مقاله علمی – پژوهشی: بررسی اثرات رژیم‌های نوری مختلف بر رشد و رسیدگی جنسی آزادماهی دریای خزر (Salmo caspius) Investigating the effects of photoperiod on growth performance and sextual maturation of Caspian trout (Salmo trutta caspius) 1 1 در این تحقیق اثرات رژیم‌های نوری مختلف شامل 24 ساعت روشنایی (تیمار 1)، سه ماه اول 18 ساعت روشنایی و سه ماه دوم 6 ساعت روشنایی (تیمار 2)، سه ماه اول 6 ساعت روشنایی و سه ماه دوم 18 ساعت روشنایی (تیمار 3) و 24 ساعت تاریکی (تیمار 4)، در شش‌ماهه دوم سال دوم زندگی آزادماهی دریای خزر (Salmo caspius) موردبررسی قرار گرفت. برای انجام تحقیق از مخازن یک‌هزار لیتری با 20 قطعه در هر مخزن (با سه تکرار برای هر تیمار) استفاده شد. نتایج نشان داد که رشد، تغذیه و شاخص‌های تولیدمثلی تحت‌تأثیر رژیم‌های نوری قرار گرفتند. بیش‌ترین رشد ویژه (44/0 درصد در روز) و کم‌ترین مقدار ضریب تبدیل غذایی (4/3) در ماهیان تیمار 4 مشاهده شد که نسبت به تیمار 1 (به‌ترتیب 30 درصد در روز و 4/4)، تیمار 2 (به‌ترتیب 29 درصد در روز و 7/4) و تیمار 3 (30 درصد در روز و 5/4) اختلاف معنی‌داری نشان داد. رژیم‌های نوری مختلف بر رشد و نمو گناد‌ها در ماهیان ماده تأثیر چندانی نداشتند، اما رشد و‌ نمو گناد‌های ماهیان نر به‌شدت تحت تأثیر رژیم‌های نوری قرار گرفتند به‌طوری‌که تمام ماهیان نر تیمار 2 کاملاً رسیده بودند. رژیم‌های نوری تیمار‌های 3 و 4 باعث توقف رشد و‌ نمو یا تحلیل رفتن گناد‌های جنسی در ماهیان نر شده است. بنابراین، برای افزایش رشد ماهی آزاد دریای خزر، رژیم 24 ساعت تاریکی و برای تحریک رسیدگی جنسی آن، رژیم 18 و 6 ساعت روشنایی به‌ترتیب در سه ماه اول و سه ماه دوم بهتر است. 2 Photoperiod is one of the very important environmental factors that extremely affect growth performance, feeding and reproduction of various fish species. Thus In this research effects of different photoperiod regimes on Caspian Salmon during the premature stage (18 months old at the beginning of experiment) were investigated. One thousand liter tank with 20 premature fishs were allocated for each treatment. Applied photoperiod regimes during 6 months experimental period were: (1) continues light (24L/0D), (2) 18L/6D during first three months and 6L/18D during second three months, (3) 6L/18D during first three months and 18L/6D during second three months and (4) continues dark (0L/24D). Results indicated that growth performance, feeding and reproduction were influenced by the photoperiod regimes. The highest values of SGR (0.44 % d-) and the lowest values of FCR (4/3) were observed in treatment 4 that showed significant differences as compared with treatment 1 (0.35 % d- and 4.4) treatment 2 (0.33 % d- and 4.7) and treatment 3 (0.34 % d- and 4.5). Maturation of females was not influenced by experimental photoperiod regimes but maturation of males was significantly influenced. As all males of treatment 2 reached sexual maturity at the end of experiment. In contrast, treatments 3 and 4 postponed gonad development and maturation of males. Therefore, to increase the growth of Caspian salmon, the 24-hour dark photoperiod and to stimulate its sexual maturation, the 18 and 6-hour light photpperiod is recomonded in the first and second trimesters of the six-month photpperiod regime, respectively. 1 10 2018/05/22 1397/3/1 2021/02/28 1399/12/10 ناصر آق Naser Agh دانشگاه ارومیه Iran n.agh@urmia.ac.ir عبدالجبار ایرانی Abdoljabbar Irani دانشگاه ارومیه Iran j_irani55@yahoo.com Caspian Salmon Photoperiod Growth performance Maturation آزادماهی دریای خزر رژیم نوری رشد رسیدگی جنسی ##عبدلی، ا. و نادری، م.، 1387. تنوع زیستی ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر. انتشارات علمی آبزیان. 242صفحه.##فلاح، س.، خدابنده، ص.، رجبی، ح. و امیری مقدم، ج.، 1390. اثر چربی گیاهی جیره غذایی بر ساختار سکوم‌های گوارشی بچه ماهیان آزاد خزر (Salmo trutta caspius). مجله علمی شیلات ایران، 20(1): 122-111. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.109980.##نفری یزدی، م.، پورکاظمی، م.، عدالحی، ح. و نجاتی جوارمی، ا.، 1398. شناسایی مهمترین صفات اقتصادی در برنامه اصلاح نژاد ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius) با استفاده از روش تحلیل سلسله مراتبی (AHP). مجله علمی شیلات ایران، 28(6): 146-133. DOI: 10.22092/ISFJ. 2019.120210##Almazán-Rueda, P., Van Helmont, A.T.M., Verreth, J.A.J. and Schrama, J.W., 2005. Photoperiod affects growth, behaviour and stress variables in Clarias gariepinus. Journal of Fish Biology, 67: 1029-39. DOI: 1111/10/j.0022-2005/1112.00806.x.##Appelbaum, S. and Kelmer, E., 2000. Survival, growth, metabolism and behavior of Clarias gariepinus (Burchell 1822) early stages under different light conditions. Aquaculture Engineering, 22: 169-287. DOI: 1016/10/S0144-8609(00)00054-6.##Barlow, C.G., Pearce, M.G., Rodgers, L.J. and Clayton, P., 1995. Effects of photoperiod on growth, survival and feeding periodicity of larval and juvenile barramundi Lates calcarifer (Bloch). Aquaculture, 138: 159-168. DOI: 1016/10/0044-8486(95)01073-4.##Biswas, A.K. and Takeuchi, T., 2003. Effects of photoperiod and feeding interval on food intake and growth rate of Nile tilapia Oreochromis niloticus L. Fisheries Science, 69: 1010-16. DOI: 1046/10/j.1444-2003/2906.00720.x.##Biswas, A.K., Morita, T., Yoshizaki, G., Maita, M. and Takeuchi, T., 2005a. Control of reproduction in Nile tilapia Oreochromis niloticus (L.) by photoperiod manipulation. Aquaculture, 243: 229-239 (a). DOI: 1016/10/j.aquaculture.10/2004.008.## ##Biswas, A.K., Seoka, M., Inoue, Y., Takii, K. and Kumai, K., 2005b. Photoperiod influences the growth, food intake, feed efficieny and digestibility of red sea bream (Pargus major). Aquaculture, 250: 666-673 (b). DOI: 1016/10/j.aquaculture.04/2005.047.##Campos-Mendoza, A., McAndrew, B.J., Coward, K. and Bromage, N., 2004. Reproductive response of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) to photoperiodic manipulation; effects on spawning periodicity, fecundity and egg size. Aquaculture, 231: 299-314. DOI: 1016/10/j.aquaculture.10/2003.023.##Dorafshan, S., Kalbassi, M.R., Pourkazemi, M., Majazi Amiri, B. and Soltan Karimi, S., 2007. Effects of triploidy on the Caspian salmon (Salmo trutta caspius) haematology. Fish Physiology and Biochemistry, 34:195-200. DOI: 10.1007/s10695-007-9176-z.##Ergun, S., Yigit, M. and Turker, A., 2003. Growth and feed consumption of young rainbow (Oncorhynchus mykiss) exposed to different photoperiods. The Israeli Journal of Aquaculture-Bamidgeh, 55: 132-138. DOI: hdl.handle.net/10524/19078.##Fielder, D.S., Bardsley, W.J., Allan, G.L. and Pankhurst, P.M., 2002. Effect of photoperiod on growth and survival of snapper Pagrus auratus larvae. Aquaculture, 211: 135-150. DOI: 1016/10/S0044-8486(02)00006-6.##Ginés, R., Afonso, J.M., Arguello, A., Zamorano, M.J. and Lopéz, J.L., 2004. The effects of long-day photoperiod on growth, body composition and skin colour in immature gilthead sea bream (Sparus aurata L.). Aquaculture Research, 35: 1207-12. DOI: 1111/10/j.1365-2004/2109.01126.x.##Glebe, B., 2012. The Effect of Photoperiod on Growth and Maturationof Atlantic Salmon (Salmo salar) in the Bay of Fundy. Fisheries and Oceans Canada, Issue 14.##Hansen, T., Stefansson, S. and Taranger, G.L., 1992. Growth and sexual maturation in Atlantic salmon, Salmo salar L., reared in sea cages at two different light regimes. Aquaculture and Fisheries Management, 23, 275–280. DOI: 1111/10/j.1365-1992/2109.tb00770.x.##Hansen, T., Karlsen, O., Taranger, G.L., Hemre, G.I., Holm, J.C. and Kjesbu, O.S., 2001. Growth, gonadal development and spawning time on Atlantic cod (Gadus morhua) reared under different photoperiods. Aquaculture, 203: 51-67. DOI: 1016/10/S0044-8486(01)00610-X.##Hildahl, J., Taranger, G.L., Norberg, B., Haug, T.M. and Weltzien, F.A., 2013. Differential regulation of GnRH ligand and receptor genes in the brain and pituitary of Atlantic cod exposed to different photoperiod. General and Comparative Endocrinology, 180: 7-14. DOI: 1016/10/j.ygcen.09/2012.025.##Hung, S.S.O., Groff, J.M., Lutes, P.B. and Kofifiynn-Aikins, F., 1990. Hepatic and intestinal histology of juvenile white sturgeon fed different carbohydrates. Aquaculture, 87: 349-360.##Migaud, H., Fontaine, P., Kestemont, P., Wang, N. and Brun-Bellut, J., 2004. Influence of photoperiod on the onset of gonadogenesis in Eurasian perch Perca fluviatilis. Aquaculture, 241: 561-574. DOI: 1016/10/j.aquaculture.07/2004.031.##Mustapha, M.K., Okafor, B.U., Olaoti, K.S. and Oyelakin, O.K., 2012. Effects of three different photoperiods on the growth and body coloration of juvenile African, Clarias gariepinus (Burchell). Archives of Polish Fisheries, 20: 55-59. DOI: 2478/10/v10086-012-0007-1.##Prayogo, N.A., Wijayanti, G.E., Murwantoko, Kawaichi M. and Astuti, P., 2012. Effect of photoperiods on melatonin levels, the expression cGnRH-II and sGnRH genes and estradiols level in hard-lipped barb (Osteochilus hasselti C.V.). Global Veterinaria, 8: 591-597. DOI: researchgate.net/publication/265805472.##Puvanendran, V. and Brown, J.A., 2002. Foraging, growth and survival of Atlantic cod larvae reared in different light intensities and photoperiods. Aquaculture, 214: 131-151. DOI: 1016/10/S0044-8486(02)00045-5.##Rad, F., Bozaoglu, S., Gozukara, S.E., Karhan, A. and Kurt, G., 2006. Effects of different long-day photoperiods on somatic growth and gonadal development in Nile tilapia (Oreochromis niloticus L.) Aquaculture, 255: 292-300. DOI: 1016/10/j.aquaculture.11/2005.028.##Simensen, M.L., Jonassen, T.M., Imsland, A.K. and Stefansson, S., 2000. Photoperiod regulation of growth of juvenile Atlantic halibut (Hippoglossus hipoglosus L.). Aquaculture, 190: 119-128. DOI: 1016/10/S0044-8486(00)00397-5.##Stefansson, M.O., Fitz Gerald, R.D. and Cross, T.F., 2002. Growth, feed utilizatio and growth heterogeneity in juvenile Scophthal musmaximus (Rafinesque) under different photoperiod regimes. Aquaculture Research, 33: 177-187. DOI: 1046/10/j.1365-2002/2109.00651.x.##Turker, A. and Yildirim, O., 2011. Interrelationship of photoperiod with growth performance and feeding of seawater farmed rainbow trout, (Oncorhynchus mykiss). Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 11: 393-397. DOI: 4194/10/1303-2712-v11_3_08.##Unwin, M.J., Rowe, D.K., Poortenaar, C.W. and Boustead, N.C., 2005. Suppression of maturation in 2-year-old Chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha) reared under continuous photoperiod. Aquaculture, 246: 239-250. DOI: 1016/10/j.aquaculture.01/2005.022. ##

مقاله علمی – پژوهشی: مطالعه پارامترهای غیر زیستی آب در مجاورت قفس‎های دریایی پرورش ماهی در ساحل جنوبی دریای خزر، منطقه عباس‎آباد Study on abiotic factors of water in the vicinity of marine cage culture in southern coast of the Caspian Sea, Abbas Abad area. 1 1 این تحقیق با هدف تعیین اثر فعالیت پرورش قزل‎آلای رنگین کمان بر پارامترهای غیرزیستی آب منطقه عباس‎آباد در حوضه جنوبی دریای خزر انجام گردید. بدین‎ منظور نمونه‎‎ آب در فواصل 5، 50، 100 و 1000 متری از قفس‎های پرورش ماهی طی ماه‎ دی‎ 1393 لغایت ماه مرداد 1394 جمع‎آوری شدند. بر اساس نتایج نشان داده شد که دمای لایه سطحی آب 16/30-2/12 درجه سانتی‏گراد از دی‏ماه لغایت مرداد ماه متغیر بود. بیشترین و کمترین میزان شوری به‎ترتیب در ‎ماه مرداد (26/11 گرم در لیتر) و اردیبهشت (66/10 گرم در لیتر) به‎دست آمد. دامنه تغییرات pH (83/8-36/8)، همانند میزان تغییرات هدایت الکتریکی (07/19-11/18 میکروموهوس بر سانتی‏متر مربع) کم بود. همچنین بیشترین میانگین غلظت اکسیژن محلول (23/9 میلی‏گرم در لیتر) در ماه دی‎ و ایستگاه 1000 متری و کمترین آن (27/7 میلی‏گرم در لیتر) در اردیبهشت‏ و ایستگاه 5 متری مشاهده شد. میانگین TDS، کدورت، نیتریت، نیترات، آمونیوم، نیتروژن کل، فسفات و فسفر کل به‌ترتیب 59/9 (گرم بر لیتر)، 55/5 (NTU)، 67/3، 45/133، 6/92، 72/929، 63/21 و 73/37 میکروگرم بر لیتر به‌دست آمد. نتایج حاصل از آنالیز پارامترهای غیرزیستی نشان داد که بیشتر عوامل اندازه‏گیری شده فقط طی دوره‌های مختلف نمونه‏برداری دارای تفاوت معنی‏دار بودند (05/0>p) در حالی‎که برای فاکتورهایی مانند میزان اکسیژن محلول، یون آمونیوم و فسفات بین ایستگاه‏های مختلف در هر دوره‎ی نمونه‎برداری (اثر فاصله از قفس) نیز اختلاف معنی‌دار مشاهده شد (05/0>p). به‎نظر می‌رسد که به‎دلیل تراکم کم ماهی، کوتاه بودن دوره پرورش و سرعت جریان زیاد، میزان اثرات ناشی از فعالیت پرورش در قفس قزل‎آلای رنگین‎کمان در منطقه عباس‎آباد روی فاکتورهای اندازه‎گیری شده کم بود. 2 This study was carried out to determine the effect of raibow trout cage culture on the abiotic factors of water in the Abbas Abad area, southern basin of the Caspian Sea. For this purpose, water samples were collected at distances of 5, 50, 100 and 1000 m from the cage culture during December 2014 to August 2015. Based on the results, it was shown that the mean value of water temperature for surface layer varied between 12.2 and 30.16 °C from December to August. The highest and lowest mean value of salinity obtained in August (11.26 g/l) and April (10.66 g/l) respectively. The range of pH value changes (8.36-8.83) was as small as the rate of electro conductivity variations (18.11-19.07 µs/cm). The highest concentration of dissolved oxygen was observed in December at 1000 m station (9.23 mg/l) and the lowest was seen in April at 5 m station (7.27 mg/l). Also the mean values of Total Dissolved Solids, Turbidity, Nitrite, Nitrate, ammonium, Total Nitrogen, Phosphate and Total Phosphorus was obtained 9.59 (g/l), 5.55 (NTU), 3.67, 133.45, 92.6, 929.72, 21.63, 37.73 (µg/l) respectively. The results of abiotic factors of water showed that most of the measured parameters had significant differences only among different sampling periods (p<0.05) whilst, for some factors such as dissolved oxygen, ion ammonium and phosphate, there were significant differences between different stations (The effect of distance from the cage) at each sampling period as well as (p<0.05). It seems that the cage culture of rainbow trout in the Abbas Abad area had only a minor impact on measured factors probably due to low stocking density, short-term of fish farm and high current velocity. 11 28 2018/05/222020/01/15 1398/10/25 2021/02/282021/02/28 1399/12/10 عرفان کریمیان erfan karimian 1. گروه شیلات، دانشکده منابع‎طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر. Iran erfankarimian88@gmail.com محمد ذاکری Mohammad Zakeri 1. گروه شیلات، دانشکده منابع‎طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر. Iran Zakeri.mhd@gmail.com سید محمد وحید فارابی seyed mohammad vahid farabi 2. بخش آبزی‎پروری، پژوهشکده‎ی اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی Iran smv.farabi@gmail.com مهسا حقی Mahsa Haghi 1. گروه شیلات، دانشکده منابع‎طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر. Iran Haghi.mahsa@gmail.com پریتا کوچنین Preeta Kochanian 1. گروه شیلات، دانشکده منابع‎طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر. Iran pkochanian@gmail.com Cage culture Rainbow trout Abiotic factors Caspian Sea پرورش در قفس قزل‎آلای رنگین‎کمان پارامترهای غیرزیستی دریای خزر. ##افرائی بندپی، م.ع.، پرافکنده، ف.، کیهان ثانی، ع.ر.، خداپرست، ن.، و نادری، م. 1395. بررسی تغییرات گروه‎های زیستی (فیتوپلانکتون، زئوپلانکتون و بی‎مهرگان کفزی) در محدوده استقرار قفس‎های دریایی در سواحل کلارآباد. مجله آبزیان دریای خزر. سال اول. 3، 13.##پرافکنده، ف.، افرائی بندپی، م.ع.، سلیمانی رودی، ع. 1395. بررسی پراکنش، تراکم و زی‎توده بزرگ موجودات بنتیکی در محل اسقرار پرورش ماهی در قفس در سواحل جنوبی دریای خزر (آب‎های مازندران- کلارآباد). مجله علمی شیلات ایران. 25 (3)، 13. DOI: 10.22092/isfj.2017.110261.##سازمان شیلات ایران، دفتر توسعه و مدیریت بنادر ماهی‎گیری. 1394. تهیه و تدوین ضوابط و معیارهای استقرار قفس‎های پرورش ماهی و اسکله‎های پشتیبانی و معرفی مناطق مناسب برای توسعه پرورش ماهی در قفس در سواحل استان‎های مازندران، گیلان و گلستان. گزارش بخش دریایی استان مازندران. 26 صفحه.##فارابی، س.م.و. 1397. ارزیابی اثرات زیست‎محیطی پرورش ماهی در قفس شناور در منطقه جنوبی دریای خزر (استان مازندران). موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 138 صفحه.##کریمیان، ع. 1395. اثرات زیست‌محیطی پرورش در قفس قزل‌آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) در حوضه جنوبی دریای خزر. رساله مقطع دکتری. دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر. 250 صفحه.##نصراله زاده، ح. س.، نجف‌پور. ش.، یونسی پور، ح.، علومی، ی.، واحدی، ف.، نصراله تبار، ع.، الیاسی، ف.، نوروزیان، م.، دلیناد، غ.ح.، مکرمی، ع.، مخلوق، آ.، گل‌آقایی، م. و کاردر، م.ر. 1390. بررسی خصوصیات فیزیکی و شیمیایی آب در منطقه جنوبی دریای خزر 1388. موسسه تحقیقات شیلات ایران. کد: 88037-8801-12-76-2.##واحدی، ف.، نصراله تبار، ع.، علومی، ی.، یونسی پور، ح.، الیاسی، ف.، نوروزیان، م. و دلیناد، غ.ح. 1389. پروژه بررسی خصوصیات فیزیکی و شیمیایی آب در کرانه‌های جنوبی دریای خزر سال 86: موسسه تحقیقات شیلات ایران. 86087-8605-12-76-2.##Aksu, M., Kaymakci-Basaran, A. and Egemen, O., 2010. Longterm monitoring of the impact of a capture-based bluefin tuna aquaculture on water column nutrient levels in the Eastern Aegean Sea, Turkey. Environmental Monitoring and Assessment, 171: 681-688. DOI: 10.1007/s10661-010-1313-y.##Alston, D. E., Cabarcas, A., Capella, J. Benetti, D. D., Keene-Meltzoff, S., Bonilla, J. and Cortes, R., 2005. Report on the environmental and social impacts of sustainable offshore cage culture production in Puerto Rican waters. Final Report to the National Oceanic and Atmospheric Administration, Contract NA16RG1611.##APHA (American Public Health Association)., 2005. Standard Methods for The Examination of water and wastewater, 21th ed. American Public Health Association, Washington, DC. 1550 P.##Azevedo, P. A. Podemski, C. L., Hesslein, R. H., Kasian, S. E. M., Findlay, DL. and Bureau, D. P., 2011. Estimation of waste outputs by a rainbow trout cage farm using a nutritional approach and monitoring of lake water quality. Aquaculture, 311: 175-186. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2010.12.001.## ##Bagheri, S., Mirzajani, A. and Sabkara, J., 2016. Preliminary studies on the impact of fish cage culture rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) on zooplankton structure in the southwestern Caspian Sea. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 15 (3): 1202-1213.##Barbier, E.B., 2012. Progress and challenges in valuing coastal and marine ecosystem services. Review of Environmental Economics and Policy, 6(1), 1-19. DOI: 10.1093/reep/rer017.##Basaran, A. K., Aksu, M. and Egemen, O., 2007. Monitoring the impacts of the offshore cage fish farm on water quality located in Ildir Bay (IzmirAegean Sea). Journal of Agricultural Sciences, 13: 22-28.##Baula, I. U., Azanza, R. V., Fukuyo, Y. and Siringan, F. P., 2011. Dinoﬂagellate cyst composition, abundance and horizontal distribution in Bolinao, Pangasinan, Northern Philippines. Harmful Algae, 11: 33-44. DOI: 10.1016/j.hal.2011.07.002.##Belle, S.M., and Nash., C.E., 2008. Better management practices for net-pen aquaculture. Pages 261-330 in C.S. Tucker and J. Hargreaves, editors. Environmental Best Management Practices for Aquaculture. Blackwell Publishing, Ames, Iowa. ##Beveridge, M. C. M., 1996. Cage Aquaculture, 2ndedn. Fishing News Books, Oxford, 346 P.##Beveridge, M.C.M., 2004. Cage aquaculture. Oxford: Fishing News Books, 131P.##Beveridge, M.C.M., 2008. Cage Aquaculture (3rd edn). John Wiley e Sons, Oxford, 380 p.##Black, K.D., 2001. Environmental impacts of aquaculture. Shefﬁeld Academic Press and CRC Press, Shefﬁeld.##Borges, P.A.F., Train, S., Dias, J.D. and Bonecker, C.C., 2010. Effects of fish farming on plankton structure in a Brazilian tropical reservoir. Hydrobiologia, 649: 279-291. DOI: 10.1007/s10750-010-0271-2.##Braaten, B., 2007. Cage culture and environmental impacts. pp. 49-91 in A. Bergheim, editor. Aquacultural Engineering and Environment. Research Signpost, Kerala, India.##Bristow, C.E., Morin, A., Hesslein, R.H. and Podemski, C.L., 2008. Phosphorus budget and productivity of an experimental lake during the initial three years of cage aquaculture. Canadian Journal of Fisheries and Aquaculture Science, 65: 2485-2495. DOI: 10.1139/F08-155.##Bugrov, L. 1992. Rainbow trout culture in submersible cages near offshore oil platforms.Aquaculture, 100 (1-3): 169-180. ##Burt, K., Hamoutene, D., Mabrouk, Gehan., Lang, C., Puestow, T. and Drover, D., 2012. Environmental conditions and occurrence of hypoxia within production cages of Atlantic salmon on the south coast of Newfoundland. Aquaculture Research, 43: 607-620. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2011.02867. ##Caruso, G., 2014. Effects of aquaculture activities on microbial assemblages. Oceanography 2, e107.##Cromey, C.J. and Black, K.D., 2005. Modelling the impacts of ﬁnﬁsh aquaculture (in this volume). Springer, Berlin Heidelberg New York.##Cromey, C.J., Nickell, T.D., Treasurer, J., Black, K.D. and Inall, M., 2009. Modelling the impact of cod (Gadus morhua L.) farming in the marine environment-CODMOD. Aquaculture, 289: 42-53. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2008.12.020.##De Silva, S., 2012. Aquaculture: a newly emergent food production sector and perspectives of its impacts on biodiversity and conservation. Biodiversation Conservation, 21, 3187-3220. DOI: 10.1007/s10531-012-0360-9.##Degefu, F., Mengistu, S. and Schagerl, M., 2011. Inﬂuence of ﬁsh cage farming on water quality and plankton in ﬁsh ponds: A case study in the Rift Valley and North Shoa reservoirs, Ethiopia. Aquaculture, 316: 129-135. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2011.03.010.##Demirak, A., Balci, A. and Tufekci, M., 2006. Environmental impact of the marine aquaculture in Gulluk Bay, Turkey. Environmental Monitoring and Assessment, 123: 1-12. DOI: 10.1007/s10661-005-9063-y.##FAO, 2016. The state of world fisheries and aquaculture. Food and Agriculture Organization of the United Nations. Contributing to food security and nutrition for all. 200 P.##Findlay, D.L., Podemski, C.L., Susan, E. and Kasian, M., 2009. Aquaculture impacts on the algal and bacterial communities in a small boreal forest lake. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 66(11): 1936-1948. DOI:10.1139/F09-121.##Fleming-Lehtinen V., Laamanen, M. and Olsonen, R., 2009. HELCOM Indicator Fact Sheets 2007: Florida Department of Environmental Protection., 2003. Development of Florida Lake Nutrient Criteria: Summary and Synthesis. Tallahassee, USA. http://www.helcom.fi/environment2/ifs/en_GB/cover. 2011.8.22.##Focardi, S., Corsi, I. and Franchi, E., 2005. Safety issues and sustainable development of European aquaculture: new tools for environmentally sound aquaculture. Aquacult Int, 13: 3-17. DOI:10.1007/s10499-004-9036-0.##Gale, P., 1999. Addressing Concerns for Water Quality Impacts from Large-Scale Great Lakes Aquaculture. Roundtable Discussion Habitat Advisory Board of the Great Lakes Fishery Commission and Great Lakes Water Quality Board of the International Joint Commission. Toronto, Ontario Ministry of the Environment.##Gondwe, M.J.S., Guildford, S.J. and Hecky, R.E., 2011. Carbon, nitrogen and phosphorus loadings from tilapia fish cages in Lake Malawi and factors influencing their magnitude. Journal of Great Lakes Research, 37: 93-101. DOI: 10.1016/j.jglr.2010.11.014##Grigorakis, K. and Rigos, G., 2011. Aquaculture effect on environmental and public welfare- The case of Mediterranean mariculture. Chemosphere, 855: 899-919. DOI: 10.1016/j.chemosphere.2011.07.015.##Guo, L. and Li, Z., 2003. Effects of nitrogen and phosphorus from fish cage-culture on the communities of a shallow lake in middle Yangtze River basin of China. Aquaculture, 226, 201- 212. DOI:10.1016/S0044-8486(03)00478-2.##Hamblin, P.F. and Gale, P., 2002. Water Quality Modeling of Caged Aquaculture Impacts in Lake Wolsey, North Channel of Lake Huron. Journal of Great Lakes Research, 28(1): 32-43. DOI: 10.1016/S0380-1330(02)70560-1.##Hargrave, B.T., 2003. Far-field environmental effects of marine finfish aquaculture, 1-49 in Canadian Technical Report of Fisheries and Aquatic Sciences, 2450, Volume 1. Available at: http://mmc. gov/drakes_estero/pdfs/bivalve_aquaculture_03.pdf.##Johansson, D., Ruohonen, K., Kiessling, A. and Oppedal, F., 2006. Effect of environmental factors on swimming depth preferences of Atlantic salmon (Salmo salar L.) and temporal and spatial variations in oxygen levels in sea cages at a fjord site. Aquaculture, 254: 594-605. DOI:10.1016/j.aquaculture.2005.10.029.##Kalantzi, I. and Karakassis, I., 2006. Benthic impacts of fish farming: meta-analysis of community and geochemical data. Marine Pollution Bulletin, 52: 484-493. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2005.09.034.##Macleod, C.K., Crawford, M. and Moltschaniwsky, A., 2004. Assessment of long term change in sediment condition after organic enrichment: deﬁning recovery. Marine Pollution Bulletin, 49: 79-88. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2004.01.010.##Malleri, M., 2011. Effects of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) cage culture on Western Cape irrigation reservoirs. Doctor of Philosophy in the Faculty of AgriSciences at Stellenbosch University. 296 P.##Marsden, M.W., Fozzard, I.R., Clark, D., McLean, N. and Smith, M.R., 1995. Control of phosphorus inputs to a freshwater lake: a case study. Aquaculture Research, 26: 527-538. DOI: 10.1111/j.1365-2109.1995.##McKinnon, D., Trott, L., Duggan, S., Brinkman, R., Alongi, D., Castine, S. and Patel, F., 2008. The environmental impacts of sea cage aquaculture in a Queensland context-Hinchinbrook Channel case study (SD57/06) Final Report.##Mente, A.E., Graham, J., Pierce, A.E., Santos, A.E. and Neofitou, C., 2006. Effect of feed and feeding in the culture of salmonids on the marine aquatic environment: a synthesis for European aquaculture. Aquacult Int, 14: 499-522. DOI: 10.1007/s10499-006-9051-4.##Nash, C.E., editor, 2001. The net-pen salmon farming industry in the Pacific Northwest. U.S. Dept. of Commer., NOAA Tech. Memo. NMFS-NWFSC-46.##Nash, C.E., Burbridge, P.R. and Volkman, J.K., 2005. Guidelines for ecological risk assessment of marine fish aquaculture. U.S. Department of Commerce. NOAA Technical Memorandum NMFS-NWFSC-71. ##Nasrollahzadeh Saravi, Bin, H., Din, Z., Foong, S.Y. and Makhlough, A., 2008. Trophic status of the Iranian Caspian Sea based on water quality parameters and phytoplankton diversity. Journal of Continental Shelf Research, 28: 1153-1165. DOI: 10.1016/j.csr.2008.02.015.##Ola, H., Hall, O.J., 1994. Chemical fluxes and mass balances in a marine fish cage farm. III. Silicon. Aquaculture, 120, 305-318. DOI: 10.1016/0044-8486(94)90087-6.##Olsen, Y. and Olsen, L. M., 2008. Environmental impact of aquaculture on coastal planktonic ecosysytems. In: Tsuka-moto, K., Kawamura, T., Takeuchi, T., Beard, T. D. and Kaiser, M. J (eds) Fisheries for global welfare and environment. Proc 5th World Fisheries Congress 2008, Terrapub, Tokyo, 181-196.##Paterson, M.J., Podemski, C.O., WESSON, L.J. and Dupuis, A.P., 2011. The effects of an experimental freshwater cage aquaculture operation on Mysis diluviana. Journal of plankton research, 33: 1: 25-36. DOI: 10.1093/plankt/fbq096.##Pierre, A.C., Yuan-Chao, A.H., Chaolum, A.C. and Yang, C.C., 2015. Integrated assessment of sustainable marine cage culture through system dynamics modeling. Ecological Modelling, 299: 140-146. DOI: 10.1016/j.ecolmodel.2014.12.019. ##Pittenger, R., Anderson, B., Benetti, D.D., Dayton, P., Dewey, B., Goldburg, R., Rieser, A., Sher, B. and Sturgulewski, A., 2007. Sustainable marine aquaculture: Fulfilling the promise: managing the risks. Marine Aquaculture Task Force, Available at: www. pewtrusts.org/uploadedFiles/wwwpewtrustsorg/ Reports/Protecting_ocean_life/Sustainable Marine Aquaculture final. 1, 07.pdf. Accessed: 27.##Plavan, G., Nicoara, M., Apetroaiei, N. and Plavan, O., 2012. The effect of fish cage aquaculture on the profound macrozoobenthos in the oligo-mesotrophic reservoir Izvoru Muntelui Bicaz (Romania). Carpathian Journal of Earth and Environmental Sciences, 7(2), 145-148.##Price, C.S. and Morris, J.A., 2013. Marine Cage Culture and the Environment. Center for Coastal Fisheries and Habitat Research, 158 P.##Reigstad, M., Wassmann, P., Wexels Riser, C., Øygarden, S. and Rey, F., 2002. Variations in hydrography, nutrients and chlorophyll a in the marginal ice zone and the central Barents Sea. Journal of Marine Sysytems, 38: 9-29. DOI: 10.1016/S0924-7963(02)00167-7.##Rensel, J.E.J., Kiefer, D.A. Forster, J.R.M., Woodruff, D.L. and Evans, N.R., 2007. Offshore finfish mariculture in the Strait of Juan de Fuca. Bulletin of the Fisheries Research Agency, 19: 113-129.##Salazar, F.J. and saldana, R.C., 2007. Characterization of manures from Wash cage farming in Chile. Bioresource Technology 98, 3322-3327. DOI: 10.1016/J.BIORTECH.2006.07.003.##Santos, R. M., Rocha, G. S., Rocha, O. and Santos-Wisniewski, M. J., 2009. Influence of net cage fish cultures on the diversity of the zooplankton community in the Furnas hydroelectric reservoir, Areado, MG, Brazil. Aquaculture Research, 40: 753-776. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2008.02148.x.##Sarà, G., 2007. Ecological effects of aquaculture on living and non-living suspended fractions of the water column: a meta-analysis. Water Research, 41: 3187-3200. DOI: 10.1016/j.watres.2007.05.013.##Shiganova, T.A., Dumont, H.J., Sokolsky, A.F., Kamakin, A.M., Tinenkova, D. and Kurasheva, E. K., 2004. Population dynamics of Mnemiopsis leidyi in the Caspian Sea, and effects on the Caspian ecosystem. In: Dumont, H., Shiganova, T. A., Niermann, U., (eds) In Aquatic Invasions in the Black, Caspian, and Mediterranean Seas, 35: Kluwer, Dordrecht,71-111. DOI: 10.1007/1-4020-2152-6_3.##Smith, J.N., Yeats. P.A. and Milligan, T.G., 2005. Sediment geochronologies for ﬁsh farm contaminants in Line Kiln Bay, Bay of Fundy. Hidrobiology Environmental Chemistry, 5:221-38. DOI: 10.1007/b136012.##Soto, D. and Norambuena, F., 2004. Evaluation of salmon farming effects on marine systems in the inner seas of southern Chile: A large-scale mensurative experiment. Journal of Applied Ichthyology, 20: 493-501. DOI: 10.1111/j.1439-0426.2004.00602.x.##Sowles, J.W., 2005. Assessing nitrogen carrying capacity for Blue Hill Bay, Maine: A management case history. Pages 359-380 in B.T. Hargrave, editor. Environmental effects of marine finfish aquaculture. Handbook of Environmental Chemistry, Volume 5M. Springer-Verlag, Berlin.##Stirling, H.P. and Dey, T., 1990. Impact of intensive cage fish farming on phytoplankton and periphyton of a Scottish Freshwater loch. Hydrobiologia, 190: 193-214. DOI: 10.1007/BF00008187.##Strain, P. and Hargrave, B., 2005. Salmon aquaculture, nutrient fluxes and ecosystem processes in southwestern New Brunswick. 29-57 in B.T. Hargrave, editor. Environmental effects of marine finfish aquaculture. Handbook of Environmental Chemistry, Volume 5M. SpringerVerlag, Berlin.##Stucchi, D., Sutherland, T.A., Levings, C. and Higgs, D. 2005. Near-ﬁeld depositional model for salmon aquaculture waste (in this volume). Springer, Berlin Heidelberg New York.##Tett, P., 2008. Fish farm waste in the ecosystem. 1-46 in M. Holmer, K. Black, C.M. Duarte, N. Marba, and I. Karakassis, editors. Aquaculture in the Ecosystem. Springer, Dordrecht, London.##Tlusty, M.F., Pepper, V.A. and Anderson. M.R., 2005. Reconciling aquaculture’s influence on the water column and benthos of an estuarine fjord-A case study from Bay d’Espoir, Newfoundland. 115-128 in B.T. Hargrave, editor. Environmental effects of marine finfish aquaculture. Handbook of Environmental Chemistry, Volume 5M. SpringerVerlag, Berlin.##Troell, M., Joyce, A., Chopin, T., Neori, A., Buschmann, A. H. and Fang, J.G., 2009. Ecological engineering in aquaculture potential for integrated multi-trophic aquaculture (IMTA) in marine offshore systems. Aquaculture, 297: 1-9. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2009.09.010.##Vargas-Machuca, S. C., Ponce-Palafox, J.T. Arredondo-Figueroa, J.L., Chavez-Ortiz, E.A. and Vernon-Carter, E.J., 2008. Physicochemical water parameters variation in the floating cages of snappers (Lutjanus peru and L. guttatus) farmed in tropical sea. Revista Mexicana De Ingenieria Quimica, 7: 237-242.##Venturoti, G.P. Veronez, A.C., Salla, R.V. and Gomes, L.C., 2014. Phosphorus, total ammonia nitrogen and chlorophyll a from ﬁsh cages in a tropical lake (Lake Palminhas, Espirito Santo, Brazil). Aquaculture Research, 1-15. DOI: 10.1111/are.12502.##Vigen, L., 2008. European Master in Aquaculture and Fisheries. Department of biology university of Bergen. 73 P.##Wetzel, R. G. and Likens, H., 1991. Limnological analysis. Springer-Verlag, 391 P.##Wetzel, R.G., 2001. Limnology of Lake and River Ecosystems. Third Edition. Academic Press, San Diego, CA, 1006 P.##Whitmarsh, D. J., Cook, E.J. and Black, K.D., 2006. Searching for sustainability in aquaculture: an investigation into the economic prospects for an integrated salmon-mussel production system. Marine Policy, 30: 293-298. DOI: 10.1016/j.marpol.2005.01.004.##Wu, R.S.S., 1995. The Environmental Impact of Marine Fish Culture: Towards a Sustainable Future. Marine Pollution Bulletin, 31(4-12), 159-166. Doi: 10.1016/0025-326X(95)00100-2.www.azerbaijan.az/_Geography/_Caspian/_caspian_e.html?caspian_05.##Yabanli, M. and Egemen, O., 2009. Monitoring the environmental impacts of marine aquaculture activities on the water column and sediment in vicinity of the Karaburun Peninsula (Turkey-Eastern Aegean Sea). Journal of Fisheries Sciences, 3: 207-213. DOI: 10.3153/jfscom.2009025.##Yokoyama, H., Takashi, T., Ishishi, Y. and Abo, K., 2009. Effects of restricted feeding on growth of red sea bream and sedimentation of aquaculture wastes. Aquaculture, 286: 80-88. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2008.09.010.##Yucel-Gier, G., Kucuksezgin, F. and Kocak, F., 2007. Effects of fish farming on nutritents and benthic community structure in the Eastern Aegean (Turkey). Aquaculture Research, 38: 256-267. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2007. 01661.x.##Zaker, N.H., Ghaffari, P., Jamshidi, S. and Nouranian, M., 2011. Currents on the Southern Continental Shelf of the Caspian Sea off Babolsar, Mazandaran, Iran. Journal of coastal Research, 64: 1989-1997.##Zanatta, A. S., Perbiche-Neves, G., Ventura, R., Ramos, I. P. and Carvalho, E. D., 2011. Effects of a small fish cage farm on zooplankton assemblages (Cladocera and Copepoda: Crustacea) in a subtropical reservoir (SE Brazil). Pan-American Journal of Aquatic Sciences, 5 (4): 530-539. ##

مقاله علمی – پژوهشی: تاثیر زمان آبکافت بر فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی پروتئین آبکافتی حاصل از سر ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) Effect of hydrolysis time on the antioxidant activity of Common carp (Cyprinus carpio) head protein hydrolysate 1 1 در مطالعه حاضر فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی غلظت‌‌های مختلف پروتئین آبکافتی حاصل از سر ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) در زمان‌‌های مختلف آبکافت مورد بررسی قرار گرفت. بدین منظور 8 قطعه کپور معمولی با میانگین وزن 034/0±766/0 کیلوگرم از بازار تهیه شدند، سپس آبکافت سر ماهی کپور معمولی با آنزیم آلکالاز با غلظت 1 درصد (حجمی/وزنی) در دمای 55 درجه سانتی‌‌گراد و pH 8 در زمان‌‌های مختلف (30، 60، 120 و 180 دقیقه) انجام شد. نتایج آنالیز تقریبی نشان داد که در نتیجه آبکافت، درصد پروتئین (از 9/1±31/58 به 49/1±26/75 درصد) به طور معنی‌‌داری افزایش و مقدار چربی و خاکستر (به‌‌ترتیب از 87/0±46/16 به 97/0±37/2 و از 64/0±16/27 به 63/1±34/25 درصد) به طور معنی‌‌داری کاهش یافت (05/0p<). همچنین محتوای پروتئین محلول و درجه آبکافت با افزایش مدت زمان آبکافت به طور معنی‌‌داری افزایش یافت به‌طوری‌‌که بیشترین پروتئین محلول 19/0±01/23 میلی‌‌گرم/ میلی‌‌لیتر و درجه آبکافت 86/0±67/49 درصد در زمان 180 دقیقه به‌دست آمد (05/0p<). درصد مهار رادیکال آزاد DPPH نیز با افزایش غلظت و افزایش مدت زمان آبکافت، به طور معنی‌‌داری افزایش یافت (05/0p<) و بهترین زمان برای شاخص قدرت مهار رایکال آزاد DPPH، 180 دقیقه و مقدار IC50 در حذف این رادیکال، 08/2 میلی‌‌گرم بر میلی‌‌لیتر تعیین شد. همچنین با افزایش غلظت و زمان آبکافت، قدرت کاهندگی یون آهن سه ظرفیتی و فعالیت مهارکنندگی رادیکال ABTS نیز افزایش معنی‌‌داری پیدا کردند (05/0p<). به طور کلی، با توجه به عملکرد مناسب پروتئین آبکافتی سر ماهی کپور معمولی در حذف رادیکال‌‌های آزاد DPPH و ABTS و قدرت کاهندگی آهن سه ظرفیتی، می‌‌توان اظهار داشت که این پروتئین آبکافتی می‌‌تواند به عنوان یک افزودنی غذایی با عملکرد آنتی‌‌اکسیدانی مطلوب مورد استفاده قرار گیرد. 2 In the present study, the antioxidant activity of different concentrations of protein hydrolysate from Common carp (Cyprinus carpio) head at different hydrolysis time was investigated. For this purpose, 8 Common carp fish with average weight of 0.766±0.034 kg were prepared from market. Fish heads were hydrolyzed by Alcalase (1% v/w at 55˚C and pH 8) at different hydrolysis times (30, 60, 120 and 180 min). The result of proximate analysis showed that the protein content increased significantly (from 58.31±1.9 to 75.26±1.49%) as a result of hydrolysis, while the amount of fat and ash decreased significantly (from 16.46±0.87 to 2.37±0.97%; from 27.16±0.64 to 25.34±1.63%, respectively, p<0.05). Also, as the duration of hydrolysis increased, the amount of soluble protein and the degree of hydrolysis increased significantly, so that the highest soluble protein 23.01±0.19 mg/ml and the highest degree of hydrolysis 49.67±0.86% were obtained at the time of 180 min. DPPH radical scavenging activity of protein hydrolysate showed significant increasing trend at different hydrolysis times and different concentrations (p<0.05). The optimum time for DPPH radical scavenging activity (DPPH) was determined at 180 min and IC50 value was obtained 2.08 mg/ml. In addition, with increasing concentration and duration of hydrolysis, the ferric ion reduction power and ABTS radical scavenging activity increased significantly (p<0.05). In general, due to the proper activity of different concentrations of Common carp head protein hydrolysate on DPPH and ABTS radicals scavenging and reduction of ferric ion, it can be stated that this protein hydrolysate can be considered as a dietary supplement with desirable antioxidant function. 29 42 2018/05/222020/01/152020/05/8 1399/2/19 2021/02/282021/02/282021/02/28 1399/12/10 سکینه یگانه Sakineh Yeganeh دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری Iran skyeganeh@gmail.com مینا اسمعیلی خاریکی Mina Esmaeili Kharyeki دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری Iran mina.smaily@gmail.com حامد احمدی hamed Ahmadi دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری Iran hamed70620@gmail.com Protein hydrolysate Antioxidant activity Common carp head Free radical scavenging Ferric ion reduction power پروتئین آبکافتی فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی سر کپور معمولی قدرت مهار رادیکال آزاد قدرت کاهندگی آهن ##اسمعیلی خاریکی، م.، رضایی، م.، خدابنده، ص. و معتمدزادگان، ع.، 1396. فعالیت آنتی‌اکسیدانی پروتئین هیدرولیزشده سر ماهی هوور مسقطی (Katsuwonus pelamis) ، نشریه علوم و فنون شیلات، ۷ (۱): 64-57. ##اصغرنیا، م.، یگانه، س.، جعفرپور، س. و صفری، ر.، 1396. استفاده از روش شیمیایی به منظور تولید پروتئین آبکافت‌شده از امعاء و احشاء فیتوفاگ (Hypophthalmichthys moltirix) و استفاده از آن به عنوان محیط کشت Listeria monocytogenes‌‌‌. مجله علمی شیلات ایران، 26(3): 23-11.##بخشان، ع.، علیزاده، ا. و طاهری، ع.، 1392. بررسی خواص آنتی‌اکسیدانی پروتئین آبکافت به‌دست آمده از ضایعات در فرایند فیله کردن ماهی آزاد (Salmo salar). پاتوبیولوژی مقایسه‌ای علمی پژوهشی، 1: 1152-1143.##جوادیان، س.، روشن، ع.، اویسی‌پور، م.، کشاورز، م. و نعمتی، م.، 1394. بهینه‌سازی تولید پروتئین هیدرولیز‌شده کیلکای معمولی (Clupeonella cultiventris) با استفاده از آنزیم پرومود. مجله علمی پژوهشی زیست شناسی دریا، 26: 90-83.##حسینی، ش.، غرقی، ا.، جمال‌زاده، ح.، صفری، ر. و حسینی، ش. 1391. مقایسه پروتئین هیدرولیزشده از اندرونه و سر ماهی فیتوفاگ (Hypophthalmichthys molitrix) با استفاده از آنزیم آلکالاز و آنزیم‌های داخلی بافت. مجله علمی شیلات ایران، 3: 62-55.##خواجوی، س.، زکی‌پور رحیم‌آبادی، ا.، غفاری مقدم، م.، شهرکی، ه.، میر، ل. و زند کریمی، م.، 1395. اثر شرایط هیدرولیز بر فعالیت آنتیاکسیدانی هیدرولایزات پروتئین (Schizothorax zarudnyi) ضایعات ماهی شیزوتراکس. شیلات (مجله منابع طبیعی ایران)، 69(3): 358-351. ##ریحانی‌پول، س. و جعفرپور.، 1396. اثر درجه آبکافت بر خواص عملکردی و فعالیت آنتی‌اکسیدانی پروتئین آبکافتی تولید شده از فریم و سر ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). علوم و صنایع غذایی، 68(14): 124-113.##سال‌نامه آماری سازمان شیلات ایران.، 1397-1392. معاونت برنامه‌ریزی و مدیریت منابع، 64 ص.##علی‌نژاد، م.، معتمدزادگان، ع. و رضایی، م.، 1395. خواص کاربردی و فعالیت آنتی‌اکسیدانی پروتئین هیدرولیزشده کوسه چاته سفید (Carcharhinus dussumieri). فصل‌نامه علوم و صنایع غذایی، 50(13): 169-159.##قلیچی، س.، شعبان‌پور، ب. و پورعاشوری، پ.، 1397. ترکیب تقریبی و آمینواسیدی، قدرت آنتی‌اکسیدانی، قدرت مهارکنندگی آنزیم مبدل آنژیوتانسین و قدرت ضدباکتریایی پروتئین هیدرولیزشده تخم ماهی کپور معمولی با آنزیم آلکالاز. نشریه علوم و فنون شیلات، 7(2): 155-145.##مصباح، م.، محمدی، ق.، خواجه، غ. و مبنی، آ.، 1395. بررسی خصوصیات فیزیکوشیمی مایع منی کپور معمولی پرورشی استان خوزستان در فصل زمستان، مجله دامپزشکی ایران، 4: 117-109.##یاسمی، م.، قمی مرزدشتی، م.، دارنهال، ط.، محمدزاده، ب. و امینی، ه. 1392. مقایسه راندمان بازیافت و درجه هیدرولیز پروتئین‌های موجود در امعا و احشای ماهی کپور سرگنده (Aristichthys nobilis) با استفاده از آنزیم. مجله علمی شیلات ایران، 1: 156-149.##Ahn, C.B., Lee, K.H. and Je, J.Y., 2010. Enzymatic production of bioactive protein hydrolysates from tuna liver: effects of enzymes and molecular weight on bioactivity. International Journal of Food Science & Technology, 45(3): 562-568. Doi: 10.1111/j.1365-2621.2009.02166.x##Alemán, A., Giménez, B., Montero, P. and Gómez-Guillén, M.C., 2011. Antioxidant activity of several marine skin gelatins. LWT-Food Science and Technology, 44(2): 407-413. Doi: 10.1016/j.lwt.2010.09.003##Amza, T., Balla, A., Tounkara, F., Man, L., and Zhou, H.M., 2013. Effect of hydrolysis time on nutritional, functional and antioxidantproperties of protein hydrolysates prepared from gingerbread plum (Neocarya macrophylla) seeds. International Food Research Journal, 20(5): 2081-2090. ##AOAC., 2000. Official Methods of Analysis, Washington, DC. USA, Association of Analytical Chemists.##Benjakul, S. and Morrissey, M.T., 1997. Protein hydrolysates from Pacific whiting solid wastes. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 45(9): 3423-3430. Doi: 10.1021/jf970294g##Bougatef, A., Nedjar-Arroume, N., Manni, L., Ravallec, R., Barkia, A., Guillochon, D. and Nasri, M., 2010. Purification and identification of novel antioxidant peptides from enzymatic hydrolysates of sardinelle (Sardinella aurita) by-products proteins. Food Chemistry, 118: 559–565. Doi: 10.1016/j.foodchem.2009.05.021##Chai, T.T., Tong, S.R., Law, Y.C., Ismail, N.I.N. and Wong, F.C., 2015. Anti-oxidative, metal chelating and radical scavenging effects of protein hydrolysates from blue-spotted stingray. Tropical Journal of Pharmaceutical Research, 14(8): 1349–1355. Doi: 10.4314/tjpr.v14i8.5##Chalamaiah, M., Kumar, D., Hemalatha, R. and Jyothirmayi, T., 2012. Fish protein hydrolysates: proximate composition, amino acid composition, antioxidant activities and applications: a review. Food Chemistry, 135(4): 3020-3038. Doi: 10.1016/j.foodchem.2012.06.100##Chalamaiah, M., Narsing Rao. D.G., Rao, D.G. and Jyothirmayi, T., 2010. Protein hydrolysates from meriga (Cirrhinus mrigala) egg and evaluation of their functional properties. Food Chemistry, 120(1): 652‐657. Doi: 10.1016/j.foodchem.2009.10.057##Chalamaiah, M., Jyothirmayi, T., Diwan, P.V. and Kumar, B.D., 2015. Antioxidant activity and functional properties of enzymatic protein hydrolysates from common carp (Cyprinus carpio) roe (egg). Journal of Food Science & Technology, 52(9): 5817-5825 Doi: 10.1007/s13197-015-1714-6 ##Dekkers, E., Raghavan, S., Kristinsson, H.G. and Marshall, M.R., 2011. Oxidative stability of mahi mahi red muscle dipped in tilapia protein hydrolysates. Food Chemistry, 124: 640-645. Doi: 10.1016/j.foodchem.2010.06.088.##Dong, S. Y., Zeng, M. Y., Wang, D. F., Liu, Z. Y., Zhao, Y. H. and Yang, H. C. 2008. Antioxidant and biochemical properties of protein hydrolysates prepared from Silver carp (Hypophthalmichthys molitrix). Food Chemistry, 107: 1485-1493. Doi: 10.1016/j.foodchem.2007.10.011##FAO, 2016. Global aquaculture production (fish stat), http://www.fao.org/3/a-i5555e.pdf.##Foh, M.B.K., Qixing, J., Amadou, I. and, Xia, W.S., 2010. Influence of ultrafiltration on antioxidant activity of tilapia (Oreochromis niloticus) protein hydrolysate. Advance Journal of Food Science and Technology, 2(5): 227-235.##García-Moreno, P.J., Batista, I., Pires, C., Bandarra, N.M., Espejo-Carpio, F.J., Guadix, A. and Guadix, E.M., 2014. Antioxidant activity of protein hydrolysates obtained from discarded Mediterranean fish species. Food Research International, 65: 469-476. Doi: 10.1016/j.foodres.2014.03.061##Guerard, F., Guimas, L. and Binet, A., 2002. Production of tuna waste hydrolysates by a commercial neutral protease preparation. Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, 19–20: 489–498. Doi: 10.1016/S1381-1177(02)00203-5##Hoyle, N.T. and Merritt, J.H., 1994. Quality of fish protein hydrolysate from herring (Clupea harengus). Journal of Food Science, 59: 76–79. Doi: 10.1111/j.1365-2621.1994.tb06901.x##Hsu, K.C., 2010. Purification of antioxidative peptides prepared from enzymatic hydrolysates of tuna dark muscle by-product. Food Chemistry, 122(1): 42-48. Doi: 10.1016/j.foodchem.2010.02.013##Je, J. Y., Qian, Z. J., Byun, H. G. and Kim, S.K., 2007. Purification and characterization of an antioxidant peptide obtained from tuna backbone protein by enzymatic hydrolysis. Process Biochemistry, 42(5): 840-846. Doi: 10.1016/j.procbio.2007.02.006##Jiang, H., Tong, T., Sun, J., Xu, Y., Zhao, Z.H. and Liao, D., 2014. Purification and characterization of antioxidative peptides from round scad (Decapterus maruadsi) muscle protein hydrolysates. Food Chemistry, 154(1): 158‐63. Doi: 10.1016/j.foodchem.2013.12.074##Jun, S.Y., Park, P.J., Jung, W.K., Kim, S.K., 2004. Purification and characterization of an antioxidative peptide from enzymatic hydrolysate of yellowfin sole (Limanda aspera) frame protein. European Food Research and Technology, 219(1): 20-26. Doi: 10.1007/s00217-004-0882-9##Kim, J. and Kim, S.K., 2013. Bioactive peptides from marine sources as potential anti-inflammatory therapeutics. Current Protein and Peptide Science, 14(3): 177-182. Doi: 10.2174/13892037113149990039##Klompong, V., Benjakul, S., Kantachote, D. and Shahidi, F., 2007. Antioxidative activity and functional properties of protein hydrolysate of yellow stripe trevally (Selaroides leptolepis) as influenced by the degree of hydrolysis and enzyme type. Food Chemistry, 102: 1317–1327.Doi: 10.1016/j.foodchem.2006.07.016##Kristinsson, H.G. and Rasco, B.A. 2000. Biochemical and functional properties of Atlantic salmon (Salmo salar) muscle proteins hydrolyzed with various alkaline proteases. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 48: 657-666. Doi: 10.1021/jf990447v##Kusumaningtyas, E., Nurilmala, M. and Sibarani, D., 2019. Antioxidant and antifungal activities of collagen hydrolysates from skin of milkfish (Chanos chanos) hydrolyzed using various bacillus proteases. In IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, 278(1): 1-8. Doi: 10.1088/1755-1315/278/1/012040##Lowry, O.H., Rosebrough, N.J., Farr, A.L. and Randall, R.J., 1951. Protein measurement with the Folin phenol reagent. Journal of Biological Chemistry, 193: 265-275.##Mishra, K., Ojha, H. and Chaudhury, N.K., 2012. Estimation of antiradical properties of antioxidants using DPPH assay: A critical review and results. Food Chemistry, 130: 1036-1043. Doi: 10.1016/j.foodchem.2011.07.127##Nalinanon, S., Benjakul, S., Kishimura, H. and Shahidi, F., 2011. Functionalities and antioxidant properties of protein hydrolysates from the muscle of ornate threadfin bream treated with pepsin from skipjack tuna. Food Chemistry, 124(4): 1354-1362. Doi: 10.1016/j.foodchem.2010.07.089##Nguyen, H.T.M., Pérez-Gálvez, R. and Bergé, J.P., 2012. Effect of diets containing tuna head hydrolysates on the survival and growth of shrimp Penaeus vannamei. Aquaculture, 324: 127-134. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2011.11.014##Ovissipour, M., Abedian, A.M., Motamedzadegan, A., Rasco, B., Safari, R. and Shahiri, H., 2009a. The effect of enzymatic hydrolysis time and temperature on the properties of protein hydrolysates from the Persian sturgeon (Acipenser persicus) viscera. Food Chemistry, 115: 238–242. Doi: 10.1016/j.foodchem.2008.12.013##Ovissipour, M., Benjakul, S., Safari, R. and Motamedzadegan, A., 2010. Fish protein hydrolysates production from yellowfin tuna (Thunnus albacares) head using Alcalase and Protamex. International Aquatic Research, 2: 87-95.