1399 29 3 119 202

اثر سطوح مختلف نیاسین و کربوهیدرات جیره غذایی بر رشد، ترکیب لاشه و شاخص-های بیوشیمیایی همولنف میگوی پا سفید جوان Litopenaeus vannamei The effect of different levels of dietary niacin and carbohydrate on growth performance, carcass composition and heamolymph biochemical parameters of juvenile whiteleg shrimp (Litopenaeus vannamei) 1 1 در این مطالعه اثر جیره­های آزمایشی حاوی سطوح مختلف کربوهیدرات و نیاسین بر شاخص­های رشد و ترکیب لاشه و شاخص­های بیوشیمیایی همولنف میگوی جوان پاسفید(Litopenaeus vannamei) در پژوهشکده میگوی بوشهر به مدت 45 روز مورد بررسی قرار گرفت. میانگین وزن اولیه میگوها 33/0±5 گرم و پرورش در تانک­های 300 لیتری و در 8 تیمار انجام شد. تغذیه 4 بار در روز و با استفاده از جیره آزمایشی فرموله شده حاوی دو سطح 15 و 30 درصد کربوهیدرات و سه سطح 100، 150 و 200 میلی­گرم در کیلوگرم نیاسین انجام شد. همچنین دو تیمار 30 و 15 درصد کربوهیدرات بدون نیاسین به عنوان شاهد استفاده شد. در انتهای دوره، شاخص­های رشد، ترکیب لاشه و شاخص­های بیوشیمیایی همولنف در تیمارها اندازه­گیری شد. بهترین عملکرد رشد شامل بالاترین مقدار وزن نهایی (5/0±05/14 گرم)، طول نهایی (05/0±38/13 سانتی متر) و نرخ رشد ویژه (07/0±23/2 درصد) در تیمار حاوی 15 درصد کربوهیدرات و 100 میلی­گرم نیاسین در هر کیلوگرم غذا اندازه­گیری شد (05/0p<). همچنین بالاترین مقدار گلوگز (mg/dL 88/0±66/53)، لیپوپروتئین­های پر چگالی (HDL) (mg/dL 57/0±27) و پروتئین کل (mg/dL 17/0­±90/10) در تیمار حاوی 15 درصد کربوهیدرات و 100 میلی­گرم نیاسین در هر کیلوگرم غذا بود (05/0p<). از سویی، بالاترین مقدار پروتئین لاشه در تیمارهای حاوی 15 درصد کربوهیدرات و مقدار 150-100 میلی­گرم نیاسین در کیلوگرم جیره غذایی مشاهده شد (05/0p<). همچنین با کاهش مقدار کربوهیدرات جیره غذایی مقدار چربی لاشه کاهش یافت (05/0p<). نتایج نشان داد که سطح پایین کربوهیدرات به همراه 100 میلی­گرم نیاسین در کیلوگرم جیره غذایی میگوی پاسفید جوان سبب اثرگذاری مطلوب بر رشد، ترکیب لاشه و همولنف میگوهای جوان وانامی می‌شود. 2 In this study, the effect of experimental diets containing different levels of carbohydrate and niacin on growth indices, carcass composition and heamolymph biochemical parameters of juvenile whiteleg shrimp (Litopenaeus vannamei) were investigated for 45 days. Shrimp with mean initial weight of 5±0.33 g were reared in 300 liter tanks with 8 treatments. Feeding was performed 4 times a day using experimental diets containing two levels of carbohydrate 15 and 30% and three levels of dietary niacin 100, 150 and 200 mg kg-1with two controls. At the end of the period, growth indices, carcass composition and biochemical indices of heamolymph of shrimps were assessed. The best growth performance consisted of the highest final weight (14.05±0.5 g), final length (13.38 ± 0.05 cm) and specific growth rate (2.23±0.07) were in treatment contained 15% carbohydrate and 100 mg niacin kg-1 diet (p<0.05). Also, the highest glucose (53.66±0.88 mg dl-1), HDL (27±0.57 mg dl-1) and total protein values (10.9 ± 0.17 mg dl-1) were in  treatment contained 15% carbohydrate and 100 mg niacin kg-1 diet (p<0.05). On the other hand, the highest protein content of carcass was observed in treatments contained 15% carbohydrate and 100-150 mg niacin kg-1 diet (p<0.05). Also, fat of carcass was reduced by decreasing dietary carbohydrate (p<0.05). Therefore, the results showed that low carbohydrate level with 100 mg niacin per kg of diet had beneficial effects on growth, carcass composition and heamolymph of juvenile whiteleg shrimp.   1 12 2019/10/1 1398/7/9 2020/08/31 1399/6/10 فریده زنده بودی Farideh Zendehboodi دانشگاه علوم و فنون دریایی شیلات Iran zendehboodi.f@gmail.com حمید محمدی آذرم Hamid Mohammadiazarm دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر Iran azarmhamid@gmail.com ابراهیم رجب زاده قطرمی Ebrahim Rajabzadeh دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشه Iran rajabzadeh48@gmail.com احمد قاسمی Ahmad Ghasemi دانشگاه خلیج فارس Iran ahmad_qasemi@yahoo.com عقیل دشتیان نسب Aghil Dashtiannasab مرکز تحقیقات میگوی کشور Iran adashtiannasab@gmail.com Carcass Heamolymph Growth Carbohydrate Whiteleg shrimp Niacin. لاشه همولنف رشد کربوهیدرات میگوی پاسفید نیاسین ##آسمانی، م.، سپهداری،ا.،حافظیه،م.،دادگر،ش.،1398. تاثیر برخی از منابع مختلف کربوهیدراتی بر عملکرد رشد، شاخص‌های بدنی و فعالیت آنزیم گوارشی آمیلاز در ماهی پنگوسی(hypopthalmus Pangasiandon). مجله علمی شیلات ایران، 5: 89-79. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.119534##محمدزاده، ص.، نویریان، ح.، اورجی، ح. و فلاحتکار، ب.، 1391. تاثیر سطوح مختلف کربوهیدرات جیره بر رشد، بازماندگی و ترکیبات بدن بچه ماهیان سفید دریایی خزر (Rutilus frisii kutum Kamenskii, 1901). مجله علمی شیلات ایران، 4: 94-85. Doi: 0.22092/ISFJ.2017.110090.##طاعتی، ر.، محسنی، م. و خوش سیما، س.، 1394. تاثیر منابع و سطوح مختلف کربوهیدرات (گلوگز و نشاسته ذرت) بر کارایی تغذیه و ترکیب لاشه بچه تاسماهی سیبری (Acipenser baerii). مجله علوم و فنون شیلات، 3: 88-77. ##AOAC, 1995. Official Methods of Analysis of Official Analytical Chemists International, 16th Edn. Association of Official Analytical Chemists, Arlington. VA. USA. 172 p.##Arcos, F.G., Ibarra, A.M. and Racotta I.S., 2011. Vitellogenin in hemolymph predicts gonad maturity in adult female Litopenaeus vannamei shrimp. Aquaculture, 316: 93-98. Doi: org/10.1016/j. aquaculture.2011.02.045##Emerenciano, M., Cuzon, G., Mascaro, M., Arevalo, M., Norena-Barroso, E., Jeronimo, G., Racottae, I.S. and Gaxiolab, G., 2012. Reproductive performance biochemical composition and fatty acid profile of wild-caught and 2nd generation domesticated Farfantepenaeus duorarum (Burkenroad, 1939) broodstock. Aquaculture, 344–349: 194-204. Doi: 10.1111/j.1749-7345.1997.tb00641.##Furuichi, M. and Yone, Y., 1982. Effect of insulin on blood sugar levels of fishes. Bulletin of the Japanese Society for the Science of Fish, 48: 1289-1291. Doi: org/10.1152/ajplegacy.1928.84.3.566.##Jiang, M., Huang, F., Wen, H., Yang, C., Wu, F., Liu, W. and Tian, J., 2014. Dietary niacin requirement of GIFT tilapia Oreochromis niloticus reared in fresh water. Journal of the World Aquaculture Society, 45(3): 333-341. Doi: org/10.1111/jwas.12119##Lehninger, A.L., 1978. Biochemistry. Kalyani, Ludhiana, New Delhi. 820pp.##Lie, E.C., Chen, L.Q., Zeng, C., Chen, X.M., Yu, N., Lai, Q.M. and Qin J.G., 2007. Growth, body composition, respiration and ambient ammonia nitrogen tolerance of the juvenile white shrimp, Litopenaeus vannamei, at different salinities. Aquaculture, 265: 385-390. Doi: org/10.1016/j. .aquaculture.2007.02.018##Mohseni, M., Hassani, M.H., Pourali, H.R., Pourkazemi, M. and Bai, S.C., 2015. The optimum dietary carbohydrate ⁄ lipid ratio can spare protein in growing beluga, Huso huso. Journal of Applied Ichthyology, 27: 775–780. Doi: org/10.1111/j.1439-0426.2011.01706.##NRC, 2011. Nutrient Requirements of fish and Shrimp. Committee on Animal Nutrition, B.O.A. National Research Councile. National Academy Press, Washington, DC, USA. 376pp.##Ozbay, G. and Riley, J.G., 2002. An analysis of refractometry as a method of determining blood total protein concentration in the American lobster Homarus americanus (Milne Edwards). Aquaculture Research, 33: 557- 562. Doi: org/10.1046/j.1365-2109.##Pante, M.J.R., 1990. Influence of environmental stress on the heritability of molting frequency and growth rate of the Penaeid shrimp, Penaeus vannamei. University of Houston-Clear lake, Houston, TX, USA. 210p.##Pascual, C., Gaxiola, G. and Rosas, C., 2003. Blood metabolites and hemocyanin of Litopenaeus vannamei: the effect of culture conditions and a comparison with other crustacean species. Marine Biology, 142: 735–745. Doi: 10.1007/s00227-002-0995-2.##Piedecausa, M.A., Mazon, M.J., Garcia, B.G. and Hernandez, M.D., 2007. Effects of total replacement of fish oil by vegetable oils in the diets of Sharpsnout seabream (Diplodus puntazzo). Aquaculture, 263:211-219. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2006.09.039##Qingsong, T., Fen, W., Shouqi, X., Xiaoming, Z., Wu, L. and Jianzhong, S., 2009. Effect of high dietary starch levels on the growth performance, blood chemistry and body composition of Gibel carp (Carassius auratus). Aquaculture Research, 40: 1011-1018. Doi: 10.1111/j.1365-2109.2009.02184.x##Ronyai, A., Csengeri, I. and Varadi, L., 2002. Partial substitution of animal protein with full‐fat soybean meal and amino acid supplementation in the diet of Siberian sturgeon (Acipenser baerii). Journal of Applied Ichthyology, 18 (4‐6): 682-684. Doi: 10.1046/j.1439-0426.2002.00372.##Rosas, C., Cuzon, G., Gaxiola, G., Arena, L., Lemairo, P., Soyez, C. and Van Wormhoudt, A., 2000. Influence of dietary carbohydrates on the metabolism of juvenile Litopenaeus stylirostris. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 249: 181-198. Doi: org/10.1371/journal.pone.0108875.##Salgado-Leu, I. and Tacon, A.G.J., 2015. Effects of different protein and carbohydrate contents on growth and survival of juveniles of southern Chilean freshwater crayfish, Samastacus spinifrons. Latin American Journal of Aquatic Research, 43(5): 836-844. Doi: org/10.3856/vol43-issue5-fulltext-4.##Shahkar, E., Yun, H., Park, G., Jang, I.K., Kim, S.K., Katya, K. and Bai, S.C., 2014. Evaluation of optimum dietary protein level for juvenile white leg shrimp (litopenaeus vannamei). Journal of Crustacean Biology, 34(5): 552-558. Doi: org/10.1163/1937240X.##Shiau, S.Y. and Peng, C.Y., 1992. Utilization of different carbohydrates at different dietary protein levels in grass prawn, Penaeus monodon, reared in seawater. Aquaculture, 101: 241-250. Doi: doi.org/10.1016/0044-8486(92)90028-J.##Wang, X., Li, E., Xu, Z., Li, T., Xu, C. and Chen, L., 2017. Molecular response of carbohydrate metabolism to dietary carbohydrate and acute low salinity stress in pacific white shrimp Litopenaeus vannamei. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 17: 153-169. Doi: 10.4194/1303-2712-v17-1-18.##Xia, S., Tian, L., Jin, Y., Yang, H., Liang, G. and Liu, Y., 2014. Effect of glycine supplementation on growth performance, body composition and salinity stress of juvenile Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei fed low fishmeal diet. Aquaculture, 418-419: 159–164. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2013.10.023.##Yang, C., Chen, N., Lu, L., Chen, S. and Lai, C., 2014. Effect of Mushroom Beta Glucan on Immune and Haemocyte Response in Shrimp Litopenaeus vannamei. Journal of Aquaculture Research and Development, 5: 275-291. Doi: 10.4172/2155-9546.1000559. ##

ارائه الگوی مدیریت فرهنگی مبتنی بر سیاست‌های فرهنگی کاهش صید غیر مجاز در نوار ساحلی استان هرمزگان Representation of a cultural management pattern according to the cultural policy of the reduction of illegal fishing in the coastal band of Hormuzgan Province 1 1 صید غیر مجاز میگو در آبهای استان هرمزگان موجب وارد آمدن خسارت‌های زیاد به بیش از سه هزار صیاد و نیز افرادی می‌شود که به طور غیر مستقیم در زمینه صنایع فرآوری، بسته‌بندی و صادرات این آبزی فعالیت دارند. مطالعه حاضر با هدف ارائه الگوی مدیریت فرهنگی مبتنی بر سیاست‌‌های فرهنگی کاهش صید غیر مجاز در نوار ساحلی استان هرمزگان، صورت گرفت. روش انجام تحقیق به صورت توصیفی-تحلیلی بود و به شیوه پیمایشی انجام پذیرفت. جامعه آماری در این مطالعه شامل متخصصان و کارشناسان شیلات استان هرمزگان بود. روش جمع‌آوری داده‌ها براساس پرسشنامه و نیز مطالعه مستندات و پژوهش‌های صورت گرفته بود. نتایج حاصل از بررسی معیارهای اصلی نشان داد که معیار"مدیریت و برنامه‌ریزی" با وزن 277/0 دارای بیشترین اهمیت و معیارهای "مسائل فرهنگی"، "آگاهی‌بخشی"، "آموزش"، "مشارکت" و "قانون‌‌گذاری" با اوزان بترتیب 218/0، 161/0، 142/0، 109/0 و 092/0 در رتبه‌های دوم الی ششم قرار داشتند. بررسی معیارهای فرعی نیز نشان داد که معیار "مدیریت صیادان غیر مجاز" با وزن نهایی 1213/0 در رتبه نخست از نظر اهمیت و جایگاه قرار داشت و معیار "تدوین قوانین" با وزن نهایی 0153/0 از کمترین اهمیت برخوردار بود. بر اساس  اطلاعات بدست آمده در این مطالعه یک الگوی مدیریت فرهنگی جهت کاهش صید غیر مجاز ارائه شد که این الگو می‌تواند به عنوان مبنایی برای مدیران شیلاتی جهت مدیریت دقیق‌تر و صحیح‌تر صید غیر مجاز در استان هرمزگان مورد استفاده قرار گیرد.         2 Shrimp illegal fishing has caused many damages to the more than three thousand fishermen in Hormuzgan Province and also the persons who are active indirectly in the production, package, and export industries of this aquatic organism. The purpose of the present study was to represent a cultural management pattern according to the cultural policy of the reduction of illegal fishing in the coastal band of Hormuzgan province. The used method for the study was descriptive-analytical. Statistic society was consisted of fisheries experts of Hormuzgan Province. The method of data collection was based on a questionnaire as well as the study of documentation and researches. The results of the study of main criterions showed that “management and schematization” was the most important 0.277 with the weight of criterion and “cultural issues”, “notification”, “training”, “communion” and “legislation” with the weights of 0.218, 0.161, 0.142, 0.109 and 0.092 were in second to sixth grades, respectively. Investigation of secondary criterions showed that “management of illegal fishermen” with the weight of 0.1213 was in the first grade of importance and “codify of laws” with the weight of 0.0153 was less important. According to the obtained information of this study, a cultural management pattern of the reduction of illegal fishing was represented that could be used as a base for fisheries managers for the more accurate management of illegal fishing in Hormuzgan Province.   13 23 2019/10/12019/11/23 1398/9/2 2020/08/312020/08/31 1399/6/10 عباسعلی قیومی Abbasali Ghaiyoomi دانشگاه آزاد اسلامی، واحد تهران شمال Iran ghaiyoomi@gmail.com مسلم دلیری Moslem Daliri دانشگاه هرمزگان Iran moslem.daliri@yahoo.com فرید جهانشاهلو Farid Jahanshahloo دانشگاه آزاد اسلامی، واحد تهران شمال Iran jahanshahloofarid@gmail.com Cultural management Cultural policy Illegal fishing Hormuzgan Province مدیریت فرهنگی سیاست‌های فرهنگی صید غیر مجاز استان هرمزگان ##جمالی، غ. و ولی نسب، ت.، 1390. شناسایی عوامل مؤثر بر بهره‌وری شرکت‌های صیادی استان بوشهر و رتبه‌بندی آن‌ها با استفاده از تکنیک فرایند تحلیل سلسله مراتبی گروهی (GAHP). مجله علمی شیلات ایران، شماره 4، صفحات 42-33. Doi: 10.22092/ISFJ.2017.110021##دلیری، م.، کامرانی، ا. و پیغمبری، س.ی.، 1395. بررسی صید غیر مجاز ماهی حلوا سفید، با استفاده از تورهای گوشگیر ثابت در آب‌های ساحلی جزیره قشم (استان هرمزگان). مجله بوم‌شناسی آبزیان، شماره 3، صفحات 32-22. ##صمدی میار کلائئ، ح.، صمدی میار کلائئ، ح. و مشازمینی، م.، 1394. توسعه کارآفرینی گامی در جهت پیشبرد اهداف اقتصادی و اجتماعی شیلات: تبیین و رتبه‌بندی عوامل محیطی (زمینه‌ای) مؤثر با استفاده از رویکرد دلفی فازی و AHP فازی. مجله علمی شیلات ایران، شماره 3، صفحات 139-125. Doi: 10.22092/ISFJ.2017.110198##فلاحتی مروست، ع.، 1387. بیولوژی ماهی سنگسر. دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، 125 صفحه. ##همایون، م.ه. و جعفری هفتخوانی، ن.، 1387. درآمدی بر مفهوم و روش سیاست‌گذاری فرهنگی درس‌هایی برای سیاست‌گذاران. اندیشه مدیریت، شماره 2، صفحات 35-5.##Agnew, D.J., Pearce, J., Pramod, G., Peatman, T., Watson, R., Beddington, J.R. and Pitcher, T.J., 2009. Estimating the worldwide extent of illegal fishing. PLOS One, 4: e4570. Doi: 10.1371/journal.pone.0004570.##Beddington, J.R., Agnew, D.J. and Clark, C.W., 2007. Current problems in the management of marine fisheries. Science, 316: 1713-1716. Doi: 10.1126/science.1137362.##Cho, D.O., 2012. Eliminating illegal bottom trawl fishing in the coastal waters of Korea. Marine Policy, 36:321-326. Doi: 10.1016/j.marpol.2011.07.001.##Cisneros-Montemayor, A.M., Cisneros-Mata, M.A., Harper, S. and Pauly, D., 2013. Extent and implications of IUU catch in Mexico's marine fisheries. Marine Policy, 39: 283-288. Doi: 10.1016/j.marpol.2012.12.003.## ##Cochrane, K.L. and Garcia, S.M., 2009. A fishery manager's guidebook. John Wiley & Sons. 527 p. ##FAO, 2018. The State of World Fisheries and Aquaculture, 243 p.##Garza-Gil, M.D., Amigo-Dobaño, L., Surís-Regueiro, J.C. and Varela-Lafuente, M., 2015. Perceptions on incentives for compliance with regulation. The case of Spanish fishermen in the Atlantic. Fisheries Research, 170: 30-38. Doi: 10.1016/j.fishres.2015.05.012.##Leroy, A., Galletti, F. and Chaboud, C., 2016. The EU restrictive trade measures against IUU fishing. Marine Policy, 64: 82-90. Doi: 10.1016/j.marpol.2015.10.013.##Miller, A.M., Bush, S.R. and Mol, A.P., 2014. Power Europe: EU and the illegal, unreported and unregulated tuna fisheries regulation in the West and Central Pacific Ocean. Marine Policy, 45: 138-145. Doi: 10.1016/j.marpol.2013.12.009.##Petrossian, G.A., 2015. Preventing illegal, unreported and unregulated (IUU) fishing: A situational approach. Biological Conservation, 189: 39-48. Doi: 10.1016/j.biocon.2014.09.005.##Saaty, T.L., 1990. How to make a decision: the analytic hierarchy process. European Journal of Operational Research, 48(1): 9-26. Doi: 10.1016/0377-2217(90)90057-I.##Sumaila, U.R., Alder, J. and Keith, H., 2006. Global scope and economics of illegal fishing. Marine Policy, 30(6): 696-703. Doi: 10.1016/j.marpol.2005.11.001. ##

