1399 29 2 118 210

تاثیر سطوح مختلف پروتئین جیره بر رشد، زنده‌‌مانی و ترکیب لاشه کرم نرئیس (Hediste diversicolor) Effect of different dietary protein levels on growth, survival and body composition of Hediste diversicolor 1 1 هدف تحقیق حاضر، بررسی تاثیر سطوح مختلف پروتئین جیره بر رشد، زنده‌‌مانی و ترکیب لاشه کرم نرئیس (Hediste diversicolor) بود. سه جیره ایزوکالریک با سه سطح متفاوت پروتئین شامل پروتئین زیاد (50 درصد)، پروتئین متوسط (35 درصد) و پروتئین کم (20 درصد) در سه تکرار در قالب طرح کاملاً تصادفی طراحی شد. لاروهای کرم نرئیس با میانگین وزنی 005/0± 02/0 گرم در 9 عدد مخزن پلاستیکی 40 لیتری با تراکم 500 عدد (2500 عدد در مترمربع) در هر مخزن توزیع شد. کرم‌‌ها به مدت 77 روز تغذیه شدند. نتایج نشان داد که شاخص‌‌های وزن نهایی، زی‌‌توده نهایی (گرم در مترمربع)، زی‌‌توده کسب شده، نرخ رشد ویژه، درصد افزایش وزن بدن، میانگین رشد روزانه در کرم‌‌های تغذیه شده با جیره غذایی حاوی50 درصد پروتئین در مقایسه با سایر تیمارهای آزمایشی بیشتر بود (05/0>p). بیشترین درصد زنده‌‌مانی در کرم‌‌های تغذیه شده با جیره غذایی با سطح پروتئین 35 درصد ثبت گردید (05/0>p). کرم‌‌های تغذیه شده با سطوح 50 درصد و 35 درصد پروتئین دارای بیشترین میزان پروتئین در لاشه بودند که اختلاف معنی‌‌داری نشان داد (05/0>p). پارامترهای چربی و خاکستر لاشه، اختلاف معنی‌‌داری بین همه تیمارها نشان دادند (05/0>p). کرم‌‌های تغذیه شده با جیره حاوی 35 درصد پروتئین، بالاترین درصد رطوبت لاشه را بخود اختصاص دادند (05/0>p). کمترین (05/0>p) ضریب تبدیل غذایی و ضریب تبدیل اقتصادی در کرم‌‌های تغذیه شده با سطح 50 درصد پروتئین مشاهده شد. طبق نتایج بدست آمده سطح 50 درصد پروتئین (زیاد) می تواند در افزایش عملکرد رشد، کارایی تغذیه، ترکیب لاشه کرم نرئیس و صرفه اقتصادی تاثیرگذار باشد. 2 The aim of this study was to investigate the effect of different dietary protein levels on growth, survival and body composition of Hediste diversicolor. Three isocaloric diets with three different protein levels containing high protein (50%), medium protein (35%) and low protein (20%) were designed in three replicates in completely randomized design. Hediste worm larvae weighing 0.02±0.005g were distributed into nine 40-L tanks with a density of 500 worms (2500 worms per m2). The worms were fed for 77 days. Results showed that final weight, final biomass (g/m2), biomass gain, specific growth rate, body weight increase and average daily growth in worms fed high protein (50%) were significantly higher than in comparison with other experimental treatments (p<0.05). The highest survival rate was recorded in worms fed medium protein (35%) (p<0.05). Worms fed 50% and 35% protein levels had the highest content of carcass protein that showed significant difference (p<0.05). Significant differences were observed in contents of lipid and ash (p<0.05). Worms fed protein at the level of 35% showed the highest level of carcass moisture (p<0.05). The lowest (p<0.05) feed conversion ratio and economic conversion ratio were seen in worms fed protein at the level of 50%. According to obtained findings, protein at the level of 50% (high) can be effective in enhancing of growth performance, feed efficiency, body composition of Hediste diversicolor and economic efficiency.   1 8 2019/11/29 1398/9/8 2020/03/15 1398/12/25 سعید چراغی Saeed Cheraghi گروه شیلات، واحد تالش، دانشگاه آزاد اسلامی، تالش. ایران Iran saeedcheraghi65@gmail.com رضا طاعتی Reza Taati گروه شیلات، واحد تالش، دانشگاه آزاد اسلامی، تالش. ایران Iran r.taati@gmail.com ذبیح اله پژند Zabiollah Pajand موسسه تحقیقات بین المللی تاسماهیان دریای خزر. سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی (AREEO). رشت. ایران Iran zpajand@gmail.com Protein Hediste diversicolor Growth Body composition پروتئین Hediste diversicolor رشد ترکیب لاشه ##آزور، ا.، یحیوی، م.، سالارزاده، ع.ر.، زارع، پ. و نادری. پ.، 1389. بررسی تاثیر تیمارهای غذایی مختلف بر روی ترکیبات شیمیایی کرم پرتار پرنرئیس نانتیا (Perinereis nuntia). مجله آبزیان و شیلات، 1(4): 19-13.##پژند، ذ.ا.، حدادی مقدم، ک.، چوبیان، ف.، روفچایی، ر. و پرندآور، ح.، 1388. بررسی تاثیر دما، شوری و دوره نوری در القاء رسیدگی جنسی و رفتارهای تولیدمثلی کرم نرئیس (Nereis diversicolor). مجله علمی شیلات ایران، 18(3): 30-11. Doi: 10.22092/isfj.2009.115474. ##پژند، ذ.ا.، حدادی مقدم، ک.، چوبیان، ف.، فرزانه، ا.، حسین‌‌نیا، ا.، عاشوری، ع.ر. و صیادفر، ج.، 1398. تاثیر منابع چربی جیره‌‌های غذایی (روغن‌‌های کانولا و ذرت) بر فاکتورهای رشد، بازماندگی و ترکیب اسیدهای چرب کرم نرئیس (Nereis diversicolor). فصلنامه محیط‌‌زیست جانوری، 11(3): 388-379. ##دریا، م.، سجادی، م.م.، سوری نژاد، ا.، مسندانی، س.، قدرتی شجاعی، م. و مرحمتی زاده، ل.، 1393. تأثیر جیره‌‌های مختلف غذایی بر رشد و بازماندگی کرم پرتار Perinereis nuntia در شرایط پرورش آزمایشگاهی. مجله بوم شناسی آبزیان، 4(3): 19-12.##محسنی، م.، امیرخانی، ا.، سیدحسنی، م.ح. و پورعلی، ح.ر.، 1392. اثر سطوح مختلف پروتئین و انرژی جیره غذایی بر روند رشد بچه فیل‌‌ماهی پرورشی (Huso huso). مجله علمی شیلات ایران، 22(4):119-107.Doi: 10.22092/isfj.2017.110153. ##AOAC, 2005. Association of Official Analytical Chemists. Official Methods of Analysis of the Association of Analytical Chemists International, 18th ed. Gaithersburg, Maryland, USA.##Bogucki, M., 1963. The influence of salinity of the maturation of gametes of Nereis diversicolor O.F. Müller. Polskie Archiwum Hydrobiologii, 11: 343-347.##Coutinho, F., Peres, H., Guerreiro, I., Pousao-Ferreira, P. and Oliva-Teles, A., 2012. Dietary protein requirement of sharpsnout sea bream, Diplodus puntazzo, juveniles. Aquaculture, 356: 391-397. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2012.04.037.##Fidalgo e Costa, P., Narciso, N. and Cancela da Fonseca, L., 2000. Growth, survival and fatty acid profile of Nereis diversicolor fed on six different diets. Bulletin of Marine Science, 67(1): 337–343. ##Genc, M.A., Aktas, M., Genc, E. and Yilmaz, E., 2007. Effects of dietary mannan oligosaccharide on growth, body composition and hepatopancreashistology of Penaeus semisulcatus. Aquaculture Nutrition, 13:156-161. Doi: 10.1111/j.1365-2095.2007.00469.x.##Hoff, H.F. and Snell, W.T., 2001. Plankton culture manual. Florida Aqua Farms Inc. Florida, USA. 160 P.##Kostyuchenko, R. P. and Dondua, A. K., 2006. Development of the prototroch in embryogenesis of Nereis virens (Polychaeta). Russian Journal of Developmental Biology, 37(2): 69-76. Doi: 10.1134/S1062360406020020.##Lovell, R.T., 1988. Nutrition and Feeding of Fish. Van Nostrand Reinhold, New York. USA. 260 P.##Nesto, N., Simonini, R., Prevedelli, D. and Da Ros, L., 2012. Effects of diet and density on growth, survival and gametogenesis of Hediste diversicolor (O.F. Müller, 1776) (Nereididae, Polychaeta). Aquaculture, 362-363:1-9. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2012.07.025.##Nielsen, A.M., Eriksen, N.T., Lonsmann Iversen, J.J. and Riisgard, H.U., 1995. Feeding, growth and respiration in the polychaetes Nereis diversicolor (facultative filter-feeder) and N. virens (omnivorous) - a comparative study. Marine Ecology Progress Series, 125: 149-158. Doi: 10.3354/meps125149.##NRC, 1993. National Research Council. Nutrient Requirement of Fish. National Academy Press, Washington DC, USA. 114 P.##Pajand, Z.O., Soltani, M., Bahmani, M. and Kamali, A., 2017. The role of polychaete Nereis diversicolor in bioremediation of wastewater and its growth performance and fatty acid composition in an integrated culture system with Huso huso. Aquaculture Research, 48(10): 5271-5279. Doi: 10.1111/are.13340.##Pousso‐Ferreira, P., Machado, M. and Cancela da Fonseca, L., 1995. Marine pond culture in southern Portugal: present status and future perspectives. Cahiers Options Méditerranéennes, 16: 21‐30.##Riisgard, H.U., 1994. Filter-feeding in the polychaete Nereis diversicolor: A review. Netherlands Journal of Aquatic Ecology, 28(3-4):453-458. Doi:0.1007/BF02334216.##Santos, A., Granada, L. Baptista, T., Anjos, C., Simões, T., Tecelão, C., Fidalgo e Costa, P., Costa, J.L. and Pombo, A., 2016. Effect of three diets on the growth and fatty acid profile of the common ragworm Hediste diversicolor (Müller, 1776). Aquaculture, 465: 37-42. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2016.08.022.##Webster, C.D. and Lim, C., 2002. Nutrient requirements and feeding of finfish for aquaculture (1st ed.). CABI Publishing. New York, USA. 418 P. ##

بررسی شیمی رسوبات پیرامون قفس‌‌های پرورش ماهی در منطقه جنوبی دریای خزر (منطقه نوشهر) Investigation of sediment chemistry parameters around the fish cage culture sites in the southern part of the Caspian Sea (Nowshahr region) 1 1 استقرار قفس آبزی‌پروری در مکان مناسب با حداقل اثرات نامطلوب براکوسیستم همراه خواهد بود. لذا، در پایش پرورش ماهی در قفس، کیفیت رسوب بسیار با اهمیت می‌‌باشد. هدف از مطالعه حاضر، بررسی برخی پارامترهای شیمی رسوبات پیرامون قفس‌‌های پرورش ماهی در حوزه جنوبی دریای خزر (منطقه نوشهر) می‌‌باشد. نمونه‌برداری در چهار مرحله از دوره پرورش طی سال 97-1396، در ایستگاه‌‌های سایه قفس، فاصله 200 متر و 1000 متر از قفس‌ها در چهار جهت جغرافیایی انجام پذیرفت. نتایج این تحقیق نشان داد که تغییرات فرم‌های مختلف فسفر از قبیل فسفر جذب سطحی (Loosely-P)، فسفر متصل به آهن (Fe-P)، فسفر متصل به آلومینیم (Al-P)، فسفر قابل دسترس (Bioava.-P)، فسفر متصل به کلسیم (Ca-P)، فسفر معدنی(TIP)، فسفر باقیمانده (Res.-P) و فسفر کل (TP) بترتیب برابر 8/13-2/1، 114-22، 121-12، 211-37، 2170-61، 2223-150، 937-0 و 2283-203 میکروگرم برگرم وزن خشک بوده است. غلظت اشکال مختلف فسفر در رسوبات بترتیب Ca-P> Res.-P >Fe-P>Al-P>Loosely-P ثبت گردید. همچنین تغییرات میزان pH، پتانسیل اکسیداسیون و احیاء (Eh) و درصدکربن آلی (TOC%) بترتیب برابر60/8-05/8 ، (83-)- (67-) و 87/7-36/1 درصد بوده است. این مطالعه نشان داد که در جذب و رهاسازی فسفر جذب سطحی، فسفر متصل به آهن (Fe-P) و فسفر متصل به آلومینیم (Al-P) بترتیب عامل دما، پتانسیل اکسیداسیون احیاء و pH نقش بارزی ایفاء کردند. با مقایسه کربن آلی کل (60/2-97/1 درصد) با حد آستانه‌ای مجاز مشخص گردید که رسوبات منطقه نوشهر در گروه اثرات متوسط آلودگی قرار داشت.   2 The establishment of aquaculture cages in the right place will be associated with the least adverse effects on the ecosystem, so the quality of sediment is very important in monitoring fish cages farming. The aim of this study was to investigate the sediments chemistry parameters around fish cage culture in the southern of Caspian Sea (Nowshahr region). Sampling was conducted in four stages of the breeding period during 2017 and 2018, underneath the cages and at 200m and 1000 m longitudinal distance in four geographical directions from the cages. Based on the results the variations in different forms of phosphorus such as Loosely-P, Fe-P, Al-P, Bioava.-P, Ca-P, TIP, Res.-P and TP were 1.2-13.8, 22-114, 12-121, 37-211, 61-2170, 150-2223, 0-937 and 203-2283 µg/g. dw, respectively. The order of different forms of phosphorous were registered as Ca-P>Res.-P >Fe-P>Al-P>Loosely-P. The variation range of pH, Eh and TOC% were 8.05-8.60, (-63)-(-83) and 1.36-7.87, respectively. The results revealed that temperature, Eh and pH had the main role in the adsorption and release of loosely-P, Fe-P and Al-P. Comparison of 25-75th percentiles of total organic carbon (1.97-2.60%) with permissible threshold showed that the sediments of Nowshahr region can be classified as moderately polluted. 9 19 2019/11/292019/12/26 1398/10/5 2020/03/152020/06/30 1399/4/10 حسن نصراله زاده ساروی Hassan Nasrollahzadeh Saravi پژوهشکده اکولوژی دریای خزر Iran hnsaravi@gmail.com ولی الله محمدزاده Valiallah Mohammadzadeh اداره کل شیلات مازندران Iran mohammadzadehvali@yahoo.com عسگر منعمی Asgar Monemi اداره کل شیلات مازندران Iran asgarmonemi@yahoo.com فریبا واحدی Fariba Vahedi پژوهشکده اکولوژی دریای خزر Iran vahedi_fariba@yahoo.com محمد علی افرایی بندپی Mohammadali Afraei Banpei پژوهشکده اکولوژی دریای خزر Iran mafraei@yahoo.com مهدیه بالویی Mahdiyeh Baloei پژوهشکده اکولوژی دریای خزر Iran m.baloei77@gmail.com آسیه مخلوق Asieh Makhlough پژوهشکده اکولوژی دریای خزر Iran asieh_makhlough@yahoo.com عبداله نصراله تبار Abdollah Nasrollahtabar پژوهشکده اکولوژی دریای خزر Iran tabar_3744@yahoo.com احد احمدنژاد Ahad Ahmadnezhad پژوهشکده اکولوژی دریای خزر Iran ammadnejaahad@yahoo.com غلارضا دریانبرد Gholamreza daryanabard پژوهشکده اکولوژی دریای خزر Iran daryanabard@gmail.com Environmental parameters Surface sediments Fish cage culture Caspian Sea Nowshahr region پارامترهای محیطی رسوبات سطحی پرورش ماهی در قفس دریای خزر منطقه نوشهر ##نصراله تبار، ع.، 1398. بررسی پارامترهای فیزیکی و شیمیایی آب پیرامون قفس های پرورش ماهی درسواحل جنوبی دریای خزر (نوشهر). موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور کد مصوب (98091-022-12-76-24). ##نصراله زاده ساروی، ح.، نصراله تبار، ع.، واحدی، ف.، مخلوق، آ. و پورنگ، ن.، 1395. بررسی مواد مغذی رسوبات در محدوده استقرار قفس های پرورش ماهی واقع در سواحل دریای مازندران (شهرستان کلارآباد). مجله زیست شناسی دریا، 8(31): 34-21. ##نصیری، ر.، 1388. آموزش گام به گام SPSS17. تهران: مرکز فرهنگی نشر گستر. 344 ص.##Abel Shilla, D., Asaeda, T. and Kalibbala, M., 2009. Phosphorus speciation in Myall Lake sediment, NSW, Australia. Wetlands Ecology and Management, 17: 85–91. Doi: 10.1007/s11273-008-9087-5.##Berner, R.A., 1973. Phosphate removal from sea water by adsorption on volcanogenic ferric oxides Earth Planet. Earth and Planetary Science Letters, 18(1): 77–86. Doi: 10.1016/0012-821X(73)90037-X.##Braaten, B., 2007. Cage culture and environmental impacts. Pages 49-91 in A. Bergheim, editor. Aquacultural Engineering and Environment. Research Signpost, Kerala, India. pp. 49-91.##Buschmann, A.H., Cabello, F., Young, K., Carvajal, J., Varela, D.A. and Henriquez, L., 2009. Salmon aquaculture and coastal ecosystem health in Chile: Analysis of regulations, environmental impacts and bioremediation systems. Ocean & Coastal Management, 52(5): 243-249. Doi:10.1016/j.ocecoaman.2009.03.002.##Chang, S.C. and Jackson, M.L., 1957. Fractionation of soil phosphorus. Soil Science, 84: 133–144.##Crawford, C.M., 2003. Environmental management of marine aquaculture in Tasmania, Australia. Aquaculture, 226(1–4): 129-138. Doi: 10.1016/S0044-8486(03)00473-3.##EAO (Environmental Assessment Office of the British Colombia, Canada), 1996. The salmon aquaculture review, final report. http://www.interafish.com/laws-and-regulations/report_bc 14.11.2003.##Holby, O. and Hall, P.O.J., 1991. Chemical fluxes and mass balances in a marine fish cage farm. II. Phosphorus. Marine Ecology Progress Series, 70: 263–272. Doi: 0171-8630/91/0070/0263.##Jimenz E.I. and Garcia V.P., 1992. Relationships between organic carbon and total organic matter in municipal solid wastes and city refuse composts. Bioresource Technology, 41(3): 265-272. Doi: 10.1016/0960-8524(92)90012-M.##Nasrollahzadeh Saravi, H., 2008. Ecological modeling on nutrient distribution and phytoplankton diversity in the southern of the Caspian Sea. Doctoral dissertation, University Science Malaysia. 245 P. ##Nasrollahzadeh Saravi, H., Pourariya, A. and Nowrozi, B., 2015. Phosphorus forms of the surface sediment in the Iranian coast of the Southern Caspian Sea. Caspian Journal of Environmental Sciences, 13(2): 141-151.## ##Niyazi, L., Chaichi M.J., Nasrollahzadeh Saravi, H. and Najafpour, Sh., 2016. Quantification of Individual Phosphorus forms in Surface Sediments of the Southern Caspian Sea-Iranian Coast: A Sequential Extraction Procedure. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 15(2): 677- 686. Doi: 10.18869/acadpub.ijfs.##Pergent-Martini, C., Boudouresque, C.F., Pasqualini, V. and Pergent, G., 2006. Impact of a fish farming facility on a Posidonia oceanica meadow. Marine Ecology, 27: 310–319. Doi:10.1111/j.1439-0485.2006.00122.x.##Pittenger, R., Anderson, B., Benetti, D.D., Dayton, P., Dewey, B., Goldburg, R., Rieser, A., Sher, B. and Sturgulewski, A., 2007. Sustainable marine aquaculture: Fulfilling the promise; managing the risks. Marine Aquaculture Task Force. Available at: www. pewtrusts.org/uploadedFiles/wwwpewtrustsorg/ Reports/Protecting_ocean_life/Sustainable_ Marine_Aquaculture_final_1_07.pdf. Accessed: 27 September 2012.##Porrello, S., Tomassetti, P., Manzueto, L., Finoia, M.G., Persia, E., Mercatali, I. and Stipa, P., 2005. The influence of marine cages on the sediment chemistry in the western Mediterranean Sea. Aquaculture, 2(1-4): 145-158. ## Doi:10.1016/j.aquaculture.2005.02.042.##Psenner, R., Puesko, R. and Sager, M., 1984. Die fractionierung organischer und anorganischer phosphorverbindungen von sedimenten-versucheiner einer definition okologisch wichtiger fractionen. Archive FürHydrobiologie, 10: 115–155.##Samadi-Maybodi, A., Taheri-Saffar, H., Khodadoust, S., Nasrollahzadeh-Saravi, H. and Najafpour, S., 2013. Study on different forms and phosphorus distribution in the coastal surface sediments of Southern Caspian Sea by using UV–Vis spectrophotometry. Spectrochimica Acta, 113: 67–71. Doi:10.1016/j.saa.2013.04.071.##Shakouri, M., 2003. Impact of cage culture on sediment chemistry: A case study in Mjoifjordur. The United Nations University Fisheries Training Programme. Reykjavík, Iceland. Available at: www. unuftp.is/static/fellows/document/mehdiprf03.pdf. Accessed: 01 October 2012. 45 P.##Tsutsumi, H., Srithongouthai, S., Inoue, A., Sato, A. and Hama, D., 2006. Seasonal fluctuations in the flux of particulate organic matter discharged from net pens for fish farming. Fisheries Science, 72: 119- 127. Doi: 10.1111/j.1444-2906.2006.01125.x.##Wang, H.S., Chen, Z.J., Cheng, Z., Du, J., Man, Y.B., Leung, H.M., Giesy, J.P., Wong, C.K.C. and Wong, M.H., 2014. Aquaculture-derived enrichment of hexachloro cyclohexanes (HCHs) and dichloro diphenyl trichloroethanes (DDTs) in coastal sediments of Hong Kong and adjacent mainland China. Science of the Total Environment, 466–467: 214–220. Doi: 10.1016/j.scitotenv.2013.07.027.##Winsby, M., Sander, B., Archibald, D., Daykin, M., Nix, P., Taylor, F.J.R. and Mundy, D., 1996. The environmental effects of salmon net-cage culture in British Colombia. Ministry of Environment, Lands and Parks, Environmental Protection Dept. Industrial Waste/Hazardous Contaminants Branch, Victoria, BC. Canada. 243 P.##Wu, R.S.S., 1995. The environmental impact of marine fish culture: Towards a sustainable future. Marine pollution Bulletin, 31(4-12): 159-166. Doi: 10.1016/0025-326X(95)00100-2.##Yokoyama, H., Takashi, T., Ishihi, Y. and Abo, K., 2009. Effects of restricted feeding on growth of red sea bream and sedimentation of aquaculture wastes. Aquaculture, 286: 80-88. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2008.09.010. ##Zhang, J.Z. and Huang X.L., 2011. Effect of Temperature and Salinity on Phosphate Sorption on Marine Sediments. Environmental Science and Technology, 45(16): 6831-6837. Doi: 10.1021/es200867p. ##

بررسی عملکرد زیستی GnRH نوترکیب به‌‌ عنوان القاء کننده تخم‌‌ریزی در ماهی طلایی (Carassius auratus) Study on biological performance of recombinant GnRH as a spawning – inducing agent for goldfish (Carassius auratus) 1 1 هورمون‌‌های مختلفی برای تکثیر مصنوعی آبزیان در مراکز تکثیر و پرورش استفاده می‌‌شود و یکی از انواع این هورمون‌‌ها، آنالوگ‌‌های مختلفی از هورمون آزاد کننده گنادوتروپین (GnRH) با نام‌‌های تجاری مختلف می‌‌باشد. هدف از این مطالعه بررسی فعالیت زیستی GnRH نوترکیب تولیدی در آزمایشگاه دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری بر القاء و همزمانی اوولاسیون در مولدین ماهی طلایی (Carassius auratus) می‌‌باشد. برای این منظور 20 جفت مولد آماده تکثیر ماهی طلایی از یکی از مراکز  تکثیر و پرورش خریداری شده و به سالن تکثیر و پرورش ماهی گروه شیلات منتقل گردید و بعد از گذراندن دو هفته دوره سازگاری با شرایط آزمایش در 4 گروه آزمایشی تقسیم شدند، سپس به گروه اول، دوم و سوم بترتیب 10، 15 و 20 میکروگرم بر کیلوگرم وزن بدن هورمون GnRH نوترکیب تولیدی به همراه 20 میلی‌‌گرم بر کیلوگرم وزن بدن متوکلوپرامید (آنتی‌‌دوپامین) و به گروه شاهد سرم فیزیولوژی 09/0 درصد به‌‌ همراه 20 میلی‌‌گرم بر کیلوگرم وزن بدن متوکلوپرامید طی یک مرحله تزریق گردید. نتایج نشان داد هورمون GnRH تولیدی قابلیت القاء بلوغ نهایی را در مولدین مورد مطالعه داشته و تمامی گروه‌‌های دریافت کننده این هورمون به مرحله باروری رسیدند، اما هیچیک از مولدین گروه شاهد تخم‌‌ریزی نکردند. دوره تاخیر در مولدین تزریق شده با دوز 20 میکروگرم بر کیلوگرم وزن بدن به طور معنی‌‌داری کمتر از سایر تیمارها بود (05/0>p). در میزان تخم استحصالی و هماروی نسبی اختلاف معنی‌‌داری بین تیمارهای دریافت کننده هورمون GnRH نوترکیب وجود نداشت (05/0<p). از نتایج بدست آمده می‌‌توان استنباط کرد که هورمون GnRH نوترکیب تولیدی فعالیت بیولوژیک مناسبی داشته و می‌‌تواند به‌‌ عنوان یک جایگزین مناسب برای درمان اختلالات تولید مثلی در مولدین پرورشی معرفی گردد. 2 Different hormones are used to induce final sexual maturation in fish breeders and one of these hormones is different analogue of gonadotropin releasing hormone (GnRH) with different trade names. The aim of this study was to evaluate the biological activity of recombinant GnRH produced in the laboratory of Sari Agricultural Sciences and Natural Resources University on the induction and synchronization of ovulation in goldfish broodstock (Carassius auratus).  For this purpose, 20 pairs of mature goldfish were obtained from goldfish breeding centers and transferred to wet laboratory of the Fisheries Department. Fish were acclimated to experimental conditions for 2 weeks then they were divided to 4 treatments. The first, second and third groups received 10, 15 and 20 μg recombinant GnRH/kg body weight, respectively, as well as 20 mg metoclopramide (anti-dopamine)/ kg body weight and control group was injected by physiological saline with 20 mg metoclopramide (0.09% NaCl.) The results showed that the produced recombinant GnRH had the ability to induce final maturation in the studied broodstock and all groups received recombinant GnRH ovulated but none of the control group ovulated. The latency period in the broods injected by dose of 20 μg/kg was significantly lower than the other treatments (p<0.05). There was no significant difference in the total obtained egg and relative fecundity between treatments of recombinant GnRH (p<0.05). The results indicated that the recombinant GnRH has a good biological activity and it can be introduced as a suitable alternative for the treatment of reproductive disorders in goldfish. 21 31 2019/11/292019/12/262019/10/17 1398/7/25 2020/03/152020/06/302020/06/30 1399/4/10 صدیقه محمدزاده sedigheh mohammadzadeh گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران Iran mohammadzadeh.sedigheh@yahoo.com سکینه یگانه S Yeganeh گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران Iran skyeganeh@gmail.com فاطمه مرادیان F Moradian گروه علوم پایه، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران Iran مسعود رکابی M Rekabi گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران Iran Recombinant GnRH hormonal induction Goldfish Carassius auratus GnRH نوترکیب القای هورمونی ماهی طلایی Carassius auratus ##احمدی‌‌فر، ا.، ایمانپور، م.ر.، امینی، ک.، زادمجید، و. و غلامپور، ط.ع.،1394. روش‌‌های محتلف بکارگیری هورمون LHRHa در تکثیر از از فصل جنس نر ماهی قرمز (Carassius autatus, Linnaeus 1758). فصلنامه علمی-پژوهشی بیولوژی کاربردی، دوره 6، شماره 1، صفحات 29 تا 39.##ارجینی، م.، 1388. راهنمای گلدفیش )تکثیر و پرورش، تغذیه و بیماری‌‌ها) انتشارات برهمند. ایران.##رامین، م.، دوستدار، م. و عوفی، ف.، 1396. معرفی ماهی Chaana gachua (Hamilton, 1822) جهت نگه‌‌داری در آکواریوم. مجله آبزیان زینتی، دوره 4، شماره 4، صفحات 18 تا 28. ##رعیت‌‌پیشه، م.ک.، مجازی‌‌امیری، ب.، موسوی‌‌ثابت، ح.، مرادخانی، ز. و محبی، ص.، 1390. بررسی مقایسه‌‌ای اثر ترزیق GnRHa و عصاره هیپوفیز CPE بر القاء و همزمانی اوولاسیون، هماوری نسبی، درصد لقاح، تخمه‌‌گشایی، تلفات و بازماندگی لارو در ماهی طلایی Carassius auratus. مجله پژوهش‌‌های علوم و فنون دریایی، سال 6، شماره 1، صفحات40 تا 48. ##زادمجید، و.، ایمانپور، م.ر.، سوداگر، م. و شعبانی، ع.، 1388. اثرات تزریق هورمون‌‌های GnRHa، HCG و عصاره هیپوفیز روی پارامترهای بیوشیمیایی پلاسمای اسپرمی در ماهی قرمز (Carassius auratus gibelio). مجله زیست شناسی ایران، جلد 22، شماره 2، صفحات 333 تا 342.##سوداگر، م.، صدق‌‌پورثابت، س.، ذکریائی، ح. و دادگر، ش.، 1395. بررسی اثر هورمون‌‌های اواپریم (sGnRHa + دامپریدون)، اوافکت (آنتاگونیست دوپامین + GnRH) و عصاره هیپوفیز بر بازده تکثیر مصنوعی ماهی سفید (Rutilus kutum). پژوهش‌‌های ماهی شناسی کاربردی، دوره 4، شماره 3، صفحات 53 تا 64. ##عبدلی، 1.، 1378. ماهیان آب‌‌های داخلی ایران. موزه حیات وحش ایران. صفحه 376. ##محمدزاده، ص.، یگانه، س.، مرادیان، ف.، فلاحتکار، ب. و میلا، س.، 1398. انتقال و بیان ژن GnRH نوترکیب ماهی در باکتری BL21 E. coli به منظور تولید هورمون نوترکیب. مجله علمی شیلات ایران، سال 28، شماره 3. صفحات 137 تا 148. 10.22092/ISFJ.2019.119131 Doi:##مقدسی، ا. و دندانی، ع.، 1381. اطلس رنگی ماهیان زینتی. چاپ کیمیا، صفحه 212.##Aizen, J., Meiria, I., Tzchoria, I., Levavi-Sivan, B. and Rosenfeld, H., 2005. Enhancing spawning in the grey mullet (Mugil cephalus) by removal of dopaminergic inhibition. General and Comparative Endocrinology, 142: 212-221. Doi: 10.1016/j.ygcen.2005.01.002.##Aizen, J., Hollander-Cohen, L., Shpilman, M. and Levavi-Sivan, B., 2017. Biologically active recombinant carp LH as a spawning-inducing agent for carp. Journal of Endocrinology, 232: 391-402. Doi: 10.1530/JOE-16-0435. ##Andersen, O. and Klungland, H., 1993. The salmon GnRH encoding gene in teleost fish. International Review Cytology, 147: 165-191.##Barrero, M., Small, B.C., Dabramo, L.R., Waldbieser, G.C., Hanson, L.A. and Kelly, A.M., 2008. Effect of carp pituitary extract and luteinizing hormone releasing analog hormone on reproductive indices and spawning of 3-year-old channel catfish. ## North American Journal of Aquaculture, 70: 138-146. Doi: 10.1577/A06-072.1.##Blomenrohr, M., Laak, T.T., Kuhen, R., Beyermann, M., Hund, E., Bogerd, J. and Leurs, R., 2002. Chimaeric gonadotropin-releasing hormone (GnRH) peptides with improved affinity for the catfish (Clarias gariepinus) GnRH receptor. Biochemistry Journal, 361: 515-523. Doi: 10.1042/0264-6021:3610515.##Brzuska, E., 2005. Artificial spawning of carp (Cyprinus carpio L.), differences between females of Polish strain 6 and Hungarian strain W treated with carp pituitary homogenate, Ovopel or Dagin. Aquaculture Research, 36: 1015-1025. Doi: 10.1046/j.1365-2109.1999.00350.x.##Drori, S., Ofir, M., Levavi-Sivan, B. and Yaron, Z., 1994. Spawning induction in common carp (Cyprinus carpio) using pituitary extract or GnRH superactive analogue combined with metoclopramide: analysis of hormone profile, progress of oocyte maturation and dependence on temperature, Aquaculture. 1119: 393-407. Doi: 10.1016/0044-8486(94)90303-4.##Gothilf, Y. and Zohar, Y., 1991. Clearance of different forms of GnRH from the circulation of the gilthead seabream, Sparus aurata, in relation to their degradation and bioactivities. In: (Scott A.P., Sumpter J.P., Kime D.E. and Rolfe M.S) Reproductive Physiology of Fish. Fish Symposium, 91, Sheffield. pp. 35-37##Heyrati, F.P., Mostafavi, H., Toloee, H. and Dorafshan, S., 2007. Induced spawning of kutum, Rutilus frisii kutum (Kamenskii, 1901) using (D-Ala(6), Pro(9)-NEt) GnRHa combined with domperidoen. Aquaculture, 265: 288–293. Doi: 10.1016/j.2006.12.011.##Mohammadzadeh, S., Moradian, F., Yeganeh, S., Falahatkar, B. and Milla, S., 2019. Design, production and purification of a novel recombinant gonadotropin-releasing hormone associated peptide as a spawning inducing agent for fish. Protein Expression and purification, 166: 1-20. Doi: 10.1016/j.pep.2019.105510.##Moradi, V.S., Varamini, P. and Toth, I., 2015. Evaluation of the biological properties and the enzymatic stability of glycosylated luteinizing hormone-releasing hormone analogs. The AAPS Journal, 5: 1135-1143. Doi: 10.1208/s12248-015-9769-x.##Munakata, A. and Kobayashi, M., 2010. Endocrine control of sex behavior in teleost fish. General and Comaparative Endocrinology, 165: 456-468. Doi:10.1016/j.ygcen.2009.04.011.##Mylonas, C.C. and Zohar, Y., 2001. Use of GnRHa-delivery systems for the control of reproduction in fish. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 10: 463-491.Doi: 10.1023/A:1012279814708.##Mylonas, C.C. and Zohar, Y., 2007. Promoting oocyte maturation, ovulation and spawning in farmed fish. In: Babin, P.J., Cerdá, J., Lubzens, E. (Eds.), The Fish Oocyte: from Basic Studies to Biotechnological Applications. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands, pp. 433–470.##Mylonas, C.C., Fostier, A. and Zanuy, S., 2010. Broodstock management and hormonal manipulations of fish reproduction. General and Comparative Endocrinology, 165: 516-534. Doi: 10.1016/j.ygcen.2009.03.007.##Nazari, R.M., Modanloo, M., Ghomi, M.R. and Ovissipor, M.R., 2009. Application of synthetic hormone LHRH-A2 on the artificial propagation of Persian sturgeon Acipenser persicus. Aquaculture International, 18: 837-841. Doi: 10.1007/s10499-009-9304-0.##Okubo, K. and Nagahama, Y., 2008. Structural and functional evolution of gonadotropin releasing hormone in vertebrates. Acta Physiologica, 193: 3-15. Doi: 10.1111/j.1748-1716.2008.01832.##Podhorec, P., Socha, M., Amma, B.I., Sokolowska, M., Brzuska, E., Milla, S., Gosiewski, G., Stejskal, V., Simko, M. and Kouril, J., 2016. The effects of GnRHa with and without dopamine antagonist on reproductive hormone levels and ovum viability in tench Tinca tinca, Aquaculture. 465: 158-163. Doi: .org/10.1016/j.##Targonska, K. and Kucharczyk, K., 2011. The Application of hCG, CPH and Ovopel in Successful Artificial Reproduction of Goldfish (Carassius auratus auratus) Under Controlled Conditions. Reproduction in Domestic Animals, 46: 651-655. Doi: 10.1111/j.1439-0531.2010.01723.x ##Zohar, Y. and Mylonas, C.C., 2001. Endocrine manipulations of spawning in cultured fish: from hormones to genes. Aquaculture, 197: 99-136. Doi: 10.1016/S0044-8486(01)00584-1. ##