##Ovissipour, M., Rasco, B., Shiroodi, S.G., Modanlow, M., Gholami, S. and Nemati, M., 2012a. Antioxidant activity of protein hydrolysates from whole anchovy sprat (Clupeonella engrauliformis) prepared using endogenous enzymes and commercial proteases. Journal of the Science of Food and Agriculture, 93(7): 1718–1726. Doi: 10.1002/jsfa.5957##Ovissipour, M., Safari, R., Motamedzadegan, A., Rasco, B., Pourgholam, R., Mohagheghi, E. and Esmaeili Mulla, A., 2009b. Use of hydrolysates from Yellowfin tuna (Thunnus albacares) fisheries by-products as a nitrogen source for bacteria growth media. International Aquatic Research, 1: 73-77.##Ovissipour, M., Safari, R., Motamedzadegan, A. and Shabanpour, B., 2012b. Chemical and biochemical hydrolysis of Persian sturgeon (Acipenser persicus) visceral protein. Food and Bioprocess Technology, 5(2): 460-465. Doi: 10.1007/s11947-009-0284-x##Ovissipour, M., Taghiof, M., Motamedzadegan, A. and Rasco, B., 2009c. Optimization of enzymatic hydrolysis of visceral waste protein of beluga (Huso huso) using alcalase. International Aquatic Research, 1: 31-38. ##Prihanto, A.A., Nurdiani, R. and Bagus, A.D., 2019. Production and characteristics of fish protein hydrolysate from parrot fish (Chlorurus sordidus) head. PeerJ, 7:e8297 Doi: 10.7717/peerj.8297##Raghavan, S., Kristinsson, H. G. and Leeuwenburgh, C., 2008. Radical scavenging and reducing ability of tilapia (Oreochromis niloticus) protein hydrolysates. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 56: 10359–10367. Doi: 10.1021/jf8017194##Rajapakse, N, Jung, W.K., Mendis, E., Moon, S.H. and Kim S.K., 2005. A novel anticoagulant purified from fish protein hydrolysates inhibits factor XIIa and platelet aggregation. Life Science, 76(22): 2607‐2619. Doi: 10.1016/j.lfs.2004.12.010##Ren, J., Zhao, M., Shi, J., Wang, J., Jiang, Y., Cui, C., Kakuda, Y. and Xue, S.J. , 2008. Purification and identification of antioxidant peptides from grass carp muscle hydrolysates by consecutive chromatography and electrospray ionization-mass spectrometry. Food Chemistry, 108: 727–736. Doi: 10.1016/j.foodchem.2007.11.010##Shahidi, F. and Zhong, Y., 2008. Bioactive peptides. The Journal of AOAC International, 91(4): 914‐31. ##Shimada, T., Fujikawa, K., Yahara, K. and Nakamura, T., 1992. Antioxidant properties of xanthan on the autoxidation of soybean oil in cyclodextrin emulsion. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 40: 945–948. Doi: 10.1021/jf00018a005##Souissi, N., Bougatef, A., Triki-Ellouz, Y. and Nasri, M., 2007. Biochemical and functional properties##of Sardinella (Sardinella aurita) by-product hydrolysates. Food Technology and Biotechnology, 45: 187-##194.##Surai, P., 2002. Selenium in poultry nutrition I. Antioxidant properties, deficiency and toxicity. Worlds Poultry Science Journal Wyton. 58: 333-348. Doi: 10.1079/WPS20020026##Wasswa, J.B., Tang, J., Gu, X.H., and Yuan, X.G., 2007. Influence of the extent of enzyme hydrolysis on the functional properties of protein hydrolysate from grass carp (Ctenopharyngodon idella) skin. Food Chemistry, 104(4): 1698-1704. Doi: 10.1016/j.foodchem.2007.03.044##Yang, J.I., Liang, W.S., Chow, C.J. and Siebert, K.J., 2009. Process for the production of tilapia retorted skin gelatin hydrolysates with optimized antioxidative properties. Process Biochemistry, 44 (10): 1152-1157. Doi: 10.1016/j.procbio.2009.06.013##You, L., Zhao, M., Cui, C., Zhao, H., Yang, B., 2009. Effect of degree of hydrolysis on the antioxidant activity of loach (Misgurnus anguillicaudatus) protein hydrolysates. Innovative Food Science and Emerging Technologies, 10: 235–240. Doi: 10.1016/j.ifset.2008.08.007##You, L., Zhao, M., Regenstein, J.M. and Ren, J., 2010. Purification and identification of antioxidative peptides from loach (Misgurnus anguillicaudatus) protein hydrolysate by consecutive chromatography and electrospray ionization-mass spectrometry. Food Research International, 43: 117–1173. Doi: 10.1016/j.foodres.2010.02.009 ##

مقاله علمی – پژوهشی: تاثیر غلظت‌های متفاوت نانو ذرات سلنیوم و روی بر فاکتورهای رشد، بازماندگی و ترکیبات شیمیایی لاشه میگوی پا سفید غربی پرورشی ((Litopenaeus vannamei The effects of different concentrations of selenium and zinc nanoparticles on growth performance, survival and chemical composition of Whiteleg shrimp (Litopenaeus vannamei) 1 1 این مطالعه به منظور بررسی تأثیر غلظت‌های متفاوت نانو ذرات سلنیوم و روی بر فاکتورهای رشد، بازماندگی و ترکیبات شیمیایی لاشه میگوی پا سفید غربی انجام شد. برای این منظور میگوها با میانگین وزنی 2/0±1/5گرم در 12 تانک فایبرگلاس (300 لیتری) با تراکم 25 عدد میگو توزیع و طی مدت 56 روز با غلظت‌های متفاوت نانو ذرات سلنیوم و روی در چهار تیمار و هر تیمار دارای 3 تکرار شامل: 0 (شاهد)، تیمار 1 (3/0 میلی‌گرم/کیلوگرم خوراک نانوذرات سلنیوم)، تیمار 2 (15/0 میلی‌گرم نانو سلنیوم+ 15 میلی‌گرم/ کیلوگرم خوراک نانو روی) و تیمار 3 (30 میلی‌گرم/ کیلوگرم خوراک نانو ذرات روی) غذادهی شدند. بر اساس این نتایج درصد افزایش وزن (BWI)، افزایش وزن بدن، میزان نرخ رشد ویژه (SGR) و ضریب تبدیل غذایی (FCR) در تیمار 2 (15/0 میلی‌گرم نانو سلنیوم+ 15 میلی‌گرم نانو روی) نسبت به گروه شاهد و تیمارهای 1 (3/0 میلی‌گرم نانوذرات سلنیوم) و 3 (30 میلی‌گرم نانو ذرات روی) اختلاف معنی‌داری داشت (05/0p<). همچنین اختلاف معنی‌‌داری در درصد بازماندگی بین تیمارهای 1 و 2 نسبت با تیمارهای شاهد و 3 مشاهده شد (05/0p<). بررسی آماری نشان داد که اختلاف معناداری در درصد پروتئین و چربی لاشه میان میگو پا سفید غربی تغذیه شده با جیره‌‌های حاوی سطوح مختلف نانو ذرات سلنیوم و روی با تیمار شاهد وجود دارد (05/0p<). در مجموع، تأثیر سطوح مختلف نانو ذرات سلنیوم و روی به‌ویژه در تیمار 2 بر شاخص‌های رشد و بازماندگی و ترکیبات شیمیایی لاشه میگوی پا سفید غربی کاملاً مثبت و معنی دار ارزیابی شد. 2 This study was conducted to evaluate the effect of different concentrations of selenium and zinc nanoparticles on growth performance, survival and chemical composition of Whiteleg shrimp (Litopenaeus vannamei). For this purpose, shrimp with an average weight of 5.1±0.2 g were distributed in 12 fiberglass tanks with 25 shrimp density and were fed for 56 days with different concentrations of selenium and zinc nanoparticles in four groups with three replicate including 0 (control), T1 (0.3 mg/kg of selenium nanoparticl), T2 (0.15 mg/kg of selenium nanoparticle+ 15 mg/kg of zinc nanoparticl) and T3 ( 30 mg/kg of zinc nanoparticl). Based on these results, weight gain increasing, specific growth rate and feed conversion ratio in T2 treatment compare to T1, T3 and control treatments (p<0.05). Also, there is significant differences in survival rate between T1 and T2 treatments compared to T3 and control (p<0.05). Statistical analysis showed that there was a significant difference in protein and lipid carcass percentage between shrimp-fed diets containing different levels of selenium and zinc nanoparticles compared to control treatment. In general, the effect of different concentrations of selenium and zinc nanoparticles, especially in the T2 on growth performance, survival and chemical composition was positively and significantly evaluated. 43 51 2018/05/222020/01/152020/05/82020/05/4 1399/2/15 2021/02/282021/02/282021/02/282021/02/28 1399/12/10 میلاد کرم زاده milad karamzadeh دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس Iran milad.karamzadeh@yahoo.com مازیار یحیوی Maziar Yahyavi دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس Iran maziar_yahyavi@yahoo.com علیرضا سالارزاده Alireza Salarzadeh دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس Iran reza1375bandar@yahoo.com دلارام نخبه زارع delaram nokhbezare دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس Iran delaram.zare@gmail.com Selenium nanoparticle zinc nanoparticle Litopenaeus vannamei Growth performance Chemical composition میگوی پا سفید غربی نانو سلنیوم نانو روی شاخص‌‌های رشد ترکیبات بدن ##احمدوند، ش.، کرامت امیرکلایی، ع.، اورجی، ح. و احمدوند، ا.، 1394. بررسی اثرات نانوذرات سلنیوم در مقایسه با تیمارهای حاوی فرم آلی سلنیوم (Selemax) بر عملکرد شاخص های رشد ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). فصلنامه محیط زیست جانوری. 7(2): 189-183.##شبرنگ هره دشت، م. و میروافقی، ع.، 1391. کاربرد فناوری های نانو در شیلات. ماهنامه فناوری نانو. 11(6): 13-15. ##صفابخش، م.ر.، بحری، ا.م.، محسنی، م. و محمدی زاده، ف.، 1398. تاثیر سلنیوم بر شاخص های رشد، ترکیب لاشه و برخی از شاخص های خونی فیل ماهیان جوان پرورشی. نشریه توسعه آبزی پروری. 13(1): 89-101. ##گل آقایی، م.، عادل، م. و حافظیه، م.، 1395. تاثیر مصرف پودر سیر خام (Allium sativum) بر شاخصهای رشد، بازماندگی و ترکیب بدن میگوی پا سفید (Litopenaeus vannamei) پرورش یافته با آب دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. 25(2): 150-143. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110246##یزدانی ساداتی، م.ع. و رضایی، ا.، 1393. تاثیر جایگزینی پروتئین کنستانتره سویا بجای پودر ماهی بر شاخص‌‌های رشد و ترکیب لاشه تاسماهی سیبری. مجله علمی شیلات ایران. 23(4):73-85. DOI: 10.22092/ISFJ.2015.103170 ##Ahsan, U., Kamran, Z., Raza, I., Ahmad, S., Babar, W., Riaz, M.H. and Iqbal, Z., 2014. Role of selenium in male reproduction-A review. Animal Reproduction Science, 146: 55-62. DOI: 10.1016/j.anireprosci.2014.01.009 ##AOAC, 1995. Official Methods of Analysis, Association of Official Analytical Chemists International, 16nd edn. Arlington, VA, USA, pp. 21–25. ##Ashouri, S., Keyvanshokooh, S., Salati, A.P., Johari, S.A. and Pasha-Zanoosi, H., 2015. Effects of different levels of dietary selenium nanoparticles on growth performance, muscle composition, blood biochemical profiles and antioxidant status of common carp (Cyprinus carpio). Aquaculture, 446: 25-29. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2015.04.021. ##Cheng, W., Liu, C.H., Yan, D.F. and Chen, J.C., 2002. Hemolymph oxyhemocyanin, protein, osmolality and electrolyte levels of white leg shrimp (Litopenaeus vannamei). in relation to size and molt stage. Aquaculture, 211(1): 325-339. DOI: 10.1016/S0044-8486(01)00768-2.##Gawlicka, A., Herold, M.A., Barrows, F.T., De La Noue, J. and Hung, S.S.O., 2002. Effects of dietary lipids on growth, fatty acid composition, intestinal absorption and hepatic storage in white sturgeon (Acipenser transmontanus R.) larvae. Journal of Applied Ichthyology, 18: 673-681. DOI: 10.1046/j.1439-0426.2002.00371. ##Ghorbani Vagheie, R., Matinfar, A., Aeinjamshid, K., Hafezieh, M. and Ghorbani, R., 2011. Replacing of live food with artificial diet on growth and survival rates of white leg shrimp (Litopenaeus vannamei) larvae. Iranian Scientific Fisheries Journal, 20(3): 87-102. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110010.##Hamilton, S.J., 2004. Review of selenium toxicity in the aquatic food chain. Science of the Total Environment, 326: 1-31. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2004.01.019##Jabeen, S., Salim, M. and Akhtar, P., 2004. Feed conversion ratio of major carp Cirrhinus mrigala fingerlings fed on cotton seed meal, fish meal and barley. Pakistan Veterniary Journal, 24: 42-45. ##Lee, K.W., Everts, H., Kappert, H.J., Frehner, M., Losa, R. and Beynen, A.C., 2003. Effects of dietary essential oil components on growth performance, digestive enzymes and lipid metabolism in female broiler chickens. British Poultry Science, 44: 450-457. DOI: 10.1080/0007166031000085508. ##Mohseni, M., Pourkazemi, M., Bahrain, M., Falahatkar, B., Pourali, H.R. and Salehpour, M., 2006. Effects of feeding rate and frequency on growth performance of yearling great sturgeon, Huso huso. Journal of Appllied Ichthyology, 22: 278-282. DOI: 10.1111/j.1439-0426.2007.00968.x##Muralisankar, T., Saravana Bhavan, P., Radhakrishnan, S., Seenivasan, C. and Srinivasan, V., 2016. The effect of copper nanoparticles supplementation on freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii post larvae. Journal of Trace Element Medicine Biology, 34: 39-49. DOI: 10.1016/j.jtemb.2015.12.003. ##Nair, Re., Nair, H.S., Maekawa, B.G., Tu Yoshida, Y. and Kumar, D.S., 2010. Nanoparticulate Vargh material delivery to plants. Plant Science, 179: 154-163. DOI: 10.1016/j.plantsci.2010.04.012.##Sritunyalucksana, K., Intaraprasong, A., Sanguanrut, P., Filer, K. and Fegan, D.F., 2011. Organic selenium supplementation promotes shrimp growth and disease resistance to Taura Syndrome virus. Science Asia. 37(1): 24-30. DOI: 10.2306/scienceasia1513-1874.2011.37.024##Swain, P., Das, R., Das, A., Kumar Padhi, S., Chandra Das, K. and Mishra, S.S., 2018. Effects of dietary zinc oxide and selenium nanoparticles on growth performance, immune responses and enzyme activity in rohu, Labeo rohita (Hamilton). Aquaculture Nutrition, pp. 1–9. DOI: 10.1111/anu.12874. ##Tacon, A.G.J., Cody, J.J., Conquest, L.D., Divakaran, S., Forster, I.P. and Decamp, O.E., 2002. Effect of culture system on the nutrition and growth performance of Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei (Boone) fed different diets. Aquaculture Nutrition, 8: 121–139. DOI: 10.1046/j.1365-2095.2002.00199. ##Watanabe, T., Kiron, V. and Satoh, S., 1997. Trace minerals in fish nutrition. Aquaculture, 151: 185-207. DOI: 10.1016/S0044-8486(96)01503-7.##Yaoling, L., Jiunrong, C., Mengsyh, S., Mingler, L.I.Y.L., Chen, J.R., Shien, M.S. and Shien, M.J., 1998. The effects of garlic powder on the hypolipidemic function and ant oxidative status in hamsters. Natural Science Journal, 23: 171-178. DOI: 10016958-199805-23-2-171-187. ##Zhai, Q., Cen, S., Li, P., Tian, F., Zhao, J., Zhang, H. and Chen, W., 2018. Effects of dietary selenium supplementation on intestinal barrier and immune responses associated with its modulation of gut microbiota. Environmental Science and Technology Letters, 12: 724-730. DOI:10.1021/acs.estlett.8b00563 ##Zhou, X., Wang, Y., Gu, Q. and Li, W., 2009. Effects of different dietary selenium sources (selenium nanoparticle and selenomethionine) on growth performance, muscle composition and glutathione peroxidase enzyme activity of crucian carp (Carassius auratus gibelio). Aquaculture, 291: 78-81. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2009.03.007. ##

مقاله علمی – پژوهشی: مقایسه فعالیت آنتی‌اکسیدانی و بتا کاروتن استخراج شده از سه گونه جلبک‌های بومی دریای عمان (Ulva lactuca، Sargassum ilicifolium و Nizimuddinia zanardini) The compression of antioxidant activity and β-carotene extracted from three species of native algae of Oman Sea (Ulva lactuca, Sargassum ilicifolium and Nizimuddinia zanardini) 1 1 در این مطالعه خواص فارماکولوژیک سه گونه از ماکروجلبک‌‌های بومی سواحل چابهار (دریای عمان) شامل: Ulva lactuca، Sargassum ilicifolium و Nizimuddinia zanardini بررسی شد. عصاره متانولی از سه گونه جلبکی سبز، قرمز و قهوه ای تهیه گردید. اندازه‌گیری میزان بتا-کاروتن، فنلی کل و قدرت مهارکنندگی رادیکال آزاد DPPH بر اساس روش‌های معمول آزمایشگاهی انجام شد. بر اساس نتایج بدست آمده خواص آنتی‌اکسیدانی متفاوتی بین جلبک‌‌ها مشاهده شد. این نتایج احتمالاً متناسب با محتوای ترکیبات آنتی‌اکسیدانی جلبک‌‌ها بود. مقدار شاخص های مذکور در U. lactuca، S. ilicifolium و N. zanardini بترتیب برای بتاکاروتن 56/0، 048/0 و 041/0 میلی‌گرم در 100 گرم وزن خشک، فنول کل 206/0، 396/0 و 133/0 میلی‌گرم اسید گالیک بر گرم وزن خشک و قدرت مهارکنندگی رادیکال آزاد DPPH 7/45-4/60، 6/51-8/61 و 6/9-28 درصد اندازه‌گیری شد. بر این اساس بیشترین مقدار بتا کاروتن در عصاره U. lactuca و بیشترین مقدار فنل و قدرت مهارکنندگی رادیکال آزاد DPPH در عصاره S. ilicifolium ثبت شد (05/0p<). در مجموع نتایج این تحقیق نشان داد هر سه جلبک از قابلیت بالایی برای استفاده به‌عنوان یک ماده اولیه در صنایع غذایی و دارویی برخوردار هستند. 2 In this study, pharmacological properties of three native macro algae which collected from the shores of the Chabahar Gulf (the Omean Sea) including: Ulva lactuca, Sargassum ilicifolium and Nizimuddinia zanardini were evaluated. The methanol extracts of three species of green, brown and red algae were. The concentration of β-carotenoid, phenolic Compound and antioxidant activities (AOA) was analyzed by routine methods. Based on the results, different antioxidant properties were observed among algae. These results probably was associated with antioxidant compounds of algae. In the species of U. lactuca, S. ilicifolium and N. zanardini the amount of β-carotenoid was measured 0.56, 0.048 and 0.041 mg/100DW, total phenol was 0.206, 0.396 and 0.133 mg GA/g DW and inhibitory activity of free radicals (DPPH) was in the range of 45.7-60.4%, 51.6-61.8% and 9.6-28%, respectively (p<0.05). Based on obtaining results, the highest level of β- carotenoid was observed in the U. lactuca extract and the highest level of total phenol and inhibitory activity of free radicals (DPPH) was observed in S. ilicifolium extract. Overall, the results of this study indicated that all three species of algae have usability as a primary substance in food and drug industry. 53 63 2018/05/222020/01/152020/05/82020/05/42019/12/2 1398/9/11 2021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/28 1399/12/10 عیدمحمد سارانی یازتپه Eidmohammad Sarani yaztapeh دانشگاه آزاد اسلامی واحد زاهدان Iran mohammad.sarani49@gmail.com سید محمد رضا حسینی طباطبایی Mohammadreza Hosseini_tabatabaei دانشگاه آزاد اسلامی واحد زاهدان Iran Dr_hosseini_tabatabaei@yahoo.com علی مهدی آبکنار Ali Mahdi Abkener دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندر عباس Iran aliabkenar@gamil.com Algae Sistan and Balochestan Oman Sea Antioxidant properties β-carotene جلبک سیستان و بلوچستان دریای عمان خواص آنتی‌اکسیدانی بتا کاروتن ##اعتمادیان، ی.، خانی‌پور، ع.ا.، شعبانپور، ب.، کردجزی، م.، قائمی. و. و زحمتکش، ع.ع.، 1396. بررسی خاصیت دارویی 5 جلبک قهوه‌ای بومی حوزه آب‌های جنوب کشور و ترویج آن‌ها برای پرورش. فصلنامه علوم آبزی‌پروری پیشرفته، 1(1): 52-43. ##حسن سلطان، ط.، نوروزی، م. و آموزگار، م.ع.، 1395. بررسی میزان کلروفیل a و b و توتال کاروتنوئید و هم‌چنین فعالیت آنتی‌اکسیدانی چهار گونه جلبک سبز جداشده از سواحل گلستان دریای خزر. مجله تازه‌های بیوتکنولوژی سلولی، 6(24): 36-31. ##حیدری، م.، ذوالقرنین، ح.، سخایی، ن.، میرزایی، ع. و موحدی‌نیا، ع.ا.، 1394. مقایسه قدرت ضد رادیکالی و ضد باکتریایی ماکروجلبک هادر سواحل شمالی خلیج فارس. مجله علمی شیلات ایران، 24 (2): 64-53. ##رهبر مهر، ه.، 1394. بررسی فعالیت آنتی‌اکسیدانی جلبک قرمز Gracilaria gracilis دریای خزر و سنجش خواص ضد میکروبی نانوذره نقره سنتز شده از عصاره این جلبک. پایان‌نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه گیلان، 74 صفحه.##سفری، پ.، رضایی، م.، شویک لو، ا.، گرمسیری، ا. و باباخانی لشکان، آ.، 1394. تعیین فعالیت آنتی‌اکسیدانی و میزان فنل کل دو گونه جلبک دریایی خلیج‌فارس Chaetomorpha sp. و Colpumenia sinusa در شرایط آزمایشگاهی (In vitro) مجله علوم و فنون دریایی، 14(1): 10-1. DOI: 10.22113/JMST.2015.9724 ##صداقت، ه.، 1395. بررسی الکتروشیمیایی برخی از گونه‌‌های جلبک‌های خلیج‌فارس (بوشهر) با در نظر گرفتن خواص آنتی‌اکسیدانی آن‌ها. پایان‌نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه خلیج‌فارس، 110 صفحه.##عامری، م.، حاجی منیری، م. و کامیابی، ص.، 1392. بررسی خزانه تنوع زیستی جلبک های شناخته شده ایران و امکان بهره وری آنها. دومین همایش ملی توسعه پایدارکشاورزی ومحیط زیست سالم، همدان، 22 صفحه. ##فراست، م.، خاوری نژاد، ر.، نبوی، س.م.ب. و نامجویان، ف.، 1392. فعالیت آنتی‌اکسیدانی عصاره متانولی جلبک سبز دریایی (Caulerpa sertularioides f.farlowii). مجله زیست‌شناسی دریا، 5(4): 20-13. ##قرنجیک، ب. و مهدی آبکنار، ع.، 1379. شناسایی جلبک‌های دریایی سواحل استان سیستان و بلوچستان. مجله علمی شیلات ایران، 9(1): 48-37. DOI: 10.22092/ISFJ.2000.115913.##قنبری، ه.، 1394. بررسی فعالیت آنتی‌اکسیدانی ریز جلبک Spirulina sp. و سنجش خواص ضد میکروبی این ریز جلبک و رنگیزه فیکوسیانین استخراج شده از آن. پایان‌نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه گیلان، 103 صفحه.##محمدی، ع.، 1395. مقایسه خواص فیزیکوشیمیایی و فراسودمندی دو گونه جلبک قهوه‌ای (Iyengaria stellate و Nizimuinia zanardini)، سواحل قشم. پایان‌نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، 55 صفحه.##محمدی، ع.، شعبانپور، ب. و کردجزی، م.، 1395. بررسی صفات فیزیکی-شیمیایی و ترکیب اسید چرب در ماکروجلبک قهوه ای. مجله زیست فناوری گیاهان دارویی، 2(4): 32-20.##محمدی، ع.، شعبانپور، ب. و کردجزی، م.، 1397. اثر عصاره آبی جلبک قهوه ای Nizimuddinia zanardini سواحل قشم بر عوامل بیماریزای انسان و تعیین خواص ضداکسیدانی آن. مجله علمی- پژوهشی زیست‌شناسی دریا، 10(40): 82-75. ##مهدی آبکنار، ع.، 1383. بررسی امکان پرورش جلبکهای مهم و اقتصادی با تأکید بر جنس گراسیلاریا در مناطق طبیعی و استخرهای خاکی. موسسه تحقیقات شیلات ایران. مرکز تحقیقات شیلاتی آب‌های دور – چابهار، 115 صفحه.##Abd El-Baky, H.H., El Baz, F.K. and El Baroty, G.S., 2008. Evaluation of marine alga Ulva lactuca as a source of natural preservative ingredient. American-Eurasian Journal of Agricultural and Environmental Sciences, 3(3): 434-444. DOI: 10.12691/jas-1-1-3.##Arumugam, P., Ramamurthy, P. and Ramesh, A., 2010. Antioxidant and Cytotoxic Activities of Lipophilic and Hydrophilic Fractions of Mentha Spicata L. (Lamiaceae). International Journal of Food Properties, 13(1): 23–31. DOI: 10.1080/10942910802144329.##Bai, N., He, K., Roller, M., Lai, C.S., Shao, X., Pan, M.H. and Ho, C.T., 2010. Flavonoids and phenolic compounds from Rosmarinus officinalis. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 12: 58 (9): 5363-5367. DOI: 10.1021/jf100332w.##Blois, M.S., 1958. Antioxidant determinations by the use of a stable free radical. Nature. 181: 1199–1200. DOI: 10.1038/1811199a0.##Cornish, M.L. and Garbary, D.J., 2010. Antioxidants from macroalgae: Potential applications in human health and nutrition. Algae, 25(4): 155–171. DOI: DOI: 10.4490/algae.2010.25.4.155.##Eijckelhoff. C. and Dekker, J.P., 1995. Determination of the pigment stoichiometry of the photochemical reaction center of Photosystem II. Biochimica et Biophysica Acta, 123(1): 21–28. DOI: 10.1016/0005-2728 (95)00055-N.##Fariman, G.A., Shastan, S.J. and Zahedi, M.M., 2016. Seasonal variation of total lipid, fatty acids, fucoxanthin content, and ## antioxidant properties of two tropical brown algae (Nizamuddinia zanardini and Cystoseira indica) from Iran. Journal of Applied Phycology, 28(2): 1323-1331. DOI: 10.1007/s10811-015-0645-y.##Flodin, C., Helidoniotis, F. and Whitfield, F.B., 1999. Seasonal variation in bromophenol content and bromoperoxidase activity in Ulva lactuca. Phytochemistry, 51: 135–138. DOI: 10.1021/jf026082n.##Ganesan, P., Suresh Kumar, K. and Bhaskar, N., 2008. Antioxidant properties of methanol extract and its solvent fractions obtained from selected Indian red seaweeds. Bioresource Technology, 99(8): 2717–2723. DOI: 10.1016/j.biortech.2007.07.005.##Hajimahmoodi, M., Faramarzi, M.A., Mohammadi, N., Soltani, N., Oveisi, M.R. and Nafissi-Varcheh, N., 2010. Evaluation of antioxidant properties and total phenolic contents of some strains of microalgae. Journal of Applied Phycology, 22(1): 43-50. DOI: 10.1007/s10811-009-9424-y.##Heo, S., Park, E.J., Lee, K.W. and Jeon, Y.J., 2005. Antioxidant activities of enzymatic extracts from brown seaweeds. Bioresource Technology, 96(14): 1613-1623. DOI: 10.1016/j.biortech.2004.07.013.##Horincar, V.B., Parfene, G. and Bahrim, G., 2011. Evalution of bioactive compounds in extracts obtained from three Romanian marine algae species. Romanian Biotechnological Letters, 16(6): 71-78. ##Kelman, D., Posner, E.K., McDermid, K.J., Tabandera, N.K., Wright, P.R. and Wright, A.D., 2012. Antioxidant activity of Hawaiian marine algae. Marine Drugs, 10(2): 403–416. DOI: 10.3390/md10020403.##Kokabi, M., Yousefzadi, M. and Ali ahmadi, A., 2013. Antioxidant activity of extracts of selected algae from the Persian Gulf, Iran. Journal of the Persian Gulf, 4(12): 45-50. ##La Barre, S., 2010. The halogenated metabolism of brown algae (Phaeophyta), its biological importance and its environmental significance. Marine drugs, 8(4): 988-1010. DOI: 10.3390/md8040988##Liu, C.C., Zhao, G.l., Li, Y.N., Ding, Z.P., Liu, Q.G. and Li, J.L., 2011. Contribution of phenolics and flavonoids to antioxidant activity of ethanol extract from Eichhornia crassipes. Advanced Material Research, 156-157: 1372-1377. DOI: 10.4028/www.scientific.net/AMR.156-157.1372.##Lopez, A., Rico, M., Rivero, A. and Tangil, M.S.D., 2011. The effects of solvents on the phenolic contents and antioxidant activity of Stypocaulon scoparium algae extracts. Food Chemistry, 125(3): 1104-1109. DOI: 10.1016/j.foodchem.2010.09.101.