تعیین حداقل غلظت بازدارندگی عصاره اتانولی پوست پرتقال و تاثیر آن بر فلور باکتری‌های مولد فساد در فیله فیل ماهی (Huso huso)در زمان نگهداری در یخچال Determination of minimum inhibitory concentration of the ethanolic extract of orange peel and the effects on the growth inhibition of Huso huso filet bacteria during refrigerated storage 1 1 امروزه استفاده از عصاره­های طبیعی به منظور بهبود کیفیت ماهی به دلیل داشتن ویژگی­های ضدمیکروبی رو به افزایش است. در این تحقیق به منظور تعیین حداقل غلظت بازدارندگی (MIC) از عصاره اتانولی پوست پرتقال، روش رقیق­سازی در آگار بر باکتری‌های سودوموناس آئروجینوزا، اشرشیاکلی و آئروموناس هیدروفیلا استفاده شد. سپس فیله‌های فیل ماهی با محلول‌های عصاره اتانولی پوست پرتقال (بترتیب به نسبت 5، 6 و 7 درصد وزنی/ وزنی) و نمونه شاهد در آب مقطر به مدت 30 دقیقه تیمار شدند. نمونه‌ها در فواصل زمانی معین (صفر، 5، 10 و 15 روز) از نظر ویژگی‌های میکروبی (شمارش کل باکتری‌های هوازی مزوفیل، سرماگرا وکلی فرم) مورد بررسی قرار گرفتند. میزان MIC عصاره اتانولی پوست پرتقال در شرایط in vitro برای هر سه باکتری، 5 درصد تعیین گردید. بر اساس تجزیه و تحلیل آزمون میکروبی، عصاره‌های پوست پرتقال به طور معنی‌داری سبب کاهش بار میکروبی در فیله فیل ماهی در مقایسه با نمونه کنترل شدند (01/0p<) بطوریکه روند افزایش بار میکروبی در فیله‌های مورد تیمار با عصاره پوست پرتقال 7% کندتر از تیمارهای عصاره پوست پرتقال %6 و عصاره پوست پرتقال 5% بود و توانست زمان ماندگاری ماهی را در مقایسه با نمونه کنترل 2 برابر کند. لذا، عصاره­ پوست پرتقال به علت دارا بودن خاصیت ضدمیکروبی می‌تواند به عنوان نگهدارنده طبیعی سبب افزایش زمان ماندگاری نمونه‌های ماهی در طول نگهداری در دمای یخچال گردد. 2 Using natural extracts, as a source of anti-microbial, to improve the quality of fish is increasing. In this study, the ethanolic extract of orange (Citrus sinensis L.) was used due to having this property. Agar dilution method was employed in order to determine the minimum inhibitory concentration (MIC) of the ethanolic extract of orange peel on Pseudomonas aeruginosa, E. coli and Aeromonas hydrophila bacteria. The fish fillets were treated with aqueous solution of orange peel extract (5, 6 and 7% w/w) and dipped in distilled water for 30 minutes. These samples were analyzed during storage (0, 5, 10 and 15 days) for the total viable count (TVC), psychrotrophic count, coliform count. The MIC of the ethanolic extract of orange peel on the bacteria was 5%. The results of the microbial analysis indicated that the orange peel extracts reduced the growth of the bacterial counts in contrast control sample (p<0.01). The ethanol extract of orange peel as a natural preservative could increase shelf life during refrigerated storage because of having antimicrobial properties. 25 36 2019/10/12019/11/232018/06/5 1397/3/15 2020/08/312020/08/312020/08/31 1399/6/10 فرشته اورعی Fereshteh Oraii دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران Iran oraii.f@gmail.com سید ابراهیم حسینی Seyed Ebrahim Hosseini دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران Iran ebhoseini@yahoo.com سید محمد جلیل ذریه زهرا Mohammad Jalil Zorriehzahra موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran zorrieh@yahoo.com رضا صفری Reza Safari موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran safari1351@gmail.com Orange peel extract Citrus sinensis Huso huso Minimum Inhibitory Concentration Antibacterial activity عصاره پوست پرتقال فیل ماهی حداقل غلظت بازدارندگی فعالیت ضد باکتریایی ##استاندارد ملی ایران، 3-8923، سال 1385، میکروبیولوژی مواد غذائی و خوراک دام، آماده سازی آزمایه، سوسپانسیون اولیه و رقت اعشاری برای آزمون میکروبیولوژی – قسمت سوم- مقررات ویژه برای آماده سازی ماهی و فراورده های آن.##استاندارد ملی ایران، 3-8923، سال 1386، میکروبیولوژی مواد غذائی و خوراک دام، روش جامع برای شمارش کلی فرمها – روش شمارش کلنی ها##انوری، م.، بهنام، ش.، رضایی، م.، سلطانیان، س. و صفری، ر.، 1388. پتانسیل آنتی باکتریایی و آنتی اکسیدانی باکتریوسین Z در افزایش زمان ماندگاری فیله ماهی قزل‌آلای (Oncorhynchus mykiss) بسته بندی شده در خلأ در دمای ºC 4. ششمین همایش ملی بیوتکنولوژی جمهوری اسلامی ایران، مرداد 1388.##ذوالفقاری، م.، شعبانپور، ب. و فلاح زاده، س.، 1390. بررسی روند تغییرات شیمیایی، میکروبی و حسی فیله ماهی قزل آلای رنگین کمان جهت تعیین مدت زمان ماندگاری آن در دمای یخچال. نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران، 64: 2 107-119.##زارع گشتی، ق.، مطلبی، ع.، مرادی، ی.، خانی‌پور، ع.ا. مشائی، ن.، جلیلی، ح.، سیف زاده، م.، رفیع‌پور، ف. و گلزایی، ف.، 1393. بررسی اندازه گیری تازگی ماهی تیلاپیا با استفاده از روش Quality Index Method(QIM). مجله علمی شیلات ایران. سال 23. شماره3.##سیف زاده، م.، شجاعی آرانی، ا. و مظفری، ن.ا.، 1386. مقایسه و بررسی وجود باکتری های سرمادوست در فیله فیل ماهی پرورشی بسته بندی شده به روش sour vide در یخچال و انجماد. مجله علوم و فنون دریایی. دوره 6. شماره 3و4. صفحات 50_ 39.##قره‌خانی،م.، قربانی، م.، قره‌خانی، ا.، صادقی ماهونک، ع.، جبرائیلی،ش. و قاسمی، ی.، 1388. اثر عصاره های پوست و گوشت میوه پرتقال تامسون با پایه‌های مختلف در جلوگیری از اکسیداسیون روغن سویا. فصل‌نامه گیاهان دارویی. سال دهم، دوره دوم، شماره38.##کامکار، ا.، رضایی مجاز، م. و علی پژند، ن.، 1380. مقایسه تاثیر روش‌های بسته‌بندی (معمولی و اتمسفرهای اصلاح شده) بر قابلیت نگهداری گوشت تازه و سرد نیمچه‌های گوشتی. مجله دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران. دوره 56. شماره 3. صفحات 22- 17. ##Adams, M.R. and Moss, M.O., 2002. Food Microbiology, 3rd Edition, The Royal Society of Chemistry, Cambridge. 463 P.##Arashisara, S., Hisara, O., Kayab, M. and Yanik, T., 2004: Effects of modified atmosphere and vacuum packaging on microbiological and chemical properties of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fillets. Food Microbiology, 97: 209–214. Doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2004.05.024##Ashie, I., 1996. Spoilage and shelf life extension of fresh fish and shellfish. Journal of Food Science. pp.36-121. Doi: 10.1080/10408399609527720##Barakat, S.M., Mahmoud Yamazaki, K., Milyasita, K., Il- Shik, Sh., Dong– Suk, Ch. and Suzuki, T., 2004. Bacterial microflora of carp (Cyprinus carpio) and its shelf-life extension by essential oil compounds. Food Microbiology, 21: 657-666. ##Ben-Gigirey, B., Vieites Baptista de Sousa, J.M., Villa, T.G. and Barros-Velazquez, J., 1998. Change in biogenic amines and microbiological analysis in albacore (Thunnus alalunga) muscle during frozen storage. Journal of Food Protection, 61: 608-615.##Burt, S., 2004. Essential oils: Their antibacterial properties and potential applications in foods- a review. International Journal of Food Microbiology, 94: 223–253. Doi:10.1016/j.ijfoodmicro.2004.03.022##Burt, S., Der Zee, R., Koets, A. and De Graaff, A., 2007. Carvacrol induces heat shock protein 60 and inhibits synthesis of flagellin in Escherichia coli O157:H7. Applied and Environmental Microbiology, 73: 4484-4490. Doi: 10.1128/AEM.00340-07##Chanthaphon, S., Chanthachum, S. and Hongpattarakere, T., 2008. Antimicrobial activities of essential oils and crude extract from tropical Citrus spp. against food related microorganism. Songklanakarin Journal of Science Technology, 30(1): 125-131.##Chia-Min, L., Shane-Rong, S., Shu-Chen, H. and Yung-Hsiang, T., 2010. Determination of bactericidal efficacy of essential oil extracted from orange peel on the food contact surfaces. Food Control, 21(2): 1710-1715. DOI: 10.1016/j.foodcont.2010.06.008##Davidson, P.M. and Harrison, M.A., 2002. Resistance and adaptation of food antimicrobials, sanitizers and other process control. J. Food Technology, 59(11): 69-78.##Debbarma, J., Kishre, P., Nayak, B., Kannuchamy, N. and Gudipati, V., 2012. Antibacterial activity of Ginger, Eucalyptus, Sweet orange peels essential oils on fish-borne bacteria. Journal of Food Processing and Preservation, 37(5): 1745-4549. DOI: 10.1111/j.1745-4549.2012.00753.x## ##Espina, L., Somolinos, M., Loràn, S., Conchello, P., Garcĩa, D. and Pagàn, R., 2011. Chemical composition of commercial citrus fruit essential oils and evaluation of their antimicrobial activity acting alone or in combined processes. Food Control, 22: 896-902. Doi: 10.1016/j.foodcont.2010.11.021##Fan, W., Chi, Y. and Zhang, S., 2008. The use of a tea polyphenol dip to extend the shelf life of silver carp (Hypophthalmicthys molitrix) during storage in ice. Food Chemistry, 108: 148–153. Doi: 10.1016/j.foodchem.2007.10.057.##Fernández-López, J., Fernández-Ginés, J.M., Aleson-Carbonell, L., Sendra, E., Sayas-Barberá, E. and Pérez-Alvarez, J.A., 2004. Application of functional citrus by-products to meat products. Ttrends in Food Science and Technology, 15(3-4): 176-185.##Gelman, A., Glatman, L., Drabkin, V. and Harpaz, S., 2001. Effects of storage temperature and preservative treatment on shelf life of the pond raised freshwater fish, silver perch (Bidyanus bidyanus). Journal of Food Protect, 64: 1584–1591. Doi: 10.4315/0362-028X-64.10.1584##Gimenez, B., Roncale, P. and Beltran, J.A., 2002. Modified atmosphere packaging of filleted rainbow trout. Journal of Science and Food Agriculture, 84: 1154–1159. Doi: 10.1002/jsfa.1136.##Gram, L. and Dalgaard, P., 2002. Fish spoilage bacteria – problems and solutions. Current Opinion in Biotechnology, 13: 262–266. Doi: 10.1016/0168-1605(96)01134-8##Gram, L. and Huss, H.H., 1996. Microbiological spoilage of fish and fish products. International Journal of Food Microbiology, 33: 121–137. Doi: 10.1016/0168-1605(96)01134-8##Hozbor, M.C., Saiz, A.I., Yeannes, M.I. and Fritz, R., 2006. Microbiological changes and its correlation with quality indices during aerobic iced storage of sea salmon (Pseudopercis semifasciata). LWT Food Science and Technology, 39: 99–104. Doi: 10.1016/j.lwt.2004.12.008##ICMSF (International Commission on Microbiological Specification for Foods), 1986. Microorganisms In foods. 2. Sampling for microbiological analysis: principles and specific applications (2nd ed.). Buffalo, NY: University of Toronto Press.##Johnson, T.M., 1994. Trends in citrus juice processing. Citrus Magazine, 75(6): 42_50.##Kumari, S., Neelanjana, S. and Handique, A.K., 2014. Antioxidant and antimicrobial potential of ripen and unripe juice of Citrus limon. International Journal of Pharmaceutical Science Invention, 3(6): 18-20.##Lang, G. and Buchbauer, G., 2012. A review on recent research results (2008_2010) on essential oils an antimicrobials and antifungals. Flavour and Fragrance Journal, 27: 13-39. Doi: 10.1002/ffj.2082.##Mexis, S.F., Chouliara, E. and Kontominas, M.G., 2009. Combined effect of an oxygen absorber and oregano essential oil on shelf life extension of rainbow trout fillets stored at 4°C. Journal of Food Microbiology, 26: 598-605. Doi: 10.1016/j.fm.2009.04.002.##Mokbel, M.S., Watanabe, Y., Hashinaga, F. and Suganuma, T., 2006. Purification of antioxidant and antimicrobial substance of ethyl acetate from Buntan (Citrus grandisosbeck) fruit peel. Pakistan Journal of Biological Science, 9(1): 50-1445.##Olafsdottir, G., Martinsdottir, E., Oehlenschlager, J., Dalgaard, P., Jensen, B., Undeland, I., Mackie, I.M., Henehan, G., Nielsen, J. and Nilsen, H., 1997. Methods to evaluate fish freshness in research and industry. Trends in Food Science and Technology, 8(8): 258-265.##Pittman, C., Pendieton, S., Bledar, B., Obryan, C.A., Keith, E., Goodridge, L. and Grandall, G., 2011, Activity of citrus essential oils against Escherichia Coli O157:H7 and Salmonella spp. and effect on beef subprimal cuts under refrigeration. Journal of Food Science, 76(6): 433-438. Doi: 10.1111/j.1750-3841.2011.02253.x ##Rammler, D.H., 1967. The effect of DMSO on several enzyme systems. Annals of the New York Academy of Sciences, 141(1), 291-299.##Rezaei, M. and Hosseini, S., 2008. Quality assessment of farmed rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) during chilled storage. Journal of Food Science, 73: 93-6. Doi: 10.1111/j.1750-3841.2008.00792.##Sallam, K.I., 2007. Antimicrobial and antioxidant effects of sodium acetate, sodium lactate, and sodium citrate in refrigerated sliced salmon. Journal of Food Control, 18: 566-75. Doi: 10.1016/j.foodcont.2006.02.002##Sallam, K.I., Ahmed, A.M., Elgazzar, M.M. and Eldaly, E.A., 2007: Chemical quality and sensory attributes of marinated Pacific saury (Cololabis saira) during vacuum-packaged storage at 4℃. Food Chemistry, 102: 1061-1070. Doi: 10.1016/j.foodchem.2006.06.044##Samaržija, D., Zamberlin, Š. and Pogačić, T., 2012. Psychrotrophic bacteria and milk and dairy products quality. Mijekarstvo, 62(2): 77-95.##Simopoulos, A.P., 1999. Essential fatty acids in health and chronic disease. American Journal of Clinical Nutrition, 70(3): 560-569. Doi: 10.1093/ajcn/70.3.560s##Suvanich, V., Marshall, D.L. and Jahncke, M.L., 2000. Microbiological and color quality changes of channel catfish frame mince during chilled and frozen storage. Journal of Food Science, 65(1): 151-4. Doi: 10.1111/j.1365-2621.2000.tb15971##Tajkarim, M.M., Ibrahim, S.A. and Cliver, D.O., 2010. Antimicrobial herb and spice compounds in food. Food Control, 21: 1118-1199. Doi: 10.1016/j.foodcont.2010.02.003 ##Tan, Q., Ai, M. and Minh, N., 2011. Volatile constituents of essential oils from citrus sinensis grown in tine giant province, Vietnam. Asian Journal of Food and Agro Industry, 4(3): 183-186.##Viuda-Martos, M., Ruiz-Navajas, Y., Fernandez-Lopez, J. and Perez-Alvarez, J., 2008. Antibacterial activity of Lemon (Citrus lemon L.), Mandarin (Citrus reticulata L.), Grapefruit (Citrus paradisi L.) and Orange (Citrus sinensis L.) essential oils. Journal of Food Safety, 28(4): 567-576. Doi: 10.1007/s11258-013-0196-8. ##

تاثیر متقابل سطوح مختلف شوری و مواجهه با آفت‌‌کش کلریپریفوس بر برخی شاخصهای بیوشیمیایی سرم و موکوس ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) Interaction between different levels of salinity and exposure to chlorpyrifos on some serum & mucus biochemical indices of common carp (Cyprinus carpio) 1 1 هدف از پژوهش حاضر بررسی تأثیر متقابل سطوح مختلف شوری بر شاخص­­های مقاومت موکوسی و سرمی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) در رویارویی با آفت کش کلریپریفوس بود. بر این اساس تعداد 250 قطعه بچه ماهی کپور معمولی با میانگین وزنی 20 گرم در چهار تیمار و هر تیمار با سه تکرار شامل: شوری صفر، شوری ppt 4، شوریppt  8 و شوری ppt 12 توزیع و به­ مدت 7 روز قرار گرفتند. سپس یک گروه به­­مدت 4 روز در مجاورت آفت کش کلریپریفوس با غلظت حاد ppm 150 قرار گرفته و گروه دوم به مدت 7 روز در مجاورت آفت کش کلریپریفوس با غلظت تحت حاد ppm 15 قرار گرفتند. نتایج نشان داد که استرس شوری و آفت کش دارای اثرات کشندگی با سمیت شدید و  نامطلوب فیزیولوژیک بر ماهی کپور معمولی می‌باشند. نتایج بررسی شاخص­­های بیوشیمیایی موکوس و سرم نشان داد که تیمارهای آزمایشی بر میزان ALT سرم، لیزوزیم موکوس و سرم، آلبومین سرم و غلظت گلوکز سرم تاثیر معنی­­داری (0/05> p )دارد. جمع‌بندی نتایج تحقیق حاضر نشان داد که استرس شوری و آفت کش کلریپریفوس اثر مخربی بر فعالیت­­های حیاتی، شاخص­­های بیوشیمیایی، آنزیم­­های کبدی و  سیستم ایمنی  ماهی کپور معمولی دارد. 2  The objective of this study was to investigate the interaction of salinity levels on the characteristics of mucus and serum indices of common carp (Cyprinus carpio) in exposure to chlorpyrifos pesticide. 250 common carp with an average weight of 20 g were distributed in four treatments each with three replicates including: salinity 0, 4, 8 and 12 ppt and were distributed for 7 days. Then one group was placed for 4 days in exposure to pesticide with an acute concentration of 150 ppm and the second group was placed for 7 days in the with sub-acute concentration of 15 ppm. The results showed that salinity stress has lethal effects with severe and adverse physiological toxicity on common carp. The results of a study of mucus and serum biochemical indices showed that ALT enzyme had significant effect on serum ALT, serum and mucus lysosomes, serum albumin and serum glucose (p<0.05). Eventually it was shown that salinity and pesticide stress have a detrimental effect on vital activities, biochemical indices, liver enzymes and immune system of common carp. 37 44 2019/10/12019/11/232018/06/52020/01/29 1398/11/9 2020/08/312020/08/312020/08/312020/08/31 1399/6/10 مونا حسن خانی mona hasankhani دانشگاه منابع طبیعی گرگان Iran mna.hsny.98@gmail.com سید علی اکبر هدایتی Aliakbar Hedayati دانشگاه منابع طبیعی گرگان Iran hedayati@gau.ac.ir محمد مازندرانی mohammad mazandarani دانشگاه منابع طبیعی گرگان Iran mazandarani57@gmail.com طاهره باقری tahere bagheri موسسه تحقیقات شیلات Iran bagheri1360@gmail.com علی جافر نوده ali jafar nodeh دانشگاه منابع طبیعی گرگان Iran a.jafar55@gmail.com Blood indices Common carp Chloriprifus toxin Mucous resistance Toxicology کپورمعمولی آفت کش کلریپریفوس مقاومت موکوسی شاخص‌‌های خونی سم‌‌شناسی ##اسفندیارِی، ف.، فیروزبخش، ف.، رحمانی، ح. و جانی خلیلی، خ.، 1395. بررسی اثرات غلظت‌های تحت کشنده کلرپیریفوس بر فعالیت آنزیم های سرمی و برخی شاخص‌‌های استرس اکسیداتیو ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله منابع طبیعی ایران. 69(3): 299-307.##حسن نتاج ‌‌نیازی، ا.، ایمان پور، م. و هدایتی، ع.، 1393. تعیین سمیت کشنده آفت کش کلریپریفوس در ماهی کاراس طلایی (Carasius auratus) ومقایسه میزان سمیت آن با سایر سموم ارگانوفسفره. بهره برداری و پرورش آبزیان. 3(4): 12-1.##عطائی‌‌مهر، ب.، مجازی‌‌امیری، ب.، عبدالهی، ح. و میرواقفی، ع.، 1385. بررسی تغییرات تعداد و اندازه سلول‌‌های کلراید آبششی و میزان تلفات بچه آزاد ماهیان دریای خزر (Salmo trutta caspius Kessler, 1877) با اوزان گوناگون در شوری‌‌های مختلف آب. مجله علمی شیلات ایران. 15(3): 119-127.##محمدنژاد شموشکی، م. و شاهکار، ع.، 1388. تعیین غلظت کشنده (50Lc h96) حشره‌‌کش کلرپیریفوس و دیازینون بر روی بچه ماهی کلمه (Rutilus rutilus caspicus) . مجله علمی شیلات ایران. 3(4): 78-73.##مصباح، م.، محمدی، ق.، خواجه، غ. و ممبنی، آ.، 1395. بررسی خصوصیات فیزیکی و بیوشیمیایی مایع منی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) پرورشی استان خوزستان در فصل زمستان، مجله دامپزشکی ایران. 12(4): 117-109. ##نقشبندی، ن. و عسکری، م.، 1396. تاثیر سم ارگانوفسفره کلریپریفوس بر برخی شاخص های خونی ماهی کپور علفخوار. نشریه پژوهش‌‌های ماهی‌‌شناسی کاربردی. 5(3): 133-146.##هدایتی، ع.، جهان بخشی، ع. و قادری، ف.، 1392. سم شناسی و آبزیان. انتشارات دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 210 صفحه.##Giacomello, E., Marchini, D. and Rasotto, M.B., 2006. A male sexually dimorphic trait provides antimicrobials to eggs in blenny fish. Biology Letters, 2(3): 330-333. Doi: 10.1098/rsbl.2006.0492.##Haschek, W.M., Walling, M.A. and Rousseaux, C., 2010. Fundamental of toxicologic pathology. Academic Press. 686 P.##Moustakas, C.T., Watanabe, W.O. and Xopeland, K.A., 2004. Combined effects of photoperiod and salinity on growth, survival and osmoregulatory ability of larval southern flounder. Aquaculture, 229: 159-179. Doi: 10.1016/S0044-8486(03)00366-1 ##Subramanian, S., MacKinnon, S.L. and Ross, N.W., 2007. A comparative study on innate immune parameters in the epidermal mucus of various fish species. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology, 148(3): 256-263. Doi: 10.1016/j.cbpb.2007.06.003##Varsamos, S., Nebel, C. and Charmantier, G., 2005. Ontogeny of osmoregulation in post- embryonic fish. Journal of Comparative Biochemistry and Physiology, 141: 401-429. Doi: 10.1016/j.cbpb.2005.01.013##Yano, T., 1996. The nonspecific immune system: humoral defense. In The Fish Immune System: Organism, Pathogen, and Environment, Iwama, G. and Nakanishi, T., Eds., Academic Press, New York, pp. 105-157. ##

اثر تجویز خوراکی عصاره زنجبیل (Zingiber officinale) بر فعالیت آنزیم‌‌‌های گوارشی و برخی پارامترهای بیوشیمیایی میگوی پا سفید غربی (Litopenaeus vannamei) Effect of dietary administration of a Zingiber officinale extract on digestive enzyme activity and some biochemical parameters of western whiteleg shrimp, Litopenaeus vannamei 1 1 این مطالعه، به‌‌منظور ارزیابی اثر عصاره زنجبیل (Zingiber officinale) بر فعالیت آنزیم‌‌های گوارشی (کیموتریپسین، تریپسین، پروتئاز، لیپاز و آمیلاز) و برخی پارامتر‌‌های بیوشیمیایی (آلکالین فسفاتاز، پروتئین تام، آلبومین، گلوبولین و لیزوزیم) میگوی پا‌‌سفید غربی (Litopenaeus vannamei) انجام شد. تعداد 600 پست لارو میگو (با وزن اولیه 7/0±06/1 گرم) به ‌‌طور تصادفی در 12 مخزن فایبرگلاس در4 تیمار با تراکم 50 میگو در هر تانک توزیع شدند. میگوهای گروه شاهد با غذای پایه بدون عصاره زنجبیل تغذیه شدند. میگوهای سایر گروه‌‌ها با غذاهای پایه حاوی 5/0،0/1 و 5/1 گرم بر کیلوگرم غذا تغذیه شدند. رژیم‌‌های غذایی به میزان 10 درصد وزن زنده بدن میگو به مدت 8 هفته مورد استفاده قرار گرفت. نتایج نشان داد که فعالیت آنزیم‌‌های آمیلاز، لیپاز و پروتئاز و میزان پروتئین تام، آلبومین و گلوبولین در گروه 5/0 و 0/1 گرم عصاره زنجبیل بر کیلوگرم غذا به طور معنی‌‌داری در مقایسه با گروه شاهد و 5/1 گرم عصاره زنجبیل بر کیلوگرم غذا افزایش یافت (5/ 0>p). بیشترین میزان فعالیت آنزیم‌‌های آمیلاز (05/0±35/1 واحد بر میلی‌‌گرم پروتئین) و لیپاز (0±09/0 واحد بر میلی‌‌گرم پروتئین) در گروه 1 گرم عصاره زنجبیل بر کیلوگرم غذا مشاهده شد. در مجموع، نتایج این تحقیق نشان داد که استفاده از سطوح 5/0 و0/1 گرم عصاره زنجبیل بر کیلوگرم غذا جهت افزایش فعالیت آنزیم‌‌های گوارشی و برخی پارامترهای بیوشیمیایی در جیره غذایی میگوی پاسفید غربی توصیه می‌‌گردد.   2 This study was conducted to evaluate the effect of Zingiber officinale extract (ZE) on digestive enzyme activity (chymotrypsin, trypsin, protease, amylase, and lipase) and some biochemical parameters (alkaline phosphatase (ALP), total protein (TP), albumin (ALB), globulin (GLU) and lysozyme) of Litopenaeus vannamei shrimp. A total of 600 post larvae shrimps (initial weight, 1.06±0.7 g) were randomly distributed into 12 fiberglass tanks representing four treatments at a rate of 50 shrimp in each tank. The control shrimp group (ZE0) was fed a ZE free basal diet. Other groups were fed the basal diet supplemented with 0.5 (ZE 0.5), 1.0 (ZE1) and 1.5 (ZE 1.5) g kg-1 diet. Results revealed that activity of protease, amylase, and lipase and value of TP, ALB and GLU of the shrimp have significantly increased (p<0.05) in the ZE0.5 and ZE1groups compared with the ZE1.5 group and control group. The highest amylase (1.35± 0.5 U mg -1protein) and lipase (0.09±0 U mg-1protein) activity was observed in the ZE1 group. It can be concluded that use of Z. officinale ZE0.5 and ZE1 kg-1diets could suggest for increasing digestive enzyme activity and some biochemical parameters of L. vannamei.   45 55 2019/10/12019/11/232018/06/52020/01/292019/11/22 1398/9/1 2020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/31 1399/6/10 ناصر شهرکی naser shahraki 1- گروه تکثیر و پرورش آبزیان، دانشکده علوم شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان ، ایران Iran pariaakbary1355@gmail.com محمد رضا ایمانپور MOHAMMAD REZA IMAN POUR 1- گروه تکثیر و پرورش آبزیان، دانشکده علوم شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان ، ایران Iran pariaakbary1355@GMAIL.COM پریا اکبری paria akbary گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران Iran paria.akbary@gmail.com رقیه صفری 1- گروه تکثیر و پرورش آبزیان، دانشکده علوم شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان ، ایران Iran ولی الله جعفری 1- گروه تکثیر و پرورش آبزیان، دانشکده علوم شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان ، ایران Iran Litopenaeus vannamei Zingiber officinale Non-specific immunity Digestive enzyme activity میگوی پاسفید غربی زنجبیل سیستم ایمنی غیر اختصاصی فعالیت آنزیم گوارشی ##اکبری، پ. و نگهداری جعفر بیگی، ی.، 1395. اثر سطوح مختلف مکمل گیاهی بیوهربال (حاوی پودر زنجبیل و رازیانه) بر رشد، تغذیه و ترکیب شیمیایی لاشه کفال ماهی. نشریه دامپزشکی در پژوهش و سازندگی، 12: 10-18. ## Doi: 10.22034/VJ.2016.106292##شمسایی مهرجان، م.، حسینی شکرابی، س.پ.، محجوب زردست، م. و محمدی، ن.، 1399. تأثیر مکمل غذایی پودر فلفل قرمز تند (Capsicum annuum) بر شاخص‌های رشد، میزان بقاء، فراسنجه‌های خونی و برخی از پاسخ‌های ایمنی بچه ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران، 29(1): 131-140. Doi:10.22092/ISFJ.2019.120988##ضیایی‌‌نژاد، س.، لاوت، د. و آبرومند، ع.، 1397. بررسی فعالیت آنزیم-های گوارشی میگوی سفید غربی در مراحل زیستی مختلف. یافته‌‌های نوین در علوم زیستی، 4 (4): 373-379. ##Doi: 10.29252/nbr.4.4.373##نجفی، ز.، اورجی، ح.، یگانه، س. و کرامت امیر کلایی، ع.ص.، 1397. تأثیر عصاره‌ی الکلی یونجه (Medicago sativa) بر عملکرد رشد، مصرف غذا، ترکیب بدن و برخی از فراسنجه‌های سرمی بچه‌ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان(Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران، 27(5): 1-9. Doi:10.22092/ISFJ.2018.10220##Awad, E. and Awaad, A., 2017. Role of medicinal plants on growth performance and immune status in fish. Fish and Shellfish Immunology, 67: 40-54. Doi: 10.1016/j.fsi.2017.05.034##Briggs, M., Smith, S.F., Subasinghe, R. and Phillips, M., 2004. Introduction and movement of Penaeus vannamei and Penaeus stylirostris in Asia and Pacific. Food and agriculture organization of the United Nations regional office for Asia and Pacific, FAO, Bangkok, Thailand. 88 P.##Cahu, C.L., Zambonino Infante, J.L., Quazuguel, P. and Le Gall, M.M., 1999. Protein hydrolysate vs. fish meal in compound diets for 10-day old sea bass Dicentrarchus abrax larvae. Aquaculture, 171(1-2): 109–119. Doi: 10.1016/S0044-8486(98)00428-1.##Chang, Y., Liu, C., Wu., Chiang, C., Lian, J. and Hsieh, S., 2012. Dietary administration of zingerone to enhance growth, non-specific immune response andresistance to Vibrio alginolyticus in Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) juveniles. Fish and Shellfish Immunology, 32(2): 284-290. Doi: 10.1016/j.fsi.2011.11.017. ##Choi, Y.H., Lee, B.J. and Nam, T.J., 2015. Effect of dietary inclusion of Pyropia yezoensis extract on biochemical and immune responses of olive flounder Paralichthys olivaceus Aquaculture, 435: 347-353. ## Doi: 10.1016/j.aquaculture.2014.10.010.##Citarasu, T., 2010. Herbal biomedicines a new opportunity for aquaculture industry. Aquaculture International, 18: 403–414. D Doi: org/10.1007/s10499-009-9253-7## ##Dugenci, S.K., Arda, N. and Candan, A., 2003. Some medicinal plants as immunostimulant for fish. Journal of Ethnopharmacology, 88(1): 99-106. Doi: 10.1016/S0378-741(03)00182-X##El-Desouky, H., El-Asely, A., Shaheen, A.A. and Abbass, A., 2012. Effects of Zingiber officinalis and Cyanodon dactylonon the Growth Performance and Immune Parameters of Macrobrachium rosenbergii. World Journal of Fish and Marine Sciences, 4(3): 301-307. ## Doi:10.5829/idosi.wjfms.2012.04.03.62120.##Ellis, A.E., 1990. Lysozyme Assays. In; Stolen, J.S., Fletcher, T.C., Anderson, D.P., Roberson, B.S. and Van Muiswinkel, W.B., (ed)Techniques in Fish Immunology, (Eds). SOS Publication, Fair Haven, USA, pp.101-103.##Erlanger, B.F., Kokowsky, N. and Cohen, W., 1961. The preparation and properties of two new chromogenic substrates of trypsin. Archives of Biochemistry and Biophysics. 95(2): 271-278. Doi: 10.1016/0003-9861 (61)90145-X.##Esiobu, N., Armenta, L. and Ike, J., 2002. Antibiotic resistance in soil and water environments. International Journal of Environmental Health Research, 12(2): 133–144. ## Doi: 10.1080/09603120220129292.##Haghighi, M. and Sharif Rohani, M., 2013. The effects of powdered ginger (Zingiber officinale) on the haematological and immunological parameters of rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Journal of Medicinal plant and Herbal Therapy Research, 1: 8-12. ##Khan, R.U., Naz, S., Nikousefat, Z., Tufarelli, V., Javdani, M., QureshiI, M.S. and Laudadio, V., 2012. Potential applications of ginger (Zingiber officinale) in poultry diets. World's Poultry Science Journal, 68(2): 245-252.## Doi: 10.1017/S004393391200030X.##Kumar, S., Sahu, N.P., Pal, A.K., Choudhury, D., Yengkokpam, S. and Mukherjee, S.C., 2005. Effect of dietary carbohydrate on haematology, respiratory burst activity and histological changes in Labeo rohita juveniles. Fish and Shellfish Immunology, 19(4): 331-344. Doi: 10.1016/j.fsi.2005.03.001.##Kumar, P.N.J., Jyothsana, S., Reddy, M.H. and Sreevani, S., 2013. Effect of Bacillus subtilis and Lactobacillus rhamnosus incorporated probiotic diet on growth pattern and enzymes in Penaeus vannamei. International journal of Life Science and Pharma Research, 3(4): 6-11.##Kuz'mina, V.V., Skvortsova, E.G., Zolotareva, G.V. and Sheptitskiy, V.A., 2011. Influence of pH upon the activity of glycosidases and proteinases of intestinal mucosa, chyme and microbiota in fish. Fish Physiology Biochemistry, 37(3): 345-353. Doi: 10.1007/s10695-010-9426-3##Magnadóttir, B., 2006. Innate immunity of fish (overview). Fish and Shellfish Immunology, 20(2): 137–151. Doi:10.1016/j.fsi.2004.09.006.##Nya, E.J. and Austin, B., 2011. Development of immunity in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum) to Aeromonas hydrophila after the dietary application of garlic. Fish and Shellfish Immunology, 30(3): 845-850. Doi:10.1016/j.fsi.2011.01.008.##Rahimi Yadkoori, N., Zanguee, N., Mousavi, S.M. and Zakeri, M., 2015. Effects of Ginger (Zingiber officinale) extract on digestive enzymes and liver activity of Mesopotamichthys sharpeyi fingerlings. Journal of the Persian Gulf, 6(19): 1-10.##Sainz Hernandez, J.C. and Cordova Murueta, J.H., 2009. Activity of trypsin from Litopenaeus vannamei. Aquaculture, 290(3-4): 190-195. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2009.02.034.##Silva, F.C.P., Nicoli, J.R., Zambonino-Infante, J.L., Le Gall, M.M., Kaushik, S. and Gatesoupe, F.J., 2010. Influence of partial substitution of dietary fish meal on the activity of digestive enzymes in the intestinal brush border membrane of gilthead sea bream, Sparus aurata and goldfish, Carassius auratus. Aquaculture, 306(1-4): 233-237. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2010.05.018. ##Talpur, A.D., Ikhwanuddin, M. and Ambok Blong, A., 2013. Nutritional effects og ginger (Zingiber officinale roscoe) on immune response of asian sea bass, Lates calcarifer (Bloch) and disease resistance against vibrio harveyi. Aquaclture, 400-401: 46-52. Doi:10.1016/j.aquaculture.2013.02.043.##Talpur, A.D., 2014. Mentha piperita (Peppermint) as feed additive enhanced growth performance, survival, immune response and disease resistance of Asian seabass, Lates calcarifer (Bloch) against Vibrio harveyi infection. Aquaculture, 420–421: 71–78. ## Doi: 10.1016/j.aquaculture.2013.10.039. ##Venkataramalingam, K., Godwin, C.J. and Citarasu, T., 2007. Zingiber officinalis, an herbal appetizer in the tiger shrimp Penaeus monodon (Fabricius) larviculture. Aquaculture Nutrition, 13(6): 439-443. Doi: 10.1111/j.1365-2095.2007.00495.x.##Walter, K. and Schutt, C., 1974. Alkaline phosphatase in serum (continous assay). In. Bergmeyer, H.U., (Ed), Methods of Enzymatic Analysis, (2nd ed), Academic press, New York, NY, pp. 860-864##Wootton, L.I., 1964. Micro-analysis in medical biochemistry in micrometer, 4th.ed, Churchill press; London UK. pp.264-267.##Worthington C.C., 1991. Worthington manual related Biochemical. 3th ed, Freehold, New Jersey, 85 P.##Xie, J., Liu, B., Zhou, Q., Su, Y., He, Y., Pan, L., Ge, X. and Xu, P., 2008. Effects of anthraquione extract from rhubarb Rheum officinale Bail on crowding stress response and growth of common carp Cyprinus carpio var. Jian. Aquaculture, 281(1-4): 5-11. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2008.03.038.##Zhang, G.F., Yang, Z.B., Wang, Y., Yang, W.R., Jiang, S.Z. and Gai, G.S., 2009. Effects of ginger root (Zingiber officinale) processed to different particle sizes on growth performance, antioxidant status, and serum metabolites of broiler chickens. Poultry Science, 8(10): 2159–2166. Doi:10.3382/ps.2009-00165.##Zhou, X.X., Wang, Y. and Li, W.F., 2009. Effect of probiotic on larvae shrimp (Penaeus vannamei) based on water quality, survival rate and digestive enzyme activities. Aquaculture, 287(3-4): 349–353. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2008.10.046. ##