تاثیر مکمل بتائین جیره غذایی بر شاخصهای رشد، شاخص‌‌های خون شناسی و مقاومت بچه ماهیان شیزوتراکس (Schizothorax zarudnyi) در برابر تنش شوری Effect of dietary betaine supplementation on growth indices, hematology and resistance of Schizothorax zarudnyi to salinity stress 1 1 هدف از این تحقیق بررسی اثر بتائین بر عملکرد رشد، شاخص‌‌های خون شناسی و مقاومت بچه ماهیان شیزوتراکس (Schizothorax zarudnyi)  به تنش شوری می باشد. بدین منظور، تعداد 120 عدد ماهی با میانگین وزنی 29/0±58/6 به مدت 8 هفته با سطوح صفر (شاهد)، 5/0 درصد، 1 درصد و 2 درصد مکمل بتائین، تا حد سیری، در دو نوبت غذادهی شدند. در انتهای دوره از ماهیان زیست سنجی به عمل آمد و به مدت دو ساعت تحت تنش شوری 20 گرم بر لیتر قرار گرفتند. نتایج نشان داد که اختلاف معنی‌داری در پارامترهای رشد (میانگین وزن و طول نهایی، نرخ رشد ویژه، شاخص وضعیت و ضریب تبدیل غذایی) بین گروه های تحت تیمار و گروه شاهد وجود داشت (05/0>p).  همچنین نتایج به‌‌دست آمده از بررسی عوامل خونی حاکی از بی‌‌اثر بودن بتائین بر میزان هماتوکریت، هموگلوبین، گلبول قرمز و گلبول سفید بود و اختلاف معنی‌‌داری بین تیمارها و شاهد مشاهده نشد )05/0 (p>. مقاومت بچه ماهیان تحت تأثیر بتائین نسبت به تنش شوری بیشتر از شاهد بود. باتوجه به نتایج حاصل از این تحقیق بنظر می‌رسد، بتائین می‌‌تواند موجب افزایش رشد و مقاومت بچه ماهی شیزوتراکس شود. 2 The aim of this study was to investigate of betaine effect on growth performance, hematology and resistance of Schizothorax zarudnyi to salinity stress. For this purpose, 120 fish (6.58±0.29 g) were fed with levels of 0 (control), 0.5% (treatment 1), 1% (treatment 2) and 2% (treatment 3) 2 times per day for 8 weeks. At the end of the period, the fish were biometric and exposed to 20 g. L-1 salinity stress for two hours. Results of this study showed, significant difference in growth parameters (Mean of final weight and length, SGR,CF and FCR) between fish fed betaine supplementation diets and control group (p<0.05). In addition, the results of  blood factors indicated that betaine had no effect on hematocrit, hemoglobin, red and white blood cells count and no significant difference was observed between treatments and control(p>0.05). Resistant to salinity stress in Schizothorax zarudnyi were fed to betaine, was more than the control group. Based on the results of this study, it seems that betaine supplementation diets can increase the growth and resistance of Schizothorax zarudnyi. 33 42 2019/11/292019/12/262019/10/172019/05/19 1398/2/29 2020/03/152020/06/302020/06/302020/06/30 1399/4/10 مصطفی جوانمرد Mostafa Javanmard دانشگاه زابل Iran javadmirdar@gmail.com جواد میردار هریجانی Javad Mirdar harijani دانشگاه زابل Iran javadmirdar@gmail.com احمد قرایی Ahmad Gharaei دانشگاه زابل Iran agharaei551@gmail.com علی ارشدی Ali Arshadi دانشگاه زابل Iran arshadi.ali@gmail.com Betain Schizothorax zarudnyi Salinity stress Growth Indices. بتائین تنش شوری شاخص های رشد Schizothorax zarudnyi ##بابایی، م.، جواهری، م.، علیشاهی، م. و شمسایی، م.، 1394. اثربتافین و سیلی مارین بر شاخص‌های خونی،سرمی و رشد ماهی قزل‌‌ آلای رنگین کمان. دو ماهنامه علمی-پژوهشی تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران. جلد 31(3): 501-489. ##Doi: 10.22092/ijmapr.2015.101906##جباری، ا.، اکرمی، ر. و چیت ساز، ح.، 1396. اثر بتائین به عنوان جاذب غذا بر عملکرد رشد، بازماندگی، ترکیب شیمیایی بدن و مقاومت به استرس در بچه ماهی سفید(Rutilus kutum) ، مجله علمی شیلات ایران. ۲۶(1) :۸۳-۹۲.##Doi: 10.22092/iSFJ.2017.110332##ذبیحی، م.، پورکاظمی، م.، کاظمی، ر. و کمالی، ا.، 1382. تعیین زمان تخم‌ریزی و تغییرات چرخه تولیدمثلی هامون ماهی (Schizothorax zarudnyi) بر مبنای شاخص وزنی گناد، شاخص وزنی کبد و شاخص چاقی. مجله علمی شیلات ایران. 4: 56-41.##سوداگر، م.، آذری تاکامی، ق.، پانوماریف، س. آ.، محمودزاده،ه. عابدیان کناری، ع. و حسینی، س.ع.، 1384. بررسی اثرات سطوح مختلف بتائین و متیونین به عنوان جاذب بر شاخص های رشد و بازماندگی فیل ماهیان جوان، مجله علمی شیلات ایران، 14(2): 50-41.##فتاحی، س.، حسینی، س.ع.، سوداگر،م.، مازندرانی، م. و خانی، ف.،۱۳۹۴. فاکتورهای تغذیه ای، رشد و اثر تنش شوری بر میزان بقا بچه ماهیان کلمه خزر (Rutilus rutilus caspicus) تغذیه شده با سطوح متفاوت بتائین و تریپتوفان، نشریه علوم و فنون شیلات، ۴(2): ۶۵-۷۷.##قرایی، ا.، راهداری، ع. و غفاری، م.، 1390. تکثیر مصنوعی ماهی شیزوتراکس (Schizothorax zarudnyi) با استفاده از هورمون های سنتتیک. مجله علوم و فنون دریایی، 1: 12-1.##محسنی، م.، 1396. کاربرد بتائین در افزایش رشد و بهبود سیستم ایمنی در تغذیه بچه فیل ماهی، فصلنامه علوم آبزی پروری پیشرفته، 1(3): 11-1.##نویدپورآقجه‌مشهد، ف.، میردار هریجانی، ج.، قرایی، ا. و راهداری، ع.، 1394. تأثیرسطوح مختلف پودر تفاله گوجه فرنگی بر فاکتورهای بیوشیمیایی سرم خون و شاخص های رشد در ماهی کپور معمولی Cyprinus carpio Linnaeus,. نشریه علمی پژوهشی پژوهشهای ماهی شناسی کاربردی، ۳(۴): ۱۰۱-۱۱۴.##Akrami, R., Ghelichi, A. and Gharaei, A., 2010. The use of prebiotics in aquaculture. Azadshahr Fisheries, 4(1): 77-84.##Altun, T., Çelik, F., Genç, A., Karadağ, H. and Özlüer Hunt, A., 2005. Effects of betaine on acclimination of tilapia (Oreochromis aureus) to the sea water. The 7th Balkan Conference on Operational Research “BACOR 2005, 2005-05-25, 2005-05-28, Romanya, Türkiye.##Amlund, H. and Berntssen, M.H. G., 2004. Arsenobetaine in Atlantic salmon (Salmo salarL.): influence of sea water adaptation. Comparative Biochemistry and Physiology, Part C, 138: 507-514. Doi: 10.1016/j.cca.2004.08.010##Bayram, H. and Kocaman, E.M., 2017. Gökkuşağı Alabalığı’na (Oncorhynchus mykiss) Uygulanan Formaldehit Banyosunun Bazı Hematolojik Kan Parametreleri Üzerine Etkisi. Alınteri Zirai Bilimler Dergisi, 32(1): 47-53. Doi: 10.28955/alinterizbd.300793##FAO, 2014. FAO statistical databases FAOSTAT. http://faostat3.fao.org/ Accessed 8 Jun 2014.##Hirt-Chabbert, J.A., Skalli, A., Young, O.A. and Gisbert, E., 2012. Effects of feeding stimulants on the feed consumption, growth and survival at glass eel and elver stages in the European eel (Anguilla Anguilla). Aquaculture Nutrition, 18: 152–166. Doi: 10.1111/j.1365-2095.2011.00883.x##Imanpoor, M.R. and Roohi, Z., 2016. Effects of sangrovit-supplemented diet on growth performance, blood biochemical parameters, survival and stress resistance to salinity in the Caspian roach (Rutilus rutilus) fry. Aquaculture Research, 2015: 1-7. Doi: 10.1111/are.12737##Kasper, C.S., White, M.R. and Brown, P.B., 2002. Betaine can replace choline in diets for juvenile Nile Tilapia, Oreochromis niloticus. Aquaculture, 205: 119-126. Doi: 10.1016/S0044-8486(01)00658-5 ##Krogdahl, A., Sundby, A. and Olli, J.J., 2004. Atlantic salmon (Salmo salar) and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) digest and metabolize nutrients differently. Effect of water salinity and dietary starch level. Aquaculture, 229: 335-360. Doi:10.1016/S0044-8486(03)00396-X##Kumar, S., Sahu, N. P., Pal, A.K., Choudhury, D., Yengkokpam, S. and Mukherjee, S.C., 2005. Effect of dietary carbohydrate on haematology, respiratory burst activity and histological changes in (Labeo rohita) juveniles. Fish and Shellfish Immunology, 19: 331–344. Doi: .org/10.1016/j.fsi.2005.03.001##Le Floc'h, N. and Seve, B., 2007. Biological roles of tryptophan and its metabolism: Potential implications for pig feeding. Livestock Science, 112(1-2): 23-32.‌ Doi: org/10.1016/j.livsci.2007.07.002##Lim, L.S., Lai, S.K.J., Yong, A.S.K., Shapawi, R. and Kawamura, G., 2016. Evaluation on the potential of betaine, taurine, nucleotide and nucleoside as feeding stimulant for juvenile marble goby Oxyeleotris marmoratus through behavioural assays. International Aquatic Research, 8: 161–167. Doi: org/10.1007/s40071-016-0131-4##Liu, W., Wen, H., Wei, Q.W., Zhou, J., Jiang, M., Wu, F., Shi, Y., Yang, C.G. and Tian, J., 2014. Effects of dietary dextrin on growth, feed utilization and body composition of juvenile Chinese sturgeon, Acipenser sinensis Gray, 1835. Applied Ichthyology, 30: 1609–1612. Doi: 10.1111/jai.12592##Papatryphon E. and Soares J., 2000. The effect of dietary feeding stimulants on growth performance of striped bass, Morone saxatilis, fed-a plant feedstuff-based diet. Aquaculture, 185: 329-338. Doi: 10.1016/S0044-8486(99)00348-8##Shankar R., Murthy H.S., Pavadi P. and Thanuja K., 2008. Effect of betaine as a feed attractant on growth, survival and feed utilization in fingerlings of the Indian major carp Labeo rohita. The Israeli Journal of Aquaculture, Bemidgeh. 60:95-99. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12421 534##Singer, T.D., Raptis, S., Sathiyaa, R., Nichols, J.W., Playle, R.C. and Vijayan, M.M., 2007.Tissue-specific modulation of glucocorticoid receptor expression in response to salinity acclimation in rainbow trout. Comparative Biochemistry and Physiology, Part B. 146: 271-278. Doi:10.1016/j.cbpb.2006.11.010##Tacon, A.G.J., Cody, J.J., Conquest, L.D., Divakaran, S., Forster, I.P. and Decamp, O.E. 2002. Effect of culture system on the nutrition and growth performance of Pacific whiteshrimp Litopenaeus vannamei (Boone) fed different diets. Aquaculture Nutrition, 8: 121–139. Doi: 10.1046/j.1365-2095.2002.00199.x##Tiril S.U., Alagil F., Yagci F.B. and Aral, O., 2008. Effects of betaine supplementation inplant protein based diets on feed intake and growth performance in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Israeli Journal Aquaculture -Bamidgeh, 60(1): 57-64.##Xue, M. and Cui, Y., 2001. Effect of several feeding stimulants on diet preference by juvenile gibel carp (Carassius auratus gibelio), fed diets with or without partial replacement of fish meal by meat and bone meal. Aquaculture, 198(3-4): 281-292.‌ Doi: 10.1016/S0044-8486 (00)00602-5 ##

مقایسه عملکرد نانو هیدروژل‌‌های گیاهی به عنوان فیلترهای زیستی در جذب نیتریت از پساب مزارع پرورش ماهی Comparison of the performance of plant nano-hydrogels as bio-filters for nitrite uptake from effluent of fish farms 1 1 هدف این بررسی برآورد عملکرد نانو ژل‌‌های گیاهی به عنوان جاذب جدید و به منظور حذف نیتریت با صرف هزینه پایین بود. ابتدا نانو ژل‌‌های گیاهی (نانو باگاس، نانو فیبر عامل‌‌دار شده با کیتوزان و نانو فیبر لیگنوسلولز) را با روش مکانیکی و مکانیسم بالا به پایین آماده نموده به منظور مشخص نمودن بهینه‌‌های جاذب، آزمایش‌‌ در یک سیستم ناپیوسته انجام شد. سپس محاسبات ایزوترم و سنتیک به منظور برآورد ضرایب جذبی انجام گردید. مقدار بهینه وزن جاذب برای هر نانو ژل بترتیب برابر با 1/0 برای نانو باگاس و فیبر لیگنوسلولز و 3/0 گرم برای نانو فیبر اصلاح شده، 4 برای نانو باگاس و فیبر لیگنوسلولز و 5 برای نانو فیبریل اصلاح شده بوده و غلظت اولیه  و زمان برای همه جاذب‌ها 25 میلی‌‌گرم بر لیتر و 60 دقیقه تعیین شد. طبق معادله‌‌های هم دمای جذب بیشترین تطابق با مدل‌‌های لانگمویر، فروندلیش و تمکین و سنتیک مرتبه دوم در نظر گرفته شد. نتایج نشان داد بیشترین راندمان حذف نیتریت مربوط به نانو فیبر عامل‌‌دار شده با میزان حذف 1/93 درصد بود و برای نانو باگاس 51/65 و نانو فیبر لیگنوسلولز 96/68 درصد محاسبه شد. استفاده از نانو ژل‌‌های گیاهی می‌‌تواند در سیستم خروجی پساب مزارع گرمابی به عنوان فیلترهای زیستی کارآمد مورد استفاده قرار گیرد.   2 The aim of this study was to evaluate the performance of plant nano-gels as a new adsorbent and to remove nitrite at low cost. At first, plant nano-gels (nano bagasse, chitosan-functionalized nano-fiber and lignocellulose nano-fiber) were prepared by mechanical and top-down mechanism. Batch system medium was designed to measure the adsorbent optimum. Then isotherm and synthetic were calculated to estimate absorption coefficients. The optimum amount of adsorbent weight for each nano gel was: 0.1 g for nano bagasse and lignocellulose fiber; 0.3 g for modified nano fiber; 4 for nano bagasse and lignocellulose fiber and 5 for modified nano fibril; also initial concentration and the time for all adsorbents was 25 mg /l and 60 min. According to the equilibrium equations, the most consistent were considered with Langmuir, Freundlich and Temkin models. Results showed that the highest nitrite removal efficiency was related to functionalized nano-fiber with 93.1%; for nano-bagasse it was 65.51% and for lignocellulose nano-fiber was 68.96%. Eventually, the plant nano-gels can be used as bio-filters in the effluent system of fish farm. 43 52 2019/11/292019/12/262019/10/172019/05/192019/08/24 1398/6/2 2020/03/152020/06/302020/06/302020/06/302020/02/1 1398/11/12 فاطمه دارابی تبار Fatemeh Darabitabar دانشگاه خرمشهر Iran darabitabar@gmail.com وحید یاوری Vahid Yavari دانشگاه خرمشهر Iran yavarivahid@yahoo.com سید علی اکبر هدایتی Aliakbar Hedayati دانشگاه منابع طبیعی گرگان Iran hedayati@gau.ac.ir محمد ذاکری Mohammad Zakeri دانشگاه خرمشهر Iran zakeri.mhd@gmail.com حسین یوسفی Hossein Yousefi دانشگاه منابع طبیعی گرگان Iran hyousefi@gau.ac.ir Green adsorbent Fish farm waste Nano gel Water resources management نانو ژل جاذب سبز پساب مزارع مدیریت منابع آبی ##حیدری، ح.، فرهادیان، ا. و محبوبی صوفیانی، ن.، 1390. تولید زیست توده و حذف آمونیاک و نیتریت از پساب کارگاه پرورش ماهی به‌وسیله کشت جلبک سبز سندسموس کوادریکوادا. محیط شناسی. 37(59): 28-15.##خداشناس، ع.، هدایتی، ع.، قربانی، ر.، حسینی، ی. و سقلی، م.، 1396. کارآیی لاگون در کاهش بار آلودگی پساب خروجی مجتمع پرورش میگوی گمیشان، استان گلستان. مجله علمی شیلات ایران. 26(2): 167-163.##رستگار، س.، رضایی، ح. و یوسفی، ح.، 1397. بررسی کارایی جاذب نانوفیبرلیگنوسلولزی در حذف سرب از محلول های آبی. مجله صنایع چوب و کاغذ ایران. 9(2): 262-251.##شکوه سلجوقی، ز.، ملکپور، آ.، رفیعی، ج.، ایمانی، آ. و بختیاری، م.، 1390. حذف نیترات و نیتریت ازسیستم مداربسته آبزی پروریبا بنتونیت اصلاح شده. مجله آب و فاضلاب. 22: 54-46.##کنیه، ف.، زراعت پیشه، ف. و حسن احمدی، ا.، 1397. بررسی کارایی حذف آمونیاک از پساب مزارع پرورش قزل آلای رنگین کمان توسط زغال لیلکی، اسکلت مرجان و پشم فولاد. مجله علمی شیلات ایران. 27(6): 56-47. Doi: 10.22092/isfj.2019.118389##Azadbakhsh, P., Pourzamani, H., Jafari Petroudy, R. and Bina, B., 2017. Removal of nitrate from aqueous solution using nanocrystalline cellulose. International Journal of Environmental Health Engineering, 5: 1-6. Doi: 10.4103/2277-9183.190643##Dong, F., Jin, L., Liu, Z., Zho, K., Zou, H. and Wang, X., 2016. Effect of nanocellulose/chitosan composite coatings on cucumber quality and shelf life. Toxicological and Environmental Chemistry, 98: 450-461. Doi: 10.1080/02772248.2015.1123488##Feng, D., Yan, M.L. and Li, C.J., 2014. Preparation and Properties of Chitosan/Nanocellulose Composite Films for Food Packaging. Asian Journal of Chemistry, 26: 5895-5898. ## Doi: 10.14233/ajchem.2014.18312##Guilherme A., Dantas, P., Santos, E., Fernandes, F. and Macedo, G., 2015. Evaluation of composition, characterization and enzymatic hydrolysis of pretreated sugar cane bagasse. Brazilian Journal of Chemical Engineering, 32: 23-33.## ## Doi: 10.1590/0104-6632.20150321s00003146##Hadilam, M., Afra, E. and Yousefi, H., 2013. Effect of cellulose nanofibers on the properties of bagasse paper. Quarterly Journal of Forest and Wood Products. pp. 351-366. Doi: 10.22059/JFWP.2013.36119##Hafshejani, L.D., Hooshmand, A., Naseri, A.A., Mohammadi, A.S., Abbasi, F. and Bhatnagar, A., 2016. Removal of nitrate from aqueous solution by modified sugarcane bagasse biochar. Ecological Engineering, 95: 101-111. Doi: 10.1016/j.ecoleng.2016.06.035##Hashemi, M., Naseri, A.A. and Takdastan, A., 2017. Investigation of the sugarcane bagasse adsorbent efficiency for nitrate removal from agricultural outflow drainage. Irrigation Sciences and Engineering, 40: 1-10. Doi: 10.22055/JISE.2017.13319##Kumar, P.A., Chakraborty, S. and Ray, M., 2008. Removal and recovery of chromium from wastewater using short chain polyaniline synthesized on jute fiber. Chemical Engineering Journal, 141: 130-140. Doi: 10.1016/j.cej.2007.11.004##Lalvanti, S., Wiltowski, T., Murphy, D. and Lalvani, L., 1997. Metal removal from process water by lignin. Environmental Technology, 18: 1163-1168. Doi: 10.1080/09593331808616636##Norisepehr, M., Golbaz, S. and Jarghi, S., 2013. Comparision of chitosan function as adsorbent for nitrate removal using synthetic aqueous solution and drinking water. Journal of Environmental Health Engineering, 1: 11-19. Doi: 10.18869/acadpub.jehe.1.1.11##Samadani Langeroodi, N., Tahery, F. and Mehrani, S., 2015. Thermodynamic and kinetic investigation of citric acid adsorption by rice bran. Nova Biologica Reperta, 2: 166-175. Doi: 10.21859/acadpub.nbr.2.3.166##Vesali-Naseh, M.R., Mvin, A. and Abdollahi, E., 2017. Copper removal from industrial wastewater using acrylic-based wheat bran/montmorillonite hydrogel. Journal of Health System Research, 13: 230-235. Doi: 10.4172/2375-4397.1000180##Wegner, T.H. and Jones, P.E., 2006. Advancing cellulose-based nanotechnology. Cellulose, 13: 115-118. DOI:10.1007/s10570-006-9056-1 ##