##Martins, C.D.L., Ramlov, F., Carneiro,N.P.N., Gestinari,L.M., Santos, B.F.D., Bento,L.M., Lhullier, C., Gouvea, L., Bastos, E., Horta, P.A. and Soares, A.R., 2012. Antioxidant properties and total phenolic contents of some tropical seaweeds of the Brazilian coast. Journal of Applied Phycology. 24(4): 1179-1187. DOI: 10.1007/s10811-012-9918-x.##McLaughlin, J.L., Chang, C.J. and Smith, D.L., 1991. Bench-Top Bioassays for the Discovery of Bioactive Natural Products: An Update. In: Rhaman, A.U., Ed., Studies in Natural Products Chemistry, Elsevier, Amsterdam. pp. 383-409.##Miyashita, K., Widjaja-Adhi, A., Abe, M. and Hosokawa, M., 2012. Algal Carotenoids as Potent Antioxidants. Kim, S. K. (ED), Handbook of Marine Macro algae Biotechnology and Applied Phycology. John Wiley & Sons Ltd, West Sussex, UK, 403 P.##O'Sullivan, A.M., O'Callaghan, Y.C., O'Grady, M.N., Queguineur, B., Hanniffy, D., Troy, D.J., Kerry, J.P. and O'Brien, N.M., 2011. In vitro and cellular antioxidant activities of seaweed extracts prepared from five brown seaweeds harvested in spring from the west coast of Ireland. Food Chemistry, 126(3): 1064-1070. DOI: 10.1016/j.foodchem.2010.11.127.##Raja, R., Hemaiswarya, S. and Rengasamy, R., 2007. Exploitation of Dunaliella for α-carotene production. Applied Microbiology and Biotechnology, 74(3): 517-523. DOI: 10.1007/s00253-006-0777-8.##Salehi, P., Sonboli, A., Eftekhar, F., Nejad-Ebrahimi, S. and Yousefzadi, M., 2005. Essential oil composition, antibacterial and antioxidant activity of the oil and various extracts of Ziziphora clinopodioides subsp. rigida (BOISS.) RECH. f. from Iran. Biological and Pharmaceutical Bulletin, 28(10):1892-6. DOI: 10.1248/bpb.28.1892.##Sanchez-Machado, D.I., Lopez-Cervantes, J., Lopez-Hernandez, J. and Paseiro-Losada, P., 2004. Fatty acids, total lipid, protein and ash contents of processed edible seaweeds. Food Chemistry, 85(3): 439-444. DOI: 10.1016/j.foodchem.2003.08.001.##Smit A.J., 2004. Medicinal and pharmaceutical uses of seaweed natural products: A review. Journal of Applied Phycology, 16(4): 245–262. DOI: 10.1023/B:JAPH.0000047783.36600.ef.##Taga, M.S., Miller, E.E. and Pratt, D.E., 1984. Chia seeds as a source of natural lipid antioxidants. Journal of the American Oil Chemists’ Society, 61(5): 928-931. DOI: 10.1007/BF02542169.##Thomas, N.V. and Kim, S.K., 2011. Potential pharmacological applications of polyphenolic derivatives from marine brown algae. Environmental Toxicology and Pharmacology, 2011. 32(3): 325-335. DOI: 10.1016/j.etap.2011.09.004.##Zubia, M., Robledo, D., and Freile-Pelegrin, Y., 2007. Antioxidant activities in tropical marine macroalgae from the Yucatan Peninsula, Mexico. Journal of Applied Phycology, 19(5), 449-458. DOI: 10.1007/s10811-006-9152-5 ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ بررسی تغییرپذیری ژنتیکی جمعیت‌‌های سیاه ماهی خالدار Capoeta trutta (Heckel, 1843) استان کردستان با استفاده از نشانگرهای IRAP IRAP Evaluation of genetic variability of longspine scraper Capoeta trutta (Heckel, 1843) populations from Kurdistan province using IRAP markers 1 1 تغییرپذیری ژنتیکی جمعیت‌های سیاه ماهی خالدار صید شده از رودخانه‌های چومان، شوی، گرماب (منطقه بانه)، قشلاق، سیروان، گاوه‌رود (منطقه سیروان) و روآر (منطقه مریوان) در استان کردستان با استفاده از نشانگرهای چندشکلی تکثیر شده بین رتروترانسپوزونی (IRAP) مورد بررسی قرار گرفت. تجزیه و تحلیل داده‌های حاصل از نشانگر مولکولی IRAP نشانداد که بیشترین و کمترین تعداد باندهای مشاهده شده، تعداد و درصد باندهای پلی‌مورف، تعداد باند متفاوت و اختصاصی، بیشترین تعداد آلل موثر، شاخص شانون و هتروزیگوسیتی مورد انتظار به‌ترتیب مربوط به جمعیت‌های روآر و گرماب می‌باشند. بیشترین فاصله ژنتیکی بین جمعیت روآر و شوی و کم‌ترین فاصله ژنتیکی بین جمعیت چومان و گرم‌آب بود. نتایج تجزیه واریانس مولکولی نشان داد که 9‌% واریانس ژنتیکی مربوط به بین مناطق جغرافیایی، 16‌% مربوط به بین جمعیت‌ها و 75‌% مربوط به درون جمعیت‌ها می‌باشد. بیش‌ترین و کم‌ترین مقدار جریان ژنی (تعداد مهاجرت در هر نسل) به‌ترتیب بین جمعیت‌های چومان و گرم‌آب و روآر و شوی مشاهده شد. بررسی روابط خویشاوندی جمعیت‌ها با روش بیشینه پارسیمونی نشانداد که جمعیت‌های منطقه مریوان در یک تک شاخه خواهری با جمعیت‌های مناطق بانه و سیروان قرار دارند. نتایج این پژوهش نشانداد که اگرچه جمعیت سیاه ماهی خالدار منطقه مریوان تفاوت‌هایی با سایر جمعیت‌ها داشت، ولی وجود شباهت‌ها مانع از جدایی کامل آن می‌باشد. با این وجود ماهیان متعلق به هر جمعیت از مناطق جغرافیایی مورد بررسی با توجه به داشتن باندهای اختصاصی، قابل تفکیک می‌باشند. همچنین نتایج این پژوهش نشان ‌داد که نشانگر IRAP دارای تکرارپذیری بالا و توان بیشتر در آشکار سازی تنوع ژنتیکی است و می‌تواند به طور موثر در مطالعات بررسی تنوع ژنتیک ماهیان و از جمله گونه سیاه ماهی خالدار مورد استفاده قرار گیرد. 2 Genetic variability of longspine scraper populations from the Choman, Shui, Garmab (Baneh region), Gheshlagh, Sirvan, Gaveh-Rud (Sirvan region), Rowar (Marivan region) of Kurdistan province were examined using Inter-Retrotransposon Amplified Polymorphism markers (IRAP) method. IRAP molecular markers data analysis showed the highest and the lowest number of bands, polymorphic bands, percent of polymorphic bands, number of different bands, number of private bands, number of effective bands, Shannon's information index and expected heterozygosity in the Rowar and the Garmab populations, respectively. The highest and the lowest genetic distance was observed between the Rowar and the Shui populations and between the Choman and the Garmab populations, respectively. The molecular variance analysis results revealed that 9% of genetic variance was between geographic regions, 16% among and 75% within the populations. The highest and lowest gene flow rates (number of migrations per generation) were observed among the Choman, Garmab, Rowar and Shui populations, respectively. Phylogentic relationships of the populations were evaluated using the maximum parsimony methods. Phylogenetic analysis showed that the Marivan region is in a sister clade with the regions of Baneh and Sirvan. The results of this study showed that although the longspine scraper population of Marivan region was different from other populations, the existence of similarities prevents its complete separation. However, fish belonging to each population of the studied geographical areas can be distinguished by their private bands. The results of this research showed that the IRAP marker has high reproducibility and greater power in detecting genetic diversity and can be used effectively to study the genetic diversity of fish, including the longspine scraper species. 65 76 2018/05/222020/01/152020/05/82020/05/42019/12/22020/03/22 1399/1/3 2021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/28 1399/12/10 زهرا مهربانی Zahra Mehrabani دانشگاه کردستان Iran zahramehrabani70@gmail.com برزان بهرامی کمانگر Barzan Bahrami Kamangar دانشگاه کردستان Iran bbkamangar@uok.ac.ir ادریس قادری Edris Ghaderi دانشگاه کردستان Iran ed.ghaderi@gmail.com Capoeta trutta Morphological traits IRAP marker Genetic variability سیاه ماهی خالدار (Capoeta trutta) نشانگر IRAP تغییرپذیری ژنتیکی ##بهرامی کمانگر، ب.، رستم‌زاده، ج.، بهرام‌نژاد، ب.، قادری، ا.، پروکوویف، آ. و نعلبنت، ت.، 1394. تهیه DNA بارکد و طبقه‌بندی ذخایر ماهی استان کردستان. گزارش نهایی طرح پژوهشی، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه کردستان، 60 ص.##عبدلی، ا.، 1378. ماهیان آب‌های داخلی ایران. انتشارات موزه طبیعت و حیات وحش ایران. تهران. 377 ص.##میرزایی، ب.، علیزاده، ا.، بهرامی کمانگر، ب. و ارشدی، ع.، 1395. تنوع و ساختار ژنتیکی جمعیت‌های سیاه ماهی خالدار (Capoeta trutta) در استان کردستان با استفاده از نشانگرهای بین ریزماهواره‌ای. نشریه شیلات (منابع طبیعی ایران)، 69(2): 273-265.##Balloux, F. and Lugon-Moulin, N., 2002. The estimation of population differentiation with microsatellite markers. Molecular Ecology, 11(1): 155-165. Doi: 10.1046/j.0962-1083.2001.01436.x##Boronnikova, S. and Kalendar, R., 2010. Using IRAP markers for analysis of genetic variability in populations of resource and rare species of plants. Russian Journal of Genetics, 46(1): 36-42. Doi: 10.1134/S1022795410010060##Cawthorn, D.M., Steinman, H.A. and Witthuhn, R.C., 2011. Comparative study of different methods for the extraction of DNA from fish species commercially available in South Africa. Food control, 22(30): 231-244. Doi: 10.1016/j.foodcont.2010.07.003##Chakmehdouz, F., Pourkazemi, M., Tavakolli, M., Yarmohammadi, M., Hassanzadeh, M. and Baradaran Noveiri, S., 2011. Application of microsatellite markers to determine populations of the Persian sturgeon (Acipenser persicus) in the South of Caspian Sea. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 10(6): 596-606. http://aquaticcommons.org/id/eprint/22465##Cheraghi, A., Rahmani, F. and Hassanzadeh-Ghorttapeh, A., 2018. IRAP and REMAP based genetic diversity among varieties of Lallemantia iberica. Molecular Biology Research Communications, 7(3): 125-132. DOI: 10.22099/mbrc.2018.29924.1327##Coad, B.W., 1987. Zoogeography of the Freshwater Fishes of Iran. In: Krupp F., Schneider W. and Kinzelbach R. (eds), Proceedings of the Symposium on the Fauna and Zoogeography of the Middle East, Mainz. Beihefte zum Tübinger Atlas des Vorderen Orients, Reihe A (Naturwissenschaften) Wiesbaden, 28(10): 213–228.##Coad, B.W., 1996. Zoogeography of the fishes of the Tigris-Euphrates basin. Zoology in Middle East, 13: 51-70. Doi: 10.1080/09397140.1996.10637706##Cooke, S.J., Lapointe, N.W.R., Martins, E.G., Thiem, J.D., Raby, G.D., Taylor, M.K., Beard, J.R. and Cowx, I.G., 2013. Failure to engage the public in issues related to inland fishes and fisheries: strategies for building public and political will to promote meaningful conservation. Journal of Fish Biology, 83(12): 997–1018. Doi: 10.1111/jfb.12222##Danabas, D., Benzer, F., Kaplan, O. and Yildirim, N.C., 2011. Levels of copper in liver, muscle and gill tissues in Capoeta trutta (Heckel, 1843) from Munzur River, Turkey. African Journal of Agricultural Research, 6(10): 1909-1912. DOI: 10.5897/AJAR11.217##Dudgeon, D., Arthington, A.H., Gessner, M.O., Kawabata, Z.I. and Knowler, D.J., 2006. Freshwater biodiversity: importance, threats, status and conservation challenges. Biological Reviews, 81(21): 163–182. DOI: 10.1017/S1464793105006950##Excoffier, L., Smouse, P.E., Quattro, J.M. 1992. Analysis of Molecular Variance Inferred From Metric Distances Among DNA Haplotypes: Application to Human Mitochondrial DNA Restriction Data. Genetics 131(20): 479-491.##Ferguson, M., 1995. The role of molecular genetic markeres in the management of cultured fishes. In: Carvalho GR, Pitcher TJ (eds) Molecular genetics in fisheries. Chapman and Hall, London, pp 81–103. Doi: 10.1007/978-94-011-1218-5_4##Fokina, O., Grauda, D. and Rashal, I., 2015. Genetic diversity of two perch (Perca fluviatilis) populations of the Latgale region. Environment Technology Resources, Proceedings of the 10th International Scientific and Practical Conferenc, 2(2): 96-98. DOI: 10.17770/etr2015vol2.280##Frankham, R., 1996. Relationship of genetic variation to population size in wildlife. Conservation Biology, 10(2): 1500-1508. Doi.10.1046/j.1523-1739.1996.10061500.x##Freyhof, J., 2014. Capoeta trutta. The IUCN Red List of Threatened Species 2014: e.T19027513A19222908. Doi: 10.2305/IUCN.UK.2014-1.RLTS.T19027513A19222908.en##Gholamzadeh Khoei, S., Abdollahi Mandoulakani, B. and Bernousi, I., 2015. Genetic Diversity in Iranian Melon Populations and Hybrids Assessed by IRAP and REMAP Markers. Journal of Agricultural Science and Technology, 17(5): 1267-1277. ##Hermoso, V., Kennard, M.J., Schmidt, D.J., Bond, N., Huey, J.A., Mondol, R. K., Jamandre, B.W. and Hughes, J.M., 2016. Species distributions represent intraspecific genetic diversity of freshwater fish in conservation assessments. Freshwater Biology, 61(20): 1707-1719. Doi: 10.1111/fwb.12810##Kalendar, R. and Schulman, A.H., 2006. IRAP and REMAP for retrotransposon-based genotyping and fingerprinting. Nature Protocols, 1(3): 2478-2484. Doi: 10.1038/nprot.2006.377##Kalendar, R., Grob, T., Regina, M., Suoniemi, A. and Schulman, A., 1999. IRAP and REMAP: two new retrotransposon-based DNA ﬁngerprinting techniques. Springer, 98(2): 704-711. Doi: 10.1007/s001220051124##Kiabi, B.H., Abdoli, A. and Naderi, M., 1999. Status of the fish fauna in the South Caspian Basin of Iran. Zoology in the Middle East, 18(1): 57-65. Doi: 10.1080/09397140.1999.10637782##Kumar, A. and Bennetzen, J., 1999. Plant retrotransposons. Annual Review of Genetics, 33(20): 479-532. Doi:10.1146/annurev.genet.33.1.479##Levin, B.A., Freyhof, J., Lajbner, Z., Perea, S., Abdoli, A., Gaffaroğlu, M. and Doadrio, I., 2012. Phylogenetic relationships of the algae scraping cyprinid genus Capoeta (Teleostei: Cyprinidae). Molecular Phylogenetics and Evolution, 62(1): 542-549. Doi: 10.1016/j.ympev.2011.09.004##Marwa, M., Shehata, L., Sayed Fatma, M., Badawy, M. and Eman, Fahmy. M., 2015. Assessment of Genetic Diversity in Yeast and Barley by Retrotransposon-Based Molecular Markers. Egyptian Journal of Genetics and Cytology, 44:371-385. DOI: 10.21608/EJGC.2015.9721##Nei, M., 1972. Genetic distance between populations. American Society of Naturalists, 106(20): 283-292. Doi: 10.1086/282771##Nei, M., 1978. Estimation of average heterozygosity and genetic distance from a small number of individuals. Genetics, 89(12): 583-590.##Peakall, R. and Smouse, P. E., 2012. GenAlEx 6.5: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research--an update. Bioinformatics (Oxford, England), 28(19): 2537–2539. Doi: 10.1093/bioinformatics/bts460##Perrier X. and Jacquemoud-Collet J.P., 2006. DARwin Software. [(Accessed on 30 January 2019)]; Available online: http://darwin.cirad.fr/darwin##Pourkhaloee, A., Khosh-Khui, M., Arens, P., Salehi, H., Razi, H., Niazi, A., Afsharifar, A. and Van Tuyl, J., 2017. Genetic Diversity and Population Structure of Iranian tulips revealed by EST-SSR and NBS-LRR Markers. International Journal of Horticultural Science and Technology, 4(2): 167-182. Doi: 10.22059/ijhst.2018.252004.217##Saad, Y., 2012. Genetic Diversity among Some Tilapia species based on ISSR Markers. Life Science Journal, 9(4): 4841-4846.##Sabot, F. and Schulman, A.H., 2007. Template switching can create complex LTR retrotransposon insertions in Triticeae genomes. BMC Genomics, 8(12): 247-251. Doi: 10.1186/1471-2164-8-247##Sato, A., Takezaki, N., Tichy, H., Figueroa, F., Mayer, W.E. and Klein, J., 2003. Origin and speciation of haplochromine fishes in east African crater lakes investigated by the analysis of their mtDNA, Mhc genes, and SINEs. Molecular Biology and Evolution, 20(9): 1448–1462. Doi.10.1093/molbev/msg151##Schulman, A.H., 2007. Molecular markers to assess genetic diversity. Euphytica, 158(10): 313-321. Doi: 10.1007/s10681-006-9282-5##Schulman, A.H., Flavell, A. and Ellis, T., 2004. The application of LTR retrotransposons as molecular marker in plant. Methods in Molecular Biology, 260(25): 145-173. Doi: 10.1385/1-59259-755-6:145##Shabani, A., Askari, G. and Moradi, A., 2013. Genetic variation of Garra rufa fish in Kermanshah and Bushehr provinces, Iran, using SSR microsatellite markers. Molecular Biology Research Communications, 2(3): 81-88. Doi: 10.22099/mbrc.2013.1665##Shannon, Claude E. and Warren Weaver., 1949. A Mathematical Model of Communication. Urbana, IL: University of Illinois Press.##Souza-Shibatta, L., Kotelok-Diniz, T., Ferreira, D.G., Shibatta, O.A., Sofia, S.H., de Assumpção, L., Pini, S., Makrakis, S., Makrakis, M.C., 2018. Genetic diversity of the endangered Neotropical Cichlid fish (Gymnogeophagus setequedas) in Brazil. Front Genet, 9: 13. Doi: 10.3389/fgene.2018.00013##Swofford, D. L., 2002. PAUP. Phylogenetic Analysis Using Parsimony (and Other Methods). Version 4.0b10. January 2002. Doi: 10.1111/j.0014-3820.2002.tb00191.x##Thai, B.T., Burridge, C.P. and Austin, C.M., 2007. Genetic diversity of common carp (Cyprinus carpio L.) in Vietnam using four microsatellite loci. Aquaculture, 269(23): 174–186. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2007.05.017##Tonteri, A., Veselov, A.J.E., Titov, S., Lumme, J. and Primmer, R., 2007. The effect of migratory behaviour on genetic diversity and population divergence: a comparison of anadromous and freshwater Atlantic salmon Salmo salar. Journal of Fish Biology, 70 (20): 381–398. Doi: 10.1111/j.1095-8649.2007.01519.x##Vrijenhoek, R.C. 1998. Conservation genetics of freshwater fish. Journal of Fish Biology, 53: 394-412. doi:10.1111/j.1095-8649.1998.tb01039.x##Ward, R.D., Woodwark, M. and Skibinski, D.O.F., 1994. A comparison of genetic diversity levels in marine, freshwater, and anadromous fishes. Journal of Fish Biology, 44(3): 213-232. Doi: 10.1111/j.1095-8649.1994.tb01200.x##Wright, S., 1978. Evolution and the genetics of populations. University of Chicago press, Chicago, 590 p.##Yu, G.X. and Wise, R.P., 2000. An anchored AFLP- and retrotransposon-based map of diploid Avena. Genome, 43(12): 736-749. Doi: 10.1139/g00-037##Zadmajid, V., 2016. Comparative effects of human chorionic gonadotropin (hCG) and Ovaprim (sGnRHa + domperidone) on the reproductive characteristics of wild-caught male Longspine scraper, Capoeta trutta (Heckel, 1843). Aquaculture, 463: 7-15. Doi:10.1016/j.aquaculture.2016.05.029.##Zhao, L., Chenoweth, E., Liu, J. and Liu, Q., 2016. Effects of dam structures on genetic diversity of freshwater fish Sinibrama macrops in Min River, China. Biochemical Systematics and Ecology, 68, 216-222. https://doi.org/10.1016/j.bse.2016.07.022 ##

مقاله علمی – پژوهشی: بررسی انگل‌های کاذب در ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss) پرورش یافته در قفس و ماهیان کفال (Mugilidae) و سفید (Rutilus kutum) در سواحل جنوبی دریای‌خزر Pseudoparasites of some wild fish and cage culture rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in the southern coast of the Caspian Sea 1 1 مطالعه حاضر در راستای بررسی‌های انگل‌شناسی ماهی سفید (Rutilus kutum) و کفال ماهیان (Chelon saliens و Chelon auratus ) به عنوان ماهیان وحشی و ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) پرورش یافته در قفس سواحل جنوبی دریای‌خزر به شناسایی، معرفی و مقایسه انگل‌های کاذب در این دو گروه از ماهیان مذکور می‌پردازد. نمونه ماهیان وحشی از چهار ایستگاه صید پره انزلی، کیاشهر، چالوس و محمودآباد و ماهی قزل آلای پرورش یافته در قفس از سه ایستگاه کیاشهر، عباس آباد و سی سنگان بوسیله تور ساچوک در بهار سال‌های 1396 و 1397 جمع آوری شدند. پس از انتقال نمونه‌ها به آزمایشگاه، زیست‌سنجی شده و بررسی انگل شناسی بر تمامی اندام‌های داخلی و خارجی آنها انجام شد. نماتودهای آزاد‌‌‌زی، گرده گیاهی[1] و دانه گرده[2]، تک یاخته‌های گیاهی و جانوری، اسپورهای قارچی، دانه‌ها و رشته‌های گیاهی به عنوان انگل‌های کاذب از ماهیان جدا شدند. بیشترین درصد فراوانی انگل های کاذب متعلق به گرده گیاهی بود و تقریباً در تمامی اندام های ماهیان دیده شد. نماتودهای آزاد زی از معده، روده و آبشش و دانه گرده از کبد، طحال و کلیه ماهیان جدا شدند. انگل‌های کاذب دارای پراکنش وسیع هستند و ممکن است بوسیله مواد غذایی یا به صورت تصادفی به ماهی‌ها انتقال پیدا کنند. انگل‌های کاذب ایجاد عفونت و بیماری در میزبان خود نمی‌کنند و هیچ تاثیری در ظاهر بازارپسندی آنها ندارند. بررسی و شناخت آنها بواسطه فراوانی و اهمیتشان در بحث انگل شناسی می‌تواند برای انگل شناسان و پرورش دهندگان ماهی جهت جلوگیری از مصرف بیهوده مواد دارویی مفید باشد. [1] Pine pollen [2] Pollen grain 2 The present study aimed to identify, introduce and compare pseudoparasites in wild fish (Rutilus kutum and Mugilidae) and cage culture rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in the southern coast of the Caspian Sea. Wild fish specimens were collected from four stations in Anzali, Kiashahr, Chalus, Mahmoud‌abad and rainbow trout in three cages of Kiashahr, Abbas‌‌‌‌‌abad and Si-Sangan. After transferring the specimens to the laboratory, they were bio‌assayed and parasitological examination was performed on all internal and external organs. Free-living nematodes, pine pollen, pollen grain, protozoa, fungal spores, plant seeds, and filaments were isolated from fish as pseudoparasites. The highest percentage of pseudoparasites belonged to Pine pollen and was found in almost all fish organs. Free-living nematodes were isolated from the stomach, intestine, gills and Pollen grain from the liver, spleen, and kidneys of fish. Pseudoparasites are widespread in addition to they may be transmitted by food or randomly to fish. Pseudoparasites do not cause infection and disease in their host. Investigating and understanding them because of their importance in the parasitology can be useful for parasitologists and fish farmers to avoid the futile consumption of pharmaceuticals. 77 84 2018/05/222020/01/152020/05/82020/05/42019/12/22020/03/222020/04/5 1399/1/17 2021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/28 1399/12/10 معبود علی زاده نوده Maboud Alizadeh Noudeh دانشگاه شهید بهشتی Iran mabood.alizadeh@gmail.com جمیله پازوکی Jamileh Pazooki دانشگاه شهید بهشتی Iran pazooki2001@yahoo.com Pseudoparasites Free-living nematodes Wild fish Cage culture Caspian Sea انگل‌های کاذب نماتودهای آزادزی ماهیان وحشی پرورش در قفس دریای خزر ##Abolafia, J., Ruiz-Cuenca, A. N., Fernandes, B. M. M., Cohen, S.C., and Cárdenas, M.Q., 2015. Description of free-living marine nematodes found in the intestine of fishes from the Brazilian coast. Zootaxa, 3948 (3): 549-572. DOI: 10.11646/zootaxa.3948.3.8.##Thoamson, J. G., M., A., M., B., and Ch., B., 1926. Pseudoparasites in -the Faces of Man. Parasitol, 19: 14-18.##Gerard, V.M., 2017. Intestinal parasites in dog: coprological analysis and environmental contamination in public parks in Sabadell, Universitate Autonema de Barcelona.##Hassani, M.M., Kerfouf, S.A., and Tazi, N.A.B., 2012. Metoncholaimus sp. (Nematoda Oncholaimidae) pseudoparasite of Mullus surmuletus (Linnaeus, 1758) (Perciniformes Mullidae) in the western Algerian Sea. Biodiversity Journal, 3: 173–178.##Hope, W.D., and Murphy, D.G., 1972. A taxonomic hierarchy and checklist of the genera and higher taxa of marine nematodes. Smithsonian Contribution to Zoology, 137: 1-101.##Isbert, W., Montero, F.E., Fernandez, M., Lombarte, A., Sacanell, M., and Orejas, C., 2011. Ophichthids (Ophichthidae: Anguilliformes) within the body cavity of marine fishes: pseudoparasites? Marine Biodiversity Records, 4: 1-4. DOI: 10.1017/S1755267211000285##Jensen, P. 1979. Revision of Comesomatidae (Nematoda). Zoologica Scripta, 8: 81-105.##Kohn, A., and Macedo, B., 1984. First record of Aspiculuris tetraptera (Nitzsch, 1821) (Nematoda: Oxyuroidea) and Dollfusentis chandleri (Golvan, 1969) (Acanthocephala: Illiosentidae) in Haemulon sciurus (Shaw 1803)(Pisces : Pomadasyidae). Ann. Parasitol. Hum. Comp., 59(5): 477-482.##Moorthy, V.N., 1938. Fresh-water nematodes from the intestines of fish. Proceedings of the Helminthological Society of Washington, 5: 24–26.##Moravec, F., Kohn, A., and Santos, C.P., 1990. Metoncholaimus amplus Hopper, 1967 (Nematoda: Oncholaimidae), a pseudoparasite of the fish Haemulon sciurus (Shaw) in Brazil. Folia Parasitologica, 37: 363-365.##Nieves, P.M., 2017. On-farm trials of phytoandrogen for sex inversion of tilapia. Kuroshio Science 11(1): 8-13.##Walters, V., 1955. Snake-Eels as Pseudoparasites of Fishes. American Society of Ichthyologists and Herpetologists (ASIH), 2: 146-147.##Zajac, A.M., and Conboy, G.A., 2012. Veterinary Clinical Parasitology Eighth Edition. Wiley-Blackwell, 368 PP.##Zhang, Z., 1992. Two new species of the genus Dorylaimopsis ditlevsen, 1918 (Nematoda: Adenophora, Comesomatidae) from the Bohai Sea, China, Chin. J. Oceanol. Limnol., 10 (1): 31-39. ##