شناسایی مولکولی و فیلوژنی گونه Gammarus komareki (Gammaridae) از رودخانه جاجرود با روش بارکدگذاری DNA Molecular and phylogenic identification of Gammarus komareki species (Gammaridae) from the Jajrood River using DNA barcoding method 1 1 گاماروس‌‌ها از انواع سخت‌‌پوستان ناجورپا متعلق به خانواده Gammaridae بوده که نقش و اهمیت زیادی در زنجیره غذائی، پالایش محیط از مواد آلی و حساسیت بالایی نسبت به آلودگی‌های محیطی دارند. بنابراین، شناسایی آنها از اهمیت زیادی برخوردار است. از آنجایی‌‌که شناسایی جنس گاماروس به‌‌ دلیل ویژگی‌‌های ریخت‌‌شناسی شبیه به هم بسیار مشکل می‌‌باشد، هدف مطالعه حاضر شناسایی دقیق مولکولی و بررسی روابط فیلوژنی گونه komareki Gammarusاز رودخانه جاجرود در شرق استان تهران در مقایسه با سایر نقاط ایران و جهان بود. بدین منظور، جمع‌‌آوری و نمونه‌‌برداری با استفاده از تور دستی کوچک از گونه G. komareki رودخانه جاجرود به صورت فصلی از مهر 1392 لغایت تیر 1393 صورت پذیرفت.  به منظور مطالعات مولکولی مقداری بافت از هر نمونه با اسکالپل جدا و در الکل اتیلیک 95 درجه تثبیت گردید. سپس DNA نمونه‌‌ها با استفاده از روش CTAB استخراج و قطعه ژنی زیر واحد یک سیتوکروم اکسیداز میتوکندری (COI) تکثیر و توالی‌‌یابی شد. پس از تکثیر قطعه ژن و توالی‌‌یابی آن، درخت‌‌های تبارشناسی Neighbor Joining وMaximum Likelihood با استفاده از نرم‌‌افزارهای MEGA7 ترسیم گردیدند. نتایج مطالعه حاضر نشان داد، اگرچه نمونه‌‌های موردنظر از نظر ریخت‌‌شناسی متعلق به گونه komareki  Gammarus می‌‌باشند که از سایر مناطق ایران گزارش شده است، با این‌‌حال بررسی‌‌های مولکولی نشان داد نمونه‌‌های مطالعه حاضر با قرار گرفتن در دو کلاد مختلف به دو دسته تقسیم شدند. بنابراین، این احتمال وجود دارد که شاید این نمونه‌‌ها متعلق به گونه‌‌های جداگانه ‌‌باشند. که اثبات این امر نیازمند بررسی‌‌های دقیق‌‌تر با سایر نشانگرهای ژنتیکی می‌‌باشد.   2 Gammarus (Crustacea: Amphipoda) are Gammaridae family that play an important role in food chain, environmental refining of organic matter and high sensitivity to environmental contamination. Therefore, it is important to identify them. Since the identification of the genus Gammarus is very difficult due to similar morphological features, the aim of the present study was to molecular identification and investigation of the phylogenetic relationships of G. komareki from the Jajrood River, east of Tehran compared to other parts of Iran and the rest of the world. For this purpose, sampling of G. komareki species in Jajrood River was done in season from October 2013 to July 2014. Samples were collected by a small manual tour. For molecular studies, some tissue was isolated from each sample with scalpel and fixed in 95% ethyl alcohol. The DNA of the samples was then extracted using the CTAB method and the gene fragment of a mitochondrial cytochrome oxidase (COI) subunit was amplified and sequenced. After gene fragment amplification and sequencing, Neighbor Joining and Maximum Likelihood trees were plotted using MEGA7 software. The results of the present study showed that although the specimens were morphologically belonging to Gammarus komareki species reported from other parts of Iran, Molecular studies showed that the samples of the present study were divided into two categories by being placed in two different clouds. Therefore, it is possible that these specimens may belong to separate species, which needs further investigation with other genetic markers.   57 69 2019/10/12019/11/232018/06/52020/01/292019/11/222019/11/14 1398/8/23 2020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/04/13 1399/1/25 سیامک یوسفی سیاه کلرودی Siamak Yousefi Siahkalroudi دانشگاه آزاد اسلامی Iran siamak.yousefi1@gmail.com هادی یوسفی سیاهکلرودی Hadi Yousefi Siahkalroudi دانشگاه آزاد اسلامی Iran samanyousefi58@gmail.com فریده چناری Farideh Chenari شرکت پروتئین گستر سینا Iran chenari_bio@yahoo.com شادی خاتمی shadi Khatami دانشگاه آزاد اسلامی Iran shadi.khatami1@gmail.com Genetic diversity Gammarus Jajrood The east of Tehran Iran تنوع ژنتیکی گاماروس جاجرود شرق تهران ایران ##امرایی، ر.، ۱۳۸۰. بررسی بیوسیستماتیکی برخی از دوجورپایان رودخانه های لرستان. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده علوم، دانشگاه تهران. ##بناکار، ف.، 1380. مطالعه بیوسیستماتیک دوجورپایان رودخانه‌‌های استان تهران و دینامیک جمعیتی، تولیدمثلی گونه در منطقه خجیر. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد تهران شمال.##چناری، ف.، نبوی، م.ب.، سالاری، م.ع.، سواری، ا. و ذوالقرنین، ح.، 1396. شناسایی مورفوتایپ‌‌های رنگی گونه (Brachyuran: Xanthidae) Leptodius exaratus بر اساس مطالعات مولکولی و میکروسکوپ الکترونی. مجله علمی شیلات ایران. 26(3): 139-149.##زینی، م.، 1383. مطالعه گونه‌‌های دوجورپایانGammarus komareki استان کردستان و چرخه زندگی. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده علوم، دانشگاه تهران##صناعی، ف.، ۱۳۸۴. مطالعه دوجورپایانCrustacea: ) (Amphipoda استان کهگیلویه و بویر احمد با استفاده از روش‌‌های مورفولوژیکی و تکوینی. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده زیست شناسی، پردیس علوم، دانشگاه تهران. ##عطاران فریمان،گ. و موسوی پور، ی.، 1392. اولین بررسی فیلوژنتیکی گونه Goniobranchus annulatus) Nudibranchia (Mollusca: در آب‌‌های ناحیه زیر جزر و مدی خلیج چابهار براساس توالی ژن سیتوکروم اکسیداز C زیر واحد I. مجله علمی شیلات ایران. 22: 86-77. ##علیزاده اقتدار، ح. و ساری، ع.ر.، 1387. دوجورپایان Ponto-Caspian و گروه گونه‌ایGammarus pulex (Crustacea: Amphipoda) در آذربایجان ایران. مجله علوم دانشگاه تهران. 33 (1): 35-47##نقیب، م.، ۱۳۸۱. مطالعه پراکندگی، سیکل تکوینی و تعیین عدد کروموزومی دوجورپایان استان‌‌های اصفهان و قم. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده علوم، دانشگاه تهران.##نهاوندی، ن.، 1383. بیوسیستماتیکPontogammarus maoticus و Gammarus komareki در منطقه هیرکانی. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه شهید بهشتی.##یاوری، ی.، ۱۳۷۹. مطالعه بیوسیستماتیک چهار جمعیت محلی دوجورپایان حوضه آبریز قره‌‌چای استان مرکزی. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده علوم، دانشگاه شیراز.##یوسفی سیاهکلرودی، ه.، یوسفی سیاه‌کلرودی، س. و خاتمی، ش.، 1397. تنوع ژنتیکی گاماروس در رودخانه های شرق استان تهران با استفاده از توالی یابی ژن CO1 میتوکندریایی. 71 (3): 236-245##Asensio, G.L., 2007. PCR-based methods for fish and fishery products authentication. Trends in Food Science and Technology, 18: 558-566. Doi: 10.1016/j.tifs.2007.04.016.##Birstein, J.A., 1945. Zametka o presnovodnykh visshikh rakoobraznykh Turkmanii Irana. Uchenye Zapiski Moskovskogo Gosudarstvennogo Universiteta, 83: 151-164. [In Russian].##Christie, H. and Kraufvelin, P., 2003. Mechanisms regulating amphipod population density within macroalgal communities with low predator impact. Scientia Marina, 68: 189-198. Doi: 10.3989/scimar.2004.68s1189.##Costa, F.O. and Costa, M.H., 2000. Review of the ecology of Gammarus locusta (L.). Polish Archives of Hydrobiology, 48: 541–559.##Costa, F.O., Neuparth, T., Correia, A.D. and Costa, M.H., 2005. Multi-level assessment of chronic toxicity of estuarine sediments with the amphipod Gammarus locusta: II. Organism and population-level endpoints. Marine Environmental Research, 60: 93-110. Doi: 10.1016/j.marenvres.2004.08.005.##Costa, F.O., Dewaard, J.R., Boutillier, J., Ratnasingham, S., Dooh, R.T., Hajibabaei, M. and Hebert, P.D.N., 2007. Biological identifications through DNA barcodes: the case of the Crustacea.Canadian. Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 64: 272-295. Doi: 10.1139/f07-008##Englisch, U., Coleman, C.O. and Wagele, J.W., 2003. First observations on the phylogeny of the families Gammaridae, Crangonyctidae, Melitidae, Niphargidae, Megaluropidae and edicerotidae (Amphipoda, Crustacea), using small subunit Rdna gene sequences. Journal of Natural History, 37: 2461-2486. Doi: 10.1080/00222930210144352##Fialkowski, W. and Rainbow, P.S., 2006. The discriminatory power of two biomonitors of trace metal bioavailabilities in freshwater streams. Water Research, 40: 1805-1810. Doi: 10.1016/j.watres.2006.02.035 ##Folmer, O., Black, M., Hoeh, W., Lutz, R. and Vrijenhoek, R., 1994. DNA primers for amplification of mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates. Molecular Marine Biology and Biotechnology, 3: 294-299.## ##Franklin, J.B., Fernando, S.A., Chalke, B.A. and Krishnan, K.S., 2007. Radular morphology of Conus (Gastropoda:Caenogastropoda: Conidae) from India. Molluscan Research, 27(3):111-122.##Grabowski, M. and Pesi, V.C., 2007. New data on the distribution and checklist of fresh- and brackishwater Gammaridae, Pontogammaridae and Behningiellidae (Amphipoda) in Bulgaria. Lauterbornia, 59: 53-62.##Hebert, P.D.N., Cywinska, A., Ball, S.L. and deWaard, J.R., 2003. Biological identifications through DNA barcodes. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences., 7(1512): 313-321. Doi: 10.1098/rspb.2002.2218.##Hebert, P.D.N., Cywinska, A., Ball, S.L. and deWaard, J.R., 2003. Identification of birds through DNA barcodes. A Peer-Reviewed Open-Access Journal. 10(2): 1657-1663 (e312). Doi: 10.1371/journal.pbio.0020312##Hou, Z., Fu, J. and Li, S., 2007. A molecular phylogeny of the genus Gammarus (Crustacea: Amphipoda) based on mitochondrial and nuclear gene sequences. Molecular Phylogenetics and Evolution, 45: 596-611. Doi: 10.1016/j.ympev.2007.06.006##Ironside, J.E., Smith, J.E., Hatcher, M.J., Sharpe, R.G., Rollinson, D. and Dunn, ##A.M., 2003. Two species of feminizing microsporidian parasite coexist in populations of Gammarus duebeni. J. Evol. Biol, 16: 467-473.##Kaas, Q., Westermann, J.C. and Craik, D.J., 2010. Conopeptide characterization and classifications: An analysis using ConoServer. Toxicon, 55(8): 1491-1509. Doi: 10.1016/j.toxicon.2010.03.002##Karaman, G.S. and Pinkester, S., 1977. Fresh water Gammarus species from Europe, north Africa and adjacent regions of Asia (Crustacea: Amphipoda) Gammarus pulex- group and related species. Bijdragen tot de Dierkunde, 47(1): 97.##Karaman, G.S., 1934. Über asiatische Süsswassergammariden. Zoologischer Anzeiger,## 106: 127-134. [In German]##Karaman, G.S., 1969. Bemerkungen über Gammarus komareki Schäf., Sein Taxonomie und Verbreitung. Black Fragment, 6: 33-44. [In German].##Kelly, D.W., Dick, J.T.A. and Montgomery, Y.I., 2002. The functional role of Gammarus (Crustacea, Amphipoda): shredders, predators or both? Hydrobiologia, 485: 199-203. Doi: 10.1023/A:1021370405349##Khalaji-Pirbalouty, V. and Sari, A., 2004. Biogeography of amphipods (Crustacea: Amphipoda, Gammaridae) from the Central Zagros mountains, Iran, with descriptions of two new species. Journal of Natural ##History, 38(9): 2425-2445. Doi:10.1080/00222930310001647406.##Khalaji-Pirbalouty, V. and Sari, A., 2006. Description of Gammarus balutchi sp. nov. (Amphipoda: Gammaridae) from Iran, based on light and Electron microscopy. Zoologische Mededelingen, 80(6): 91-100. Doi:10.11646/ zootaxa.2894.1.3.##Knowlton, N., 2000. Molecular genetic analyses of species boundaries in the sea. Hydrobiologia, 420:73-90. Doi: 10.1023/A:1003933603879.##Knudsen, B., Knudsen, T., Flensborg, M., Sandmann, H., Heltzen, M., Andersen, A., Dickenson, M., Bardram, J., Steffensen, P.J., Mønsted, S., Lauritzen, T., Forsberg, R., Thanbichler, A., Bendtsen, J.D., Gorlitz, L., Rasmussen, J., Tordrup, D., Værum, M., Ravn, M.N., Hachenberg, C., Fisker, E., Dekker, P., De Meza, J., Hein, A.M.K., Sinding, J.B., Quorning, J., Hvam, K., Mikkelsen, S., Liboriussen, P., Grydholt, J., Handberg, H., Bundgaard, M., Joecker, A., Simonsen, M., Nielsen, P.R.L., Joecker, A., Fleischer, P., Jakobsen, J., Juul, S., Appelt, U., Fejes, A. and Christensen, A.S., 2012. CLC Sequence Viewer, 6.7.1. CLC bio. 2P.##Kohn, A.J., 2003. Infaunal invertebrates of an intertidal sand flat, Dampier, Western Australia.pp: 109-113. In: Wells F.E., Walker D.I. and Jones D.S. (Eds.). Proceedings of the Eleventh International Marine Biological Workshop: The Marine Flora and Fauna of ampier. ##Kohn, A.J., 1990. Tempo and mode of evolution in Conidae. Malacologia, 32: 55-67.##Kostadinova, A. and Mavrodieva, R.S., 2005. Microphallids in Gammarus insensibilis Stock, 1966 from a Black Sea lagoon: host response to infection. Parasitology, 131: 347-354. doi: 10.1017/s0031182005007845.##Kumar, S., Stecher, G. and Tamura, K., 2015. MEGA7: Molecular Evolutionary Genetics Analysis version 7.0 for bigger datasets. Molecular Biology and Evolution.##Lipinskaya, T., Radulovici, A. and Makaranka, A., 2018. First DNA barcoding based record of Echinogammarus trichiatus (Martynov, 1932) (Crustacea, Gammaridae) in Belarus. BioInvasions Records. 7(1): 55-60. Doi: 10.3391/bir.2018.7.1.08##Lorenz, F. and Puillandre, N., 2015. Conus hughmorrisoni, a new species of cone snail from New Ireland, Papua New Guinea (Gastropoda: Conidae). European Journal of Taxonomy, 29: 1-15. Doi: 10.5852/ejt.2015.129.##MacNeil, C., Prenter, J., Briffa, M., Fielding, N.J., Dick, J.T.A., Riddell, G.E., Hatcher, M.J. and Dunn, A.M., 2004. The replacement of a native freshwater amphipod by an invader: roles for environmental degradation and intraguild predation. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 61: 1627-1635. Doi: 10.1139/f04-091##Mateus, A. and Mateus, E., 1990. Etude d'une collection d'amphipodes spécialement du sud-ouest asiatique- du Muséum d'Historie Naturelle de Vienne (Autriche). Annalen Des Naturhistorischen Museums in Wien, 19(B): 273-331.##Meyran, J.C., Monnerot, M. and Taberlet, P., 1997. Taxonomic status and phylogenetic relationships of some species of Gammarus (Crustacea, amphipoda) deduced from mitochondrial DNA sequences. Molecular Phylogenetics and Evolution, 8: 1-10.##Monaghan, M.T., Balke, M., Gregory, T.R. and Vogler, A.P., 2005. DNA-based species delineation in tropical beetles using mitochondrial and nuclear markers. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences, 360: 1925-1933. Doi: 10.1098/rstb.2005.1724.##Olivera, B.M., 2006. Conus peptides: Biodiversity-based discovery and exogenomics. The Journal of Biological Chemistry, 281(42): 31173-31177. Doi: 10.1074/jbc. R600020200.##Özbek, M., Özkan, N. and Çamur-Elipek, B., 2017. Freshwater and Brackish Amphipods (Crustacea: Amphipoda) from Turkish Thrace Region (Including Çanakkale Province). Acta Zoologica Bulgarica, 69 (4): 493-499.##Ozbek, M. and Rasouli, H., 2014. Gammarus komareki aznavensis subsp. nov., a new amphipod subspecies from Iran (Amphipoda: Gammaridae). Turkish Journal of Zoology, 38(3): 326-333. Doi: 10.3906/zoo-1306-1## Pesce, G.L., Pace, R. and Maggi, D., 1982. Ricerchi faunistiche in acque sotterranee fratiche de l´Iran nordoccidetale. Rivis Idrobiol.21(1/3): 37-74. [In French]##Puillandre, N., Lambert, A., Brouillet, S. and Achaz, G., 2012. ABGD, Automatic Barcode Gap Discovery for primary species delimitation. Mol. Ecol, 21: 1864-1877. ##Ruffo, S., 1979. Descrizione di due nuovi Anfipodi anoftalmi dell Iran e del Madagascar. Bollettino del Museo Civvico di Storia Naturale, ##Verona, 6: 419-440. ##Stock, J.H., 1998. The systematic of certain Ponto-Caspian Gammaridae (Crustacea, Amphipoda). Mitt. Hamburg Zoological Museum, 70: 75-95.##Tsoi, K.H. and Chu, K.H., 2005. Sexual dimorphism and reproduction of the amphipod Hyale crassicornis Haswell (Gammaridea: Hyalidae). Zoological Studies, ## 44(3): 382-392. Doi: 10.1111/azo.12267##Vainol, A.R., Witt, J.D.S., Grabowski, M. and Bradbury, J.H., 2008. Global diversity of amphipods (Amphipoda: Crustacea) in freshwater. Hydrobiologia, 595: 241-255. Doi: 10.1007/s10750-007-9020-6.##Zamanpoor, M., Grabowski, M., Poeckl, M. and Schiemer, F., 2011. Taxonomic review of freshwater Gammarus (Crustacea: Amphipoda) from Iran. Zootaxa, 3140: 1-14. Doi: 10.11646/zootaxa.3140.1.1 ##

