1400 30 4 126 171

مقاله علمی – پژوهشی:‌بررسی فعالیت ضد باکتریایی عصاره‌های قلم دریایی Virgularia juncea از خلیج فارس Investigation of antibacterial activity of Virgularia juncea extracts from the Persian Gulf 1 1 گرچه خلیج فارس دارای شرایط محیطی منحصر به فردی است، اما تاکنون مطالعه قابل توجهی در جهت شناسایی ترکیبات طبیعی دریایی و خواص بیولوژیک آبزیان آن انجام نشده است. هدف از این پژوهش، بررسی خواص ضد­باکتریایی عصاره­های هگزانی، اتیل­استاتی و متانولی قلم دریایی Virgularia juncea جمع­آوری شده از بندر­عباس، ساحل خور سورا روی سویه­های باکتری­های (Escherichia coli ATCC)، (Bacillus subtilis spizizenii ATCC) و (Staphylococcus aureus ATCC) می­باشد. طرح­ریزی مراحل این مطالعه بر اساس آزمایشات زیست-سنجی بود که پارامترهای MIC و MBC برای عصاره­ها و فراکسیون­ها مورد آنالیز قرار گرفت. عصاره اتیل­استاتی V. juncea فعالیت مهار رشد قابل ملاحظه­ای با غلظت 5/7 میکرو­گرم بر میلی­لیتر روی سویه باکتری S. aureus نشان داد و در ادامه با استفاده از روش­های کروماتوگرافی مورد جداسازی قرار گرفت. برش­ فعال (F6d) جداسازی شده از عصاره اتیل­استاتی که در کمترین غلظت نسبت­ به دیگر برش­ها، ماهیت کشندگی بر روی سویه باکتری S. aureus داشت، با استفاده از روش HPLC خالص­سازی شد. ترکیب کلست-5-ان-3-بتا-اول از برش فعال (F6d) خالص­سازی شد، که فعالیت کشندگی در غلظت 10 میکرو­گرم بر میلی­لیتر علیه سویه باکتری S. aureus نشان داده بود. در نهایت این ترکیب با بررسی الگوی طیف جرمی در دستگاه GC-MS مورد شناسایی قرار گرفت. در این مطالعه، برای اولین بار ماهیت ضد­باکتریایی عصاره­های قلم دریایی V. juncea مورد بررسی قرار گرفت و ترکیب خالص شده با غلظت کشندگی 50 میکروگرم بر میلی­لیتر نسبت به سویه باکتری S. aureus گزارش گردید. 2 Although Iran covers most of the northern coast of the Persian Gulf, marine organisms from this region has have not been investigated very well. Herein, we aimed at a detailed analysis of antibacterial profiles against Escherichia coli ATCC, Bacillus subtilis spizizenii ATCC and Staphylococcus aureus ATCC of the marine sea pen Virgularia juncea collected from the Persian Gulf in Iran. To isolate the active ingredients, a bio-guided purification approach was used based on the MIC and MBC parameters obtained for the extracts and fractions. The n-hexane, ethyl acetate and methanol extracts of V. juncea were tested in multiple in-house bioassays, and the ethyl acetate extract showed in vitro antibacterial activity against S. aureus (MIC value 7.5 µg/mL). This extract was fractionated by using open column chromatography. The isolated active fraction (F6d), which had high activity against the S. aureus strain at the lowest concentrations (MBC value 10 µg/mL) of other fractions, was purified using the HPLC method. The pure compound Cholest-5-en-3β-ol was isolated from the active fraction (F6d), and showed moderate activity against the S. aureus bacterial strain (MBC value 50 µg/mL). This compound was identified using the GC-MS technique. This is the first study that has dealt with bioactivity profiling of V. juncea, leading to isolation and identification of pure sea pen metabolite. 1 12 2020/08/16 1399/5/26 2021/11/1 1400/8/10 رضا محسنیان کوچکسرایی Reza Mohsenian Kouchaksaraee دانشگاه شهید بهشتی Iran r_mohsenian@sbu.ac.ir ملیکا ناظمی Melika Nazemi سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس Iran melikanazemi@yahoo.com مهدی مریدی فریمانی Mahdi Moridi Farimani دانشگاه شهید بهشتی Iran m_moridi@sbu.ac.ir Persian Gulf Marine natural products Sea pen Virgularia juncea Antibacterial خلیج فارس ترکیبات طبیعی دریایی قلم دریایی Virgularia juncea ضد‌‌باکتری ##Almeida, M.T.R., Moritz, M.I.G., Capel, K.C., Pérez, C.D. and Schenkel, E.P., 2014. Chemical and biological aspects of octocorals from the Brazilian coast. Revista Brasileira de Farmacognosia, 24: 446-467. DOI:.org/10.1016/j.bjp.2014.05.002.##Avila, C., Taboada, S. and Núñez-Pons, L., 2008. Marine Antarctic chemical ecology: What is next? Marine Ecology, 29: 1-70. DOI:.org/10.1111/j.1439-0485.2007.00215.x.##Bahl, A., Jachak, S.M., Palaniveloo, K., Ramachandram, T., Vairappan, C.S. and Chopra, H.K., 2014. 2-acetoxyverecynarmin c, a new briarane cox inhibitory diterpenoid from Pennatula aculeata. Natural Product Communications, 9: 1139-1141. DOI:.org/10.1177/1934578X1400900820.##Braulik, G.T., Ranjbar, S., Owfi, F., Aminrad, T., Dakhteh, S.M.H., Kamrani, E. and Mohsenizadeh, F., 2010. Marine mammal records from Iran. Journal of Cetacean Research and Management, 11: 49-63.## ##Chen, S.P., Sung, P.J., Duh, C.Y., Dai, C.F. and Sheu, J.H., 2001. Junceol a, a new sesquiterpenoid from the sea pen Virgularia juncea. Journal of Natural Products, 64: 1241-1242, DOI:.org/10.1021/np010192r.##Cohen, M.L., 1992. Epidemiology of drug resistance: Implications for a post-antimicrobial era. Science, 257: 1050-1055. DOI:.org/10.1126/science.257.5073.1050.##Correa, H., Aristizabal, F., Duque, C. and Kerr, R., 2011. Cytotoxic and antimicrobial activity of pseudopterosins and seco-pseudopterosins isolated from the octocoral pseudopterogorgia elisabethae of san andrés and providencia islands (southwest Caribbean Sea). Marine Drugs, 9: 334-344, DOI:.org/10.3390/md9030334.##Dembitsky, V.M., Rezanka, T. and Srebnik, M., 2003. Lipid compounds of freshwater sponges: Family Spongillidae, class Demospongiae. Chemistry and Physics of Lipids, 123: 117-155, DOI:.org/10.1016/S0009-3084(03)00020-3. sinoxea. DARU Journal of Pharmaceutical Sciences, 27: 121-135. DOI:.org/10.1007/s40199-019-00253-8.##Kerr, R.G. and Baker, B.J., 1991. Marine sterols. Natural Product Reports, 8: 465-497. DOI:.org/10.1039/NP9910800465.##Keyzers, R.A., Daoust, J., Davies-Coleman, M.T., Soest, R.V., Balgi, A., Donohue, E., Roberge, M. and Andersen, R.J., 2008. Autophagy-modulating aminosteroids isolated from the sponge Cliona celata. Organic Letters, 10: 2959-2962. DOI:.org/10.1021/ol800937u.##Kong, D.X., Jiang, Y.Y. and Zhang, H.Y., 2010. Marine natural products as sources of novel scaffolds: Achievement and concern. Elsevier Current Trends, Netherlands. 884P. DOI:.org/10.1016/j.drudis.2010.09.002.##Kouchaksaraee, R.M., Farimani, M.M., Li, F., Nazemi, M. and Tasdemir, D., 2020. Integrating Molecular Networking and 1H NMR Spectroscopy for Isolation of Bioactive Metabolites from the Persian Gulf Sponge Axinella sinoxea. Marine Drugs, 18, 366. DOI:.org/10.3390/md18070366.##Kouchaksaraee, R.M., Li, F., Nazemi, M., Farimani, M.M. and Tasdemir, D., 2021. Molecular Networking-Guided Isolation of New Etzionin-Type Diketopiperazine Hydroxamates from the Persian Gulf Sponge Cliona celata. Marine Drugs, 19: 439. DOI:.org/10.3390/md19080439.##Kresge, N., Simoni, R.D. and Hill, R.L., 2005. The biosynthetic pathway for cholesterol: Konrad bloch. Journal of Biological Chemistry, 280: e7.##Lei, H., Sun, J.F., Han, Z., Zhou, X.F., Yang, B. and Liu, Y., 2014. Fragilisinins a–l, new briarane-type diterpenoids from gorgonian Junceella fragilis. Royal Society of Chemistry, 4: 5261-5271. DOI:.org/10.1039/C3RA46163G.##Li, C., Jiang, M., La, M.P., Li, T.J., Tang, H., Sun, P., Liu, B.S., Yi, Y.H., Liu, Z. and Zhang, W., 2013. Chemistry and tumor cell growth inhibitory activity of 11, 20-epoxy-3z, 5 (6) e-diene briaranes from the South China Sea gorgonian Dichotella gemmacea. Marine Drugs, 11: 1565-1582. DOI:.org/10.3390/md11051565.##Liaw, C.C., Cheng, Y.B., Lin, Y.S., Kuo, Y.H., Hwang, T.L. and Shen, Y.C., 2014. New briarane diterpenoids from Taiwanese soft coral Briareum violacea. Marine Drugs, 12: 4677-4692. DOI:.org/10.3390/md12084677. ##Ling, L.L., Schneider, T., Peoples, A.J., Spoering, A.L., Engels, I., Conlon, B.P., Mueller, A., Schäberle, T.F., Hughes, D.E. and Epstein, S., 2015. A new antibiotic kills pathogens without detectable resistance. Nature, 517: 455-459. DOI:.org/10.1038/nature14098.##Lyons, M.A. and Brown, A.J., 1999. 7-ketocholesterol. The international Journal of Biochemistry and Cell Biology, 31: 369-375. DOI:.org/10.1016/S1357-2725(98)00123-X.##Martinsson, S., Rota, E. and Erséus, C., 2015. Revision of cognettia (clitellata, enchytraeidae): Re-establishment of chamaedrilus and description of cryptic species in the sphagnetorum complex. Systematics and Biodiversity, 13: 257-277. DOI:.org/10.1080/14772000.2014.986555. ##Mayer, A.M. and Gustafson, K.R., 2008. Marine pharmacology in 2005–2006: Antitumour and cytotoxic compounds. European Journal of Cancer, 44: 2357-2387. DOI:.org/10.1016/j.ejca.2008.07.001.##Mayer, A.M., Rodríguez, A.D., Berlinck, R.G. and Hamann, M.T., 2009. Marine pharmacology in 2005–6: Marine compounds with anthelmintic, antibacterial, anticoagulant, and antiviral activities; affecting the cardiovascular, immune and nervous systems, and other miscellaneous mechanisms of action. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-General Subjects, 1790: 283-308. DOI:.org/10.1016/j.bbagen.2009.03.011.##Müller, W.E., Grebenjuk, V.A., Pennec, L.G., Schröder, H.C., Brümmer, F., Hentschel, U., Müller, I.M. and Breter, H.J., 2004. Sustainable production of bioactive compounds by sponges-cell culture and gene cluster approach: A review. Marine Biotechnology, 6: 105-117. DOI:.org/10.1007/s10126-002-0098-6.##Porporato, E., Giudice, A.L., Michaud, L., Domenico, D.E. and Spanò, N., 2013. Diversity and antibacterial activity of the bacterial communities associated with two mediterranean sea pens, Pennatula phosphorea and Pteroeides spinosum (anthozoa: Octocorallia). Microbial Ecology, 66: 701-714. DOI:.org/10.1007/s00248-013-0260-x.##Riccardis, D.F., Minale, L., Iorizzi, M., Debitus, C. and Lévi, C., 1993. Marine sterols. Side-chain-oxygenated sterols, possibly of abiotic origin, from the new Caledonian sponge Stelodoryx chlorophylla. Journal of Natural Products, 56: 282-287. DOI:.org/10.1021/np50092a016.##Rosenblatt, J.E., 1991. Laboratory tests used to guide antimicrobial therapy. Pp. 942-948 in Mayo Clinic Proceedingseds. Elsevier. DOI:.org/10.1016/bs.mim.2015.05.001.##Shang, J., Hu, B., Wang, J., Zhu, F., Kang, Y., Li, D., Sun, H., Kong, D.X. and Hou, T., 2018. Cheminformatic insight into the differences between terrestrial and marine originated natural products. Journal of Chemical Information and Modeling, 58: 1182-1193. DOI:.org/10.1021/acs.jcim.8b00125.##Sharifi, S., Ghavam Mostafavi, P., Mashinchian Moradi, A., Givianrad, M. H., and Niknejad, H., 2018. Inducing Apoptosis of Cancer Cells Using Sea Pen Virgularia gustaviana Extract Which is Comparable to Cembrane Diterpene Sarcophine. Iranian journal of pharmaceutical research, 17: 640–652.