مقاله علمی – پژوهشی: بررسی تغییرات زمانی و مکانی جوامع بزرگ بی‌‌مهرگان کفزی و کیفیت آب رودخانه پسیخان Temporal and spatial variations of macrobenthic invertebrate community and water quality of Pasikhan River, Guilan 1 1 ارزیابی کیفی منابع آب با استفاده از شاخص‌‌های زیستی از روش‌‌های بسیار مناسب می‌‌باشد. این مطالعه با هدف بررسی کیفیت آب رودخانه پسیخان از پل بداب تا نوخاله با استفاده از تغییرات زمانی و مکانی بی‌‌مهرگان کفزی انجام پذیرفته است. بدین منظور در شش ایستگاه تعیین شده بر رودخانه پسیخان به مدت یک سال به‌‌ صورت فصلی از پاییز 1394 لغایت تابستان 1395 از بزرگ بی‌‌مهرگان کفزی نمونه‌‌برداری صورت گرفت. نمونه‌‌های بی‌‌مهرگان کفزی توسط سوربر 25×25 سانتی‌‌متری با شانزده بار تکرار جمع‌‌آوری، شناسایی و شمارش شدند. نتایج حاصل از بررسی جوامع کفزی این رودخانه نشان داد غالب تاکسون‌‌های بزرگ بی‌‌مهرگان جمع‌‌آوری شده متعلق به گروه حشرات آبزی است. در این تحقیق 18 خانواده از 9 راسته از بی‌‌مهرگان کفزی شناسایی شدند. محاسبه شاخص [1]BMWP در ایستگاه 6 (نوخاله)، کمترین مقدار میانگین سالانه در حد 38/2±50/5 را با درجه کیفی خیلی بد و در ایستگاه 2 (شهرک صنعتی)، بیشترین مقدار میانگین یعنی 39/00±16/41 را با درجه کیفی متوسط نشان داد. همچنین بر اساس متوسط سالانه شاخص ASPT[2] ایستگاه 2، بیشترین امتیاز (38/0±83/5) را دارد و رده کیفی آب‌‌های با کیفیت مشکوک به آلودگی را به‌خود اختصاص می‌‌دهد و ایستگاه 6، با کمترین امتیاز (91/0±50/2) در رده کیفی آب‌‌های با آلودگی شدید قرار می‌‌گیرد. در بین فصول، بیشترین مقدار میانگین BMWP و ASPT، در زمستان و کمترین آن، در فصل پاییز می‌‌باشد. نتایج حاصل از محاسبه شاخص هیلسنهوف نیز نشان می‌‌دهد که در بین ایستگاه‌‌ها، ایستگاه 1 (پل بداب) با متوسط امتیاز (10/1±26/5) در رده کیفی متوسط و ایستگاه 4 (پل خطیبان) با متوسط امتیاز (56/0±58/4) در رده کیفی خوب قرار می‌‌گیرد که دلیل کاهش کیفیت در پل بداب می‌‌تواند فعالیت برداشت شن و ماسه در بالادست آن باشد. بر اساس نتایج، شاخص‌‌ها نشان‌‌گر آن است که کیفیت آب در ایستگاه نوخاله که در پایین‌‌دست قرار دارد، از ایستگاه‌‌های بالاتر کمتر است که می‌‌تواند به ‌‌دلیل فعالیت‌‌های انسانی و ورود فاضلاب‌‌های خانگی و رواناب‌‌های کشاورزی و برداشت شن و ماسه باشد. [1] Biological Monitoring Working Party [2] Average Score Per Taxon 2 Water quality assessment using water quality indices and biotic indices is a group of suitable methods. This study was carried out to determine temporal and spatial variations of benthos in Pasikhan River, north of Iran. Therefore, 6 sampling stations were set up along the river mainstream and the macrobenthic invertebrate community samples were collected from these stations during 4 seasons (from autumn 2015 to summer 2016), seasonally. The benthos samples were collected by surber sampler (25×25 cm) in sixteen replicates, then were identified and counted. The results of the benthic communities of Pasikhan River showed the dominant taxa of the invertebrates collected belonged to aquatic insects group. In this study, 18 families of 9 orders of benthic macroinvertebrates were identified. BMWP index at sixth station, showed the lowest annual average score (5.50±2.38) with so bad quality and the second station, showed the highest average score (41.00±16.39) with medium quality. Also, according to the annual average ASPT, second station had the highest score (5.83±0.38), and showed suspected to water pollution. The sixth station with the lowest score (2.50±0.91) was classified in high pollution group. Among the seasons, the highest and the lowest amount of both BMWP and ASPT were observed in winter and autumn, respectively. The results of Hilsenhoff index between stations showed that first station with average score (5.26±1.10) was categorized in medium class and fourth station with average score (4.58±0.56) was categorized in good class. This could be due to sand mining before first station (Bodab Bridge). Based on the results, biotic indices showed that water quality in Nokhale station (Station 6) that is located in downstream is the lowest that may be due to anthropogenic activities, discharge of domestic wastewater and agricultural runoff and sand mining. 85 97 2018/05/222020/01/152020/05/82020/05/42019/12/22020/03/222020/04/52017/08/30 1396/6/8 2021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282020/06/20 1399/3/31 فاطمه شریعتی Fatemeh Shariati دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان Iran shariati@liau.ac.ir عطیه امیدی Atie omidi دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان Iran atiye.omidi@gmail.com Macrobenthic invertebrate BMWP ASPT Hilsenhoff index Pasikhan River بی‌‌مهرگان کفزی BMWP ASPT شاخص هیلسنهوف رودخانه پسیخان ##ابراهیمی، ع.، فتحی، پ.، قدرتی، ف.، نادری، م. و پیرعلی، ا.، 1396. ارزیابی ‌کیفیت آب رودخانه تجن با استفاده از شاخص‌های کیفی و زیستی. مجله علمی شیلات ایران، 26(5): 152-139. DOI: 10.22092/ISFJ. 2017.115006##احمدی، م. و نفیسی، م.، 1380. شناسایی موجودات شاخص بی‌‌مهره آب‌‌های جاری. انتشارات خبیر، 240 ص.##جرجانی، س.، قلیچی، ا.، اکرمی، ر. و خیرآبادی، و.، 1387. ارزیابی شاخص زیستی آلودگی و فون کفزیان نهر مادرسو پارک ملی گلستان. مجله شیلات، 2(1): 52-41.##جعفری، ع.، کرمی، م.، عبدلی، ا، اسماعیلی ساری، ع. و مرتضایی فریزهندی، ق.، 1390. ساختار جمعیتی کفزیان بزرگ رودخانه کسلیان ‌‌‌‌مازندران. مجله شیلات دانشگاه آزاد اسلامی واحد آزادشهر، 5(2): 112-101. ##جعفری، م.، خدادادی، م. و رجب‌‌زاده قطرمی، ا.، 1396. شناسایی و بررسی فراوانی و تنوع ماکروبنتوزهای رودخانه شاپور در استان فارس. فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری، 9(2):242-231.##حسین‌‌پور، ن.، 1374. بررسی منابع ماکروزئوبنتیک رودخانه‌‌های سیاه‌‌درویشان و پسیخان، مجله علمی شیلات ایران. مؤسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران، 4(3): 20-8.##رحیمی بشر، م.، ترابی جفرودی، ح.، راستا، م.، خدادوست، ع.، تقی‌‌پور کوه‌‌بنه، ش. و دل‌‌افکار، خ.، 1394. اثرات پساب کارگاه‌‌های پرورش قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان بر روی جوامع ماکروزئوبنتوزی رودخانه شمرود (سیاهکل استان گیلان). نشریه توسعه آبزی‌‌پروری، 9(4): 44-33. ##رحیمی بشر، م.، سیف ریحانی، م. ر.، ترابی جفرودی، ح.، راستا، م.، خدادوست، ع. و تقی‌‌پور کوه‌‌بنه، 1395. بررسی کیفیت آب و توان تولید رودهانه اهرچای (آذربایجان شرقی) بر اساس جوامع بزرگ‌‌بی‌‌مهرگان کفزی. فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری، 8(2): 158-151. ##شاپوری، م،. ذوالریاستین، ن. و آذرباد، ح.، 1389. ارزیابی سریع کیفیت آب رودخانه گرگانرود بر پایه شاخص‌‌های زیستی. علوم و فنون منابع طبیعی، 3: 129-115. ##شریفی‌‌نیا، م.، ایمانپور نمین، ج. و بزرگی ماکرانی، الف.، 1391. ارزیابی بوم شناختی رودخانه تجن با استفاده از گروه‌‌های تغذیه‌‌ای بزرگ بی‌‌مهرگان کفزی و شاخص زیستی. مجله اکولوژی کاربردی، 1(1): 94 -80.##شیرچی ساسی، ز.، عبدلی، ا. و هاشمی، س.ح.، 1394. ارزیابی کارایی شاخصهای زیستی یگانه و چندگانه بزرگ بی‌‌مهرگان کفزی برای تعیین کیفیت آب (مطالعه موردی: رودخانه جاجرود). مجله محیط زیست طبیعی، منابع طبیعی ایران، 68(1): 93-83. ##طباطبایی، ط.، امیری، ف.، پذیرا، ع. ر. و مبینی، ش.، 1389. مطالعه ساختار و تنوع اجتماعات ماکروبنتیک رودخانه حله. بیولوژی دریا، 1: 46-37. ##عباسپور، ر.، حسن‌‌زاده، ح.، علیزاده‌‌ثابت، ح.، هدایتی‌‌فرد، م. و مسگران‌‌کریمی، ج.، 1392. ارزیابی کیفی آب رودخانه چشمه‌‌کیله با استفاده از جوامع درشت بی‌‌مهرگان کفزی و فاکتورهای فیزیکوشیمیایی آب. نشریه توسعه آبزی‌‌پروری، 7(4):56-43.##عباسپور، ر.، علیزاده‌‌ثابت، ح.، هدایتی‌‌فرد، م. و مسگران‌‌کریمی، ج.، 1390. ارزیابی زیستی رودخانه چشمه‌‌کیله تنکابن (استان مازندران) با استفاده از شاخص‌‌های زیستی، ساختار جمعیتی و زیتوده‌‌ای درشت بی‌‌مهرگان کفزی. مجله آبزیان و شیلات، 2(8): 85- 63. ##علیزاده، م.، حسینی، ع.، جعفریان، ح.، قربانی، ر. و قلی‌‌زاده، م.، 1397. ارزیابی شاخص‌‌های بوم‌‌شناختی و زیستی جوامع درشت بی‌‌مهرگان کفزی در رودهانه ساری‌‌سو (قرناوه). نشریه علوم آبزی‌‌پروری، 6(9): 88-75. ##قریب‌‌خانی، م. و تاتینا، م.، 1387. توان تولید طبیعی رودخانه لوندویل آستارا بر اساس جوامع کفزیان. مجله فن‌‌آوری‌‌های نوین در توسعه آبزی‌‌پروری، 2(4): 14-1.##کرمی، م.، جواد میردار هریجانی، ج.، قرائی، ا. و پوریا، م.، 1396. بررسی کیفیت آب رودخانه گاماسیاب با استفاده از شاخصهای زیستی BMWP و ASPT. مجله بوم‌‌شناسی آبزیان، 7 (1): 38-29.##کمالی، م. و اسماعیلی ساری، ع.، 1388. ارزیابی زیستی رودخانه لاسم (شهرستان آمل – استان مازندران) با استفاده از ساختار جمعیت بزرگ بی‌‌مهرگان کفزی. مجله علوم زیستی واحد لاهیجان، 3(1): 61-51. ##کوئیگلی، م.، محبوبی صوفیانی، ن. و نادری، غ.، 1379. کلید شناسایی بی‌‌مهرگان نهرها و رودخانه‌‌ها. انتشارات جهاد دانشگاهی واحد صنعتی اصفهان، 131 ص.##محمدپور، ز.، نوابیان، م.، وظیفه‌‌دوست، م. و اسمعیلی ورکی، م.، 1391. بررسی مکانی و زمانی پارامترهای کیفی آب در رودخانه‌‌های استان گیلان مطالعه موردی رودخانه پسیخان. اولین همایش ملی جریان و آلودگی آب، اردیبهشت، دانشگاه تهران.##محمدی روزبهانی، م.، روغنی‌‌زادگان، ن. و دهقان مدیسه، س.، 1392. بررسی کیفیت آب رودخانه دز با استفاده از شاخص BMWP. فصلنامه علمی پژوهشی اکوبیولوژی تالاب. دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز، 5(18): 66-55. ##مسگران کریمی، ج.، آذری تاکامی، ق.، خارا، ح. و عباسپور، ر.، 1391. تعیین تنوع و فراوانی بزرگ بی‌‌مهرگان کفزی رودخانه دو هزار تنکابن با استفاده از شاخص‌‌های زیستی. مجله آبزیان و شیلات، 3(11): 39-27. ##ملوندی، ح.، مغنی‌‌زاده، ر. و عبدلی، ا.، 1397. ارزیابی کیفیت آب رودخانه دهبار با استفاده از شاخصهای زیستی. فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری، 10(1): 390-381. ##مهدوی، م.، بذرافشان، الف.، جوانشیر، الف.، موسوی ندوشنی، ر. و باباپور، م.، 1389. بررسی امکان تاثیر جامعه کفزیان رودخانه طالقان روی تعیین کیفیت آب. مجله منابع طبیعی، 63(1): 91-75.##میرزاجانی، ع.، قانع ساسان سرایی، الف. و خداپرست شریفی، س.ح.، 1387. ارزیابی کیفی رودخانه های منتهی به تالاب انزلی بر اساس جوامع کفزیان. نشریه محیط شناسی، 34(45): 38-31. ##نوان مقصودی، م.، 1391. بررسی کفزیان رودخانه قزل اوزن استان زنجان. مجله علمی شیلات ایران، 21(4): 138-125. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110094 ##نوحه‌‌گر، ا.، 1390. بررسی کیفیت فیزیکی و شیمیایی آب‌‌های سطحی در رودخانه میناب. مجله پژوهش‌‌های دانش زمین، 2(7): 16-1. DOI: 10.29252/esrj.12.1.1##Abdul Ghani, W.M., Kutty, A.A., Mahazar M. ., Al-Shami S.A. and Ab Hamid, S., 2018. Performance of biotic indices in comparison to chemical-based Water Quality Index (WQI) in evaluating the water quality of urban river. Environmental Monitoring Assessment, 190:297. DOI: 10.1007/s10661-018-6675-6##Appalasamy, S., Arumugam, N., Sukri, S. and EH Rak, A., 2018. Physico-chemical water quality and macroinvertebrate distribution along Sungai Asah in Palau Tioman, Johor, Malaysia. Songklanakarin Journal of Science and Technology, 40(6): 1265-1270. DOI: 10.14456/sjst-psu.2018.155##Arimoro, F.O. and Ikomi, R.B., 2008. Response of macroinvertebrate communities to abattoir wastes and other anthropogenic activities in a municipal stream in the Niger Delta. Nigeria Environmentalist, 28: 85-98. DOI: 10.1007/s10669-007-9033-8##Armitage, P.D., Moss, D., Wright, J.F. and Furse, M.T., 1983. The performance of a new biological water quality score system based on macroinvertebrates over a wide range of unpolluted running-water sites. Water Research, 17(3): 333-347. DOI: 10.1016/0043-1354(83)90188-4##Guilparta, A., Roussel, J. M., Aubin, J., Caquet, T., Marlec, M. and Bris, H., 2012. The use of benthic invertebrate community and water quality analyses to assess ecological consequences of fish farm effluents in rivers. Ecological Indicators, 23: 356-365.##Hilsenhoff, W.L., 1988. Rapid field assessment of organic pollution with a family-level biotic index. Journal of North American Benthological Society, 7: 65–68. DOI: 10.2307/1467832 ##Jalili, S., 2020. Water Quality Assessment Based on HFBI& BMWP Index in Karoon River, Khuzestan Province, (Northwest of Persian Gulf). Anthropogenic Pollution Journal, 4(1): 36-49.DOI:10.22034/ap.2020.1877482.1047##Lenat, D.R., 1988. Water quality assessment of streams using qualitative collection method for benthic macroinvertebrates. Journal of North American Benthological Society, 7: 222- 223. DOI: 10.2307/1467422 ##Mahboobi Soofiani, N., Hatami, R., Hemami, M.R. and Ebrahimi, E., 2012. Effects of Trout Farm Effluent on Water Quality and the Macrobenthic Invertebrate Community of the Zayandeh-Roud River, Iran. North American Journal of Aquaculture, 74: 132–141. DOI:10.1080/15222055.2012.672367.##Mandaville, S.M., 2002. Benthic Macroinvertebrates in Freshwaters-Taxa Tolerance Values, Metrics and Protocols, Project H-1, Soil and Water Conservation Society of Metro Halifax, Nova Scotia. ## ##Mccafferty, P. and Provonsha, A., 1981. Aquatic Entomology. The fishers and Ecologysts Illustrated Guide to Insect and Their Relativs. Jones and Bartlett Publishers London, 448 P.##Medupin. C., 2020. Spatial and temporal variation of benthic macroinvertebrate communities along an urban river in Greater Manchester, UK. Environmental Monitoring Assessment, 192: 84. DOI: 10.1007/s10661-019-8019-6##Pipan, T., 2000. Biological Assessment of Stream Water Quality the example of the Reka River (Slovenia). Acta Carsologica, 29, 1(15): 201-222. ##Walley, W.J. and Hawke’s. H.A., 1996. A computer-based reappraisal of the biological monitoring working party score system using data from the 1990 river quality survey of England and Wales. Water Research, 30: 2086–2094. DOI: 10.1016/0043-1354(96)00013-9##Zhushi Etemi, F., Bytyçi, P., Ismaili, M., Fetoshi, O., Ymeri, P., Shala–Abazi, A., Nesade Muja-Bajraktari, N. and Czikkely M., 2020. The use of macroinvertebrate based biotic indices and diversity indices to evaluate the water quality of Lepenci river basin in KosovoJournal of Environmental Science and Health, Part A, 55(6): 748-758. DOI: 10.1080/10934529.2020.1738172. ##

مقاله علمی – پژوهشی: میزان رشد و محتویات رنگدانه ریزجلبکDunaliella viridis پرورش یافته در سطوح مختلف پساب کارخانه آرد ماهی Growth rate and pigment contents of grown Dunaliella viridis microalgae in different levels of a fishmeal factory wastewater 1 1 تحقیق حاضر به بررسی پرورش ریزجلبک Dunaliella viridis در پساب کارخانجات آرد ماهی (stickwater) پرداخته است. بدین منظور، محیط کشت گیلارد (F/2) به عنوان تیمار شاهد مورد استفاده قرار گرفت و با پنج سطح متفاوت از استیک‏واتر (SW) به نسبت‏های 10، 25، 50، 75 و 100 درصد جایگزین گردید. سپس این ریزجلبک‏ها در ظروف پلاستیکی 8 لیتری به مدت 14 روز به منظور اندازه‏گیری تراکم جلبکی و محتوای رنگدانه (کلروفیل a و کاروتنوئید کل) مورد بررسی قرار گرفتند. نتایج تحقیق حاضر نشان داد که با افزایش غلظت SW تا 75 درصد میزان تراکم سلولی در ریزجلبک افزایش داشت. به‌علاوه، SW ‏ به صورت معنی‏داری محتوای رنگدانه‏ها را تحت تأثیر قرار داد به‌طوری‌که بیشترین میزان کلروفیل a در غلظت 75 درصد SW در مقایسه با سایر تیمارها مشاهده گردید (05/0p<). همچنین بالاترین مقدار کاروتنوئید به طور همزمان در تیمارهای 75 و 50 درصد SW نسبت به سایر تیمارها ثبت شد (05/0p<). با توجه به نتایج به‌دست آمده استفاده از SWدر سطح 75 درصد برای کشت ریزجلبک‏های D. viridis امکان پذیر است. 2 The present study investigated the cultivation of Dunaliella viridis microalgae in the stickwater (SW) from the wastewater of fishmeal factories. For this purpose, Gillard culture medium (F/2) was used as a control treatment and five different levels of SW including 10, 25, 50, 75, and 100% were used. Then, these microalgae were cultured in 8-liter plastic containers for 14 days to evaluate the algal density and pigment contents (chlorophyll a and total carotenoids). The results of the present study showed that by increasing in the concentration of SW up to 75% the cell density was increased. In addition, the pigment contents were significantly affected by SW concentrations and the highest amount of chlorophyll a was observed at a concentration of 75% SW compared to other treatments (p<0.05). Also, the highest amount of carotenoids was recorded simultaneously in 75% and 50% SW treatments compared to other treatments (p<0.05). According to the obtained results, using SW at 75% is feasible to grow D. viridis microalgae. 99 107 2018/05/222020/01/152020/05/82020/05/42019/12/22020/03/222020/04/52017/08/302020/09/10 1399/6/20 2021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282020/06/202021/02/28 1399/12/10 زهرا هادی زاده Zahra Hadizadeh دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات Iran reza.ghadamian@gmail.com مهدی شمسایی مهرجان Mehdi Shamsaie Mehrgan دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات Iran drshamsaie@gmail.com سیدپژمان حسینی شکرابی Seyed Pezhman Hosseini Shekarabi دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات Iran hosseini.pezhman@yahoo.com Dunaliella viridis Stickwater Growth Carotenoids Dunaliella viridis استیک‌واتر رشد کاروتنوئید ##بی‌بی کم، ص.، عابدیان، ع. و یونسی، ح.، 1389. تولید پروتئین تک یاخته با استفاده از کشت باکتری و قارچ از پساب کارخانه آرد ماهی کیلکا (استیک واتر). مجله علمی شیلات ایران، 19(4): 32-21. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.109957##پردلی، ح. م.، صفری، ر. و حسینی، س.ح.، 1390. استفاده از دو گونه باکتری لاکتیک به منظور تولید پروتئین تک یاخته از آب ماهی تغلیظ شده کارخانجات پودر ماهی کیلکا. مجله علوم غذایی و تغذیه، 8(3): 88- 78.##جریان، ر.، فاطمی، م. و ماشینچیان مرادی، ع.، 1398. بررسی تاثیر دما و عناصر منیزیم و آهن بر میزان رشد و توده زنده جلبک اسپیرولینا (Arthrospira plantensis). مجله علمی شیلات ایران، ۲۸(۶): ۶۹-۷۸. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.120111##حسینی، ب.م.، هادی، م.، افشارزاده، س. و قادر ف.، 1392. شناسایی چهارگونه جلبک سبز Dunaliella جداشده از آب های منطقه جزر و مدی جزیره قشم. مجله آبزیان و شیلات، 13(4): 1-11.##صدقی، م.، صبا، ف.، نوروزی، م.، آموزگار، م. و شاهزاده فاضلی، س.ا.، 1395. جداسازی و شناسایی ریخت شناسی و مولکولی گونه های جلبک Dunaliella از دریاچه های شور حوض سلطان و آران و بیدگل. مجله علمی رستنی‌ها، 17(1): 70-77.##Ashraf, M., Javaid, M., Rashid, T., Ayub, M., Zafar, A., Ali, S. and Naeem, M., 2011. Replacement of expensive pure nutritive media with low cost commercial fertilizers for mass culture of freshwater algae, Chlorella vulgaris. International Journal of Agriculture and Biology, 13(4): 484–490. ##Ben-Amotz, A., 1981. Effect of irradiance and nutrient deficiency on the chemical composition of Dunaliella bardawil. Ben-Amotz and Avron, (Volvocales, Chlorophyta). Journal Plant Physiology, 131: 479-487. DOI: 10.1016/S0176-1617(87)80290-0##Das, P., Thaher, M., Abdul Hakim, M., Al-Jabri, M. and Alghasal, Gh., 2016. Comparative study of the growth of Tetraselmis sp. in large scale fixed depth and decreasing depth raceway ponds. Bioresource Technology, 216: 114–120. DOI: 10.1016/j.biortech.2016.05.058.## ##Eijckelhoff, C. and Dekker, J.P., 1997. A routine method to determine the chlorophyll a, pheophytin a and β-carotene contents of isolated Photosystem II reaction center complexes. Photosynthesis Research, 52: 69–73. DOI: 10.1023/A:1005834006985##García-González, M., Moreno, J., Manzano, J.C., Florencio, F.J. and Guerrero, M.G., 2005. Production of Dunaliella salina biomass rich in 9-cis-β-carotene and lutein in a closed tubular photobioreactor. Journal of Biotechnology, 115: 81-90. DOI: 10.1016/j.jbiotec.2004.07.010##Ghezelbash, F., Farboodnia, T., Heidari, R. and Agh, N., 2008. Biochemical effects of different salinities and luminance on green microalgae Tetraselmis chuii. Research Journal of Biological Sciences, 3: 217-221.##Guillard, R.R.L., 1975. Culture of phytoplankton for feeding marine invertebrates. In: Smith W.L. and Chanley M.H (Eds.) Culture of Marine Invertebrate Animals. Plenum Press, New York, USA. pp 26-60.##Guiry, M.D. and Guiry, M.D., 2019. AlgaeBase. World-wide electronic publication. National University of Ireland. Available on: http://www.algaebase.org.##Hadi, M., Shariati, M. and Afsharzadeh, S., 2008. Microalgal biotechnology: Carotenoid and glycerol production by the green algae Dunaliella isolated from the Gave-khooni salt marsh, Iran. Journal of Biotechnology and Bioprocess Engineering, 13: 540-544. DOI: 10.1007/s12257-007-0185-7##Hadizadeh, Z., Mehrgan, M.S. and Shekarabi, S.P.H., 2020. The potential use of stickwater from a kilka fishmeal plant in Dunaliella salina cultivation. Environmental Science and Pollution Research, 27(2): 2144-2154. DOI: 10.1007/s11356-019-06926-w##Jiménez, C. and Niell, F.X., 1991. Growth of Dunaliella viridis Teodoresco: Effect of salinity, temperature and nitrogen concentration. Journal of Applied Phycology, 3: 319-327. DOI: 10.1007/BF02392885##Kam, S., Abedian Kenari, A. and Younesi, H., 2012. Production of Single Cell Protein in Stickwater by Lactobacillus acidophilus and Aspergillus niger. Journal of Aquatic Food Product Technology, 21: 403–417. DOI: 10.1080/10498850.2011.605539##Koening, L.M. Demacedo, J.S., 2004. Urban secondary sewage: an alternatve medium for the culture of Tetraselmis chuii (Prasinophyceae) and Dunaliella viridis (Chlorophyceae). Brazilian Archives of Biology and Technology, an International Journal, 3: 451-459. DOI: 10.1590/S1516-89132004000300016##Kousoulaki, K., Albrektsen, S., Langmyhr, E., Olsen, H.J., Campbell, P. and Aksnes, A., 2009. The water soluble fraction in fish meal (stickwater) stimulates growth in Atlantic salmon (Salmo salar L.) given high plant protein diets. Aquaculture, 289: 74–83. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2008.12.034##Lee, J.Y., Yoo, C., Jun, S.Y., Ahn C.Y. and Oh, H.M., 2010. Comparison of several methods for effective lipid extraction from microalgae. Bioresource Technology, 101: 75-77. DOI: 10.1016/j.biortech.2009.03.058##Lunar, A.N. and Craig, S.R., 2006. Replacement of fish meal in cobia (Rachycentron canadum) diets using an organically certified protein. Aquaculture, 257: 393-399. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2005.11.010##Lv, J.M., Cheng, L.H. and Xu, X.H., 2010. Enhanced lipid production of Chlorella vulgaris by adjustment of cultivation conditions. Bioresource Technology, 101: 6797–6804. DOI: 10.1016/j.biortech.2010.03.120##Mahdabi, M. and Hosseini Shekarabi, S.P., 2018. A comparative study on some functional and antioxidant properties of kilka meat, fishmeal, and stickwater protein hydrolysates. Journal of Aquatic Food Product Technology, 27: 844-858. DOI: 10.1080/10498850.2018.1500503##Markou, G. and Georgakakis, D., 2011. Cultivation of filamentous cyanobacteria (blue-green algae) in agro industrial wastes and wastewaters: a review. Applied Energy, 88: 3389-3401. DOI: 10.1016/j.apenergy.2010.12.042##Park, J.B.K. and Craggs, R.J., 2010. Wastewater treatment and algal production in high rate algal ponds with carbon dioxide addition. Water Science and Technology, 61: 633-639. DOI: 10.2166/wst.2010.951##Sabzi, S., Mehrgan, M.S., Islami, H.R. and Shekarabi, S.P.H., 2018. Changes in biochemical composition and fatty acid accumulation of Nannochloropsis oculata in response to different iron concentrations. Biofuels, 12(1): 1-7. DOI: 10.1080/17597269.2018.1489672##Safafar, H., Nørregaard, P.U., Ljubic, A., Møller, P., Holdt, S.L. and Jacobsen, C., 2016. Enhancement of protein and pigment content in two Chlorella species cultivated on Industrial process water. Journal of Marine Science and Engineering, 4: 1-15. DOI: 10.3390/jmse4040084##Tam, N.F.Y. and Wang, Y.S., 2000. Effect of immobilized microalgal bead concentration on wastewater nutrient removal. Environmental Pollution, 107(1): 145–151. DOI: 10.1016/S0269-7491(99)00118-9##Zhu, C.J., Lee, K.L. and Chao, T.M., 1997. Effect of temperature and growth phase on lipid and biochemical composition of Isochrysis galbana TK1. Journal of Applied Phycology, 9: 451-457. DOI: 10.1023/A:1007973319348. ##