مقایسه روش های مختلف آماده کردن جیره خوراک فراسودمند حاوی پروبیوتیک بومی تک سل بر شاخص های رشد پست لارو میگوی سفید غربی (Litopenaeus vannamei) Comparison of different preparation methods of functional food diets containing native probiotic Takcell® on the growth performance of Western white shrimp (Litopenaeus vannamei) post larvae stage 1 1 در دهه اخیر استفاده از خوراک فراسودمند حاوی پروبیوتیک‌ها مورد توجه پرورش دهندگان آبزیان قرار گرفته و یکی از موارد مورد توجه روش افزودن پروبیوتیک‌ها به خوراک آبزیان از جمله میگو می‌باشد. در این پژوهش، اثربخشی روش‌های مختلف آماده کردن جیره خوراک فراسودمند حاوی پروبیوتیک بومی تک سل بر  عملکرد رشد میگوی سفید غربی مورد مقایسه قرار گرفت. بدین منظور پست لاروهای میگو در هشت تیمار آزمایشی با پروبیوتیک تک سل (دوز‌های 106 ، 107 و  108 واحد تشکیل دهنده کلونی در هر کیلوگرم (CFU kg-1) به دو صورت جیره های حاوی پروبیوتیک مخلوط شده در پلت و جیره‌های حاوی پروبیوتیک اسپری شده بر پلت و جیره‌ فاقد پروبیوتیک (شاهد)، به مدت 40 روز در تانک مورد تغذیه قرار گرفتند. تیمارهای تغذیه شده با جیره حاوی پروبیوتیک عملکرد بهتری در نرخ رشد ویژه، نرخ رشد نسبی، بازماندگی و ضریب تبدیل غذایی در مقایسه با گروه‌های شاهد نشان دادند (05/0>p). بیشترین افزایش شاخص‌های رشد در تیمار پروبیوتیک اسپری شده بر پلت با دوز CFU kg-1 108 مشاهده گردید که با تیمارهای حاوی پروبیوتیک مخلوط شده در پلت اختلاف معنی‌داری نداشت (05/0<p). نتایج این پژوهش نشان داد که خوراک فراسودمند حاوی پروبیوتیک بومی تک سل صرف نظر از دوز و روش آماده سازی جیره منجر به بهبود شاخص‌های رشد و بازماندگی در میگوی سفید غربی می‌شوند و دوزهای CFU kg-1 107 و 108 دارای بیشترین اثر بود. 2 In recent years, the use of probiotics has been considered as an ecological preventive approach to aquaculture, because of the perilous consumption of antimicrobials for humans and the environment, the use of alternative methods is increasing. In this study, we compared the efficacy of different methods of preparation of functional food containing native probiotic Takcell® on the growth performance of juvenile western white shrimp. For this purpose, post larvae of shrimps were fed in 8 experimental treatments in two ways: probiotic Supplemented and sprayed diets at doses of 108, 107, and 106 CFU kg-1 and probiotic-free diets for 40 days in tanks. All probiotic fed- diets showed better performance in relative growth rate, specific growth rate, survival rate and feed conversion ratio compared to control groups (p<0.05). The highest activity of growth indices was observed in spray treatment at a dose of 108 CFU kg-1. There was no significant difference with complementary diets (p>0.05). The results of this study showed that functional food containing native probiotic Takcell®, regardless of doses and preparation methods, resulted in improvement of growth and survival indices in western white shrimp, and the dose of 108 and 107 CFU kg-1 had the highest effect.    71 81 2019/10/12019/11/232018/06/52020/01/292019/11/222019/11/142019/10/22 1398/7/30 2020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/04/132020/08/31 1399/6/10 مریم میربخش Maryam Mirbakhsh سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی Iran maryam.mirbakhsh@gmail.com مهزاد برنجی Mahzad Berenji دانشگاه آزاد اسلامی Iran Berenji@yahoo.com ژاله مهاجری برازجانی Zh. Mohajeri Borazjani دانشگاه آزاد اسلامی Iran Mohajeri@yahoo.com بابک قائدنیا Babak Ghaednia سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی Iran babak.ghaednia@gmail.com محمدعلی نظاری Mohammad Ali Nazari سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی Iran ma.nazari89@gmail.com Functional food Native probiotics Western white shrimp Growth performance Food diet خوراک فراسودمند پروبیوتیک بومی میگوی سفید غربی عملکرد رشد جیره غذایی ##چوبکار، ن.، کاکولکی، ش.، صحرایی، ف.، آقاجانی، ع.ر.، رضایی منش، م. و محمدی، ف.، 1397. بررسی تاثیر غذای غنی شده با پروبیوتیک بر فراسنجه های رشد ماهی پرورشی قزل‌آلای رنگین کمان. مجله علمی شیلات ایران، 27(5): 115-124. Doi: 10.22092/ISFJ.2019.118089##حسینی، ع.، نفیسی بهابادی، م.، ستوده، ا.، همت، ی. و قربانی واقعی، ر.، 1395. شاخص‌های تغذیه‌ای، رشد و ترکیب شیمیایی بدن میگوی سفید غربی (Litopenaeus vannamei) تغذیه شده با جیره‌های حاوی همبندهای مختلف. مجله علوم و فنون شیلات، ۵ (۴): 57-70.##حکمت شعار، م.، بنادرخشان، ر.، اصغری.، ا.م.، آقا احمدی، ا.، عسگری، ص. و معدنی، و.، 1389. زمینه‌های سرمایه‌گذاری آبزی پروری (پرورش میگو). سازمان شیلات ایران، تهران، ایران.##ساجدی‌راد، ا.، زمینی، ع.ع.، ولی پور، ع.ر. و حیات بخش، م.ر.، 1389. اثر افزودن پروبیوتیک Protexin در جیره ی غذایی شاه میگوی آب شیرین Astacus) leptodactylus ( بر شاخص های رشد و بازماندگی. مجله علمی‌پژوهشی زیست فناوری میکروبی دانشگاه آزاد اسلامی، 2 (4): 29-36.##ضیایی نژاد، س.، آذری تاکامی، ق.، میرواقفی، ع.ر.، حبیبی رضایی، م. و شکوری، م.، 1384. کاربرد باکتری‌های باسیلوس به عنوان پروبیوتیک برای افزایش پارامترهای رشد و تولید در استخرهای پرورش میگوی سفید هندی(Fenneropenaeus indicus). مجله منابع طبیعی ایران، 58 (4): 843.##عبدالهی آرپناهی، د.، جعفریان، ح.، سلطانی، م. و قلی پور کنعانی، ح.، 1393. بکارگیری دو گونه از پروبیوتیک های باسیلوسی بر پاسخ های ایمنی و فلور میکروبی روده پست لارو میگوی پا سفید غربی. مجله علمی شیلات ایران، 23 (4): 105-118. Doi: 10.22092/ISFJ.2015.103173##Abriouel, H., Franz, C.M., Ben Omar, N. and Galvez, A., 2011. Diversity and applications of Bacillus bacteriocins. FEMS Microbiology Reviews, 35(1): 201-232. Doi: 10.1111/j.1574-6976.2010.00244.x.##Anderson, J.L., Valderrama, D. and Jory, D., 2016. Shrimp production review. Global Aquaculture Alliance, Guangzhou, China.##Balcazar, J.L., Rojas-Luna, T. and Cunningham, D.P., 2007. Effect of the addition of four potential probiotic strains on the survival of pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) following immersion challenge with Vibrio parahaemolyticus. Journal of Invertebrate Pathology, 96(2): 147-150. Doi: 10.1016/j.jip.2007.04.008##Gismondo, M.R., Drago, L. and Lombardi, A., 1999. Review of probiotics available to modify gastrointestinal flora. International Journal of Antimicrobial Agents, 12: 287-292. Doi: 10.1016/s0924-8579(99)00050-3.##Kesarcodi -Watson, A., Kaspar, H., Lategan, M.J. and Gibson, L., 2009. Screening for probiotics of Greenshell™ mussel larvae, Perna canaliculus, using a larval challenge bioassay. Aquaculture, 296: 159-164. Doi:10.1016/j.aquaculture.2009.08.008.##Liu, C.H., Chiu, C.S., Ho, P.L. and Wang, S.W., 2009. Improvement in the growth performance of white shrimp, Litopenaeus vannamei, by a protease-producing probiotic, Bacillus subtilis E20, from natto. Journal of Applied Microbiology, 107: 1031-1041. Doi: 10.1111/j.1365-2672.2009.04284.x.##Liu, K.F., Chiu, C.H., Shiu, Y.L., Cheng, W. and Liu, C.H., 2010. Effects of the probiotic, Bacillus subtilis E20, on the survival, development, stress tolerance, and immune status of white shrimp, Litopenaeus vannamei larvae. Fish and Shellfish Immunology, 28(5-6): 837-844. Doi: 10.1016/j.fsi.2010.01.012.##Mirbakhsh, M., Akhavan sepahi, A., Afsharnasab, M., Khanafari, A. and Razavi, M.R., 2013. Screening and evaluation of indigenous bacteria from Persian Gulf as a probiotic and biocontrol agent against Vibrio harveyi in Litopenaeus vannamei post larvae. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 12(4): 873-886. Doi: 10.22092/ijfs.2018.114326##Mombelli, B. and Gismondo, M.R., 2000. The use of probiotics in medicinal practice. International Journal of Antimicrobial Agents, 16: 531-536. Doi: 10.1016/s0924-8579(00)00322-8.##Ochoa-Solano, J. and Olmos-Soto, J., 2006. The functional property of Bacillus for shrimp feeds. Food Microbiology, 23: 519-525. Doi: 10.1016/j.fm.2005.10.004.## ##Olmos, J. and Paniagua-Michel, J., 2014. Bacillus subtilis A Potential Probiotic Bacterium to Formulate Functional Feeds for Aquaculture. Journal of Microbial and Biochemical Technology, 6(7): 361-365. Doi:10.4172/1948-5948.1000169.##Olmos, S.J., Paniagua-Michel, J., Lopez, L. and Ochoa, S.L., 2014. Functional feeds in aquaculture. In: Kim, S.K., (ed.) Handbook of marine biotechnology, Springer, New York, USA. 1800 P.##Rengpipat, S., Tunyanun, A., Fast, A.W., Piyatiratitivorakul, S. and Menasveta, P., 2003. Enhanced growth and resistance to Vibrio challenge in pond-reared black tiger shrimp Penaeus monodon fed a Bacillus probiotic. Diseases of Aquatic Organisms, 55(2): 169-73. Doi: 10.3354/dao055169.##Rengpipat, S., Phianphak, W., Piyatiratitivorakul, S. and Menasvetac, P., 1998. Effects of a probiotic bacterium on black tiger shrimp Penaeus monodon survival and growth. Aquaculture, 167: 301-313. Doi: 10.1016/S0044-8486(98)00305-6.##Roberfroid, M.B., 1999. What is beneficial for health? The concept of functional food. Food and Chemical Toxicology, 37:1039-104. Doi: 10.1016/s0278-6915(99)00080-0.##Sadat Hoseini Madani, N., Adorian, T.J., Ghafari Farsani, H. and Hoseinifar, S.H., 2018. The effects of dietary probiotic Bacilli (Bacillus subtilis and Bacillus licheniformis) on growth performance, feed efficiency, body composition and immune parameters of white leg shrimp (Litopenaeus vannamei) postlarvae. Aquaculture Research, 49: 1926-1933. Doi:10.1111/are.13648 ##Slepecky, R. and Hemphill, E., 2006. The genus Bacillus Nonmedical. In: Dworkin, M., Falkow, S., Rosenberg, E., Schleifer, K.H., Stackebrandt, E., (eds) The Prokaryotes, Vol. 4: Springer, New York, USA. pp. 530-562.##Velasco, M., Lawrence, A.L. and Castille, F.L., 1999. Effect of variations in daily feeding frequency and ration size on growth of shrimp, (Litopenaeus vannamei), in zero-water exchange culture tanks. Aquaculture, 179: 141-148. Doi: 10.1016/S0044-8486(99)00158-1.##Venkat, H.K., Sahu, N.P. and kamal, K.J., 2004. Effect of feeding Lactobacillus-based probiotic on the gut microflora, growth and survival of postlarva of Macrobrachium rosenbergii (de Man). Aquaculture Research, 35: 501-507. Doi:10.1111/j.1365-2109.2004.01045.x##Verschuere, L., Rombaut, G., Sorgeloos, P. and Verstraete, W., 2000. Probiotic bacteria as biological control agents in aquaculture. Microbiology and Molecular Biology Reviews, 64: 655–671.##Wanka, K.M., Damerau, T., Costas, B., Krueger, A., Schulz, C. and Wuertz, S., 2018. Isolation and characterization of native probiotics for fish farming. BMC Microbiology, 18(1): 119. Doi: 10.1186/s12866-018-1260-2.##Ziaei-Nejad, S., Rezaei, M.H., Takami, G.A. and Lovett, D.L., 2005. The effect of Bacillus spp. bacteria used as probiotics on digestive enzyme activity, survival and growth in the Indian white shrimp Fenneropenaeus indicus. Aquaculture, 252:516-524. Doi:10.1016/j.aquaculture.2005.07.021##Zokaeifar, H., Balcázar, J.L., Saad, C.R., Kamarudin, M.S., Sijam, K., Arshad, A. and Nejat, N., 2012. Effects of Bacillus subtilis on the growth performance, digestive enzymes, immune gene expression and disease resistance of white shrimp, Litopenaeus vannamei. Fish and Shellfish Immunology, 33: 683-689. Doi: 10.1016/j.fsi.2012.05.027. ##

بررسی اثر عمق و زمان غوطه‌‌وری بر نرخ صید ماهی مرکب ببری در گرگور با مدل‌‌ خطّی تعمیم یافته (مطالعه موردی: بندر بوشهر) Assessment of the effect of depth and soak time on the catch rate for trapped Pharaoh Cuttlefish in Gargoor using generalized linear model (Case Study: Bushehr Port) 1 1 این مطالعه با هدف بررسی اثرات عمق و زمان غوطه‌‌وری گرگورها بر صید در واحد تلاش صیادی (CPUE) ماهی مرکب ببری (Sepia pharaonis) صورت پذیرفت. منطقه نمونه‌‌برداری بندر بوشهر و زمان آن اسفند 1395 مقارن با فصل صید ماهی مرکب با شناورهای گرگوری بود. در مجموع، از 20 شناور صید گرگور نمونه‌‌برداری تصادفی صورت گرفت. برای رسیدن به برآوردهایی مطمئن‌‌تر شیوه بازنمونه‌‌گیری جک‌‌نایف[1] (مشابه نتایج میدانی)  مورد استفاده قرار گرفت. همچنین جهت تعیین روابط میان عمق و زمان غوطه‌‌وری (متغیر توضیحی) با صید در واحد تلاش صیادی (متغیر پاسخ)، از مدل خطی تعمیم یافته (GLM) استفاده شد. طبق مشاهدات بازنمونه‌‌گیری جک‌‌نایف میانگین صید در واحد تلاش ماهی مرکب ببری زمان‌‌های غوطه‌‌وری 8-2 روز بیشتر از زمان‌‌های غوطه‌‌وری 14-8 روز (720/545>759/509) و میانگین صید در واحد تلاش اعماق40-25 متر بیشتر از اعماق 25-10 متر (940/536>494/516) بود. به علاوه‌‌، براساس بازنمونه‌‌گیری مذکور فواصل اطمینان صید در واحد تلاش برای زمان‌‌های غوطه‌‌وری 8-2 روز و 14-8 روز به ترتیب برابر با 768/708-671/382 و 293/633-225/386 گرم/گرگور و برای اعماق 25-10 متر و 40-25 متر به ترتیب 166/685-822/347 و 535/693-345/410 گرم/گرگور بدست آمد. از سویی، نتایج مدل خطّی تعمیم یافته نیز نشان داد که عمق و زمان غوطه‌‌وری گرگورها اثر معنی‌‌داری بر پارامتر صید در واحد تلاش داشت (1/0>p)، به طوری که افزایش عمق و کاهش زمان غوطه‌‌وری سبب افزایش صید در واحد تلاش صیادی می‌‌گردند. بنابراین، براساس داده‌‌های میدانی موجود، انتظار می‌‌رود که شناورهای گرگوری با فعالیّت در اعماق 40-25 متر و با غوطه‌‌وری گرگورهای در مدت زمان 8-2 روز بتوانند نسبت به تلاش صیادی انجام شده برای صید ماهی مرکب ببری عملکرد مطلوب‌‌تری از خود نشان دهند.   [1] Jackknife 2 The purpose of this study was to investigate the effects of depth and soak time of Gargoors on catch per unit of effort (CPUE) for Pharaoh Cuttlefish (Sepia pharaonis (Ehrenberg, 1831)). The sampling time was February-March 2017, which was coincided with the cuttlefish fishing season operated by the Gargoor fishing vessels of Bushehr port. Randomly a total of 20 Gargoor fishing vessels were sampled. The Jackknife resampling method was used to obtain more reliable estimates. Also, the Generalized Linear Model (GLM) was used to determine the relationship between depths and soak time (explanatory variable) with catch per unit of effort (response variable). According to Jackknife resampling (similar to the results of the field observation), for 2–8 days soak times than 8–14 days soak times (545.720> 509.759) and 25–40 m depths than 10–25 m depths (536.940> 516.494) the average catch per unit of effort for Pharaoh Cuttlefish was higher. Besides, based on the above resampling, the catch per unit of effort confidence intervals for soak times of 2–8 days and 8–14 days also the depths of 10–25 m and 25–40 m were 382.671-708.768, 386.225-633.293, 347.822-685.126, and 410.345-693.535, respectively. On the other hand, the results of the generalized linear model showed that both depth and soak time of Gargoors had a significant effect on the catch per unit of effort (p<0.1); such a way that, increasing the depth and decreasing the soak time increase catch per unit of effort. However, based on field data, it is expected that if Gargoor fishing vessels with operating at depths of 25-40 meters and submerging their Gargoors within 2–8 days, they could be able to perform better CPUE for Pharaoh Cuttlefish according to the fishing effort used. 83 92 2019/10/12019/11/232018/06/52020/01/292019/11/222019/11/142019/10/222019/11/30 1398/9/9 2020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/04/132020/08/312020/08/31 1399/6/10 رضا بدلی Reza Badali دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان Iran rezabadali407@yahoo.com سیّد یوسف پیغمبری Yousef Paighambari دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان Iran sypaighambari@gau.ac.ir هادی رئیسی Hadi Raeisi دانشگاه گنبد کاووس Iran raeisi_hadi@yahoo.com محمد جواد شعبانی Mohammad Javad Shabani مرکز تحقیقات میگو ایران، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی ایران Iran Shabani401@gmail.com Gargoor CPUE GLM Jackknife resampling Sepia pharaonis Persian Gulf گرگور صید در واحد تلاش صیادی مدل خطی تعمیم یافته بازنمونه‌‌گیری جک‌‌نایف ماهی مرکب ببری خلیج فارس ##بدلی، ر.، پیغمبری، س. ی.، رئیسی، ه. و شعبانی، م. ج.، 1398. بررسی تولیدات صیادی، فراوانی طولی و فاکتور وضعیت ماهی مرکب ببری (Sepia pharaonis) صید شده به وسیله گرگور در آب های استان بوشهر، شمال خلیج فارس. فصلنامه محیط زیست جانوری. 11 (3): 330-323.##پهلوانی، م.ه. و وکیلی، ش.، 1395. تجزیه آماری و برنامه نویسی در R. انتشارات جهاد دانشگاهی مشهد. 296 صفحه.##حسینی، س. ع.، دلیری، م.، رییسی، ه.، پیغمبری، س. ی. و کامرانی، ا.، 1394. بررسی اثر تخریبی تور ترال میگو در جوامع صید ضمنی حاصل از لنج‌های سنتی میگوگیر در صیدگاه‌های استان هرمزگان. مجله منابع طبیعی ایران، نشریه شیلات، 68 (1): 78-61. DOI: 10.22059/JFISHERIES.2015.53871##خدادادی، ر.، یحیوی، م.، قربانی واقعی، ر. و شعبانی، م. ج.، 1389. میزان هم‌‌آوری و فصل تخم‌ریزی ماهی مرکب ببری در آب‌‌‌های استان بوشهر. مجله علمی شیلات ایران. 19 (2): 38-31. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.109938##دلیری، م.، کامرانی، ا. و پیغمبری، س.ی.، ۱۳۹۵. بررسی صید غیر مجاز ماهی حلوا سفید، Pampus argenteus (Euphrasen, 1788) ، با استفاده از تورهای گوشگیر ثابت در آب‌های ساحلی جزیره قشم (استان هرمزگان). مجله بوم شناسی آبزیان، ۶ (۳):۲۲-۳۲.##شعبانی، م. ج.، یحیوی، م.، خورشیدیان، ک.، مرادی، غ. و شادکامی، ح.، 1389. بررسی ترکیب گونه‌‌ای و فراوانی ماهیان در گرگورهای سنتی آب‌‌های استان بوشهر (خلیج فارس). مجله آبزیان و شیلات، 63 (3): 61-48.##صلاحی گزاز، م.، پیغمبری، س.ی. و عباسپور نادری، ر.، 1394. بررسی ساختار طولی، ترکیب صید و وضعیت تلاش صیادی ماهی مرکب ببری (Sepia pharaonis) در ترالر‌‌های کف دریای عمان. نشریه اقیانوس‌‌شناسی، دوره 6، شماره 4، صفحات 76-69.##عباسپور نادری، ر.، پیغمبری، س.ی.، ولی نسب، ت. و قربانی، ر.، 1397. تعیین میانگین صید بر واحد سطح (CPUA) و زی توده ماهی مرکب ببری (1831 ,Sepia pharaonis Ehrenberg) و یال اسبی سر بزرگ (Trichiurus lepturus Linnaeus, 1758) در صید ترال کف (آب های استان سیستان و بلوچستان)، فصلنامه محیط زیست جانوری، دوره 10، شماره 2، صفحات 216-211.##ولی‌‌نسب، ت.، کیوان، ا.، عمادی، ح. و عریان، ش.، 1379. بررسی ریخت‌‌سنجی ماهی مرکب ببری (Sepia pharaonis) در آب‌‌های خلیج فارس و دریای عمان. مجله علمی شیلات ایران، دوره 9، شماره 4، صفحات 92-79. DOI: 10.22092/ISFJ.2001.115994##Chen, W., Al-Baz, A., Bishop, J.M. and Al-Husaini, M., 2012. Field experiments to improve the efficacy of gargoor (fish trap) fishery in Kuwait’s waters. Chinese Journal of Oceanology and Limnology, 30 (4): 535-546. DOI: 10.1007/s00343-012-1212-x.##Food and Agriculture Organization of the United Nation (FAO), 2012. Fisheries and Resources Monitoring System. R.E.C.O.F.I. Trap Fisheries Reports, 64 P.##Food and Agriculture Organization of the United Nation (FAO), 2018. www.fao.org ##Gabr, H.R., Hanlon, R.T., Hanafy, M.H. and El-Etreby, S.G., 1998. Maturation, fecundity and seasonality of reproduction of two commercially valuable cuttlefish, Sepia pharaonis and S. dollfusi, in the Suez Canal. Fisheries Research, 36 (2-3): 99-115. DOI: 10.1016/S0165-7836(98)00107-6.##Haddon, M., 2010. Modelling and quantitative methods in fisheries. CRC press, 452 p.##Hilborn, R. and Walters, C.J., 1992. Quantitative fisheries stock assessment: choice, dynamics and uncertainty. Springer publishing, 575 P.##Hinton, M.G. and Maunder, M.N., 2004. Methods for standardizing CPUE and how to select among them. ICCAT, 56 (1): 169-177.##Jereb, P. and Roper, C.F.E., 2005. Cephalopod of the world. FAO Species Catalogue for Fishery Purposes. 262P.##King, M., 2007. Fisheries Biology, Assessment and Management. 2nd edition. Blackwell publishing. 382 P.##Kuhnert, P., Venables, B. and Zocchi, S.S., 2005. An introduction to R: software for statistical modelling & computing. USP/ESALQ/LCE.##Long, J.A., 2019. _jtools: Analysis and Presentation of Social Scientific Data_. R package version 2.0.1, <URL: https://cran.r-project.org/package=jtools>.##Petrere Jr, M. Giacomini, H.C. and De Marco Jr., P, 2010. Catch-per-unit-effort: ## which estimator is best? Brazilian Journal of Biology, 70(3): 483-491. DOI: 10.1590/S1519-69842010005000010.##R Core Team, 2019. R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria. URL https://www.R-project.org/.##Roomiani, L., Jamili, S., Askary Sary, A. and Ahmadi, S., 2018. The relationships between heavy metals (As, Cd, Cu, Zn, Pb, Hg, Ni) levels and the size of pharaoh cuttlefish (Sepia pharaonis) from Persian Gulf. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 17 (2): 267-287. DOI: 10.22092/IJFS.2018.115794.##Sparre, P. and Venema, S.C., 1998. Introduction to tropical fish stock assessment. Part: 1, Manual FAO Fisheries Technical Paper. No. 306.1, Review 2. 407 P.##Zhou, S. and Shirley, T.C., 1997. A model expressing the relationship between catch and soak time for trap fisheries. North American Journal of Fisheries Management, 17 (2): 482-487. DOI: 10.1577/1548-8675(1997)017<0482:AMETRB>2.3.CO;2.##Zuur, A., Ieno, E.N., Walker, N., Saveliev, A.A. and Smith, G.M., 2009. Mixed effects models and extensions in ecology with R. Springer Science and Business Media, 549 P. ##

تاثیر عصاره الکلی گیاهان بن سرخ ( (Allium jesdanum، شنگ (Tragopon carcifolus) و شاتره (Fumaria parviflora) بر ماندگاری فیله ماهی سفید (Rutilus kutum) The effect of alcoholic extract of Allium jesdanum, Tragopon carcifolus and Fumaria parviflora on the shelf life of Rutilus kutum 1 1 این مطالعه به منظور بررسی تاثیر عصاره الکلی سه گیاه بن‌‌سرخ (Allium jesdanum)، شنگ (Tragopon carcifolus) و شاتره (Fumaria parviflora) در سه غلظت 250، 500 و 750 میلی‌‌گرم بر لیتر بر خصوصیات شیمیایی و میکروبی فیله ماهی سفید (Rutilus kutum) در یخچال طی 15 روز انجام گرفت. pH، TVB-N (مجموع بازهای نیتروژنی ‌‌فرار)، TBA (تیوباربیتیوریک اسید)، PV (پراکسید)، TMA (تری متیل آمین) و بار میکروبی (TVC) در روزهای صفر، 3، 6، 9، 12 و 15 مورد بررسی قرار گرفتند. Neophytadiene در عصاره شنگ و شاتره و Di Methyl Tri Sulfide در عصاره بن‌‌سرخ ترکیب اصلی بودند. pH، TVB-N ، TBA، PV، TMA و بار میکروبی با افزایش زمان نگهداری در تیمارهای 250، 500 و 750 میلی‌‌‌‌گرم در لیتر عصاره هر 3 گیاه افزایش یافتند (05/0p<). بار میکروبی در تیمار 250 میلی‌‌گرم در لیتر برای هر سه عصاره در محدوده (Log cfu/g 07/5-24/3) قرار داشت و تا روز نهم در حد مجاز بود، ولی در تیمار 750 میلی‌‌گرم در لیتر برای سه عصاره تا روز پانزدهم Log cfu/g) 22/6-29/5) در محدوده مجاز (Log cfu/g 7) قرار داشت. بالاترین فعالیت ضد میکروبی مربوط به عصاره الکلی بن‌‌سرخ بوده و عصاره‌‌های الکلی شنگ و شاتره در رتبه‌‌ بعدی قرار داشتند. 2 This study was carried out to study the alcoholic extract of plants Lorestan province (Allium jesdanum), Sheng (Tragopon carcifolus) and Shatrah (Fumaria parviflora) at three concentrations of 250, 500 and 750 mg/L on the chemical and microbial characteristics of the Kutum  fillets. The pH, TVB-N (total nitrogen-volatile bases), TBA (thiobarbituric acid), PV (peroxide), TMA (trimethylamine) and total viable count (TVC) on days 0, 3, 6, 9, 12 and 15 were examined. Neophytadiene in Sheng and Shatare and Di-Methyl-Tri Sulfide, in redbin extract main ingredient contained. pH, TVB-N, TBA, PV, TMA and microbial load increased with increasing storage time in all three treatments and at all concentrations of binred, Sheng and Shatare extract. The microbial load in the treatment of 250 mg/L for all three extracts was in the range (3.24-5.07 log cfu/g) and was within the allowable limit until the ninth day, but in the treatment of 750 mg/L for three was within the permissible range (7 log cfu/g) until the fifteenth day (5.29-6.22 log cfu/g). The highest antimicrobial activity was related to binred alcoholic extract, followed by Sheng and Shatreh alcoholic extracts. 93 108 2019/10/12019/11/232018/06/52020/01/292019/11/222019/11/142019/10/222019/11/302019/06/10 1398/3/20 2020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/04/132020/08/312020/08/312020/08/31 1399/6/10 صبا کوگانی saba Kogani گروه علوم و صنایع غذایی، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران Iran saba.kogani@gmail.com لاله رومیانی Laleh Roomiani گروه شیلات، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران Iran l.roomiani@yahoo.com Allium jesdanum Tragopon carcifolus Fumaria parviflora Qualitative indicators Rutilus kutum بن سرخ شنگ شاتره شاخص‌‌های کیفی ماهی سفید ##Aboaba S, Aiyelaagba OO, Ekundayo O. (2010) Chemical Composition, Toxicity and Larvicidal Activity of the Essential Oil from the Whole Plant of Acalypha segetalis from South-West Nigeria. Nat. Product. Commun. 5: 481-483. Doi: org/10.1177/1934578X1000500328.##Agokei OE, Adebisi AA. (2010) Tobacco as an anesthetic for fish handling procedures. using laboratory media: efficacy and synergistic potential in minced beef. Food Control. 22: 1046–1053. Doi: 10.5897/JMPR09.380##Ahmad M, Razavilar V, Motallebi AA, Esmailzadeh Kenari R, Khanipour AA. (2014) Effects of Hydroalcoholic and Water Extracts of Nettle Leaf (Urtica dioica L.) on Chemical Properties of Superchilled Minced Meat of Common Kilka (Clupeonella cultriventris caspia). J Food Qual Hazard Control. 1: 85-88. Doi: org/10.1080/10498850.2015. 1101629.##AL- Bulushi IM, Kasapis S, AL- Oufi H, AL- Mamari S. (2005). Evaluating the quality and storage stability of the fish burgers during frozen storage. Fish Sci. 71: 648- 654. Doi: org/10.1111/j.1444-2906.2005. 01011.x.##Ali A, Noh NM, Mustafa MA. (2015) Antimicrobial activity of chitosan enriched with lemongrass oil against anthracnose of bell pepper. Food Packag Shelf Life. 3:56-61. Doi: org/10.1016/j.fpsl.2014.10.003##Alparslan Y, Baygar T. (2017) Effect of Chitosan Film Coating Combined with Orange Peel Essential Oil on the Shelf Life of Deepwater Pink Shrimp. Food Bioprocess Technol. 10:842–853. Doi: 10.1007/s11947-017- 1862-y##AOAC., 1990. Fatty acids (free) in crude and refined oils, titration method. Official Methods of Analysis. 15th ed. Association of Official Analytical Chemists. Arlington. pp: 940-948.##Connell, JJ., 1990. Methods of assessing and selecting for quality. In: Connell JJ (ed) Control of fish quality. Fishing News Books, Oxford. pp: 122–150##Cox S, Mann C, Markham J, Bell H, Gustafson J, Warmington J, Wyllie S. (2000) The mode of antimicrobial action of the essential oil of Melaleuca alternifolia (tea tree oil). J appl microbiol. 88:170-175. Doi: 10.1128/CMR.19.1.50- 62.2006.##Djenane D, Yanguela J, Montanes L, Djerbal M, Roncales P. (2011) Antimicrobial activity of Pistacia lentiscus and Satureja montana essential oils against Listeria monocytogenes CECT 935 effects of salting, oregano oil and vacuum-packaging on the shelflife of refrigerated trout fillets. Food Microbiol 27(1): 115–121. Doi: 10.1016/j.fm.2009.09.002##El Abed N, Kaabi B, Issam Smaali M, Chabbouh M, Habibi K, Mejri M, Nejib Marzouki M, Ben Hadj Ahmed S. (2014) Chemical Composition, Antioxidant and Antimicrobial Activities of Thymus capitata Essential Oil with its preservative effect against Listeria monocytogenes Inoculated in Minced Beef Meat. 152: 487-491. Doi: 10.1016/ 2009.09.002##El-Deen G., El-Shamery MR. (2010) Studies on contamination and quality of fresh fish meats during storage. Academic J Biol Sci. 2: 65-74. Doi: 10.21608/eajbsg. 2010.16710##Eloff JN. (1998) Which extraction should be used for the screening and isolation of antimicrobial components from plants. J Ethnopharamacol. 60: 1-8. Doi: 10.1016/S0378-8741(97)00123-2##Foe FM, Tchinang TF, Nyegue A, Abdoum J, Yaya A, Tchinda A, Essame J, Etoa F. (2016) Chemical composition, in vitro antioxidant and anti-inflammatory properties of essential oils of four dietary and medicinal plants from Cameroon. Ndoye Foe et al. BMC Complementary and Alternative Medicine. 16:117-129. Doi: 10.1186/s12906-016-1096-y##Foroughi F, Hesin H, Khakia R, Rashedi H, Kamran M, Shahraz F, Komeili R, Jalili SH, Fazeli Fard R, Ghiyas Yeganeh A, Azadnya A. (2012) The Effect of Preserving the Consumption of Beetroot Extract and Turmeric Extract on Silver Mustard Pulp in Freezing Conditions. J Nutr Food Ind Iran. 8: 207-197. (In Persian).##Frangos L, Pyrgotou N, Giatrakou V, Ntzimani A, Savvaidis IN. (2010) Combined. J Medic Plant Res. 4(14):1396-1399. Doi: org/10.1038/s41566-018-0109-4##Gao M, Feng L, Jiang T, Zhu J, Fu L. Yuan D, Li J. (2014) The use of rosemary extract in combination with nisin to extend the shelf life of pompano (Trachinotus ovatus) fillet during chilled storage. Food Control. 37: 1-8. Doi: 10.1016/j.foodcont.2013.09.010##Ghasemi M, Habibi M, Vakili Amini M, Bagherabadi SH. (2016). Antibacterial effect of hydroalcoholic extract of Sheng plant on Acinetobacter citrate under laboratory conditions. Q J Infec Dis Trop Med, affiliat Assoc Infec Dis Trop Med Spec. 78: 45-41. Doi: 10.4103/abr.abr-205-18.##Goulas AE, Kontominas MG. (2005). Effect of salting and smoking-method on the keeping quality of chub mackerel (Scomber japonicus): Biochemical and sensory attributes. Food Chem. 93: 511–520. Doi: 10.1016/j.foodchem. 2004.09.040##Gram L, Huss H. (1996) Microbiological spoilage of fish and fish products. Food Microbiology. 33: 121-137. Doi: org/10.1016/0168-1605(96)01134-8##Habibi Lahigi S, Amini Moradi P, Asaadi K. (2001) Investigating the chemical composition of different parts extracts of bipod nettle Urtica dioica L. in Tonekabon region. Iranian J Plant Physiol. 2 (1): 337 – 340. Doi: 10.1177/2156587217717413.##Hedayatifard M, Aroujalian AR. (2010) Improvement of shelf life for stellate sturgeon fillet, Acipenser stellatus, under Modified Atmosphere Packaging (MAP) and vacuum conditions. Iran Sci Fish J. 19: 127-140. Doi: 10.22092/isfj.2010.116546.##Jahed Khaniki GH, Salehi A, Shariati Farr N, Ali Mohammadi M, Sediq Ara P. (2014) Evaluation of antioxidant effects of Iranian araque aqueous and alcoholic extracts on the quality of trout's fillet and its degree of corrosivity at 2 to 4 degrees Celsius. J Neyshabour Uni Med Sci. 3: 10-17. Doi: 10.1021/jf9024932##Javadi, S., Arbali, A. and Aryan, P., 2016a. The effect of water and alcohol extraction of the plant on the number of pseudomonas aeruginosa bacteria in fish fillet fish under storage conditions. First National Conference on New Technologies in Iranian Food Science and Technology. ##Javadi S, Arbali A. and Aryan, P., 2016 b. Effect of alcoholic extract of the plant on oxidative damage of fish fillet fish filigree under storage conditions. First National Conference on New Technologies in Iranian Food Science and Technology.##Khadanzari A, Pour Ashouri P. (2018) Chemical, microbial and sensory changes of the whole otolithes ruber and empty stomach during storage in the refrigerator. J Veterinary Res Biol Product. 117:167-155. Doi: 10.1016/j.meatsci.2008.05.012.##Lekjing SA. (2016) Chitosan-based coating with or without clove oil extends the shelf life of cooked pork sausages in refrigerated storage. Meat Sci. 111:192-197. Doi: 10.1016/j.meatsci.2015.10.003##Lupoae P, Cristea V, Borda D, Lupoae M, Gurau G, Dinica RM.(2015) Phytohemical Screeninj: Antioxidant and Antibacterial properties of Patampogeton species order to obtain valuablr feed additives. J Oleo Sci.10: 15023-15035. Doi: 10.5650/jos.ess15023.##Mahmoudzadeh M, Motallebi AA, Hosseini H, Khaksar R, Ahmadi H, Jenab E, Shahraz F, Kamran, M. (2010) Quality changes of fish burgers prepared from deep flounder Pseudorhombus elevatus Ogilby, 1912 with and without coating during frozen storage (-18). Food Sci Technol. 45: 374-385. Doi: org/10.1111/j.1365-2621.2009.02158.x##Mohammed AE, Al-Qahtani A, AL-Mutairi A, Al-Shamri B, Aabed K. (2018) Antibacterial and Cytotoxic Potential of Biosynthesized Silver Nanoparticles by Some Plant Extracts. Nanomaterials. 8: 382- 397. Doi: 10.3390/nano8060382. PMCID.##Mohan CO, Ravishankar CN, Lalitha KV, Srinivasa Gopal TK. (2012) Effect of chitosan edible coating on the quality of double filleted Indian oil sardine (Sardinella longiceps) during chilled storage. Food Hydrocoll. 26: 167–174. Doi: 10.1016/j.foodhyd.2011.05.005##Moradi P, Amini K. (2016) Extraction and identification of different organs of the two-base nettle and examining anti-bacterial and antifungal effects. J Mazandaran Uni Medic Sci. 151: 85-74. (In Persian).##National Standard of Iran Non. 2325. 2000. Microbiology. Application of general methods of microbiological tests. Institute of Standards and Industrial Research of Iran. ##Ojagh SM, Rezaei M, Razavi SH, Hosseini SM. (2010) Effect of chitosan coatings enriched with cinnamon oil on the quality of refrigerated rainbow trout. Food Chem. 120(1): 193-198. Doi: 10.1016/j.foodchem.2009.10.006##Parvaneh, V., 1997. Quality Control and Food Chemistry Chemistry. Tehran Publications. 325 p.##Paul V, Maurice B, Bonaventure S, Francois-Xavier E, Barthelemy N. (2006) Susceptibility of Helicobacterand Campylobactertocrude extrate prepared from plant susedin cameroonian folk medicin. Pharmacologyonline. 3: 877-891. Doi: 10.3109/13880200903150377.##Pearson, D., 1997. Laboratory technic in food analysis, Butter Worth. London, UK. pp. 256-270.##Pezeshk S, Rezaei M, Hosseini H. (2011) Effect of turmeric anshallot extracct and their combination on the quality characteristics of vaccume packaged rainbow trout stored at 4°C. J Food Sci. 76(6): 387-391. (In Persian).##Pilehram S, Roomiami L, Tassayoni M. (2018) Effect of Chitosan Coating and Piper nigrum Essential Oil on Shelf Life of Grass Carp Fillet in Modified Atmosphere Packaging. J Fish Sci Technol. 7(3): 167-174 (In Persian).##Rattanachaikunsopon P, Phumkhachorn P. (2009) Shallot (Allium ascalonicum L.) oil: Diallyl sulfide content and antimicrobial activity against food-borne pathogenic bacteria. African J Microbiol Res. 3(11): 747-50. Doi: 1996-0808.##Rawdkuen S, Suthiluk P, Kamhangwong D, Benjakul S. (2012) Antimicrobial activity of some potential active compounds against food spoilage microorganisms. African Journal of Biotechnology. 11: 13914–13921. Doi:.org/10.5897/AJB12.1400.##Razavi R, Maghsoudlou Y, Ghorbani M, Alami M. (2015) Antifungal Effects of Hydroalcoholic Extract of Thyme (Thymus vulgaris) and Carboxy Methyl Cellulose Edible Coating on The Shelf Life of Fresh Hazelnut. J Food Technol Nut. 3: 39-48. (In Persian).##Regenstein, J.M., 1991. Introduction to Fish Technology. Van Nostrand Reinhold, New York. pp. 19-20.##Rezazadeh SE, Yazdani D, Shahnazi S. (2002) Identification of essential oil component saerial shoot Frulagoangulata boiss (Schlecht.) collected from west of Iran. J Med Plant. 7:49-52. (In Persian).##Sallam K, Ahmed AM, Elgazzar MM, Eldaly EA. (2007) Clemical quality and sensory attributes of marinated Pacific saury (Cololabis saira) during vacuum-packaged storage at 4°C. Food Chem. 102:1061-70. Doi:##Shafizadeh, F., 2002. Popular Medicinal Plants of Lorestan. Hayan Publication. Tehran. 128 p. ##Sharifi A, Mohammadzadeh A, Hamoun Nourd S, Pajouhi-al-Mutati M. (2014) Evaluation of antibacterial effects of alcoholic extract of Chaivar plant. J Ilam Uni Med Sci. 23: 208-202. Doi: 10.1046/j.1365-2672.2000.00969.x.##Srivastava S, Choudhary GP. (2014) Pharmacognostic and pharmacological study of Fumaria vaillantii Loisel: a review. J Pharm Phytochem. 3 (1): 194-197. Doi: 10.3390/molecules22040639.##Talei GH, Meshkh-e-Sadat M, Mousavi Z. (2007) Antibacterial effect of extracts of Shahrtrah, Bin Sorkh, Sheng, Shamshad anari and two species of native T. Lorestan. J Gorgan Uni Med Sci. Doi: 10: 35-31. 10.1016/S2221-1691( 11)60089-0##Tenore GC, Ciampaglia R, Arnold NA. (2011) Antimicrobial and antioxidant properties of the essential oil of Salvia lanigera from Cyprus. Food Chem Toxicol. 49: 238–243. Doi: 10.1016/j.fct.2010.10.022##Teskeredzic Z, Pfeifer K. (1987) Determining the degree of freshness of rainbow trout (Salmo gairdneri) cultured inbrackish water. J Food Sci. 52: 1101–1102. Doi: org/10.1111/j.1365-2621.1987.tb14286.x##Thuesombat P, Hannongbua S, Akasit S, Chadchawan S. (2014) Ecotoxicology and environmental safety effect of silver nanoparticles on rice (Oryza sativa L. cv. KDML 105) seed germination and seedling growth. Ecotoxicol Environ Saf 104: 302–309. Doi: 10.1016/j.ecoenv.2014.03.022 ##

