters of Kilifi Creek, Kenya. Fisheries and Aquaculture Journal,10(1): 1-8. Doi.org/10.4172/2150-3508.1000262.##La Collaa, N.S. Bottéa, S.E. and Marcovecchio J.E., 2018. Metals in coastal zones impacted with urban and industrial wastes: Insights on the metal accumulation pattern in fish species, Journal of Marine Systems. 181: 52-64. Doi.org/10.1016/j.jmarsys.2018.01.012.##Mitra, A.B., Barua, P. Zaman, S. and Banerjee, K., 2012. Analysis of trace metals in commercially important crustaceans collected from UNC SCO protected world heritage site of Indian Sunderbans. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 12:53-66. Doi.org/10.4194/1303-2712-v12_1_07.##MOOPAM., 2010. The Regional Organization for the Protection of the Marine Environment (ROPME), third edition. Kuwait. State of Kuwait. ROPME.##Mortazavi, M.S. and Sharifian, S., 2011. Mercury bioaccumulation in some commercially valuable marine organisms from Mosa Bay, Persian Gulf‌, International Journal of Environmental Research. 5(3):757-762. Doi.org/10.22059/ijer.2011.381. ## ##Niri, A.S. Sharifian, S. and Ahmadi, R., 2015. Assessment of metal accumulation in two fish species (Tenualosa ilisha and Otolithes ruber), captured from the north of Persian Gulf. The Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 94(1):71-76. Doi.org/ 10.1007/s00128-014-1429-9.##Saei-Dehkordi, S.S., Fallah, A.A. and Nematollah, A., 2010. Arsenic and mercury in commercially valuable fish species from the Persian Gulf: Influence of season and habitat. Food and Chemical Toxicology, 48: 2945–2950. Doi.org/10.1016/j.fct.2010.07.031.##Saha, N. and Zaman, M., 2013. Evaluation of possible health risks of heavy metals by consumption of foodstuffs available in central market of Rajshahi City, Bangladesh. Environmental Monitoring and Assessment, 185(5):3867-78. Doi.org/10.1007/s10661-012-2835-2.##Saha, N., Mollah, M.Z.I., Alam, M.F. and Safiur Rahman M., 2016. Seasonal investigation of heavy metals in marine fishes captured from the Bay of Bengal and the implications for human health risk assessment, Food Contorol, 70:110–118. Doi.org/ 10.1016/j.foodcont.2016.05.040##Sharifian, S., Shahbanpour, B., Taheri, A. and Kordjazi, M., 2019. Effect of phlorotannins on melanosis and quality changes of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) during iced storage. Food Chemistry. 298:124980. Doi.org/10.1016/j.foodchem.2019.124980.##Solgi, E., Alipour‎, H. and Majnooni, F., 2018. Assessment of Heavy metal concentrations in the muscles of Common carp (Cyprinus carpio L., 178) from the southern coast of the Caspian Sea and potential risks to human health. Iranian Journal of Fisheries Sciences. 27(1):119-129. Doi: 10.22092/ISFJ.2018.116453.##USEPA., 1989. Risk assessment guidance for superfund volume I: Human Health Evaluation Manual Part A. Washington, DC: United States Environmental Protection Agency.##USEPA., 2000. Risk-based Concentration Table. Washington, DC: United States Environmental Protection Agency.##Xiaojie, L., Jinping, C., Yuling, S., Shunich, H., Li, W., Zheng, L., Mineshi, S. and Yuanyuan, L., 2008. Mercury Concentration in Hair Samples from Chinese People in Coastal Cities. Journal of Environmental Sciences, 20:1258–1262. Doi.org/10.1016/S1001-0742(08)62218-4. ##