##Sheppard, C.R., 1993. Physical environment of the gulf relevant to marine pollution: An overview. Marine Pollution Bulletin, 27: 3-8. DOI:.org/10.1016/0025-326X(93)90003-3.##Simmons, T.L., Andrianasolo, E., McPhail, K., Flatt, P. and Gerwick, W.H., 2005. Marine natural products as anticancer drugs. Molecular Cancer Therapeutics, 4: 333-342.##Stonard, R.J., Petrovich, J.C., and Andersen, R.J., 1980. A new C26sterol peroxide from the opisthobranch mollusk Adalaria sp. And the sea pen Virgularia sp. Steroids, 36: 81-86. DOI:.org/10.1016/0039-128X(80)90070-7.##Su, J.H., Huang, H.C., Chao, C.H., Yan, L.Y., Wu, Y.C., Wu, C.C. and Sheu, J.H., 2005. Vigulariol, a new metabolite from the sea pen Vigularia juncea. Bulletin of the Chemical Society of Japan, 78: 877-879. DOI:.org/10.1246/bcsj.78.877.##Su, Y.D., Wen, Z.H., Wu, Y.C., Fang, L.S., Chen, Y.H., Chang, Y.C., Sheu, J.H. and Sung, P.J., 2016. Briarenolides m–t, new briarane diterpenoids from a formosan octocoral Briareum sp. Tetrahedron, 72: 944-951. DOI:.org/10.1016/j.tet.2015.12.058.##Vanderah, D.J. and Djerassi, C., 1977. Novel marine sterols with modified bile acid side chain from the sea pen Ptilosarcus gurneyi. Tetrahedron Letters, 18: 683-686. DOI:.org/10.1016/S0040-4039(01)92726-1.##Wang, M., Carver, J.J., Phelan, V.V., Sanchez, L.M., Garg, N., Peng, Y., Nguyen, D.D., Watrous, J., Kapono, C.A. and Luzzatto-Knaan, T., 2016. Sharing and community curation of mass spectrometry data with global natural products social molecular networking. Nature Biotechnology, 34: 828-837. DOI:.org/10.1038/nbt.3597.##Williams, G., 2001. Octocoral research center, bibliography of Octocorallia, Pennatulacea. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-General Subjects, Netherlands. 225P.##Zhou, Y.M., Shao, C.L., Huang, H., Zhang, X.L. and Wang, C.Y., 2014. New briarane-type diterpenoids from gorgonian Ellisella dollfusi from the South China Sea. Natural Product Research, 28: 7-11. DOI:.org/10.1080/14786419.2013.827191. ##

مقاله علمی – پژوهشی: جداسازی فاژ مؤثر بر آئروموناس هیدروفیلا (Aeromonas hydrophila) از فاضلاب و استفاده از آن به منظور مهار رشد باکتری در گوشت چرخ شده ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) Isolation of Aeromonas hydrophila effective phage from wastewater and using it in order to control the bacterial growth in minced meat of common carp (Cyprinus carpio) 1 1 باکتریوفاژها ویروس­هایی هستند که سبب نابودی باکتری­ها می­شوند. در حال حاضر تمایل برای استفاده از آن­ها جهت مهار و نابودی باکتری­های بیماری­زای منتقل شونده از طریق غذا وجود دارد. هدف از مطالعه حاضر جداسازی و شناسایی مولکولی فاژهای مهار کننده رشد باکتری آئروموناس هیدروفیلا از آب تصفیه شده فاضلاب شهری ارومیه و مهار آلودگی تجربی آن در گوشت چرخ شده ماهی کپور معمولی بود. برای این منظور مقدار یک لیتر نمونه آب تصفیه شده شهری از سیستم تصفیه خانه ارومیه تهیه و بلافاصله به آزمایشگاه منتقل شد. جهت جداسازی باکتریوفاژ از نمونه آب تصفیه شده از کلروفرم استفاده شد. هم‌چنین از سویه استاندارد باکتری آئروموناس هیدروفیلا برای سنجش خاصیت ضد میکروبی فاژهای جدا شده استفاده گردید. در مرحله نهایی به کمک هضم آنزیمی شناسایی مولکولی فاژها انجام گرفت. در مرحله دوم ابتدا ماهی کپور معمولی به صورت تازه تهیه و گوشت آن چرخ شد، سپس با مقادیر ثابتی باکتری آئروموناس هیدروفیلا به صورت تجربی آلوده و چهار سطح متفاوت از باکتریوفاژ موثر بر آن به گوشت اضافه شد. نمونه­های گوشت به ترتیب شامل کنترل منفی، کنترل مثبت و چهار تیمار حاوی تیترهای مختلف باکتریوفاژ به مدت یک هفته در دمای یخچال نگهداری شدند. در پایان روز هفتم نمونه‌برداری برای شمارش باکتری و تعیین تیتر فاژ انجام گرفت. یافته­ها نشان داد که فاژ موثر بر رشد باکتری آئروموناس هیدروفیلا در نمونه آب تصفیه شده وجود دارد و به‌طور موثری از رشد باکتری ممانعت به عمل می­آورد. همچنین نتایج نشان داد که به طور معنی‌داری رشد باکتری آئروموناس هیدروفیلا با به‌کار بردن سطوح 10000 و 100000 واحد تشکیل دهنده پلاک باکتریوفاژ مهار می­شود. بر اساس نتایج حاصل می­توان نتیجه گرفت که فاژ موثر بر رشد آئروموناس هیدروفیلا می‌تواند به‌طور مطلوبی در مواد غذایی جهت مهار رشد آئروموناس هیدروفیلا بکار برود. 2 Bacteriophages are viruses that could destroy bacteria. Currently the use of them are increased for destroy pathogenic bacteria that transfer by food staff. The goal of this study was isolate and molecular identification of effective phage on Aeromonas hydrophila from Urmia urban sewage system and inhibits the experimental contamination in minced common carp fillet. One liter sample prepared from Urmia sewage system and transferred to the laboratory. Chloroform was used in this study for phage isolation. Also the standard strains of Aeromonas hydrophila was used to antibacterial assay of isolated bacteriophage. As well as, fish sample was prepared as fresh and minced. Then minced meat was contaminated with constant concentration of Aeromonas hydrophila and different levels of effective bacteriophage. Meat samples containing negative and positive control, four levels of bacteriophage were storage in refrigerator for a week. During the storage sampling was done for bacterial count and bacteriophage titration. Results showed that effective phage on Aeromonas hydrophila isolated from Urmia sewage system that could inhibit the growth of bacteria. Also, findings showed that the levels of 10000 and 100000 PFU/gr significantly could inhibit the growth of Aeromonas hydrophila in minced common carp meat. It’s should be concluded that there is a phage effective on Aeromonas hydrophila in Urmia sewage system that suitably could use for food staff safety. 13 25 2020/08/162020/11/13 1399/8/23 2021/11/12021/11/1 1400/8/10 سمیرا شرفخانی گروه علوم و صنایع غذایی، واحد ماکو، دانشگاه آزاد اسلامی، ماکو، ایران Iran a.gharekhani@yahoo.com احمد قره خانی Ahmad Gharekhani دانشگاه آزاد اسلامی واحد ماکو Iran a.gharekhani@yahoo.com Bacteriophage Wastewater Common Carp Minced Meat Aeromonas hydrophila باکتریوفاژ فاضلاب کپور معمولی گوشت چرخ شده Aeromonas hydrophila ##رئیسی، م.، پناهی، م. و دوستی، ع.، 1393. مطالعه آلودگی برخی فراورده‌‌های دریایی به آئروموناس هیدروفیلا با تاکید بر گونه و فصل. مجله میکروب شناسی مواد غذایی،1(2): 19- 15 .##ستاری، م.، 1382. ماهی شناسی سیستماتیک. جلد دوم، چاپ اول، انتشارات حق شناس. رشت، صفحات 188-187. ##شیخ اسدی، م.، ذریه زهرا، س.ج.، یزدان پناه، ل.، ستاری، الف. و میربخش، م.، 1400. بررسی آسیب شناسی بافتی و تغییرات برخی شاخص های خونی ماهیان قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) گونه های داخلی و فرانسوی ناشی از باکتری آئروموناس هیدروفیلا (Aeromonas hydrophila). مجله علمی شیلات ایران، 30(1):174-159DOI:10.22092/ISFJ.2021.124121 ..##فرجی کفشگری، س.، مقصودلو، ی.، خمیری، م.، کشیری، م. و بابایی، الف.، 1398. جداسازی فاژ لیتیک اختصاصی اشریشیاکلی از فاضلاب و بررسی اثر ضدمیکروبی آن در گوشت مرغ. مجله میکروب‌شناسی پزشکی ایران، 13(3): 9-1.DOI: 10.30699/IJMM.13.3.180. .##کاظمی، س.، قره خانی، الف. و توکمه چی، الف.، 1399. بررسی پوشش خوراکی پروتئین آب پنیرحاوی نایسین بر میزان ماندگاری فیله ماهی سوف. مجله علوم و فنون شیلات، 10(1):92-75. ##یزدان پناه گوهرریزی، ل.، رخ بخش زمین، ف.، ذریه زهرا، س.ج.، کاظمی‌پور، ن. و خیرخواه، ب.، 1398. اثرات استفاده از باکتریوفاژ در میزان بازماندگی ماهی قزل‌آلای رنگین کمان آلوده به باکتری آئروموناس هیدروفیلا را در شرایط درون‌تنی. مجله علمی شیلات ایران، 29(1):49-37. DOI: 10.22092/ISFJ. 2019.121007.##Aboud, O., 2010. Application of some egyptian medicinal plants to eliminate Trichodina sp and Aeromonas hydrophila in tilapia (Oreochromis niloticus) .Tishreen Magazine Researcher, 2(10):12-16.##Adams, M.H., 1959. Bacteriophages. Interscience Publishers, New York.##Akmal, A., Rahimi-Midani, A., Hafeez-ur-Rehman, M., Hussain, A. and Cho, T.C., 2020. Isolation characterization and application of a bacteriophage infecting the fish pathogen Aeromonas hydrophila. Pathogens, 9(215): 1-13. DOI:10.3390/pathogens9030215##Austin, B. and Austin, D.A., 2007. Bacterial fish pathogens, disease of farmed and wild fish. 4th ed. Springer Praxis, Godalming, pp. 202-231.##Carvalho, C.M., Santos, S.B., Kropinski, A.M., Ferreira, E.C. and Azeredo, J., 2012. Phages as therapeutic tools to control major foodborne pathogens: Campylobacter and Salmonella, In Bacteriophages. Croatia: InTechnology, 179-214. DOI: 10.5772/33473. ##Chandrarathna, H.P.S.U., Nikapitiya, C., Dananjaya, S.H.S., De Silva, B.C.J., Heo, G.J., De Zoysa, M. and Lee, J., 2020. Isolation and characterization of phage AHP-1 and its combined effect with chloramphenicol to control Aeromonas hydrophila. Brazilian Journal of Microbiology, 51:409–416. DOI: 10.1007/s42770-019-00178-z.##Doss, J., Culbertson, K., Hahn, D., Camacho, J. and Barekzi, N., 2017. A review of phage therapy against bacterial pathogens of aquatic and terrestrial organisms. Viruses, 9(3): 50-58. DOI: 10.3390/v9030050.##Elbreki, M., Ross, R.P., Hill, C., Omahony, J., McAuliffe, O. and Coffey, A., 2014. Bacteriophages and their derivatives as biotherapeutic agents in disease prevention and treatment. Journal of Viruses, 1–12, DOI: 10.1155/2014/382539.##Greer, G.G., 2005. Bacteriophage control of foodborne bacteria. Journal of Food Protection, 68:1334-1334. DOI:10.4315/0362-028X-68.5.1102.##Ibrahem, M.D., Arab, R.M.H., Mostafa, MM. and Rezk, M.A., 2008. Evaluation of different vaccination strategies for control of (Mas) in nile tilapia (Oreochromis niloticus) In Egypt. 8th International Symposium on Tilapia in Aquaculture, 1157-1174.##Jenny, F., 2011. Fighting bacterial infections-future treatment options. Drug Resist Updat, 14: 125–139. DOI: 10.1016/j.drup.2011.02.001.##Khushiramani, R., Girisha, S.K., Karunasagar, I. and Karunasagar, I., 2007. Cloning and expression of an outer membrane protein ompTS of Aeromonas hydrophila and study of immunogenicity in fish. Protein Expression and Purification, 51:303-307. DOI.org/10.1016/j.pep.2006.07.021.##Kutateladze, M. and Adamia, R., 2010. Bacteriophages as potentialnewthera-peutics toreplace or supplement antibiotics. Trends in Biotechnology, 28:591–595. DOI: 10.1016/j.tibtech.2010.08.001.##Kutter, E. and Sulakvelidze, A., 2005. Bacteriophages: Boca Raton: CRC Press; 2005; 1-5. ##Le, T.S., Nguyen, T.H., Vo. H.P., Doan, V.C., Nguyen, H.L., Tran, M.T., Tran, T.T., Southgate, P.C. and Kurtboke, D.I., 2018. Protective effects of bacteriophages against Aeromonas hydrophila species causing motile Aeromonas septicemia (MAS) in Striped Catfish. Antibiotics, 25, 7(1). 