اثرات مجزا و تلفیقی مانان الیگوساکارید (Mannan oligosaccharide) و باکتری لاکتوباسیلوس‌پلانتاروم (Lactobacillus plantarum) جیره بر برخی شاخصهای رشد و فاکتورهای خونی بچه ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius) Singular and combined effects of dietary mannan oligosaccharide and Lactobacillus plantarum on some growth indices and hematological parameters of Caspian trout, Salmo trutta caspius (Kessler, 1877) 1 1 در مطالعه حاضر، اثرات مجزا و تلفیقی مانان الیگوساکارید[1](MOS) و باکتری لاکتوباسیلوس‌پلانتاروم (Lactobacillus plantarum) جیره بر برخی شاخص‌های رشد و فاکتورهای خونی بچه ماهی آزاد دریای خزر مورد بررسی قرار گرفت. ماهیان با وزن اولیه 6/0±10 گرم توسط جیره‌های شامل :1) جیره شاهد فاقد هرگونه ماده افزودنی، 2) جیره حاوی cfu/g 108×8 باکتری L.‌plantarum ، 3) جیره حاوی g/kg4 مانان الیگوساکارید، 4) جیره حاوی ترکیبی از cfu/g 108×8 باکتری L.‌ plantarum، و g/kg-14 مانان الیگوساکارید، به مدت 8 هفته تغذیه شدند. در پایان دوره و انجام نمونه برداری، نتایج نشان داد که تیمارهای حاوی g/kg-14 مانان الیگوساکارید به صورت مجزا و جیره تلفیقی شامل مانان الیگوساکارید و باکتری L.‌ plantarum ، از لحاظ شاخص‌‌های افزایش وزن بدن، ضریب رشد ویژه، شاخص رشد روزانه و کارایی پروتئین در بین تیمارها نسبت به گروه شاهد افزایش معنی‌داری نشان دادند (05/0>p). بیشترین میزان ضریب تبدیل غذایی و مصرف روزانه غذا در تیمار شاهد، مشاهده گردید و از این نظر تفاوت معنی‌داری با سایر تیمارها داشت (05/0>p).  همچنین از نظر فاکتور وضعیت تفاوت معنی‌داری بین تیمارهای مجزا و تلفیقی و گروه شاهد، مشاهده نشد (05/0<p). نتایج شاخص‌های خونی در بین تیمارهای مختلف نشان داد که تعداد گلبول­های قرمز در بین تیمارها تفاوت معنی‌داری نسبت به گروه شاهد داشتند (05/0>p) به طوری که بیشترین و کمترین تعداد به ترتیب مربوط به تیمار حاوی L.‌ plantarum  و شاهد بود در حالیکه تعداد گلبول سفید تفاوت معنی‌داری را نسبت به گروه شاهد نشان نداد (05/0<p). نتایج این تحقیق حاکی از آن است که استفاده از جیره­های حاوی g/kg-14 مانان الیگوساکارید به صورت مجزا و جیره تلفیقی شامل مانان الیگوساکارید و باکتری L.‌ plantarum ، سبب بهبود شاخص­های رشد و خونی در بچه ماهیان آزاد دریای خزر می‌گردد.    [1] .Mannan oligosaccharide 2 The present study was conducted to examine singlular and combined effects of manan oligosacharid (MOS) and L. plantarum supplements on growth indices and hematological parameters of Caspian trout (Salmo trutta caspius Kessler, 1877). Caspian trout fingerlings (~ 10 g) were fed with a control diet (basal diet) or supplemented diets as follows: 1) the basal diet + 4g kg−1 IMOS, 2) the basal diet + -8×108 CFU/g-1  L. plantarum)  and 3) a synbiotic diets (the basal diet + 8×108 CFU/g-1  L.plantarum + 4g kg−1IMOS) for 8 weeks. At the end of this trial, the results of the MOS supplemented and synbiotic diet showed significant increase in feed conversion ratio (FCR), weight gain (WG), feed intake (FI), protein efficiency ratio (PER), specific growth ratio (SGR) and daily growth index (DGI) compared with fish fed the control diet (p<0.05). The highest FCR and FI were observed in the control group. In the case of condition factor, the singlular and combined diets showed no significant differences (p>0.05). The results of blood indices among all treatments revealed significant differences of the number of red blood cells (RBC) compared to the control group (p<0.05). The highest and lowest number of RBC was found in L. plantarum diet and control group, respectively. The number of white blood cells (WBC) showed no significant differences with control group (p>0.05). The results demonstrated that the MOS-supplemented diet and the combined diets containing MOS and L. plantarum improved the growth performance in Caspian trout fingerlings. 109 120 2019/10/12019/11/232018/06/52020/01/292019/11/222019/11/142019/10/222019/11/302019/06/102019/05/14 1398/2/24 2020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/04/132020/08/312020/08/312020/08/312020/08/31 1399/6/10 محمد جواد جامی Mohammad Javad Jami تربیت مدرس Iran jami.mohammadjavad@yahoo.com عبدالمحمد عابدیان کناری Abdolmohammad Abedian Kenari تربیت مدرس Iran aabedian@modares.ac.ir حامد پاک نژاد Hamed Paknezad دانشگاه کشاورزی گرگان Iran Hkolangi@gau.ac.ir محمود محسنی Mahmood Mohseni موسسه تحقسقات شیلات Iran mahmoudmohseni73@gmail.com Manan oligosaccharide L. plantarum Feed conversion ratio Protein efficiency rate Caspian trout مانان الیگو ساکارید لاکتوباسیلوس‌پلانتاروم ضریب تبدیل غذایی کارایی پروتئین ماهی آزاد دریای خزر ##1. جنایی، ر.، مشکینی، س.، توکمه چی، ا. و جلیلی، ر.، 1390. افزایش رشد ماهی قزل آلای رنگین کمان با استفاده از پروبیوتیک باسیلوس اسیدی لاکتیسی و پری بیوتیک مانان. همایش ملی آبزی پروری ایران، صفحات 58تا64. شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jvr.2013.35961##2. حسینی، ع.، اورجی، ح.، یگانه، س. و شهابی، ع.، 1393. تاثیر پروبیوتیک پدیوکوکوس اسیدی لاکتیسی روی رشد، فاکتورهای خونی و سرمی در ماهی آزاد دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. سال23، شماره2، صفحات 35تا45. DOI: 10.22092/ISFJ.2014.103691##3. حمیدیان، ن . 1392 . ارزیابی اثر ، Pediococcus acidilactici بر شاخصهای رشد و پارامترهای خونی فیل ماهی Huso huso)) همایش ملی علوم جانوران آبزی. رشت، دانشگاه گیلان. صفحات 231 تا 245. ://aqudev.liau.ac.ir/article-1-164-fa.pdfhttp##4. ستاری، م.، 1381. کتاب ماهی شناسی(1)(تشریح وفیزیولوژی). انتشارات نقش مهر دانشگاه گیلان. صفحات 105تا 176.##5. کامکار، م.، قانع، م.، پورغلام، ر. و قیاسی، م.، 1394. تاثیرBacillus subtilis به عنوان پروبیوتیک بر فاکتورهای هماتولوژی و بیوشیمیایی خون ماهی قزلآلای رنگین کمان(Oncorhynchus mykiss) به دنبال عفونت تجربی با Streptococcus iniae . نشریه توسعه آبزی پروری دانشگاه آزاد لاهیجان. سال6، شماره 1، صفحات 91تا102. ://aqudev.liau.ac.ir/article-1-115-fa.pdfhttp##6. قلجایی فرد، ا.، خارا، ح. و شناور ماسوله، ع.، 1393. اثر باکتری Lactobacillus Plantarum جداسازی شده از روده قزل آلای رنگین کمان استان گیلان بر فاکتورهای رشد، فلور باکتریایی روده و ترکیب شیمیایی لاشه بچه ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss).فصلنامه علمی پژوهشی دانشگاه تربیت مدرس. 5.2.1395-صفحات 111تا124. //jfst.modares.ac.ir/article-6-11827-fa.pdf:http##7. وشتانی، س. عابدیان کناری، ع. اکرمی، ر. جیران، آ (1393). اثر جیره های حاوی سین بیوتیک (ترکیب پرو بیوتیک پروتکسین و پری بیوتیک مانان الیگوساکارید) بر عملکرد رشد، بقاء و ترکیب لاشه میگوی جوان پاسفید غربی (Litopenaeus vannamei). توسعه آبزی پروری (علوم زیستی)، : 8 .85-93. file:///C:/Users/95-5/ Downloads/6012813930308.pdf.##8. Akrami, R., et al. (2013). &quot;Single or combined effects of inulin and mannan oligosaccharide supplements on the growth performance, survival, body composition and salinity resistance of Kutum (Rutilus frisii kutum) fry.&quot; Fisheries Science and Technology 2(3): 17-29. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2014.05.012 ##9. Al‐Dohail, M. A., et al. (2009). &quot;Effects of the probiotic, Lactobacillus acidophilus, on the growth performance, haematology parameters and immunoglobulin concentration in African Catfish (Clarias gariepinus, Burchell 1822) fingerling.&quot; Aquaculture Research 40(14): 1642-1652. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2009.02265.x.##10. Avella MA, Olivotto I, Silvi S, Place AR, Carnevali O., 2010. Effect of dietary probiotics on clownfish: a molecular approach to define how lactic acid bacteria modulate development in a marine fish. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2010 Feb; 298(2):R359-71. https://doi.org/10.1152/ajpregu.00300.2009##11. Brunt, J. and Austin, B., 2005. Use of a probiotic to control lactococcosis and streptococosis in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). J. of Fish Disease. Vol. 92, pp: 222-710. https://doi.org/10.1111/j.1365-2761.2005.00672.x.##12. -Coad, B. W. (1980). &quot;Environmental change and its impact on the freshwater fishes of Iran.&quot; Biological Conservation 19 (1): 51-80. https://doi.org/10.1016/0006-3207(80)90015-4.##13. Fooks, L. J., et al. (1999). &quot;Prebiotics, probiotics and human gut microbiology.&quot; International dairy journal 9(1): 53-61. https://doi.org/10.1016/S0958-6946(99)00044-8.##14. Fuller R (1989) Probiotics in man and animals. A review. J Appl bacteriol 66:365–378. https://ci.nii.ac.jp/naid/10008542969.##15. Fuchs, V. I., Schmidt, J., Slater, M. J., Zentek, J., Buck, B. H., Steinhagen, D., 2015. The effect of supplementation with polysaccharides, nucleotides, acidifiers and Bacillus strains in fish meal and soy bean based diets on growth performance in juvenile turbot (Scophthalmus maximus). Aquaculture,Vol. 437, pp. 243-251.https: //doi.org/10.1016/j. aquaculture. 2014. 12.007. ##16. Gelibolu, S., et al. (2018). &quot;The Effect of Mannan-Oligosaccharide (MOS) as a Feed Supplement on Growth and Some Blood Parameters of Gilthead Sea Bream (Sparus aurata).&quot; Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences 18(6): 817-823. DOI : 10.4194/1303-2712-v18_6_08.##17. Gildberg, A., Mikkelsen, H., Sandaker, E., Ringo, E., 1997. Probiotic effect of lactic acid bacteria in the feed on growth and survival of fry of Atlantic cod (Gadus morhua ). Hydrobiologia 352, 279–285. DOI https://doi.org/10.1023/A:1003052111938.##18. Grisdale-Helland, B.,Helland,S.J., Gatlin III, D.M., 2008. The effects of dietary supplementation with mannan olig saccharide, fructo oligosaccharide or galacto oligosaccharide on the growth and feed utilization of Atlantic salmon (Salmo salar). Aquaculture 283, 163–167. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2008.07.012.##19. Houston H., 1997. Review: are the classical hematological variables acceptable indicators for fish health? Tran Am Fish Soc., 126(6): 879- 894. https://doi.org/10.1577/1548-8659(1997)126<0879:RATCHV>2.3.CO;2.##20. Irianto, A. and B. Austin (2002). &quot;Probiotics in aquaculture.&quot; Journal of fish diseases 25(11): 633-642. https://doi.org/10.1046/j.1365-2761.2002.00422.x.##21. Kiabi, B. H., et al. (1999). &quot;Status of the fish fauna in the South Caspian Basin of Iran.&quot; Zoology in the Middle East 18(1): 57-65. https://doi.org/10.1080/09397140.1999.10637782.##22. Momeni-Moghaddam, P. Keyvanshokooh, S. Ziaei-Nejad, S. Salati, A. p. Zanoosi. H. P. Effects of mannan oligosaccharide supplementation on growth, some immune responses and gut lactic acid bacteria of common carp (Cyprinus Carpio) fingerlings. Veterinary Research Forum. 2015; 6 (3) 239 – 244. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4611979/.##23. Niksirat, H. and A. Abdoli (2009). &quot;On the status of the critically endangered Caspian brown trout, Salmo trutta caspius, during recent decades in the southern Caspian Sea basin (Osteichthyes: Salmonidae).&quot; Zoology in the Middle East 46(1): 55-60. doi.org/10.1080/ 09397140.2009.10638328.##24. Peixoto, M. J., Salas-Leitón, E., Pereira, L. F., Queiroz, A., Magalhães, F., Pereira, R., de Almeida, Ozório, R. O., 2016. Role of dietary seaweed supplementation on growth performance, digestive capacity and immune and stress responsiveness in European seabass (Dicentrarchus labrax). Aquaculture Reports, Vol. (3), pp. 189-197. doi. org/10.1016/j. aqrep.2016.03.005##25. Pirarat N, Pinpimai K, Endo M, Katagiri T, Ponpornpisit A, Chansue N et al (2011) Modulation of intestinal morphology and immunity in Nile tilapia (Oreochromis niloticus)byLactobacillus rhamnosus GG. Res Vet Sci 91(3):92–97. doi. org/ 10.1016/ j.rvsc. 2011.02.014.##26. Portz, L., Cyrino, J. E. P., Martino, R. C. 2001. Growth and body composition of juvenile largemouth bass Micropterus salmoides in response to dietary protein and energy levels. Aquaculture nutrition, Vol. 7(4), pp. 247-254. doi.org/10.1046/j.1365-2095. 2001. 00182.x.##27. Pourgholam, M. A., et al. (2016). &quot;Dietary Administration of Lactobacillus plantarum Enhanced Growth Performance and Innate Immune Response of Siberian Sturgeon, Acipenser baerii.&quot; Probiotics and antimicrobial proteins 8(1): 1-7. https:// doi.org/ 10.1007/s 12602-015-9205-7.##28. Razeghi Mansour MR, Akrami R, Ghobadi SH, Amani Denji K, Ezatrahimi N, Gharaei A. Effect of dietary mannan oligosaccharide (MOS) on growth performance, survival, body composition, and some hematological parameters in giant sturgeon juvenile (Huso huso Linnaeus, 1754). Fish Physiol Biochem2012;38:829e35. https://doi.org/10.1007/s10695-011-9570-4.##29. Talpur, A. D., et al. (2013). &quot;Indigenous Lactobacillus plantarum as probiotic for larviculture of blue swimming crab, Portunus pelagicus (Linnaeus, 1758): effects on survival, digestive enzyme activities and water quality.&quot; Aquaculture 416: 173-178. https://doi.org/10.1016/j. aquaculture.2013.09.018.##30. Torrecillas, S., et al. (2014). &quot;Improved health and growth of fish fed mannan oligosaccharides: potential mode of action.&quot; Fish & Shellfish Immunology 36(2): 525-544. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2013.12.029.##31. Torrecillas, S., et al. (2018). &quot;Feeding European sea bass (Dicentrarchus labrax) juveniles with a functional synbiotic additive (mannan oligosaccharides and Pediococcus acidilactici): An effective tool to reduce low fishmeal and fish oil gut health effects?&quot; Fish & shellfish immunology 81: 10-20. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2018.07.007.##32. Staykov, Y., et al. (2007). &quot;Effect of a mannan oligosaccharide on the growth performance and immune status of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss).&quot; Aquaculture International 15(2): 153-161. https://doi.org/10.1007/s10499-007-9096-z.##33. Wang, Y.B., 2007. Effect of probiotics on growth performance and digestive enzyme activity of the shrimp Penaeus vannamei, Aquaculture 269, 259–264. https://doi.org/ 10.1016/j. aquaculture.2007.05.035.##34. Wang, Y.-B., et al. (2008). &quot;Effect of probiotics, Enteroccus faecium, on tilapia (Oreochromis niloticus) growth performance and immune response.&quot; Aquaculture 277(3-4): 203-207. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2008.03.007.##35. Welker TL, Lim C, Yildirim-Aksoy M, Klesius PH. (2011) Effect of short-term feeding duration of diets containing commercial whole-cell yeast or yeast subcomponents on immune function and disease resistance in channel catfish, Ictalurus punctatus. J Anim Phyisol Anim Nutr 2011;96:159e71. https://doi.org/10.1111/j.1439-0396.2011.01127.x. ##