مقایسه تطبیقی خصوصیات فیزیکوشیمیایی ژلاتین استخراج شده از فانوس ماهی Benthosema pterotum Alcock, 1890) ) و ژلاتین گاوی Comparative comparison of physicochemical properties of gelatin extracted from lanternfish (Benthosema pterotum, Alcock 1890) and Bovine Gelatin 1 1 در این مطالعه برای نخستین بار ژلاتین فانوس ماهی (Benthosema pterotum Alcock, 1890)، با هدف استفاده بهینه از این صید جانبی ارزشمند استخراج گردید. ترکیبات (رطوبت، خاکستر، پروتئین)، قدرت ژلی، دمای ژل شدن و دمای ذوب شدن ژلاتین استخراج شده، بررسی و با خواص ژلاتین تجاری گاوی موجود در بازار، مقایسه شد. دو نمونه ژلاتین مورد بررسی همچنین از لحاظ خصوصیات رنگی با یکدیگر مقایسه شدند. میزان رطوبت و خاکستر ژلاتین فانوس ماهی در مقایسه با ژلاتین گاوی به طور معنی‌داری بیشتر بود. رطوبت و خاکستر ژلاتین فانوس ماهی بترتیب برابر با 1/0±2/8 % و 1/0±2/3 % اندازه‌گیری شد. میزان پروتئین ژلاتین گاوی به طور معنی‌داری بالاتر از میزان پروتئین ژلاتین فانوس ماهی و برابر با 1/0±7/91 % اندازه‌گیری شد، در حالی که میزان پروتئین ژلاتین فانوس ماهی برابر با 1/0±3/86 % بود (p<0/05). دما و زمان ذوب ژلاتین فانوس ماهی (5/0±23 درجه سانتی‌گراد، 0/2±135 ثانیه) ، به دلیل کم بودن مقدار هیدروکسی‌پرولین در آن، به طور معنی‌داری پایین‌تر از دما و زمان ذوب ژلاتین گاوی بود (5/0±26 درجه سانتی‌گراد، 0/1±150 ثانیه) که در کل از مزایای ژلاتین ماهی می‌باشد (p<0/05). اختلاف معنی‌داری بین قدرت ژلی ژلاتین فانوس ماهی (00/1±45 گرم) و ژلاتین گاوی (2/1±240 گرم) مشاهده شد (p<0/05). ژلاتین گاوی از لحاظ فاکتورهای رنگی، در مقایسه با ژلاتین استخراج شده از فانوس ماهی، دارای کیفیت بهتر بود. در مجموع، از ژلاتین فانوس ماهی می‌توان به عنوان یک منبع اقتصادی و حلال در بسیاری از صنایع، با رویکرد بیوتکنولوژی، به جای ژلاتین خوک و گاو استفاده کرد. 2 In this study, for the first time, lanternfish gelatin (Benthosema pterotum Alcock, 1890) was extracted and the composition (moisture, ash, protein), gel strength, gelling and melting temperature of extracted gelatin was investigated and compared with those of the commercial bovine gelatin purchased from market. The two gelatin samples were also compared in terms of color properties. Moisture and ash content of lantern fish gelatin were significantly higher than commercial gelatin. The result of measurement indicates that moisture and ash content of lantern fish gel were 8.2±0.1% and 3.2±0.1%, respectively. Protein content of the bovine gelatin (91.71±0.1 %) was significantly higher than lantern fish gelatin (86.3±0.1 %) (p<0.05). The gelling temperature and gelling time of the lantern fish gelatin (135 sec±2.0, 23±0.5°C), due to its low hydroxyproline content, was significantly lower than bovine gelatin (150 Sec±1.0, 26±0.5°C) which is due to fish gelatin nature. A significant difference between the gel strength of lantern fish (45±1.00 gr) and bovine gelatin (240±1.2 gr) was observed (p<0.05) and also bovine gelatin had better quality in terms of color factors than the gelatin extracted from lantern fish. Overall, lantern fish gelatin can be used in many biotechnological industries, as an economical and halal gelatin source, instead of pig and bovine gelatin.   53 63 2019/11/292019/12/262019/10/172019/05/192019/08/242019/08/17 1398/5/26 2020/03/152020/06/302020/06/302020/06/302020/02/12020/03/3 1398/12/13 فهیمه عسگر زاده Fahimeh Asgarzadeh دانشگاه آزاد اسلامی Iran asgarzadeh.fahimeh@gmail.com مریم عطایی mMaryam aAtaee دانشگاه آزاد اسلامی Iran Dr.maryat@gmail.com نسرین چوبکار Nasrin Choobkar دانشگاه آزاد کرمانشاه Iran nchoobkar20@gmail.com Gelatin Benthosema pterotum Physicochemical properties Gel strength By products ژلاتین Benthosema pterotum خواص فیزیکوشیمیایی قدرت ژلی محصول جانبی ##ﺍﺳﺘﺎﻧﺪﺍﺭﺩ ﻣﻠﻲ ﺍﻳﺮﺍن، 1397. ژلاتین مورد مصرف در صنایع غذایی - ویژگی‌ها و روش‌های آزمون، 3474.##اسکندری، ز.، جعفرپور، س.ع. و معتمدزادگان، ع.، 1397. استخراج ژلاتین به کمک آبکافت آنزیمی از پوست فیل ماهی (Huso huso) به روش بهینه‌یابی سطح پاسخ (RSM)، مجله علمی شیلات ایران، 27: 47-57. Doi: 117817.2018.ISFJ/22092.10##تقی‌زاده اندواری، ق. و رضائی، م.، 1391. اثر پوشش ژلاتین همراه با اسانس دارچین بر دوره ماندگاری فیله ماهی قزل‌آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) در دمای یخچال. مجله علمی شیلات ایران، 21: 13-24. Doi: 10.22092/ISFJ.2017.110035##Andre, F. and Cavagnas, A.C., 2003. Gelatin prepared from tuna skin: a Risk Factor For Fish allergy or sensitize. International Archives of Allergy and Immunology, 130: 17-24. Doi: 10.1159/000068370.##Boran, G., Mulvaney, S.J. and Regenstein, J.M., 2010. Rheological Properties of Gelatin from Silver Carp Skin Compared to Commercially Available Gelatins from Different Sources. Journal of Food Science, 75: 565-571. Doi: 10.1111/j.1750-3841.2010.01543.##Dinçer, M.T., Erdem, O.A. and Ucok, M.C., 2016. Comparison of recovered carp scales Cyprinus carpio) gelatin and commercial calf and pork skin gelatins. Ege Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 33: 335-341. Doi: 10.12714/egejfas.2016.33.4.05. ##Djagnya, K.B., Wang, Z. and Xu, Sh., 2001. Gelatin: A Valuable Protein for Food and Pharmaceutical Industries: Review. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 41: 481-492. Doi: 10.1080/20014091091904. ##Eysturskarð, J., Haug, I.J., Elharfaoui, N., Djabourov, M. and Draget, K.I., 2009. Structural and mechanical properties of fish gelatin as a function of extraction conditions. Food Hydrocolloids, 23: 1702-1711. Doi: 10.1016/j.foodhyd.2009.01.008. ##Francis, F.J., 2000. Wiley encyclopedia of food science and technology. Gelatin. John Wiley & Sons, West Sussex. pp. 1183-1188. ##Gelatin Manufactureers Institute of America (GMIA), 2013. Standard testing methods for edible gelatin.##Gómez-Guillen, M.C., Turnay, J., Fernandez-Diaz, M.D., Ulmo, N., Lizarbe, M.A. and Montero, P., 2002. Structural and physical properties of gelatin extracted from different marine species: a comparative study, Food Hydrocolloids, 16: 25-34. Doi: 10.1016/S0268-005X (01)00035-2 ##Gómez-Guillén, M.C., Ihl, M., Bifani, V., Silva, A. and Montero, P., 2007. Edible films made from tuna-fish gelatin with antioxidant extracts of two different murta ecotypes leaves (Ugni ## molinae Turcz). Food Hydrocolloids, 21: 1133-1143. Doi: 10.1016/j.foodhyd.2006.08.006 ##Hall, G.M., 2011. Fish Processing - Sustainability and New Opportunities. John Wiley & Sons, West Sussex, pp. 244-250. Doi: 10.1002/9781444328585.ch6 ##Jamilah, B. and Harvinder, K.G., 2002. Properties of gelatins from skins of fish-black tilapia (Oreochromis mossambicus) and red tilapia (Oreochromis nilotica). Food Chemistry, 77: 81-84. Doi: 10.1016/S0308-8146(01)00328-4. ##Jayathilakan, K., Sultana, K., Radhakrishna, K. and Bawa, A., 2012. Utilization of byproducts and waste materials from meat, poultry and fish processing industries: a review. Journal of Food Science and Technology, 49: 278-293. Doi: 10.1007/s13197-011-0290-7. ##Johanna, M.T. and Miang, H.L., 2008. Effects of gelatine type and concentration on the shelf-life stability and quality of marshmallows. International Journal of Food Science and Technology, 43: 1699-1704. Doi: 10.1111/j.1365-2621.2008.01756.x ##Karim, A. and Bhat, R., 2008. Gelatin alternatives for the food industry: recent developments, challenges and prospects. Trends in Food Science & Technology, 19: 644-656. Doi: 10.1016/j.tifs.2008.08.001. ##Lubbers, S. and Guichard, E., 2003. The effects of sugars and pectin on flavor release from a fruit pastille model system. Food Chemistry, 81: 269-273. Doi: 10.1016/S0308-8146(02)00422-3 ##Mirzapour Kouhdasht, A., Moosavi-Nasab, M. and Aminlari, M., 2018. Investigation of Characteristics of Gelatin Produced From common carp (Cyprinus carpio) Wastes by Enzymatic Hydrolysis. Iranian Journal of Nutrition Sciences & Food Technology, 13: 105-113. Doi: 10.1007/s13197-018-3449-7 ##Morimura S., Nagata H., Uemura Y., Fahmi A., Shigematsu T. and Kida, K., 2002. Development of an effective process for utilization of collagen from livestock and fish waste. Process Biochemistry , 37: 1403-1412. Doi: 10.1016/s0032-9592(02)00024-9 ##Muyonga, J.H., Cole, C.G. and Duodu, K.G., 2004. Extraction and physico-chemical characterisation of Nile perch (Lates niloticus) skins and bone gelatin. Food Hydrocolloids, 18: 581-592. Doi: 10.1016/j.foodhyd.2003.08.009. ##Pearson, A.M., Dutson, T.R. and Bailey A.J., 1987. Advances in meat research: Collagen as food. Van Nostrand Reinhold Company, Inc. USA, pp. 209-222. Doi: 10.1007/978-94-011-5939-5 ##Piotr P.L., 2004. Water as the determinant of food engineering properties. A review, Journal of Food Engineering, 61: 483-495. Doi: 10.1016/S0260-8774(03)00219-X ##Rahman, M.S. and Al-Mahrouqi, A.I., 2009. Instrumental texture profile analysis of gelatin gel extracted from grouper skin and commercial (bovine and porcine) gelatin gels, International Journal of Food Sciences and Nutrition, 60: 229-242. Doi: 10.1080/09637480902984414 ##Ratnasari, I., Sudarminto, S.Y., Nusyam, H., Simon, B. and Widjanarko, E., 2014. Extraction Process Modification to Enhance Properties of Skin Gelatin of pangas catfish (Pangasius pangasius). Food and Public Health, 4: 140-150. ## Doi: 10.5923/j.fph.20140403.09 ##Schreiber, R. and Gareis, H., 2007. Gelatin handbook. Weinhem: Wiley-VCH GmbH and Co, Germany. pp. 45-117. Doi: 10.1002/9783527610969 ##Supavititpatana, P., Wirjantoro, T.I., Apichartsrangkoon, A. and Raviyan, P., 2008. Addition of gelatin enhanced gelation of corn–milk yogurt, Food Chemistry, 106: 211-216. Doi: 10.1016/j.foodchem.2007.05.058. ##Tan, J.M. and Lim, M.H., 2008. Effects of gelatine type and concentration on the shelf-life stability and quality of marshmallows. International Journal of Food Science and Technology, 43: 1699-17.04. Doi: 10.1111/j.1365-2621.2008.01756 ##Trindade, A., Fonseca, G.G., Balbinot, E. and Prentice, C., 2013. Characterization of wami tilapia (Oreochromis urolepis hornorum) skin gelatin: microbiological, rheological and structural properties. Food Science and Technology International, 20: 373-381. Doi: 10.1177/1082013213488776 ##Uriarte, M.H., Ortega, S.H., Cinco-Moroyoqui, F.J., Sandez, R.O., Jatomea, P.M. and Ezquerra-Brauer, J.M., 2011. Giant squid skin gelatin: Chemical composition and biophysical characterization. Food Research International, 44: 3243-3249.## Doi: 10.1016/j.foodres.2011.08.018.##Valinassab, T., Pierce, J. and Johannesson, K., 2006. Lantern fish (Benthosema pterotum) resources as a target for commercial exploitation in the Oman Sea. J. Appl. Ichthyol. 23: 573–577. Doi: 10.1111/j.1439-0426.2007.01034.##Wasswa, J., Tang, J. and Gu, X., 2007. Utilization of Fish Processing By-Products in the Gelatin Industry. Food Reviews International, 23: 159-174. Doi: 10.1080/87559120701225029.##Zahuranec, B., Karuppasamy,P.K., Valinassab,T., Kidwai, S., Bernardi, J. and Bernardi, G. 2012. Cryptic speciation in the mesopelagic environment: Molecular phylogenetics of the lanternfish genus Benthosema. Marine Genomics, 7: 7-10. Doi: 10.1016/j.margen.2012.05.001. ##

تعیین متوسط غلظت کشنده علف‌کش بن‌سولفورون ‌متیل در ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) Determination of median lethal concentration of herbicide Bensulfuron methyl in common carp (Cyprinus carpio) 1 1 بن‌سولفورون ‌متیل یکی از سموم علف‌کش پرکاربرد است که در مزارع کشاورزی بویژه مزارع برنج مورد استفاده قرار می‌گیرد. تحقیق حاضر برای اولین بار میزان سمیت بن‌سولفورون ‌متیل را در ماهی کپور معمولی  مورد بررسی قرار داده است. به این منظور، برای تعیین میزان محدوده کشندگی بن‌سولفورون ‌متیل، ماهی‌های کپور معمولی به طور تصادفی در 8 گروه در معرض غلظت‌های 0، 01/0، 05/0 ،1/0، 5/0، 1، 2 و 4 گرم در لیتر بن‌سولفورورون متیل قرار گرفتند و در زمان‌های 24، 48، 72 و 96 ساعت میزان تلفات ماهیان ثبت شد. پس از تعیین محدوده کشندگی، ماهیان به طور تصادفی در 5 گروه در سه تکرا ر در معرض غلظت‌های 0، 2/1، 4/1، 6/1 و8/1 گرم در لیتر بن‌سولفورون ‌متیل  قرار گرفتند و در زمان‌های 24، 48، 72 و 96 ساعت میزان تلفات ماهیان ثبت شد. داده‌های بدست آمده با استفاده از روش آنالیز آماری پروبیت با نرم افزار SPSS مورد بررسی قرار گرفت و مقادیر (LC1-99) شامل LC1، LC10، LC30، LC50، LC70، LC90 و LC99  محاسبه گردید. نتایج نشان داد تلفات ماهیان با افزایش غلظت بن‌سولفورون ‌متیل و افزایش زمان آزمایش افزایش یافت و میزان غلظت کشنده بن‌سولفورون ‌متیل در ماهی کپور معمولی با افزایش مدت زمان آزمایش کاهش یافت بطوریکه میزان متوسط غلظت کشنده در زمان‌های 24، 48، 72 و 96 ساعت بترتیب 86/1، 82/1، 75/1 و 62/1 گرم در لیتر بدست آمد. در این مطالعه میزان حداکثر غلظت مجاز، غلظت غیرموثر و حداقل غلظت موثر علف کش بن‌سولفورون متیل بترتیب 162/0 ، 162/0 و 41/1 گرم در لیتر محاسبه گردید.   2 Bensulfuron methyl is one of the most widely used herbicide which is used in agricultural fields, especially rice fields. The present study investigated the toxicity of Bensulfuron methyl in Cyprinus carpio for the first time.  To this aim, in order to determine the range Finding Test of Bensulfuron methyl, the fishes were randomly divided into 8 groups including 0, 0.01, 0.05, 0.1, 0.5, 1, 2 and 4 g/l Bensulfuron methyl and fish mortality was recorded at 24, 48, 72 and 96 hours. After determination of the range Finding Test, the fishes were randomly divided into 5 groups in three replicates at concentrations of 0, 1.2, 1.4, 1.6 and 1.8 g/l of Bensulfuron methyl and the fish mortality were recorded at 24, 48, 72 and 96 hours. Then, the data were analyzed using Probit analysis by SPSS software and LC1-99 including LC1, LC10، LC30، LC50، LC70، LC90 were calculated. The results showed that fish mortality increased with increasing concentration of Bensulfuron methyl and exposure duration, and the lethal concentration of Bensulfuron methyl decreased with increasing exposure duration. So that, the LC50 at 24, 48, 72 and 96 hours were 1.86, 1.82, 1.75 and 1.62 g /l, respectively. In this study Maximum Allowable Toxicant Concentration (MAC), No Observed Effect Concentration (NOEC) and Lowest Observed Effect Concentration (LOEC) of Bensulfuron methyl were calculated 0.162, 0.162 and 1.41 g/l, respectively. 65 72 2019/11/292019/12/262019/10/172019/05/192019/08/242019/08/172019/10/4 1398/7/12 2020/03/152020/06/302020/06/302020/06/302020/02/12020/03/32020/04/19 1399/1/31 فاطمه رحمانی خانقاهی Fatemeh Rahmani khanqahi دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران Iran frahmani865@gmail.com شیلا امیدظهیر Shila Omidzahir دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران Iran sh.omidzahir@umz.ac.ir عبدالعلی موحدی نیا Abdolali Movahedinia دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران Iran amovahedinia@yahoo.com مریم آخوندیان Maryam Akhoundian دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران Iran makhoundian@umz.ac.ir Bensulfuron methyl Toxicology Fish LC50 Cyprinus carpio بن‌سولفورون ‌متیل سم شناسی ماهی LC50 Cyprinus carpio ##پیری زیرکوهی، م.، نظامی بلوچی، ش. و امینی رنجبر، غ.، 1375. بررسی اثرات سموم دیازینون، مالاتیون، بوتاکلر و ساترن روی مرگ و میر ماهی سفید، مرکز تحقیقات شیلات ایران، صفحات4-6.##دهقانی، ر.، لیمویی، م. و زرقی، ا.، 1391. بررسی تاثیرات زیانبار آفت کش ها با تاکید بر مساله مقاومت در بندپایان حایز اهمیت بهداشتی (مقاله مروری). مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی کردستان، (1)17: 100-84. ##نفیسی بهابادی، م.، دادگر، ش.، لکزائی، ف.، مهاجری برازجانی، ژ. و عبداللهی، ر.، 1395. تأثیر غلظتهای تحت حاد علف‌کش بوتاکلر بر برخی پارامترهای خونی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران (2)25: 160-151. ##نقشبندی، ن. و عسکری، ح.، 1396. مطالعه تاثیر سم کشاورزی گلایفوزیت بر برخی فاکتورهای خونی و تغییرات رفتاری ماهی کپور معمولی. فصلنامه سلامت و محیط زیست (2)10: 186-175. ##واحدی، ع.، یونسی الموتی، م. و شریفی مالواجردی، ا.، 1397. بررسی وضعیت موجود و تعیین شاخص‌های مکانیزاسیون برنج (مطالعه موردی در استان مازندران). تحقیقات سامانه‌ها و مکانیزاسیون کشاورزی، (2)70: 40-19.##Di Giulio, R.T. and Hinton, D.E., 2008. The Toxicology of Fishes. Taylor & Francis. pp. 319-884.##FAO, 2002. Specification and evaluations for plant protection products: Bensulfuron-methyl. 22 P.##Gray, M.R., 1995. Fundamentals of aquatic toxicology. Taylor and Francis Pub. Washington, USA, pp. 28-29.##Mattews, G., 2006. Pesticides health, safety and the environment. Blackwell Publishing: London, UK. pp. 1-31.##Milijoprojekt, N., 1994. Ecotoxicological evolution of industrial wastewater. 254 P.##Moore, M.T., Pierce, J.R., Milam, C.D., Farris, J.L. and Winchester, E.L., 1998. Responses of non-target aquatic organisms to aqueous propanil exposure. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. 61(2): 169-74. Doi:10.1007/s001289900744.##Newman, M.C. and Clements, W.H., 2008. Ecotoxicology: A comprehensive treatment. USA: CRC, Press. 852 P.##OECD, 1992. Guidelines for testing chemicals. No. 203 and 204. OECD, Paris. 11 P.##Okamoto, Y., Fisher, R.L., Armbrust, K.L. and Peter, C.J., 1998. Surface water monitoring survey for bensulfuron-methyl applied in paddy fields. Journal of Pesticide Science, 23: 235–240. ## Doi: 10.1584/jpestics.23.235.10.1584##Sabater, C., Cuesta, A. and Carrasco, R., 2002. Effects of bensulfuron-methyl and cinosulfuron on growth of four freshwater species of phytoplankton. Chemosphere, 46(7): 953-960. Doi:10.1016/s0045-6535(01)00179-5. ##Saeki, M. and Toyota, K., 2004. Effect of bensulfuron-methyl (a sulfonylurea herbicide) on the soil bacterial community of a paddy soil microcosm. Biology and Fertility of Soils, 40(2): 110-118. Doi: 10.1007/s00374-004-0747-1. ##Sancho, E., Fernández-Vega, C., Andreu, E. and Ferrando, M.D., 2009. Effects of propanil on the European eel Anguilla anguilla and post-exposure recovery using selected biomarkers as effect criteria. Ecotoxicology and Environmental Safety. 72(3): 704-13. ## Doi:10.1016/j.ecoenv.2008.09.008.##Singh, D.P., Khattar, J.I.S., Kaur, G. and Singh, Y., 2016. Toxicological impact of herbicides on cyanobacteria. Annual Research & Review in Biology, 9(4): 1. Doi: 10.9734/ARRB/2016/22614.##Yu, J., Xu, E.G., Ren, Y., Jin, S., Zhang, T., Liu, J. and Li, Z., 2017. Mixture toxicity of bensulfuron-methyl and acetochlor to red swamp crayfish (Procambarus clarkii): Behavioral, morphological and histological effects. International Journal of Environmental Research and Public Health, 14(12): 1466. ## Doi:10.3390/ijerph14121466. ##

بررسی تاثیر مانسون زمستانه بر تنوع دوکفه ای های (Bivalves) مناطق زیر جزرومدی سواحل شمالی دریای مکران (رمین، بریس، پسابندر) The study of the effect of winter monsoon on the diversity of bivalves in the subtidal areas of the northern coast of the Makoran Sea (Ramin-Beris-Passabender) 1 1 دریای عمان(مکران) همواره تحت تأثیر جریانات مانسون بوده و این پدیده یک عامل تنش‌‌زای طبیعی برای گونه‌‌های ساکن در بوم سامانه آبی از جمله نرمتنان دوکفه‌‌ای، بشمار می‌‌رود. برای مطالعه تنوع دوکفه ایهای زیرجزرومدی نمونه گیری از سه منطقه رمین، بریس و پسابندر، در مجموع 10 ایستگاه، در پیش مانسون،مانسون و پس مانسون زمستانه سال 1396 صورت گرفت. در این پژوهش 8 خانواده از جوامع دوکفه‌ای شناسایی شدند که خانواده Veneridae در هر سه دوره زمانی دارای بیشترین فراوانی بود با توجه به نتایج، فراوانی دوکفه‌‌ای‌‌ها در دوره پس مانسون با 19/46 درصد (فراوانی 11400عدد برمترمربع)  نسبت به دوره پیش مانسون 06/27 درصد (فراوانی 6660عدد برمترمربع) و نیز دوره مانسون با 74/26 درصد (فراوانی 6680عدد برمترمربع) بالاتر بود که آزمون آنالیز واریانس اختلاف معنی داری را نیز نشان داد. میانگین شاخص شانون در پیش مانسون، مانسون و پس مانسون بترتیب 04/0±22/2، 1/0±21/2، 11/0±51/2 محاسبه شد و اختلاف معنی‌‌داری بین دوره های مختلف مشاهده شد (05/0p˂). میانگین شاخص غالبیت در پیش مانسون، مانسون و پس مانسون بترتیب 06/0±86/0، 05/0±86/0، 01/0±9/0 محاسبه شد و بین دوره پس مانسون با سایر دوره‌‌ها اختلاف معنی‌دار آماری مشاهده شد (05/0p˂). میانگین شاخص یکنواختی در پیش مانسون، مانسون و پس مانسون بترتیب 01/0±959/0، 02/0±951/0، 01/0±948/0 محاسبه شد و این اختلاف بین دوره مانسون و پیش مانسون معنی‌دار نبود (05/0p>).  به طور کلی، عوامل مختلفی به عنوان پارامترهای کنترل کننده‌‌ فراوانی و تنوع اجتماعات دوکفه‌‌ای‌های مناطق و ایستگاه‌‌های مختلف در آبهای ساحلی خلیج چابهار محسوب می‌‌شوند که از جمله‌‌ مهمترین آنها  می‌‌توان به زمان نمونه‌‌برداری و جریان مانسون زمستانه اشاره کرد. احتمالاً، شدت اختلاط بستر تحت تاثیر پدیده مانسون زمستانه در مناطق مختلف، تغییرات تراکم دوکفه‌‌ای‌‌ها را در مناطق مورد مطالعه در پی داشته است. 2 The Oman Sea (Makoran) has always been influenced by the monsoon currents, and this phenomenon is a natural stressor for species inhabiting the marine ecosystem, including bivalve molluscs. To study the diversity of subterranean bivalves sampled from three areas of Ramin, Beris, and Pasabandar, a total of 10 stations, in the winter of Pre-Manson, Mansoon and Post Mansoon in 2018. In this study, 8 families of bivalve communities were identified that the Veneridae family had the highest frequency in all three time periods. According to the results, in post-monsoon bivalves were higher with 46.19% abundance (11400 abundance) than premonsoon month, 27.06% (6660 abundance) and the monsoon period with 26.74% abundance (26.74%) 6680 m2), which also showed significant difference analysis of variance. The mean of Shannon index in pre-monsoon, monsoon and post-monsoon were calculated 2.22±0.04, 2.21±0.1 and 2.51±0.11, respectively, but no significant differences were observed between different periods. Mean dominance index observed in pre-monsoon, monsoon and post-monsoon was calculated 0.86±0.06, 0.86±0.05, 0.9± 0.01, and between post-monsoon and other periods, respectively. The mean eveness index was calculated as 0.959±0.01,0.951±0.02,0.948±0.01 and the difference between the monsoon and pre-monsoon periods were not significant. In general, it can be said that various factors are considered as parameters controlling the abundance and diversity of bivalve communities of different regions and stations in the coastal waters of Chabahar Bay, including the most important ones. It can be noted the sampling time and the winter monsoon current. 73 82 2019/11/292019/12/262019/10/172019/05/192019/08/242019/08/172019/10/42019/11/2 1398/8/11 2020/03/152020/06/302020/06/302020/06/302020/02/12020/03/32020/04/192020/06/30 1399/4/10 مهران لقمانی Mehran Loghmani دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار Iran loghmani.mehran@gmail.com پروین صادقی Parvin Sadeghi دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار Iran parvin.sadeghi@gmail.com نورمحمد صفایی Noormohammad Safaei دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار Iran noor.safaei1@gmail.com Bivalve mollusc Density Makoran Winter monsoon Diversity نرمتنان دوکفه‌‌ای مکران تراکم مانسون زمستانه تنوع ##احمدی، م.ر. و نفیسی، م.، 1384. شناسایی موجودات شاخص بی مهره آب‌‌های جاری. انتشارات خبیر، چاپ اول، تهران، ایران.##اشجع اردلان، ا.، 1376. شناسایی و بررسی پراکنش دوکفه ای های مناطق جزر و مدی خلیج چابهار و سواحل اطراف آن پایان نامه کارشناسی ارشد گروه بیولوژی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد تهران شمال، ایران. ##اصغری، ث.، احمدی، م.ر.، محمدی‌‌زاده، ف. و اجلالی، ک.، 1392. بررسی اثر مانسون تابستانه بر فراوانی دوکفه‌‌ای‌‌ها و شکم پایان در سواحل ایرانی دریای عمان. مجله علمی شیلات ایران، 22: 23-15.##خاتمی، س.ه.، 1383. بی‌‌مهرگان کفزی آب‌‌های شیرین. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست، تهران، ایران.##سلیمانی راد، آ.، کامرانی، ا.، کشاورز، م.، بهره مند، م. و وزیری زاده، ا.، 1392. مقایسه تنوع و پراکنش پرتاران جاسک شرقی و غربی در منطقهی حفاظت شده جاسک. اقیانوس شناسی، 16: 53- 44.##فاطمی، س.م.ر. و عبایی، م.س.، 1382. وضعیت محیط زیست خلیج فارس )محدوده راپمی(. سازمان حفاظت محیط زیست ایران.##کاظمیان، م.، دلفیه،پ. و خدادای،م.، 1387. بررسی فراوانی دوکفه‌‌ای‌‌ها و شکم پایان در سواحل صخره‌‌ای طیس، واقع در خلیج چابهار. مجله بیولوژی دریا، 3: 77-63.##کامرانی، ا.، بهزادی، س. و هاشمی پور، ف.، 1392. بررسی تنوع و شناسایی دوکفه‌‌ای‌‌ها و شکم پایان سواحل شهر بندرعباس. مجله اقیانوس‌‌شناسی، 4(13): 63-53.##لقمانی، م.، سواری، ا.، دوست شناس، ب.، ارچنگی، ب. و کبیری،ک.، 1395. بررسی اثر مانسون بر الگوهای تنوع زیستی پرتاران پهنه زیر جزر و مدی خلیج چابهار (دریای مکران). اقیانوس‌‌شناس، 25: 25-13.##نبوی، م.ب.، قطب الدین، ن.، کوچنین، پ. و دهقان مدیسه، س.، 1388. مطالعه جمعیت دوکفه‌‌ای های غالب سواحل هندیجان (خلیج فارس). مجله بیولوژی دریا، 2: 12-1.##نیکوئیان، ع.ر.، 1376. بررسی تراکم، پراکنش، تنوع و تولید ثانویه بی مهرگان کفزی(ماکروبنتوزها) در خلیج چابهار. رساله دکتری بیولوژی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم تحقیقات، 211 صفحه.##نیکوئیان، ع.ر.، 1380. برآورد پتانسیل صید کف زیان در خلیج چابهار از طریق محاسبه تولید ثانویه ماکروبنتوزها. مجله علمی شیلات ایران، 10(2): 103-77 صفحه.##ولایت‌‌زاده، م.، محاب،ه. و حسینی،م.، 1392. شناسایی و فراوانی دوکفه ای های سواحل استان بوشهر در دو فصل تابستان و بهار. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی، 8: 101-91.##Ansari, Z.A., Sreepada, R.A. and Kanti A., 1994. Macrobenthic assemblage in the soft sediment of Marmugoa Harbor, Goa (Central west coast of India). Journal of Marine Science, 23: 225-231. ##Carpenter, K.E. and Niem, V.H., 1998. FAO species identification guide for fishery purposes. The living marine resources of the Western Central Pacific. Vol. 1, Seaweeds, corals, bivalves and gastropods. FAO: Rome. 686 P.##Eisler, R., 2010. Compendium of trace metals and marine biota, Vol1: Plants and invertebrates. Elsevier BV. Oxford, UK, 610 P.##Guacira, M.G. and Jose, W.T., 2004. Description of the reproductive cycle of Donax hanleyanus Bivalvia, Donacidae in southern Brazil, Iheringia, Série Zoologia. 94(4): 271-276.##Harkantra, S.N., Rodrigues, C.L. and Parulekar, A.H., 1982. Macrobenthos of the shelf off north eastern bay of Bengal, Indian Journal of Marine Science, 11(2): 115-121.##Ibrahim, S., Wan Hussin, W.M., Kassim, Z., Joni, Z.M., Zakaria, M.Z. and Hajisamae, S., 2006. Seasonal abundance of benthic communities in coral areas of Karah Island, Terengganu, Malaysia. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 6: 129-136.##Jorg, H.U., 2002. Indiect El-Nino Effects on Reproductive Strategies of the Carribbean Bivalves Pteria colymbus, Pinctada imbricata and Pinna carnea, Investigaciones marinas. 30:1-1.##Kosuge, S., 1998. Notes on the molluscan fauna of the Iranian coast of Persian Gulf. Bulletin of the Institute of Malacology, Tokyo, 36: 85-96.##Kurihara, T., 2003. Adaptation of subtropical venus clams to predation and desiccation: endurance of Gafrarium tumidum and avoidance of Ruditapes variegates. Journal of Marine Biology. 1436: 1117-1125.## ##Lomovasky, B.J., Brey, T. and Morriconi, E., 2005. Population dynamics of the Venerid bivalve Tawera gayi Hupe, 1854 in the Ushuaia Bay, Beagle channel, Journal of Applied Ichthyology, 21: 64-69. Doi: 10.1111/j.1439-0426.2004.00599.x.##Ludwig, J.A. and Raynolds, J.F., 1988. Statistical ecology, a primer on methods and computing.John Wiley & Sons New York. pp. Xvii-337.##Nevesskaja, N.A., 2006. Ethological-trophic groups of bivalve mollusks and their distribution in the Phanerozoic. Paleontological Journal. 40: 375-390.##Nybakken. J.W., 1997. Marin biology an ecological aapproach, Menlo paru, California reading, Massachusetts, NewYork, Marlow, England, DonMills, Ontario, Sydney, Mexico City, Madrid, Amsterdam. Forth edition. 445 P.##Pielou, E.C., 1966. Shannon’s formula as a measure of species diversity: its use and misuse. American Society of Naturalists, 100: 463–465.##Prabhu, H.V., Narayana, A.C. and Katti, R.J., 1993. Macrobenthic fauna in nearshore sediments off Gangolli, west coast of India. Indian Journal of Marine Science, 22(3): 168-171. ##Sanders, H.L., 1968. Benthic marine diversity and the stabilitytime hypothesis. In: Woodwell GM, Smith HH (eds) Diversity and stability in ecological systems. Brookhaven Symposium No. 22, Biology Department, Brookhaven National Laboratory, Upton, NY, pp. 71-81.##Sivadas, S.K., Ingole, B.S. and Fernandes, C.E.G., 2013. Environmental gradient favours functionally diverse macrobenthic community in a placer rich tropical bay. The Scientific World Journal, 1: 1-12. Doi: 10.1155/2013/750580.##Taheri, M., Yazdani Foshtomi, M. and Bagheri, H., 2010. Community structure and biodiversity of intertidal sandy beach macrofauna in Chabahar bay (northeast of Oman gulf, Iran). Journal of the Persian Gulf (Marine Science), 1(1): 17-25.##Visvanthan, C., Trankler, J., Kuruparan, P. and Xiaoning, Q., 2003. Effects of the monsoon conditions on generation and composition of the landfill leachate-lysimeter experiments with various input and design features. CISA, Environmental Sanitary Engineering Centre, Italy. 10 P.##Walton, W.R., 1952. Techniques for recognition of living foraminifera Contributions. Cushman found. Foundation Fo- raminiferal Research, 3: 56-60.##Wilhm, J.L. and Dorris, T.C., 1966. Species diversity of benthic macroinvertebrates in a stream receiving domestic and oil refinery effluents. American Midland Naturalist, 76: 427-449.##Woodward, F., 1993. Identifying shell, the new compact study guide and identifier. New Burlington Books. USA.##http://www.irimo.ir ##