16, DOI: 10.3390/antibiotics7010016.##Liu, J., Gao, S., Dong, Y., Lu, C. and Liu, A., 2020. Isolation and characterization of bacteriophages against virulent Aeromonas hydrophila. BMC Microbiology, 20(141): 2-13. DOI :10.1186/s12866-020-01811-w.##Merabishvili, M., Pirnay, J., Verbeken, G., Chanishvili, N., Tediashvili, M., Lashkhi, N., Glonti, T., Krylov, V., Mast, J. and Van Parys, L., 2009. Quality-controlled small-scale production of a well-defined bacteriophage cocktail for use in human clinical trials. PloS one, 4, e4944. DOI:10.1371/journal.pone.0004944.##Moye, Z.D., Woolston, J. and Sulakvelidze, A., 2018. Bacteriophage applications for food production and processing. Virus, 10(205): 1-22.##Nelson, J.S., 2006. Fishes of The World, 4th ed., John Wiley & Sons Inc publisher, New Jersey, pp. 138-148.##Sillankorva, S.M., Oliveira, H. and Azeredo J., 2012. Bacteriophages and their role in food safety. International Journal of Microbiology, 1: 1-13.##Singh, V., Jain, P. and Dahiya, S., 2016. Isolation and characterization of bacteriophage from waste water against E.coli, a foodborne pathogen. Microbiology Biotechnology, 1:163-70. DOI: 6746&iid=208&jid=1.##Steinbacher, S., Baxa, U., Miller, S., Weintraub, A., Seckler, R. and Huber, R., 1996. Crystal structure of phage P22 tails pike protein complex with Salmonella sp. antigen receptors. Proceeding of the National Academy of Sciences of the USA, 93:10584-8. DOI:10.1073/pnas.93.20.10584.##Su, M.T., Venkatesh, T.V. and Bodmer R., 1998. Large-and small-scale preparation of bacteriophage lambda lysate and DNA. Biotechniques, 25:44-46. Doi: 10.2144/98251bm08.##WHO, 2007. World Health Organization. Food safety & foodborne illness. Fact sheet no. 237 (reviewed March 2007). Geneva: WHO; 2007.##Yuan, S., Chen, L., Liu, Q., Zhou, Y., Yang, J., Deng, D., Li, H. and Ma, Y., 2018. Characterization and genomic analyses of Aeromonas hydrophila phages AhSzq-1 and AhSzw-1, isolates representing new species within the T5virus genus. Archives of Virology, 163:1985–1988. DOI.org/10.1007/s00705-018-3805-y. ##

مقاله علمی – پژوهشی: بررسی تراکم و زی توده کرم پرتار Streblospio gynobranchiata در رسوبات بستر سواحل بندرترکمن و بابلسر در منطقه جنوبی دریای خزر The study of distribution, abundance and biomass of Streblospio gynobranchiata in the sediments of southern coasts of Caspian Sea (Bandar Torkman and Babolsar) 1 1 هدف از این پژوهش بررسی تغییرات فصلی پراکنش، تراکم و زی‌‌توده کرم پرتار Streblospio gynobranchiata در رسوبات بستر سواحل جنوبی دریای خزر (بندرترکمن و بابلسر) طی سال‌های 98-1397 بود. نمونه‌‌برداری از رسوبات به‌‌ صورت فصلی در 6 ایستگاه و در اعماق 5، 10 و 30 متری در 2 نیم خط عرضی عمود بر ساحل انجام شد. نتایج، میانگین (±خطای معیار) تراکم و زی‌‌توده گونه مورد نظر، در نیم خط بابلسر به‌‌ترتیب 40/51±06/207 عدد در مترمربع و 006/0±042/0 گرم در مترمربع بود. در بررسی فصلی، بیشترین تراکم و زی‌‌توده در این نیم خط در فصل تابستان به‌‌ترتیب با میانگین 95/284±47/1297 عدد و040/0±222/0 گرم ثبت شد. در بندر ترکمن میانگین (±خطای معیار) تراکم و زی‌‌توده به‌‌ترتیب 07/53±51/206 عدد در مترمربع و 005/0±043/0 گرم در مترمربع بود و بیشترین تراکم با میانگین 07/180±27/942 عدد در فصل تابستان و بیشترین زی‌‌توده  با میانگین 025/0±187/0 گرم در فصل بهار ثبت شد. در هر دو نیم خط اختلاف معنی‌‌داری از تراکم و زی‌‌توده در بین فصول مختلف سال دیده شد (05/0p<) که ناشی از چرخه تولید مثلی آنهاست. بررسی میزان مواد آلی بستر در فصل‌‌ها و ایستگاه‌‌های مختلف دارای نوسان بود که می‌‌تواند به دلیل عمق، جنس بستر و خاستگاه اکولوژی باشد.   2 The purpose of this study was to investigate the seasonal variation of distribution, abundance and biomass Streblospio gynobranchiata of substrate sediments on the Southern coasts of the Caspian Sea (Bandar Torkman and Babolsar) in 2018-2019. Sampling was done seasonally and 6 stations at depths of 5, 10 and 30 meters of the 2 transects. The results showed that the mean (±SE) of abundance and biomass were in the Babolsar transect (respectively) 207.06±51.40 ind.m-2 and 0.042±0.006 g.m-2 and seasonal study, the highest abundance and biomass in Babolsar transect with mean (respectively) 1297.47±284.95 ind.m-2 and 0.222±0.040 g.m-2. So there was a significant difference between the abundance and biomass in different seasons (p<0.05). Also showed that the mean (±SE) of abundance and biomass were in the Bandar Torkman transect (respectively) 206.51±53.07 ind.m-2 and 0.043±0.005 g.m-2. According to seasonal study, the highest abundance in Bandar Torkman transect with mean 942.27±180.07 ind.m-2 in summer and highest biomass 0.153 ± 0.03 g.m-2 recorded in spring, so there was a significant difference between the abundance and biomass in different seasons (p<0.05), which is due to their reproductive cycle. The total organic matter in different seasons was fluctuating, which could be due to the depth, substrate and ecological origin. 27 37 2020/08/162020/11/132020/12/9 1399/9/19 2021/11/12021/11/12021/11/1 1400/8/10 متین شکوری Matin Shakoori پژوهشکده اکولوژی دریای خزر ساری Iran matin.shakoori@yahoo.com محمدعلی افرائی بندپی Mohamad Ali Afraie bandpei پژوهشکده اکولوژی دریای خزر ساری Iran mafraei@yahoo.com حسن نصراله زاده ساروی Hasan Nasrollahzadeh Saravi پژوهشکده اکولوژی دریای خزر ساری Iran hnsaravi@gmail.com میثم عرفانی Meisam Erfani مزکز تحقیقات ماهیان سردآبی تنکابن Iran meysamtavoli@yahoo.com ایرج رجبی Iraj Rajabi پژوهشکده اکولوژی دریای خزر ساری Iran rajabiiraj@yahoo.com Abundance Biomass Streblospio gynobranchiata Bandar Torkman Babolsar Caspian Sea تراکم زی‌‌توده Streblospio gynobranchiata بندر ترکمن بابلسر دریای خزر ##ابراهیمی، ع.، صوفیانی محبوبی، ن. و کیوانی، ی.، 1383. گزارش داخلی طرح بررسی تنوع ماکروبنتوزهای رودخانه زاینده رود. دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، 76 ص.##آخوندیان، م.، جواندل، ن. و کاردل، ف.، 1397. تغییرات فصلی تنوع و فراوانی کرم‌‌های حلقوی کف‌‌زی در رسوبات بستر سواحل جنوب دریای خزر (مازندران- ساری). مجله بوم شناسی آبزیان، 8(1): 91-77.##افرائی بندپی، م.ع.، نصراله زاده ساروی، ح.، سالاروند، غ.ر.، نادری جلودار، م. و روحی، ا.، 1398. اثرات برخی پارامترهای فیزیکی- شیمیایی آب و رسوبات بستر بر تراکم و زی‌‌توده (Annelida, Spionidae) Streblospio gynobranchiata در جنوب شرقی دریای خزر (منطقه گهرباران). مجله علمی شیلات ایران، 28(3): 77-67. DOI: 10.22092/ISFJ. 2019.119109##پرافکنده حقیقی، ف.، افرائی بندپی، م.ع. و سلیمانی‌‌رودی، ع.، 1395. بررسی پراکنش، تراکم و زی‌‌توده بزرگ موجودات بنتیکی در محل استقرار پرورش ماهی در قفس در سواحل جنوبی دریای خزر (آب‌‌های مازندران- کلارآباد). مجله علمی شیلات ایران، 25(3): 103-91. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110261##سلیمانی‌‌رودی، ع.، هاشمیان، ع.، رئیسیان، ا.، نصراله‌‌زاده، ح.، فارابی، م.و.، مخلوق، آ.، نادری، م.، اسلامی، ف.، الیاسی، ف.، نظران،م.، سلمانی، ع.، و کاردر رستمی، م.، 1391. بررسی تنوع، پراکنش، فراوانی و زی‌‌توده ماکروبنتوزها در منطقه جنوبی دریای خزر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، 98ص.##ضرغامی، م.، فاطمی، م.ر.، مقدسی، ب.، سهرابی ملایوسفی، م. و موسوی ندوشن، ر.، 1394. بررسی تراکم کرم پرتار Streblospio gynobranchiata در رسوبات ساحل جنوبی دریای خزر (استان مازندران). مجله علمی پژوهشی زیست شناسی دریا- دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز، 7(27): 20-11.##طاهری، م.، سیف آبادی، ج.، ابطحی، ب. و یزدانی، م.، 1382. خصوصیات ریخت شناسی و زیستی کرم پرتار Streblospio gynobranchiata در ساحل نور- دریای خزر. مجله علوم و فنون دریایی، 84-83.##طاهری، م.، 1384. شناسایی، پراکنش و تعیین توده زنده پرتاران جنوب دریای خزر- ساحل نور. پایان نامه کارشناسی ارشد زیست دریا، دانشگاه تربیت مدرس. 78 ص.##طاهری، م.، سیف آبادی، ج.، ابطحی، ب. و یزدانی فشتمی، م.، 1389. پویایی جمعیت، پراکنش و چرخه ی تولید مثلی کرم پرتار Nereis diversicolor در ساحل شهرستان نور- جنوب دریای خزر .نشریه علمی پژوهشی اقیانوس شناسی، 1(2): 33-27.##علیزاده لاهیجانی، ح. و غفاری، ا.، 1383. مقدمه‌‌ای بر ویژگی‌‌های دریای خزر. انتشارات نوربخش. تهران، ایران. 119 ص. ##نصراله‌‌زاده ساروی، ح.، مخلوق، آ.، واحدی، ف.، روحی، ا. و نوری، پ.، 1399. مطالعه تولیدات خالص فیتوپلانکتون و همبستگی آن با مولفه‌‌های مربوطه در نوار ساحلی حوزه جنوبی دریای خزر (98-1397). مجله علمی شیلات ایران، 29(5): 174-161. DOI: 10.22092/ISFJ.2021.123420##هاشمیان، ع.، سلیمانرودی، ع.، سالاروند، ع.، رئیسیان، ا.، نصراله زاده، ح.، افرائی بندپی، م.ع.، فارابی، م.و.، اسلامی، ف.، الیاسی، ف.، نظران، م.، دشتی، ع.، رضایی، ع. و کاردر، م.، 1391 .بررسی پراکنش، و برآورد تولیدات سالانه ماکرووبنتوزها در حوضه جنوبی دریای خزر. گزارش نهایی. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، 95 ص.##Birshtein, Y.A., Vinogradov, L.G., Kondakova, N.N., Koun, M.S., Astakhva, T.V. and Ramanova, N.N., 1968. Atlas of invertebrates in the Caspian Sea, Mosko. 413 P. (In Russian)##Cinar, M.E., Ergen, Z., Dagli, E. and Petersen, M.E., 2005. Alien species of spionid polychaetes (Streblospio gynobranchiata and Polydora cornuta) in Izmir Bay, eastern Mediterranean. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom, 85: 821–827. DOI: 10.1017/s0025315405011768.##Cinar, M.E., Balkis, H., Albayrak, S., Dağli, E. and Karhan, S.U., 2009. Distribution of polychaete species (Annelida: Polychaeta) on the polluted soft substrate of the Golden Horn Estuary (Sea of Marmara), with special emphasis on alien species. Cahiers de Biologie Marine, 50(1): 11–17. ##Darvish Bastami, K., Bagheri, H., Soltani, F. and Hamzepoor, A., 2013. Environmental quality assessment of the Caspian Sea coast (Sisangan) based on the AMBI index. Journal of Environmental Science and Engineering, 1(3): 69-78. (In Persian)##Ghasemi, A.F., Taheri, M. and Jam, A., 2013. Does the introduced polychaete Alitta succinea establish in the Caspian Sea? Helgoland Marine Research, 67(4): 715. DOI: 10.1007/s10152-013-0356-1.##Ghasemi, A.F., Clements, J.C., Taheri, M. and Rostami, A., 2014. Changes in the quantitative distribution of Caspian Sea polychaetes: Prolific fauna formed by non-indigenous species. Journal of Great Lakes Research, 40(3): 692-698. DOI: 10.1016/j.jglr.2014.05.004.##Gray, J., 1981. The ecology of marine sediments, an introduction to the structure and function of benthic communities. Cambridge University Press, Cambridge, 185P.##Gregory, A., 2007. Response of macrobenthic communties to oil spills along Goa coast. Thesis, Mumbai University - National Institute of Oceanography, Goa. India, 87 P. ##Heilskov, A.C. and Holmer, M., 2001. Effect of benthic fauna on organic matter mineralization in fish-farm sediment: importance of size and abundance. Journal of Marine Science, 58: 427-434. DOI: 10.1006/jmsc.2000.1026.