بررسی اثرات سینرژیک تغذیه با نانوذرات آهن و مس و مقایسه با اشکال معدنی آن بر عملکرد رشد و شاخص‌های خون شناسی بچه ماهی سفیدک سیستان Schizothorax zarudnyi Nikolskii, 1897 Synergetic effects of dietary iron and copper nanoparticles and comparison with their inorganic forms on growth performance and hematological parameters of Sistan’s loach Schizothorax zarudnyi Nikolskii, 1897 1 1 آهن و مس دو عناصر کم‌نیاز ضروری یا ریزمغذی هستند که در بسیاری از فرایندهای حیاتی بیولوژیکی، آنزیم‌های کلیدی و سیستم ایمنی نقش مهمی ایفا می‌کنند. در مطالعه حاضر اثرات تغذیه با منابع مختلف مکمل آهن و مس بر عملکرد رشد و برخی شاخص‌های خون شناسی ماهی سفیدک سیستان Schizothorax zarudnyi با میانگین وزنی 45/0± 97/23 گرم بررسی شد. تیمارهای غذایی طی 60 روز تحقیق شامل ماهیان تغذیه‌شده با (1) جیره شاهد فاقد هرگونه مکمل مس و آهن، (2) جیره حاوی 150 میلی‌گرم در کیلوگرم مکمل آهن معدنی، (3) جیره حاوی 3 میلی‌گرم در کیلوگرم مکمل مس معدنی، (4) جیره حاوی 150 و 3 میلی‌گرم در کیلوگرم مکمل آهن و مس معدنی، (5) جیره حاوی 150 میلی‌گرم در کیلوگرم مکمل نانوذره آهن، (6) جیره حاوی 3 میلی‌گرم در کیلوگرم مکمل نانوذره مس و (7) جیره حاوی 150 و 3 میلی‌گرم در کیلوگرم مکمل نانوذره آهن و نانوذره مس بودند. نتایج نشان داد که افزودن آهن و مس به جیره غذایی باعث بهبود شاخص‌های رشد و خون­شناسی در مقایسه با شاهد می‌گردد و اشکال نانویی آهن و مس، خصوصا استفاده توام آنها مؤثرتر از اشکال معدنی آنها عمل می‌کند به­طوریکه ماهیان تیمار هفت بهترین نتایج را در مقایسه با دیگر تیمارها از نظر شاخص­های عملکرد رشد و تغذیه نشان دادند (05/0P<). همچنین ماهیان تیمار هفت بالاترین مقادیر را در کلیه شاخص‌های خون­شناسی نشان دادند و شاخص‌های هماتوکریت و هموگلوبین و تعداد کل گلبول قرمز این تیمار با سایر تیمارهای آزمایشی اختلاف معنی دار نشان داد. شاخص‌های MCV و MCH تیمار هفت نیز دارای اختلاف معنی‌داری با تیمار شاهد بود (05/0P<). در جمع­بندی نتایج به‌دست‌آمده از این تحقیق، افزودن هم‌زمان دو نانوذره آهن و مس منجر به بهبود بیشتر شاخص های رشد و خون­شناسی ماهی سفیدک سیستان نسبت به افزودن جداگانه و اشکال معدنی آن­ها می­گردد. 2 Iron and copper are two essential trace elements or micronutrients that play important roles in many vital biological processes, key enzymes and the immune system. In this study, the effects of feeding with different sources of iron and copper supplements on growth performance and some blood parameters of Schizothorax zarudnyi with an average weight of 23.97 ± 0.45 g were investigated. Within 60 days of study, dietary treatments were included fish fed with: 1) the basal diet without any copper and iron supplement, 2) diet containing 150 mg of mineral iron supplement per kg of diet, 3) diet containing 3 mg of mineral copper supplement per kg of diet, 4) diet containing 150 mg of mineral iron supplement and 3 mg of mineral copper supplement per kg of diet, 5) diet containing 150 mg of iron nanoparticles supplement per kg of diet, 6) diet containing 3 mg of copper nanoparticles supplement per kg of diet, 7) diet containing 150 mg of iron nanoparticles supplement and 3 mg of copper nanoparticles supplement per kg of diet. The results showed that supplementing diet with iron and copper improves the growth and blood parameters compared with the control; and iron and copper nanoparticles especially simultaneous use of them (treatment 7), act more effectively than their mineral forms; as the fish in treatment 7 showed the best growth and feeding results compared with the other treatments. Fish in treatment 7 also showed the highest values in all blood parameters and there were significant differences in hematocrit, hemoglobin and total amount of erythrocyte indices compared with the other treatments. MCV and MCH indices in treatment 7 exhibited significant difference compared with the control (P<0.05). According to the results of this study, simultaneous use of two nanoparticles of iron and copper leads to the improvement of growth and blood indices of Sistan’s loach more effectively than their separate supplementation or their mineral forms. 121 131 2019/10/12019/11/232018/06/52020/01/292019/11/222019/11/142019/10/222019/11/302019/06/102019/05/142019/07/14 1398/4/23 2020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/04/132020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/31 1399/6/10 علیرضا افشاری Alireza Afshari دانشگاه هرمزگان Iran alirezaafshari1357@gmail.com ایمان سوری نژاد Iman Sourinejad دانشگاه هرمزگان Iran i_sourinezhad@yahoo.com احمد قرایی Ahmad Gharaei دانشگاه زابل Iran agharaei551@gmail.com سیدعلی جوهری Seyed Ali Johari دانشگاه کردستان Iran sajohari@gmail.com زهرا قاسمی Zahra Ghasemi دانشگاه هرمزگان Iran zghasemi446@yahoo.com Sistan’s loach Iron and copper nanoparticles Growth performance Hematology ماهی سفیدک سیستان نانوذرات آهن و مس عملکرد رشد خون‌‌شناسی ##افشاری، ع.، سوری نژاد، ا.، شیبک، ح. و عرب نژاد، س.، 1395. تاثیر استرس شوری بر میزان رشد، پارامترهای بیوشیمیایی و کورتیزول خون ماهی سفیدک سیستان Schizothorax zarudnyi (Nikolskii, 1897). نشریه پژوهش های ماهی شناسی کاربردی، 4(3): 43-52. ##فرهودی، آ.، سوری نژاد، ا.، نفیسی بهابادی، م.، سجادی، م.م. و سالار زاده، ع.، 1396. تأثیر جایگزینی نسبی آرد ماهی با جلبک قرمز دریایی Gracilaria pygmea بر عملکرد رشد، شاخص های خونی و بیوشیمیایی سرم ماهی باس دریایی آسیایی Lates calcarifer (Bloch, 1790). مجله علمی شیلات ایران، 26(3): 77-89. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.113524##کاظمی، ا.، سوری نژاد، ا.، قائدی، ع.، جوهری، س.ع. و قاسمی، ز.، 1398. اثر تغذیه با منابع مختلف مکمل روی بر تغییرات آنزیمی و یونی پلاسمای سمینال مولدین قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران، ۲۸(۴): ۱۹۱-۲۰۱. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.119536##Akter, N., Alam, J., Jewel, A.S., Haque, A., Khatun, S. and Akter, S., 2018. Evaluation of dietary metallic iron nanoparticles as feed additive for growth and physiology of Bagridae catfish Clarias batrachus (Linnaeus, 1758). International Journal of Fisheries and Aquatic Studies, 6(3): 371-377.##Ashouri, S., Keyvanshokooh, S., Salati, A.P., Johari, S.A. and Pasha-Zanoosi H., 2015. Effects of different levels of dietary selenium nanoparticles on growth performance, muscle composition, blood biochemical profiles and antioxidant status of common carp (Cyprinus carpio). Aquaculture, 446: 25-29. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2015.04.021.##Basuini, M.F.E., El-Hais, A.M., Dawood, M.A.O., Abou-Zied, A.E., El-Damrawy, S.Z., Khalafalla, M.M.E., Koshio, S., Ishikawa, M. and Dossoi, S., 2016. Effect of different levels of dietary copper nanoparticles and copper sulfate on growth performance, blood biochemical profiles, antioxidant status and immune response of red sea bream (Pagrus major). Aquaculture, 455: 32-40. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2016.01.007.##Behera, T., Swain, P., Rangacharulu, P.V. and Samanta, M., 2013. Nano-Fe as feed additive improves the hematological and immunological parameters of fish, Labeo rohita H. Applied Nanoscience, 4: 687-694. DOI: 10.1007/s13204-013-0251-8.##Haver, J.E. and Hardy, R.W., 2002. Fish Nutrition 3 edition. Academic Press, pp. 260–308.## ##Izquierdo, M.S., Ghrab, W., Roo, J., Hamre, K., Hernandez-Cruz, C.M., Bernardini, G., Terova G. and Saleh, R., 2016. Organic, inorganic and nanoparticles of Se, Zn and Mn in early weaning diets for gilthead seabream, Sparus aurata; Linnaeus, 1758. Aquaculture Research, 48(6): 2852–2867. DOI: 10.1111/are.13119.##Lee, M.H. and Shiau, S.Y., 2002. Dietary copper requirement of juvenile grass shrimp, Penaeus monodon, and effects on non-specific immune responses. Fish & Shellfish Immunology, 13: 259-270. DOI: 10.1006/fsim.2001.0401.##Lin, Y.H., Shie, Y.Y. and Shiau, S.Y., 2008. Dietary copper requirements of juvenile grouper, Epinephelus malabaricus. Aquaculture, 274: 161-165. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2007.11.006.##Mohseni, M., Pourkazemi, M. and Baim, S.C., 2014. Effects of dietary inorganic copper on growth performance and immune response of juvenile beluga, Huso huso. Aquaculture Nutrition, 20: 547-556. DOI: 10.1111/anu.12107.##Ogino, C. and Yang, G.Y., 1980. Requirements of Carp and Rainbow Trout for Dietary Manganese and Copper. Bulletin of the Japanese Society of Scientific Fisheries, 46(4), 455-458. DOI: 10.2331/suisan.46.455.##Roeder, M. and Roeder, R.H., 1966. Effect of iron on the growth rate of fishes. Journal of Nutrition, 90(1): 86-90. DOI: 10.1093/jn/90.1.86.##Safari, S., Keyvanshokooh, S., Zakeri, M., Johari, S.A. and Pasha-Zanoosi, H., 2016. Effects of different dietary selenium sources (sodium selenite, selenomethionine and nanoselenim) on growth performance, muscle composition, blood enzymes and antioxidant status of common carp (Cyprinus carpio). Aquaculture Nutrition, 23(3): 611-617. DOI: 10.1111/anu.12428.##Shenawy, A.M., Gad, D.M. and Yassin, A.S., 2019. Effect of iron nanoparticles on the development of fish farm feeds. Alexandria Journal of Veterinary Sciences, 60 (1): 102-115. DOI: 10.5455/ajvs.28123.##Tacon, A.J., 1992. Nutritional fish pathology Morphological signs of nutrient deficiency and toxicity in farmed fish. FAO Fish Technical Paper. No. 330. 75P.##Tang, Q.Q., Feng, L., Jiang, W.D., Liu, Y., Jiang, J., Li S.H., Kuang, S.Y., Tang, L. and Zhou, X.Q., 2013. Effects of dietary copper on growth, digestive, and brush border enzyme activities and antioxidant defense of hepatopancreas and intestine for young Grass carp (Ctenopharyngodon idella). Biological Trace Element Research, 155: 370-380. DOI: 10.1007/s12011-013-9785-6.##Watanabe, T., Kiron, V. and Satoh, S., 1997. Trace minerals in fish nutrition. Aquaculture, 151(1-4): 185-207. DOI: 10.1016/S0044-8486(96)01503-7.##Wang, Y., Xu, Z., 2006. Effect of probiotics for common carp (Cyprinus carpio) based on growth performance and digestive enzyme activities. Animal Feed Science and Technology. 127: 283–292. DOI: 10.1016/j.anifeedsci.2005.09.003.##Wang, W., Mai, K., Zhang, W., Ai, Q., Yao, C., Li, H. and Liufu, Z., 2009. Effects of dietary copper on survival, growth and immune response of juvenile Abalone, Haliotis Discus Hannai Ino. Aquaculture, 297: 122-127. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2009.09.006.##Wang, T., Long, X., Cheng, Y., Liu, Z. and Yan, S., 2015. A comparison effect of copper nanoparticles versus copper sulphate on juvenile Epinephelus coioides: growth parameters, digestive enzymes, body composition, and histology as biomarker. International Journal of Genomics, Article ID 783021, 10P. DOI: 10.1155/2015/783021 ##

جداسازی و بررسی ویژگی‌های پروبیوتیک لاکتوباسیلوس‌های (Lactobacillus) روده قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss) و توان ضد باکتریایی آنها در برابر یرسینیا راکری (Yersinia ruckeri) Isolation and a survey on probiotic properties of Lactobacillus in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) intestine and their antibacterial properties against Yersinia ruckeri 1 1 لاکتوباسیلوس‌ها متداول‌ترین باکتری‌های پروبیوتیک هستند. هدف این مطالعه، جداسازی و ارزیابی ویژگی‌های پروبیوتیک لاکتوباسیلوس‌های روده قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss) برای تقویت دستگاه گوارش این ماهی بود. پس از تهیه 75 عدد ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان پرورشی، محتویات روده آنها در محیط آبگوشتMRS (de MAN, ROGOSA and SHARPE) کشت شده و 56 پرگنه لاکتوباسیلوس با آزمون‌های بیوشیمیایی مشخص شدند. سویه‌های لاکتوباسیلوس با آزمون‌های بیوشیمیایی و واکنش زنجیره‌ای پلیمراز (PCR) شناسایی و فعالیت ضدباکتریایی، حساسیت در برابر آنتی‌بیوتیک‌ها، مقاومت در برابر صفرا و شرایط اسیدی (3=pH) مورد بررسی قرار گرفت. جمعا شش سویه لاکتوباسیلوس اسیدوفیلوس (Lactobacillus acidophilus) ، لاکتوباسیلوس روتری (Lactobacillus reuteri)، لاکتوباسیلوس انیمالیس (Lactobacillus animalis)، لاکتوباسیلوس فرمنتوم (Lactobacillus fermentum)، لاکتوباسیلوس لیشمانیا (Lactobacillus Leishmania) و لاکتوباسیلوس دلبروکی (Lactobacillus delbrueckii) شناسایی شدند‌. فعالیت ضد باکتریایی لاکتوباسیلوس لیشمانیا در برابر یرسینیا راکری (Yersinia ruckeri) به ‌طور معنی‌داری (05/0˂p) بیشتر از آنتی‌بیوتیک انروفلوکساسین بود. همه سویه‌های جداسازی شده در برابر آنتی‌بیوتیک‌های اکساسیلین و وانکومایسین مقاوم و به تتراسایکلین حساس بودند. لاکتوباسیلوس انیمالیس، لاکتوباسیلوس اسیدوفیلوس و لاکتوباسیلوس دلبروکی بترتیب بیشترین مقاومت را در برابر صفرا (05/0˂p) و لاکتوباسیلوس اسیدوفیلوس بیشترین مقاومت را در برابر شرایط اسیدی از خود نشان دادند. بر‌اساس نتایج در مجرای گوارشی قزل‌آلای رنگین‌کمان، لاکتوباسیلوس‌هایی پروبیوتیک وجود دارد که از میان آنها لاکتوباسیلوس اسیدوفیلوس، لاکتوباسیلوس روتری و لاکتوباسیلوس دلبروکی از ویژگی‌های پروبیوتیک بهتری برخوردارند. 2 Lactobacillus is the most common probiotic bacteria. The aim of this study was to isolate and evaluate the probiotic properties of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) intestinal Lactobacillus and to improve the digestive tract of this fish. After preparation of 75 rainbow trout, their intestinal contents were cultured in MRS broth medium and 56 Lactobacillus colonies were identified by biochemical tests. Lactobacillus strains were identified by biochemical tests and polymerase chain reaction (PCR), and their antibacterial activity, susceptibility to antibiotics, bile resistance and acidic conditions (pH=3) was evaluated. A total of six Lactobacillus strains Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus reuteri, Lactobacillus animalis, Lactobacillus fermentum, Lactobacillus leishmania and Lactobacillus delbrueckii were identified. The antibacterial activity of Lactobacillus leishmania against Yersinia ruckeri was significantly (p˂0.05) higher than the antibiotic Enrofloxacin. (p˂0.05). All isolates were resistant to oxacillin and vancomycin antibiotics and were sensitive to tetracycline. Lactobacillus animalis, Lactobacillus acidophilus and Lactobacillus delbrueckii showed the highest resistance to bile (p˂0.05), respectively, and Lactobacillus acidophilus showed the highest resistance to acidic conditions. According to the results there are probiotic Lactobacillus in the rainbow trout digestive tract, and among them Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus reuteri and Lactobacillus delbrueckii have better probiotic properties. 133 142 2019/10/12019/11/232018/06/52020/01/292019/11/222019/11/142019/10/222019/11/302019/06/102019/05/142019/07/142019/11/10 1398/8/19 2020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/04/132020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/31 1399/6/10 نیکی نادعلیزاده طبری Niki Nadalizadeh Tabari گروه شیلات و آبزیان، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران Iran Niki91927@gmail.com سعید مشکینی Saeid Meshkini گروه بهداشت و کنترل کیفی مواد غذایی، دانشکده دامپزشکی، دانشکاه ارومیه، ارومیه، ایران Iran s.meshkiniy@gmail.com امیر توکمه چی Amir Tukmechi گروه میکروبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشکاه ارومیه، ارومیه، ایران Iran a.tukmachi@urmia.ac.ir Lactobacillus Rainbow trout Probiotic properties Yersinia rockery لاکتوباسیلوس قزل‌آلای رنگین‌کمان خواص پروبیوتیک Yersinia ruckeri ##حسینی، ع.، چهارلنگ، ف.، ستوده، ا.، علیشاهی، م.، و مدرسی، م.، 1395. اثر لاکتوباسیلوس‌های (Lactobacillus) جدا شده از روده ماهی شیربت (Barbus grypus) بر عملکرد رشد، بازماندگی، و فلور میکروبی روده ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله علمی شیلات ایران، 25(3): 179-167. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110268##شناور ماسوله، ع.، پورکاظمی، م.، سلطانی، م.، یارمحمدی، م.، یزدانی، م.ع.، علیزاده، م.، جلیل پور، ج.، بازاری مقدم، س.، معصوم زاده، م.، حسینی فر، س.ح.، اسماعیلی، پ.، و بنی اسماعیلی، ی.، 1397. جداسازی و شناسایی مولکولی باکتری‌های تولید کننده اسید لاکتیک از روده تاسماهی سیبری (Acipenser baerii). مجله علمی شیلات ایران، 27(5): 28-19. DOI: 10.22092/ISFJ. 2018.117875##لطیفی، ب.، ابوالقاسمی، س.ج.، شویک لو، ا.ر.، احمدی، م.، اعتمادیان، ی.، قائمی، و.، 1398. مقایسه تغییرات فیزیکوشیمیایی، میکروبی و حسی فیله‌های فیل ماهی (Huso huso) دودی طعم‌دهی شده با آب نمک و سس به مدت 30 روز در یخچال. مجله علمی شیلات ایران، 28(4): 11-1. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.119397##Alishahi, M., Tulaby Dezfuly, Z., Mesbah, M. and Mohammadian, T., 2018. Effects of Two Probiotics, Lactobacillus Plantarum and Lactobacillus Bulgaricus on Growth Performance and Intestinal Lactic Acid Bacteria of Cyprinus Carpio. Iranian Journal of Veterinary Medicine, 12(3): 207-217.##DOI:10.22059/IJVM.2018.235444.1004816##Balcazar, J.L., Vendrell, D., De Blas, I., Ruiz-Zarzuela, I., Muzquiz, J.L., Girones, O., 2008. Characterization of probiotic properties of lactic acid bacteria isolated from intestinal microbiota of fish. Aquaculture, 278(1-4): 188-191. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2008.03.014##Chateau, N., Deschamps, A.M. and Sassi, A.H., 1994. Heterogeneity of bile salts resistance in the Lactobacillus isolates of a probiotic consortium. Letters in Applied Microbiology, 18(1): 42-44. DOI: 10.1111/j.1472-765X.1994.tb00796.x##Chung, M.K., Martin, D.O., Sprecher, D., Wazni, O., Kanderian, A., Carnes, C.A., Bauer, J.A., Tchou, P.J., Niebauer, M.J., Natale, A. and Van Wagoner, D.R., 2001. C-reactive protein elevation in patients with atrial arrhythmias: inflammatory mechanisms and persistence of atrial fibrillation. Circulation, 104(24): 2886-2891. DOI: 10.1161/hc4901.101760## ##Grześkowiak, L., Collado, M.C., Vesterlund, S., Mazurkiewicz, J. and Salminen, S., 2011. Adhesion abilities of commensal fish bacteria by use of mucus model system: Quantitative analysis. Aquaculture, 318, 33–36. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2011.04.037##Gueimonde, M., Sánchez, B., Reyes-Gavilán, C.G. and Margolles, A., 2013. Antibiotic resistance in probiotic bacteria. Front. Microbiol, 4: Article No: 202. DOI:10.3389/fmicb.2013.00202##Karami, S., Roayaei, M., Hamzavi, H., Bahmani, M., Hassanzad-Azar, H., Leila, M. and Rafieian-Kopaei, M., 2017. Isolation and identification of probiotic Lactobacillus from local dairy and evaluating their antagonistic effect on pathogens. International Journal of Pharmaceutical Investigation, 7(3): 137–141. DOI: 10.4103/jphi.JPHI_8_17. PMID: 29184826.##Maragkoudakis, P.A., Chingwaru, W., Gradisnik, L., Tsakalidou, E. and Cencic, A., 2010. Lactic acid bacteria efficiently protect human and animal intestinal epithelial and immune cells from enteric virus infection. International Journal of Food Microbiology, 141: 91-97. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2009.12.024##Mohammadi, F., Eshaghia, M., Razavia, S., Darban Sarokhalila, D., Talebia, M. and Pourshafie, M.R., 2018. Characterization of bacteriocin production in Lactobacillus spp. isolated from mother's milk. Microbial Pathogenesis, 118: 242–246. DOI: 10.1016/j.micpath.2018.03.020##Pan, X., Chen, F., Wu, T., Tang, H. and Zhao, Z., 2009. The acid, bile tolerance and antimicrobial property of Lactobacillus acidophilus NIT. Food Control, 20(6): 598-602. https://doi.org/10.1016/j.foodcont.2008.08.019##Ramos, M.A., Weber, B., Gonçalves, J.F., Santos, G.A., Rema, P. and Ozorio, R.O.A., 2013. Dietary probiotic supplementation modulated gut microbiota and improved growth of juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Comparative biochemistry and physiology. Part A. Molecular and integrative physiology, 166: 302–307. DOI: 10.1016/j.cbpa.2013.06.025##Soltani, M., Kane, A., Taheri-Mirghaed, A., Pakzad, K. and Hosseini-Shekarabi, P., 2019. Effect of the probiotic, Lactobacillus plantarum on growth performance and haematological indices of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) immunized with bivalent streptococcosis / lactococcosis vaccine. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 18(2): 283-295. DOI: 10.22092/ijfs.2018.117757##Valcheva, R., Kabadjova, P., Rachman, C., Ivanova, I., Onno, B., Prevost, H. and Dousset, X., 2007. A rapid PCR procedure for the specific identification of Lactobacillus sanfranciscensis, based on the 16S-23S intergenic spacer regions. Journal of Applied Microbiology, 102: 290–302. DOI:10.1111/j.1365-2672.2006.03039.x ##

بررسی آلودگی مناطقی از تالاب انزلی به باکتری‌های Yersinia enterocolitica و Listeria monocytogenes به روش کشت میکروبی وPCR و ارتباط آنها با pH و هدایت الکتریکی آب Survey of pollution in areas of Anzali wetland to Yersinia enterocolitica and Listeria monocytogenes by microbial culture and PCR and their relationship to the pH and electrical conductivity of water 1 1 تالاب انزلی مهمترین اکوسیستم حد واسط حوضه آبریز دریای خزر بوده و نقش بسزایی در پالایش مواد ورودی رودخانه‌های این منطقه دارد و به عنوان یک صافی طبیعی عمل می‌کند. در این مطالعه بار کلی میکروبی و باکتری‌های Yersinia enterocolitica  و  Listeria monocytogenes و ارتباط آن با   pHو هدایت الکتریکی  آب مورد بررسی قرار گرفت. نمونه‌برداری از پاییز 97 لغایت تابستان 98 از لایه سطحی، براساس روش‌های استاندارد نمونه‌برداری آب انجام شد. بیشترین میانگین لگاریتمی شمارش کل باکتری‌ها 513/5 در میلی‌لیتر، در ایستگاه علی آباد در تابستان و کمترین میانگین لگاریتمی شمارش کل باکتری‌ها 914/3 در میلی‌لیتر، در ایستگاه آبکنار در پاییز و بالاتر از حد استاندارد بودند. در مقایسه میزان آلودگی باکتری‌های Y.enterocolitica  و  L.monocytogenes با استفاده از محیط کشت‌های اختصاصی بترتیب 41 درصد و 50 درصد و در روش PCR با زوج پرایمرهای اختصاصی بترتیب 7/35 درصد و 8/42 درصد بودند. بیشترین میزان pH  در ایستگاه سنگاچین 86/8 و بالاترین میزان EC در ایستگاه طالب آباد 1050  بود. با استفاده از آزمون دانکن، اختلاف آماری معنی‌داری در اغلب ایستگاه‌ها با درصد کشت‌های اختصاصی، فاکتورهای pH و EC و میانگین لگاریتمی شمارش کل باکتری‌ها مشاهده شد (05/0(p<. همچنین با استفاده از آزمون دانکن در روش PCR، L.monocytogenes در فصل پاییز از نظر آماری اختلاف معنی‌داری با سایر فصل‌ها نشان داد (05/0(p< و Y.enterocolitica در فصل پاییز و تابستان از نظر آماری اختلاف معنی‌داری با سایر فصل‌ها نشان داد (05/0(p<. بالا رفتن دمای محیط، رشد جمعیت شهری در اطراف تالاب‌ها و ورود فاضلاب‌ها از دلایل اصلی افزایش بار آلودگی در تالاب انزلی و انتقال آن از طریق چرخه غذایی و نیز خطر بیماری‌زایی را نشان می‌دهد.  2 Anzali wetland is the most important intermediate ecosystem in the Caspian sea catchment area and plays an important role in refining the inputs of rivers in this area and acts as a natural filter. In this study, the overall microbial load and bacteria of Yersinia enterocolitica and Listeria monocytogenes and its relationship with pH and EC of water were investigated. Surface layer sampling was performed from autumn 2018 to summer 2019 using standard water sampling methods. The highest logarithmic mean of the total bacterial count was 5.513/ ml at Ali Abad station in summer and the lowest logarithmic mean of the total bacterial count was 3.914/ ml at Abknar station in autumn and above standard. The rate of contamination of different wetlands to Yersinia enterocolitica and Listeria monocytogenes using specific media was 41% and 50% respectively and in the PCR method with specific primer pairs, were 35.7% and 42.8% respectively. The highest pH in Sangachin station was 8.86 and the highest EC was 1050μs / cm in Talebabad station. Duncan test showed a significant difference at most stations with the percentage of specific cultures, pH and EC factors and the logarithmic mean of total bacterial count (p<0.05). Also, using Duncan's test in the PCR method, Listeria monocytogenes in autumn were statistically significantly different from other seasons (p<0.05) and Yersinia enterocolitica was statistically significant in autumn and summer (p<0.05). Elevated water temperatures, urban population growth around wetlands, and sewage entry are major causes of increased the level of pollution in Anzali wetland and its transmission through the food cycle and indicates the risk of pathogenicity.   143 153 2019/10/12019/11/232018/06/52020/01/292019/11/222019/11/142019/10/222019/11/302019/06/102019/05/142019/07/142019/11/102020/01/4 1398/10/14 2020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/04/132020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/31 1399/6/10 محمد هادی ابوالحسنی mohamad hadi Abolhasani گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه آزاد اسلامی اصفهان، واحد خوراسگان، اصفهان، ایران Iran hadi.mha2001@yahoo.com زهرا طالبی zahra Talebi گروه بهداشت و کنترل کیفی مواد غذایی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد شهرکرد، شهرکرد، ایران Iran zahra.talebi2212@gmail.com مریم پیامی maryam Payami Khomeran گروه بهداشت و کنترل کیفی مواد غذایی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد شهرکرد، شهرکرد، ایران Iran maryampayami434@gmail.com Anzali Wetland Yersinia enterocolitica Listeria monocytogenes Pollution تالاب انزلی Yersinia enterocolitica Listeria monocytogenes آلودگی ##امین پورشیانی، س.، محمدی، م.، خالدیان، م. و میرروشندل، ا.، 1394. ارزیابی کیفیت آب رودخانه گاز رودبار با استفاده از شاخص کیفی NSFWQI و شاخص آلودگی Liou، مجله اکوبیولوژی تالاب، 8 (3): 74-63.##تجری، م.، رضیعی، م.، افسا، س.، عظیمی، ع.، رنجبر، خ. و طبری، ا.،1392. بررسی تنوع، فروانی و بیوماس کفزیان تالاب گمیشان دراستان گلستان، مجله ی زیست شناسی جانوری، 6 (2): 19-11.##خانی پور، ع.، سیف زاده، م. و احمدی، م.، 1394. بررسی میزان تجمع کبالت ونیکل دربافت خوراکی ماهی سفید صید شده از تالاب بین المللی انزلی، مجله بهداشت مواد غذایی، 5 (20): 68-57. ##خطیب حقیقی، س. و خداپرست، ح.، 1390. بررسی میزان آلودگی به باکتری های گرم منفی برخی مناطق مختلف تالاب بندر انزلی. مجله علوم و فنون دریایی، 10 (3): 68-57.##دلشاد، م.، احمدی فر، ن.ا.، آتشبار، ب. و کمالی، م.، 1396. بررسی کیفیت آب رود خانه قره سو اردبیل در محدوده کارگاه های پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان، مجله علمی شیلات ایران، 27(6) : 1-12. DOI:10.22092/ISFJ.2018.116689##عابدینی، ع.، فلاحی، م.، خداپرست، ح.، میرزاجانی، ع. و صادقی نژاد، ا.، 1396. بررسی شاخص های تروفیک تالاب انزلی، گزارش نهایی پروژه موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، پژوهشکده آبزی پروری آبهای داخلی 57 ص.##غلامی پور، م.، رحیمی بشر، م. و زمینی، ع.، 1395. تغییرات زمانی و مکانی فاکتورهای فیزیکوشیمیایی، مواد مغذی وکلروفیلa در رودخانه های منتهی به تالاب انزلی، مجله اکوبیولوژی تالاب، 8 (3): 44-35. ##فئید، م.، بابایی، ه. و عابدینی، ع.، 1394. بررسی پارامترهای میکروبی و فیزیکوشیمیایی درتالاب انزلی، مجله اکوبیولوژی تالاب، 7 (3): 54-45.##هوشمند، ه.، آهنگر زاده، م.، دهقان مدیسه، س. و سید مرتضایی، ر.، 1398. بررسی کیفیت آب دریاچه سد سیمره با استفاده از شاخص های باکتریایی و ارتباط آن با برخی از فاکتورهای فیزیکی و شیمیایی آب، مجله علمی شیلات ایران، 28(6) : 89-97. DOI:10.22092/ISFJ.2019.120188##یعقوب زاده، ز. و صفری، ر.، 1392. بررسی میزان آلودگی میکروبی آبهای سطحی رودخانه هراز، مجله پژوهشهای سلولی ومولکولی (مجله زیست شناسی ایران)، 28 (1)، 144-136. DOI: http://dx.doi.org/28114 ##Aburto-Medina,A.,Castillo,D.,Ortiz,I.,Hernandez,E.,List,R. and Adetutu,E., 2015.Microbial community and pollutants survey in sediments of biologically important wetlands in Lerma,Mexico Revista Internacional de Contaminacion Ambiental,31:7-22.##Alexandrino , M.,Grohmann , E. and Szewzyk,E., 2003. Optimization of PCR – based methods for rapid detection of campylobacter jejuni, campylobacter coli and Yersinia enterocolitica serovar 0:3 in wastewater samples, Water research , Elsevier ,38: 1340-1346. DOI:10.1016/j.wateres.2003.10.036.##Bonardi, S., Bruini, I., D'Incau, M., Van Damme, I., Carniel, E., Bremont, S., Cavallini, P.,Tagliabue, S. and Brindani, F., 2016. Detection, seroprevalence and antimicrobial resistance of Yersinia enterocolitica and Yersinia pseudotuberculosis in pig tonsilsin Northern Italy, Food Microbiol, 235: 125-132. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2016.07.033.##Bottone, E.F., 2015.Yersinia enterocolitica: revisitation of an enduring human Pathogen, Clin Microbiol News,l: 1-8,. DOI: https://doi.org/10.1111/lam.13120.##Evanson, M. R. and Ambrose, F., 2006. Sources and growth dynamics of fecal indicator bacteria in a.oastal wetland system and potential impacts to adjacent waters. Water research. 40:475-486. DOI: 10.1016/j.watres.2005.11.027.##Fujioka, S., Harlan, R., Hashimoto, H.and Edward, B., 1991. Effect of sunlight on survival of indicator bacteria in sea water. Appl. Environ. Microbiol, 41: 690–695.##Jalali, M. and Abedi, D., 2008. Prevalence of Listeria species in food products in Isfahan, Iran. International Journal of Food Microbiol, 122: 336-40. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2007.11.082.##Khanipour, A.A., Ahmadi, M . and Deifzadeh, M., 2016.study on bioaccumulation of heavy metals(Cd ,Ni,Zn,Pb) in the muscle of wels catfish in the Anzali Wetland.IJFS,17(1)244-250.DOI:10.22092/IJFS.2018.118782.## Knox, A. K., Tate, K. W., Dahlgren, R. A. and Atwill, E. R., 2007. Managment reduces Ecoli in irrigated pasture run off. California Agriculture, 61:159-165.##Meyer-Broseta, S., Diot, A., Bastian, S., Rivi, J. and Cerf, O., 2003. Estimation of low bacterial concentration: Listeria monocytogenes in raw milk. International Journal of Food Microbio, 80: 1-15.##Mirzajani, A., Ghane, A. and Khodaparast, H., 2008. Qualifying the inlet rivers of the Anzali lagoon based on macro invertebrates communities. Journal of environmental studies, 34: 31-38.##Monroy, M., Maceda-Veiga, A. and de Sostoa, A., 2014. Metal concentration in water, sediment and four fish species from Lake Titicaca reveals a large-scale environmental concern. Science of the Total Environment, 487: 233-244.##Sargaonkar, A. and Deshpande, V., 2003. Development of an overall index of pollution for surface water based on a general classification scheme in Indian context. E. M. A, 89:43-67. ##Sharifzadeh, A., Akhavan, M. and Zarasvandi Agha, S. 2004. Isolation of Yersinia enterocolitica and Listeria monocytogenes from raw and pasteurized milks supplied at dairies in Chaharmahal va Bakhtiary province, Iranian Journal of Food Science and Technology, 1: 15-20.##Ye, Q., Wu, Q., Hu, H., Zhang, J. and Huang, H. 2016. Prevalence and characterization of Yersinia enterocolitica isolated from retail foods in China. Food Control, 61: 20-27. DOI: 10.1016/j.foodcont.2015.09.016. ##