افزودن میوه بلوط ایرانی (Quercus brantii) به جیره غذایی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio Linnaeus, 1758 ) و اثرات آن بر عملکرد رشد، ترکیبات لاشه و مقاومت در برابر تنش شوری Adding Iranian oak acorn (Quercus brantii) to the diet of common carp (Cyprinus carpio Linnaeus, 1758) and its effects on growth performance, carcass composition and resistance to salinity stress 1 1 در این تحقیق، تاثیر افزودن آرد میوه بلوط ایرانی بر عملکرد رشد، ترکیب لاشه و مقاومت در برابر تنش شوری در ماهی کپور معمولی مورد بررسی قرار گرفت. شش تیمار غذایی شامل: 1- فاقد بلوط و اتوکلاو نشده، 2- فاقد بلوط و 2 دقیقه اتوکلاو شده، 3- فاقد بلوط و10 دقیقه اتوکلاو شده، 4- حاوی ده درصد بلوط و اتوکلاو نشده، 5- حاوی ده درصد بلوط و2دقیقه اتوکلاو شده و 6- حاوی ده درصد بلوط و10دقیقه اتوکلاو شده در نظر گرفته شد. بعد از 6 هفته نتایج نشان داد که وزن و طول کل در تیمار 2 از بقیه بیشتر بود. این افزایش نسبت به تمام تیمارها بجز 4 معنی‌دار بود (05/0>p). اتوکلاو کردن غذا سبب کاهش معنی‌دار پروتئین و افزایش معنی‌دار رطوبت لاشه گردید و این اثر با افزایش مدت اتوکلاو تشدید شد. اتوکلاو کردن کوتاه‌مدت سبب افزایش معنی‌دار چربی لاشه گردید در حالیکه اتوکلاو کردن طولانی‌مدت، منجر به کاهش معنی‌دار آن شد. افزودن آرد بلوط به جیره غذایی به طور معنی‌دار سبب کاهش پروتئین و چربی لاشه و افزایش رطوبت آن گردید. بر این اساس اگر چه تفاوت معنی‌داری بین وزن نهایی ماهیان تیمارهای 1 و 4 وجود نداشت اما جایگزینی آرد گندم با آرد بلوط در سطح 10 درصد نامطلوب بود. در جیره‌های اتوکلاو نشده یا اتوکلاو شده به مدت کوتاه، آرد بلوط سبب کاهش معنی‌دار خاکستر لاشه شد. بیشترین میزان بقاء در برابر تنش شوری در تیمار 2 و کمترین میزان بقاء در تیمارهای 1 و 6 مشاهده گردید. هنگامی که از اتوکلاو (حرارت) در ساخت غذا استفاده شد، افزودن آرد بلوط به جیره غذایی سبب کاهش معنی‌دار میزان بقاء در برابر تنش شوری گردید. به طور کلی، با توجه به عملکرد رشد، ترکیب لاشه و میزان مقاومت ماهی کپور در برابر تنش، مطالعه مصرف آرد بلوط در سطوح کمتر از 10 درصد جیره توصیه می‌شود.   2 At this study, the effects of adding Iranian acorn flour on growth performance, carcass composition and resistance to salinity stress of common carp were investigated. Experimental diets included: 1) without acorn and not autoclaved diet; 2) without acorn and autoclaved diet for 2 minutes; 3) without acorn and autoclaved diet for 10 minutes; 4) with 10 percent acorn and not autoclaved diet; 5) with 10 percent acorn and autoclaved diet for 2 minutes; 6) with 10 percent acorn and autoclaved diet for 10 minutes. After 6 weeks results showed that weight and total length in the treatment 2 were higher than the rest. This increase was significantly higher than all treatments except 4 (p<0.05). Autoclaving reduced carcass protein and increased its moisture contents significantly and this effect intensified with an increase in the duration of autoclaving. Short-term autoclaving caused a significant increase in carcass fat while long-term autoclaving resulted its significant reduction. Adding acorn flour into the diet reduced amounts of carcass protein and fat and increased its moisture content significantly. Accordingly, although there was no significant difference between fish weights of treatments 1 and 4, replacement of wheat flour with acorn flour at 10% of diet was undesirable. In not autoclaved or short-term autoclaved diets, oak acorn flour reduced carcass ash significantly. In salinity stress test, the highest and lowest survival time were observed in the treatment 2 and treatments 1 and 6, respectively. When autoclaving (heat) was used in food production, the addition of oak acorn flour to the diet significantly reduced survival time at the salinity stress. Overall, considering the growth performance, carcass composition and resistance of carp to stress, it is recommended to study oak acorn flour consumption at levels less than 10% of the diet.   83 90 2019/11/292019/12/262019/10/172019/05/192019/08/242019/08/172019/10/42019/11/22019/04/20 1398/1/31 2020/03/152020/06/302020/06/302020/06/302020/02/12020/03/32020/04/192020/06/302020/06/30 1399/4/10 سیده سکینه طالبیان نیک Seyede Sakineh Talebian Nik دانشگاه صنعتی خاتم الانبیا Iran sakineh.talebiyan@gmail.com حجت اله علمداری Hojjatollah Alamdari دانشگاه صنعتی خاتم الانبیا Iran alamdari671@yahoo.com Growth Carcass composition Diet Iranian acorn Common carp رشد ترکیب لاشه جیره غذایی میوه بلوط ایرانی کپور معمولی ##آدینه، ح.، هرسیج، م. و ناظر، ع.، 1397. تاثیر سطوح مختلف عصاره یوکا (Yucca schidigera) بر عملکرد رشد، راندمان تغذیه، ترکیبات بیوشیمیایی بدن ماهی کپور معمولی(Cyprinus carpio) و کیفیت آب محیط پرورش. مجله علمی شیلات ایران، 27(3): 149-135. Doi: 10.22092/ISFJ.2018.116923##ثاقب طالبی، خ.، ساجدی، ت. و یزدیان، ف.، 1383. نگاهی به جنگلهای ایران. مؤسسه تحقیقات جنگلها و مراتع، شماره 339، 55 صفحه.##سالنامه آماری سازمان شیلات ایران، 1392-1382، 1393. سازمان شیلات ایران، 64 صفحه.##شادنوش، غ.، شادنوش، ف. و طاهری میرقائد، ع.، 1387. کاربرد میوه بلوط به عنوان همبند کننده جیره و اثر آن بر خصوصیات لاشه ماهیان قزل آلای رنگین کمان. مجله علمی شیلات ایران، 17(3): 106-99 . ##محسنی، م. و ملک‌پور، م.، 1397. جایگزینی پودر ماهی با کنجاله کانولا و تاثیر آن بر عملکرد رشد، قابلیت هضم، برخی پارامترهای خونی و سطح هورمون‌های تیروئیدی تاسماهی سیبری (Acipenser baerii). مجله علمی شیلات ایران، 27(5): 149- 135. ## Doi: 10.22092/ISFJ.2019.118084 ##AOAC, 2000. Association of Official Analytical Chemists. Official Methods of Analysis 17th ed. Washington D.C., 2200 P.##Bohlouli, S., Ghaedi, G., Heydari, M., Rahmani, A. and Sadeghi, E., 2016. Effects of dietary Persian oak (Quercus brantii var. persica) fruit extract on survival, growth performance, haematological and immunological parameters in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, fingerlings. Aquaculture Nutrition, 22: 745-751. Doi: org/10.1111/anu.12290##Cruz, B.R., Abraao, A.S., Lemos, A.M. and Nunes, F.M., 2013. Chemical composition and functional properties of native chestnut starch (Castanea sativa Mill.). Carbohydrate Polymers, 94: 594–602. Doi: 10.1016/j.carbpol.2012.12.060##Ghaderi-Ghahfarrokhi, M., Sadeghi-Mahoonak, A.R., Alami, M. and Mousavi Khanegah, A., 2017. Effect of processing treatments on polyphenol removal from kernel of two Iranian acorns varieties. International Food Research Journal, 24: 86-93. ##Jelkic, D., Opacak, A., Horvat, D. and Safner, R., 2014. Common carp fry survival during salinity stress test: Effect of feeding regime-short communication. Veterinarski Arhiv, 84(4): 429-438. ## ##Makkar, H.P.S., 2003. Quantification of tannins in tree and shrub foliage. A laboratory manual. FAO/IAEA. ##NRC (National Research Council). 1999. Nutrient Requirements of Fish. National Academy Press. Washington, DC. 114 P.##Omnes, M.H., Goasduff, J.L., Delliou, H.L., Bayon, N.L., Quazuguel, P. and Robin, J.H., 2017. Effects of dietary tannin on growth, feed utilization and digestibility, and carcass composition in juvenile European seabass (Dicentrarchus labrax L.). Aquaculture Reports, 6: 21–27. Doi: 10.1016/j.aqrep.2017.01.004##Saeidi, F., Houshmand, M., Parsaei, S. and Zarrin, M., 2017. Potential of oak acorn with and without polyethylene glycol as an alternative to corn in broiler diets. South African Journal of Animal Science, 47(6): 895-903. Doi: 10.4314/sajas.v47i6.17##Saffarzadeh A., Vincze L. and Csapo J., 1999. Determination of the chemical composition of acorn (Quercus brantii), Pistacia atlantica, and Pistacia khinjk seeds as non-conventional feedstuffs. Acta Agraria Kaposvariensis, 3: 59–69. ##Sinaei, Kh. and Houshmand, M., 2016. Effect of dietary inclusion of raw or treated Iranian oak acorn (Quercus brantii Lindl.) on the performance and cecal bacteria of broilers. Poultry Science Journal, 4(1): 73-79. Doi: 10.22069/psj.2016.2974##Vinha, A.F., Barreira, J.C.M., Costa, A.S.G. and Oliveira, M.B.P.P., 2016. A new age for Quercus spp. Fruits: review on nutritional and phytochemical composition and related biological activities of acorns. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety, 15: 947-981. Doi: 10.1111/1541-4337.12220##Wilson, J.D., Bechtel, D.B., Todd, T.C. and Seib, P.A., 2006. Measurement of wheat starch granule size distribution using image analysis and laser diffraction technology. Cereal Chemistry, 83: 259-268. Doi: 10.1094/CC-83-0259 ##

تفاوت شاخص‌‌های بهبود سلامت قلب در ترکیب اسیدهای چرب خاویار دریایی و پرورشی فیل ماهی (Huso huso) دریای مازندران Differences in Cardiac Health Improvement Indices in the Fatty Acids Composition of Caspian Sea Wild and Farmed Beluga (Huso huso) Caviar 1 1 ترکیبات تقریبی، اسیدهای چرب و شاخص‌‌های تغذیه‌‌ای موثر بر سلامت قلب انسان بین خاویار فیل ماهی (Huso huso) دریایی دریای مازندران و خاویار فیل ماهی پرورش یافته در آب شیرین مورد مقایسه قرار گرفت. اندازه‌‌گیری پروتئین، چربی، رطوبت و خاکستر با روش استاندارد اندازه‌‌گیری ترکیبات تقریبی و سنجش ترکیبات اسیدهای چرب نیز توسط روش گازکروماتوگرافی صورت گرفت. نتایج نشان داد، مقدار ترکیبات تقریبی بین دو نمونه تفاوت معنی‌‌داری نداشت، ولیکن برخی از ترکیبات اسیدهای چرب دو نمونه با یکدیگر متفاوت بودند (05/0>p). میزان لینولئیک اسید (linoleic acid, C18:2n6) در خاویار فیل ماهی پرورشی 32/8% بود که به طور چشمگیری بیشتر از خاویار دریایی 37/0% بود (05/0>p). امگا-3 (ω-3) تفاوت معنی‌‌داری در نمونه دریایی و پرورشی بترتیب 42/38 و 42/30 % نداشت، لیکن امگا-6 (ω-6) در نمونه دریایی 27/13 % به طور معنی‌‌داری از نوع پرورشی 29/17 % کمتر بود. نسبت امگا-3 به امگا-6 در خاویار دریایی 9/2 بالاتر از نمونه پرورشی 75/1 بود (05/0>p). شاخص‌‌های آتروژنیک (AI) 29/0 و28/0، ترومبوژنیک (TI) 18/0 و 21/0، نسبت هایپوکلسترومی به هایپرکلسترومی (HH) 52/2 و 45/2، پلی‌‌ئن (PI) 73/1 و 46/1 و قابلیت اکسیداسیون چربی (PDI) 86/326 و 03/269 نیز بترتیب در خاویار دریایی و پرورشی تفاوت معنی‌‌داری نداشتند. مطابق نتایج، خاویار پرورشی می‌‌تواند جایگزین غذایی مناسبی برای نوع دریایی خود باشد و اسیدهای چرب این نوع خاویار از میزان شاخص‌‌های کیفی تغذیه‌‌ای مناسبی به منظور جلوگیری از بیماری‌‌های قلبی-عروقی برخوردار می‌‌باشد که این امر خود در حفظ جمعیت دریایی این گونه با ارزش اهمیت شایان توجهی خواهد بود. 2 Proximate, fatty acid compositions and nutritional quality indices of lipids between the caviar of wild and farmed Caspian Sea Beluga (Huso huso) sturgeon and their cardiovascular effects have been compared. Protein, lipid, moisture and ash were analyzed by using standard methods of proximate composition analysis and fatty acids profile determined by gas chromatography method. The fatty acid composition varied in both wild and farmed Beluga caviars, but they did no differ in proximate compositions. The most notable difference (p<0.05) was the higher concentration of linoleic acid (C18:2n6) in farmed Beluga caviar (8.32%) than wild ones (0.37%). The total ω-3 in wild caviar (38.42%) had no significant difference from farmed ones (30.42%) (p>0.05), but the content of total ω-6 was significantly higher in farmed (17.39%) samples than wild ones (13.27%). The ratio of ω-3 /ω-6 was higher in wild sample (2.9) from farmed ones (1.75) (p<0.05). Between wild and farmed caviars respectively, the atherogenic, (0.29, 0.28), thrombogenic (0.18, 0.21), Hypocholesterolaemic/Hypercholesterolaemic (2.45, 2.52) Polyene (1.73, 1.46) and Peroxidisability (326.86, 269.03) indexes contents had no significant differences (p>0.05). The present study indicated that the caviar from farmed Beluga like wild ones could be considered as a good food sources, besides, it has good balanced with lipid nutritional quality indices to cardiovascular prevents and finally it has important impact on protecting wild population from elimination. 91 102 2019/11/292019/12/262019/10/172019/05/192019/08/242019/08/172019/10/42019/11/22019/04/202019/12/3 1398/9/12 2020/03/152020/06/302020/06/302020/06/302020/02/12020/03/32020/04/192020/06/302020/06/302020/06/30 1399/4/10 شهرزاد بریمانی Shahrzad Barimani دانشگاه آزاد اسلامی Iran barimani.fishery@gmail.com مسعود هدایتی فرد Masoud Hedayatifard دانشگاه آزاد اسلامی Iran hedayati.m@qaemiau.ac.ir علی معتمدزادگان Ali Motamedzadegan دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی ساری Iran amotgan@yahoo.com عباس بزرگنیا Abbas Bozorgnia دانشگاه آزاد اسلامی Iran dr.bozorgnia@gmail.com Beluga Caspian Sea Caviar Heart disease Lipid quality Huso huso خاویار دریای مازندران سلامت قلب شاخص کیفی تغذیه‌‌ای Huso huso ##عبدالحی، ح. و کرمی‌‌راد، ن.، 1397. توسعه پرورش ماهیان خاویاری در ایران. دو فصلنامه ترویجی ماهیان خاویاری، صفحات 32-44.##موسوی ندوشن، ر. و عباسی، ف.، 1397. پروفایل اسیدهای چرب دربرخی ماهیان پرمصرف سواحل جنوبی کشور، مجله علمی شیلات ایران، سال بیست و هفتم، 13-22. ##Doi: 10.22092/ISFJ.2018.116692##هدایتی فرد، م.، معینی، س.، کیوان، ا. و یوسفیان، م.، 1381. تغییرات اسیدهای چرب بافت ماهی اوزون برون در زمان نگهداری در سردخانه، فصلنامه پژوهش و سازندگی، صفحات 72-75. ##هدایتی فرد، م. و میری، م.، 1396. تغییرات شاخص های اکسایشی چربی و ترکیب اسیدهای چرب فیله نمک سود شده ماهی آمور Ctenopharyngodon idella تحت تاثیر انواع روش های پخت, مجله علمی شیلات ایران, سال بیست و ششم, 57-72. ##Doi:10.22092/ISFJ.2017.113923##AOAC, 2005. AOAC-Association of official analytical chemists. Official Methods of Analysis of AOAC International 18th ed. Gaithersburg, Maryland 20877-2417, USA.##Bledsoe, G.E., Bledsoe, C.D. and Rasco, B., 2003. Caviars and Fish Roe Products. Journal of Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 43: 317-356. ## Doi:10.1080/10408690390826545##Bobe, G., Zimmerman, S., Hammond, E. G., Freeman, A., Lindberg, G.L. and Beitz, D.C., 2004. Texture of butters made from milks differing in indices of atherogenicity. Journal of Animal Industry Report, 650: 61. Doi:10.31274/ans_air-180814-691##Breslow, J.L., 2006. n−3 Fatty acids and cardiovascular disease. The American Journal of Clinical Nutrition, 83: 1477S-1482S. ## Doi:10.1093/ajcn/83.6.1477S##Calder, P.C., 2006. n−3 Polyunsaturated fatty acids, inflammation, and inflammatory diseases. The American Journal of Clinical Nutrition, 83: 1505S-1519S. ## Doi:10.1093/ajcn/83.6.1505S##Candela, M., Astiasarán, I. and Bello, J., 1998. Deep-fat frying modifies high-fat fish lipid fraction. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 46: 2793-2796. ## Doi: 10.1021/jf9709616##Connor, W.E., 1997. The beneficial effects of omega-3 fatty acids: cardiovascular disease and neurodevelopment. Journal of Current Opinion in Lipidology, 8: 1-3.##Czesny, S., Dabrowski, K., Christensen, J.E., Van Eenennaam, J. and Doroshov, S., 2000. Discrimination of wild and domestic origin of sturgeon ova based on lipids and fatty acid analysis. Journal of Aquaculture, 189: 145-153. Doi:10.1016/S0044-8486(00)00364-1## ##DePeters, E.J., Puschner, B., Taylor, S.J. and Rodzen, J.A., 2013. Can fatty acid and mineral compositions of sturgeon eggs distinguish between farm-raised versus wild white (Acipenser transmontanus) sturgeon origins in California? Preliminary report. Journal of Forensic Science International, 229: 128-132. ## Doi:10.1016/j.forsciint.2013.04.003##Erickson, M.C., 1992. Variation of lipid and tocopherol composition in three strains of channel catfish (Ictalurus punctatus). Journal of the Science of Food and Agriculture, 59: 529-536. Doi:10.1002/jsfa.2740590416##Falahatkar, B. and Najafi, M., 2019. Modifying the physiological responses to handling stress in beluga sturgeon (Huso huso L., 1758); Interactive effects of feeding time and dietary fat. Journal of Applied Ichthyology, 35:307-312. ## Doi:10.1111/jai.13847##Farooqui, A.A., Rosenberger, T.A. and Horrocks, L.A., 1997. Arachidonic acid, neurotrauma, and neurodegenerative diseases, In: Handbook of Essential Fatty Acid Biology: Biochemistry, Physiology, and Behavioral Neurobiology. Humana Press, New York. pp. 277-295.##Folch, J., Lees, M. and Stanley, G.S., 1957. A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues. Journal of Biological Chemistry, 226: 497-509. ##Gessner, J., Wirth, M., Kirschbaum, F., Krüger, A. and Patriche, N., 2002. Caviar composition in wild and cultured sturgeons – impact of food sources on fatty acid composition and contaminant load. Journal of Applied Ichthyology, 18: 665-672. ## Doi: 10.1046/j.1439-0426.2002.00366.x##Gessner, J., Würtz, S., Kirschbaum, F. and Wirth, M., 2008. Biochemical composition of caviar as a tool to discriminate between aquaculture and wild origin. Journal of Applied Ichthyology, 24: 52-56. ## DOI:10.1111/j.1439-0426.2008.01092.x##Gladyshev, M.I., Sushchik, N.N., Gubanenko, G.A., Demirchieva, S.M. and Kalachova, G.S., 2006. Effect of way of cooking on content of essential polyunsaturated fatty acids in muscle tissue of humpback salmon (Oncorhynchus gorbuscha). Food Chemistry 96: 446-451. ## Doi:10.1016/j.foodchem.2005.02.034##Gong, Y., Huang, Y., Gao, L., Lu, J., Hu, Y., Xia, L. and Huang, H., 2013. Nutritional Composition of Caviar from Three Commercially Farmed Sturgeon Species in China. Journal of Food and Nutriton Research, 1: 108-112. ##Hedayatifard, M. and Hassani Moghadam, E., 2016. Effect of cold-smoking on the production of polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs), quality indexes, microbal community and Omega-3 fatty acid profile of common carp (Cyprinus carpio). Journal of Fisheries Science and Technology, 5: 73-93. ##Horrocks, L.A. and Yeo, Y.K., 1999. Health benefits of Docosahexaenoic acid (DHA). Pharmacological Research, 40: 211-225. ## Doi:10.1006/phrs.1999.0495##Hosseini, H., Mahmoudzadeh, M., Rezaei, M., Mahmoudzadeh, L., Khaksar, R., Khosroshahi, N.K. and Babakhani, A., 2014. Effect of different cooking methods on minerals, vitamins and nutritional quality indices of kutum roach (Rutilus frisii kutum). Food Chemistry, 148: 86-91. ## Doi:10.1016/j.foodchem.2013.10.012##Jeong, B.Y., Ohshima, T., Koizumi, C. and Kanou, Y., 1990. Lipid deterioration and its inhibition of Japanese Oyster (Crassostrea gigas) during frozen storage. Journal of Nippon Suisan Gakkaishi, 56: 2083-2091. DOI:10.2331/suisan.56.2083##Kalogeropoulos, N., Andrikopoulos, N.K. and Hassapidou, M., 2004. Dietary evaluation of Mediterranean fish and molluscs pan-fried in virgin olive oil. Journal of the Science of Food and Agriculture, 84: 1750-1758. Doi:10.1002/jsfa.1878##Kinsella, J., 1986. Food components with potential therapeutic benefits: The n-3 polyunsaturated fatty acids of fish oils. Food Technology (USA). ##Larsen, R., Eilertsen, K.E. and Elvevoll, E.O., 2011. Health benefits of marine foods and ingredients. Journal of Biotechnology Advances, 29: 508-518. ## Doi:10.1016/j.biotechadv.2011.05.017##Marques, A., Teixeira, B., Barrento, S., Anacleto, P., Carvalho, M.L. and Nunes, M.L., 2010. Chemical composition of Atlantic spider crab Maja brachydactyla: Human health implications. Journal of Food Composition and Analysis, 23: 230-237. ## Doi:10.1016/j.jfca.2009.10.007##Matos, Â.P., Matos, A.C. and Moecke, E.H. S., 2019. Polyunsaturated fatty acids and nutritional quality of five freshwater fish species cultivated in the western region of Santa Catarina, Brazil. Brazilian Journal of Food Technology, 22. ## Doi:10.1590/1981-6723.19318##Mol, S. and Turan, S., 2008. Comparison of Proximate, Fatty Acid and Amino Acid Compositions of Various Types of Fish Roes. International Journal of Food Properties, 11: 669-677. Doi:10.1080/10942910701611170##Nurhan, U., 2007. Change in proximate, amino acid and fatty acid contents in muscle tissue of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) after cooking. International Journal of Food Science & Technology, 42: 1087-1093. Doi:10.1111/j.1365-2621.2006.01354.x##Ovissipour, M. and Rasco, B., 2011. Fatty acid and amino acid profiles of domestic and wild beluga (Huso huso) roe and impact on fertilization ratio. Journal of Aquaculture Research and Development, 2: 10.4172. ## Doi:10.4172/2155-9546.1000113##Park, K.S., Kang, K.H., Bae, E.Y., Baek, K.A., Shin, M.H., Kim, D.U., Kang, H.K., Kim, K.J., Choi, Y.J. and Im, J.S., 2015. General and biochemical composition of caviar from Sturgeon (Acipenser ruthenus) farmed in Korea. Journal of International Food Research, 22: 777-781. ##Ramos Filho, M.M., Ramos, M.I.L., Hiane, P.A. and de Souza, E.M.T., 2010. Nutritional value of seven freshwater fish species from the Brazilian Pantanal. Journal of the American Oil Chemists' Society, 87: 1461-1467. Doi:10.1007/s11746-010-1639-1##Saliu, F., Leoni, B. and Della Pergola, R., 2017. Lipid classes and fatty acids composition of the roe of wild (Silurus glanis) from subalpine freshwater. Journal of Food Chemistry, 232: 163-168. ## Doi:10.1016/j.foodchem.2017.04.009##Sargent, J. and Henderson, R., 1995. Marine (n-3) polyunsaturated fatty acids, In: Developments in oils and fats. Springer. pp. 32-65.##Senthamilselvan, D., Chezhian, A. and Suresh, E., 2016. Synergistic effect of nickel and mercury on fatty acid composition in the muscle of fish Lates calcarifer. Journal of Fisheries and Aquatic Science, 11:77-84. ## Doi:10.3923/jfas.2016##Steffens, W., 1997. Effects of variation in essential fatty acids in fish feeds on nutritive value of freshwater fish for humans. Journal of Aquaculture, 151: 97-119. ## Doi:10.1016/S0044-486(96)01493-7##Sternin, V. and Doré, I., 1993. Caviar - the resource book. Cultura (Cultura Enterprises), Moscow.##Taheri, S., Motallebi, A. A., Fazlara, A., Aghababyan, A. and Aftabsavar, Y., 2012. Changes of fatty acid profiles in fillets of Cobia (Rachycentron canadum) during frozen storage. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 11: 204-213. ##Testi, S., Bonaldo, A., Gatta, P.P. and Badiani, A., 2006. Nutritional traits of dorsal and ventral fillets from three farmed fish species. Food Chemistry, 98: 104-111. ## Doi:10.1016/j.foodchem.2005.05.053##Turan, H., Sönmez, G. and Kaya, Y., 2007. Fatty acid profile and proximate composition of the thornback ray (Raja clavata L., 1758) from the Sinop coast in the Black Sea. Journal of Fisheries Sciences, 1: 97-103. ##Ulbricht, T.L.V. and Southgate, D.A.T., 1991. Coronary heart disease: seven dietary factors. Journal of The Lancet, 338: 985-992. Doi:10.1016/0140-6736(91)91846-M##Vaccaro, A.M., Buffa, G., Messina, C.M., Santulli, A. and Mazzola, A., 2005. Fatty acid composition of a cultured sturgeon hybrid (Acipenser naccarii×A. baerii). Journal of Food Chemistry, 93: 627-631. ## Doi:10.1016/j.foodchem.2004.09.042##Valfré, F., Caprino, F. and Turchini, G., 2003. The health benefit of seafood. Journal of Veterinary research communications, 27: 507-512. ##Doi:10.1023/B:VERC.0000014208.47984.8c##Vujković, G., Karlović, Đ., Vujković, I., Vörösbaranyi, I. and Jovanović, B., 1999. Composition of muscle tissue lipids of silver carp and bighead carp. Journal of the American Oil Chemists' Society, 76: 475-480. Doi:10.1007/s11746-999-0027-1. ##