مقاله علمی – پژوهشی: بررسی تاثیر روش لخته سازی بر راندمان برداشت زی‌‌توده و محتوی اسیدهای چرب ریزجلبک Dunaliella salina، جداسازی شده از تالاب لیپار، چابهار Evaluation of flocculation induced by pH increase on harvest efficiency and fatty acids content of microalgae Dunaliella salina, isolated from Lipar lagoon- Chabahar 1 1 امروزه، ریزجلبک‌‌ها به‌‌ عنوان یکی از منابع مهم برای تولید سوخت‌‌های زیستی و محصولات دارویی مورد توجه قرار گرفته‌‌اند. با این وجود فقدان یک روش کارآمد و اقتصادی برای آب‌‌گیری و برداشت زی‌‌توده آنها یک چالش مهم برای دستیابی به این هدف است. در انتخاب روش برداشت، مواردی مانند ویژگی‌‌های گونـه، ارزش نهایی محصول و میزان مصـرف انـرژی اهمیت دارند. لذا، در این مطالعه تأثیر روش لخته‌‌سازی با تکنیک تغییرات pH در دامنه11-6، با استفاده از هیدروکسید سدیم و کلرید هیدروژن بر راندمان برداشت، چربی و محتوی اسید‌‌های چرب ریزجلبک Dunaliella salina، مورد آزمون قرار گرفت. نتایج این تحقیق نشان داد که با افزودن هیدروکسید سدیم و افزایش pH در دامنه 8/9-2/8 روند لخته‌‌سازی به ‌‌صورت صعودی افزایش یافت و از 18 به 90 درصد رسید و سپس تا pHمعادل 11، به طور ثابت باقی ماند. در مقابل افزودن کلرید هیدروژن و ایجاد محیط اسیدی تا pH معادل 6 تاثیر در تحریک لخته‌‌سازی نداشت. بالاترین ضریب تغلیظ زی‌‌توده نیز در تیمار قلیایی با pH معادل با 8/9 به میزان 10 برابر غلظت اولیه (در pH معادل 2/8) مشاهده شد. در مرحله بعد، تاثیر تکنیک افزایش pH قلیایی بر محتوی چربی و اسید‌‌های چرب زی‌‌توده جمع‌‌آوری شده مورد آزمون بررسی قرار گرفت. در این آزمایش از تکنیک سانتریفیوژ به ‌‌عنوان شاهد استفاده شد. آنالیز‌‌ها نشان داد که با افزایش pH قلیایی درصد چربی و اسید‌‌های چرب زی‌‌توده جمع‌‌آوری شده کاهش یافت. بر اساس نتایج به‌‌دست آمده روش لخته‌‌سازی از طریق افزایش pHبه میزان 8/9، تکنیکی ساده و نسبتاً ارزان با راندمان بالاست و برای برداشت زی‌‌توده ریزجلبک Dunaliella salina در راستای اهداف خاص مناسب می‌‌باشد. 2 Today, microalgae are considered as an important source for the production of biofuels and pharmaceutical products. However, the lack of an efficient and economical method for dewatering and harvesting their biomass is is an important challenge to achieve this goal. The important issue for choosing the harvesting method are species characteristics, final product value and energy consumption. Therefore, in this study, the effect of flocculation method with pH change technique (range 6 to 11) using sodium hydroxide and hydrogen chloride on harvesting efficiency, and fatty acid content of Dunaliella salina was tested. The results of this study showed that with the addition of sodium hydroxide and increasing the pH from 8.2 to 9.8, the flocculation process increased upwards from 18 to 90% and then remained constant until: pH 11. In contrast, increasing hydrogen chloride and creating an acidic environment up to: pH equal to 6 had no effect on clot stimulation. The highest coefficient of biomass concentration was observed in alkaline treatment with pH: equivalent to 9.8 which was 10 times the initial concentration (at pH equal to 8.2 the effect of alkaline pH induction technique and the centrifuge technique on the fatty acids content of biomass was tested. In the next stage, the effect of alkaline pH induction technique and the centrifuge technique on the fatty acids content of biomass was tested. The analysis showed that the percentage of lipid and fatty acids of harvested biomass were significantly different from each other. Based on the obtained results, the flocculation method by increasing the pH by 9.8 is a simple and relatively inexpensive technique with high efficiency and is suitable for harvesting Dunaliella salina microalgae for specific purposes. 109 120 2018/05/222020/01/152020/05/82020/05/42019/12/22020/03/222020/04/52017/08/302020/09/102020/05/9 1399/2/20 2021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282020/06/202021/02/282021/02/28 1399/12/10 سامره اربابی samere arbabi دانشگاه چابهار Iran pariaakbary1355@gmail.com پریا اکبری paria akbary دانشگاه چابهار Iran paria.akbary@gmail.com زهرا امینی خویی Zahra Aminikhoei مرکز تحقیقات شیلات Iran zamini.41@gmail.com Microalgae Dunaliella salina pH change Harvest efficiency and fatty acids ریز‌‌جلبک Dunaliella salina تغییرpH راندمان برداشت اسید‌‌های چرب ##شکوری، م.، رضایی، م.، چاشنی دل، ی.، صفری، ر. و قلی‌پور، ح.، 1399. اثرات تغذیه با پودر جلبک اسپیرولینای (Spirulina platensis) ریزکپسوله شده و غیر کپسوله بر فعالیت آنزیم‌‌‌‌های آنتی‌‌اکسیدانی و قابلیت هضم مواد مغذی جوجه‌‌‌‌های گوشتی (راس 308). مجله علمی شیلات ایران، 29 (2): 146-139. DOI: 10.22092/ISFJ.2020.121802##گنجیان خناری، ع.، قاسم نژاد، م.، شکوری، م.، گنجیان خناری، ف،. چاشنی دل، ی.، خسروی، م.، روحی، ا. و فارابی، و،. 1393. لخته‌‌سازی و تهیه خمیر از میکرو جلبک سندسموس. فصلنامه علوم تکثیر و آبزی پروری، 4: 66-55. ##مشهدی نژاد، ا.، ریحانی، ر.، سرمد، ج. و زمانی ح. ا،. 1394. جداسازی بیومس ریزجلبک تک سلولی Chlorella sp.. با روش Electro-Coagulation-Flotation. نشریه علمی فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان، 3(4): 49-33. ##وزیر زاده، آ. و مقدس زاده، ح.، 1398. بررسی قابلیت ریزجلبک Chlorella vulgaris برای حذف نیترات و فسفات درغلظت و شرایط محیطی متفاوت با استفاده از رویه سطح پاسخ. مجله علمی شیلات ایران، 28 (1): 187-177. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.118936 ##Aasen, A., Eimhjellen, K. and Liaaen- Jensen, S., 1969. An extreme source of beta-carotene. Acta chemica scandinavica, 23: 2544-2549.##Ahmed, R.A., He, M., Aftab, R. A., Zheng, S., Nagi, M., Bakri, R. and Wang, C., 2017. Bioenergy application of Dunaliella salina SA 134 grown at various salinity levels for lipid production. Scientific Reports, 7: 1-10. DOI: 10.1038/s41598-017-07540-x##Ali, H.E.A., Shanab, S.M.M., Shalaby, E.A.A., Eldmerdash, U. and Abdullah, M.A., 2014. Screening of microalgae for antioxidant activities, carotenoids and phenolic contents. Applied Mechanics and Materials, 625: 156-159. DOI:10.4028/www.scientific.net/AMM.625.156##Ben-Amotz, A., 1999. Dunaliella β-carotene.In: Seckbach, J., (ed) Enigmatic microorganisms and life in extreme environments. 1 rd edn. Springer, Netherlands, UK. pp. 399-410##Bligh, E.G. and Dyer, W.J., 1959. A rapid method of total lipid extraction and purification. Canadian journal of biochemistry and physiology, 37(8): 911-917. DOI: 10.1139/o59-099##Borowitzka, M.A. and Borowitzka, L.J., 1988. Micro-algal biotechnology, Cambridge University Press, Cambridge, UK, 488P.##Borowitzka, M.A., 2013. Dunaliella: biology, production, and markets. In: Richmond, A. and Qiang-Hu, E., (ed) Handbook of microalgal culture. 2rd edn.Wiley, New York, USA. pp. 359-368 .##Cakmak, Y.S., Kaya, M. and Asan-Ozusaglam, M., 2014. Biochemical composition and bioactivity screening of various extracts from Dunaliella salina, a green microalga. EXCLI Journal, 13(3): 679-683. DOI: 10.17877/DE290R-6669##Kwon, H., Lu, M., Lee, E. Y. and Lee, J., 2014. Harvesting of microalgae using flocculation combined with dissolved air flotation. Biotechnology and Bioprocess Engineering, 19(1): 143-149. DOI: 10.1007/s12257-013-0433-y##Liu, J., Zhu, Y., Tao, Y., Zhang, Y., Li, A., Li, T., Sang, M. and Zhang, C., 2013. Freshwater microalgae harvested via flocculation induced by pH decrease. Biotechnology for Biofuels, 6(1): 98-103. DOI: 10.1186/1754-6834-6-98## ##Maji, G., Choudhury, S., Hamid, S., Prashanth, R. and Sibi, G., 2018. Microalgae harvesting via flocculation: impact of pH, algae species and biomass concentration. Methods of Microbiology and Molecular Biology, 1: 106-110. DOI: 10.31021/mmmb.20181106##Mercz, T.I., 1994. A study of high lipid yielding microalgae with potential for large-scale production of lipids and polyunsaturated fatty acids, Murdoch University.##Milledge, J.J. and Heaven, S., 2013. A review of the harvesting of micro-algae for biofuel production. Reviews in Environmental Science and Bio/Technology, 12(2): 165-178. DOI: 10.1007/s11157-012-9301-z##Moheimani, N.R., 2013. Long-term outdoor growth and lipid productivity of Tetraselmis suecica, Dunaliella tertiolecta and Chlorella sp. (Chlorophyta) in bag photobioreactors. Journal of Applied Phycology, 25(1): 167-176. DOI: 10.1007/s10811-012-9850-0##Morowvat, M.H. and Ghasemi, Y., 2016. Culture medium optimization for enhanced β-carotene and biomass production by Dunaliella salina in mixotrophic culture. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 7: 217-223. DOI: 10.1016/j.bcab.2016.06.008##Pal, D., Khozin-Goldberg, I., Didi-Cohen, S., Solovchenko, A., Batushansky, A., Kaye, Y., Sikron, N., Samani, T., Fait, A. and Boussiba, S., 2013. Growth, lipid production and metabolic adjustments in the euryhaline eustigmatophyte Nannochloropsis oceanica CCALA 804 in response to osmotic downshift. Applied Microbiology and Biotechnology, 97(18): 8291-8306. DOI: 10.1007/s00253-013-5092-6##Perez, L., Salgueiro, J.L., Maceiras, R., Cancela, Á. and Sanchez, Á., 2017. An effective method for harvesting of marine microalgae: pH induced flocculation. Biomass and Bioenergy, 97: 20-26. DOI: 10.1016/j.biombioe.2016.12.010##Sanyano, N., Chetpattananondh, P. and Chongkhong, S., 2013. Coagulation–flocculation of marine Chlorella sp. for biodiesel production. Bioresource Technology, 147: 471-476. DOI: 10.1016/j.biortech.2013.08.080##Spilling, K., Seppala, J. and Tamminen, T., 2011. Inducing autoflocculation in the diatom Phaeodactylum tricornutum through CO 2 regulation. Journal of Applied Phycology, 23(6): 959-966. DOI: 10.1007/s10811-010-9616-5##Spolaore, P., Joannis-Cassan, C., Duran, E. and Isambert, A., 2006. Commercial applications of microalgae. Journal of Bioscience and Bioengineering, 101(2): 87-96. DOI:10.1263/jbb.101.87##Teixeira, C.M.L.L., Kirsten, F.V. and Teixeira, P.C.N., 2012. Evaluation of Moringa oleifera seed flour as a flocculating agent for potential biodiesel producer microalgae. Journal of Applied Phycology, 24(3): 557-563. DOI: 10.1007/s10811-011-9773-1##Vandamme, D., Beuckels, A., Markou, G., Foubert, I. and Muylaert, K., 2015. Reversible flocculation of microalgae using magnesium hydroxide. BioEnergy Research, 8(2): 716-725. DOI: 10.1007/s12155-014-9554-1##Widowati, I., Zainuri, M., Kusumaningrum, H. P., Susilowati, R., Hardivillier, Y., Leignel, V., Bourgougnon, N. and Mouget, J.L., 2017. Antioxidant activity of three microalgae Dunaliella salina, Tetraselmis chuii and Isochrysis galbana clone Tahiti. Paper presented at 2nd International Conference on Tropical and Coastal Region Eco Development, IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, IOP Publishing, 012067, February 2017. DOI: 10.1088/1755-1315/55/1/012067##Wu, Z., Zhu, Y., Huang, W., Zhang, C., Li, T., Zhang, Y. and Li, A., 2012. Evaluation of flocculation induced by pH increase for harvesting microalgae and reuse of flocculated medium. Bioresource Technology, 110: 496-502. DOI: 10.1016/j.biortech.2012.01.101##Yang, F., Xiang, W., Fan, J., Wu, H., Li, T. and Long, L., 2016. High pH-induced flocculation of marine Chlorella sp. for biofuel production. Journal of Applied Phycology, 28(2): 747-756. DOI: 10.1007/s10811-015-0576-7 ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ تعیین اندازه چشمه مناسب تور گوشگیر سطحی مورد استفاده ماهی هوور مسقطی Katsuwonus pelamis Linnaeus, 1758)) به روش غیرمستقیم Determination of the appropriate mesh size of drift gillnet for Skipjack tuna (Katsuwonus pelamis (Linnaeus, 1758)) by indirect method 1 1 یکی از روش‌های استانداردسازی تورهای گوشگیر تعیین اندازه چشمه مناسب برای هر گونه بر اساس پارامترهای زیستی می‌باشد. مطالعه حاضر با هدف بررسی تعیین اندازه چشمه مناسب در تورهای گوشگیر شناور سطحی مخصوص صید ماهی هوور مسقطی (Katsuwonus pelamis) صورت پذیرفت. عملیات نمونه‌برداری با لنج در فصل بهار 1397 انجام گرفت. ابزار صید شامل تور گوشگیر شناور سطحی ماهی هوور مسقطی با اندازه چشمه‌ 160 میلیمتر به صورت کشیده بود. طول چنگالی و دور بدن در دو ناحیه از بدن ماهی هوور مسقطی صید شده اندازه‌گیری شد. از 394 عدد ماهی هوور مسقطی زیست سنجی شده، دامنه‌ طول چنگالی 77-38 سانتی‌متر با میانگین و انحراف معیار 90/5 ± 02/55 سانتی‌متر به‌‌دست آمد. بیشترین فراوانی طول ماهی هوور مسقطی در دامنه 58-48 سانتی‌متر با 77 درصد بود. معادله رابطه خطی بین طول چنگالی و محیط برانش به صورت 866/1FL+ 577/0Gop= با ضریب تشخیص 926/0 و رابطه خطی برای طول چنگالی و حداکثر دور بدن به صورت 750/9FL-922/0Gmax= با ضریب تشخیص 963/0 به‌دست آمد. میزان کشیدگی برای دور برانش 17 درصد و همین مقدار برای دور بدن 21 درصد تعیین شد. به طور کلی، براساس مطالعه حاضر می‌توان از تور گوشگیر سطحی با اندازه چشمه 136 میلی‌متر برای صید هوور مسقطی استفاده کرد که اندازه چشمه پیشنهادی تا حدی کوچکتر از حداقل اندازه چشمه مورد استفاده صیادان (140 میلی‌متر) می‌باشد. 2 One of the methods of standardization of gill nets is to determine the appropriate mesh size for each species. The purpose of this study was to determine. This study was aimed to determine the suitable mesh size of drift gillnets for catching skipjack (Katsuwonus pelamis).The sampling operation was carried out by the lange boat in the spring of 1397. The fishing tool consisted of drift gillnet for Skipjack tuna with a stretched mesh size of 160 mm. Fork length and body length were measured in two areas of skipjack tuna body. The total numbers of 394 specimens were measured, the fork length range was 38 to 77 cm with mean and standard deviation of 55.02 55 ± 5.90 cm. The highest frequency of Skipjack was in the range of 48-58 cm with 77%. The equations of linear relations between fork length and gill circumference: Gop = 0.577 FL + 1.866 with coefficient of determination 0.926 and linear relation for fork length and body circumference Gmax = 0.922 FL – 9.750 with a Coefficient of Determination 0.963 were gained. The elongation rate was 17% for gill circumference and 21% for the body circumference. In general, based on the present study, a drift gillnet with a mesh size of 136 mm can be used to capture Skipjack, which is slightly smaller than the minimum mesh size used by fishermen. 121 131 2018/05/222020/01/152020/05/82020/05/42019/12/22020/03/222020/04/52017/08/302020/09/102020/05/92020/01/15 1398/10/25 2021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282020/06/202021/02/282021/02/282021/02/28 1399/12/10 محمد صابری mohammad saberi گروه تولید و بهره‌برداری آبزیان، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران Iran m.mohammad2232@yahoo.com یوسف پیغمبری yousef paighambari گروه تولید و بهره‌برداری آبزیان، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران Iran sypaighambari@gau.ac.ir پرویز زارع parviz zare گروه تولید و بهره‌برداری آبزیان، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران Iran parvizzare58@yahoo.com سعید گرگین saeid gorgin گروه تولید و بهره‌برداری آبزیان، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران Iran sgorgin@gau.ac.ir منوچهر بابانژاد Manoochehr Babanezhad گروه آمار، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران Iran m.babanezhad@gu.ac.ir Katsuwonus pelamis Appropriate mesh size Drift gillnets Indirect method هوور مسقطی چشمه مناسب تور گوشگیر شناور سطحی روش غیر مستقیم ##آمارنامه کشاورزی، 1396. جلد دوم، چاپ اول، تهران، مرکز فناوری اطلاعات و ارتباطات، معاونت برنامه‌ریزی و اقتصادی. وزارت جهاد کشاورزی.##عابدی، ح. 1373. بررسی و تعیین تور گوشگیر مناسب صید گیدر در دریای عمان. مرکز تحقیقات شیلاتی آبهای دور چابهار، 53 صفحه.##درویشی، م. 1387. پویایی شتاسی و مدیریت جمعیت ماهی شیر در آبهای استان هرمزگان. پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات. دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندر عباس. 124 صقحه.##درویشی، م.، 1395. ارزیابی توسعه صید سنتی ماهی هوور (Thunnus tonggol) با استفاده از شاخص‌های دینامیک جمعیت در خلیج‌فارس و دریای عمان (آب‌های استان هرمزگان). پایان‌نامه دکتری. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 150 صفحه.##Baranov, F.I., 1948. Theory and assessment of fishing gear. Pishchepromizdat, Moskow. Ch.7. Theory of fishing with gillnets, translated from Russian by Ontario Department of Land and Forests, Maple, Ontario.##Dadzie, S., Abou-Saeedo, F., and Al-shalla, T., 1998. The onset of spawning in the silver pomfret, pampus argenteus (Euphrasen), in Kuwait waters and its implications for management. Fisheries management and ecology, 5(6): 501-510.##De Martini, E. E., Uchiyama, J. H., and Williams, H.A., 2000. Sexual maturity, sex ratio, and size composition of swordfish, Xiphias gladius, caught by the Hawaii-based pelagic longline fishery. Fishery Bulletin. 98: 489-506.##Dudley, R. G. and Aghanashinikar, A. P. 1990. Growth of Scomberomorus commersonin Oman based on length data. pp. 72-81. In: Report of the workshop on tuna and seerfishes in the north Arabian Sea region, Muscat, Sultanate of Oman, 7-9 February 1989.IPTP/89/GEN/16.##Efanov, S.F., Istomin, I.G., Delmatov, A.A, 1987. Influence of the form of fish body and mesh on selective properties of trawls. ICES C.M.B:13.##Eveson, P., Million, J., Sardenne, F. and Le Croizier, G. 2012. Updated growth estimates for skipjack, yellowfin and bigeye tuna in the Indian Ocean using the most recent tag-recapture and otolith data. In: IOTC Working Party on Tropical Tunas, (IOTC-2012-WPTT), pp. 14-23.##Goldberg, S. R., Au, D. W. 1986. The spawning of skipjack tuna from the southern Brazil as determined from histological examination of ovaries, in: Symmons, P.E.K., Miyake, P.M., Sahagawa, G.T. (eds.), Proc. ICCAT Conf. Int. Skipjack Year Program, Int. Comm. Conser. Atl. Tunas, Madrid, Spain, 277 - 284.##Grandcourt, E.; Al Abdessalaam, T. Z.; Francis, F.; Al Shamsi, A.T.; Al Ali, S.; Al Ali, K.; Hartmann, S. and Al Suwaidi, A., 2005. Assessment of the fishery for Kingfish (Kanaad/Khabat), Scomberomorus commerson, in the waters off Abu Dhabi Emirate. (Project no. 02-23-0008-05) Marine Environmental Research Centre. United Arab Emirate. 128 p.##Grande M., Murua H., Zudaire I., Goni N., Bodin N. 2013. Reproductive timing and reproductive capacity of the Skipjack Tuna (Katsuwonus pelamis) in the western Indian Ocean. Fisheries Research, 156: 14-22.##Grande, M., Murua, H., Zudaire, I, and Korta, M., 2010. Spawning activity and batch fecundity of skipjack, Katsuwonus pelamis, in the Western Indian Ocean, In: IOTC Working Party on Tropical Tunas, (IOTC-2010-WPTT), pp. 12-47.##Hubert, W. A., Pope, K. L. and Dettmers, J. M. 2012. Passive capture techniques. Fisheries techniques, 3rd edition. American Fisheries Society, Bethesda, Maryland. Pp 223-265.##IFO, 2016. Iran (Islamic Republic of) National Report to the Scientific Committee of the Indian Ocean Tuna Commission, 2016. IOTC–2016–SC19–NR11, 22p.##IOTC, 2018. Report of the 22nd Session of the Indian Ocean Tuna Commission, IOTC-2018-S22-R[E], 21-25 May 2018, Bangkok, Thailand. 144 pp. Available at http://www.iotc.org/meetings/22nd-session-indian-ocean-tuna-commission-s22 [Accessed on 04.12.2-18].##Jude, D., 2000. Optimization of mesh size for the commercial exploitation of Tuna (Family: Scombridae) in Thoothukudi waters. M.F.Sc., Thesis, Tamilnadu Veterinary and Animal Sciences University, India.72p##Koya, K. P. S., Joshi, K. K., Abdussamad, E. M., Rohit, P., Sivadas, M., Somy, K., Ghosh, S., Koya, M., Dhokia, H. K., Prakasan, D., Koya, V. A. K., Manju, S. 2012. Fishery, biology and stock structure of skipjack tuna, Katsuwonus pelamis (Linnaeus, 1758) exploited from Indian waters. Indian J Fish 59:2, 39-47.##Kumar, R., Sundaramoorthy, B., Neethiselvan, N., Athithan, S., Kumar, R., Rahangdale, M. 2019. Length based population characteristics and fishery of Skipjack tuna, Katsuwonus pelamis (Linnaeus, 1758) from Tuticrion waters, Tamil Nadu, India. Indian Journal of Geo Marine Sciences, 48: 52-59. ##Mendes, B., fonseca, P., Campos, A. 2006. Relationships between opercular girth, maximum girth and total length of fsh species caught in gillnet and trammel net selectivity surveys off the Portuguese coast. Journal of Applied Ichthyology, 22: 209-213.##Millar, R. B., and Fryer, R. J., 1999. Estimating the size-selection curves of towed gears, traps, nets and hooks. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 9: 89–116.##Millar, R. B., and Holst, R., 1997. Estimation of gillnet and hook selectivity using log-linear models. ICES Journal of Marine Science, 54: 471–477.##Natssume M., t. Matasuishi 2003. Necessary and suffcient conditions of mesh size and hanging ration and hanging-out ratio for fish to pass through the mesh. – Bulletin of the Japanese Society of Scientifc Fisheries, 69: 596-601.##Norungee, D., Kawol, D. 2011. Macroscopic study on some aspects of the reproductive biology of skipjack tuna (Katsuwonus pelamis) in the Western Indian Ocean (D. Norungee and D. Kawol). IOTC–2011–WPTT13–25 Rev_1.##Pet, S.J.; Pet-Soede, C. and Van Densena, W.L.T., 1995. Comparison of methods for the estimation of gillnet selectivity to tilapia, cyprinids and other fish species in a Sri Lankan reservoir. Fisheries Research. Vol. 24, pp: 141-164.##Reis, E. G., Pawson, M. G., 1999. Fish morphology and estimating selectivity by gillnets. Fisheries Research, 39: 263-273.##Stequert, B., Ramcharrun, B. 1996. La reproduction du listao (Katsuwonus pelamis) dans le bassin ouest de l´ocean Indien. Aquat. Living Resour. 9, 235-247.##Stergiou K. i., V. s. Karpouzi 2003. Length-girth relationships for several marine fshes. Fisheries Research, 60: 161-168.##Suhendrata, T. 1984. The effect of mesh size drift gill net for skipjack (Katsuwonus pelamis Linnaeus) caught in Pelabuhan Ratu, Food and Agriculture Organization of the United Nations, 31: 63-70.##Thomas, S. N., 2009. Gill Nets and their Operation. In: Handbook of Fishing Technology, Central Institute of Fisheries Technology, Cochin, India, 372p.##Timohina, O. I., Romanov, E. V. 1996. Characteristics of ovogenesis and some data on maturation and spawning of skipjack tuna, Katsuwonus pelamis (Linnaeus, 1758), from the western part of the Equatorial Zone of the Indian Ocean. IPTP Coll., Colombo, Sri Lanka 9, 247-257.##Videler J. J. 1993. Fish swimming. Chapman and Hall, Fish and Fisheries Series 10: 260.##Vilela, M.J.A., Castello, J.P. 1993. Dinamica poblacional del barrilete (Katsuwonus pelamis) explotado em la region sudestesur del Brasil em el periodo 1980–1986. Frente Maritimo, Sec. A 14, 111–124.##Wootton, R. J., 1999. Ecology of teleost fishes. 2nd edn. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, the Netherlands.##Yuksel, F., Gunduz, F. and Demirol, F., 2014. Gillnet selectivity for Luciobarbus esocinus (Heckel, 1843) in Keban Dam Lake, Elazig, Turkey. Indian Journal of Fisheries, 61(2), 108-111.##Zar, J.H., 1999. Biostatistical Analysis, 4th Edition. Prentice Hall, Upper Saddle River, NJ. ##