بررسی تنوع و پراکنش ستاره‌‌های دریایی و ستاره‌‌های شکننده دریایی در سواحل ایرانی خلیج فارس در محدوده استان بوشهر Investigation of diversity and distribution of starfish and brittle starfish in the Persian Gulf coastal regions of Bushehr Province 1 1 خارپوستان[1] یکی از شناساگرهای بسیار خوب برای بررسی سلامت و وضعیت سواحل و صخره‌‌های مرجانی در آبهای دریایی هستند. هدف از این مطالعه بررسی تنوع و پراکنش ستاره‌‌های دریایی[2] و ستاره‌‌های شکننده دریایی[3] در منطقه پایین و میانی جزر و مدی[4] سواحل خلیج فارس در محدوده ‌‌ی استان بوشهر شامل ایستگاه‌‌های نیروی هوایی، بندر رستمی، اولی شمالی و جنوبی بود. نمونه‌‌برداری از فروردین لغایت اسفند سال 1396 به صورت فصلی در 4 نوبت و توسط کوادرات یک متر در یک متر و در 2 ترانسکت عمود بر دریا با عرض 30 متر و با فاصله تقریبی 100 متر از هم انجام گرفت. در مجموع 184 فرد، 7 گونه شامل 4 گونه ستاره‌‌دریایی، 3 گونه ستاره شکننده متعلق به خانواده‌‌های Astropectinidae (گونه‌‌های Astropecten polyacanthus phragmorus و Astropecten monacanthus)، Asterinidae (گونه Aquilonastra iranica)، Ophidiasteridae (گونه Linckia multifora)، Ophiotrichidae (گونه Ophiothrix sp.) و Ophiocomidae (گونه‌‌های Ophiocoma scolopendrina و Ophiocoma sp.) جمع‌‌آوری شدند. فراوان‌‌ترین گونه شناسایی شده Ophiothrix sp. بود و کمترین فراوانی به گونه L. multiflora تعلق داشت. زیستگاه گونه‌‌ A. polyacanthus phragmorus سواحل زیر جزر و مدی ماسه‌‌ای، A. monacanthus سواحل جزر و مدی ماسه‌‌ای، گونه A. iranica بسترهای صخره‌‌ای جزر و مدی بود و گونه‌‌های L. multifora، Ophiothrix sp.، O. scolopendrina و Ophiocoma sp. در بسترهای صخره‌‌ای– مرجانی یافت شدند. الگوی پراکنش 54/90 درصد از گونه‌‌ها خوشه‌‌ای بود در حالیکه سایر گونه‌‌ها پراکنش یکنواختی داشتند. نتایج شاخص‌‌های تنوع گونه‌‌ای شانون H’= 1.7672 و اونس 0.8754=  نشانگر تنوع یکنواختی مناسب ستاره‌‌‌‌ها و ستاره‌‌های شکننده در سواحل خلیج فارس در استان بوشهر است.   [1] Echinodermata [2] Asteroidea [3] Ophiuroidea [4] Lower and middle tidal zones 2 Herring is one of the very good detectors for assessing the health and condition of coral reefs and shores in marine waters. The purpose of this study was to investigate the diversity and distribution of Asteroidea and Ophiuroidea in the lower and middle tidal zones of the Persian Gulf coastlines in the area of Bushehr province (Air Force stations, Bandar Rostami, North and South Utah). Sampling from April to March 2017 was performed quarterly in 4 turns and by Quadrat (one meter per meter) and in two transects perpendicular to the sea (width 30 meters) and with an approximate distance of 100 meters. A total of 184 individuals, 7 species including 4 species of starfish, 3 species of fragile star belonging to Astropectinidae (Astropecten polyacanthus phragmorus and Astropecten monacanthus), Asterinidae (Aquilonastra iranica species), Ophidiasteridae (species Linckia multiflora) ,Ophiotrichidae (Ophiothrix sp.) and Ophiocomidae (Ophiocoma  scolopendrina and Ophiocoma sp.) collected. The most frequent species of Ophiothrix sp .Lowercase the least frequent was the Linckia multiflora . Species habitat werer as Astropecten polyacanthus phragmorus tropical sandy beaches, Astropecten monacanthus tidal sandy beaches, Aquilonastra iranica, tidal cliffs and Linckia multiflora, Ophiothrix sp., Ophiocoma scolopendrina species, and Ophiocoma sp. The rocky-coral beds. 90.54% of species had cluster distribution while, while other species had a uniform distribution. The results of Shannon species diversity indices H chr('39')= 1.7672 and Oz = 0.8754 = Jchr('39') indicated the relative uniformity and uniformity of stars and fragile stars on the coasts of the Persian Gulf in Bushehr province.   155 166 2019/10/12019/11/232018/06/52020/01/292019/11/222019/11/142019/10/222019/11/302019/06/102019/05/142019/07/142019/11/102020/01/42019/05/3 1398/2/13 2020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/04/132020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/31 1399/6/10 شیوا سلطانی Shiva soltani گروه مهندسی محیط زیست، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران. Iran shiva.soltanii@gmail.com ابراهیم رجب زاده قطرمی گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی، خرمشهر، ایران Iran rajabzadeh48@gmail.com سید محمد باقر نبوی گروه منابع طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران. Iran m.nabavi@kmsu.ac.ir نعمت الله خراسانی گروه مهندسی محیط زیست، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران. Iran KHORASAN@UT.AC.IR Diversity Distribution Marine Star Burning Star of the Sea Persian Gulf Bushehr Province تنوع پراکنش ستاره‌‌ دریایی ستاره شکننده دریایی سواحل خلیج فارس استان بوشهر ##فاطمی، م.ر.، قوام‌‌مصطفوی، پ.، همیز، ز. 1390. شناسایی خیارهای دریایی در پهنه‌‌های جزر و مدی جزیره قشم. نشریه علمی پژوهشی اقیانوسی‌‌شناسی. سال 2. شماره 7. 66-57.##Alvarado, J.J., Guzman, H.M., Breedy, O., 2012. Distribution and diversity of echinoderms (Asteroidea, Echinoidea, Holothuroidea) in the islands of the Gulf of Chiriqui, Panama. Revista de Biología Marina y Oceanografía, 47: 13-22. ##Attar Fariman, G. and Panahlou, N., 2014. Morphological study of Asteropecten (Asteroidea: Paxillosida) asteroids in coastal waters and subtropical Chabahar (Oman Sea). J Sea Biol, 7: 24- 28. (In Persian). ##Azarnivand, H. and Zare Chahouki, M., 2011. Rangeland Ecology. University of Tehran, Iran. 280P. (In Persian).##Basson, P., Burchard, J.E., Hardy, J.T. and Price, ARG., 1977. Biotopes of the Western Persian Gulf: Marine life and environments of Saudi Arabia. Dhahran, Saudi Arabia. 284P.##Chao, S.M., 1999. A revision of the Family Astropectinidae (Echinodermata: Asteroidea) from Taiwan, with description of five new records. Zoological Studies, 38(3): 257-267. Doi: 10.6620/ZS.2019.58-03##Clark, A.M., 1974. Notes on some echinoderms of southern Africa. Bulletin of the British Museum (Natural History) Zoology, 26 (6): 421-487. Doi.org/10.5962/bhl.part.209.##Clark, A. and Rowe, F., 1971. Monograph of shallow-water Indo-west pacific echinoderms. London, British Museum (Natural History). 238P.##Dupont S., Ortega-Martínez, O. and Thorndyke, M., 2010. Impact of near-future ocean acidification on echinoderms. Ecotoxicology, 19: 449–462. Doi: 10.1007/s10646-019-02034-0##Faryabi, N., Mesdaaghi, M. and Bagheri, R., 2011. Comparison of diversity of and species richness in three utilization level in National Park of Khabar and adjacent areas. Rangel J, 5(2): 171-180. Doi: 10.1097/SGA.0000000000000367.##Fish, J.D. and Fish, S., 2011. A Student’s Guide to the Seashore. United States of America by Cambridge University Press, New York. 250P.##Gluck, F, Stohr, S, Bochert, R, Zettler, M., 2012. Brittle stars (Echinodermata: Ophiuroidea) from the continental shelf off Angola and Namibia. Zootaxa, 3475: 1–20. Doi.org/10.1016/j.jas.2010.06.025.##Gondim, A.I., Pereira-Dias, T.L. and Christoffersen Micrones, M.L., 2013. Annotated checklist of Echinoderms from Maranhão and Piauí States, Northeastern Brazil. Check List, 9(3): 510–518. DOI: 10.15560/9.3.510.##Hyman, L.H., 1955. Echinodermata the coelomate Bilateria. In: The Invertebrates (4th edn.), McGraw Hill, New York. 120P.##Iken, K., Konar, B., Benedetti-Cecchi, L., Cruz-Motta, J.J., Knowlton, A., Pohle, G., Mead, A., Miloslavich, P., Wong, M., Trott, T., Mieszkowska, N., Riosmena-Rodriguez, R., Airoldi, L., Kimani, E., ##Shirayama, Y., Fraschetti, S., Ortiz-Touzet, M. and Silva, A., 2010. Large-scale spatial distribution patterns of echinoderms in nearshore rocky habitats. PLoS ONE, 5: 13845-13859. Doi: 10.1371/journal.pone.0216435.##James, D.B., 1982. Studies on Indian Echinoderms-Ophiocoma anaglyptica (Ophiuridea, Ophiocomidae) a new record from the Indian Ocean with notes on other species of Ophiocoma from Indian sea. Journal of the Marine Biological Association of India, 24 (2): 36-40. ##James, D.B., 2001. Twenty sea cucumbers from seas around India. Naga: ICLARM Quarterly, 24: 4-8. Doi.org/10.18551/rjoas.2017-09.41.##Lamb, E.G., Bayne, E., Holloway, G., Schieck, J., Boutin, S., Herbers, J., Haughland, D.L., 2009. Indices for monitoring biodiversity change: Are some more effective than others?. Ecological Indicators, 9:432-444. Doi.org/10.1016/j.Sc.2010.00372.##Liacuna, M.E., Walag, A.M., Villaluz, E.A. 2016. Diversity and dispersion patterns of echinoderms in Babanlagan, Talisayan, Misamis Oriental, Philippines. Environmental and Experimental Biology, 14: 213–217. Doi:10.1093/jxb/49.323.915.##Magurran, A.E., 2004. Measuring biological diversity. Blackwell Publishing Company, Oxford, UK. 350P.##Mah, C.L., Blake, D.B., 2012. Global diversity and phylogeny of the Asteroidea (Echinodermata). PLoS One, 7: 35644-35650. Doi: 10.1371/journal.pone.0216435.##Margalef, R., 1957. La teoria de la informacion en ecologia. Journal of Memorias de la Real Academia de Ciencias y Artes de Barcelona, 32: 373–449. Doi.: 10.7818/ECOS.2015.24-1.17.##Medrano, M.G.T., 2015. Diversity of macrobenthic invertebrates in the intertidal zone of Brgy. Tagpangahoy, Tubay, Agusan del Norte, Philippines. International Journal of Technical Research and Applications, 19: 5–9. Doi: 10.1111/ijag.12327##Mortensen, T., 1933. Papers from Dr. Th. Mortensen’s Pacific Expedition 1914–18. LXVI. The echinoderms of St. Helena. (Other than crinoids).Vidensk Medd Dan Nathist Foren. 473P.##O’Loughlin, P.M., Waters, J.M., Roy, M.S., 2003. A molecular and morphological review of the asterinid, Patiriella gunnii (Gray) (Echinodermata: Asteroidea). Memoirs of Museum Victoria, 60(2): 181–195. DOI: 10.24199/j.mmv.2003.60.19.##Olbers, J.M. and Samyn, Y., 2012. The Ophiocoma species (Ophiurida: Ophiocomidae) of South Africa. Western Indian Ocean Journal of Marine Sciences, 10:137-154. Doi: 10.1111/ijag.12327.##Pielou, E.C., 1975. Ecological Diversity. John Wiley and Sons, New York. USA.128P.##Pourvali, N., 2013. New Report of Sea Star, Aquilonastra samyni (Echinodermata, Asteroidea), from the Strait of Hormuz, the Persian Gulf. World Journal of Zoology, 8: 415–416. Doi : 10.5829/idosi.wjz.##Pourvali, N., Nabavi, M.B., Rezai, H., Doraghi, A.M., Mahvari, A.R., 2014a. Echinodrmata, species diversity and distribution in Hormuz Island (the Persian Gulf), I.R. Iran. Middle East Journal of Scientific Research, 21: 583–587. Doi: 10.5829/idosi.mejsr.##Pourvali, N., Nabavi, M.B., Rezai, H., Doraghi, A.M., Mahvari, A.R., 2014b. Shallow-water Holothuroidea (Echinodermata) from Hormuz Island in the Persian Gulf, Iran. World Journal of Fish and Marine Sciences, 6: 395–399. Doi.org/10.3390/jmse7050127.##Price, A.R.G., 1983. Echinoderms of Saudi Arabia. Echinoderm of the Gulf. Fauna of Saudi Arabia, pp. 28–108.##Price A.R.G., 1982. Echinoderm of Saudi Arabia. Comparison between Echinoderm faunas of Arabian Sea, SE Arabia, Red Sea, Gulfs of Aqaba and Suez. Fauna of Saudi Arabia, 4: 3–21. Doi: 10.3897. zookeys.274.4529##Price, A.R.G., 1983. Echinoderms of Saudi Arabia. Echinoderm of the Gulf Coast of Saudi Arabia. Fauna of Saudi Arabia,5: 28-108. Doi: 10.5958/0974-8172.2018.00002.##Price, A.R.G. and Rezai, H., 1996. new echinoderm records for the Gulf including crown-of-thorns starfish, Acanthaster planci (Linnaeus), and their biogeographical significance. Fauna of Saudi Arabia, 15: 386–390. Doi: 10.5958/0974-8172.2018.00002.##Sautya, S., Ingole, B., Ray, D., Stöhr, S., Samudrala, K., Raju, K. and Mudholkar, A., 2011. Megafaunal Community Structure of Andaman Seamounts Including the Back-Arc Basin – A Quantitative Exploration from the Indian Ocean. PLoS ONE, 6: 16162- 161675. Doi: 10.1371/journal.pone.0216490.##Schoppe, S., 2000. Echinoderms of the Philippines: a guide to common shallow water sea stars, brittle stars, sea urchins, sea cucumbers and feather stars. VISCA-GTZ Program on Applied Tropical Ecology, Visayas State College of Agriculture, Philippines. 369P.##Souto, V., Escolar, M., Genzano, G. and Bremec, C., 2014. Species richness and distribution patterns of echinoderms in the southwestern Atlantic Ocean (34-56° S). Scientia Marina, 78: 269–280. Doi: 10.7554/eLife.32822.##Stohr, S., Conand, C. and Boissin, E., 2008. Brittle stars (Echinodermata: Ophiuroidea) from La Réunion and the systematic position of Ophiocanops Koehler, 1922. Zoological Journal of the Linnean Society, 153:545–560.##Stohr, S., Sautya, S. and Ingole, B., 2012. Brittle stars (Echinodermata: Ophiuroidea) from seamounts in the Andaman Sea (Indian Ocean) - a first account, with descriptions of new species. Journal of the Marine Biological Association, 92(5):1195-1208. Doi:10.1017/S0025315408000957.##Tolera, M., Asfawa, Z., Lemenih, M. and Karltun, E., 2008. Woody species diversity in a changing landscape in the south-central highlands of Ethiopia. Agriculture, Ecosystems & Environment, 128: 52–58. Doi.org/10.1029/2001JB000884.##Walag, A.M.P. and Canencia, M.O.P., 2016. Physico-chemical parameters and macrobenthic invertebrates of the intertidal zone of Gusa, Cagayan de Oro City, Philippines. AES Bioflux, 8: 71–82. Doi: 10.1007/s10726-012-9320-8.##Zulliger, D. and Lessios, H.A., 2010. Phylogenetic relationships in the genus Astropecten Gray (Paxillosida:Astropectinidae) on a global scale: molecular evidence for morphological convergence, species-complexes and possible cryptic speciation. Zootaxa, 2504: 1–19. Doi: org/10.11646/zootaxa.3794.4.2. ##

تغییرات کیفی میگوی سرتیز (Metapenaeus affinis) طی نگهداری با تأخیر در یخ‌ Quality changes of Jinga shrimp (Metapenaeus affinis) during delayed storage in ice 1 1 در مطالعه حاضر تأثیر تأخیر در یخ‌گذاری بر کیفیت و مدت ماندگاری میگوی سرتیز (Metapenaeus affinis) طی یک دوره 18 روزه نگهداری در یخ مورد بررسی قرار گرفته است.  بدین منظور میگوهای تازه صید شده در سه تیمار تقسیم­بندی گردید. گروه اول بلافاصله در یخ قرار داده شد در حالی که گروه‌های دوم و سوم به ترتیب یک ساعت و دو ساعت پس از صید با یخ مخلوط شده و پوشانده شدند و مدت زمان ماندگاری با بررسی شاخص‌های میکروبی (شمارش کلی باکتری‌های مزوفیل و سرمادوست)، فاکتورهای شیمیایی (pH، TVB-N و TBARS) و ارزیابی حسی تعیین گردید. ارزیابی میکروبی نشان داد، کمترین رشد باکتریایی در اولین گروه از میگوها که بلافاصله پس از صید در یخ نگهداری شدند، رخ داده است (p<0.05). در میان شاخص‌های شیمیایی، بیش‌ترین میزان افزایش pH، TVB-N و TBARS در میگوهای یخ‌گذاری شده با دو ساعت تأخیر مشاهده گردید. نتایج ارزیابی حسی نشان داد، مدت ماندگاری میگوهای گروه اول که به طور مداوم در یخ نگهداری شدند، دوازده روز بود در حالی که در مورد گروه­های دوم و سوم که با یک ساعت و دو ساعت تاخیر پس از صید در یخ نگهداری شدند، به ترتیب به 10 و 8 روز کاهش یافت. ‌در اکثر روزهای این مطالعه همبستگی بالایی میان شاخص‌های حسی، میکروبی و شیمیایی وجود داشت. بررسی شاخص‌های حسی، میکروبی و شیمیایی تیمارهای مورد بررسی نشان داد، هر یک ساعت تأخیر در یخ‌گذاری منجر به کاهش دو روزه زمان ماندگاری میگو در مقایسه با نمونه‌های با یخ‌گذاری بلافاصله شده است. 2 The present study, investigated the effect of delayed ice storage on the quality and shelf-life of Jinga shrimp (Metapenaeus affinis) during a period of 18 days. Freshly captured shrimps were divided into three groups. The first group was kept in ice immediately, while the second and third groups were mixed and covered with ice one hour, and two hours after capture respectively. The shelf-life of each group was determined using microbial (total number of mesophilic and psychrophilic bacteria), chemical (pH, Total Volatile Bases Nitrogen ‘TVB-N’ and Thiobarbituric Acid ‘TBA’) and sensory indices. The results of microbial counts showed that the least bacterial growth occurred in the first group, preserved in ice immediately after the catch (P < 0.05). Among the chemical parameters the highest increase in pH, TVB-N and TBA was observed in the third group, preserved in ice with two hours delay. The outcome of the sensory evaluation revealed that the shelf-life of the first group of shrimps constantly stored in ice was 12 days while those of the second and third groups kept in ice with one and two hours delay after capture decreased to 10 and 8 days respectively. In most days of this study, there was a high correlation between sensory, microbial and chemical indices. The results of sensorial, microbial and chemical tests of the treatments indicate that every hour of time-lag in ice-storage of freshly captured Jinga shrimp will reduce its shelf-life by about two days compared to the samples iced immediately after catch. 167 177 2019/10/12019/11/232018/06/52020/01/292019/11/222019/11/142019/10/222019/11/302019/06/102019/05/142019/07/142019/11/102020/01/42019/05/32019/12/16 1398/9/25 2020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/04/132020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/04/28 1399/2/9 بهمن میربلوک Bahman Mirboluk دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار Iran bahman_mbk@yahoo.com جواد قاسم زاده Javad Ghasemzadeh دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار Iran jghasemz@gmail.com سلیم شریفیان Salim Sharifian انشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار Iran sharifian.salim@hotmail.com Jinga Shrimp (Metapenaeus affinis) Ice storage Shelf-life Sensory evaluation میگوی سرتیز نگهداری در یخ ماندگاری ارزیابی حسی ##پراشیده، ن.، علیزاده دوغیکلاهی، ا.، محمدی، م. 1394. تأثیر زمان یخ‌گذاری روی کیفیت میگوی پرورشی وانامی. فصلنامه علوم و صنایع غذایی، 12 (48): 12-1. ##نادری، م.، شریفیان، س.، آفتاب‌سوار، ی.، ملکوتی، م.، کمالی، ع.، زارع، پ. 1391. تأثیر تأخیر در یخ گذاری بر روی تغییرات حسی و ریز ساختارهای بافتی عضله میگوی موزی (Penaeus merguemsis) طی نگهداری. مجله شیلات دانشگاه آزاد اسلامی، واحد آزاد شهر، 6 (3): 34-23. ##سازمان ملی استاندارد ایران. 1386. آماده کردن نمونه‌های مواد غذایی و شمارش میکروارگانیسم‌های مختلف. استاندارد شماره 356.##شریفیان، س.، مرتضوی، م.ص.، زکی‌پور رحیم‌ آبادی، ا.، ارشدی، ع. 1389. تعیین زمان ماندگاری ماهی شوریده (Otolithes ruber) در پودر یخ. مجله علمی شیلات ایران، 19 (4): 96-87. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.109962 ##صالحی، ث.، خدانظری، آ.، زمانی، ا. 1397. مقایسه تغییرات کیفی میگوی Metapenaeus affinis با پوست طی نگهداری شده در یخ و یخچال. مجله علمی شیلات ایران، 27 (4): 136-123. DOI: 10.22092/ISFJ.2018.117746 ##کامرانی، ا.، مجازی امیری، ب.، صفایی، م. 1383. زیست شناسی تولید مثل میگوی سفید (سرتیز) Metapenaeus affinis در آبهای ساحلی استان هرمزگان. مجله علمی شیلات ایران، 13 (4): 160-151. DOI: 10.22092/isfj.2004.113792##Benjakul, S., Visessanguan, W. and Tanaka, M., 2006. Inhibitory effect of cysteine and glutathione on phenoloxidase from kuruma prawn (Penaeus japonicus). Food Chemistry, 98: 158-163. DOI: 10.1016/j.foodchem.2005.05.056##Chytiri, S., Chouliara, I., Savvaidis, I.N. and Kontominas, M.G., 2004. Microbiological, chemical and sensory assessment of iced whole and filleted aquacultured rainbow trout. Food Microbiology, 21: 157-165. DOI: 10.1016/S0740-0020(03)00059-5##FAO., 2018. The State of World Fisheries and Aquaculture 2018 - Meeting the sustainable development goals. Rome. Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO., 227.##Ghaly, A.E., Dave, D., Budge, S. and Brooks, M.S., 2010. Fish Spoilage Mechanisms and Preservation Techniques Review. American Journal of Applied Sciences, 7 (7): 859-877. DOI: 10.3844/ajassp.2010.859.877.##Gökoğlu, N. and Yerlikaya, P., 2015. Quality changes and spoilage of fish. In: Seafood Chilling, Refrigeration and Freezing: Science and Technology, First Edition. Gökoğlu and Pınar Yerlikaya. John Wiley & Sons, Ltd. DOI: 10.1002/9781118512210.ch3##Huss, H.H., 1995. Quality and quality changes in fresh fish. FAO Fisheries Technical Paper 348. Food and Agriculture Organization of the United Nations. Rome.##Kato, N., Kunimoto, M., Koseki, S., Kitakami, S. and Arai, K., 2009. Freshness and Quality of Fish and Shellfish. Journal of the School of Marine Science and Technology, Tokai University, 7 (2): 87-99.##Khodanazary, A. 2019. Freshness assessment of shrimp Metapenaeus affinis by quality index method and estimation of its shelf life. International Journal of Food Properties, 22:1, 309-319, DOI: 10.1080/10942912.2019.1580719##Kılınc, B., Caklı, S., Cadun, A., Dıncer, T. and Tolasa, S., 2007. Comparison of effects of slurry ice and flake ice pretreatments on the quality of aquacultured sea bream (Sparus aurata) and sea bass (Dicentrarchus labrax) stored at 4 ℃. Food Chemistry, 104: 1611–1617. DOI: 10.1016/j.foodchem.2007.03.002 Li, M., Wang, W., Fang, W. and Li, Y., 2013. Inhibitory effects of chitosan coating combined with organic acids on Listeria monocytogenes in refrigerated ready-to-eat shrimps. Journal of Food Protection, 76(8): 1377-1383. DOI:10.4315/0362-028x.jfp-12-516##Nirmal, N.P. and Benjakul, S., 2010. Effect of catechin and ferulic acid on melanosis and quality of Pacific white shrimp subjected to freeze-thawing prior refrigerated storage. Food Control, 21: 1263-1271. DOI: 10.1016/j.foodcont.2010. 02.015.##Nirmal, N.P., Benjakul, S., Ahmad, M., Arfat, Y.A. and Panichayupakaranant, P., 2015. Undesirable Enzymatic Browning in Crustaceans: Causative Effects and Its Inhibition by Phenolic Compounds. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 55(14): 1992-2003. DOI: 10.1080/10408398.2012.755148##Őzogul, Y., Őzyurt, G., Őzogul, F., Kuley, E. and Polat, A. 2005. Freshness assessment of European eel (Anguilla anguilla) by sensory, chemical and microbiological methods. Food Chemistry, 92 (3): 745–751. DOI: 10.1016/j.foodchem.2004.08.035##Özyurt, G., Kuley, E., Özkütük S. and Özogul, F., 2009. Sensory, microbiological and chemical assessment of the freshness of red mullet (Mullus barbatus) and goldband goatfish (Upeneus moluccensis) during storage in ice. Food Chemistry, 114:505-510. DOI: 10.1016/j.foodchem.2008.09.078##Sharifian, S., Zakipour, E., Mortazavi, M. S. and Arshadi, A., 2011. Quality assessment of tiger tooth croaker (Otolithes ruber) during ice storage. International journal of Food Properties, 14: 309-318. DOI: 10.1080/10942910903177822##Sharifian, S., Shahbanpour, B., Taheri, A. and Kordjazi, M., 2019. Effect of phlorotannins on melanosis and quality changes of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) during iced storage. Food Chemistry, 124980, DOI: 10.1016/j.foodchem.2019.124980##Zakipour Rahimabadi, E., Zarrin, K., Zarei, M., Gaffari, M. and Rahnama, M., 2016. Effects of genistein on melanosis and microbial quality of Litopenaeus vannamei during ice storage. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 15 (1):436-445. http://jifro.ir/article-1-2136-en.html##Zeng, Q.Z., Thorarinsdottir, K.A. and Olafsdottir, G., 2005. Quality changes of shrimp (Pandalus borealis) stored under different cooling conditions. Journal of Food Science, 70: 459-466. DOI: 10.1111/j.1365-2621.2005.tb11493.x ##