بررسی رسیدگی جنسی و مورفوهیستولوژی گناد در مولدین ماهی زبرا Danio rerio تحت تأثیر پروبیوتیک Lactobacillus plantarum Investigation of sex maturity and morphohistology of gonad in the broodstock of (Hamilton, 1822) Danio rerio influenced by probiotic (Lactobacillus plantarum) 1 1 به منظور افزایش شناخت اثرات پروبیوتیک‌‌ها بر شاخص‌‌های تولیدمثلی ماهی زبرا (Danio rerio)، این تحقیق به بررسی تأثیرات سطوح متفاوت پروبیوتیک Lactobacillus plantarum بر روند تکامل گناد و رسیدگی جنسی در ماهی زبرا پرداخته است. بدین منظور، تعداد720 ماهی زبرا در چهار تیمار با جیره‌‌های آزمایشی (0%، 5/0%، 5/1% و 3% پروبیوتیک) به مدت 40 روز تغذیه شدند. براساس اندازه‌‌گیری شاخص‌‌های تولیدمثلی در این گونه، بالاترین میزان هماوری مطلق در تیمار تغذیه شده با جیره حاوی 3% پروبیوتیک مشاهده شد که این میزان دارای تفاوت معنی‌‌داری را نسبت به تیمار شاهد و نیز تیمار تغذیه شده با جیره حاوی 5/0% پروبیوتیک بود. بر ‌‌‌‌مبنای شاخص هماوری نسبی، تیمار شاهد پایین‌‌ترین میزان هماوری را نسبت به سایر تیمارها نشان داد. داده‌‌های حاصل از شاخص گنادوسوماتیک در بین تیمارها نشان دهنده بالاترین میزان شاخص گنادی در تیمار تغذیه شده با جیره حاوی 3% پروبیوتیک نسبت به سایر تیمارها بود که نسبت به تیمار شاهد و تیمار تغذیه شده با جیره حاوی 5/0% پروبیوتیک معنی‌‌دار بود اما نسبت به تیمار تغذیه شده با جیره حاوی 5/1% پروبیوتیک تفاوت معنی‌‌داری نشان نداد. همچنین بررسی‌‌های هیستولوژیک گناد در جنس‌‌ نر و ماده نشان دهنده‌‌ تکامل گنادها و رسیدگی کامل جنسی در تیمارهای تغذیه شده با سطوح 3% و 5/1% پروبیوتیک بود. تحقیق حاضر نشان‌دهنده این امر می‌‌باشد که استفاده از پروبیوتیک Lactobacillus plantarum در سطح 3 درصد بهترین تأثیرگذاری را بر شاخص‌‌های تولیدمثلی و تکامل گنادی در مولدین ماهی زبرا دارد. 2 In order to increase the knowledge of the probiotic effects on reproductive indices of fish, this study was conducted to investigate the effects of different levels­ of probiotic Lactobacillus plantarum on gonadal development and sexual maturation in zebrafish (Danio rerio). Some 720 zebrafish were fed the experimental diets in four treatments such as: 0%, 0.5%, 1.5% and 3% probiotic diets for 40 days. Based on the measurement of reproductive indices in this species, the maximum absolute fecundity was observed in the diet containing 3% probiotic, which was significantly different from the control treatment and the diet containing 0.5% probiotic. Based on relative fecundity index, the control treatment showed the lowest fecundity rate compared to the other treatments. The gonadosomatic index data showed the utmost gonadal index in the diet containing 3% probiotic compared to the other treatments, which was significantly higher than the control and 0.5% probiotic treated diets, but it did not show any significant difference with the diet fed 1.5% probiotic. Histological examination of gonads in males and females showed gonads development and complete sexual maturity in treatments fed 3% and 1.5% probiotic levels. The present study indicates that probiotic Lactobacillus plantarum at 3% level will have the best effect on reproductive and gonadal development parameters in zebrafish.   103 114 2019/11/292019/12/262019/10/172019/05/192019/08/242019/08/172019/10/42019/11/22019/04/202019/12/32019/08/15 1398/5/24 2020/03/152020/06/302020/06/302020/06/302020/02/12020/03/32020/04/192020/06/302020/06/302020/06/302020/06/30 1399/4/10 زهره سعیدی Zohreh Saeidi گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی, دانشگاه تهران، کرج، ایران Iran zohreh.saeidiii@gmail.com علیرضا میرواقفی Alireza Mirvaghefi گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی, دانشگاه تهران، کرج، ایران Iran avaghefi@ut.ac.ir امیر رضا عابد علم دوست Amirreza Elmdoust گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی, دانشگاه تهران، کرج، ایران Iran amirabed@ut.ac.ir حمید فرحمند Hamid Farahmand گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی, دانشگاه تهران، کرج، ایران Iran hfarahmand@ut.ac.ir رقیه صفری Roghayeh Safari گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران Iran fisheriessafari@yahoo.com Probiotic Lactobacillus plantarum Fecundity Gonadosomatic index Danio rerio پروبیوتیک لاکتوباسیلوس پلانتاروم هماوری شاخص گنادوسوماتیک ماهی زبرا ##Abdullah, A.M., Hashim, R. and Aliyu, P.M., 2011. Evaluating the use of Lactobacillus acidophilus as a biocontrol agent against ## common pathogenic bacteria and the effects on the haematology parameters and histopathology in African catfish Clarias gariepinus juveniles, Aquaculture Research, 42: 196–209. ## Avella, M.A., Place, A., Du, S.J., Williams, E., Silvi, S., Zohar, Y. and Carnevali, O., 2012. Lactobacillus rhamnosus accelerates zebrafish backbone calcification and gonadal differentiation through effects on the GnRH and IGF systems. PLoS One. 7(9): e45572. ##Balcázar, J.L., de Blas, I., Ruiz-Zarzuela, I., Cunningham, D., Vendrell, D. and Múzquiz, J.L., 2006. The role of probiotics in aquaculture. Veterinary Microbiology. 114: 173-186. ##Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology.South Asian Publishers, New Delhi, India. 157 P. ##Carnevali, O., Conti, C., Ferraris, P., Garavaglia, M.G., Gioacchini, G., Giorgini, E., Rubini, C., Sabbatini, S. and Tosi, G., 2009. FT-IR microspectroscopy on molecular building of zebrafish oocytes. Journal of Molecular Structure, 938: 207–213. ##Castellano, J.M., Roa, J., Luque, R.M., Dieguez, C., Aguilar, E., Pinilla, L. and Tena-Sempere, M., 2009. KiSS-1/kisspeptins and the metabolic control of reproduction: physiologic roles and putative physiopathological implications. Peptides, 30: 57–66.##Clelland, E. and Peng, C., 2009. Endocrine/paracrine control of zebrafish ovarian development. Molecular and Cellular Endocrinology. 312: 42–52. ##Dawood, M.A.O., Koshio, S., Ishikawa, M. and Yokoyama, S., 2015. Effects of heat killed Lactobacillus plantarum (LP20) supplemental diets on growth performance,stress resistance and immune response of red sea bream, Pagrus major, Aquaculture, 442: 29-36. ##Drury, R.A. and Wallington, E.A., 1980. Carleton’s Histological Techniques, fifth ed. Oxford University Press, Oxford. ##Fernandez-Fernandez, R., Martini, A.C., Navarro, V.M., Castellano, J.M., Dieguez, C., Aguilar, E., Pinilla, L. and Tena-Sempere, M., 2006. Novel signals for the integration of energy balance and reproduction. Molecular and Cellular Endocrinology, 254: 127–132. ##Ghosh, S., Sinha, A. and Sahu, C., 2007. Effect of probiotic on reproductive performance in female livebearing ornamental fish, Aquaculture Research. 38: 518–526.##Giorgini, E., Conti, C., Ferraris, P., Sabbatini, S., Tosi, G., Rubini, C., Vaccari, L., Gioacchini, G. and Carnevali, O., 2010. Effects of Lactobacillus rhamnosus on zebrafish oocytes maturation: An FT-IR imaging and biochemical analysis. Analytical and Bioanalytical Chemistry, 398: 3063–3072. ##Gioacchini, G., Maradonna, F., Lombardo, F., Bizzaro, D., Olivotto, I. and Carnevali, C., 2010a. Increase of fecundity by probiotic administration in zebrafish (Danio rerio). Reproduction, 140: 953–959. ##Gioacchini, G., Bizzaro, D., Giorgini, E., Ferraris, P., Sabbatini, S. and Carnevali, O., 2010b. Oocytes maturation induction by Lactobacillus rhamnosus in Danio rerio: in vivo and in vitro studies. Human Reproduction, 25: i205–i206.##Gioacchini, G., Giorgini, E., Ferraris, P., Tosi, G., Bizzarro, D., Silvi, S. and Carnevali, O., 2010c. Could probiotics improve fecundity? Danio rerio as case of study. Journal of Biotechnology, 150: 59–60. ##Gioacchini, G., Lombardo, F., Merrifield, D.L., Silvi, S., Cresci, A., Avella, M.A. and Carnevali, O., 2011. Effects of probiotic on zebrafish reproduction. Journal of Aquaculture Research & Development, S1. Doi: 10.4172/2155-9546, S1–002. ##Gioacchini, G., Giorgini, E., Merrifield, D.L., Hardiman, G., Borini, A., Vaccari, L. and Carnevali, O., 2012. Probiotics can induce follicle maturational competence: the Danio rerio case. Biology of Reproduction, 86: 65, 1-11. ##Gioacchini, G., Dalla Valle, L., Benato, F., Fimia, G.M., Nardacci, R., Ciccosanti, F., Piacentini, M., Borini, A. and Carnevali, O., 2013. Interplay between autophagy and apoptosis in the development of Danio rerio follicles and the effects of a probiotic. 25: 1115-1125. Reproduction, Fertility and Development, Doi: 10.1071/RD12187. ##Giri, S.S., Sukumaran, V. and Oviya, M., 2013. Potential probiotic Lactobacillus plantarum VSG3 improves the growth, immunity, and disease resistance of tropical freshwater fish, Labeo rohita. Fish & Shellfish Immunology, 34: 660-666. ##Grandcourt, E.M.A., Abdessalaam, T.Z., Francis, F. and AlShamsi, A.T., 2004. Biology and stock assessment of the Sparids, Acanthopagrus bifasciatus and Argyrops spinifer (Forsskål, 1775), in the Southern Arabian Gulf. Fisheries Research, 69: 7–20. DOI: 10.1016/j.fishres. ##Grush, J., Noakes, D.L.G. and Moccia, R.D., 2004. The efficacy of clove oil as an anesthetic for the zebrafish, Danio rerio, Zebrafish, 1(1).##Hajibeglou, A. and Sudagar, M., 2010. Effect of dietry supplementation with probiotic on reproductive performance of female livebearing ornamental fish. Journal of Aquaculture Feed Science and Nutrition, 2: 11-15.##Hernandez, L.H.H., Barrera, T.C., Mejia. J.C., 2010. Effects of the commercial probiotic Lactobacillus casei on the growth, protein content of skin mucus and stress resistance of juveniles of the Porthole livebearer Poecilopsis gracilis (Poecilidae), Aquaculture Nutrition, 16: 407–411. ##Holden, M.J. and Raitt, D.F.S., 1974. Manual of fisheries science. Part 2-Methods of resource investigation and their application. FAO Fisheries. Technical papers. ##Holzapfel, W.H., Haberer, P., Snel, J., Schillinger, U. and in't Veld, J.H.H., 1998. Overview of gut flora and probiotics. International Journal of Food Microbiology, 41: 85-101. ##Irianto, A. and Austin, B., 2002. Probiotics in aquaculture,” Journal of Fish Diseases, 25: 633–642.##Kitahashi, T., Ogawa, S. and Parhar, I. S., 2009. Cloning and expression of Kiss 2 in the zebrafish and Medaka. Neuroendocrinology, 150: 821-831.##Lebeer, S., Vanderleyden, J.D. and Keersmaecker, S.C.J., 2008. Genes and molecules of Lactobacilli supporting probiotic action. Microbiology and Molecular Biology Reviews. 72: 728–764.##Lin, Sh., Mao, Sh., Guan, Y., Luo, L. and Pan, Y., 2012. Effect of dietary chitosan oligosaccharides and Bacillus coagulans on the growth, innate immunity and resistanse of koi (Cyprinus carpio koi). Aquaculture, 342-343: 36-41.##Maack, G. and Segner, H., 2003. Morphological development of the gonads in zebrafish. Journal of Fish Biology. 62: 895–906. ##Marco, M.L., Pavan, S. and Kleerebezem, M., 2006. Towards understanding molecular modes of probiotic action. Current Opinion in Biotechnology, 17: 204–210. ##Moreira, S.D., Medeiros, S.S., Pereira, L. L., Romano, L.A., Wasielesky, W. and Cupertino, B.E., 2011. The use of probiotics during the nursery rearing or the pink shrimp Farfantepenaeus brasiliensis (Latreille, 1817) in a zero exchange system. Aquaculture Research, 43:1828-1837. ##Parichy, D.M., Elizondo, M.R., Mills, M.G., Gordon, T.N. and Engeszer, R.E., 2009. Normal table of postembryonic zebrafish development: Staging by externally visible anatomy of the living fish. Developmental Dynamics, 238: 2975–3015. ##Perez-Sanchez, T., Balcazar, J.L., Merrifield, D.L., Carnevali, Q., Gioacchini, G., Blas, I.D. and Ruiz-Zarzuela, I., 2011. Expression of immune-related genes in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) induced by probiotic bacteria during (Lactococcus garvieae) infection. Fish and Shellfish, 31: 291-236.##Pham, H.Q., Kjorsvik, E., Nguyen, A.T., Nguyen, M.D. and Arukwe, A., 2010. Reproductive cycle in female Waigieu seaperch (Psammopera waigiensis) reared under different salinity levels and the effects of dopamine antagonist on steroid hormone levels. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. 283: 137-145.##Rahiman, M., Yousuf, J., Ambat, T. and Hatha, M., 2010. Probiotic effect of Bacillus NL110 and Vibrio NE17 on the survival, growth performance and immune response of Macrobrachium rosenbergii (de Man), Aquaculture Research, 41: 120–134. ##Scaramuzzi, R.J., Campbell, B.K., Downing, J.A., Kendall, N.R., Khalid, M., Munoz-Gutierrez, M. and Somchit, A., 2006. A review of the effects of supplementary nutrition in the ewe on the concentrations of reproductive and metabolic hormones and the mechanisms that regulate folliculogenesis and ovulation rate. Reproduction Nutrition Development, 46: 339–354.##Schlee, M., Harder, J., Koten, B., Stange, E.F., Wehkamp, J. and Fellermann, K., 2008. Probiotic Lactobacilli and VSL#3 induce enterocyte beta-defensin 2. Clinical & Experimental Immunology, 151: 528–535. ##Schulz, R.W., Menting, S., Boggerd, J., Franca, L.R., Vilela, A.A.R. and Godinho, H.P., 2005. Sertoli cell proliferation in the adult testis Evidence frome to fish species belonging to different orders. Biology of Reproduction, 73: 891-898.##Semova, I., Carten, J.D., Stombaugh, J., Mackey, L.C., Knight, R., Farber, S.A. and Rawls, J.F., 2012. Microbiota regulate intestinal absorption and metabolism of fatty acids in the zebrafish. Cell Host Microbe, 12: 277–288. ##Seth, A., Yan, F., Polk, D.B. and Rao, R.K., 2008. Probiotics ameliorate the hydrogen peroxide-induced epithelial barrier disruption by a PKC- and MAP kinasedependent mechanism. Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 294: 1060–1069. ##Smalas, A., Amundsen, P. and Knudsen, R., 2016. The trade-off between fecundity and egg size in a polymorphic population of Arctic charr (Salvelinus alpinus) in Skogsfjordvatn, subarctic Norway. Ecology and Evolution, 7: 2007-2460. Doi: 10.1002/ece3.2669.##Son, V.M., Chang, C.C., Wu, M. C., Guu, Y.K., Chiu, C.H. and Cheng, W., 2009. Dietary administration of the probiotic, Lactobacillus plantarum, enhanced the growth, innate immune responses, and disease resistance of the grouper Epinephelus coioides, Fish Shellfish Immunol, 26 : 691-698.##Takahashi, H., 1977. Juvenile hermaphroditism in the zebrafish Brachydanio rerio. Bull. Fac. Fish. Hokkaido Univ. 28: 57–65. ##Tapia, P.A., D´ıaz, R.P. and Le´on, R.J., 2012. Use or the probiotic Shewanella putrefaciens Pdp11on the culture of Senegalenses sole (Solea senegalensis, Kaup 1858) and gilthead seabream (Sparaus aurata), Aquaculture International, 21: 1–15. ##Tveiten, H., Jobling, M. and Andreassen, I., 2004. Influence of egg lipid and fatty acids on egg viability and their utilization during embryonic development of spotted wolfish Anahichas minor Olafsen. Aquaculture Research, 35: 152-161. ##Varela, J.L., Ru´ız, I. and Vargas, L., 2010. Dietary administration of probiotic Pdp11 promotes growth and improves stress tolerance to high stocking density in gilthead seabream Sparus auratus. Aquaculture, 309: 265–271. ##Yan, F., Cao, H., Cover, T.L., Whitehead, R., Washington, M.K. and Polk, D.B., 2007. Soluble proteins produced by probiotic bacteria regulate intestinal cell survival and growth. Gastroenterology, 132: 562–575. ##Zhang, S., Sing, Y., Long, M. and Wei, Z., 2012. Does dietary administration of Lactococcus lactis modulate the gut microbiota of grouper, Epinephelus coioides. Journal of the World Aquaculture Society, 43: 198–207. ##Zohar, Y., Mun˜oz-Cueto, J.A., Elizur, A. and Kah, O., 2010. Neuroendocrinology of reproduction in teleost fish. General and Comparative Endocrinology. 165: 438–455, Doi:10.1016/j.ygcen.2009.04.017. ##

مدل توسعه عملکرد صادراتی میگوی پرورشی ایران با رویکرد نظریه داده‌‌بنیاد Export performance improvement model of Iranian farmed shrimp with grounded theory approach 1 1 پژوهش حاضر با هدف ارائه مدل توسعه عملکرد صادراتی میگوی پرورشی ایران انجام شده است. روش تحقیق به صورت کیفی و مبتنی بر نظریه داده‌‌بنیاد است. نمونه‌‌گیری به روش نظری و با استفاده از تکنیک گلوله‌‌برفی انجام شده که بر مبنای آن، 16 مصاحبه در سال 1398 با خبرگان علمی و عملی صنعت میگوی پرورشی کشور (مدیران شیلات، اتحادیه تولید و تجارت آبزیان ایران و مدیران شرکت‌‌های برتر در حوزه صادرات میگوی پرورشی) صورت گرفته است. نتایج تحلیل داده‌‌های حاصل از مصاحبه‌‌ها طی فرآیند کدگذاری باز، محوری و انتخابی و با بهره‌‌گیری از نرم‌‌افزار تحلیل کیفی اتلس‌‌تی، به زایش مدل توسعه عملکرد صادراتی میگوی پرورشی منجر شده که بر مبنای آن، شرایط علّی، پدیده محوری، راهبردها، عوامل زمینه‌‌ای، شرایط مداخله‌‌گر و پیامدها شناسایی شد. در مجموع، 17 مقوله اصلی، 56 مقوله فرعی و 138 مفهوم در قالب شش دسته محوری قرار گرفته‌‌اند. پژوهشگر به کفایت نظری درباره تمام مفاهیم مورد بحث رسیده است. همچنین، در دورهای بعد، با مرور مفاهیم و ارائه مدل به خبرگان، درباره مقبولیت مدل اطمینان حاصل شد. بر این اساس، مولفه‌‌ها، شاخص‌‌ها و حوزه‌‌های تاثیرگذار در پدیده محوری «توسعه عملکرد صادراتی میگوی پرورشی» شناسایی و راهبردهای بهره‌‌گیری از این ظرفیت‌‌ها به منظور رسیدن به نتایج و پیامدهای مورد انتظار در قالب مدل توسعه عملکرد صادراتی میگوی پرورشی ارائه گردید. 2 The purpose of this study was to present a model of export performance development of ‎farmed shrimp in Iran. The research method is qualitative and is based on ‎Grounded Theory. Theoretical sampling was performed using snowball technique based on ‎which, 16 interviews were conducted with the scientific and practical experts of the Iranian ‎shrimp industry (Fisheries Organization managers, Iran's Aquaculture Production and Trade Union and the top ‎companies in the field of shrimp export). Results of data analysis of the interviews through open, ‎axial and selective coding process using Atlas ti. software has led to the surface of the export ‎performance model of Iranian farmed shrimp, based on which, Causal Conditions, ‎Core ‎Phenomenon, Strategies, Contextual Factors, Intervening Conditions, and ‎Consequences ‎were identified. In total, 17 main categories, 56 sub-categories, and 138 concepts fall into six ‎axial categories. The researcher has reached a theoretical saturation in regard to all the concepts in ‎question. Also, in later stages, by reviewing the concepts and presenting the model to the experts’ ‎for the second and third times, the acceptability of the model was assured. As a result, components, ‎indicators, and areas influencing the central phenomenon of "export performance of farmed ‎shrimp" are identified and strategies are proposed to reach the expected results and outcomes. ‎ 115 124 2019/11/292019/12/262019/10/172019/05/192019/08/242019/08/172019/10/42019/11/22019/04/202019/12/32019/08/152019/12/21 1398/9/30 2020/03/152020/06/302020/06/302020/06/302020/02/12020/03/32020/04/192020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/30 1399/4/10 محمدرضا طالعی پور Mohammad Reza Talei Poor دانشگاه آزاد سمنان Iran hosseinkhanfari.put@gmail.com سید عبدالله حیدریه Seyed Abdollah Heydarieh دانشگاه آزاد سمنان Iran sheydariyeh@yahoo.com حسین خانزادی Hossein Khanzadi دانشگاه آزاد سمنان Iran patrioth500@gmail.com یونس وکیل الرعایا Younes Vakil Alroaia دانشگاه آزاد سمنان Iran y.vakil@semnaniau.ac.ir Export performance Farmed shrimp Snow ball sampling Atlas ti. Grounded theory عملکرد صادراتی میگوی پرورشی گلوله برفی اتلس‌‌تی نظریه داده‌‌بنیاد ##احمدی، م.، کوچنین، پ.، صالحی، ح.، یاوری، و. و حسینی‌‌فر، س.ح.، 1395. تحلیل و تعیین چالش‌‌های پیش‌‌ روی صنعت تکثیر میگوی ایران. مجله علوم و فنون دریایی، 15(4): 56-68. ## Doi: 10.22113/jmst.2017.47150.##ریحانی‌‌پول، س.، عالیشاهی، ع. عادلی، ا.، نرگسیان، ع. و اجاق، م.، 1398. مطالعه رفتار، اولویت‌‌ها و موانع مصرف‌‌کنندگان میگو در کشور. مجله علمی شیلات ایران، 28(6): 35-46. ## Doi:10.22092/ISFJ.2019.11978 ##کریمی، د.، کیانی، غ.، اسلامی، ف. و هومان، ل.، 1394. ارتباط کارآیی فنی و بازده تولید با مساحت مزارع پرورش میگو در استان هرمزگان. مجله علمی شیلات ایران، 20(2): 109-120. ##Doi:10.22092/ISFJ.2017.109996.##هاشمی‌‌تبار، م.، و علیرضا، ک. 1382. بررسی عوامل مؤثر بر صادرات میگو با تخمین توابع عرضه و تقاضای صادرات، چهارمین کنفرانس اقتصاد کشاورزی ایران، کرج، انجمن اقتصاد کشاورزی ایران، دانشکده کشاورزی دانشگاه تهران.##Berko, O. and Damoah, O., 2013. Strategic factors and firm performance in ‎an emerging economy. African Journal of Economic and Management ‎Studies, 4: 267 – 287.‎ Doi: 10.1108/ajems-02-2013-0013.##Emran, S., Taslim, Q. and Taslim, M., 2019. Standards as Trade Barriers: The Case of Shrimp Export of Bangladesh to EU, Bangladesh Research Publications Journal.##‎Erdil, S. and Ozdemir, O., 2016. The Determinants of relationship ‎between marketing mix strategy and drivers of export performance in ‎foreign markets: An application on Turkish clothing industry. Social and Behavioral Sciences, 235: 546-556. ## Doi: 10.1016/j.sbspro.2016.11.067.##Gaglio, C., 2017. Trade liberalization and export performance: a literature review. Review of Political Economy, 127: 25-46. Doi: 10.3917/redp.271.0025.##Griffith, D.A. and Czinkota, M., 2012. Release the constraints: ‎Solving the problems of export financing in troublesome times. Business ‎Horizons, 55: 251-260.‎ Doi:10.1016/j.bushor.2012.01.003.##‎Katsikeas, C.S., Leonidou, L.C. and Morgan, N.A., 2000. Firm-‎level export performance assessment: review, evaluation, and ‎development. Journal of the Academy of Marketing Science, 28: 493-‎‎511.‎ Doi:10.1177/0092070300284003.##‎Lages, F. and Jap, S.D., 2002. Marketing mix adaptation and ‎performance in international marketing relationships. European Union ‎Working Paper, 411: 1-45.‎ ‌Doi: ‌ 10.2139/ssrn.881841.##Lages, F. and Sousa, C., 2010. Export performance. Wiley ‎International Encyclopedia of Marketing: John Wiley & Sons, Ltd., Doi: 10.1002/9781444316568.wiem06029.##Leonidou, L.C., Katsikeas, C.S., Palihawadana, D. and ‎Spyropoulou, S., 2007. An analytical review of the factors stimulating ‎smaller firms to export: Implications for policy-makers. International ‎Marketing Review, 24: 735-770. Doi: 10.1108/02651330710832685.## ##‎Leonidou, L., Palihawadana, D. and Theodosiou, M., 2010. ‎National export-promotion programmes as drivers of organisational ‎resources and capabilities: Effects on strategy, competitive advantage, ‎and performance. Journal of International Marketing, 19: 1-29. Doi: 10.1108/sd.2011.05627jaa.003.##Maurel, C., 2009. Determinants of export performance in French ‎wine SMEs.‎‌ ‌International. Journal of Wine Business Research, 21: 118-‎‎142. ## Doi: 10.1108/17511060910967971.##Nguyen, T., Nguyen, K. and Jolly, C. 2019. Is super-intensification the solution to shrimp production and export sustainability? Sustainability, 11: 5277 Doi: 10.3390/su11195277.##Rahman, M., 2013. Shrimp export marketing of Bangladesh, Bangladesh Research Publications Journal, 8: 146-151. Doi: 10.3329/jbau.v8i1.6409.##‎Robertson, C. and Chetty, S.K., 2000. A contingency-based ‎approach to understanding export performance. International Business ‎Review, 9: 211-235.‎ Doi: 10.1016/s0969-5931(99)00037-2.##‎Sousa, C.M.P. and Bradley, F., 2008. Antecedents of ‎International Pricing Adaptation and Export Performance. Journal of ‎World Business, 43: 307-320.‎ Doi:10.1016/j.jwb.2007.11.007‎ ##

بررسی برخی از ویژگی‌های تولید مثلی قزل‌آلای رنگین‌کمان در رودخانه بهشت‌آباد چهارمحال و بختیاری Studying some reproduction characteristics of rainbow trout in Beheshtabad River of Chaharmahal and Bakhtiari Province 1 1 ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss) یک گونه غیربومی در آبهای داخلی ایران است و اطلاعات کمی درباره این گونه در آبهای طبیعی ایران وجود دارد. در این مطالعه، برخی ویژگی‌های زیستی این ماهی مانند شاخص گنادی و هماوری مطلق و نسبی،  با جمع آوری 355 نمونه ازرودخانه بهشت‌آباد استان چهارمحال‌وبختیاری، با استفاده از تور گوشگیر و پرتابی، از فروردین لغایت اسفند 1392 به صورت ماهانه مورد بررسی قرار گرفت. دامنه طول کل ماده‌ها 2/40-1/17 (SD 54 /4±05/26) سانتی‌متر و دامنه طول کل برای ماهیان نر 3/40-5/15 (93/5±9/24) سانتی‌متر بود. سن نرها +4-+1 سال و ماده‌ها +5-+2 سال تخمین زده شد. بیشترین فراوانی برای جنس نر و ماده بترتیب در سنین +1 و +2 بود. نسبت جنسی 1 نر: 3/1 ماده بود. بر اساس مشاهدات ماکروسکوپی گنادها، پنج مرحله رسیدگی جنسی شامل: نابالغ، در حال رسیدگی، قادر به تخمریزی، بازگشت و احیاء مشاهده شد. شاخص گنادوسوماتیک نشان داد که تولید مثل این ماهی در مهر لغایت بهمن رخ می‌دهد و حداکثر این شاخص برای نر در شهریور و دی (22/4 و 48/3) و برای ماده در آبان و دی (28/3 و 4) بدست آمد. دامنه قطر تخمک در طول سال 5/3-125/0 محاسبه شد. هماوری مطلق بین 680 و 3890 (170±1860) عدد تخمک بدست آمد. هماوری نسبی بین 1900 و 9000 (360±4600) عدد تخمک بدست آمد. بنظر می‌رسد این ماهی توانسته است با شرایط طبیعی رودخانه بخوبی سازگار شود.   2 Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) is an exotic fish in the inland waters of Iran and little is known about this species in Iranian natural waters. In this study, some biological characteristics of rainbow trout such as GSI and absolute and relative fecundity were examined in 355 specimens collected monthly from Beheshtabad River of Chaharmahal and Bakhtiari Province during April 2013 to March 2014. Total length of females and males ranged from 17.1 to 40.2 cm (26.05±4.54 SD) and from 15.5 to 40.3 cm (24.9±5.93), respectively. The age of male and female rainbow trout ranged between 1+ to 4+ and 2+ to 5+ years, respectively. The most frequent age groups were 1+ and 2+ in males and females, respectively. Sex ratio was 1M:1.3F. Based on macroscopic gonad observation, maturation cycle consisted of five stages; immature, developing, spawning, regressing and regeneration phases. The gonadosomatic index indicated that reproduction of rainbow trout in the Beheshtabad River occurred in October and Junary for males and in September and Jaunary for the females, with the highest  mean value of 3.28 and 4 in November and Jaunary for males and 4.22 and 3.48 in September and Jaunary for females. Oocyte diameters ranged from 0.125 to 3.5 mm. Absolute fecundity ranged between 680 and 3890 (1860±170) eggs. Relative fecundity ranged between 1900 and 9000 (4600±360) eggs/Kg body weight. It seems that this species has been able to adopt very well to the river conditions.   125 137 2019/11/292019/12/262019/10/172019/05/192019/08/242019/08/172019/10/42019/11/22019/04/202019/12/32019/08/152019/12/212017/06/1 1396/3/11 2020/03/152020/06/302020/06/302020/06/302020/02/12020/03/32020/04/192020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/30 1399/4/10 یزدان کیوانی Yazdan Keivany دانشگاه صنعتی اصفهان Iran keivany@cc.iut.ac.ir مسیب عالی‌پور Mosayeb Aalipour دانشگاه صنعتی اصفهان Iran m.alipoor1985@gmail.com عیسی ابراهیمی Eisa Ebrahimi دانشگاه صنعتی اصفهان Iran e_ebrahimi@cc.iut.ac.ir Gonadosomatic index Fecundity Egg diameter Reproduction Salmonidae آزادماهیان تولیدمثل هماوری شاخص جنسی قطر تخمک ##Abaszadeh, A., Keivany, Y., Soofiani, N.M. and Falahatimarvast, A., 2013. Reproductive biology of the greater lizardfish, Saurida tumbil (Bloch, 1795), in Bushehr coastal waters of Iran. Turkish Journal of Zoology, 37: 717-722. Doi:10.3906/zoo-1301-23.##Aalipour, M., Keivany, Y. and Ebrahimi, E., 2019. Feeding habits of Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss) in Beheshtabad River of Chaharmahal & Bakhtiari Province. Journal of Applied Biology, 32(1): 76-97. ## Doi:10.22051/JAB.2019.4309.##Angradi, T.R. and Griffith, J.S., 1990. Diel feeding chronology and diet selection of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in the Henry's Fork of the Snake River, Idaho. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 47(1): 199-209. Doi: 10.1139/f90-022.##Arismendi, I., Soto, D., Penaluna, B., Jara, C., Leal, C. and León‐Muñoz, J.O.R.G.E., 2009. Aquaculture, non‐native salmonid invasions and associated declines of native fishes in Northern Patagonian lakes. Freshwater Biology, 54(5): 1135-1147. Doi:10. 1111/j.1365-2427.2008.02157.x.##Asadollah, S., Soofiani, N.M., Keivany, Y. and Shadkhast, M., 2011. Reproduction of Capoeta damascina, a cyprinid fish, in Zayandeh-Rud River, central Iran. Journal of Applied Ichthyology, 27: 1061-1066. Doi:10. 1111/j.1439-0426.2011.01758.x.##Bagenal, T. and Tesch, F., 1978. Age and growth. In: Methods for assessment of fish production in fresh waters. F. Bagenal (Ed.). IBP Handbook 3, Blackwell Scientific Publications, Oxford. 365 P.##Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology, South Asian Publishers. 157 P.##Brown-Peterson, N.J., Wyanski, D.M., Saborido-Rey, F., Macewicz, B.J. and Lowerre-Barbieri, S.K., 2011. A standardized terminology for describing reproductive development in fishes. Marine and Coastal Fisheries, 3: 52-70. Doi:10.1080/19425120.2011.555724.##Cocan, D., Zăhan, M., Mireşan, V., Constantinescu, R., Răducu, C., Neghela B. and Sărmaş, I., 2010. Studies on some productive and reproductive performance in female rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and brown trout (Salmo trutta fario) at four years of age, from Fiad-Telcişor Salmonids complex, Bistriţa-Năsăud County. Scientific Papers Animal Science and Biotechnologies, 43(2): 19-23.##Dopeikar, H., Keivany, Y. and Shadkhast, M., 2015. Reproductive biology and gonad histology of the kura barbel, Barbus lacerta (Cyprinidae), in Bibi-Sayyedan River, Tigris basin, Iran. North-Western Journal of Zoology, 11: 163-170.##Erguden, S.A., Goksu, M.Z.L. and Çelikkol, Ç., 2010. Spring feeding habits by escaped cage rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum, 1792) in the Seyhan Dam Lake (Adana/Turkey). Journal of Applied Biological Sciences, 4(3): 7-10.##Ghafouri, Z., Keivany, Y. and Soofiani, N.M., 2019. Reproductive biology of Aphanius isfahanensis in the Zayandehrud River, central Iran. Environmental Biology of Fishes, 102(1): 19-25. Doi:10.1007/s10641-018-0833-0.## ##Hamzeh, S., Keivany, Y., Soofiani, N.M. and AeinJamshid, K., 2017. Reproductive Biology of Kingsoldier Bream (Argyrops spinifer) in the Persian Gulf. Iranian Scientific Fisheries Journal, 26(3): 91-104##Keivany, Y. and Soofiani, N.M., 2004. Contribution to the biology of Zagros tooth-carp, Aphanius vladykovi, in central Iran (Cyprinodontidae). Environmental Biology of Fishes, 71(2): 165-169. Doi:10.1007/s10641-004-0106-y.##Keivany, Y. and Daneshvar, E., 2015. Reproduction of an isolated Iranian cichlid, Iranocichla hormuzensis. Caspian Journal of Environmental Sciences, 13(2): 119-128.##Keivany, Y., Zare, P. and Kalteh, L., 2012. Age, growth and reproduction of the female kutum, Rutilus kutum (Kamensky, 1901) (Teleostei: Cyprinidae), in Gorgan-Rud estuary, northern Iran. Research in Zoology, 2(3): 7-14.## Doi:10.5923/j.zoology.20120203.01.##Keivany, Y., Nasri, M., Abbasi, K. and Abdoli, A., 2016. Atlas of inland water fishes of Iran. Iran Department of Environment Press. 218 P.##Keivany, Y., Ghorbani, M. and Paykan-Heyrati, F., 2017. Reproductive biology of Mossul bleak (Alburnus mossulensis) in Bibi-Sayyedan River of Tigris basin in Iran. Caspian Journal of Environmental Sciences 15(2): 135-155.##Keivany, Y., Mortazavi, S. and Farhadian, O., 2018. Reproduction of King Nase (Chondrostoma regium) in Beheshtabad River of Chaharmahal & Bakhtiari. Journal of Fisheries Sciences and Technology, 7(2): 135-143.##Kido, M.H., Heacock, D.E. and Asquith, A., 1999. Alien rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) (Salmoniformes: Salmonidae) diet in Hawaiian streams. Pacific Science, 53(3): 242-251.##Kitano, S. 2004. Ecological impacts of rainbow, brown and brook trout in Japanese inland waters. Global Environment Research, 8(1): 41-50.##Kocabas, M. and Aksu, O., 2011. The reproduction traits of native brown trout. Journal of Animal Veterinary Advances, 10(13): 1632-1637.##Mills, C.A., Welton, J.S. and Rendle, E.L., 1983. The age growth and reproduction of the stone loach Noemacheilus barbatulus in a Dorset, England, UK Chalk stream. Freshwater Biology, 13: 283–292. Doi: 10. 1111/j.1365-2427.1983.tb00678.x.##Molineri, C. 2008. Impact of rainbow trout on aquatic invertebrate communities in subtropical mountain streams of northwest Argentina. Austral Ecology, 18(1): 101-117.##Oscoz, J., Leunda, P.M., Campos, F., Escala, M.C., García-Fresca, C. and Miranda, R., 2005. Spring diet composition of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum, 1792), in the Urederra River (Spain). Annales de Limnologie International Journal of Limnology, 41(1): 27-34. Doi:10.1051/limn/2005003. ##Pajuelo, J.G. and Lorenzo, J.M., 2003. The growth of the common two-banded seabream, Diplodus vulgaris (Teleostei, Sparidae), in Canarian waters, estimated by reading otoliths and by back-calculation. Journal of Applied Ichthyology, 19: 79-83. Doi:10.1046/j.1439-0426.2003.00359.x.##Pitcher, T.J. and Hart, P.J.B., 1982. Fisheries Ecology. Published by The Avi Publishing Company, INC. 414 P.##Qasim, S.Z., 1966. Sex ratio in fish populations as a function of sexual differences and growth rate. Current Science: India, 35: 140-142.##Rajaguru, A., 1992. Biology of two co-occuring tongue fishes, Cynoglossus arel and C. lida (Pleuronectiformes: Cynoglossidae), from Indian waters. Fishery Bulletin, 90(2): 328- 367.##Rikardsen, A.H. and Sandring, S., 2006. Diet and size-selective feeding by escaped hatchery rainbow trout,Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Journal of Marine Science, 63(3): 460-465. Doi:10.1016/j.icesjms.2005.07.014.##Sægrov, H., Hindar, K. and Urdal, K., 1996. Natural reproduction of anadromous rainbow trout in Norway. Journal of Fish Biology, 48(2): 292-294. Doi:10.1111/j.1095-8649.1996.tb01120.x.##Schneider, J.C., Laarman, P.W. and Gowing, H., 2000. Age and growth methods and state averages. Chapter 9 in Schneider, J.C. (Ed.). Manual of fisheries survey methods II: with periodic updates. Michigan Department of Natural Resources, Fisheries Special Report 25, Ann Arbor.##Shafaieipour, A. and Gorjipour, E.A., 2004. Feeding regime of rainbow trout (Oncorhynchus Mykiss) in Khoramnaz and Beshar rivers. Journal of Marine Sciences and Technology, 3(4): 37-44.##Siami, M., Keivany, Y. and Farhadian, O., 2017. Reproductive characteristics of Siahmahi, Capoeta damascina (family Cyprinidae), in Beheshtabad River, Tigris basin. Sri Lanka Journal of Aquatic Sciences, 22(1): 21-27. ##Simon, K.S. and Townsend, C.R., 2003. Impacts of freshwater invaders at different levels of ecological organisation, with emphasis on salmonids and ecosystem consequences. Freshwater Biology, 48(6): 982-994. Doi:10.1046/j.1365-2427.2003.01069.x.##Skryabin, A.G., 1991. The biology of stone loach Barbatula barbatulus in the Rivers Goloustnaya and Olkha, East Siberia. Fish Biol. 42: 361–374. Doi:10. 1111/j.1095-8649.1993.tb00339.x.##Vinyoles, D., Sostoa, A., Franch, C., Maceda-Veiga, A., Casals, F. and Caiola, N., 2010. Life-history traits of the stone loach Barbatula barbatula. Freshwater Biology, 77: 20–32. Doi:10.1111/j.1095-8649. 2010. 02653.x ##