##Holme, N.A. and Mclntyre, A.D., 1984. Methods for study of marine benthos, second edition, Oxford Blackwell Scientific Publication, 387P.##Jackson, J.B., Kirby, M.X., Berger, W.H., Bjorndal, K. A., Botsford, L.W., Bourque, B.J., Bradbury, R.H., Cooke, R., Erlandson, J., Estes, J.A., Hughes, ## T.P., Kidwell, S., Lenihan, H.S., Pandolfi, J.M., Peterson, C.H., Steneck, R.S., Tegner, M.J. and Warner, R.R., 2001. Historical overfishing and the recent collapse of coastal ecosystems. Journal of Marine Science, 293: 629-638. DOI: 10.1126/science.1059199. ##Jayaraj, K.A., Jocob, J. and Dineshkumar, P.K., 2008. Infaunal macrobenthic community of soft bottom sediment in a tropical shelf. Journal of Coastal Research, 24(3), 708-718. DOI:10.2112/06-0790.1.##Joel, M., Galloway, A. and James, C., 2003. Water quality and biological characteristic of the middle fork of the saline river. Arkansas. Department of environmental quality Arkansas. 198P.##Kotpal, R. L., 2002. Modern text book of zoology invertebrate. Rastogi Publication. 807 P.##Mahon, A.R., Mahon, H.K., Dauer, D.M. and Halanych, K.M., 2009. Discrete genetic boundaries of three Streblospio (Spionidae, Annelida) species and the status of S. shrubsolii. Marine Biology Research, 5(2): 172–178. DOI: 10.1080/17451000802317683. ##Muniz, P. and Pires, A.M.S., 2000. Polychaete association in a subtropical environment (Sao sebatiao Channel, Brazil). A structureal analysis. Marine Ecology, 21(2):145-160. DOI: 10.1046/j.1439-0485.2000.00696.x## Pearse, V., Pearse, J., Buchsbaum, M. and Buchsbaum, R., 1987. Living Invertebrata. Blackwell Scientific Publication and Box Wood Press. 847 P.##Pearson, T.H., 1980. Marine pollution effects of pulp & paper industry wastes. Helgolander wiss. Meersunters, 33: 340-365.##Rice, S.A. and Levin, L.A., 1998. Streblospio gynobranchiata, a new spionid polychaete species (Annelida: Polychaeta) from Florida and the Gulf of Mexico with an analysis of phylogenetic relationships within the genus Streblospio. Proceedings of the Biological Society of Washington, 111(3): 694–707.##Ruppert, E.E., Fox. R.S. and Barnes, R.D., 2004. Invertebrate Zoology, Thomson. 963 p.##Serra Soni, R.Q., Cobo, F., Graça, MAC., Doleded, S. and Feio, M.J., 2016. Synthesizing the trait information of European Chironomidae (Insecta: Diptera): Towards a new database. Ecological Indicators, 61: 282–292. DOI: 10.1016/j.ecolind.2015.09.028.##Stantic Consultig Ltd., 2006. Benthic Macroinvertebrate Sampling and Analysis of Lake Simco. Stantec Consulting Ltd.1505 Laperriere AvenueOttawa, OntarioK1Z 7T1. 123 P.##Taheri, M., Seyfabadi, J. and Yazdani Foshtomi, M., 2006. Ecological study and species identification of polychaetes of Gorgan Bay (Bandargaz Coast). Iranian Journal of Biology, 20(2): 286-294. (In Persian)##Taheri, M. and Yazdani Foshtomi, M., 2011. Community structure and biodiversity of shallow water macrobenthic fauna at Noor coast, South Caspian Sea, Iran. Journal of the Marine Biological, Association of the United Kingdom, 91(3): 607-613. DOI: 10.1017/S0025315410000378.##Vizakat, L., Harkantra, S.N. and Parulekar, A.H. 1991. Population ecology and community structure of subtidal soft sediment dwelling macroinvertebrates of Konkan, west coast of India. Indian Journal of Marine Science, 20: 40-42.##Williams, J.D., 2000. A new species of Polydora (Polychaeta: Spionidae) from the Indo-West Pacific and first record of host hermit crab egg predation by a commensal polydorid worm. Zoological Journal of the Linnean Society, 129: 537-548. DOI: 10.1006/zjls.2000.0245. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ بررسی فراوانی و برخی خصوصیات تولیدمثل دو گونه خرچنگ ماه Matuta victor (Fabricius, 1781) و Matuta planipes (Fabricius, 1798) در ساحل گهردو، دریای عمان Study of abundant and some reproduction traits of two species crabs Matuta victor (Fabricius, 1781) and Matuta planipes (Fabricius, 1798) in Gehrdo coast, Oman Sea 1 1 این مطالعه به منظور بررسی فراوانی و برخی خصوصیات تولیدمثل خرچنگ Matuta victor و Matuta planipes در منطقه گهردو، دریای عمان از آذر 1398 تا آبان 1399 انجام شد. در مجموع 310 عدد خرچنگ M. victor و 297 عدد خرچنگ M. planipes جمع‌آوری شد. نسبت جنسی (نر به ماده) برای گونه M. victor به‌صورت 4/1:1 و برای گونه M. planipes 7/1:1 برآورد شد (05/0 > p). بر اساس نتایج به‌دست‌آمده، میانگین پهنای کاراپاس و میانگین وزن بدن در جنس‌ نر دو گونه موردمطالعه بیشتر از جنس‌ ماده به دست آمد. در این مطالعه بیشترین و کمترین میزان هماوری کل به ترتیب 45353 عدد تخم (با پهنای کاراپاس 6/24 میلیمتر و وزن 35/6 گرم) و 14365 عدد تخم (با پهنای کاراپاس 9/31 میلیمتر و وزن 29/10 گرم) برای M. planipes، 43423 عدد تخم (با پهنای کاراپاس 7/26 میلیمتر و وزن 25/6 گرم) و 11635 عدد تخم (با پهنای کاراپاس 55/28 میلیمتر و وزن 79/8 گرم) برای M. victor شمارش شد. براساس نتایج بدست آمده ‌بین میزان هماوری با پهنای کاراپاس و وزن بدن هر دو گونه خرچنگ مورد مطالعه رابطه معکوس وجود داشت. نتایج، نشان‌دهنده‌ی یک رابطه معکوس بین درجه حرارت و شاخص گنادوسوماتیک دو گونه مورد مطالعه بود. بیشترین میزان شاخص گنادوسوماتیک برای M. planipes در بهمن‌ماه (44/6 ± 71/10) و برای M. victor در مهرماه (13/2 ± 41/5) مشاهده شد. بر اساس نتایج، در فصول پاییز و زمستان، فراوانی خرچنگ M. planipes و در فصول بهار و تابستان  فراوانی خرچنگ M. victor بیشتر بود. 2 This study was done to investigate of abundance and some reproduction traits of Matuta victor and Matuta planipes on Gehrdo coast, the Oman Sea from December 2019 to November 2020. Overall, 310 crabs of M. victor and 297 crabs of M. planipes were collected. Sex ratio (M/F) was observed as 1.4:1 for M. victor and 1.7: 1 for M. planipes (p <0.05). Based on the results, the average carapace width and weight of male crabs were obtained more than female crabs for two studied species. In this study, the highest and lowest fecundity were 43423 eggs (carapace width of 26.7 mm and weight of 6.25 g) and 11635 eggs (carapace width of 28.55 mm and weight of 8.79 g) for M. victor and 45353 eggs (carapace width of 24.6 mm and weight of 6.35 g) and 14365 eggs (carapace width of 31.9 mm and weight of 10.29 g) for M. planipes. In two studied species, the result showed inversely relationship between egg number with carapace width and body weight. The results showed that there is an inverse relationship between temperature and gonadosomatic index for two studied species. The highest GSI was in February (10.71±6.44) and in October (5.41±2.13) for M. planipes and M. victor respectively. According to the results, abundance of M. planipes was more in autumn and winter while, abundance of M. victor was more in spring and summer. 39 51 2020/08/162020/11/132020/12/92021/07/23 1400/5/1 2021/11/12021/11/12021/11/12021/11/1 1400/8/10 مجتبی نادری mojtaba naderi گروه کشاورزی، دانشگاه پیام نور، صندوق پستی 3697-19395 تهران، ایران. Iran mojtabanaderi1364@yahoo.com مینا ماهی گیر Mina Mahogir گروه زیست‌شناسی، دانشگاه پیام نور، صندوق پستی 3697-19395 تهران، ایران. Iran andishmand45@yahoo.com فاطمه شهبازی Fatemeh Shabazi گروه زیست‌شناسی، دانشگاه پیام نور، صندوق پستی 3697-19395 تهران، ایران. Iran fatemehs2011@gmail.com Sex ratio fecundity crab GSI نسبت جنسی هماوری خرچنگ شاخص گنادوسوماتیک ##بهره‌مند، م.، صفایی، م. و مومنی، م.و.، 1397. زیست‌شناسی تولیدمثل خرچنگ Charybdis hellerii (A. Milne-Edwards, 1867) در آب‌های ساحلی خلیج فارس (استان هرمزگان). مجله بوم‌شناسی آبزیان، 7 (4): 49-40.##فهیمی، ن.، سیف‌‌آبادی، ج.، ساری، ع.ر. و مهوری، ع.ر.و.، 1392. بلوغ جنسی و فصل تولید مثل در خرچنگ های Xanthid گونه Leptodius exaratus در جزیره هرمز. اولین همایش سراسری کشاورزی و منابع طبیعی پایدار، 25-13.##Ahmed, M. and Mustaquim, J., 1974. Population structure of four species of porcellanid crabs Decapoda: Anomura) occurring on the coast of Karachi. Marine Biology, 26: 173-182.##Akpaniteaku, R.C., 2014. Mud crab survey and fecundity study around Ebonyi River basin, Ebonyi State, Nigeria. Global Science Research Journals, 2(4), 165-168. ## ##Akpaniteaku, R.C., 2015. Aspects of Reproduction and the Condition of Gravid Mud Crab (Crustacea: Brachyura: Potamon) in Ebonyi State, Nigeria. International Journal of Research Studies in Biosciences, 3(1) 104-109.##Alberto, R.M.F. and Fontoura, N.F., 1999. Distribução e estrutura etária de Ocypode quadrata (Fabricius, 1787) (Crustacea, Decapoda, Ocypodidae) em praia arenosa do litoral sul do Brasil. Revista Brasileira de Biologia, 59: 95–108.##Anger, K. and Moreira, G.S., 1998. Morphometric and reproductive traits of tropical caridean shrimps. Journal of Crustacean Biology, 4: 823-838.##Anger, K., 1995. The conquest of fresh water and land by marine crabs: adaptations in life-history patterns and larval bioenergetics. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 193: 119-145.##Bauer, R.T., 1989. Continuous reproduction and episodic recruitment in nine shrimp species inhabiting a tropical seagrass meadow. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 127:17587.##Beatty, S.J., Morgan, D. and Gill, H., 2005. Role of life history strategy in the colonisation of Western Australian aquatic systems by the introduced crayfish Cherax destructor Clark, 1936. Hydrobiologia, 549 (1): 219–237. DOI: 10.1007/s10750-005-5443-0.##Biswas, S.P., 1993. Manual of Methods in Fish Biology. South Asian Publishers Pvt. Ltd., India, 157P.##Bode, A., Lombas, I. and Anadón, N., 1986. Preliminary studies on the reproduction and population dynamics of Monodonta lineata and Gibbula umbilicalis (Mollusca, Gastropoda) on the central coast of Asturias (N. Spain). Hydrobiologia, 142: 31–39. http://doi.org/10.1007/BF00026745##Chockley, B.R. and Mary, C.M.S., 2003. Effects of body size on growth, survivorship, and reproduction in the banded coral shrimp, Stenopus hispidus. Journal of Crustacean Biology, 23: 836-848. DOI:10.1651/C-2392.##Christy, J.H. and Salmon, M., 1984. Ecology and evolution of mating system of fiddler crabs (genus Uca). Biological Reviews, 59: 483-509. DOI: 10.1111/j.1469-185X.1984.tb00412.x.##Christy, J.H., 1987. Female choice and breeding behavior of the fiddler crab Uca beebei. Journal of Crustacean Biology, 7: 624-635. https://doi.org/10.2307/1548648.