مطالعه تخمدان و تخمک‌‌زایی در خرچنگ شبح Ocypode rotundata (Miers, 1882) در جزیره قشم، خلیج فارس Study of ovary and oogenesis in ghost crab Ocypode rotundata from Qeshm Island, Persian Gulf 1 1 در این مطالعه، ساختار غده جنسی و تخمک‌‌زایی در خرچنگ Ocypode rotundata از لحاظ ماکروسکوپی و میکروسکوپی در مدت یکسال از دی 1395 لغایت بهمن 1396 بررسی شد. خرچنگ‌‌های ماده ماهانه از سواحل ماسه‌‌ای بندر صلخ، جزیره قشم جمع‌‌آوری شدند. در آزمایشگاه، تخمدان خرچنگ‌‌ها از ناحیه سفالوتراکس جدا شد و به منظور مطالعات بافت‌‌شناسی آماده‌‌سازی شدند. مراحل رشد و توسعه هر غده جنسی براساس خصوصیات ظاهری رنگ و اندازه بررسی شد و سپس هر مرحله با توجه به ویژگی‌‌های میکروسکوپی توصیف شد. با توجه به نتایج، شش مرحله رشد تخمدان برای خرچنگ O. rotundata تشخیص داده شد که شامل مرحله اول: نابالغ، مرحله دوم: ابتدایی، مرحله سوم: درحال رشد، مرحله چهارم: واسطه، مرحله پنجم: پیشرفته، مرحله ششم: تخلیه بود. طی مرحله تخمک‌‌زایی، تعداد اووسیت‌‌ها طی رشد دوم افزایش یافت که همزمان با تغییر رنگ و افزایش حجم غدد جنسی بود. روند رشد اووسیت نیز شامل شش مرحله بود: مرحله اولیه نخستین رشد، مرحله انتهایی نخستین رشد، اوایل مرحله رشد دوم، مرحله میانی رشد دوم، انتهای مرحله رشد دوم، مرحله رشد کامل اووسیت. براساس نتایج، شکل‌‌گیری مجموعه زرده دور هسته‌‌ای تنها در مرحله انتهایی نخستین رشد مشاهده شد. بعلاوه، آغاز رشد دوم همزمان با پدیدار شدن گلبول‌‌های زرده در اووپلاسم بود. همچنین بیشتر اووسیت‌‌ها در مرحله پایان رشد به رنگ صورتی روشن قابل مشاهده بودند. 2 In this study, gonad structure and oogenesis of ghost crab were studied based on macroscopic and microscopic analyses from January 2016 to February 2017. Female crabs were collected from sandy beach of Salahk port, Qeshm Island, monthly. In the laboratory, the crabs’ ovaries were dissected and prepared for histology. Based on external and morphological features, gonad developmental stages were investigated and afterwards each stage was microscopically described. According to the results, six ovarian developmental stages were recognized including: stage I: immature, stage II: rudimentary, stage III: developing, stage IV: intermediate, stage V: advanced, stage VI: spent. During oogenesis, the number of oocytes in secondary growth increased in the ovaries which was associated with a change in coloration and increase in the gonad volume. Oocytes growth process was classified in six stages: early primary growth, late primary growth, early secondary growth, mid-secondary growth, late secondary growth, and full-growth. According to results, shaping of perinuclear yolk complex observed just in late primary growth stage. Furthermore, starting of second growth was simultaneous to appearing of yolk globules in ooplasm. Also, most of oocytes were visible as light pink in full-Grown stage.   179 190 2019/10/12019/11/232018/06/52020/01/292019/11/222019/11/142019/10/222019/11/302019/06/102019/05/142019/07/142019/11/102020/01/42019/05/32019/12/162020/04/6 1399/1/18 2020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/04/132020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/04/282020/04/29 1399/2/10 مجتبی نادری Mojtaba Naderi گروه کشاورزی، دانشگاه پیام نور، تهران، ایران. Iran Mojtabanaderi1364@yahoo.com جمیله پازوکی Jamileh Pazooki گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فناوری زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران. Iran pazooki2001@yahoo.com Gonad Structure Oogenesis Oocytes Ovary ساختار غده جنسی تخمک‌‌زایی اووسیت تخمدان ##Adiyodi, R.G. and Subramonian, T., 1983. Arthropoda-Crustacea. In: Adiyodi K.G., Adiyodi, R.G., (ed) Reproductive biology of invertebrates, oogenesis, ovoposition and oosorption. John Wiley and Sons, Toronto. pp 443-495.##Arculeo, M., Payen, G., Cuttitta, A., 1995. A survey of ovarian maturation in apopulation of Aristaeus antennatus (Crustacea: Decapoda). Anim Biol 4:13-18.##Baker, A.C., Starger, C.J., McClanahan, T.R. and Glynn, P.W., 2004. Corals’ adaptive response to climate change. Nature 430, 741. ##Brown, C.E., Mann, D. and Grier, H., 2009. Ovarian Morphology, Oogenesis, and Changes through the Annual Reproductive Cycleof the Female Blue Crab, Callinectes sapidus Rathbun, in Tampa Bay. M.S Dissertation. Marine Science University of South Florida. 58p.##Burggren,W.W. and McMahon, B.R., 1988. Biology of Land Crabs. Cambridge University Press. 479 p.##Castiglioni, D.S. and Santos, S., 2001. Reproductive aspects of Cyrtograpsus angulatus Dana, 1851 (Brachyura, Grapsidae) in the Lagoa do Peixe, Rio Grande do Sul State, Brazil. Nauplius 9:11-20.##Castiglioni, D.S., Negreiros-Fransozo, ML., Lo´pez-Greco, L.S., Silveira, A.F. and Silveira, S.O., 2007. Gonad development in females of fiddler crab Uca rapax (Crustacea, Brachyura, Ocypodidae) using macro and microscopic techniques. Iheringia Se´rie Zoologia. 97:505-510. DOI: 10.1590/S0073-47212007000400022.##Cavalli, R.O., Scardua, M.P. and Wasielesky, W.J., 1997. Reproductive performance of dif-ferent sized wild and pond-reared Penaeus paulensis females. J World Aquacult 28:260-267. DOI: 10.1111/j.1749-7345.1997.tb00641.x.##Chen, T., Lai, W. and Du, N., 1994. Growth, reproduction and population structure of the freshwater crab Sinopotamon yangtsekiense Bott, 1967, from Zhejiang, China. Chin J Oceanol Limnol 12:84-90.##Costa, M. T. and Fransozo, M.L., 1998. The Reproductive Cycle of Callinectes danae Smith, 1869 (Decapoda, Portunidae) in the Ubatuba Region, Brazil. Crustaceana 71:615-627. DOI: 10.1163/156854098X00617.##El-Sherif, S.S., El-Khodary, G.M. and Ghonim, A.Z., 2012. Ovarian cycle and scanningelectron micrographs of the spawned egg of female mantis shrimp Oratosquilla massavensis (Alexandria, Egypt). J Basic Appl Zool 65:116-124. DOI: 10.1016/j.jobaz.2012.07.006.##Fransozo, A., Negreiros-Fransozo, M.L. and Bertini, G., 2002. Morphometric study of the ghost crab Ocypode quadrata (Fabricius, 1887) (Brachyura, Ocypodidae) from Ubatuba, São Paulo, Brazil. In: Modern Approaches to the Study of Crustacea, Springer, New York, pp189-195.##Fyhn, M.E.H. and Costlow, J.D., 1977. Histology and histochemistry of the ovary andoogenesis in Balanus amphitrite L. and Balanus eburneus Gould (Cirripedia: Crus-tacea). Biol Bull 152:351-359.##Ghotbeddin, N., Fatemi, R. and Valinassab, T., 2012. Identification of Iranian Subtidal Portunid Crabs (Crustacea: Decapoda: Brachyura) of the Oman Sea with First Record of 5 Species. J Oceanogr. 3: 1-12. (In Persian).##Gregati, R.A., Fransozo, V., Lopez-Greco, L.S. and Negreiros-Fransozo, M.L., 2010. Reproductive cycle and ovar-ian development of the marine ornamental shrimp Stenopus hispidus in captivity. Aquaculture 306:185-190. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2010.05.009.##Johnson, P.T., 1980. Histology of the blue crab Cal/inertes .sapidus. A model for the Decapoda. Praeger Sci PubI, NewYork. 440 p.##Joshi, P.C. and Khanna, S.S., 1982. Seasonal changes in the ovary of a freshwater crab, Potamon koolooense (Rathbun). Anim Sci 91:451–462. DOI: 10.1007/BF03186142.##Lucrezi, S. and Schlacher, T.A., 2010. Impacts of off-road vehicles (ORVs) on burrow architecture of ghost crabs (genus Ocypode) on sandy beaches. Environ Manage. 45: 1352–1362. DOI: 10.1007/s00267-010-9491-5.##O’Donovan, P., Abraham, M. and Cohen, D., 1984. The ovarian cycle during the intermoltin ovigerous Macrobrachium rosenbergii. Aquaculture 36:347-358.##Olive, P.J.W., 1992. The adaptive significance of seasonal reproduction in marine invertebrates: the importance of distinguishing between models. Invertebrate Reproduction and Development 22:165-174. DOI: 10.1080/07924259.1992.9672269.##Olive, P.J.W., 1995. Annual breeding cycles in marine invertebrates and environmental temperature: probing the proximate and ultimate causes of reproductive synchrony. J Therm Biol 20:79-90.##Makioka, T., 1988. Ovarian structure and oogenesis in Chelicerates and other Arthropods. Proc Arthropod Embryol Soc Jpn 23:1-10.##Naderloo, R., Ebrahimnezhad, S. and Sari, A.R., 2015. Annotated checklist of the decapod crustaceans of the Gulf of Oman, northwestern Indian Ocean. Zootaxa. 4028: 397-412. DOI: 10.11646/zootaxa.4028.3.5.##Naderi, M., Zare, P., Lastra, M. and Pishehvarzad F., 2018a. First record of ghost crab Ocypode sinensis (Dai Song and Yang, 1985) (Decapoda: Brachyura: Ocypodidae) from Qeshm Island, Persian Gulf, Iran. Cahiers de Biologie Marine. 59: 527-531. DOI: 10.21411/CBM.A.51F168A3.##Naderi, M., Hosseini, S.A., Hedayati, A.A., Pazooki, J., Zare, P. and Lastra, M., 2018b. Reproductive biology of Ghost crab Ocypode rotundata (Miers, 1882) (Decapoda, Ocypodidae) of Qeshm Island (Persian Gulf). Crustaceana 91:1039-1059. DOI: 10.1163/15685403-00003804.##Revathi, P., Iyapparaj, P., Munuswamy, N. and Krishnan, M., 2012. Vitellogenesis duringthe ovarian development in freshwater female prawn Macrobrachium rosenbergii (De Man). Int J Aquat Sci 3:13-27.##Ramirez-Liodra, E., 2002. Fecundity and life-history strategies in marine invertebrates. ##Adv Mar Biol. 43:87-170. DOI: 10.1016/S0065-2881(02)43004-0.##Reddy, P.R., Kiranmayi, P., Kumari, K.T. and Sreenivasula, R.P., 2006. 17 α-Hydroxyprogesterone induced ovarian growth and vitellogenesis in the freshwater rice field crab Oziotelphusa senex senex. Aquaculture 254:768–775.##Richmond, M.D., 1997. A guide to the Seashores of Eastern Africa and theWestern Indian Ocean Islands. Sida, Department for Research Cooperation, SAREC. Zanzibar, Tanzania. 448 p.##Rostant, L.V., Alkins, M. and Maitland. D.P., 2008. Growth and maturity in the marine crab Eudaniela garmani (Brachyura: Pseudothelphusidae) from Trinidad, Westindies. J Crust Biol 28:485-493. DOI: 10.1651/07-2913R.1.##Sagi, A., Soroka, E., Chomsky, O., Calderón, J. and Milner, Y., 1995. Ovarian protein synthesis in the prawn Macrobrachium rosenbergii: does ovarian vitellin synthesis exist? Invertebr Reprod Dev 27:41-47. DOI: 10.1080/07924259.1995.9672432.##Santos, S. and Negreiros-Fransozo, M.L., 1999. Reproductive cycle of the swimming crab Portunus spinimanus Latreille (Crustacea, Decapoda, Brachyura) from Ubatuba, São Paulo, Brazil. Revista Brasileira de Zoologia 16:1183-1193. DOI: 10.1590/S0101-81751999000400025.##Sharifian, S., Kamrani, E., Safaie, M. and Sharifian., S., 2014. Oogenesis and ovarian development in the freshwater Crab Sodhiana iranica (Decapoda: Gecarcinuaidae) from the south of Iran. Tissue and Cell 47:213-220. DOI: 10.1016/j.tice.2014.11.006.##Shinozaki-Mendes, R.A., Silva, J.F., Souza, L.P. and Hazin, F.H.V., 2012. Histochemical study of the ovarian development of the blue land crab Cardisoma guanhumi (Crustacea: Gecarcinidae). Invertebr Reprod Dev 56:191-199. DOI: 10.1080/07924259.2011.587277.##Tsukimura, B., 2001. Crustacean vitellogenesis: its role in oocyte development. Am Zool 41:465-476. DOI: 10.1093/icb/41.3.465. ##

یافته علمی کوتاه: بررسی علل سفید شدگی مرجان‌‌های شاخ گوزنی (Acropora spp.) جزیره هندورابی Short communication: Survey of Stag-horn corals (Acropora spp.) bleaching in the Hendurabi Island (Northern of the Persian Gulf) 1 1 سلامت جوامع مرجانی اطراف جزیره هندورابی به روش Coral Watch، و عکس­برداری خطی در تابستان 96، مطالعه  و پدیده سفید­شدگی مرجان ها مشاهده شد. درجه حرارت ثبت شده در پیرامون کلنی­های مرجان 1/33 درجه سانتی­گراد و شاخص سلامت مرجان­ها دارای صددرصد مرجان­های جنس Acropora spp. ، شاخص E1  (سفیدشدگی کامل)، و برای 80 درصد مرجان­های جنس Hydnophora spp. شاخص E6 (سلامتی کامل) و 20 درصد همین جنس شاخص  E4(در حال سفید­شدن)، تخمین زده شد. نتایج این بررسی نشان­ داد کلنی مرجان­های شاخه­ای، کاملا سفیدشده­اند،  اما مرجان­های توده­ای توانسته­اند در برابر استرس­های دمای محیطی تحمل بیاورند، هرچند که برخی از آنها دارای شاخص  E4  بوده و در شرایط بحرانی­تر تصور بر آن است که این گونه­ها نتوانند خود را از استرس­های دمای محیطی برهانند. از آنجائی که اکوسیستم مرجانی، به ویژه مرجان­های شاخه­ای به دلیل زیستگاه­های کوچکی که برای ماهیان زینتی و لارو برخی از ماهیان تجاری به وجود می­آورند دارای ارزش زیست محیطی و شیلاتی می­باشد،  لذا پایش سلامت این زیست بومها به منظور مدیریت زیست محیطی پیشنهاد می‌گردد. 2 Bleaching phenomenon was observed in coral communities by Coral Watch method and Photo-transect in Hendorabi Island in Sep.2016.Coral health indices were estimated E1 (complete whitening), E6 (Complete health)and E4 (whitish) for Acropora spp., Hydnophora spp. And Hydnophora spp., also temperature was measured 33.1 ° C around coral colonies. The results of this study showed that the colonies of branching corals are completely whitened, but massive corals can withstand environmental temperature stresses, although some of them have an E4 index and, it is more critical to assume that these species can not relieve themselves of environmental temperature stresses. Since the coral ecosystem, especially the branching coral, has ecological and fishery value for the ornamental fish and larvae of some commercial fish, so health monitoring of the corals is recommended in order to environmental management. 191 196 2019/10/12019/11/232018/06/52020/01/292019/11/222019/11/142019/10/222019/11/302019/06/102019/05/142019/07/142019/11/102020/01/42019/05/32019/12/162020/04/62017/10/14 1396/7/22 2020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/04/132020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/04/282020/04/292020/10/31 1399/8/10 سیامک بهزادی siamak behzadi پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان Iran behzadi@pgoseri.ac.ir حسین رامشی Hossein Rameshi ایستگاه تحقیقات نرم تنان Iran hrameshi@yahoo.com علی سالارپوری Ali Salarpouri پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان Iran salarpouri@pgoseri.ac,ir محمد درویشی Mohammad Darvishi پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان Iran m.darvishi70@yahoo.com سجاد پور مظفر Sajjad Pourmozaffar پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات،آموزش وترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران. Iran شهرام صیدمرادی Shahram Seid Moradi پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان Iran S_seidmorady@yahoo.com غلام علی اکبرزاده Gholam Ali Akbar Zadeh پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان Iran gholamaliakbarzadeh@yahoo.com Bleaching Acropora spp. Hendurabi Island and Persian Gulf سفید شدگی مرجان شاخ گوزنی جزیره هندورابی خلیج فارس ##افشار سیستانی، ا.، 1371. جزیره هندرابی و دریای پارس، انتشارات تهران، ۸۵ صفحه. ##بهزادی، س.، سالارپور، ع.، درویشی، م.، رامشی. ح.، ابراهیمی، م. و صید مرادی، ش.، 1389. مطالعه سفید شدگی مرجان گونه Acropora spp. جزیره کیش خلیج فارس. چهارمین سمینار شیمی و محیط زیست. 18 صفحه.##بهزادی، س.، صید مرادی، ش.، سالارپوری، ع.، درویشی، م. و رامشی، ح.، 1395. شناسایی بهترین مکان جهت بازسازی ذخایر مرجان (Acropora spp.) در جزیره لارک. سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج‌‌کشاورزی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان33-31. 98 صفحه.##کنیه، ف.، زراعت پیشه، ف. و حسن احمدی، ا.، 1397. بررسی کارایی حذف آمونیاک از پساب مزارع پرورش قزل آلای رنگین کمان توسط زغال لیلکی (Gleditschia caspica)، اسکلت مرجان Antozoa و پشم فولاد (Steel wool) مجله علمی شیلات ایران، ۲۷ (۶) :۴۷-۵۶. .Doi: 10.22092/ISFJ.2019.118389##Ajdari, D., 2018. Introducing Coral carrier and comparing it with Carrier basket. 27(4): 57-66. Doi: 10.22092/ISFJ.2018.117724.##Behzadi, S., Salarpouri, A. and Darvishi, M., 2008. Bleaching continues in Kish Island coral reefs. IFRO Newsletter. Iranian Fisheries Research Institute Organization. No.53, Winter 2008.##Behzadi, S., Darvishi, M., Salarpouri, A., SeyidMoradi, Sh., Dehghani, R. and Mortazavi, M.S., 2013. Case study of Corals stock rehabilitation (Acropora spp.) in Kish Island. International Conference on Environmental Challenges in ROPME Sea Area, Kish Island.I.R.Iran, 19: 2-4.##Douglas, A.E., 2003. Coral bleaching – How and why? Marine Pollution Bulletin, 46: 385-392. Doi:10.1016/S0025-326X(03)00037-7.##Fitt, W.K., McFarland, F.K., Warner, M.E. and Chilcoat, G.C., 2000. Seasonal patterns of tissue biomass and densities of symbiotic dinoflagellates in reef corals and relation to coral bleaching. Limnology and oceanography, 45(3): 677-685. Doi:10.4319/lo.2000.45.3.0677.##Hoegh-Guldberg, O., 1999. Climate change, coral bleaching and the future of the world’s coral reefs. Greenpeace: Sydney (Australia), 28 P. Doi:10.1071/MF99078.##IPCC, 2007. Contribution of working group to the fourth assessment.##Jokiel, P.L. and York Jr, R.H., 1982. Solar ultraviolet photobiology of the reef coral Pocillopora damicornis and symbiotic zooxanthellae. Bulletin of Marine Science, 32(1): 301-315.##Loya, Y., Sakai, K., Yamazato, K., Nakano, Y., Sambali, H. and van Woesik, R., 2001. Coral bleaching: The winners and the losers. Ecology letters, 4(2): 122-131. Doi:10.1046/j.1461-0248.2001.00203. ##Obura, D., 2005. Resilience and climate change: Lessons from coral reefs and bleaching in the Western Indian Ocean. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Region: patterns and processes in extreme tropical environments. Report of the intergovernmental panel on climate change, Cambridge Academic, London. Doi:10.1016/j.ecss.2004.11.010.##Oxenford H.A. and Vallés H., 2016. Transient turbid water mass reduces temperature-induced coral bleaching and mortality in Barbados. Doi: 10.7717/peerj.2118.##Riegl, B.M. and Purkis, S.J., 2012. Coral reefs of the Persian Gulf: Adaptation to climatic extremes in the world’s hottest sea. In Coral Reefs of the Persian Gulf , Springer Netherlands. pp. 1-4. Doi:10.1007/978-94-007-3008-31.##Sheppard, C., Price A. and Roberts, C., 1992. Marine ecology of the Arabian countries Spalding, World atlas of coral reefs. University of California Press. 98 P.##Spalding, M., Spalding, M.D., Ravilious, C. and Green, E.P., 2001. World atlas of coral reefs. Univ of California Press.##Stimson, J., Sakai, K. and Sembali, H., 2002. Interspecific comparison of the symbiotic relationship in corals with high and low rates of bleaching-induced mortality. Coral Reefs, 21(4): 409-421.##Wilkinson, C., 2004. Status of coral reefs of the world. AIMS: Townsville (Australia), 557 P.##www.coralwatch.org. ##

یافته علمی کوتاه: مقایسه افزایش قیمت ماهی و قدرت خرید خانوارهای ایرانی Survey on relationship between fish price and purchasing power of Iranian households 1 1 اهمیت و ارزش غذایی ماهی کاملا مشخص می باشد. گوشت ماهی تازه منبع غنی از پروتئین ( حدود ۲۰ درصد پروتئین ) و  املاح و اسیدهای چرب ضروری است که در در رژیم غذایی و حفظ سلامت انسان ضروری و نقش مهمی دارد. در این بررسی روند تغییرات قیمت خرده فروشی ماهی  طی سال‌های 97-1381 در ایران و همزمان با حداقل دستمزد مصوب و رسمی ایران مورد مطالعه قرار گرفت. نتیجه نشان داد با روند افزایش قیمت ماهی صید شده در سه منبع آبهای شمال و جنوب کشور و پرورشی طی سالهای گذشته، از قدرت خرید مردم کاسته و عملاً ماهی به عنوان یک غذای لوکس و مختص گروه‌های خاصی از جامعه قرار گرفته است. 2 The importance of fish nutrient value is a known fact. Fresh fish meat is a high protein food source (around 20% protein) which is enriched with beneficial minerals and fatty acids, all being essential for human health. Fish meat also has more water and less fat in comparison with red and bird meat. The purpose of this research is to study the changes in fish retail price relative to changes in minimum wage in Iran during 2001-2009. The results show that as the price of fish has had more increase compared to the minimum wage, people’s purchasing power has declined and fish has become a luxury food for certain groups of the population 197 202 2019/10/12019/11/232018/06/52020/01/292019/11/222019/11/142019/10/222019/11/302019/06/102019/05/142019/07/142019/11/102020/01/42019/05/32019/12/162020/04/62017/10/142019/10/16 1398/7/24 2020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/04/132020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/08/312020/04/282020/04/292020/10/312020/10/31 1399/8/10 مهناز ربانی ها Mahnaz Rabbaniha موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran rab.mahnaz@gmail.com علی عوفی دانشگاه صنعتی شریف Iran owfi.yojam@yahoo.com Fish prices workers' wages rising prices قیمت ماهی دستمزد کارگران نرخ افزایش قیمت ##-دفتر برنام ریزی و بودجه. سازمان شیلات ایران. سالنامه آماری سازمان شیلات ایران . 1391-1389 . 64 صفحه.##-دفتر برنام ریزی و بودجه. سازمان شیلات ایران. سالنامه آماری سازمان شیلات ایران . 1395-1391 . 64 صفحه.##-دفتر برنامه ریزی و بودجه. سازمان شیلات ایران. سالنامه آماری سازمان شیلات ایران . 1396-1391 . 64 صفحه.##-علی پور س.،.هوشیارراد آ،.عبداللهی م.، اسماعیلی م. ، کلانتری ن و غفارپور م.1398. الگوی مصرف ماهی و آبزیان در سبد غذایی خانوارهای ایرانی. نهمین کنگره سراسری تغذیه ایران.##- Djoussé L., Akinkuolie AO., Wu JH., Ding EL., Gaziano JM .2012.Fish consumption, omega-3 fatty acids and risk of heart failure: a meta-analysis. Clinical Nutrition; 31(6): 846-53.##-Innis SM, Rioux FM, Auestad N, Ackman RG . 1995. .Marine and freshwater fish oil varying in arachidonic, eicosapentaenoic and docosahexaenoic acids differ in their effects on organ lipids and fatty acids in growing rats.. The Journal of Nutrition. 125 (9): 2286–93. PMID 7666244.##-Watts N, Amann M, Ayeb-Karlsson S, et al. The Lancet Countdown on health and climate change: from 25 years of inaction to a global transformation for public health. Lancet 2018; 391: 581−630. ##