مقاله علمی – پژوهشی: اثر زیر حد کشندگی سم دیازینون بر استروئید‌‌زایی و وضعیت جنسی مولدین نر ماهی قرمز (Carassius auratus) Effect of sub-lethal toxicity of diazinon on steroid detoxification and quality of sexual production in male goldfish breeders (Carassius auratus) 1 1 تعیین اثرات زیر حد کشندگی سم دیازینون بر استروئیدزایی و وضعیت جنسی در مولدین نر ماهی قرمز در این تحقیق مورد بررسی قرار گرفت. به منظور تعیین میزان LC50 ماهیان در غلظت‌‌های 9، 10، 11، 5/12، 15 و 20 میلی‌‌گرم در لیتر دیازینون، در آکواریوم قرار گرفتند. پس از تجزیه و تحلیل نتایج با استفاده از نرم‌‌افزار پروبیت، مقدار LC50 در 96 ساعت مشخص شد. مقادیر LC50 طی 96 ساعت (40/11 میلی‌‌گرم در لیتر) به‌دست آمد و ماهیان براساس غلظت‌‌های، 25/0، 50/0 و 75/0 درصد LC50 در 96 ساعت، و گروه شاهد (فاقد سم دیازینون) تیماربندی شدند و به مدت 2 ماه در غلظت‌‌های مذکور قرار گرفتند. در پایان دوره آزمایش، سطوح استروئیدهای جنسی (17 بتا استردایول و تستوسترون) و فاکتورهای کیفیت اسپرم از قبیل جمع اسپرم‌‌دهی، طول دوره تحرک، درصد اسپرم‌‌های متحرک، تراکم اسپرم، اسپرماتوکریت و شاخص گنادی در مولدین نر مورد بررسی قرار گرفت. نتایج نشان داد که سم دیازینون سبب کاهش معنی‌دار تستوسترون و 17 بتا- استرادیول در تیمارهای 50/0 و 75/0 درصد نسبت به شاهد (صفر درصد) شد (05/0p<). اختلاف معنی‌‌داری در برخی از پارامترهای کیفی اسپرم مثل حجم اسپرم‌، تراکم اسپرم و اسپرماتوکریت بین تیمار شاهد و تیمار 25/0 مشاهده نشد، اما با افزایش میزان سم دیازینون (75/0-25/0 درصد) طول دوره تحرک اسپرم کاهش معنی‌داری‌ داشت (05/0p<). درصد اسپرم‌های متحرک نیز در تیمار شاهد نسبت به تیمار‌های دریافت‌‌کننده بالاتر بود و با افزایش غلظت سم دیازینون روند کاهشی داشت (05/0p<). شاخص گنادوسوماتیک در تیمار شاهد نسبت به تیمار‌های دریافت‌‌کننده به ‌‌طور معنی‌‌داری بالاتر بود (05/0p<) و با افزایش میزان سم روند کاهشی نشان داد. در مجموع، سم دیازینون در محیط‌‌های آبی حتی در غلظت‌‌های زیر حد کشنده سبب تغییرات منفی در سطوح استروئیدهای جنسی و کیفیت گناد نر در ماهی قرمز می‌‌شود. 2 Determination of the sub-lethal effects of diazinon toxin carried out on steroidogenesis and quality of sexual production in male goldfish breeders. For this purpose, fish were first exposed to different lethal concentrations of diazinon toxin (9, 10, 11, 12.5, 15 and 20 mg/L) and LC50 values were analyzed for 96 h using probit software. The amount of LC50 was 11.4 in 96 hours and fish were assorted according to 0, 0.25, 0.50 and 0.75 percent of LC50 in 96 hours and were put there for 2 months. At the end of the experiment, the level of sex hormones and the quality of sexual production were studied in male broodstock. The results showed that diazinon toxin significantly reduced testosterone and 17-β-estradiol levels in the 0.50 and 0.75 mg/L treatments compared to the control (p<0.05). There was no significant difference in some sperm quality parameters such as sperm volume, sperm density and spermatocrit between the control and 0.25 treatment. By increasing the concentration of diazinon toxin (from 0.25 to 0.75 %), the duration of sperm motility decreased significantly. The percentage of motile sperm in the control treatment was higher than other treatment and it was decreased with increasing diazinon toxin concentration. The Gonadosomatic Index in the control treatment was significantly higher than the other treatments (p<0.05) and showed a decreasing trend with increasing toxicity. In conclusion, diazinon toxin in the aquatic environment, even at sub-lethal concentrations, causes undesirable changes in the sex steroid indices and quality of male gonads in goldfish. 133 142 2018/05/222020/01/152020/05/82020/05/42019/12/22020/03/222020/04/52017/08/302020/09/102020/05/92020/01/152020/03/3 1398/12/13 2021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282020/06/202021/02/282021/02/282021/02/282021/02/28 1399/12/10 حنانه صمدی Hannaneh Samadi گروه شیلات، واحد قائمشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، قائمشهر، ایران Iran hana_asal_2006@yahoo.com سید روح الله جوادیان Seyed Rohollah Javadian گروه شیلات، واحد قائمشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، قائمشهر، ایران Iran Ro.javadian@gmail.com* محمدرضا ایمانپور Mohammad Reza Imanpour گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران Iran Manpoor@gau.ac.ir Goldfish Diazinon Sexual steroids Sperm quality ماهی قرمز دیازینون استروئیدهای جنسی کیفیت اسپرم ##ایمانپور، م.ح. و کمالی، 1.، 1385. بررسی تکثیر مصنوعی و پرورش لاروهای ماهی قرمز (Carassius carassius gibelio) توسط HCG. مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، 13(2): 172-165##پژند، ذ.، 1378. تعیین غلظت کشنده سموم حشره‌‌کش دیازینون و علف کش بوتاکلر بر روی دو گونه از ماهیان خاویاری قره‌‌برون و ازون برون. پایان نامه کارشناسی ارشد رشته شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان. صفحات 12-16.##حنانی کاشانی، ز.، ایمانپور، م.ح.، زادمجید، و. و مازندرانی، م.، 1396. تعیین درجه سمیت و تاثیر سم دیازینون بر شاخص‌‌های بیوشیمایی خون مولدین نر ماهی قرمز (Carassius auratus). فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان. 5(1): 66- 59.##شموشکی، م.، سلطانی، م.، شریف پور، ع. و ایمانپور، م.ر.، 1390. بررسی اثر سم دیازینون بر پارامترهای خونی مولدین نر ماهی سفید. مجله دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی، 5(3): 33-23. ##کردجزی، م. و ایمانپور، م.ح.، 1387. اثر سم بنومیل روی برخی خصوصیات اسپرم شناختی در ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). اولین همایش ملی تالاب‌‌های ایران. اهواز.##کشتکارلنگرودی، ل. و تهرانی‌‌فرد، ا.، 1397. تاثیر زیر حد کشندگی سم دیازینون بر پارامترهای خونی و بافت‌‌های آبشش و عظله بچه ماهی قره‌‌برون. نشریه توسعه آبزی‌‌پروری، 12(3): 129-119. ##وثوق، غ.ح. و مستجیر، ب.، 1373. ماهیان آب شیرین . انتشارات دانشگاه تهران، 317 ص.##Abadin, H., Todd, D., Wohlers, D. and Hard, C.M., 2009. Priority data needs for Diazinon. Syracuse Research Corporation. 75 P. ##Alavi, S.M.H., Cosson, J. and Kazemi, R., 2006. Semen characteristics in Acipenser persicus in relation to sequential stripping. Journal of Applied Ichthyology, 22: 400-405. DOI:10.1111/j.1439-0426.2007.00994.x.##Banaee, M., Sureda, A., Mirvaghefi, A.R. and Ahmadi, K., 2013. Effects of diazinon on biochemical parameters of blood in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Pesticide bBiochemistry and ## Physiology, 99: 1-6. DOI:10.1016/j.pestbp.2010.09.001.##Bagheri, T., Imanpoorb, M.R., Jafarib, V. and Bennetau-Pelissero, C., 2013. Reproductive impairment and endocrine disruption in goldfish by feeding diets containing soybean meal. Animal Reproduction Science, 139: 136-144. DOI:10.1016/j.anireprosci.2013.02.003##Barannikova, I.A., Bayunova, L. and Semenkova, T.B., 2004. Serum levels of testosterone, 11- ketotestosterone and oestradiol-17β in three species of sturgeon during gonadal development and final maturation induced by hormonal treatment. Journal of Fish Biology, 64: 1330-1338. DOI:10.1111/j.0022-1112.2004.00395.x##Butts, I.A.E., Litvak, M.K. and Trippel, E.A., 2010. Seasonal variations in seminal plasma and sperm characteristics of wild-caught and cultivated Atlantic cod (Gadus morhua). Theriogenology, 73: 873-885. DOI:10.1016/j.theriogenology.2009.11.011##Cox, J., 2000. Diazinon use threatens Salmon survival, Environmental science. http://www.pesticide.org.##Di Giulio, R.T. and Hinton, D.E., 2008. The toxicology of fishes. Taylor and Francis Group. 1101 P.##Eman, A., Abd, E.G., Mohamed, M.M., Kandiel, A., Abbass Adel, A. and Shaheen, A., 2011. Impact of some organophosphorus insecticides on growth performance, fecundity and semen charachteristics in Nile Tilapia (Oreochromis niloticus). Lucrari Stiinifice seria Medicina Veterinara, 54:150-160. ##Fadakar, F., Majazi Amiri, B., Mirvaghefi, A.R. and Nematollahi, M.A., 2011. In vitro effects of diazinon on male reproductive tissue and sperm motility of Caspian kutum (Rutillus frissi kutum). Research Journal of Environmental Toxicology, 5(2): 108-116. DOI:0.3923/rjet.2011.108.116##Giron-Perez, M.I., Santerre, A., Gonzalez-Jaime, F., Casas-Solis, J., Hernández-Coronadoa, M., Peregrina-Sandoval, J., Takemura, A. and Zaitseva, G., 2007. Immunotoxicity and hepatic function evaluation in Nile tilapia (Oreochromis niloticus) exposed to diazinon. Fish and Shellfish Immunology, 23: 760-769. DOI:10.1016/j.fsi.2007.02.004.##Guzman, J.M., Norberg, B., Ramos, J., Mylonas, C.C. and Manano, E.L., 2008. Vitellogenin, steroid plasma levels and spawning performance of cultured female Senegalese sole (Solea senegalensis). General and Comparative Endocrinology, 156: 285–297. DOI:10.1016/j.ygcen.2008.02.002.##Hayes, W.J. and E.R. Laws (ed.). 1990. Handbook of Pesticide Toxicology, Vol. 3, Classes of Pesticides. Academic Press, Inc., New York. USA. ##Hedayati, A. and Arsham A., 2012. Endocrine Disruption Induced by Sub-Lethal Mercury Chloride on Hormone Indices of Sea bream. World Journal of Fish and Marine Sciences, 4: 125-130.##Lee, L.E., Caldwell, S.J. and Gibbons, J., 1997. Development of a cell line from skin of goldfish (Carassius auratus), and effects of ascorbic acid on collagen deposition. Histochemistry and Cell Biology, 29: 31–43. DOI:10.1023/A:1026412817431##Matthiessen, P., 2003. Endocrine disruption in marine fish. Pure and Applied Chemistry, 75: 2249-2261.##Maxwell, L.B. and Dutta, H.M., 2005. Diazinon-induced endocrine disruption in bluegill sunfish, Lepomis macrochirus. Ecotoxicology and environmental safety, 60: 21-27. DOI:10.1016/j.ecoenv.2003.12.015.##Olsen, K.H., Sawisky, G.R. and Stacey, N.E. 2006. Endocrine and milt responses of male crucian carp (Carassius carassius) to periovulatory females under Weld conditions. General and Comparative Endocrinology, 149: 294-302##Perchec, G., Cosson, J., Andre, F. and Billard, R., 1995. Degradation of the quality of carp sperm by urine contamination during stripping. Aquaculture, 129: 135–136.##Sapozhnikova, Y., Bawardi, O. and Schlenk, D., 2004. Pesticides and PCBs in sediments and fish from the Salton Sea, California, USA. Chemosphere, 55: 797-809. DOI:10.1016/j.chemosphere.2003.12.009.##Sarkar, R. and Mohanakumar, K.P., 2000. Effects of an organophosphate pesticide, quinalphos, on the hypothalamo pituitary gonadal axis in adult male rats. Journal of Reproduction and Fertility, 118(1): 29-38. DOI: 10.1530/jrf.0.1180029.##Sofikitis, N., Giotitsas, N., Tsounapi, P., Baltogiannis, D., Giannakis, D. and Pardalidis, N., 2008. Hormonal regulation of spermatogenesis and spermiogenesis. Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology, 109: 323–330. DOI:10.1016/j.jsbmb.2008.03.004.##Tan-Fermin, J.D., Pagador, R.R. and Chavez, R.C., 1997. LHRHa and pimozide- induced spawning of Asian catfish Clarias macrocephalus (Gunther) at different times during an annual reproductive. Aquaculture, 148: 323-331. DOI:10.1016/S0044-8486(96)01423-8.##Tehranifard, A., Fazeli, M. S. and Piri, M., 2007. Determine the LC 96 hours of mixed Linear anionic detergent and diazinon on Rutilus frisii kutum. Marine Science and Technology, 55-59. DOI:10.2495/WP100181##Tiersch, T.R., 2001. Cryopreservation in aquarium fishes. Marine Biotechnology, 3: 212–223. DOI: 10.1007/s10126001-0044-z.##Turner, E. and Montgomerie, R., 2002. Ovarian fluid enhances sperm movement in Arctic charr. Journal of Fish Biology, 63: 1570-1579. DOI:10.1111/j.1095-8649.2002.tb02449.x.##Vandergeest, H.G., Studijfzand, S.C., Kraak, M.H.S. and Admiraal, W., 1997. Impact of diazinon calamity in 1996 on the quantic macroinvertebrates in the river mesue. The Netherlands. Journal of Aquatic Ecology, 30:327-330. ##

مقاله علمی – پژوهشی: تحلیل اقتصادی- اجتماعی بازار ماهی‌‌ تازه استان گلستان Socio-Economic analysis of fresh Fish marketing in Golestan province 1 1 به منظور تحلیل اقتصادی - اجتماعی بازار ماهی، پرسشنامه‌‌ای از طریق مصاحبه با صاحب‌‌نظران و جستجو در منابع علمی طراحی شد. در سال 1398 اطلاعات 72 ماهی‌‌فروشی در سطح استان گلستان جمع‌‌آوری شد. با توجه به آزمون کلموگروف اسمیرنوف و ناپارامتریک بودن داده‌ها برای تجزیه تحلیل و مقایسه عوامل مستقل و وابسته از آزمون‌های کروسکال والیس و من ویتنی یو استفاده شد. علاوه بر سودآوری و محاسبه سرانه هر یک از عوامل اقتصادی برای اولویت‌‌بندی مشکلات از آزمون فریدمن و ارزیابی ویژگی‌‌های اجتماعی فروشندگان از رگرسیون خطی استفاده شد. میانگین فروش سالانه هر ماهی‌‌فروشی 3/23 میلیون تومان بود که حدود 60 درصد سوددهی دارد. تنها 36 درصد شهرستان‌‌های استان ماهی‌‌فروشی داشتند. سرانه درآمد ماهی‌‌فروشان حدود 22 میلیون و سرانه سود آنان 5/13 میلیون تومان است. روزانه به طور متوسط حداقل 45 و حداکثر 528 کیلوگرم فروش دارند. مهم‌‌ترین مشکلات بازار ماهی آنها کاهش قدرت خرید مشتریان، رقبای زیاد، کمبود ذخایر دریایی و فضای کم و نامناسب است. فروشندگان با سابقه بالای 15 سال رقیب زیاد و کمبود ذخایر دریایی و خرده فروشان اجاره سنگین، مالیات و عوارض را مهم‌‌ترین مشکل بازار نسبت به گروه دیگر ‌‌می‌‌دانستند. در مقابل، عمده‌فروشان کمبود ذخایر دریایی و افزایش صید غیرمجاز را مشکل اصلی‌‌تر می‌‌دانستند. فروشندگان زیر 35 سال نیز بیشتر از کمبود سرمایه و اجاره‌های سنگین رنج می‌‌بردند. سالانه فروشگاه‌‌های با سابقه بالای 15 سال 1/39 میلیون تومان درآمد و فروشندگان با تحصیلات بالاتر از دیپلم 47/33 تن فروش بیشتر نسبت به گروه مقابل ایجاد می‌‌کنند. بنابراین، ساماندهی بازار با تشویق به راه‌‌اندازی فروشگاه‌های ماهی‌‌فروشی در شهرستان‌‌‌‌های فاقد بازار و همچنین کمک به افزایش درآمد شهروندان گلستانی می‌‌تواند کمک‌‌های موثری در افزایش فروش و در نتیجه مصرف آبزیان باشد. 2 In order to analyze the socio-economic of the fish market, a questionnaire was designed through interviews with experts and searching for scientific sources. In 2019, the questionnaire was then collected for 72 fishmonger Golestan province. According to Kolmogorov-Smirnov test and nonparametric data, Kruskal-Wallis and Mann-Whitney U tests were used to analyze and compare independent and dependent factors. In addition, the profitability and per capita of each economic factor were calculated. To prioritize problems from the Friedman test and linear regression was used to assess the social characteristics of sellers. The average annual sales per fishmonger were 23/3 million tomans, which is about 60 percent profitable. Only 36 percent of the provinces had fish store. Fishmonger's per capita income is about 22 million and their profit per capita is 13/5 million tomans. On average they sell at least 45 kg and 528 kg daily. The most important problems in the fish market are the reduce customers' purchasing power, high competition, low marine reserves and low and unsuitable space. Fishmonger with over 15 years of experience, high competition and low marine reserves, and fish retailer heavy rent and tax as knew the most important market problem for the other group. In contrast, wholesalers saw low of marine reserves and the increase in illegal fishing as a major problem. Sellers under 35 years were also more upset about the lack of capital and heavy rents. Shops with more than 15 years of experience earn 39/1 million tomans a year and higher education than the retailers' diplomas generate 33/47 tons more than the other group. Therefore, market regulation by encouraging the launch of fish shops in non-market towns as well as helping to increase the income of Golestan citizens can be effective in boosting sales and consequently the consumption of fish. 143 154 2018/05/222020/01/152020/05/82020/05/42019/12/22020/03/222020/04/52017/08/302020/09/102020/05/92020/01/152020/03/32020/03/5 1398/12/15 2021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282020/06/202021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/28 1399/12/10 افشین عادلی Afshin Adeli دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان Iran afshinadeli@yahoo.com مجید استارمی Majid Estarami دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان Iran majidstarmi475@gmail.com سید مهرداد حسینی Seyed Mehrdad Hosseini دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان Iran hosseini_1986@yahoo.com Fresh fish Income Fish market Fishmonger Golestan Province ماهی تازه درآمد بازار ماهی ماهی فروش استان گلستان ##رحیمی بایگی، س.، کهنسال، م. و دوراندیش، آ.، 1393. پیش‌‌بینی تقاضای انواع گوشت در مناطق شهری ایران با استفاده از رهیافت الگوریتم ژنتیک. مجله اقتصاد کشاورزی. 7(3): 64-49.##رفیعی، ح.، یزدانی، س.، حسینی، س،ص.، چیذری، ا. ح. و صالحی، ح.، 1391. بررسی یکپارچگی مکانی بازار ماهیان استخوانی دریای شمال؛ کاربردی از رهیافت همگرایی فصلی داده‌‌های ماهیانه. مجله اقتصاد کشاورزی. 6(2): 171-153.##سازمان شیلات ایران، 1397. سالنامه آماری سازمان شیلات ایران 1397-1392. معاونت برنامه‌‌ریزی و مدیریت منابع سازمان شیلات ایران. دفتر برنامه‌‌ریزی و بودجه.٦4 صفحه.##عادلی، ا.، 1394. بررسی برخی عوامل موقعیتی مؤثر در رفتار مصرف‌‌کنندگان خانگی ماهی در تهران. نشریه شیلات، 67(2): 261-251.DOI: 10.22059/JFISHERIES.2014.51651## عادلی، ا. و شعبانپور، ب.، 1386. بررسی تغییر رفتار شهروندان تهرانی در مصرف آبزیان، مجله علمی شیلات ایران. 16(2):126-117 10.22092/ISFJ.2007.115022.Doi:##عادلی، ا.، غفاری، ط.، اجاق، س.م. و واحدی، م.، 1398. ارزیابی عوامل موثربر روند خرید و فروش بازارهای ماهی بنادر استان گیلان. فصلنامه علمی شیلات ایران. 28(3): 65-55.DOI: 10.22092/ISFJ.2019.119010 ## ##محمد‌‌رضایی، ر.، حقیقت، ج.، قهرمان‌‌زاده، م. و عطایی سلوط، ک.، 1390. بررسی حاشیه بازاریابی ماهیان پرورشی مزارع گرم‌‌آبی استان مازندران. مجله اقتصاد کشاورزی. 5(1): 165-143.##Abah, D., Zaknayiba, D.B. and Simon, E., 2013. Economic Analysis of Fish Marketing in Lafia Local Government Area of Nasarawa State, Nigeria. Production Agriculture and Technology Journal, 9(2): 54-62. ISSN: 0794-5213##Alam, M.J., Yasmin, R., Rahman, A., Nahar, N., Pinky, N.I. and Hasan, M., 2010. A study on fish marketing system in Swarighat, Dhaka, Bangladesh. Nature and Science, 8(12): 96-103. ISSN: 1545-0740##Ali, E.A., Gaya, H.I.M. and Japed, T.N., 2008. Economic analysis of fresh fish marketing in Maiduguri Tambour market and Kachalari Alan Dam landing site of northeastern Nigeria. Journal of Agriculture Social Sciences, 4: 23-26. ISSN Online: 1814–960X##Al-Mazrooei, N., Chomo, G.V. and Omezzine, A., 2001. Consumer purchase behavior of seafood products in Oman. Journal of International Food & Agribusiness Marketing, 13(4): 5-22. DOI:10.1300/J047v13n04_02##Bukenya, J.O., Hyuha, T., Twinamasiko, J. and Molnar, J.J., 2012. Economics of Fish Marketing in Central Uganda: A Preliminary Analysis (No. 1372-2016-109002). DOI: 10.22004/ag.econ.119527##Choosey, P., Melena, D., Varma, A. and Sexena, G., 2014. Fish marketing system in4Bhopal (M. P.). Biological Forum- An International Journal, 6: 19-21. ##Dogondaji, S.D. and Baba, K.M., 2010. Income Distribution in Large Scale Irrigation Projects: A Case Study of Dry Season Rice Farmers at the Bakolori Irrigation Project, Zamfara State, Nigeria. A paper presented at the 24thannual National Conference of the Farm Management of Nigeria held at the Adamawa StateUniversity, Mubi. 11-14thOctober.##Jamali, A.B., Anisuzzaman, M. and Minar, M.H., 2013. Present status of fish marketing in Gopalpur Upazila of Tangail district. Journal of Aquatic Science, 1(2): 24-30. DOI:10.12691/jas-1-2-1##Kaygisiz, F. and Eken, M., 2018. A research on determination of fish marketing margins in Istanbul province of Turkey. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 18(6): 801-807. DOI: 10.4194/1303-2712-v18_6_06##Lawal, W.L. and Idega, E.O., 2004. Analysis of Fish Marketing in Benue State. A paper presented at 2004 Annual Conference of the Association of Agricultural Economists (NAAE) Held at A.B.U. Zaria, November, 3-5.##Olubunmi, A. and Bankole, A.F., 2012. Determinants of income from fish marketing in Ibarapa area of Oyo state, Nigeria. Science Journal of Agricultural Research and Management. ISSN: 2276-8572 ##Rao, P.S., 1983. Fishery economics and management in India. Pioneer Publishers and Distributors, Mumbai, 197-217.##Ravindranath, K., 2008. February. Domestic marketing of fish and fishery products in India–Opportunities and challenges. In National Workshop on Development of Strategies for Domestic Marketing of Fish and Fishery Products: 43-48.##Sen, A.K., Hasan, M.M., Rahman, M.L., Ahsan, M.E., Islam, S. and Haque, M.R., 2009. Marketing system of fishes and socioeconomic condition of fish retailers in Madaripur town. Journal of Agroforestry and Environment, 3: 69-72. ISSN 1995-6983. ##

مقاله علمی – پژوهشی: تعیین شرایط بهینه پیش کشتار کپور معمولی با استفاده از شاخص TBA و روش سطح پاسخ (RSM) Optimization of common carp pre-slaughter by using TBA index and Response Surface Methodology (RSM) 1 1 کیفیت گوشت ماهی تحت تاثیر عوامل متعددی از جمله روش کشتار و همچنین شرایط پرورش قبل از کشتار می‌باشد. هدف این تحقیق بررسی تاثیر شاخص‌‌های زمان قطع غذا (Xt)، تراکم (Xn) و وزن ماهی ( ) به ‌عنوان عوامل تاثیر گذار قبل از کشتار بر میزان TBA فیله کپور معمولی (Cyprinus carpio) با استفاده از روش سطح پاسخ و مدل باکس- بنکن و بهینه سازی عددی مدل برای رسیدن به کمترین میزان TBA بوده است. ماهی کپور معمولی پس از سازگاری تحت تیمارهای قطع غذا، تراکم و وزن پس از ۱، 4 و 7 روز برداشت و به روش خفه شدن خارج از آب کشتار و فیله گردید. نتایج نشان داد که کمترین میزانTBA بر پایه مدل درجه دوم در شرایط آزمایشی با سطح پایین (Xn) (4 عدد)، سطح پایین (Xw) (500 گرم) و سطح بالای (Xt) (7 روز قطع غذا) بود. میزان TBA در شرایط پیشنهادی با مدل 6842/0 (میلی‌گرم مالون دی آلدئید در کیلوگرم گوشت ماهی) تعیین گردید که پس از انجام تست اعتبارسنجی عملی در شرایط بهینه برابر 701/0 اندازه‌گیری گردید. این تفاوت و خطای ناچیز میزان TBA بین مدل و شرایط عملی نشان از صحت و اعتبار مدل پیشنهادی و نتایج بدست آمده دارد. لذا، نتایج این تحقیق نشان داد که استفاده از روش سطح پاسخ برای بهینه سازی شرایط پیش از کشتار کپور معمولی مناسب بوده است و نیز مدل درجه دوم می‌تواند برای پیش‌بینی متغیر پاسخ در شرایط پیش کشتار متفاوت استفاده گردد. 2 The quality of fish flesh is affected by several factors including slaughtering methods and pre-slaughter conditions. In this study the effect of main operational variables such as fasting time (Xt), density (Xn) and fish weight (Xw) in the TBA value of common carp fillet has been evaluated and analyzed using the response surface method and Box-Behnken model. A numerical optimization model was performed to obtain the minimum amount of TBA in the fillets. Adapted fish treated by fasting time, density and weight and then harvested after 1, 4 and 7 days, slaughtered by smothering out of water and then fillet. The results showed that the lowest TBA value on the second-order model was obtained at low level of (Xn) (4 fish numbers), low level of (Xw) (500 g) and high levels of (Xt) (7 days fasting time). The optimal TBA value was determined 0.6842 by model which was measured 0.701 after the practical validation test in optimal condition which indicating the high accuracy of the model to determine the optimum pre-slaughter. Therefore, the results of this study showed that using the response surface method is appropriate to optimize pre-slaughter conditions of common carp and also the second-order model can be used to predict the response variable in difference conditions of pre-slaughter. 155 166 2018/05/222020/01/152020/05/82020/05/42019/12/22020/03/222020/04/52017/08/302020/09/102020/05/92020/01/152020/03/32020/03/52020/07/6 1399/4/16 2021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282020/06/202021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/28 1399/12/10 غلامرضا بختیاری gholamreza Bakhtiari دانشگاه زابل، دانشکده منابع طبیعی، گروه شیلات Iran Bakhtiari.gholamreza1399@gmail.com ابراهیم علیزاده دوغیکلایی Ebrahim Alizadeh Doughikollaee دانشگاه زابل، دانشکده منابع طبیعی، گروه شیلات Iran Bakhtiari.gholamreza1399@gmail.com محسن شهریاری مقدم Mohsen Shahriari Moghadam دانشگاه زابل، دانشکده منابع طبیعی، گروه محیط زیست Iran mohsen.mshahriari@gmail.com محسن صمیمی Mohsen Samimi گروه مهندسی شیمی، دانشکده انرژی، دانشگاه صنعتی کرمانشاه Iran Mohsen.samimi351@gmail.com Cyprinus carpio Slaughtering Fasting time Box-Behnken model کپور معمولی کشتار قطع غذا مدل باکس- بنکن ##اورعی، ف.، حسینی، س.ا.، ذریه زهرا، س.م.ج. و صفری، ر.، 1399. تعیین حداقل غلظت بازدارندگی عصاره اتانولی پوست پرتقال و تاثیر آن بر فلور باکتری‌های مولد فساد در فیله فیل ماهی (Huso huso) در زمان نگهداری در یخچال. مجله علمی شیلات ایران، ۲۹ (۳): 25-۳۶. ##پودینه،ا.، علیزاده دوغیکلایی، ا.، شهریاری مقدم، م. و احمدی فر، ا.، 1399. تاثیر اسانس آویشن به همراه پد جاذب بر کیفیت و ماندگاری فیله کپور نقره‌ای (Hypophthalmichthys molitrix) طی نگهداری در یخچال. مجله علمی شیلات ایران. ۲۹ (۵): 187-۱۹۸. ##چراغی، ن.، علیزاده دوغیکلایی، ا. و شهریاری مقدم، م.، 1397. ارزیابی اثر نایسین، استات سدیم و دما بر کیفیت فیله کپور علفخوار تلقیح شده با استافیلوکوکوس اورئوس. پژوهش های علوم و صنایع غذایی ایران، 14(5): 815-803##Al-Dagal, M.M. and Bazaraa, W.A., 1999. Extension of shelf life of whole and peeled shrimp with organic acid salts and bifidobacteria. Journal of Food Protection, 62(1): 51-56.‌ DOI: 10.4315/0362-028x-62.1.51.##Aubourg, S.P., Pérez‐Alonso, F. and Gallardo, J.M., 2004. Studies on rancidity inhibition in frozen horse mackerel (Trachurus trachurus) by citric and ascorbic acids. Journal of Lipid Science and Technology, 106(4): 232-240.‌ DOI:10.1002/ejlt.200400937.##Aubourg, S.P., Piñeiro, C., Gallardo, J.M. and Barros-Velazquez, J., 2005. Biochemical changes and quality loss during chilled storage of farmed turbot (Psetta maxima). Food Chemistry, 90(3): 445-452.‌ DOI: 10.1016/j.foodchem.2004.05.008.## ##Bagni, M., Civitareale, C., Priori, A., Ballerini, A., Finoia, M., Brambilla, G. and Marino, G., 2007. Pre-slaughter crowding stress and killing procedures affecting quality and welfare in sea bass (Dicentrarchus labrax) and sea bream (Sparus aurata). Aquaculture, 263(1-4): 52-60.‌ DOI: 10.1016/j.aquaculture.2006.07.049##Baldi, S.C.V., Parisi, G., Bonelli, A., Balieiro, J.C.C., Guimarães, J.L. and Viegas, E.M.M., 2018. Effects of different stunning/slaughter methods on frozen fillets quality of cobia (Rachycentron canadum). Aquaculture, 486: 107-113. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2017.12.003.##Biscalchin-Grÿschek, S.F., Oetterer, M. and Gallo, C.R., 2003. Characterization and frozen storage stability of minced Nile tilapia (Oreochromis niloticus) and red tilapia (Oreochromis spp.). Journal of Aquatic Food Product Technology, 12(3): 57-69.‌ DOI:10.1300/J030v12n03_06.##Caggiano, M., 2000. Quality in harvesting and post-harvesting procedures-influence on quality. Fish freshness and quality assessment for sea bass and sea bream. Cahiers Options Mediterraneennes, 51, 55-61.‌##Castro, P.L.D., Lewandowski, V., Souza, M.L.R.D., Coradini, M.F., Alexander, A.A.D.C., Sary, C. and Ribeiro, R.P., 2017. Effect of different periods of pre-slaughter stress on the quality of the nile tilapia meat. Food Science and Technology, 37(1): 52-58.‌ DOI: 10.1590/1678-457x.05616.##Chaiyapechara, S., Casten, M.T., Hardy, R.W. and Dong, F.M., 2003. Fish performance, fillet characteristics, and health assessment index of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fed diets containing adequate and high concentrations of lipid and vitamin E. Aquaculture, 219(1-4): 715-738.‌ ## DOI: 10.1016/S0044-8486(03)00025-5.##Concollato, A., Olsen, R.E., Vargas, S.C., Bonelli, A., Cullere, M. and Parisi, G., 2016. Effects of stunning/slaughtering methods in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) from death until rigor mortis resolution. Aquaculture, 464: 74-79. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2016.06.009.##Duran, A., Erdemli, U., Karakaya, M. and Tyilmaz, M., 2008. Effects of slaughter methods on physical, biochemical and microbiological quality of rainbow trout Oncorhynchus mykiss and mirror carp Cyprinus carpio filleted in pre-, in-or post-rigor periods. Fisheries Science, 74(5): 1146-1156.‌ DOI: 10.1111/j.1444-2906.2008.01634.x.##Egan, H., Kirk, R.S. and Sawyer, R., 1997. Pearson’s chemical analysis of food. 9th edn. Longman Scientific and Technical. pp. 609-634.##Einen, O. and Thomassen, M.S., 1998. Starvation prior to slaughter in Atlantic salmon (Salmo salar): II. White muscle composition and evaluation of freshness, texture and colour characteristics in raw and cooked fillets. Aquaculture, 169(1-2): 37-53.