اثرات تغذیه با پودر جلبک اسپیرولینای (Spirulina platensis) ریزکپسوله شده و غیر کپسوله بر فعالیت آنزیم‌‌های آنتی اکسیدانی و قابلیت هضم مواد مغذی جوجه‌‌های گوشتی (راس 308) Effect of microencapsulated and non-encapsulated of spirulina (Spirulina platensis) algae powder on the antioxidant enzymes activity and nutrient digestibility of broiler chicks (Ross 308) 1 1 این آزمایش به منظور بررسی اثر افزودن پودر جلبک اسپیرولینا ریزکپسوله شده و غیرکپسوله به جیره بر فعالیت آنزیم‌‌های آنتی اکسیدانی و قابلیت هضم مواد مغذی در جوجه‌‌های گوشتی به‌‌ مدت 6 هفته انجام شد. در این آزمایش تعداد 360 قطعه جوجه یک روزه گوشتی (جنس نر) سویه تجاری راس 308 به 9 تیمار با 4 تکرار در هر تیمار (10 قطعه جوجه در هر تکرار) در قالب طرح کاملاً تصادفی اختصاص داده شدند. تیمارها شامل: 1- جیره پایه بدون هیچ افزودنی (شاهد منفی)، 2- جیره پایه + آنتی بیوتیک (شاهد مثبت)، 3- جیره پایه + ویتامین E، 4- جیره پایه + 33/0درصد اسپیرولینا ریزکپسوله شده، 5- جیره پایه + 66/0درصد اسپیرولینا ریزکپسوله شده، 6- جیره پایه + 1 درصد اسپیرولینا ریزکپسوله شده، 7- جیره پایه + 33/0درصد اسپیرولینا غیرکپسوله، 8- جیره پایه + 66/0درصد اسپیرولینا غیر کپسوله و 9- جیره پایه + 1 درصد اسپیرولینا غیرکپسوله بود. نتایج حاصله در پایان دوره آزمایش نشان داد که فعالیت آنزیم سوپراکسیددیسموتاز در تیمارهای حاوی 1 درصد پودر اسپیرولینای ریزکپسوله شده و 1 درصد پودر اسپیرولینا غیر کپسوله بیش از سایر تیمارها بود (05/0>p). اما فعالیت آنزیم‌‌های کاتالاز و گلوتاتیون پراکسیداز در تیمارهای مختلف اختلاف معنی‌داری نداشت (05/0<p). اثر تیمارهای آزمایشی بر قابلیت هضم مواد مغذی در بین گروه‌های مختلف آزمایشی نیز اثر معنی‌‌داری را نشان نداد (05/0>p). افزودن پودر اسپیرولینا و پودر اسپیرولینا کپسوله سبب افزایش فعالیت آنتی اکسیدانی در جیره جوجه‌‌های گوشتی راس 308 شد. 2 This study was done to investigate the effect of microencapsulated and non-encapsulated spirulina (Spirulina platensis) powder on the antioxidant enzymes activity and nutrient digestibility of broiler chicks for 6 weeks. A total of 360 one-day old broiler chicks (male) Ross 308 strain was divided into 9 treatments, 4 replicates (10 chicks in each replicate) in a completely randomized design. Experimental treatments include: basal diet without any additives (negative control), basal diet + antibiotic (positive control), 1-basal diet + vitamin E, 2-basal diet + 0.33% spirulina microencapsulated, 3-basal diet + 0.66% spirulina microencapsulated, 4-basal diet + 1% spirulina microencapsulated, 5-basal diet + 0.33% non-encapsulated spirulina, 6-basal diet + 0.66% non-encapsulated spirulina and 7-basal diet + 1% non-encapsulated spirulina. Results showed that the blood super oxide dismutase activity increased in chicks fed with encapsulated spirulina powder and non-encapsulated spirulina powder at the level of 1 percent (p<0.05). But the activity of catalase and glutathione peroxidase enzymes did not show any significant difference (p>0.05). The effect of experimental treatments on nutrient digestibility showed that no significant different experimental groups (p>0.05). The addition of spirulina powder and encapsulated spirulina powder increased antioxidant activity in the diet of Ross 308 broiler chicks.   139 146 2019/11/292019/12/262019/10/172019/05/192019/08/242019/08/172019/10/42019/11/22019/04/202019/12/32019/08/152019/12/212017/06/12019/02/5 1397/11/16 2020/03/152020/06/302020/06/302020/06/302020/02/12020/03/32020/04/192020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/30 1399/4/10 متین شکوری Matin Shakoori موسسه تحقیقات شیلات ایران Iran matin.shakoori@yahoo.com منصور رضایی Mansour Rezaei دانشگاه کشاورزی ساری Iran mrezaei2000@yahoo.com یداله چاشنی دل Yadolah Chashnidel دانشگاه کشاورزی ساری Iran ychashnidel2002@yahoo.com رضا صفری Reza Safari پژوهشکده اکولوژی دریای خزر ساری Iran safari1351@gmail.com حامد قلی پور Hamed Gholipour دانشگاه کشاورزی- دانشکده علوم دامی و شیلات- گروه علوم دامی Iran hamedgh10@yahoo.com Spirulina Antioxidant enzymes Digestibility Broiler chicks Spirulina platensis اسپیرولینا آنزیم‌‌های آنتی اکسیدانی قابلیت هضم جوجه گوشتی Spirulina platensis ##صفری، ر.، رفتنی امیری، ز. و اسماعیل زاده کناری، ر.، 1396. ارزیابی تاثیر دما، زمان و pH بر پایداری رنگدانه فیکوسیانین استخراج شده از جلبک اسپیرولینا (Spirulina platensis). مجله علمی شیلات ایران. 26 (5). 94-85. ##Doi: 10.22092/ISFJ.2017.115342##گرگیج جاسکی، م.، یحیوی، م.، روحانی قادیکلایی، ک. و سالارزاده، ع.، 1397. اثر منابع مختلف نیتروژنی و محتوی پروتئینی جلبک سبز- آبی اسپیرولینا پلاتنسیس (Spirulina platensis). مجله علمی شیلات ایران. 27(6): 66-57.## Doi: 10.22092/ ISFJ/ 2019. 118398##محمدی، ر.، 1386. بیوشیمی پزشکی هارپر (ترجمه. ویرایش بیست و هفتم). نوشته رابرت مورای، داریل ک. گرانرو ویکتور و. رادول. انتشارات آییژ. 880 ص.##AOAC., 2005. Official methods of analysis. 18th ed. Association of analytical chemists, AOAC international, Arlington VA.##Apata, D.F., 2008. Growth performance, nutrient digestibility and immune response of broiler chick fed diets supplemented with a culture of lactobacillus bulgaricus. Journal of Science Food Agriculture, 88: 1253-1258. Doi: 10.1002/jsfa.3214.##Baylan, M., Ozcan, B.D., Isik, O. and Akar, M.A., 2012. Mini review on spirulina. Turk Bilimsel Derlemeler Dergisi, 5(1): 31-34. ##Belay, A., 2002. The potential application of spirulina (Arthrospira) as a nutritional and therapeutic supplement in health management. Journal of the American Nutraceutical Assosiation, 5(2): 27-47. ##Chen, C.L., C.X., Peng, L.S., Wei, R.M. and Liu, J., 2000. Effects of Vitamin E or in combination with Vitamin C and/or Vitamin B2 on functions of the antioxidant system in mice. Journal of Wuhan University Science Technology, 23: 313–315. ##Cross, D.E., McDevitt, R.M., Hillman, M. and Acamovic, T., 2007. The effect of herbs and their associated essential oils on performance, dietary digestibility and gut microflora in chickens from 7 to 28 days of age. British Poultry Science, 48: 496-506. Doi: 10.1080/00071660701463221. ##Dartsch, P.C., 2008. Antioxidant potential of selected Spirulina platensis preparations. Phytotherapy Research, 22: 627–633. Doi: 10.1002/ptr.2310.##Deng, R. and Chow, T., 2010. Hypolipidemic, antioxidant and antiinflammatory activities of microalgae spirulina. Cardiovascular therapeutics, 28(4): 33-45. ## Doi: 10.1111/j.1755-5922.2010.00200.x.##Duncan, D.B., 1955. Multiple ranges and multiple F-test. Biometrics, 11: 1-42. ## Doi: 10.2307/3001478. ##Fenton, T.W. and Fenton, M., 1979. An improved procedure for the determination ## of chromic oxide in feed and excreta. Canadian Journal of Animal Science, 59: 631-634. Doi: 10.4141/cjas79-081.##Gupta, M., Dwivedi U.N. and Khandelwal, S., 2011. C-Phycocyanin: An effective protective agent against thymic atrophy by tributyltin. Toxicology Letters, 204: 2-11. Doi: 10.1016/j.toxlet.2011.03.029. ##Isailovic, B., Kalusevic, A., Zurzul, N., Coelho, M.T., Dorđevic, V., Alves, V., Sousa, I., Martins, M.M., Bugarski, B. and Nedovic, V., 2012. Microencapsulation of natural antioxidants from Pterospartum tridentatum in different alginate and inulin systems. In 6th Central European Congress on Food, pp. 1075-1081.## Kroismayr, A., Schedle, K., Sehm, J., Pfaffl, M.W., Plitzner, C., Foissy, H., Ettle, T., Mayer, H., Schreiner, M. and Windisch, W., 2008. Effects of antimicrobial feed additives on gut microbiology and blood parameters of weaned piglets. Die Bodenkulture: Journal of Land Management, Food and Environment, 59: 111-120.##Machado, A.R., Assis, L.M., Costa, J.A.V., Badiale Furlong, E., Mota, A.S., Micheletto, Y.M.S. and Souza Soares, L.A., 2014. Application of sonication and mixing for nano encapsulation of the cyanobacterium Spirulina platensis in liposomes. International Food Research Journal, 21(6): 2201-2206.##Marques de Assis, L., Machado, A.R., De Souza, A., Costa, J.A.V. and Souza L.A., 2014. Development and characterization of nano vesicles containing phenolic compounds of microalgae spirulina strain LEB-18 and chlorella pyrenoidosa. Advances in Materials Physics and Chemistry, 4: 6-12. ## Doi: 10.4236/ampc.2014.41002.##Miranda, M.S., Cintra, R.G., Barros, S.B. and Mancini Filho, J., 1998. Antioxidant activity of the microalga Spirulina maxima. Brazilian Journal Medical Biology Research, 31: 1075–1079. Doi: 10.1590/S0100-879X1998000800007.##Mountzouris, K.C., Tsirtsikos, P., Paraskevas, V. and Fegeros, K., 2008. Evaluation of the effect of a phytogenic essential oils product on broiler performance and nutrient digestibility. In: Worlds Poultry Congress, August 10-15, 2008, Brisbane, Australia. 444 P.##Muhl, A. and Liebet, F., 2007. No impact of a phytogenic feed additive on digestion and unspecific immune reaction in piglets. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 91: 426-431. Doi: 10.1111/j.1439-0396.2006.00671.x.##Oh, S.H., Zheng, L., Kwon, H.J., Choo, Y.K., Lee, K.W., Kang, C.W. and An, B.K., 2015. Effect of dietary fermented Chlorella vulgaris (VBT) on growth performance, relative organ weight, Cecal microflora, tibia characteristics and meat qualities in pekin ducks. Asian Australian Journal of Animal Science, 28(1): 95-101. Doi:10.5713/ajas.14.0473.##Reddy, B. S., Yuvaraj, N., Babitha, V., Ramnath, V., Philomina, P.T. and Sabu, M.C., 2004. Antioxidant and hypolipidemic effects of spirulina and natural carotenoids in broiler chicken. Indian Vetinary Journal, 81: 383-386.##SAS Institute, 2001. SAS User’s Guide Statics. SAS Institute Inc., Cary, NC., USA.##Shetty, K., Paliyath, G., Pometto, A. and Levin, R.E., 2006. Food biotechnology, CRC Press. 498 P.##Velu, C.S., Czeczuga, B. and Munuswamy, N., 2003. Carotenoprotein complexes in entomostracan crustaceans (Streptocephalus dichotomus and Moina micrura). Composite Biochemistry and Physics, 135: 35-42. Doi:10.1016/S1096-4959(03)00053-8.##Zeweil, H., Abaza, I.M., Zahran, S.M., Ahmed, M.H., AboulEla, H.M. and Saad, A.A., 2016. Effect of Spirulina platensis as dietary Supplement on Some Biological Traits for Chickens under Heat Stress Condition. Asian Journal of Biomedical and Pharmaceutical Sciences, 56(6): 8-13. ##

اعتبارسنجی و بکارگیری یک روش آنالیز جهت اندازه گیری میزان آلاینده‌های آلی پایدار در نمونه‌های ماهی قزل آلای رنگین‌کمان (Onchorhynchus mykiss) جمع‌آوری شده از بازار تهران Validation and application of an analytical method for determination of Persistent Organic Pollutants in Rainbow trout (Onchorhynchus mykiss) collected from Tehran retail markets 1 1 آلاینده‌های آلی پایدار گروه وسیعی از ترکیبات سمی و خطرناک می‌باشند که در برابر تجزیه شیمیایی، فیزیکی و حتی پرتوها مقاوم هستند. در این تحقیق یک روش آنالیز همزمان برای شناسایی و تعیین مقدار 18 آلاینده آلی پایدار شامل هفت ترکیب PCBs، ایزومرهای شماره 180، 153، 138، 118، 101، 52، 28 به عنوان شاخص‌های آلودگی بی فنیل های پلی کلره و یازده آفت‌کش آلی کلره (OCPs) شامل هگزا کلروبنزن (Hexachlorobenzene)، متوکسی کلر (Methoxychlor)، دی آلدرین (Dieldrin)، ددت و متابولیت‌های آن (DDTs: o,p’-DDE, p,p’-DDE, o,p’-DDT, p,p’-DDT) و تعدادی از سیکلو دی‌ان‌ها (CyclodieneΣ) شامل آلفا و بتا- اندوسولفان (α-, β-Endosulfan)، آلفا و گاما- کلردان (α-, ϒ-Chlordane)، بررسی و مقدار آن در ماهی قزل آلای رنگین کمان با روش استخراج مایع- مایع  و دستگاه کروماتوگرافی گازی طیف سنجی جرمی- متوالی (GC-MS/MS) و روش پایش MRM اندازه گیری شد. نتایج اعتبارسنجی نشان داد که منحنی کالیبراسیون 18 آلاینده آلی پایدار مورد مطالعه در سطوح غلظتی ng/mL 30-1/0 برای PCBs و ng/mL 150-5/0 برای OCPs، خطی بوده است و ضریب همبستگی (r2) در محدوده 999/0-990/0 قرار داشت. مقادیر حد تشخیص و حد تعیین مقدار آنالیت‌های مورد مطالعه بترتیب  ng/g 3/8- 6/0 و ng/g 2-25 بدست آمد. میانگین میزان بازیافت و میزان تکرارپذیری روش در 5 سطح آلوده مختلف (برای :OCPs  ng/g100- 5 و برای PCBs : ng/g 20-1)، بترتیب %112-%73 و %17.9-%4/1 محاسبه شد. دامنه مقادیر عدم قطعیت %88/30-%77/2 قرار داشت. نتایج بدست آمده از این پژوهش نشان دهنده حضور ترکیبات آلی کلره در ماهیان مورد بررسی می‌باشد، بدین ترتیب که بیشترین میزان آلودگی مربوط به   p,p’-DDT با مقدار میانگین ng/g ww (wet weight) 113 بدست آمد. همچنین سموم Dieldrin و p,p’-DDE  با مقادیر میانگین بترتیب ng/g ww 3/13 و ng/g ww 10 در مراتب بعدی آلودگی قرار داشتند. بررسی دیگر سموم آلی کلره مورد مطالعه در نمونه‌های ماهی نشان‌دهنده حضور برخی از این ترکیبات مانند α-Chlordane، ϒ-Chlordane،o,p’-DDE ، o,p’-DDT و HCB بود که مقادیر بدست آمده در نمونه‌ها پایین‌تر از حدود تعیین مقدار روش، بود. با توجه به مقادیر بدست آمده، میزان آلودگی به سموم آلی کلره پایین‌تر از حداکثر مقادیر مجاز مصوب 2017،11813SANTE/  قانون اتحادیه اروپا قرار داشت. همچنین بررسی بی‌فنیل‌های پلی‌کلره شاخص مورد مطالعه در نمونه‌های ماهی، نشان‌دهنده حضور تنها 28-PCB بود که مقدار آن پایین‌تر از حداکثر مقادیر مجاز مصوب 2017،644EU/ قانون اتحادیه اروپا قرار داشت.   2 Persistent organic pollutants are a wide group of toxic and dangerous compounds. These organic compounds are chemically and physically stable even beams. In this study an analysis method for simultaneous determination of 18 persistent organic pollutants including eleven Organochlorine pesticides (OCPs): HCB, Dieldrin, Methoxychlor, α-, ϒ-Chlordane, α-, β-Endosulfan and o,p’-DDE, p,p’-DDE, o,p’-DDT, p,p’-DDT and seven indicator Polychlonitated biphenyls (PCBs); IUPAC nos.: 28,52,101,118,138,153,180 congeners were determined in Rainbow trout by GC-MS/MS in MRM monitoring mode and LLE extraction. The validation results showed the calibration curves over the concentration range of 0.1-30 ng/mL for PCBs and 0.5-150 ng/mL for OCPs were linear and coefficient of determination (r2) ranged between 0.990-0.999. The LODs and LOQs for POPs studied were between 0.6-8.3 and 2-25 ng/g, respectively. The average recoveries obtained for analytes in five different spiked levels (1-10 ng/g for PCBs and 5 times for OCPs) were in the range of 73%-112%. The relative standard deviations of POPs in fish were in the range of 1.4-17.9% for all of the concentration levels. The ranges of uncertainty were reported between 2.77%-30.88%. The results indicated the presence of organochlorine pesticides in trout samples and the highest level of contamination was related to p,p’-DDT with average values of 113 ng/g ww (wet weight). Dieldrin and p,p’-DDE were among the next level of contamination with mean values of 13.3 and 10 ng/g ww, respectively. Study of other OCPs in the trout samples indicated the presence of α-, ϒ-Chlordane, o,p’-DDE, o,p’-DDT and HCB in which the amount were lower than the limit of quantitation (LOQ) of the method. OCPs residues were lower than maximum residue levels set by European Council Directives, SANTE (2017) No.11813. Also, the study of PCBs in trout samples indicated the presence of only PCB 28 and its amount was lower than maximum residue levels set by European Commission Regulation (EU) (2017) No.644.   147 160 2019/11/292019/12/262019/10/172019/05/192019/08/242019/08/172019/10/42019/11/22019/04/202019/12/32019/08/152019/12/212017/06/12019/02/52019/08/7 1398/5/16 2020/03/152020/06/302020/06/302020/06/302020/02/12020/03/32020/04/192020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/30 1399/4/10 میترا بیات Mitra Bayat دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران Iran bayat.mitra@gmail.com محمد صابر تهرانی Mohammad Saber tehrani دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران Iran drmsabertehrani@yahoo.com فرزاد کبارفرد Farzad Kobarfard دانشکده داروسازی، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی، تهران، ایران Iran farzadkf@yahoo.com سید واقف حسین Syed Waqif Husain دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران Iran hudsonsayedwaqif@yahoo.com حسن یزدان پناه Hassan Yazdanpanah دانشکده داروسازی، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی، تهران، ایران Iran yazdanpanah@sbmu.ac.ir Persistent organic pollutant Polychlorinated biphenyls Organochlorine pesticides Rainbow trout GC-MS/MS آلاینده‌های آلی پایدار آفت‌کش‌های آلی کلره بی‌فنیل‌های پلی‌کلره ماهی قزل آلای رنگین‌کمان دستگاه کروماتوگرافی گازی- طیف سنجی جرمی متوالی ##انستیتو تحقیقات تغذیه‌ای و صنایع غذایی ایران 85-1383. مطالعه جامع الگوی سبد غذایی. دانشگاه علوم پزشکی و خدمات بهداشتی درمانی شهید بهشتی. ##جاودان خرد، الف.، اسماعیلی ساری، ع. و بهرامی فر، ن.، 1391. پایش آفت کش های آلی کلره و بی فنیل های چند کلره در سه گونه از ماهیان خوراکی در تالاب انزلی. نشریه دامپزشکی، 95: 59-50.##خدانظری، الف.ن.، حاجی مرادلو، ع. و قربانی، ر.، 1397. جایگزینی پودر ماهی با درصدهای مختلف سیلاژ تخمیری حاصل از پودر ماهی کیلکا آنچوی بر فاکتور رشد و قابلیت هضم پروتئین خوراک قزل آلای رنگین کمان. مجله علمی شیلات ایران، 28: 107-95. ##Doi: 10.22092/ISFJ. 2019.118889 ##داودی، م.، اسماعیلی ساری، ع.، بهرامی فر، ن. و زمانی احمد محمودی، ر.، 1389. بررسی غلظت و الگوی پراکندگی بی فنیل های چند کلره در 5 گونه ماهیان خوراکی تالاب شادگان. نشریه دامپزشکی، 88: 59-53.##کبارفرد، ف. و عمیدی، س.، 1387. مبانی و کاربرد کروماتوگرافی مایع ـ طیف سنجی جرمی. انتشارات مرکز تحقیقات فیتوشیمی دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی، 82-85 صفحه.##کرمی، الف.، علیشاهی، م.، قربانپور، م.، تابنده، م.ر. و محمدیان، ت.، 1397. بررسی پاسخ پادتن سرمی قزا آلای رنگین کمان (Onchorhynchus mykiss) به واکسن دوگانه استرپتوکوکوزیس/ لاکتوکوکوزیس. مجله علمی شیلات ایران، 28: 9-1. ##DOI: 10.22092/ISFJ. 2019.118605 ##کلانتری، ن. و غفاری پور، م.، 81-1379. طرح جامع مطالعات الگوی مصرف مواد غذایی خانوار و وضعیت تغذیه ای کشور.##ملوندی، ح.، 1388. ارزیابی و مقایسه ترکیبات ارگانوکلره در اندام های مختلف شغال با توجه به جنس و طول بدن در منطقه مرکزی استان مازندران. دانشگاه تربیت مدرس، دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی مهندسی محیط زیست.##Andersen, G., Kovacs, K.M., Lydersen, C., Skaare, J.U., Gjertz I. and Jenssen, B.M., 2001. Concentrations and Patterns of Organochlorine Contaminants in White Whales (Delphinapterus leucas) from Svalbard Norway. The Science of the Total Environment, 264: 267-281. Doi:10.1016/S0048-9697(00)00765-8.##Bailey, R.E., 2001. Global hexachlorobenzene emissions. Chemosphere, 43: 167-182. ## Doi: 10.1016/S0045-6535(00)00186-7.##Borja, J., Taleon, D.M., Auresenia, J. and Gallardo, S., 2005. Polychlorinated biphenyls and their biodegradation. Process Biochemistry, 40: 1999-2013. ## Doi: 10.1016/j.procbio.2004.08.006.##Brown, J., Bedard, D.L., Brennan, M.J., Carnahan, J.C., Feng, H. and Wangner, RE., 1987. Polychlorinated biphenyl dechlorination in aquatic sediments. Science, 236: 709-712. Doi: 10.1126/science.236.4802.709.##Carlo, S. and Yolanda, P., 2007. Recent trends in liquid chromatography-tandem mass##spectrometry to determine pesticides and their metabolites in food. TrAC Trends in Analytical Chemistry, 26: 103-115. ## Doi:10.1016/j.trac.2006.08.005.##Chandran, S. and Singh, R.S.P., 2007. Comparison of various international guidlines for analytical method validation. Pharmazie, 62: 4-14. Doi: 10.1691/ph.2007.1.5064.##Cocoo, E., Guignard, C., Haffmann, L. and Bohn, T., 2011. Rapid analysis of polychlorinated biphenyls in fish by pressurized liquid extraction with in-cell cleanup and GC-MS. International Journal of Environmental Analytical Chemistry, 91: 333-347. ## Doi: 10.1080/03067319.2010.496048.##Cok, I. and Satiroglu, M.H., 2004. Polychlorinated Biphenyl Levels in Adipose Tissue of Primiparous Woman in Turkey. Environment International, 30: 7-10. ## Doi: 10.1016/S0160-4120(03)00140-5.##Covaci, A, Gheorgheb, A., Voorspoels, S., Maervoeta, J., Steen Redeker, E., Blust, R. and Schepens, P., 2005. Polybrominated diphenyl ethers, polychlorinated biphenyls and organochlorine pesticides in sediment cores from the Western Scheldt river (Belgium), analytical aspects and depth profiles. Environment International, 31: 367- 375. ## Doi: 10.1016/j.envint.2004.08.009.##Davodi, M. Esmaili-Sari, A. and Bahramifarr N., 2011. Concentration of polychlorinated biphenyls and organochlorine pesticides in some edible fish species from the Shadegan Marshes (Iran). Ecotoxicology and Environmental Safety, 74: 294-300. ## Doi: 10.1016/j.ecoenv.2010.07.045.##Dip, R., Hegglin, D., Deplazes, P., Dafflon, O., Koch, H. and Naegeli, H., 2003. Age- and Sex-dependent Distribution of Persistent Organochlorine in Urban Foxes. Environmental Health Perspectives, 111: 1608-1613. ## Doi: 10.1289/ehp.6226.##Drabova, L., Pulkrabova, J., Kalachova, K., Hradecky, J., Suchanova, M., Tomaniova, M., Kocourek, V. and Hajslova J., 2011. Novel approaches to determination of PAHs and Halogenated POPs in Canned Fish. Czech Journal of Food Sciences, 29: 498–507. ## Doi:10.17221/405/2010-CJFS.##European Commission, 2017. Commission Regulation (EU)., 2017/644, Setting Maximum Levels for certain Contaminations in Foodstuffs. Official Journal of the European Union. L 92/9.## ##European Commission, 2017. SANTE/11813/2017, Guidance document on analytical quality control and method validation procedures for pesticide residues and analysis in food and feed. ##FAO., 2002. Submission and evaluation of pesticide residues data for the estimation of##maximum residue levels in food and feed. Food and Agricultural Organization of United##Nations. Rome, 25 P.##FAO., 2003. International Code of Conduct on the Distribution and use of Pesticide, Food##and Agriculture Organization of the United Nations, Rome, 6 P.##Fu, C.T. and Wu, S.Ch., 2005. Bioaccumulation of polychlorinated biphenyls in mullet fish in former ship dismantling harbor, a contaminated estuary, and nearby coastal fish farms. Marine Pollution Bulletin, 51: 932-939. Doi: 10.1016/j.marpolbul.2005.09.047.##Guruge, K.S. and Tanabe, S., 2001. Contamination by persistent organochlorines and butyltin Compounds in west coast of Sir Lanka. Marine Pollution Bulletin, 42: 179-186. Doi: 10.1016/S0025-326X(00)00140-5.##Liu, H., Zhang, Q., Cai, Z., Li, A., Wang, Y. and Jiang, G., 2006. Separation of polybrominated diphenyl ethers, polychlorinated biphenyls, polychlorinated dibenzo-p-dioxins and dibenzo-furans in environmental samples using silica gel and florisil fractionation chromatography. Analytica Chimica Acta, 557: 314-20. ## Doi: 10.1016/j.aca.2005.10.001.##Minh, N.H., Someya, M., Minh, T.B., Kunisue, T., Iwata, H., Watanabe, M., Tanaba, S., Viet, P.H. and Tuyen, B.C., 2004. Persistent Organochlorine residues in human breast milk from Honai and Hochiminh city, Vietnam, contamination, accumulation kinetics and risk assessment from infants. Environmental Pollution, 129: 431-441. ## Doi:10.1016/j.envpol.2003.11.012.##Naso, B., Perrone, D., Ferrante, M.C., Bilancion, M. and Lucisano, A., 2005. Persistent organic pollutants in edible marine species from the gulf of Naples, Southern Italy. Science of the Total Environment, 343: 83-95. ## Doi: 10.1016/j.scitotenv.2004.10.007.##Navarro, S., Vela, N. and Navarro, G., 2007. An overview on the environmental behavior of##pesticide residue in soils. Spanish Journal of Agricultural Research, 5: 357-375. ## Doi: 10.5424/sjar/2007053-5344. ##Perugini, M., Cavaliere, M., Giammario, A., Mazzone, P., Olivieri, V. and Amorena, M., 2004. Levels of Polychlorinated Biphenyls and Organochlorine Pesticides in some Edible Marine Organisms from Central Adriatic Sea. Chemosphere, 57: 391-400. ## Doi: 10.1016/j.chemosphere.2004.04.034.##Porta, M. and Zumeta, E., 2002. Implementing the Stockholm treaty on persistent organic pollutants. Occupational and Environmental Medicine, 59: 651-2. ## Doi: 10.1136/oem.59.10.651##Ritter, L., Solomon, K.R. and Forget, J., 1995. Persistent Organic Pollutants, an Assessment Report on, DDT, Aldrin, Dieldrin, Endrin, Chlordane, Heptachlor, Mirex, Toxaphene, HCB, PCBs, Dioxins and Furans. Canadian Network of toxicology Centers 620 Gordon Street Guelph on Canada, 145 P.##Schmid, P., Kohler, M., Gujer, E., Zennegg, M. and Lanfranchi, M., 2007. Persistent organic pollutants, brominated flame retardants and synthetic musks in fish from remote alpine lakes in Switzerland. Chemosphere, 67: 16-21. Doi:10.1016/j.chemosphere.2006.05.080.##Suchan, P., Pulkrabova, J., Hajsolva, J. and Kocourek, V., 2004. Pressurized liquid extraction in determination of polychlorinated biphenyls and organochlorine pesticides in fish samples. Analytica Chimica Acta, 520: 193-200. Doi:10.1016/j.aca.2004.02.061.##UN., United Nations, Treaty Series., 2001. Stockholm Convention on Persistent Organic Pollutants Stockholm, 22 May, 2256: 119. Registration 17 May 2004, No: 40214, Signatories 152, Parties 183.##UNEP., 2004. UNEP Annual Evaluation Report 2004. Protecting human health and the environment from persistent organic pollutants. Stockholm convention. Available DIALOG. http://wedocs.unep.org/handle/20.500.11822/356. Cited 28 Aug 2019.##Voorspoels, S., Covaci, A., Maervoet, J., De Meester, I. and Schepens, P., 2004. Levels and profiles of PCBs and OCPS in marine benthic species from the Belgian North Sea and the Western Scheldt Estuary. Marine Pollution Bulletin, 49: 393-404. ## Doi: 10.1016/j.marpolbul.2004.02.024.##Wenhai, W., Jie, X., Hongmei, Zh., Qing, Zh. and Shijian, L. 2005. A practical approach tothe degradation of polychlorinated biphenyls in transformer oil. Chemosphere, 7: 944-950. Doi: 10.1016/j.chemosphere.2004.11.079.##WHO., 2003. Guidelines on the management of public health pesticides. Report of the##WHO Interregional Consultation, Chiang Mai, Thailand. ##WHO/FSF/FOS/97.7., 2011. Guidline for predicting dietry intake of pesticide residues.##Yang, R., Wang, Y., Li, A., Zhang, Q., Jing, C., Wang, T., Wang, P., Jiang, G. and Li, Y. 2010. Organochlorine pesticides and PCBs in fish from lakes of the Tibetan Plateau and the implications. Environmental Pollution, 158: 2310-2316. Doi: 10.1016/j.envpol.2010.02.004.##Zhu, Y., Lio, H., Xi, Q., Cheng, H. and Xu, X., 2005. Organochlorine pesticides (DDT and HCH) in soils from the outskirt of Beijing, China. Chemosphere, 60: 770-778. Doi: 10.1016/j.chemosphere.2005.04.01##Zhou, R., Zhu, L. and Kong, Q., 2007. Persistent chlorinated pesticides in fish species from Qiantang River in East China. Chemosphere, 68: 838-847. ## Doi: 10.1016/j.chemosphere.2007.02.021.##Zhou, R., Zhu, L., Chen, Y. and Kong, Q., 2008. Concentration and Characteristics of Organochlorine Pesticides in Aquatic Biota from Qiantang River in China. Environmental Pollution, 151: 190-199. ## Doi: 10.1016/j.envpol.2007.02.015. ##