##Correa, M.O.D.A., Andrade, L.S., Costa, C.R., Castilho, A.L., Bertini, G. and Fransozo, A., 2014. Vertical distribution by demographic groups of ghost crab Ocypode quadrata (Crustacea: brachyuran). Biologi, 67: 905-915. DOI: 10.2478/s11756-014-0385-5.##Costa, T.M. and Negreiros-Fransozo, M.L., 2002. Population biology of Uca thayeri Rathbun, 1900 (Brachyura, Ocypodidae) in a subtropical South America mangrove area: results from transect and catch-per-unit-effort techniques. Crustaceana, 75: 1201-1218. DOI: 10.1163/156854002321518144.##Da, Costa, C.R. and Fransozo, A., 2004. Reproductive biology of the shrimp Rimapenaeus constrictus (Decapoda, Penaeidae) in the Ubatuba region of Brazil. Journal of Crustacean Biology, 24: 27481. https://doi.org/10.1651/C-2437.##Delaney, M., 2003. Effects of temperature and turbulence on the predator–prey interactions between a heterotrophic flagellate and a marine bacterium. Microbial Ecology, 45(3): 218–225.##Diaz, H. and Conde, J.E., 1989. Population dynamics and life history of the mangrove crab Aratus pisonii (Brachyura, Grapsidae) in a marine environment. Bulletin of Marine Science, 45:148-163.##Fransozo, A., Negreiros-Fransozo, M.L. and Bertini, G., 2002. Morphometric study of the ghost crab Ocypode quadrata (Fabricius, 1887) (Brachyura, Ocypodidae) from Ubatuba, São Paulo, Brazil. In: Escobar, E., Riones, B., Alvarez, F., (ed) Proceedings of the Crustacean Society, Puerto Vallarta, Mexico. New York: Kluwer Academic/Plenum Publishers. pp. 189–195.##Fusaro, C., 1980. Temperature and egg production by sand crab Emertia analoga Decapoda Hippidae. Crustaceana, 38(1): 55-60.##Galil, B.S. and Clark, P.F., 1995. A Revision of the genus Matuta weber, 1795 (Crustacea: Brachyura: Calappidae). Backhuys Publishers, Leiden. 55P.##Ghotbeddin, N., Fatemi, S.M.R. and Valinasab, T., 2012. Intertidal crabs of Chabahar Bay (Northeast of Oman Sea): new collections and biogeographic considerations. Iranian Journal Fisheries Sciences, 12(3): 440-451.##Harley, C.D., Randall Hughes, A., Hultgren, K.M., Miner, B.G., Sorte, C.J., Thornber, C.S. and Williams, S.L., 2006. The impacts of climate change in coastal marine systems. Ecology Letter, 9(2): 228-241. DOI: 10.1111/j.1461-0248.2005.00871.x.##Hartnoll, R.G., 1969. Mating in the Brachyura. Crustaceana, 16(2): 161-181. DOI: 10.1163/156854069X00420.##Henmi, Y., 2003. Trade-off between brood size and brood interval and the evolution of underground incubation in three fiddler crabs (Uca perplexa, U. vocans, and U. dussumieri). Journal of Crustacean Biology, 23: 46- 54. DOI: 10.1651/0278-0372(2003)023[0046:TOBBSA]2.0.CO;2.##Hines, A.H., 1982. Allometric constraints and variables of reproductive effort in brachyuran crabs. Marine Biology, 69: 309-320. DOI: 10.1007/BF00397496.##Hines, A.H., 1991. Fecundity and reproductive output in nine species of Cancer crabs (Crustacea, Brachyura, Cancridae). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 48: 267-275##Kobayashi, S., 2013. Reproductive Ecology of the Victorious Moon Crab Matuta victor in a Sandy Beach of the Genkai-nada Sea. Japanese Journal of Benthology, 67: 56–65. DOI: 10.5179/benthos.67.56.##Le Moullac, G. and Haffner, P., 2000. Environmental factors affecting immune responses in Crustacea. Aquaculture, 191(3): 121-131. DOI: 10.1016/S0044-8486(00)00422-1.##Litulo, C., Mahanjane, Y. and Mantelatto, F.L.M., 2005. Population biology and breeding period of the sand-bubbler crab Dotilla fenestrata (Brachyura: Ocypodidae) from southern Mozambique. Aquatic Ecology, 39:30513. DOI: 10.1007/s10452-005-3443-9.##Lopez Greco, L.S., Hernandez, J.E., Bolanos., J, Rodrıguez, E.M. and Hernandez, G., 2000. Population features of Microphrys bicornutus Latreille, 1825 (Brachyura, Majidae) from IslaMargarita,Venezuela. Hydrobiologia, 439: 151-159. DOI: 10.1023/A:1004130621093.##Mantelatto, F.L.M. and Fransozo, A., 1997. Fecundity of the crab Callinectes ornatus Ordway, 1863 (Decapoda, Brachyura, Portunidae) from the Ubatuba region, São Paulo, Brazil. Crustaceana, 70: 214-224. DOI: 10.1163/156854097X00852.##Martinelli, J.M, Mantelatto, F.L.M. and Fransozo, A., 2002. Population structure and breeding season of the south Atlantic hermit crab, Loxopagurus loxochelis (Anomura, Diogenidae) from the Ubatuba region, Brazil. Crustaceana, 75:791802. DOI: 10.1163/156854002760289764.##Mokhtari, M., Savari, A., Rezai, H., Kochanian, P. and A. Bitaab, A., 2008. Population ecology of fiddler crab, Uca lactea annulipes (Decapoda, Ocypodidae) in sirik mangrove estuary, Iran. Estuarine, Coastal and Shelf Science, 76: 273-281. DOI: 10.1016/j.ecss.2007.07.010.##Naderi, M., Hosseini, S.A., Hedayati, A.A., Pazooki, J., Zare, P. and Lastra, M., 2018. Reproductive biology of Ghost crab Ocypode rotundata (Miers, 1882) (Decapoda, Ocypodidae) of Qeshm Island (Persian Gulf). Crustaceana, 91:1039-1059. DOI: 10.1163/15685403-00003804.##Naderloo, R. and Turkay, M., 2012. Decapod crustaceans of the littoral and shallow sublittoral Iranian coast of the Persian Gulf: Faunistics, Biodiversity and Zoogeography. Zootaxa, 3374 (1): 1–67. DOI: 10.11646/zootaxa.3374.1.1.##Naderloo, R., Ebrahimnejad, S. and Sari, A., 2015. Annotated checklist of the decapod crustaceans of the Gulf of Oman, northwestern Indian Ocean. Zootaxa, 4028(3): 397–412. DOI: 10.11646/zootaxa.4028.3.5.##Naderloo, R., 2017. Atlas of Crabs of the Persian Gulf. Springer International Publishing. 440p. ##Negreiros-Fransozo, M.L., Fransozo, A. and Bertini, B., 2002. Reproductive cycle and recruitment period of Ocypode quadrata (Decapode, ocypode) at a sandy beach in southeastern Brazil. Journal of Crustacean Biology, 22: 157–161. DOI: 10.1651/0278-0372(2002)022[0157:RCARPO]2.0.CO;2.##Ng, P.K.L., 1998. Crabs. p. 1045-1155. In: Carpenter, K.E., Niem, V.H., (ed) FAO species identification guide for fishery purposes. The living marine resources of the Western Central Pacific. Cephalopods, crustaceans, holothurians and sharks. Rome, FAO. pp. 687-1396.##Orton, J.H., 1920. Sea temperature, breeding and distribution of marine animals. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom, 12:339-366. DOI: 10.1017/S0025315400000102.##Perez, O.S., 1990. Reproductive biology of the sandy shore crab Matuta lunaris (Brachyura: Calappidae). Marine Ecology Progress Serie, 9: 83-89. ##Perkins, H.C., 1971. Egg loss during incubation from off-shore northern lobster (Decapoda: Homaridae). Fishery Bulletin, 69: 451-453.##Pillay, K.K. and Nair, N.B., 1976. Observations on the breeding biology of some crabs from the southwest coast of India. Journal of the Marine Biological Association of India, 15: 754-770##Ramirez-Llodra, E., 2002. Fecundity and life-history strategies in marine invertebrates. Advances in Marine Biology, 43: 87-170. DOI: 10.1016/S0065-2881(02)43004-0.##Safaei, M., Pazooki, J., Kiabi, B. and Shokri, M.R., 2013. Reproductive biology of blue swimming crab, Portunus segnis (Forskal, 1775) in coastal waters of Persian Gulf and Oman Sea, Iran. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 12(2): 430-444.##Saher, U.S., Zunaira, A., Asif Gondal, M. and Qureshi, N.A., 2017. Distribution, Abundance and Population Ecology of Ashtoret lunaris (Forskel, 1775) and Matuta planipes Fabricius, 1798 from the Sonmiani Bay (Lagoon), Pakistan. Pakistan Journal of Zoology, 49(2): 455-465. DOI: 10.17582/journal.pjz/2017.49.2.455.465.##Sastry, A.N., 1983. Ecological aspects of reproduction. In: Vernberg, F.J., Vernberg, W.B., (ed) The Biology of Crustacea, New York, Academic Press, pp. 179-270. ##Sousa, R., Vasconcelos, J., Delgado, J., Riera, R., González, J.A., Freitas, M. and Henriques, P., 2018. Filling biological information gaps of the marine topshell Phorcus sauciatus (Gastropoda: Trochidae) to ensure its sustainable exploitation. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom, 99(4): 841-849. DOI:10.1017/S0025315418001054. ##Sumpton, W.D., Potter, M.A. and Smith, G.S., 1994. Reproduction and Growth of The Commercial Sand Crab, Portunus pelagicus (L.) in Moreton Bay,Queensland. Asian Fisheries Science, 7: 103–113##Thomas, C.W., Crear, B.J. and Hart, P.R., 2000. The effect of temperature on survival, growth, feeding and metabolic activity of the southern rock lobster.Jasus edwardsii. Aquaculture, 185(2): 73-84. DOI: 10.1016/S0044-8486(99)00341-5.##Thurman, C.L., 1985. Evaporative water loss, corporal temperature and the distribution of sympatric fiddler crabs (Uca) from south Texas. Comparative. Biochemistry and Physiology, 119: 279-286. DOI: 10.1016/S1095-6433(97)00424-8.##Turkay, M., 2001. Decapoda, In: Costello, M.J., (ed) European register of marine species: a check-list of the marine species in Europe and a bibliography of guides to their identification. Collection Patrimoines Naturels, pp 284-292.##Warner, G.F., 1967. The life history of the mangrove tree crab, Aratus pisonii. Journal of Zoology, 153:321-335.##Wenner, A.M., 1972. Sex ratio as a function of size in marine crustacean. The American Naturalist, 106: 321-350.##Zar, J.H., 1996. Biostatistical analysis. Upper Saddle River, Prentic-Hall, 663 P. DOI: 10.4236/gep.2015.310006. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ ارزیابی آسیب‌پذیری گونه‌های ماهی عمده صید براساس پارامترهای جمعیتی در آبهای خلیج فارس و دریای عمان Vulnerability assessment of capture fishing major fish species based on demographic parameters in Persian Gulf and Oman Sea 1 1 اکوسیستم‌های دریایی در حال گرم‌تر شدن هستند و با کم‌تر شدن اکسیژن، در نهایت در معرض اسیدی شدن می‌باشند و نیز شواهد مشخصی مبنی بر اینکه فعالیت‌های صیادی، گونه‌های ماهی را در مقیاس منطقه‌ای و جهانی تهدید کرده است، وجود دارد.  به همین دلیل بررسی آسیب‌پذیری ذاتی[1] گونه‌های عمده صید، اهمیت زیادی می‌یابد. شاخص‌های متعددی جهت طبقه‌بندی آسیب‌پذیری گونه‌ها وجود دارند و از مهم‌ترین آنها شاخص‌های بیولوژیک و اکولوژیک ماهیان می‌باشد. این تحقیق تلاش می‌کند که با بررسی پارامترهای جمعیتی گونه‌های ماهی عمده صید در آبهای جنوب ایران و چارچوب جهانی تغییر اقلیم[2]، طبقه‌بندی آسیب‌پذیری آنها را انجام دهد. در این پژوهش با توجه شاخص آسیب‌پذیری که دارای مقادیر 100-0 می‌باشد، طبقه بندی بدین‌صورت می‌باشد: ماهیان با آسیب‌پذیری کم (ماهیان مید، گوازیم، کفشک پرلکه) دارای مقادیر 25-0، آسیب‌پذیری متوسط (ماهیان زمین‌کن هندی، کفشک زبان‌گاوی، کفشک تیزدندان، گربه ماهی خار نازک، زرده، سوکلا) با مقادیر 50-25، آسیب‌پذیری زیاد (گونه‌های هامور، شعری، گربه ماهی بزرگ، کوسه ماهی، یال اسبی، حلوا سفید، صبور، هوور، گیدر، کوتر) با میزان 75-50 و آسیب‌پذیری خیلی زیاد (میش ماهی معمولی، سفره ماهی، سوس ماهی) با مقدار 100-75 می‌باشد. بی‌شک این نوع طبقه‌بندی می‌تواند برای مدیران شیلاتی و مدیریت صیادی مفید باشد و آنها را جهت درک بهتر گونه‌ای و برنامه‌ریزی مناسب کمک نماید. در واقع، در این رویکرد شناخت و درک بهتری نسبت به تغییرات گونه‌ها و تغییرات اقلیمی خواهیم داشت و خطر مواجه شدن گونه‌های ماهی و قابلیت سازگاری آنها را مورد بررسی قرار می‌دهد.   [1] - Vulnerability  intrinsic [2] - Intergovernmental Panel on Climate Change (IPCC) 2 The marine ecosystems are getting warmer and less oxygen and eventually becoming more acidic, there is also clear evidence that fish species are threatened by capture fishery on a regional and global scale. For this reason, the assessment of the inherent vulnerability of major species of catches is of great importance. There are several indicators of vulnerability classifications, and one of the most important is the biological and ecological characteristics of fish. This research tries to classify their vulnerability by examining the demographic parameters of major catch fish species in southern Iran and the Intergovernmental Panel on Climate Change (IPCC). In this study, according to the vulnerability index, which has values from 0 to 100, the following classification was performed. Low vulnerability fish (liza kluzengerii, Nemipterus japonicas) with values from 0 to 25, the medium vulnerability (Platycephalus indicus, Psettodes erumei) with values of 25 to 50, the high vulnerability (Pumpus argenteus, Tenualosa ilisha) 50 to 75, and very high vulnerability (Argyrosomus hololepidotus, Rhynchobatus djiddensis) 75 to 100. Undoubtedly, this type of classification can be useful for fishery managers and fishery managers and help them to better understand species and planning appropriately. In fact, we will build on this approach and have a better understanding of species variation and climate change, and will examine the risk of fish species being confronted with and their compatibility. 53 63 2020/08/162020/11/132020/12/92021/07/232018/10/7 1397/7/15 2021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/1 1400/8/10 سید امین الله تقوی مطلق Aminollah Taghavi motlagh موسسه تحقیقات علوم شیلاتی Iran S_taghvimotlagh@hotmail.com سید احمد رضا هاشمی Ahmad reza Hashemi موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، مرکز تحقیقات شیلاتی آب های دور(چابهار). Iran seyedahmad91@gmail.com Intrinsic vulnerability Demographic Parameters Intergovernmental Panel on Climate Change (IPCC) آسیب‌پذیری ذاتی پارامترهای جمعیتی چارچوب جهانی تغییر اقلیم ##سازمان شیلات ایران، 1396. سالنامه آماری سازمان شیلات ایران 1395ـ1390، معاونت برنامه ریزی و توسعه مدیریت، دفتر برنامه و بودجه. 65 صفحه.##هاشمی، ا.، قربانی، ر.، کیمرام، ف.، حسینی، س.، ع. اسکندری، غ. و هدایتی، ع.، 1393. برخی از خصوصیات زیستی ماهی بنی د ر تالاب شادگان. مجله علمی شیلات ایران. 23 (3): 129-119.##هاشمی، س. ا. و حسینی، ع.، 1398. ارزیابی آسیب پذیری گونه های ماهی عمده صید در آبهای استان سیستان و بلوچستان. مجله بهره برداری و پرورش آبزیان، 8 (2): 82-73. ##هاشمی، ا. و دوستدار، م.، 1399. بررسی وضعیت صید ماهی حلوا سیاه (Parastromateus niger Bloch, 1795) در آبهای جنوب کشور (خلیج فارس و دریای عمان). مجله علمی شیلات ایران. 29 (5): 131-123. 10.22092/ISFJ.2021.12333: DOI ##Allison, E.H., Adger, W.N., Badjeck, M.C., Brown, K., Conway, D., Dulvy, N.K., Halls,##A., Perry, A. and Reynolds, J.D., 2005. Effects of climate change on the sustainability of##capture and enhancement fisheries important to the poor: analysis of the vulnerability##and adaptability of fisher folk living in poverty. London, Fisheries Management Science##Programme MRAG/DFID, Project no. R4778J. Final technical report. 164 p.##Arthington, A., Dulvy, N., Gladstone, W. and Winfield, I., 2016. Fish conservation in freshwater and marine realms: status, threats and management. Aquatic Conservation: Marine and Freshwater Ecosystemsو 26: 838–857. DOI: 10.1002/aqc.2712. ##Cheung, W.W. L., Pitcher, T.J. and Pauly, D., 2005. A fuzzy logic expert system to estimate intrinsic extinction vulnerabilities of marine fishes to fishing. Biological Conservation, 124(1): 97–111. DOI:10.1016/j. biocon.2005.01.017. ##Daw, T., Adger, W.N., Brown, K. and Badjeck, M.C., 2009. Climate change and capture##fisheries: potential impacts, adaptation and mitigation. In K. Cochrane, C. De Young,##D. Soto and T. Bahri (eds). Climate change implications for fisheries and aquaculture:##overview of current scientific knowledge. FAO Fisheries and Aquaculture Technical##Paper. No. 530. Rome, FAO, pp.107-150.##Dulvy, N.K., Sadovy, Y. and Reynolds, J.D., 2003. Extinction vulnerability in marine populations. Fish and Fisheries, 4: 25–64. DOI:https://doi.org/10.1046/j.1467-2979.2003.00105.x.## ##Dulvy, N. K., Ellis, J. R., Goodwin, N. B., Grant, A., Reynolds, J.D. and Jennings, S., 2004. Methods of assessing extinction risk in marine fishes. Fish and Fisheries, 5(3): 255–276. DOI:https://doi.org/10.1111/j.1467-2679.2004.00158.x.##FAO, 2015. Yearbook Fishery Statistics (Capture production). FAO publication. Rome, Italy. 200 p. http://www.fao.org/fishery/statistics/yearbook/en. version 13 February 2015.##Field, C.B., Barros, V.R., Dokken, D.J., ##Mach, K.J., Mastrandrea, M.D., Bilir, T.E.,##Chatterjee, K.L., Ebi, Y.O., Estrada, R.C., ##Genova, B., Girma, E.S., Kissel, A.N., Levy, ##S., MacCracken, P.R., Mastrandrea, M.## and White L.L., (eds.). 2014. Impacts,## Adaptation, and Vulnerability. Part A: Global ##and Sectoral Aspects. Contribution of Working ##Group II to the Fifth Assessment Report of the ##Intergovernmental Panel on Climate Change.## Cambridge University Press, Cambridge, ##United Kingdom and New York, NY, USA, pp.## 1-32.##Foden, W.B., Butchart, S.H., Stuart, S.N., Vie, J.C., Akc akaya, H.R.,Angulo, A. and Donner, S.D., 2013. Identifying the world’s most climate change vulnerable species: A systematic trait-based assessment of all birds, amphibians and corals. PLoS ONE, 8(6): e65427. DOI: 10.1371/journal.pone.0065427.##Froese, R. and Pauly, D., 2017. Fish Base. World Wide Web electronic publication. Available from: http://www.fishbase.org, version 13 February 2017.##Graham, N.A., Chabanet, P., Evans, R.D., Jennings, S., Letourneur, Y., Aaron MacNeil, M. and Wilson, S.K., 2011. Extinction vulnerability of coral reef fishes. Ecology Letters, 14(4): 341–348. DOI:https://doi.org/10.1111/j.1461-0248.2011.01592.x. ##Hare, J.A., Morrison, W.E., Nelson, M.W., Stachura, M.M., Teeters, E.J., Griffis, R.B. and Chute, A.S., 2016. A vulnerability assessment of fish and invertebrates to climate change on the Northeast US continental shelf. PLoS ONE, 11(2), e0146756. DOI: 10.1371/journal.pone.0146756.##Hilborn, R., Branch, T.A., Ernst, B., Magnusson, A., Minte-Vera, C.V., Scheuerell, M.D. and Valero, J.L., 2003. State of the world’s fisheries. Annual review of Environment and Resources, 28(1): 359-399. DOI: 10.1146/annurev.energy.28.050302.105509.##Jennings, S., Pinnegar, J.K., Polunin, N.V.C. and Warr, K.J., 2001. Impacts of trawling disturbance on the trophic structure of benthic marine communities. Marine Ecology Progress in Series, 213: 127–142. DOI: 10.3354/meps213127. ##Johannes, R.E., 1998. The case for data-less marine resource management: examples from tropical near shore fin fisheries. Trends in Ecology & Evolution, 13(6): 243-246. DOI:10.1016/S0169-5347(98)01384-6##Jones, M.C. and Cheung, W.W.L., 2015. Multi-model ensemble projections of climate change effects on global marine biodiversity. ICES Journal of Marine Science, 72(3): 741–752. DOI: https:// DOI:org/10.1093/icesjms/fsu172. ##Jones, M.C. and Cheung, W.W.L., 2017. Using fuzzy logic to determine the vulnerability of marine species to climate change. Global Change Biology, 24(2), e719–e731. DOI:10.1111/gcb.13869. ##Lotfizadeh, L.A., 1965. Fuzzy sets. Information and Control, 8(3): 338–353. ##Matsuda, H., Takenaka, Y., Yahara, T. and Uozumi, Y., 2000. Extinction risk assessment of declining wild populations: the case of the southern bluefin tuna. Researches on Population Ecology, 40: 271– 278. DOI: 10.1007/s101440050002.##Musick, J.A., Burgess, G., Cailliet, G., Camhi, M. and Fordham, S., 2000. Management of sharks and their relatives (Elasmobranchii). Fisheries, 25(3): 9-13. https://doi.org/10.1577/1548-8446(2000)025<0009:MOSATR>2.0.CO;2##Okey, T.A., Agbayani, S. and Alidina, H.M., 2015. Mapping ecological vulnerability to recent climate change in Canada’s Pacific marine ecosystems. Ocean & Coastal Management, 106: 35–48. DOI: 10.1016/j.ocecoaman.2015.01.009. ##Portner, H.O., Karl, D.M., Boyd, P.W., Cheung, W., Lluch-Cota, S.E., Nojiri. and Armstrong, C., 2014. Ocean systems. In C. B. Field, V. R. Barros, D. J. Dokken, K. J. Mach, M. D. Mastrandrea, T. E. Bilir. L. L. White, (Eds.), Climate change 2014: Impacts, adaptation, and vulnerability. Part A: Global and sectoral aspects contribution of working group II to the fifth assessment report of the intergovernmental panel on climate change (pp. 411–484). Cambridge, UK: Cambridge University Press.##Reynolds, J.D., Jennings, S. and Dulvy, N.K., 2001. Life histories of fishes and population responses to exploitation. In: Reynolds, J.D., Mace, G.M., Redford, K.H., Robinson, J.G. (Eds.), Conservation of Exploited Species. Cambridge University Press, Cambridge, pp. 147–169.##Sea Around Us., 2018. fisheries, ecosystems and biodiversity. Sea Us Fish. Ecosyst. Biodivers. http://www. Sea around us. org/. version 13 February 2018.##Zar, J.H., 2010. Biostatistical Analysis (5th edition), Pearson highered. 945 p.##Zeller, D. and Pauly, D., 2015. Reconstructing marine fisheries catch data. Catch reconstruction: concepts, methods and data sources. Online Publication. Sea Around Us (www. seaaroundus. org). University of British Columbia. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ ارزیابی فعالیت آنتی اکسیدانی پپتیدهای هیدورلیز شده از پوسته خرچنگ Portunus segnis Evaluation of antioxidant activity of hydrolyzed peptides from Portunus segnis shell Crab 1 1 خرچنگ‌‌های حقیقی همواره بخشی از صید جنبی را تشکیل می‌‌دهند. با در نظر گرفتن عدم مصرف مستقیم خرچنگ‌‌ها در منطقه، ضایعات پوسته آنها می‌‌تواند به منبع ارزشمند پروتئینی برای استخراج ترکیبات آنتی‌‌اکسیدان مورد بهره‌برداری قرار گیرد. در این مطالعه،  نمونه‌‌های خرچنگ Portunus segnis   به‌‌وسیله تور ترال با چشمه‌‌های 40 میلی‌متری از اعماق 30-20 متر از سواحل غربی استان خوزستان جمع‌آوری شدند. برای هیدرولیز پروتئین‌های پوسته خرچنگ از آنزیم‌های a-chymotrypsin، trypsin، Pepsin، Papain، Neutrase و Alcalase  استفاده شد. فعالیت آنتی‌‌اکسیدان پوسته خرچنگ به روش‌‌های حذف‌‌کردن رادیکال آزاد DPPH، سنجش قدرت کاهندگی آنتی‌‌اکسیدان و سنجش میزان فعالیت مهار ACE پروتئین‌های هیدرولیز شده مورد بررسی قرار گرفت.  بیشترین فعالیت حذف رادیکال دی فنیل‌‌‌‌پیکریل هیدرازیل (DPPH) برای پروتئین‌های هیدرولیز شده با آنزیم‌های کموتریپسین و پاپایین به‌ترتیب به میزان ۶۵/۱۳±۶۷/23 و 8۵/۰۲±۱۳/23 مشاهده گردید. کمترین میزان قدرت‌‌کاهندگی آنزیم‌‌های هیدرولیزکننده برای با آنزیم کموتریپسین 072/0 و بیشترین مقدار برای آنزیم پاپایین به میزان 122/0 محاسبه‌‌گردید. سطح فعالیت مهاری هیدرولیز حاصل از آنزیم‌‌های مختلف ناشی از خرچنگ نشان‌‌داد که بیشترین فعالیت مربوط به آنزیم پاپائین (20/16%) و کمترین آن مربوط به آنزیم آلکالاز (51/12%) بود. با توجه به مشاهدات به‌‌نظر می‌‌رسد که پروتئین‌های پوسته خرچنگ پس از هیدرولیز آنزیمی، فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی، قدرت‌‌کاهندگی و مهار ACE در حد متوسط دارند و احتمالا پس از تحقیقات تکمیلی از پروتئین‌‌های هیدرولیز شده اسکلت خارجی خرچنگ می‌توان به عنوان منبع مناسبی از ترکیبات  آنتی اکسیدان استفاده نمود. 2 True crabs are always part of the catch, especially trawling. Given the lack of direct consumption of crabs in the region, their shell waste can be used as a valuable source of protein to extract antioxidant compounds. In this study, samples of Portunus segnis crabs were collected by trawl nets with apertures of 40 mm from depths of 20 to 30 m  from the west coast of Khuzestan province. The enzymes a-chymotrypsin, Trypsin, Pepsin, Papain, Neutrase and Alcalase were used to hydrolyze crab crust proteins. The antioxidant activity of the crab shell was investigated by removing the free radical activity of DPPH, reducing antioxidant power assay and measuring the ACE inhibitory activity of hydrolyzed proteins. The highest radical removal activity of diphenyl picrylhydrazyl (DPPH) was observed for proteins hydrolyzed with chymotrypsin and papain enzymes at 23.67±13.65 and 23.13 02.85, respectively. The lowest reduction power of hydrolyzing enzymes with chymotrypsin was 0.072 and the highest value for papain was 0.122. The level of inhibitory activity of crab shell hydrolyzates showed that the highest activity was related to Papain enzyme (16.20%) and the lowest was related to Alkalase enzyme (12.51%). According to the observations, it seems that crab shell proteins after enzymatic hydrolysis have moderate antioxidant activity, reducing power and inhibition of ACE, and probably after additional research of hydrolyzed proteins of crab exoskeleton as a suitable source of Antioxidant compounds can be used. 65 77 2020/08/162020/11/132020/12/92021/07/232018/10/72020/08/31 1399/6/10 2021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/1 1400/8/10 زینب عبادی Zeynab Ebadi دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر Iran ebadi92@yahoo.com بابک دوست شناس babak Doustshenas دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر Iran doustshenas@kmsu.ac.ir نسرین سخایی Nasrin Sakhaei دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر Iran nsakhaee@yahoo.com کمال غانمی Kamal Ghanemi دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر Iran kamal.ghanemi@kmsu.ac.ir Crab DPPH Antioxidant peptides Enzyme hydrolysis Pepsin Portunus segnis آنتی اکسیدان هیدرولیز آنزیمی DPPH قدرت کاهندگی ##اسدالهی، م.، سخایی، ن.، دوست شناس، ب.، غانمی، ک. و ارچنگی، ب.، 1398. خاصیت آنتی اکسیدانی صدف دسته چاقویی Solen dactylus با روش های DPPH، قدرت کاهندگی و ظرفیت آنتی اکسیدانی تام. مجله بوم شناسی آبزیان. 9(1):50-57. ##اعتمادی دیلمی، ا.، سواری، ا.، ولی نسب ت. و سخایی، ن.، 1390 . بررسی ترکیب صید خرچنگ‌‌‌‌های گر (Brachyura) . در آب‌‌‌‌های دریای عمان (استان هرمزگان) با تاکید بر گونه‌‌های دارای اهمیت تجاری. زیست شناسی دریا. 12(3) :1-13.##بخشان، ع.، علیزاده دوغیکلایی، ا. و طاهری ع.، 1393. بررسی خواص آنتیاکسیدانی پروتئین آبکافت بدستآمده از ضایعات، در فرآیند فیلهکردن ماهی‌‌آزاد(Salmo salar) . پاتوبیولوژی مقایسه‌‌ای. 11(1):1152-1143.##خفایی زاده، ک.، سخایی، ن.، دوست شناس، ب.، غانمی، ک. و ذوالقرنین، ح.، 1395. ارزیابی فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی پپتید‌‌های تخلیص شده از هیدورلیز روتیفر‌ Brachionus plicatilis. مجله علمی شیلات ایران. 25(2): 69-78. 10.22092/ISFJ.2017.110240 DOI: ##طاهری، ع.، عابدیان کناری، ع م.، معتمدزادگان، ع. و حبیبی رضایی، م.، 1391. بهینه‌‌‌‌سازی فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی پروتئین آبکافت ساردین پهلو طلایی (Sardinella gibossa) با استفاده از روش سطح پاسخ. نشریه پژوهش‌‌های علوم و صنایع غذایی ایران. 8(3) : 270-262. DOI: 10.22067/ifstrj.v8i3.18466 ##عبادی، م.، دوست‌‌شناس، ب.، سخایی، ن. و غانمی، ک.، 1396. بررسی پراکنش و ریخت‌‌شناسی خرچنگ‌‌های Leucosiidae و Xanthidae در آبهای زیر جزر و مدی سواحل استان خوزستان (خلیج فارس). اقیانوس شناسی. 8 (30): 19-28. DOI: 10.29252/joc.8.30.19 ##یعقوب زاده، ز.، کابوسی، ح.، صفری، ر.، پیروی قادیکالیی، ف. و فتاحی، ا.، 1398. بررسی خواص ضد باکتریایی و آنتی اکسیدانی پروتئین هیدرولیز شده پوست ماهی قزل آلای رنگین‌‌کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران. 28(2): 117-129. DOI: ‎ 10.22092/ISFJ.2019.119049## ##Akinmoladun, A.C., Ibukun, E.O., Afor, E., Akinrinlola, B.L., Onibon, T.R., Akinboboye, A.O., Obuotor, E.M. and Farombi, E.O., 2007. Phytochemical constituents and antioxidant properties of extracts from the leaves of Chromolaena odorata. Scientific Research and Essay Journal. 2(5):163-165.##Aluko, R.E., 2012. In Functional foods and nutraceuticals. Springer-Verlag New York. 155. DOI:10.1007/978-1-4614-3480-1.##Balti, R., Bougherra, F., Bougatef, A., Hayet, B.K., Dhulster, P., Guillochon, D. and Nasri, M., 2012. Chymotrypsin from the hepatopancreas of cuttlefish (Sepia officinalis) with high activity in the hydrolysis of long chain peptide substrates: Purification and biochemical characteriza-tion. Food Chemistry, 130(3): 475-484. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2011.07.019.##Beaulieu, L., Thibodeau, J., Bryl, P. and Carbonneau, M.E., 2009. Characterization of enzymatic hydrolyzed snow crab (Chionoecetes opilio) by-product fractions: a source of high-valued biomolecules . Bioresource Technology, 100(3): 3332-3342. https:doi.org/10.1016/j.biortech.2009.01.073. ##Bougatef, A., Hajji, M. and Balti, R., 2009. Antioxidant and free radical-scavenging activities of smooth hound (Mustelus mustelus) muscle protein hydrolysates obtained by gastrointestinal proteases. Food Chemistry, 114(4), 1198-1205. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2008.10.075.##Byun, H.G., Lee, J.K., Park, H.G. Jeon, J.K. and Kim, S.K., 2009. Antioxidant peptides isolated from the marine rotifer, Brachionus rotundiformis. Process Biochemistry, 44: 842-846. DOI: 10.1016/j.procbio.2009.04.003.## Cameron , J.N. and Wood, C. M. 1985. Apparent H+ Excretion and CO2 Dynamics Accompanying Carapace Mineralization in the Blue Crab (Callinectes Sapidus) Following Moulting. Journal of Experimental Biology, 114 (1): 181–196. https://doi.org/10.1242/jeb.114.1.181. ## Chalamaiah, M., Dinesh Kumar, B., Hemalatha, R. and Jyothirmayi, T., 2012. Fish protein hydrolysates: proximate composition, amino acid composition, antioxidant activities and applications: a review. Food Chemistry, 15: 135(4):3020-38. DOI: 10.1016/j.foodchem.##Dong, S., Zeng, M., Wang, D., Liu, Z., Zhao, Y. and Yang, H., 2008. Antioxidant and biochemical properties of protein hydrolysates prepared from Silver carp (Hypophthalmichthys molitrix). Food Chemistry, 107: 4, 1485–1493. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2007.10.011.##Harnedy, P.A. and FitzGerald, R.J., 2012. Bioactive peptides from marine processing waste and shellfish: A review. Journal of Functional Foods, 4(1): 6-24. https://doi.org/10.1016/j.jff.2011.09.001##He, R., Girgih, A.T., Malomo, S.A., Ju, X. and Aluko, R.E., 2013. Antioxidant activities of enzymatic rapeseed proteinhydrolysates and the membrane ultrafiltration fractions. Journal of Functional Foods, 5: 219–227. DOI: 10.1016/j.jff.2012.10.008.##Hou, W.C., Chen, H.J. and Lin, Y.H., 2003. Antioxidant peptides with angiotensin converting enzyme inhibitory activities and applications for angiotensin converting enzyme purification. Journal of agricultural and Food Chemistry, 51(6): 1706-1709. DOI: 10.1021/jf0260242.##Jiang, W., Hu, S., Li, S. and Liu, Y., 2017. Biochemical and antioxidant properties of peptidic fraction generated from crab (Portunus trituberculatus) shells by enzymatic hydrolysis. The Food Science and Biotechnology, 52(11): 2479-2488. https://doi.org/10.1111/ijfs.13533.##Jianga, W., Liua, Y., Yangb, X. and Shiwei, H., 2018. Antioxidant and antibacterial activities of modified crab shell bioactive peptides by Maillard reaction. International Journal of Food Properties, 21(1): 2730–2743. https://doi.org/10.1080/10942912.2018.1561463.##Koracevic, D., Koracevic, G., Djordjevic, V., Andrejevic, S. and Cosic, V., 2001. Method for the measurement of antioxidant activity in human fluids. Journal of Clinical Pathology, 54:356–361. DOI: 10.1136/jcp.54.5.356.##Korhonen, H. and Pihlanto, A., 2006. Bioactive peptides: production and functionality. International Dairy Journal,16 (9): 945-960. https://doi.org/10.1016/j.idairyj.2005.10.012. ##Lage-Yusty, M.A., Vilasoa-Martínez, M., Álvarez-Pérez, S. and López-Hernández, J., 2011. Chemical composition of snow crab shells (Chionoecetes opilio). CyTA-Journal of Food, 9(4): 265-270. https://doi.org/10.1080/19476337.2011.596285.##Li, Y., Bo, J., Tao, Z., Mu, W. and Jian, L., 2008. Antioxidant and free radical-scavenging activities of chickpea protein hydrolysate (CPH). Food Chemistry, 106: 444–450. DOI: 10.1016/j.foodchem.2007.04.067.##Mendis, E., Rajapakse, N. and Kim, S.K., 2005. Antioxidant properties of a radical-scavenging peptide purified from enzymatically prepared fish skin gelatin hydrolysate. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 53(3): 581-587. DOI: 10.1021/jf048877v.##Naderloo, R., Ebrahimnejad, S., Dustali, A. and Mahdian, M., 2016. Five crabs of the families Xanthidae and Pilumnidae (Crustacea: Decapoda: Brachyura) from Abu-Musa Island, Iran; new records for the Persian Gulf. Marine Biodiversity Records, 9(1): 19. DOI 10.1186/s41200-016-0019.