‌ DOI: 10.1016/S0044-8486 (98)00332-9.##Færgemand, J., Rønsholdt, B., Alsted, N. and Børresen, T., 1995. Fillet texture of rainbow trout as affected by feeding strategy, slaughtering procedure and storage post mortem. Water Science and Technology, 31(10): 225-231.‌ ## DOI: 10.1016/0273-1223(95)00443-Q.##Ginés, R., Palicio, M., Zamorano, M.J., Argüello, A., López, J.L. and Afonso, J.M., 2002. Starvation before slaughtering as a tool to keep freshness attributes in gilthead sea bream (Sparus aurata). Aquaculture International, 10(5): 379-389.‌ DOI: 10.1023%2FA%3A1023365025292.##Ikrang, E.G. and Umani, K.C., 2019. Optimization of process conditions for drying of catfish (Clarias gariepinus) using Response Surface Methodology (RSM). Food Science and Human Wellness, 8(1): 46-52.‌ DOI: 10.1016/j.fshw.2019.01.002.##Kayan, A., Boontan, I., Jaturssitha, S., Wicke, M. and Kreuzer, M., 2015. Effect of slaughter weight on meat quality of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus). Agriculture and Agricultural Science Procedia, 5: 159-163.‌ DOI: 10.1016/j.aaspro.2015.08.024.##Manju, S., Jose, L., Srinivasa Gopal, T. K., Ravishankar, C.N. and Lalitha, K.V., 2007. Effects of sodium acetate dip treatment and vacuum-packaging on chemical, microbiological, textural and sensory changes of Pearlspot (Etroplus suratensis) during chill storage. Food Chemistry, 102(1): 27-35.‌ DOI: 10.1016/j.foodchem.2006.04.037.##Montgomery, D.C., 2017. Design and analysis of experiments. John Wiley and Sons. 688 P.##Morzel, M., Sohier, D. and Van de Vis, H. 2003. Evaluation of slaughtering methods for turbot with respect to animal welfare and flesh quality. Journal of the Science of Food and Agriculture, 83(1): 19-28.‌ DOI: 10.1002/jsfa.1253.##Özogul, F., Polat, A. and Özogul, Y., 2004. the effects of modified atmosphere packaging and vacuum packaging on chemical, sensory and microbiological changes of sardines (Sardina pilchardus). Food Chemistry, 85(1): 49-57.‌ DOI: 10.1016/j.foodchem.2003.05.006.##Parisi, G., Mecatti, M., Lupi, P., Scappini, F. and Poli, B.M., 2002. Comparison of five slaughter methods for European sea bass. Changes of isometric contraction force and pH during the first 24 hours post mortem. In: Proceedings of the Aquaculture Europe 2002, EAS Special Publication N. 32, pp. 417-418.##Poli, B.M., Parisi, G., Scappini, F. and Zampacavallo, G., 2005. Fish welfare and quality as affected by pre-slaughter and slaughter management. Aquaculture International, 13(1-2): 29-49.‌ DOI: 10.1007/s10499-004-9035-1.##Pottinger, T.G., 2001. Effects of husbandry stress on flesh quality indicators in fish. In: Kestin, S.C. and Warriss, P.D. (eds.), Farmed Fish Quality. Fishing News Books, Oxford, pp. 145–160.##Robb, D. and Kestin, S.C., 2002. Methods Used to Kill Fish: Field Observations and Literature Reviewed. Animal Welfare (South Mimms, England). 11(3): 269-282. ##Ryan, T.P. and Morgan, J.P., 2011. Modern experimental design. Journal of Statistical Theory and Practice, 1(3-4): 501-506.##Sallam, K.I., 2007. Antimicrobial and antioxidant effects of sodium acetate, sodium lactate, and sodium citrate in refrigerated sliced salmon. Food Control, 18(5): 566-575.‌ DOI 10.1016/j.foodcont.2006.02.002.##Savvaidis, I.N., Skandamis, P., Riganakos, K.A., Panagiotakis, N. and Kontominas, M.G., 2002. Control of natural microbial flora and Listeria monocytogenes in vacuum-packaged trout at 4 and 10 degrees C using irradiation. Journal of Food Protection, 65(3): 515-522.‌ DOI: 10.4315/0362-028x-65.3.515.##Thetmeyer, H., Waller, U., Black, K.D., Inselmann, S. and Rosenthal, H., 1999. Growth of European sea bass (Dicentrarchus labrax L.) under hypoxic and oscillating oxygen conditions. Aquaculture, 174(3-4): 355-367.‌ DOI: 10.1016/S0044-8486(99)00028-9. ##Yildiz, Z., 2017. Osmotic dehydration of anchovy fillets in salt solution: Optimization by using statistical experimental design. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 16(4): 1187-1203.‌##You, L., Regenstein, J.M. and Liu, R.H., 2010. Optimization of hydrolysis conditions for the production of antioxidant peptides from fish gelatin using response surface methodology. Journal of Food Science, 75(6): C582-C587. DOI: 10.1111/j.1750-3841.2010.01707.x.##Zampacavallo, G., Parisi, G., Mecatti, M., Lupi, P., Giorgi, G. and Poli, B.M., 2015. Evaluation of different methods of stunning/killing sea bass (Dicentrarchus labrax) by tissue stress/quality indicators. Journal of Food Science and Technology, 52(5): 2585-2597.‌ DOI: 10.1007/s13197-014-1324-8.##Zhang, L., Li, Q., Lyu, J., Kong, C., Song, S. and Luo, Y., 2017. The impact of stunning methods on stress conditions and quality of silver carp (Hypophthalmichthys molitrix) fillets stored at 4°C during 72 h postmortem. Food Chemistry, 216: 130-137. DOI: 10.1016/j.foodchem.2016.08.004. ##

مقاله علمی – پژوهشی: استخراج و ارزیابی ویژگی‌‌های ضد اکسایشی و امولسیون کنندگی آلژینات استخراجی از جلبک قهوه‌‌ای Sargassum ilicifolium Extraction, Antioxidant and Emulsifying Properties of Alginate from Brown Seaweed Sargassum ilicifolium 1 1 آلژینات یکی از پلی‌‌ساکاریدهای منحصربه‌فرد موجود در جلبک‌‌های قهوه‌‌ای است که به طور گسترده در صنایع نساجی، کاغذ، غذایی، داروئی، پزشکی و آرایشی-بهداشتی مورد استفاده قرار می‌گیرد. سواحل جنوبی کشور ما دارای تعداد زیادی گونه جلبک‌‌ قهوه‌‌ای می‌‌باشد. اما متاسفانه تاکنون مطالعات محدودی جهت استخراج پلی‌‌ساکارید آلژینات از این منابع صورت پذیرفته است. بر این اساس در تحقیق حاضر پلی‌‌ساکارید آلژینات از جلبک قهوه‌‌ای Sargassum ilicifolium استخراج و خالص‌‌سازی گردید. در ادامه بازده، وزن مولکولی، ویژگی‌‌های ضداکسایشی (خنثی کنندگی رادیکال آزاد DPPH و قدرت کاهندگی آهن) و امولسیون کنندگی (شاخص امولسیفایری) آلژینات استخراج شده، ارزیابی گردید. همچنین طیف سنجی مادون قرمز با تبدیل فوریه (FT-IR) برای شناسایی گروه‌‌های عاملی آلژینات مورد استفاده قرار گرفت. بازده پلی‌‌ساکارید استخراج شده 24/1±84/20 درصد (بر مبنای وزن خشک جلبک) بود. نتایج طیف FT-IR نشان داد که پلی‌‌ساکارید استخراج شده عمدتاً آلژینات سدیم می‌‌باشد. وزن مولکولی آلژینات استخراج شده 1865 کیلو دالتون اندازه‌‌گیری شد. میزان مهارکنندگی رادیکال‌‌های آزاد DPPH و کاهندگی آهن آلژینات استخراجی در غلظت یک میلی‌گرم بر میلی‌لیتر به‌ترتیب 03/2±17/18 درصد و 004/0±155/0 (جذب) اندازه‌‌گیری شدند. آلژینات استخراج شده قادر به امولسیون کردن روغن‌‌های آفتابگردان، ذرت و کانولا بوده است که در این بین بیشترین و کمترین مقدار شاخص امولسیون کنندگی به‌ترتیب در روغن‌‌های آفتابگردان و کانولا مشاهده شدند. به طورکلی، نتایج تحقیق حاضر نشان داد که آلژینات استخراجی از گونه S. ilicifolium دارای ویژگی‌‌های ضد اکسایشی متوسط و امولسیون کنندگی بالا می‌‌باشد. 2 Alginate is one of the unique polysaccharides present in brown algae which are widely used in textile, paper, and food, pharmaceutical, biomedical and cosmetic industries. There are many seaweed species in the southern coast of our country (Iran). However, very few studies have been done so far on the extraction of alginate from these indigenous resources. Therefore, in the present study, alginate was extracted and purified from a brown seaweed Sargassum ilicifolium. Then, yield, molecular weight, antioxidant activity (DPPH radical scavenging activity and reducing power (FRAP), and emulsifying properties (emulsification indices) of the isolated alginate were evaluated. Furthermore, FT-IR spectra were used to identify the functional groups of the extracted alginate. Alginate extraction yield was 20.84±1.24% (based on seaweed dry weight). FT-IR results showed that the extracted polysaccharide was mainly sodium alginate. The molecular weight of the extracted alginate was 1865 kDa. The DPPH radical scavenging activity and the reducing power of the extracted alginate at 1 mg/ml were 18.17±2.03% and 0.155±0.004 (Abs), respectively. The extracted alginate was able to emulsify sunflower, corn, and canola oils. The highest and lowest emulsification indices (E24) were observed in sunflower and canola oils, respectively. Overall, the results of the present study showed that the alginate extracted from S. ilicifolium has medium antioxidant and high emulsifying properties. 167 178 2018/05/222020/01/152020/05/82020/05/42019/12/22020/03/222020/04/52017/08/302020/09/102020/05/92020/01/152020/03/32020/03/52020/07/62020/06/23 1399/4/3 2021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282020/06/202021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/28 1399/12/10 سمیرا جدی Samira Jeddi دانشگاه تربیت مدرس Iran jeddi.ch.88@gmail.com مسعود رضائی Masoud Rezaei دانشگاه تربیت مدرس Iran rezai_ma@modares.ac.ir مهدی آل بوفتیله Mehdi Alboofetileh موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran m.alboofetile@yahoo.com Brown seaweed Sargassum ilicifolium Alginate Antioxidant properties Emulsifying properties جلبک‌‌های قهوه‌‌ای Sargassum ilicifolium آلژینات ویژگی‌‌های ضداکسایشی ویژگی‌‌های امولسیون کنندگی ##آل‌بوفتیله، م.، رضائی، م.، حسینی، ه.، عبدالهی، م.، 1396. بهبود خواص فیزیکی و مکانیکی فیلم‌های آلژینات سدیم با استفاده از نانوذرات رس. فصلنامه علوم و صنایع غذایی، 77: 313-321.##بنکدارپور، ب.، آرامی ،م.، مشهدی، م.، 1382. تهیه آلژینات سدیم از جلبک ساراگاسوم هیستریکس بومی سواحل جنوب ایران و استفاده از آن در تثبیت سلولهای مخمری. هشتمین کنگره ملی مهندسی شیمی ایران. دانشگاه فردوسی مشهد.##حافظیه، م.، 1396. بررسی خواص آنتی اکسیدانی ترکیبات فنلی در گیاه دریایی قهوه‌ای Sargassum ilicifolium سواحل ایرانی دریای عمان. مجله علمی شیلات ایران، 26(5): 13-22.##Alboofetileh, M., Rezaei, M., Tabarsa, M., You, S., Mariatti, F., and Cravotto, G., 2019. Subcritical water extraction as an efﬁcient technique to isolate biologically-active fucoidans from Nizamuddinia zanardinii. Int J Biol Macromol 128:244–253.##Ale, M.T., Mikkelsen, J.D., and Meyer, A.S., 2011. Important determinants for fucoidan bioactivity: A critical review of structure–function relations and extraction methods for fucose-containing sulfated polysaccharides from brown seaweeds. Mar Drugs 9(10):2106–2130.##Anvari, M., Tabarsa, M., Cao, R., You, S., Joyner, H.S., Behnam, S., and Rezaei, M., 2016. Compositional characterization and rheological properties of an anionic gum from Alyssum homolocarpum seeds. Food Hydrocol 52:766–773.##Borazjani, N.J., Tabarsa, M., and Rezaei, M., 2017. Purification, molecular properties, structural characterization, and immunomodulatory activities of water soluble polysaccharides from Sargassum angustifolium. Int J Biol Macromol 109:793–802.##Bougatef, A., Hajji, M., Balti, R., Lassoued, I., Triki-Ellouz, Y., and Nasri, M., 2009. Antioxidant and free radical-scavenging activities of smooth hound (Mustelus mustelus) muscle protein hydrolysates obtained by gastrointestinal proteases. Food Chem 114(4):1198-1205.##Broderick, E., Lyons, H., Pembroke, T., Bryne, H., Murray, B., and Hall, M., 2006. The characterization of a novel, covalently modiﬁed, amphiphilic alginate derivative, which retains gelling and non-toxic properties. J Colloid Interface Sci 298:154–161.##El Atouani, S., Bentiss, F., Reani, A., Zrid, R., Belattmania, Z., Pereira, L., Mortadi, A., Cherkaoui, o., and Sabour, B., 2016. The invasive brown seaweed Sargassum muticum as new resource for alginate in Morocco: Spectroscopic and rheological characterization. Psychol Res 64(3):185–193.##Fawzy, M.A., Gomaa, M., Hifney, A.F., and Abdel-Gawad, M.K., 2017. Optimization of alginate alkaline extraction technology from Sargassum latifolium and its potential antioxidant and emulsifying properties. Carbohydr Polym 157:1903–1912.##Fertah, M., Belfkira, A., Dahmane, E., Taourirte, M., and Brouillette, f., 2017. Extraction and characterization of sodium alginate from Moroccan Laminaria digitata brown seaweed. Arab J Chem 10(2):S3707-S3714.##Flórez-Fernández, N., Domínguez, H., and Torres, M.D., 2019. A green approach for alginate extraction from Sargassum muticum brown seaweed using ultrasound-assisted technique. Int J Biol Macromol 124:451–459.##Hentati, F., Delattre, C., Ursu, A.V., Desbrières, J., Cerf, D.L., Gardarin, C., Abdelkaﬁ, S., Michaud, P., and Pierre, G., 2018. Structural characterization and antioxidant activity of water-soluble polysaccharides from the Tunisian brown seaweed Cystoseira compressa. Carbohydr Polym 198:589–600.##Hifney, A.F., Fawzy, M.A., Abdel-Gawad, K.M., and Gomaa, M., 2016. Industrial optimization of fucoidan extraction from Sargassum sp. and its potential antioxidant and emulsifying activities, Food Hydrocoll 54:77-88.##Hifney, A.F., Fawzy, M.A., Abdel-Gawad, K.M., and Gomaa, M., 2018. Upgrading the antioxidant properties of fucoidan and alginate from Cystoseira trinodis by fungal fermentation or enzymatic pretreatment of the seaweed biomass. Food Chem 269:387–395. ##Khajouei, R. A., Keramat, J., Hamdami, N., Ursa, A. V., Delattre, C., Laroche, C., Cardarin, C., Lecerf, D., Desbrieres, J., Djelveh, G., and Michaud, P., 2018. Extraction and Characterization of an alginate from the Iranian brown seaweed Nizimuddinia Zanardini. Int J Biol Macromol 118:1073-1081.##Kumar, K. S., Ganesan, K., and Rao, P., 2008. Antioxidant potential of solvent extracts of Kappaphycus alvarezii (Doty) Doty - An edible seaweed. Food Chem 107:289-295.##Larsen, B., Salem, D. M. S. A., Sallam, M. A. E., Mishrikey, M. M., and Beltagy, A., 2003. Characterization of the alginates from algae harvested at the Egyptian Red Sea coast. Carbohydr Res 338(22):2325-36.##Lee, K.Y., and Mooney, D.J., 2012. Alginate: Properties and biomedical applications. Prog Polym Sci 37:106-126.##Lim, S.J., Aida, W.M.W., Maskat, M.Y., Mamot, S., Ropien, J., and Mohd, D.M., 2014. Isolation and antioxidant capacity of fucoidan from selected Malaysian seaweeds. Food Hydrocoll 42:280-288.##Mazumder, A., Holdt, S.L., Francisci, D.D., Morales, M.A., Mishra, H.N., and Angelidaki, I., 2016. Extraction of alginate from Sargassum muticum: process optimization and study of its functional activities. J Appl Phycol 28:3625-3634##Meenakshi, S., Umaya Parvathi, S., Arumugam, M., and Balasubramaniang T., 2011. invitro antioxidant properties and FTIR analysis of Two Seaweeds of Gulf of mannar. Asian Pac J Trop Biomed 1(1):S66-S70.##Meillisa, V., Woo, H.C., and Chun, B.C., 2015. Production of monosaccharides and bio-active compounds derived from marine polysaccharides using subcritical water hydrolysis. Food Chem 171:70–77.##Mohamed, S., Hashim, S.N., Rahman, H.A., 2012. Seaweeds: A sustainable functional food for complementary and alternative therapy. Trends Food Sci Tech 23:83-96.##Mulloy, B., 2005. The specificity of interactions between proteins and sulfated polysaccharides. An Acad Bras Cienc 77: 651–664.##Rhein-Knudsen, N., Ale, M.T., Ajalloueian, F., Meyer, A.S., 2017. Characterization of alginates from Ghanaian brown seaweeds: Sargassum spp. and Padina spp. Food Hydrocol 71:236-244.##Rostami, Z., Tabarsa, M., You, S., and Rezaei, M., 2017. Relationship between molecular weights and biological properties of alginates extracted under different methods from Colpomenia peregrine. Process Biochem 58:289–297.##Sari-Chmayassem, N., Taha, S., Mawlawi, H., Guegan, J.P., Jeftic, J., and Benvegnu, T., 2016. Extracted and depolymerized alginates from brown algae Sargassum vulgare of Lebanese origin: chemical, rheological, and antioxidant properties. J App Phycol 28:1915–1929.##Sellimi, S., Younes, I., Ayed, H.B., Maalej, H., Montero, V., Rinaudo, M., Dahia, M., Mechichi, T., Hajji, M., Nasri, M., 2015. Structural, physicochemical and antioxidant properties of sodium alginate isolated from a Tunisian brown seaweed. Int J Biol Macromol 72:358–1367. ##Tavassoli-Kafrani, E., Shekarchizadeh, H., and Masoudpour-Behabadi, M., 2016. Development of edible ﬁlms and coatings from alginates and carrageenans. Carbohydr polym 137:360-374.##Torres, M.R., Sousa, A.P.A., Filho, E.A.T.S., Melo, D.F., Feitosa, J.P.A., de Paula, .C.M., and Lima, M.G.S., 2007. Extraction and physicochemical characterization of Sargassum vulgare alginate from Brazil. Carbohydr Res 342:2067–2074.##Venkatesan, J., Bhatnagar, I., Manivasagan, P., Kang, H., and Rim, S.K., 2015. Alginate composites for bone tissue engineering: A review. Int J Biol Macromol 72:269-281##Xie, Z., Huang, J., Xu, X., and Jin, Z., 2008. Antioxidant activity of peptides isolated from alfalfa leaf protein hydrolysate. Food Chem 111(2):370-376. ##

مقاله علمی – پژوهشی: کیفیت آب مزارع پرورش میگوی وانامی (Litopenaeus vannamei) طی یک دوره پرورش در استان هرمزگان Water quality of white shrimp Litopenaeus vannamei (Boone) during cultureing priod in Hormozgan Province 1 1 با توجه به اینکه پرورش میگو به عنوان یک صنعت آبزی‌پروری در سواحل جنوب و شمال کشور در حال توسعه است، از اینرو با چالش‌های مهمی در زمینه کیفیت آب روبروست که نیاز به پایش دارد. این مطالعه با هدف بررسی پارامترهای کیفی آب و مواد آلی کل (TOM) بستر مزارع پرورش میگوی وانامی طی یک دوره پرورشی از نیمه دوم تیرماه 1393 در منطقه تیاب شمالی واقع در 130 کیلومتری جنوب شرقی بندرعباس صورت گرفته است. نتایج بدست آمده بیانگر این است که میانگین میزان درجه‌حرارت، شوری، pH و اکسیژن محلول اختلاف معنی‌داری طی دوره پرورش نداشته است (05/0(p> در حالیکه میزان TOM به سمت انتهای دوره پرورش به طور معنی‌داری افزایش یافته است. نتایج بدست آمده همبستگی مثبتی را بین pH و درجه‌حرارت، pH و اکسیژن محلول، pH و آمونیاک نشان داده است. از سوی دیگر، بین میزان مواد آلی و pH، میزان مواد آلی و درجه حرارت، میزان مواد آلی و آمونیاک همبستگی منفی مشاهده شد. نتایج حاصل از آنالیز خوشه‌‌بندی نشان داد که کیفیت آب طی اوایل دوره پرورش از ثبات نسبی برخوردار بوده و از ماه دوم به سمت پایان دوره پرورش شرایط کیفیت آب ناپایدار گردیده است. بهرحال پارامترهای کیفیت آب بایستی مورد پایش قرار گیرد تا از آن به عنوان راهنمایی برای مدیریت استخرهای پرورش استفاده شود و از بروز شرایطی که به طور مخاطره‌آمیزی پرورش میگو را تهدید می‌کند، پرهیز گردد. 2 Considering shrimp farming is as an improving aquaculture practice in southern and northern coastal parts of Iran, it faces some critical and challenging problems in terms of water quality that need to be monitored. The present study purposed to assess the water quality and total organic matter (TOM) in sediment of Litopenaeus vannamei shrimp farms during the culturing period from July 2014 in Teyab shrimp farms, Hormozgan, Iran. The results indicated that during the culturing period, mean values for temperature, salinity, pH and dissolved oxygen were not significantly different in 3 farms, whereas the levels for total organic matter showed the highest content onwards to the end of culturing period. The results showed positive correlation was found between pH and water temperature, pH and dissolve oxygen (DO), pH and ammonia. However a negative correlation was observed between TOM and pH, TOM and water temperature, TOM and ammonia. Dendrogram of temporal clustering results showed that the water quality was relatively consistent during early culturing period and then represent an unstable condition from the second month towards end of culturing period. However, water quality parameters should be monitored to serve as guide for managing a pond so that conditions that can adversely affect the growth of prawns can be avoided. 179 189 2018/05/222020/01/152020/05/82020/05/42019/12/22020/03/222020/04/52017/08/302020/09/102020/05/92020/01/152020/03/32020/03/52020/07/62020/06/232016/07/27 1395/5/6 2021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282020/06/202021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/282021/02/28 1399/12/10 کیومرث روحانی قادیکلایی Kiuomars Rohani-Ghadikolaei موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran roohani2001ir@yahoo.com غلامعلی اکبرزاده Gholamali Akbarzadeh موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran akbarzadehramin@gmail.com عیسی عبدالعلیان Eesa Abdolalian موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran eesa48@yahoo.com مریم معزی Maryam Moezzi موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran maryam_moezzi2000@yahoo.com محمد صدیق مرتضوی Mohammad Seddiq Mortazavi6 موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran mseddiq1@yahoo.com Shrimp farming Water quality Culturing period Teyab Hormozgan پرورش میگو کیفیت آب پرورش تیاب هرمزگان ##استکی، ا.، اکبرزاده، ع.، ابراهیمی، م.، سراجی، ف.، اجلالی، ک. و سلیمی، م.، 1383. بررسی مستمر اثرات متقابل زیست محیطی ناشی از فعالیت و توسعه پرورش میگو در منطقه تیاب. موسسه تحقیقات شیلات ایران. پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان. بندرعباس. ایران. 64 صفحه.##اکبرزاده، غ.، سراجی، ف.، آقاجری، ن. و جوکار، ک.، 1384. بررسی مستمر اثرات زیست محیطی ناشی از فعالیت کارگاههای پرورش میگو بر سواحل جنوب (در منطقه تیاب و سایه خوش استان هرمزگان). موسسه تحقیقات شیلات ایران. پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان. بندرعباس. ایران. 93 ص.##اکبرزاده، غ.، روحانی، ک.، سراجی، ف.، ملکوتی، م.، آقاجری، ن.، جوکار، ک. و سلیمی، م.، 1383. بررسی اثرات زیست محیطی ناشی از فعالیت کارگاههای پرورش میگو در منطقه تیاب. موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس. بندرعباس. ایران 184 ص.##مرتضوی، م.ص.، آقاجری، ن. و جوکار، ک.، 1378. بررسی وضعیت اکولوژیک استخرهای پرورش میگو در منطقه تیاب، موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، بندرعباس، 76 ص.##APHA, 2005. Standard methods for the examination of water and wastewater, 21: 258-259. ##Askari Sari, A., Matinfar, A. and Abedian, A., 2008. Interactive effects of diet protein and water salinity on growth and survival of white leg shrimp (Litopenaeus vannamei). Iranian Scientific Fisheries Journal, 17: 109-116.##Boyd, C.E., 1998. Pond water aeration systems. Aquacultural Engineering, 18:9–40. DOI: 10.1016/S0144-8609(98)00019-3##Boyd, C.E. and Tucker, C.S., 1998. Pond Aquaculture Water Quality Management. Kluwer Academic Publishers, Boston, Massachusetts, USA. ##Chen, J.C. and Lei, S.C., 1990. Toxicity of ammonia and nitrite to Penaeus monodon juveniles. Journal of the World Aquaculture Society, 21:300-306.DOI:10.1111/j. 1749 -7345.1990.tb00543.x##Davis, D.A., Elkin, A., Jesus, V., Oscar, Z. and David, B.R., 2006. A case study on Feed management to improving production and economic returns for the semi-intensive pond production of L. vannamei. In: Elizabeth L, Marie DR, Salazar MT, Lopez MGN, et al., (Eds.) Advances en Nutrition acuicola VIII, Universiadad autonoma de Nuevo Leon, Mexico.##Ebeling, J.M., Timmons, M.B. and Bisogni, J.J., 2006. Engineering analysis of the stoichiometry of photoautotrophic, autotrophic, and heterotrophic removal of ammonia-nitrogen in aquaculture systems. Aquaculture, 257: 346-358. DOI:10.1016/j.aquaculture.2006.03.019##Gao, S.D., Wu Y.P. and Wei, J.G., 1993. Changes of water quality and bottom mud in shrimp pond during the cultivation period, 12: 7-14##Hargreaves, J.A., 1998. Nitrogen biogeochemistry of aquaculture ponds. Aquaculture, 166: 181-212. DOI:10.1016/S0044-8486(98)00298-1##Kir, M. and Kumlu, M., 2006. Acute toxicity of ammonia to Penaeus semisulcatus postlarvae in relation to salinity. Journal of the World Aquaculture Society, 37: 231-235. DOI:10.1111/j.1749-7345.2006.00033.x## Kumar, P., Jetani, K.L, Yusuzai, S.I., Sayani, A.N. and Rather, M.A., 2012. Effect of sediment and water quality parameters on the productivity of coastal shrimp farm. Pelagia Research Library. Advances in Applied Science Research, 2012, 3: 2033-20.## ##Lara-Anguiano, G.F., Esparza Leal, H.M., Sainz Hernández, J.C., Ponce Palafox, J.T., Valenzuela Quinonez, W., Apun Molina, J.P. and Klanian, M.G., 2013. Effects of inorganic and organic fertilization on physicochemical parameters, bacterial concentrations, and shrimp growth in Litopenaeus vannamei cultures with zero water exchange. Journal of the World Aquaculture Society, 44(4): 499-510. DOI: 10.1111/jwas.12058.##Lin, Y.C. and Chen, J.C., 2003. Acute toxicity of nitrite on Litopenaeus vannamei (Boone) juveniles at different salinity levels. Aquaculture, 224: 193-201. DOI:10.1016/S0044-8486(03)00220-5##Holme, N.A. and McIntyre, A.D., 1984. Methods for the study of marine benthos. Oxford : Blackwell Scientific Publications, 2nd ed., 387 P.##Strickland, J.D.H. and Parson, T.R., 1972. A practical handbook of seawater analysis. Information Canada, Ottava (ICD). 310 P.##Wyban, J. and Sweeney, J.N., 1991. Intensive Shrimp Production Technology: The Oceanic Institute Shrimp Manual. Oceanic Institute, University of California, 158 P. ##