ترجیح غذایی بچه ماهیان شیپ (Acipenser nudiventris Lovetski, 1828) در استخرهای خاکی The food preference of juvenile Ship sturgeon (Acipenser nudiventris Lovetski, 1828) in earthen ponds 1 1 مطالعه حاضر با هدف تعیین ارگانیسم های غذایی موجود در استخرهای خاکی و ترجیح بچه ماهیان شیپ در مصرف از آنها انجام شد. نمونه ‌‌برداری به مدت 6 هفته در 6 نوبت و از 2 استخر خاکی 4 هکتاری انجام گردید. در هر استخر سه محل نمونه برداری در نظر گرفته شد. به منظور بررسی زئوپلانکتون‌‌ها و بنتوزهای خورده شده، از محتویات معده 180 قطعه بچه ماهی شیپ نمونه برداری صورت گرفت. بیشترین فراوانی ارگانیسم های غذایی در استخرها مربوط به کوپه‌‌پودا و ناپلی آنها با 58/49 درصد بود و بالاترین میزان آنها در محتویات معده بچه ماهیان شیپ مربوط به کلادوسرا با 19/61 درصد و شیرونومیده با 27/25 درصد مشاهده گردید. شاخص انتخاب غذا برای شیرونومیده، کلادوسرا و استراکودا، مثبت ولی شاخص انتخاب غذا برای کوپه‌‌پودا، منفی بود. بنابراین، نتایج این مطالعه مؤید آن است که در طول دوره پرورش در استخر، بچه ماهیان شیپ تمایل زیادی برای تغذیه از ارگانیسم‌های غذایی نظیر کلادوسرا، استراکودا و شیرونومید از خود نشان می‌دهند بطوریکه دافنی و شیرونومید به عنوان غذای اصلی و استراکودا جزء غذای اتفاقی آنها محسوب می‌شوند و فقط در صورتی تغذیه از کوپه‌‌پودا صورت می گیرد که بیومس کلادوسرا، استراکودا و شیرونومید در استخر محدود باشد. 2 The purpose of the present study was to determine the dietary organisms in the earthen ponds and the preferences of the fish in the consumption of them. Sampling for 6 weeks was carried out at 6 times in two 4 hectare ponds with 3 sample points in each pond. In order to evaluate zooplankton and benthos from the contents of the stomach, 180 juveniles were sampled. The Results demonstrated that. The highest abundance of food organisms in ponds was Copepoda and naupli with 49.58 % and the highest amount of them in the stomach contents of of juvenile sturgeon was in the case of Cladocera with 61.19% and Chironomidae with 25.27%. Ivlev's index (E) to Cladosera, Ostracoda and Chironomidae were positive. On the other hand, the value of E index for Copepoda was negative. The results of present study showed that, juveniles' sturgeon have a high tendency to feed from Cladosera, Ostracoda and Chironomidae. So that, Cladosera and Chironomidae are among the main food and Ostracoda is considered as an occasional food. When Cladosera, Ostracoda and Chironomidae biomass decreased in the ponds, sturgeon feed from Copepoda. 161 167 2019/11/292019/12/262019/10/172019/05/192019/08/242019/08/172019/10/42019/11/22019/04/202019/12/32019/08/152019/12/212017/06/12019/02/52019/08/72019/06/17 1398/3/27 2020/03/152020/06/302020/06/302020/06/302020/02/12020/03/32020/04/192020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/30 1399/4/10 شاهپور غلامی Shapoor Gholami مرکز بازسازی و حفاظت از ذخایر ژنتیکی ماهیان دریایی شادروان دکتر یوسف‌پور، سیاهکل، ایران Iran shahpoor_gholamy@yahoo.com بهرام فلاحتکار Bahram Falahatkar گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران Iran falahatkar@guilan.ac.ir ایرج عفت پناه Iraj Efatpanah مرکز بازسازی و حفاظت از ذخایر ژنتیکی ماهیان دریایی شادروان دکتر یوسف‌پور، سیاهکل، ایران Iran iefatpanah@yahoo.com بهمن مکنت خواه Bahman Meknatkhah مرکز بازسازی و حفاظت از ذخایر ژنتیکی ماهیان دریایی شادروان دکتر یوسف‌پور، سیاهکل، ایران Iran bahmanmeknatkhah@yahoo.com اسحق رسولی Eshagh Rasouli مرکز بازسازی و حفاظت از ذخایر ژنتیکی ماهیان دریایی شادروان دکتر یوسف‌پور، سیاهکل، ایران Iran bfalahatkar@yahoo.com Acipenser nudiventris Food organisms Zooplankton Benthos Stock enhancement ماهی شیپ ( (Acipenser nudiventris ارگانیسم‌های غذایی زئوپلانکتون‌‌ها بنتوزها بازسازی ذخایر ##آذری تاکامی، ق.، 1388. تکثیر و پرورش ماهیان خاویاری، انتشارات دانشگاه تهران. 429 صفحه.##آقایی مقدم، ع. و اصلان پرویز، م.، 1382. نقش زئوپلانکتون‌ها در مناسبات تغذیه‌ای بچه ماهیان خاویاری قره برون در استخرهای پرورش مرکز تکثیر و پرورش ماهی شهید رجایی ساری، مجله پژوهش و سازندگی، 60، 83-77.##اکرمی، م. و خیرآبادی، و.، 1378. بررسی رژیم غذایی بچه فیل‌ماهی، تاس‌ماهی و چالباش در حوضچه‌های فایبرگلاس و استخرهای خاکی کارگاه شهید مرجانی گرگان. پروژه کارشناسی شیلات، 58 صفحه.##جیران، آ.، آذری تاکامی، ق.، خوشباور رستمی، م. و امینی، ک.، 1381. بررسی تغذیه تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus) در استخرهای خاکی از مرحله بچه ماهی نورس تا انگشت قد. دومین همایش ملی منطقه ای ماهیان خاویاری، رشت، 6-4 آبان.##حدادی مقدم، ک.، احمدی، م. و کیوان، ا.، 1380. بررسی زئوپلانکتون های موثر در تغذیه بچه ماهیان ازون برون (Acipenser stellatus) در استخرهای خاکی. مجله علمی شیلات ایران، 10 (2)، 14-1.##فلاحتکار، ب. و آذری تاکامی، ق.، 1385. سنجش بیونرماتیوهای تکثیر مصنوعی ماهی شیپ (Acipenser nudiventris Lovetski, 1828) در ایران. مجله علوم وفنون دریایی، 5 (2)، 73-65.##کهنه شهری، م. و آذری تاکامی، ق.، 1353. تکثیر مصنوعی و پرورش ماهیان خاویاری. دانشگاه تهران، ٢٩٨ صفحه.##کازانچف، ا، ان.، 1981. ماهیان دریای خزر و حوزه آبریز آن. ترجمه شریعتی 1371، وزارت فرهنگ و ارشاد اسلامی، 171 صفحه.##کردجزی، ض. و عبدلی، ا.، 1381. بررسی عادت غذایی بچه ماهیان قره برون (Acipenser persicus) در استخرهای خاکی شهید مرجانی گرگان. دومین همایش ملی- منطقه ای ماهیان خاویاری، رشت، 6-4 آبان.##وثوقی، غ. و مستجیر، ب.، 1371. ماهیان آب شیرین. دانشگاه تهران، 317 صفحه. ##یوسفیان، م.، عبدالحی، م.، مخدومی، چ. و سلیمانی رودی، ع.، 1387. پرورش بچه تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus) در استخرهای خاکی و بررسی عوام مؤثر بر رشد آن، مجله پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان، 78، 166-156.##Adamek, Z., Prokes, M., Barus, V. and Sukop, I., 2007. Diet and growth of 1+ Siberian sturgeon, Acipenser baerii in alternative pond culture. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 7: 153-160.##Berg L.S., 1962. Freshwater fishes of the USSR and adjacent countries. IPST Jerusalem, 1: 504. ##Birstein, V.J., Bemis W.E. and Waldman J.R., 1997. The Threatened status of Acipenseriformes species: A summary. Environmental Biology of Fishes, 48: 427-433.##Bronzi, P., Rosenthal, H. and Gessner, J., 2011. Global sturgeon aquaculthure production: an overview. Journal of Applied Ichthyology, 27(1): 169-175.##Holčik J., 1989. The freshwater fishes of Europe; General introduction to fishes Acipenseriformes. AULA Verlag Wiesbaden; 1: 468.## ##Ivlev, V.S., 1961. Experimental ecology of the feeding of fishes. Yale University Press, New York, 302 P.##Lee, H.J. and Lee, S.Y., 2001. Heat transfer correlation for boiling flows in small rectangular horizontal channels with low aspect ratios. International Journal of Multiphase Flow, 27: 2043-2062. DOI: 10.1016/S0301-9322(01)00054-4##Pyka, J. and Kolman, R., 2003. Feeding intensity and growth of Siberian sturgeon Acipenser baeri Brandt in pond cultivation. Archives of Polish Fisheries, 11: 287-294.##Sourina, A., 1978. Phytoplankton manual. United Nations Educational, Scientific and Culture Organization. 337 P.##Tsqlolikin, S.J., 1995. Key to freshwater invertebrates of Russia and adjacentland. pp. 34-37. ##

بررسی میزان آلودگی میکروبی آبهای سطحی رودخانه گرگر بر اساس استانداردهای جهانی Evaluation of bacterial contamination of surface waters of the Gargar River based on global standards 1 1 رودخانه گرگر شاخه شرقی رودخانه کارون است که در شمال شهر شوشتر توسط بند میزان از شاخه غربی آن یعنی شطیط جدا می‌شود و با طی مسافتی حدود 78 کیلومتر مجدداً به شاخه شطیط و دز پیوسته و کارون بزرگ را تشکیل می‌‌دهد. این رودخانه ضمن تأمین آب شرب شهرستان شوشتر، هفتگل و بخشی از رامهرمز و روستاهای آن در زمره یکی از قطب‌‌های بزرگ پرورش ماهی استان بشمار می‌‌آید. این مطالعه با هدف تعیین وضعیت آلودگی میکروبی آب رودخانه گرگر، مقایسه آلودگی میکروبی در ایستگاه‌‌های بالادست و پایین دست رودخانه و همچنین مقایسه با استانداردهای EPA جهت تعیین کاربری‌‌های مختلف، مورد بررسی قرار گرفت. بدین منظور از 6 ایستگاه در طول رودخانه نمونه‌‌برداری به صورت ماهانه به‌‌ مدت یکسال صورت گرفت و شاخص‌‌های میکروبی شامل تعداد کل باکتری، تعداد کل کلی‌‌فرم و تعداد کلی‌‌فرم مدفوعی مورد ارزیابی قرار گرفت. نتایج نشان داد که بیشترین میزان در هر 3 شاخص میکروبی را ایستگاه 2 بعد از محل تخلیه فاضلاب شهر شوشتر (بترتیب با CFU/mL 103× 24/15، MPN/100mL 82/68181 و  MPN/100mL 91/3380) کمترین میزان را ایستگاه 1 در بالادست رودخانه (بترتیب باCFU/mL 103× 8/2،  MPN/100mL 27/2627 و MPN/100mL 73/1062) دارد. نتایج آزمایش‌ها نشان داد که شاخص‌‌های میکروبی با توجه به تغییرات فصلی، زمان و مکان نمونه‌‌برداری متفاوت بوده و همچنین از نظر کیفی آب رودخانه گرگر در سطح پایینی بوده است و جهت مصارف انسانی مناسب نمی‌‌باشد. 2 The Gargar River is the eastern brunch of the Karoon River, which is separated in north of Shoushtar by regulatory dam (Bandmizan) from its western branch, Shotaeit, and is about 78 km later, join to the Shotaeit and Dez and create the big Karoon. This river, while supplying drinking water to Shoshtar, Haftgel, and part of Ramhormoz and its villages, is one of the great poles of the province's fish culture. The aim of this study was to evaluate the microbial quality of surface waters of the Gargar River, compare the microbial contamination at upstream and downstream stations as well as comparisons with EPA standards to determine different uses. For this purpose, 6 stations were selected and sampling was conducted monthly within one year and microbial indices including total bacterial count, total coliform count and fecal coliform count were evaluated. The results showed that maximum of the 3 microbial indicators was at the station 2, after the sewage discharge of Shushtar (respectively 15.24×103 CFU/mL, 68181.82, 3380.91MPN/100mL) and the minimum value was at the station 1 at the upstream river (respectively 2.8×103 CFU/mL, 2627.27, 1062.73MPN/100mL). The microbial indices varied depending on seasonal variation, sampling time and location and the final results of this study showed that the water quality of river is inferior and not suitable for human use.   169 178 2019/11/292019/12/262019/10/172019/05/192019/08/242019/08/172019/10/42019/11/22019/04/202019/12/32019/08/152019/12/212017/06/12019/02/52019/08/72019/06/172019/10/5 1398/7/13 2020/03/152020/06/302020/06/302020/06/302020/02/12020/03/32020/04/192020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/30 1399/4/10 مینا آهنگرزاده Mina Ahangarzadeh پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور Iran m.ahangarzadeh@yahoo.com حسین هوشمند Hossein Houshmand پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور Iran houshmand_h@yahoo.com سیمین دهقان مدیسه Simin Dehghan madiseh پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور Iran s.dehghan056@gmail.com سیدرضا سیدمرتضائی Seyed Reza Seyed Morezaei پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور Iran rmortezaei@yahoo.com Microbial Indicators Surface Waters Gargar River شاخص باکتریایی آب‌‌های سطحی رودخانه گرگر ##اداره کل حفاظت محیط زیست استان خوزستان.1383. طرح جامع کاهش آلودگی رودخانه کارون (گزارش تفصیلی).## بینش برهمند، م.، نبی زاده، ر.، ندافی، ک. و مصداقی نیا، ع.، 1391 . آنالیز کیفی آب‌‌های ساحلی نوار جنوبی دریای خزر در استان گیلان و تعیین شاخص‌‌های بهداشت محیط در طرح‌‌های ساحلی آن منطقه در سال‌‌های 1389-1388 مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران، 23 (88):52-41. ##حسنیان، س.، موبد، پ.، حسینی زارع، ن. و آخوردزاده، ح.، 1385. طبقه بندی کیفیت رودخانه های کارون و دز در بازه گتوند تا خرمشهر و دزفول تا بامدژ با استفاده از شاخص WQI و بررسی انتروباکتریاسه های جدا شده در این مقطع، هفتمین سمینار بین المللی مهندسی رودخانه، اهواز، دانشگاه شهید چمران.##شریفی، م.ب. و شهیدی پور، س.م.م.، 1385. تحلیل سیستم های منابع آب. دانشگاه فردوسی مشهد. 257 (2):23.##شهریاری، ع.، کبیر، م.ج. و گل فیروزی، ک.، 1387. وضعیت آلودگی آب دریای خزر در خلیج گرگان. مجله علمی دانشکده علوم پزشکی گرگان، 10 (2): 69-73. ##شهسواری پور، ن. و ساری، ا.، 1390. بررسی آلودگی میکروبی رودخانه هراز و تعیین کاربری های مجاز آب رودخانه با توجه به استانداردهای جهانی. علوم و تکنولوژی محیط زیست، 13(4): 94-81. http://jest.srbiau.ac.ir/article_83_f88923f79fc7dbeccf6bb0ed8569ec99.pdf##صفری، ر. و یعقوب زاده، ز.، 1391. ارزیابی بیواندیکاتورهای میکروبی رودخانه شیرود در استان مازندران. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. 22 (98): 299-289.##طهماسبی، س.، افخمی، م. و تکدستان، ا.، 1390. تحلیل وضعیت فیزیکی، شیمیایی و میکروبی آب رودخانه گرگر با استفاده ازشاخص کیفیت آب. فصلنامه علمی – پژوهشی علوم بهداشتی. 3 (4).##فئید، م.، بابایی، ه. و عابدینی، ع.، 1394. بررسی پارامترهای میکروبی و فیزیکوشیمیایی در تالاب انزلی. فصلنامه علمی پژوهشی اکوبیولوژی تالاب- دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. 7 (25): 45-54. ##محمودی، م.م. و جوانمردی، ف.، 1388. تعیین میزان و منشا باکتری‌‌های مدفوعی در آب دریاچه‌‌ی پریشان. مجله زیست شناسی ایران. 22 (4): 733-566.##موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران، 1374. جستجو و شمارش کلی فرم ها در آب به روش چند لوله ای. استاندارد شماره 3759 ایران. چاپ اول.##موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران، 1382. جستجو و شناسایی کلی فرم ها در آب به روش وجود یا عدم وجود. استاندارد شماره 7225.##موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران، 1386. نمونه برداری از آب برای آزمون های میکروبیولوژی. استاندارد شماره 4208. تجدید نظر اول.##نادری، ش.، شریعت، م.، ندافی، ک.، واعظی، ف. و زراعتی، ح.، 1381 . بررسی ارتباط بین میزان شاخص های بیولوژیک و پارامترهای کیفی آب در سیستم توزیع آب آشامیدنی مناطق روستایی استان قزوین . ششمین همایش ملی بهداشت محیط، ساری.##نظری، ح.، قدسیان، م. و خدادادی، ا.، 1384. مطالعه اثرات آلاینده ها بر کیفیت آب شفارود در استان گیلان. پنجمین کنفرانس بین المللی مهندسی محیطی. صفحه: 51- 43.##هوشمند، ح.، آهنگرزاده، م.، دهقان مدیسه، س. و سیدمرتضایی، س.ر.، 1398. بررسی کیفیت آب دریاچه سد سیمره با استفاده از شاخص‌‌های باکتریایی و ارتباط آن با برخی از فاکتورهای فیزیکی و شیمیایی آب. مجله علمی شیلات ایران. ۲۸ (۶) :۸۹-۹۷. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.120188##هوشمند، ع.، دلقندی، م. و سیدکابلی، ح.، 1387. پهنه بندی وضعیت کیفی آب رودخانه کارون براساس شاخص WQI با بهره گیری از GIS. دومین همایش تخصصی مهندسی محیط زیست، تهران.##یعقوب زاده، ز. و صفری ر.، 1395. بررسی باکتری‌های کلیفرمی وتخم نماتود رواناب‌های رودخانه هراز. مجله علمی شیلات ایران. ۲۵ (۱) :۲۹-۳۸. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110221##An, Y.J., Kampbell, D.H. and Breidenbach, P.G., 2002. Escherichia coli and total coliforms in water and sediments at lake marinas. Environmental Pollution, 120: 771–778. Doi: 10.1016/S0269-7491(02)00173-2##Baghel, V.S., Gopal, K., Dwivedi, S. and Tripathi, R.D., 2005. Bacterial indicators of fecal contamination of the Gangetic river system right at its source. Ecological Indicators, 5: 49-56. Doi: 10.1016/j.ecolind.2004.09.002.##Buckalew, D.W., Hartman, L.J., Grimsley, G.A., Martin, A.E. and Register, K.M., 2006. A long- term study comparing membrane filtration with Colilert defined substrates in detection fecal coli forms and Escherichia coli in natural waters. Journal of Environmental Management, 80: 191-197. Doi: 10.1016/j.jenvman.2005.08.024.##Buller, N.B., 2004. Bacteria from fish and other aquatic animals: a practical identification manual. CABI publishing. 361 P.##Evanson, M.R. and Ambrose, F., 2006. Sources and growth dynamics of fecal indicator bacteria in a coastal wetland system and potential impacts to adjacent waters. Water research. 40: 475-486. Doi: 10.1016/j.watres.2005.11.027.##Gordon, A.M., Bissonnette, G.K., Jezeski, J.J., Thomson, C.A. and Stuart, D.G., 1974. Comparative Survival of Indicator Bacteria and Enteric Pathogens in Well Water. Applied Microbiology, 27(5): 823-829. PMCID: PMC380150##Kim, G.T., Choi, E. and Lee, D., 2005. Diffuse and point pollution impacts on the pathogen indicator organism level in the GEUM River, Korea. Science of the Total Environment, 350: 94–105. Doi: 10.1016/j.scitotenv.2005.01.021.##Mahler, B.J., Personne´, J.C., Lods, G.F. and Drogue, C., 2000. Transport of free and particulate-associated bacteria in karst. Journal of Hydrology, 238: 179–193. Doi: 10.1016/S0022-1694(00)00324-3.##Majnunian H., 1998. Wetlands: Classifying and Protecting Wetlands, Dayereye Sabz Publication Co,pp. 10-49.##Mvungi, A., Hranova, R.K. and Love, D., 2003. Impact of home industries on water quality in a tributary of the Marimba River, Harare: implications for urban water management. Physics and Chemistry of the Earth, Parts A/B/C 28, 20-27:1131-1137. Doi: 10.1016/j.pce.2003.08.034.##Palamuleni, L.G., 2002. Effect of sanitation facilities, domestic solid waste disposal and hygiene practices on water quality in Malawi_ s urban poor areas: a case study of south Lunzu Township in the city of Blantyre. Physics and Chemistry of the Earth, 27: 845-850. Doi: 10.1016/S1474-7065(02)00079-7.##Parajuli, P.B., 2007. SWAT bacteria sub-model evaluation and application. Doctor of Philosophy. doctoral dissertation. Department of Biological and Agricultural Engineering.##Ramos, M.C., Quinton, J.N. and Tyrrel, S.F., 2006. Effects of cattle manure on erosion rates and runoff water pollution by fecal coli forms. Journal of Environmental Management, 78: 97-101. Doi: 10.1016/j.jenvman.2005.04.010. ##

تاثیر سطوح مختلف مکمل غذایی اسید آراشیدونیک بر شاخص‌‌های رشد و بازماندگی ماهی گورخری (Danio rerio) Influence of different levels of dietary Arachidonic Acid Supplementation on growth parameters and survival of Zebrafish (Danio rerio) 1 1 اسیدهای چرب بلند زنجیره چند غیر اشباع (LC-PUFA)، همچون اسید آراشیدونیک (C20:4n-6) نقش حیاتی در کنترل و تنظیم عملکرد رشد، متابولیسم چربی‌‌ها، عملکرد غشای سلولی و عملکرد سیستم ایمنی ماهیان دارند. این پژوهش به منظور تولید ماهیان مقاوم و با کیفیت‌تر ماهی گورخری با استفاده از مکمل غذایی اسید آراشیدونیک جهت رسیدن به نرخ رشد و بازماندگی مطلوب‌‌تر صورت گرفت. برای این منظور، پنج جیره آزمایشی با سطوح مختلف اسید آراشیدونیک، شامل مقادیر صفر(کنترل)، 5/0، 1، 2 و 4 درصد به کل اسید چرب جیره ترکیب شدند. ماهیان نورس گورخری (20 روزه) پنج مرتبه در روز به مدت 10 هفته تغذیه شدند. شاخص‌‌های رشد طول و وزن در این مدت ثبت شد. اگر چه پس از دوره، تیمارها در شاخص‌‌های رشد (طول و وزن) تفاوت معنی‌‌داری داشتند، اما در نرخ بازماندگی تفاوت آماری معنی‌‌داری مشاهده نشد. نتایج نشان داد، افزایش سطح اسید آراشیدونیک جیره (تا سطح 2 درصد از چربی کل)، بیشترین میزان وزن نهایی (01/0±38/0 گرم)، افزایش وزن بدن (16/0±32/0)، درصد افزایش وزن بدن (44/28±42/613)، درصد رشد روزانه (02/0±46/0)، نرخ رشد ویژه (01/0±39/1) و کمترین ضریب تبدیل غذایی (03/0±12/1) را به نسبت سایر تیمارها بدنبال داشت. لذا، نتایج نشان داد اسید آراشیدونیک بر شاخص‌‌های رشد ماهی گورخری تأثیر معنی‌‌داری دارد. 2 Long-chain polyunsaturated fatty acids (such as Arachidonic acid, ARA, C20:4 n-6) have unique roles in controlling and regulating growth performance, lipid metabolism, cell membrane fluidity, and immune function in fish. This research was conducted to produce higher quality and resistant zebrafish using arachidonic acid diet to achieve the best growth and survival rate. Five experimental groups were established and fed diets with different levels of ARA corresponding to 0 (control), 0.5, 1, 2 and 4% of total fatty acid.  Zebrafish larvae (20-days post-fertilization) were fed ad libitum 5 times daily for 10 weeks. Both weight and length were recorded to determine growth indices. Although there were significant differences in general growth demographics (length/weight) after the 10-week feeding trial, no significant differences in the overall survival rate of Zebrafish. Increase in dietary Arachidonic acid (up to 2%), maximum final weight (0.38 ± 0/01 g), body weight gain (0.32±0/16), body weight gain percent (613.42 ± 28/44), daily growth rate (0.46 ± 0/02) and the lowest feed conversion ratio (2.24 ± 0/05) were higher than other treatments. The results show that ARA has a significant influence on the growth factors of Zebrafish. 179 191 2019/11/292019/12/262019/10/172019/05/192019/08/242019/08/172019/10/42019/11/22019/04/202019/12/32019/08/152019/12/212017/06/12019/02/52019/08/72019/06/172019/10/52019/11/1 1398/8/10 2020/03/152020/06/302020/06/302020/06/302020/02/12020/03/32020/04/192020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/30 1399/4/10 علیرضا خیابانی Alireza Khiabani دانشگاه جامع علمی علمی کاربردی، ایران، تهران Iran khiabani@uast.ac.ir عبدالصمد کرامت Abdol Samad Keramat دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری Iran amirkola@yahoo.com حسین اورجی Hossein Orji دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری Iran hoseinoraji@yahoo.com ابوالقاسم اسماعیلی فریدونی Abolghasem Esmaili Fereidouni دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری Iran sohrabesmaeili70@gmail.com همایون حسین زاده صحافی Homayoun Hosseinzadeh Sahafi موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran h_hosseinzadeh@yahoo.com Arachidonic acid Essential fatty acid Zebrafish Growth factors اسید آراشیدونیک اسید چرب ضروری ماهی گورخری شاخص‌‌های رشد ##خیابانی، ع.، 1398. مروری بر اصول اخلاقی و فنی کار با ماهی گورخری به‌عنوان یک گونه مدل زیستی در مطالعات علوم پزشکی. اخلاق و تاریخ پزشکی. ۱۲(۱) :۵۸-۷۲. ##Adam, A.C., Lie, K.K., Moren, M. and Skjærven, K.H., 2017. High dietary arachidonic acid levels induce changes in complex lipids and immune-related eicosanoids and increase levels of oxidised metabolites in zebrafish (Danio rerio). British Journal of Nutrition. Cambridge University Press; 117(8): 1075–1085. Doi: 10.1017/S0007114517000903.##Alves Martins D., Rocha F., Martínez-Rodríguez G., Bell G., Morais S., Castanheira F., Bandarra N., Coutinho J., Yúfera M. and Conceição L.E.C., 2012. Teleost fish larvae adapt to dietary arachidonic acid supply through modulation of the expression of lipid metabolism and stress response genes. British Journal of Nutrition. Cambridge University Press. 108(5): 864–874. Doi:10.1017/S0007114511006143##Bae J., Kim D., Yoo K., Kim S., Lee J. and Bai S., 2010. Effects of Dietary Arachidonic Acid (20:4n-6) Levels on Growth Performance and Fatty Acid Composition of Juvenile Eel, Anguilla japonica. Asian-Australas J Anim Sci, 23(4): 508-514. Doi: 10.5713/ajas.2010.90491##Bransden, M.P., Cobcroft, J.M., Battaglene, S.C., Dunstan, G.A., Nichols, P.D. and Bell, J.G., 2004. Dietary arachidonic acid alters tissue fatty acid profile, whole body eicosanoid production and resistance to hypersaline challenge in larvae of the temperate marine fish, striped trumpeter (Latris lineata). Fish Physiology and Biochemistry, 30: 241–256. Doi:10.1007/s10695-005-8245-4##Burrells, C., Williams, P.D. and Forno, P.F., 2001. Dietary nucleotides: a novel supplement in fish feeds −1. Effects on resistance to disease in salmonids. Aquaculture, 199: 159–169. Doi: 10.1016/S0044-8486(01)00577-4##Coutteau, P., Ceulamans, S., VanHalteren, A. and Robles, R., 2002. Fish meal and fish oil in Aquafeeds-how narrow is the bottleneck for marine fish. X International Symposium of Nutrition and Feed in Fish. 1-7 June 2002, Rhodes, Greece. Poster 38.##Crawford, A.D., Esguerra, C.V. and Witte, P.A.M., 2008. Fishing for drugs from nature: zebrafish as a technology platform for natural product discovery. Planta Medica. 74: 624–632. Doi: 10.1055/s-2008-1034374##Fountoulaki, E., Alexis, M.N., Nengas, I. and Venou, B., 2003. Effects of dietary arachidonic acid (20:4n-6), on growth, body composition, and tissue fatty acid profile of gilthead bream fingerlings (Sparus aurata L.). Aquaculture, 225: 309-323. Doi: 10.1016/S0044-8486(03)00298-9##Furuita, H., Takeuchi, T. and Uematsu, K., 1998. Effect of Eicosapentaenoic and docosahexaenoic acids on growth, survival and brain development of larval Japanese flounder, Paralichthys olivaceus. Aquaculture, 161: 269–279. Doi: 10.1016/S0044-8486(97)00275-5.##Furuita, H., Yamamoto, T., Shima, N. and Takeuchi, T., 2003. Effect of arachidonic acid levels in broodstock diet on larval and egg quality of Japanese flounder Paralichthys olivaceus. Aquaculture, 220: 725–735. Doi: 10.1016/S0044-8486(02)00617-8##Glencross, B.E., 2009. Exploring the nutritional demand for essential fatty acids by aquaculture species. Reviews in Aquaculture, 1, 71-124. Doi: 10.1111/j.1753-5131.2009.01006.x ##GRC (Genome Reference Consortium), 2011. Human, Mouse, Zebra fish: Genome Assemblies. Available at: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/projects/genome/as sembly/grc.##Ishizaki, Y., Takeuchi, T., Watanabe, T., Arimoto, M. and Shimizu, K., 1998. A preliminary experiment of the effect of Artemia enriched with arachidonic acid on survival and growth of yellowtail. Fisheries Science, 64: 295–299. Doi: 10.2331/fishsci.64.295.##Kolb, A., Hildebrandt, F. and Lawrence, C., 2018. Effects of Diet and Social Housing on Reproductive Success in Adult Zebrafish, Danio rerio. Zebrafish. 15(5): 445-453. Doi: 10.1089/zeb.2018.1599.##Laale, H.W., 1977. Biology and use of zebrafish, Brachydanio rerio in fisheries research - literature-review. Journal of Fish Biology, 10(2): 121. Doi: 10.1111/j.1095-8649.1977.tb04049.x ##Lawrence, C., 2011. Advances in zebrafish husbandry and management. Methods in Cell Biology, 104, 429e451. Doi: 10.1016/B978-0-12-374814-0.00023-9. ##Lie, K.K., Kvalheim, K., Rasinger, J.D., Harboe, T., Nordgreen, A. and Moren, M., 2016. Vitamin A and arachidonic acid altered the skeletal mineralization in Atlantic cod (Gadus morhua) larvae without any interactions on the transcriptional level. Comp Biochem Phys A, 191: 80–8. ## Doi: 10.1016/j.cbpa.2015.10.011.##Lieschke, G.J. and Currie, P.D., 2007. Animal models of human disease: zebra fish swim into view, Nature Reviews Genetics, 8: 353–367. Doi: 10.1038/nrg2091##Masoudi Asil, Sh., Abedian Kenari, A., Rahimi Mianji, Gh. and Glen Van der K., 2017. The influence of dietary arachidonic acid on growth, reproductive performance, and fatty acid composition of ovary, egg and larvae in an anabantid model fish, Blue gourami (Trichopodus trichopterus; Pallas, 1770). Aquaculture, 476. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2017.03.048 ##NRC (National Research Council), 1993. Nutrient Requirements of Fish. Washington, DC, National Academy Press. 114 P. ##Naylor, R.L., Goldburg, R.J., Primavera, J.H., Kautsky, N., Beveridge, M.C.M., Clay, J., Folke, C., Lubchenco, J., Mooney, H. and Troell, M., 2000. Effect of aquaculture on world fish supplies. Nature, 405: 1017-1024. Doi:10.1038/35016500##Norberg, B., Kleppe, L., Andersson, E., Thorsen, A., Rosenlund, G. and Hamre, K., 2017. Effects of dietary arachidonic acid on the reproductive physiology of female Atlantic cod (Gadus morhua L.). General and Comparative Endocrinology, 250: 21–35.## Doi: 10.1016/j.ygcen.2017.05.020##Ohs, C.L., DiMaggio, M.A., Grabe, S.W., Broach, J.S., Watson, C.A., Breen, N.E. and Barrows, F.T., 2013. Effects of Increasing Docosahexaenoic Acid (DHA) and Arachidonic Acid (ARA) in Brood Diets of Monodactylus sebae on Fecundity, Egg and Larval Quality, and Egg Fatty Acid Composition. North American Journal of Aquaculture, 75: 285–294. Doi: 10.1080/15222055.2012.746248 ##Pandey, G., 2013. Feed formulation and feeding technology for Fishes. International Research Journal of Pharmacy, 4(3): 23-30. ## Doi: 10.7897/2230-8407.04306##Portz, L., Cyrino, J.E.P. and Martino, R.C., 2001. Growth and body composition of juvenile largemouth bass (Micropterus salmoides) in response to dietary protein and energy levels. Aquaculture Nutrition, 7(4): 247-254. Doi: 10.1046/j.1365-2095.2001.00182.x##Ringø, E., Olsen, R.E., Vecino, J.L.G., Wadsworth, S. and Song, S.K., 2012. Use of Immunostimulants and Nucleotides in Aquaculture: a review. Journal of Marine Science: Research and Development, 2: 104. Doi:10.4172/2155-9910.1000104##Santoriello, C. and Zon, L.I. 2012. Hooked! modeling human disease in zebrafish. Journal of Clinical Investigation. DOI:10.1172/JCI60434##Schmitz, G. and Ecker, J., 2008. The opposing effects of n-3 and n-6 fatty acids. Progress in Lipid Research, 47: 147-155. Doi: 10.1016/j.plipres.2007.12.004##Smith, D.M., Hunter, B.J., Allan G.L., Roberts, D.C.K., Booth, M.A. and Glencross, B.D., 2004. Essential fatty acids in the diet of silver perch (Biandus biandus): effect of linolenic and linoleic acid on growth and survival. Aquaculture, 14: 1-4. ## Doi: 10.1113/expphysiol.1983.sp002714##Tocher, D.R., 2010. Fatty acid requirements in ontogeny of marine and freshwater fish. Aquaculture Research, 41: 717–732. Doi: 10.1111/j.1365-2109.2008.02150.x##William, D. H., Westerfield, M. and Zon, L., 2016. Methods in Cell Biology, the Zebrafish: Genetics, Genomics, and Transcriptomics. Academic Press, Vol. 135.##Zheng, F., Takeuchi, T., Yoseda, K., Kobayashi, M., Hirokawa, J. and Watanabe, T., 1996. Requirement of larval cod for arachidonic acid, Eicosapentaenoic acid and docosahexaenoic acid using by their enriched Artemia nauplii. Nippon Suisan Gakkaishi, 62: 669–676. Doi: 10.2331/suisan.62.669.##Zhu, M., Yu, L.J., Liu, Z. and Xu, H.B., 2004. Isolating Mortierella alpina Strains of High Yield of Arachidonic Acid, Lett. Applied Microbiology, 39: 332–335. Doi: 10.1111/j.1472-765X.2004.01581.x##Zon, L.I. and Peterson, R.T., 2005. In vivo drug discovery in the Zebra fish. Natural Review Drug Discovery, 4: 35 – 44 Doi:10.1038/nrd1606 ##

اثرات تحت‌‌کشنده نانوذرات نقره بر سطوح آنزیم‌‌های متابولیک و آنتی‌‌اکسیدانی میگوی پا سفید غربی (Litopenaeus vannamei) The sublethal effects of silver nanoparticles on metabolic and antioxidant enzymes levels of Whiteleg shrimp (Litopenaeus vannamei) 1 1 در مطالعه حاضر پست لاروهای میگوی پا سفید غربی طی 21 روز در معرض غلظت‌‌های تحت کشنده نانوذرات نقره شامل تیمار 1: (LC5010% (mg/L AgNP 39/0)، تیمار 2: (LC5025% (mg/L AgNP 97/0)، تیمار 3: (LC5050% (mg/L AgNP 95/1) و تیمار 4: (LC5075% (mg/L AgNP 92/2) قرار گرفته و یک تیمار نیز به عنوان تیمار شاهد در نظر گرفته شد. در پایان دوره آزمایش نمونه‌‌برداری از بافت آبشش، عضله و هپاتوپانکراس جهت سنجش تغییرات سطوح آنزیم‌‌های متابولیک و آنتی‌‌اکسیدانی انجام شد. طبق نتایج، فعالیت آنزیم آلانین آمینوترانسفراز و آسپارتات آمینوترانسفراز در بافت هپاتوپانکراس و آبشش نسبت به تیمار شاهد افزایش معنی‌‌دار (05/0p<) و در بافت عضله تفاوت معنی‌‌داری نداشت (05/0p>). فعالیت آنزیم آلکالین فسفاتاز فقط در هپاتوپانکراس روند کاهشی داشت که نسبت به تیمار شاهد معنی‌‌دار بود (05/0p<). میزان لاکتات دهیدروژناز نیز در تمام بافت‌‌های مورد بررسی فاقد اختلاف معنی‌‌دار بود (05/0p>). از بین آنزیم‌‌های آنتی‌‌اکسیدانی، فعالیت سوپراکسید دیسموتاز در بافت هپاتوپانکراس و آبشش نسبت به تیمار شاهد کاهش معنی‌‌دار (05/0p<) و گلوتاتیون پراکسیداز فاقد تفاوت معنی‌‌داری بود (05/0p>). میزان گلوتاتیون S-ترانسفراز نیز فقط در بافت هپاتونکراس و در تیمار 4 به ‌‌طور معنی‌‌داری افزایش یافت (05/0p<). در مجموعT نتایج نشان داد که مواجهه میگو با غلظت بالای نانوذرات نقره سبب آسیب اکسیداتیو به­خصوص در بافت هپاتوپانکراس آنها می‌‌شود. 2 In the present study, whiteleg shrimp postlarvae were exposed for 21 days with sublethal concentrations of silver nanoparticles containing treatment 1: (%10 LC50 (0.39 mg/L AgNP), treatment 2: (%25 LC50 (0.97 mg/L AgNP), Treatment 3: (%50 LC50 (1.95 mg/L AgNP)and treatment 4: (%75 LC50 (2.92 mg/L AgNP) and one treatment was considerd as control treatment. during 21 days. At the end of the experiment, gill, muscle and hepatopancreas tissue samples were samples to measure changes in levels of metabolic and antioxidant enzymes. According to the results, the enzyme activity of alanine aminotransferase and aspartate aminotransferase in hepatopancreas and gills showed a significant increase compared to the control (p<0.05), but there was no significant difference in muscle (p>0.05). Alkaline phosphatase activity was only decreasing in hepatopancreas, which was significantly higher than control (p<0.05). Lactate dehydrogenase level was not significantly different in all tissues (p>0.05). Among the antioxidant enzymes, the activity of superoxide dismutase in hepatopancreas and gills showed a significant decrease (p<0.05) compared to control, but glutathione peroxidase had no significant difference (p>0.05). The level of glutathione S-transferase was increased only in hepatoconal tissue and in treatment 4 significantly (p<0.05). The level of glutathione S-transferase was increased only in hepatopancreas tissue and in treatment 4 significantly (p<0.05). Overall, results showed that shrimp exposure to high concentrations of silver nanoparticles causes oxidative damage, especially in the hepatopancrease tissue.   193 200 2019/11/292019/12/262019/10/172019/05/192019/08/242019/08/172019/10/42019/11/22019/04/202019/12/32019/08/152019/12/212017/06/12019/02/52019/08/72019/06/172019/10/52019/11/12019/10/20 1398/7/28 2020/03/152020/06/302020/06/302020/06/302020/02/12020/03/32020/04/192020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/30 1399/4/10 سراج بیتا Seraj Bita عضو هیات علمی دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار Iran serajbita@yahoo.com Silver Nanoparticles Oxidative Stress Metabolic Enzymes Litopenaeus vannamei نانوذرات نقره استرس اکسیداتیو آنزیم‌‌های متابولیک میگوی پا سفید غربی (Litopenaeus vannamei) ##Dai, W., Fu, L., Du, H., Jin, C. and Xu, Z., 2009. Changes in growth performance, metabolic enzyme activities, and content of Fe, Cu, and Zn in liver and kidney of Tilapia (Oreochromis niloticus) exposed to dietary Pb. Biological Trace Element Research, 128:176-183. Doi:10.1007/s12011-008-8259-8.##Duan, Y., Zhang, J., Dong, H., Wang, Y., Liu, Q. and Li, H., 2015. Oxidative stress response of the black tiger shrimp Penaeus monodon to Vibrio parahaemolyticus challenge. Fish and Shellfish Immunology, 46(2): 354-65. ## Doi: 10.1016/j.fsi.2015.06.032.##Karan, V., Vitorovic, S., Tutundzic, H. and Polksie V., 1998. Functional enzymes activity and gill histology of carp after copper sulfate exposure and recovery. Ecotoxicology and Environmental Safety, 40: 49-55. Doi: 10.1006/eesa.1998.1641 .##Lawrence, R.A. and Burk, R.F., 1976. Glutathione peroxidase activity in selenium-deficient rat liver. Biochemical and Biophysical Research Communications, 71: 952-958. Doi:10.1016/0006-291x(76)90747-6.##Liu, H.L., Yang, S.P., Wang, C.G., Chan, S.M., Wang, W.X., Feng, Z.H. and Sun, C.B., 2015. Effect of air exposure and resubmersion on the behavior and oxidative stress of Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei. North American Journal of Aquaculture, 77(1): 43-49. Doi: 10.1080/15222055.2014.955157 .##Moss, D.W. and Henderson, A.R., 1999. Clinical enzymology. In: Burtis, C.A. and Ashwood, E.R., Editors. Tietz Textbook of Clinical Chemistry. 3rd edition. Philadelphia: W.B Saunders Company. pp. 617-721. Doi: 10.1515/cclm.1999.37.11-12.1136 .##Pan, C.H., Chien, Y.H. and Hunter, B., 2003. The resistance to ammonia stress of Penaeus monodon Fabricius juvenile fed diets supplemented with astaxanthin. Journal of Experimental Marine Baiology and Ecology, 297: 107–118. Doi: 10.1016/j.jembe.2003.07.002 .##Saha, S., Ray, M. and Ray, S., 2009. Activity of phosphatases in the hemocytes of estuarine edible mud crab, Scylla serrata exposed to arsenic. Journal of Environmental Biology, 30(5): 655- 658. ##Singh, N., Manshian, B., Jenkins, G.J.S., Griffiths, S.M., Williams, P.M., Maffeis, T.G.G., Wright, C.J. and Doak, S., 2009. NanoGenotoxicology: the DNA damaging potential of engineered nanomaterials. Biomaterials, 30: 3891–3914. Doi: 10.1016/j.biomaterials.2009.04.009 .##Stumpf, N. and Nauen, R., 2002. Biochemical markers linked to abamectin resistance in Tetranychus urticae (Acari: Tetranychidae). Pesticide Biochemistry Physiology, 72: 111-121. ## Doi: 10.1006/pest.2001.2583 .##Velisek, J., Dobsikova, R., Svobodova, Z., Modra, H. and Luskova, V., 2006. Effect of deltamethrin on the biochemical profile of common carp (Cyprinus carpio). Bulletin Environmental Contamination Toxicology, 76: 992-998. Doi:10.17221/52/2009-cjas. ##Wang, W.N., Wang A.L., Zhang, Y.J., Li, Z.H., Wang, J.X. and Sun R.Y., 2004. Effects of nitrite on lethal and immune response of Macrobrachium nipponense. Aquaculture, 232: 679–686. ## Doi:10.1016/j.aquaculture.2003.08.018 .##Wang, X., Shen, M., Zhou, J. and Jin, Y., 2019. Chlorpyrifos disturbs hepatic metabolism associated with oxidative stress and gut microbiota dysbiosis in adult zebrafish. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology and Pharmacology, 216:19-28. Doi:10.1016/j.cbpc.2018.11.010.##Xian, J.A., Wang, A.L., Chen, X.D., Gou, N.N., Miao, Y.T., Liao, S.A. and Ye, C.X., 2011. Cytotoxicity of nitrite on haemocytes of the tiger shrimp, Penaeus monodon, using flow cytometric analysis. Aquaculture, 317: 240–244. Doi:10.1016/j.aquaculture.2011.03.026 .##Yang, S.P., Wu, Z.H., Jian, J.C. and Zhang, X.Z., 2010. Effect of marine red yeast Rhodosporidium paludigenum on growth and antioxidant competence of Litopenaeus vannamei. Aquaculture, 309: 62–65.ِDoi:10.1016/j.aquaculture.2010.09.032 ##

بررسی اثر ضد باکتریایی پوشش خوراکی کیتوزان همراه با عصاره آبی میوه گیاه پنیرباد (Withania coagulans) بر فیله ماهی کپور نقره‌ای طی نگهداری در یخچال Antimicrobial activity of chitosan edible coating enriched with aqueous extract of Withania coagulans fruit on the shelf life of Silver carp fillet stored in the refrigerator 1 1 امروزه مواد بسته‌بندی ضد باکتریایی به عنوان یکی از فنآوریهای نوین به منظور جلوگیری از گسترش فساد و میکروارگانیسم‌های بیماری‌زا از طریق موادغذایی مورد توجه می‌باشند. مطالعه حاضر به منظور بررسی تأثیر ضدباکتریایی پوشش کیتوزان به همراه عصاره آبی میوه پنیرباد (Withania coagulans) بر افزایش زمان ماندگاری فیله کپورنقره ای (Hypophthalmichthys molitrix) انجام شد. فیله ها در 6 تیمار و 3 تکرار طی 18 روز در دمای 4 درجه سانتی‌گراد نگهداری شدند. تیمارها شامل: تیمار بدون پوشش، عصاره 5/0درصد، عصاره 1 درصد، کیتوزان 1 درصد، کیتوزان 1 درصد با عصاره 5/0درصد و کیتوزان 1درصد با عصاره 1 درصد بود. جمعیت باکتریایی (شمارش کلی باکتری‌ها و شمارش باکتری‌های سرمادوست) نمونه‌ها در روزهای صفر، 3، 6، 9، 12، 15 و 18 نگهداری فیله ها در یخچال مورد بررسی قرار گرفت. در طول دوره نگهداری تمامی تیمارهای دارای پوشش کیتوزان و عصاره در ارزیابی‌های باکتریایی دارای اختلاف معناداری با تیمار شاهد بودند (05/0>p). بیشترین مقدار شمارش کلی باکتریها و باکتریهای سرمادوست تا روز 18 به ترتیب مربوط به تیمار شاهد (02/0±03/8 و 02/0±16/8) و کمترین آن مربوط به پوشش کیتوزان 1 درصد با عصاره 1 درصد (01/0±79/5 و 03/0±10/6) بود. نتایج حاصل نشان دهنده تأثیر ضدباکتریایی قوی پوشش خوراکی کیتوزان 1 درصد با عصاره 1 درصد بود که تأثیر معناداری بر کاهش مقدارکل باکتری‌ها و تعداد باکتریهای سرمادوست و همچنین افزایش زمان ماندگاری فیله‌های پوشش‌دار گردید. 2 Antibacterial packaging materials are nowadays considered as one of the new technologies to prevent the spread of spoilage and pathogenic microorganisms through food. The present study was conducted to investigate the antimicrobial effect of chitosan coating with the aqueous extract of Withania coagulans to increase the shelf life of silver carp (Hypophthalmichthys molitrix) fillet. Fish fillets were kept in 6 treatments and 3 replicates for 18 days at 4°C. Treatments included: uncoated treatments (control), 0.5% extract, 1% extract, 1% chitosan, 1% chitosan with 0.5% extract and 1% chitosan with 1% extract. The microbial characteristics [Total Bacterial Counts (TBC) and Psychrophilic Total Bacterial Counts (PTC)] of the samples were studied at 0, 3, 6, 9, 12, 15 and 18. During the storage period, all treatments containing chitosan coating and extract had significant differences in bacterial evaluation with control treatment (p<0.05). The highest bacterial indices of TBC and PTC up to day 18 of silver carp fillet storage in the refrigerator were in the control treatment (8.03 ± 0.02 and 8.16 ± 0.02) and the lowest in the 1% chitosan coating with 1% Withania coagulans extract (5.79 ± 0.01 and 6.10 ± 0.03), respectively.The results of current study showed the strong antibacterial effect of 1% chitosan edible coating with 1% whey extract which had a significant effect on the reduction of TBC and PTC and also increasing the shelf life of the coated fillets. 201 210 2019/11/292019/12/262019/10/172019/05/192019/08/242019/08/172019/10/42019/11/22019/04/202019/12/32019/08/152019/12/212017/06/12019/02/52019/08/72019/06/172019/10/52019/11/12019/10/202019/10/10 1398/7/18 2020/03/152020/06/302020/06/302020/06/302020/02/12020/03/32020/04/192020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/302020/06/30 1399/4/10 مریم صادقی Maryam sadeghi دانشگاه زابل Iran arshadi@uoz.ac.ir علی ارشدی ali arshadi دانشگاه زابل Iran arshadi.ali@gmail.com جواد میردار هریجانی javad mirdar harijani دانشگاه زابل Iran javadmirdar@gmail.com فاطمه حدادی fatemeh haddadi دانشگاه زابل Iran fatemeh.haddadi@uoz.ac.ir Edible coating Shelf-life increasing Hypophthalmichthys molitrix Withania coagulans aqueous extract پوشش خوراکی افزایش ماندگاری کپور نقره ای عصاره آبی میوه پنیرباد ##استاندارد ملی ایران 2629. 1378. میکروبیولوژی مواد غذایی و خوراک دام، روش شمارش میکروارگانیسم های سرماگرا. موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران. 16 صفحه.##اعتمادی، ح.، رضایی، م. و عابدیان کناری، ع.، 1387. پتانسیل آنتی باکتریایی و آنتی اکسیدانی عصاره رزماری (Rosmarinus officinalis) در افزایش عمر ماندگاری ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). علوم و صنایع غذایی ایران، 5(4): 77-67.##پزشک، س.، رضایی، م. و حسینی، ه.، 1390. اثر ضد باکتریایی و ضد اکسیداسیونی عصاره موسیر بر زمان ماندگاری ماهی قزل آلای رنگین کمان در شرایط نگهداری سرد (4درجه سانتی گراد). مجله علوم تغذیه و صنایع غذایی ایران،. 6(2):19-11.##جرجانی، س.، قلیچ، ا. و هدایتی فرد، م.، 1397. تأثیر پوشش کیتوزان به همراه عصاره سبوس برنج بر زمان ماندگاری ماهی قزل آلای رنگین کمان ((Oncorhynchus mykiss پرورشی طی دوره نگهداری در یخچال. نشریه پژوهش‌‌های صنایع غذایی. 28 (3): 176-153. ##خضری احمدآباد، م.، رضائی، م. و اجاق، س.م.، 1391. اثر اسید آسکوربیک به همراه پوشش پروتئین آب پنیر بر ماندگاری ماهی قزل آلای رنگین کمان در دمای یخچال: ارزیابی بار میکروبی و ویژگی های شیمیایی. مجله علوم تغذیه و صنایع غذایی ایران، 7(3): 78-69. ##شعبانپور، ب.، ذوالفقاری، م.، فلاح زاده، س. و علی پور، غ.، 1390. اثر عصاره آویشن شیرازی (Zataria multiflora Boiss) بر ماندگاری فیله قزل آلای شور و بسته بندی شده در خلاء در شرایط یخچال: ارزیابی میکروبی، شیمیایی و خصوصیات حسی. فصلنامه علوم و صنایع غذایی ایران، 8(4):11-1.##عزیزی، ا.، یگانه، س.، فیروزبخش، ف. و جانی خلیلی، خ.، 1396. بررسی اثر اسانس مرزنجوش (Origanum vulgare L) بر شاخص های رشد و کیفیت فیله ی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) در زمان نگهداری در دمای یخچال. مجله علمی شیلات ایران، 26(1): 110-93.##Doi: 10.22.92/ISFJ.2017.110333.##عزیزیان شرمه، ا.، طاهری زاده، م.، ولی زاده، م. و قاسمی، ع.، 1396. بررسی فعالیت های ضدمیکروبی، آنتی اکسیدانی و تعیین محتوای فنلی و فلاونوئیدی کل عصاره های پنج گونه از تیره های مختلف گیاهان دارویی رشد یافته در استان سیستان و بلوچستان. مجله دانشگاه علوم پزشکی فسا، 7 (4): 465-479.##نقدی، شهاب.، رضایی، م. و بهرامی فر، ن.، 1398. مقایسه عملکرد حسگرهای برموفنول آبی و برموکروزول سبز در تعیین فساد باکتریایی و شیمیایی گوشت چرخ شده ماهی کیلکای معمولی (Clupeonella cultriventris caspi) نگهداری شده در یخچال. مجله علمی شیلات ایران، 28(4): 55-45. Doi: 10.22092/ISFJ.2019.119411.##ولی زاده، م.، باقری، ع.، ولی زاده، ج.، میرجلیلی، م.ح. و مشتاقی، ن.، 1394. بررسی فیتوشیمیایی گیاه دارویی و چند منظوره پنیربادWithania coagulans در رویشگاه های طبیعی استان سیستان و بلوچستان. دو ماهنامه علمی-پژوهشی تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران، 31 ##(3): 417-406. Doi:10.22092/IJMAPR.2015.101792.##Amiza, M.A. and Kang, W.C., 2013. Effect of chitosan on gelling properties, lipid oxidation, and microbial load of surimi gel made from African catfish (Clarias gariepinus). International Food Research Journal, 20 (4): 1585-1594.##Barros-Velázquez, J., 2016. Antimicrobial Food Packaging. Academic Press is an imprint of Elsevier, The Boulevard, Langford Lane, Kidlington, Oxford OX5 1GB, UK, 678 P.##Beigomi, M., Mohammadifar, M.A., Hashemi, M., Ghods rohani, M., Senthil, K. and Valizadeh, M., 2014. Biochemical and rheological characterization of a protease from fruits of Withania coagulans with a milk-clotting activity. Food Sciences Biotechnology, 23: 1805-1813. Doi:10.1007/s10068-014-0247-5.##Bokaeian, M. and Saeidi, S., 2015. Evolution of antimicrobial activity of leaf extract of Withania somnifera against antibiotic resistanct Staphylococcus aureus. Zahedan Journal of Research in Medical Sciences, 17(7): 29-32. Doi: 10.17795/zjrms1016.##Chidanandaiah Keshri, R.C. and Sanyal, M.K., 2007. Effect of sodium alginate coating with preservatives on the quality of meat paties during refrigerated (4 ± 1°C) storage. Journal Muscle Foods, 20: 275-292. Doi: 10.1111/j.1745-4573.2009.00147.x.##Dhanya, P.R. and Mathew, S., 2017. Microbial Spoilage in Fish. Imperial Journal of Interdisciplinary Research (IJIR), 3(4): 2011-2015.##Go´mez-Estaca, J., Montero, P., Gimenez, B. and Guillen, M.C.G., 2007. Effect of functional edible films and high pressure processing on microbial and oxidative spoilage in cold-smoked sardine Sardina pilchardus. Food Chemistry, 105: 511-520. Doi:10.1016/j.foodchem.2007.04.006.##Go´mez-Estaca, J., Lo´pez de Lacey, A., Go´mez Guille´n, M.C., Lo´pez-Caballero, M.E. and Montero, P., 2009. Antimicrobial activity of composite edible films based on fish gelatin and chitosan incorporated with clove essential oil. Journal of Aquatic Food Product Technology, 18:46-52. Doi:10.1080/10498850802581252.##Goli, A.H., Barzegar, M. and Sahari, M.A., 2005. Antioxidant activity and total phenolic compound of pistachio (Pistachia vera L.) Hull extracts. Journal of Food chemistry, 92: 521–525. Doi: 10.1016/j.foodchem.2004.08.020.##Jeyakumari, A., Ninan, G., Joshy, C.G., Parvathy, U., Zynudheen, A.A. and Lalitha, K.V., 2016. Effect of chitosan on shelf life of restructured fish products from pangasius (Angasianodon hypophthalmus) surimi during chilled storage. Journal of Food Science and Technology, 53(4): 2099-2107. Doi: 10.1007/s13197-016-2174-3.##Kostaki, M., Giatrakou, V., Savvaidis, I.N. and Kontominas, M.G., 2009. Combined effect of MAP and thyme essential oil on the microbiological, chemical and sensory attributes of organically aquacultured sea bass (Dicentrarchus labrax) fillets. Food Microbiology, 26(5): 475-482. Doi:10.1016/j.fm.2009.02.008.##Lopez-Caballero, M., Gomez-Guillen, M.C., Perez-Matoes. M. and Montero, P., 2005. A Chitosan-gelatin blend as a coating for fish patties. Food Hydrocolloids, 19: 303-311. Doi:10.1016/j.foodhyd.2004.06.006.##Ojagh, S.M., Rezaei, M., Razavi, S.H. and Hosseini, S.M.H., 2010. Effect of chitosan coatings enriched with cinnamon oil on the quality of refrigerated rainbow trout. Food Chemistry, 120: 193–198. Doi: 10.1016/j.foodchem.2009.10.006.##Ojha, S., Alkaabi, A., Amir, N., Sheikh, A., Agil, A., Abdelmonem, M. and Adem, A., 2014. Withania coagulans fruit extract reduces oxidative stress and inflammation in kidneys of streptozotocin-induced diabetic rats. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 36: 1-9. Doi:10.1155/2014/201436.##Sallam, K.I., 2007. Antimicrobial and antioxidant effects of sodium acetate, sodium lactate and sodium citrate in refrigerated sliced salmon. Food Control, 18(5): 566-575. Doi:10.1016/j.foodcont.2006.02.002.##Sarbishegi, M., Khani, M., Salimi, S., Valizadeh, M. and Sargolzaei Aval, F., 2016. Antiproliferative and Antioxidant Effects of Withania coagulans Extract on Benign Prostatic Hyperplasia in Rats. Nephro-Urology Monthly, 8(1): 1-7. Doi:10.5812/numonthly.33180.##Shi, C., Cui, J., Yin, X., Luo, Y. and Zhou, Z., 2014. Grape seed and clove bud extracts as natural antioxidants in silver carp (Hypophthalmichthys molitrix) fillets during chilled storage: Effect on lipid and protein oxidation. Food Control, 40: 134-139. Doi:10.1016/j.foodcont.2013.12.001.##Singariya, P., Mourya, K.K. and Kumar, P., 2012. Antimicrobial Activity of the Crude Extracts of Withania somnifera and Cenchrus setigerus In-vitro. Pharmacognosy Journal, 27(4): 60-65. Doi:10.5530/pj.2012.27.10.##Singh, G. and Kumar, P., 2011. Evaluation of antimicrobial efficacy of flavonoids of Withania somnifera. Indian Journal of Pharmaceutical Sciences, 73(4): 473-478. Doi:10.4103/0250-474X.95656.##Tabatabaei Moradi, L., Sharifan A. and Larijani, K., 2016. Antimicrobial activity of lemon and peppermint essential oil in edible coating containing chitosan and pectin on Rainbow Trout fillets. Journal of Medical Microbiology and Infectious Diseases, 3(1-2): 38-43. Doi:10.1109/5.771073.##Wu, J., Chen, S., Ge, S., Miao, J., Li, J. and Zhang, Q., 2013. Preparation, properties and antioxidant activity of an active film from silver carp (Hypophthalmichthys molitrix) skin gelatin incorporated with green tea extract. Food Hydrocolloids, 32: 42-51. Doi:10.1016/j.foodhyd.2012.11.029.##Yingyuad, S., Ruamsin, S., Reekprkhon, D., Douglas, S., Pongamphai, S. and Siripatrawan, U., 2006. Effect of chitosan coating and vacuum packaging on the quality of refrigerated grilled pork. Packaging Technology and Science, 19: 149–157. Doi:10.1002/pts.717. ##