##Najafian, N. and Babji, A.S., 2014. Production of bioactive peptides using enzymatic hydrolysis and identification antioxidative peptides from patin (Pangasius sutchi) sarcoplasmic protein hydolysate. Journal of Functional Foods, 9: 280-289. ## Oyaizu, M., 1986. Studies on Products of Browning Reaction Antioxidative activities of browning reaction products prepared from glucosamine. The Japanese Journal of Nutrition and Dietetics, 44: 307-315. https://doi.org/10.5264/eiyogakuzashi.44.307. ##Pathaka, N., Shakilaa, R.J., Jeyasekaranb, G., Padmavathy, P., Neethiselvan, N. and Arisekar, U., 2021. Variation in the Nutritional Composition of Soft and Hard Blue Swimming Crabs (Portunus pelagicus) Having Good Export Potential. Journal of Aquatic Food Product Technology, 30(6): 706-719. https://doi.org/10.1080/10498850.2021.1936324.##Qian, Z.J., Jung, W.K., Byun, H.G. and Kim, S.K., 2008. Protective effect of an antioxidative peptide purified from gastrointestinal digests of oyster, Crassostrea gigas against free radical Induced DNA damage. Bioresource Technology, 99(9): 3365-3371. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2007.08.018.##Sowmya, R.T., Ravikumar, M., Vivek, R., Rathinaraj, K. and Sachindra, N.M., 2014. Optimization of enzymatic hydrolysis of shrimp waste for recovery of antioxidant activity rich protein isolate. The Journal of Food Science and Technology, 51(11): 3199–3207. DOI: 10.1007/s13197-012-0815-8.##Tao, X.M., Wang, Z.N., Yu, S.H. and Zhang, J.F., 2010. Optimization of enzymatic hydrolysis of swimming crab waste for preparing protein hydrolysate. Food Science, 31(16): 139-144. DOI: 10.7506/spkx1002-6630-201016029.##Wu, H.C., Chen, H.M. and Shiau, C.Y., 2003. Free amino acids and peptides as related to antioxidant properties in protein hydrolysates of mackerel (Scomber austriasicus). Food Research International, 36(9): 949-957. https://doi.org/10.1016/S0963-9969(03)00104-2.##Yoon, N.Y., Shim, K.B., Lim, C.W. and Kim, S.B., 2013. Antioxidant and angiotensin I converting enzyme inhibitory activities of red snow crab Chionoecetes japonicas shell hydrolysate by enzymatic hydrolysis. Fisheries and Aquatic Sciences, 16(4): 237-242. DOI: 10.5657/FAS.2013.0237. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ مقایسه تأثیر هیپوکلریت سدیم و گل رس در رفع چسبندگی تخم لقاح یافته تاسماهی سیبری (Acipenser baerii Brandt, 1869) Comparison of the effect of sodium hypochlorite and clay on the de-adhesion of fertilized egg of Siberian sturgeon (Acipenser baerii Brandt, 1869) 1 1 در مطالعه حاضر، از هیپوکلریت سدیم با غلظت 01/0% به‌‌مدت 5 دقیقه به ‌‌عنوان تکنیکی جدید برای رفع چسبندگی تخم لقاح یافته تاسماهی سیبری (Acipenser baerii) استفاده و کارایی آن با محلول گل رس مقایسه گردید. کم‌‌ترین درصد تخم‌‌های مرده و قارچ‌زده (10/2±78/37 درصد) و بیش‌‌ترین درصد لقاح (75/1±35/69 درصد) و تبدیل تخم به لارو (10/2±21/62 درصد) در تخم‌‌های رفع چسبندگی شده با هیپوکلریت سدیم مشاهده شد (05/0>p). همچنین بیش‌‌ترین میزان وزن (23/0±03/13 میلی‌‌گرم) و طول (17/0±82/11 میلی‌‌متر) لارو به‌‌دست آمده در تیمار رفع چسبندگی شده با هیپوکلریت سدیم دیده شد که با تیمار گل رس اختلاف معنی‌‌داری داشت (05/0>p). مدت زمان انکوباسیون نیز بین تیمارها اختلاف معنی‌‌داری داشت (05/0>p)، به‌طوری‌‌که تیمار رفع چسبندگی شده با گل رس دارای بیشترین مدت زمان انکوباسیون (62/21±75/2093 ساعت-درجه) بود. نتایج این مطالعه نشان داد استفاده از هیپوکلریت سدیم با غلظت 01/0% روشی آسان، ارزان و سریع برای رفع چسبندگی تخم تاسماهی سیبری می‌‌باشد. 2 In the present study, sodium hypochlorite with a concentration 0.01% for 5 minutes was used as a new technique to de-adhesion of fertilized egg of Siberian sturgeon (Acipenser baerii) and its efficiency was compared with clay solution. The lowest amount of dead and fungal eggs (37.78±2.10%) and the highest fertilization (69.35±1.75%) and hatching rates (62.21±2.10%) were observed in eggs treated with sodium hypochlorite (p<0.05). Moreover, the highest weight (13.03±0.23 mg) and length (11.82±0.17 mm) of larvae were found in the de-adhesion treatment with sodium hypochlorite which had a significant difference with clay treatment (p<0.05). There was a significant difference in the incubation time between treatments (p<0.05), so that the de-adhesion treatment with clay had the highest incubation time (2093.75±21.62 degree-hour). The results of this study demonstrated that using sodium hypochlorite with a concentration of 0.01% is a simple, cheap and fast method for egg de-adhesion of Siberian sturgeon.   79 93 2020/08/162020/11/132020/12/92021/07/232018/10/72020/08/312021/04/27 1400/2/7 2021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/1 1400/8/10 بهرام فلاحتکار Bahram Falahatkar دانشگاه گیلان Iran falahatkar@guilan.ac.ir حدیثه علیزاده Hadiseh Alizadeh دانشگاه ساری Iran hadi3_alizade@yahoo.com حامد عبداله پور Hamed Abdollahpour دانشگاه گیلان Iran abdollahpour.hamed@yahoo.com نغمه جعفری Naghmeh Jafari دانشگاه گیلان Iran naghmeh_jafari7@yahoo.com مهدی رحمتی Mehdi Rahmati مرکز بازسازی و حفاظت از ذخایر ژنتیکی ماهیان دریایی شادروان دکتر یوسف‌پور، سیاهکل Iran mehdi_rahmaty@yahoo.com Acipenser baerii Artificial reproduction Egg de-adhesion Sodium hypochlorite Acipenser baerii تکثیر مصنوعی رفع چسبندگی تخم هیپوکلریت سدیم ##علیزاده، ح.، اورجی، ح.، فلاحتکار، ب. و عفت پناه، ا.، 1397. تأثیر سطوح مختلف اسید مالیک بر رشد و ترکیب لاشه بچه تاسماهی سیبری (Acipenser baerii, Brandt, 1869). مجله علمی شیلات ایران، 27(6): 12-1. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110014.##فلاحتکار، ب.، 1394. تغذیه و جیره نویسی آبزیان. موسسه آموزش عالی علمی کاربردی جهاد کشاورزی، تهران. 334 صفحه.##فلاحتکار، ب.، راهداری، ع.، محمدی پرشکوه، ح. و درویشی، ص.، 1397. مقایسه تأثیر هیپوکلریت سدیم و روش‌‌های متداول در رفع چسبندگی تخم لقاح یافته ماهی ازون برونAcipenser stellatus Pallas, 1771. نشریه پژوهش‌‌های ماهی شناسی کاربردی، 6(1): 130-123.##کلوانی نیتلی، ب.، کلباسی، م.، مجازی امیری، ب. و نوری، ا.، 1391. مروری بر روش‌‌های نوین در رفع چسبندگی تخم‌‌های لقاح یافته ماهیان. مجله بوم شناسی آبزیان، 2(2): 18-1.##نجفی پورمقدم، ا.، فلاحتکار، ب. و کلباسی، م.، 1390. اثر لسیتین جیره بر شاخص‌‌های رشد و ویژگی‌‌های خونی بچه تاسماهی سیبری (Acipenser baerii Brandt 1869). مجله علمی شیلات ایران، 20(3): 154-143. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110014.##Al Hazzaa, R. and Hussein, A., 2003. Stickiness elimination of Himri Barbel (Barbus lutes, Heckel) eggs. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 3: 47-50.##Bouchard, H.J. and Aloisi, D.B., 2002. Investigations in concurrent disinfection and de-adhesion of lake sturgeon eggs. North American Journal of Aquaculture, 64: 212-216. DOI: 10.1577/1548-8454(2002)064<0212: IICDAD>2.0.CO;2.##Bronzi, P., Chebanov, M., Michaels, J.T. and Wei, Q., 2019. Sturgeon meat and caviar production. Journal of Applied Ichthyology, 35: 257-266. DOI: 10.1111/jaj.13870.##Carmona, R., Domezain, A., Garcia-Gallego, M., Antonio Hernando, J., Rodriguez, F. and Ruiz-Rejon, M., 2009. Biology, Conservation and Sustainable Development of Sturgeons. Springer, Netherlands, 476 P.##Carral, J.M., Celada, J.D., Saez-Royuela, M., Rodriguez, R., Aguilera, A. and Melendre, P., 2006. Effects of four egg desticking procedures on hatching rate and further survival and growth of larvae in the tench (Tinca tinca L.). Aquaculture Research, 37: 632-636. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2006.014730x.## ##Chebanov, M.S., Galich, E.V. and Chmyr, Y., 2004. Sturgeon Breeding and Rearing Handbook. FGNU “Rosinformagrotekh”, Moscow, Russia, 136 P. (In Russian).##Chebanov, M.S. and Galich, E.V., 2011. Sturgeon Hatchery Manual. FAO Fisheries and Aquaculture Technical Paper 558, FAO, Ankara, Turkey. Translated by Falahatkar, B. (2015). Sarava Publication, Tehran, 331 P. (In Persian) ##Cherr, G.N. and Clark, W.H., 1982. Fine structure of the envelope and micropyles in the eggs of the white sturgeon Acipenser transmontanus Richardson. Development, Growth and Differentiation, 24: 341-352. DOI: 10.1111/j.1440-169X.1982.00341.x. ##Cherr, G.N. and Clark, W.H., 1984. Jelly release in the eggs of the white sturgeon, Acipenser transmontanus: an enzymatically mediated event. Journal of Experimental Zoology, 230: 145-149. DOI: 10.1002/jez.1402300120.##Cherr, G.N. and Clark, W.H., 1985. An egg envelope component induces the acrosome reaction in sturgeon sperm. Journal of Experimental Zoology, 234: 75-85. DOI: 10.1002/jez.1402340110.##Demska-Zakęś, K., Zakęś, Z. and Roszuk, J., 2005. The use of tannic acid to remove adhesiveness from pikeperch, Sander lucioperca, eggs. Aquaculture Research, 36: 1458-1464. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2005.01370.x.##Dettlaff, T.A., Ginsburg, A.S. and Schmalhausen, O.I., 1993. Sturgeon Fishes Developmental Biology and Aquaculture, Springer-Verlag, Berlin, Heidelberg, Germany, 300 P.##Doroshov, S.I., Lutes, P.B., Swallow, R.L., Beer, K.E., McGuire, A.B. and Cochran, M.D., 1983. Artificial propagation of the white sturgeon (Acipenser transmontanus) Richardson. Aquaculture, 32: 93-104. DOI: 10.1016/0044-8486(83)90272-7.##Falahatkar, B., Tolouei Gilani, M.H., Falahatkar, S. and Abbasalizadeh, A., 2011. Laparoscopy, a minimally-invasive technique for sex identification in cultured great sturgeon Huso huso. Aquaculture, 321: 273-279. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2.11.08.030.##Falahatkar, B., 2018. Nutritional requirements of the Siberian sturgeon: An updated synthesis. In: The Siberian Sturgeon (Acipenser baerii, Brandt, 1869). Williot, P., Nonnotte, G., Vizziano-Cantonnet, D., Chebanov, M. (Eds.). Volume 1, Biology. Springer, Cham, 207-228.##Gela, D., Linhart, O., Flajšhans, M. and Rodina, M., 2003. Egg incubation time and hatching success in tench Tinca tinca (L.) related to the procedure of egg stickiness elimination. Journal of Applied Ichthyology, 19: 132-133. DOI: 10.1046/j.1439-0426.2003.00465.x. ##Horvath, L., 1980. Use of proteolytic enzyme to improve incubation of egg of the European catfish. The Progressive Fish Culturist, 42: 110-111. DOI: 10.1577/1548-8659(1980)42[110:UOAPET]2.0.CO;2.##Jakobsen, T., 2009. Fish reproductive biology. John Wiley & Sons, Chichester, United Kingdom, 448 p. ##Kowtal, G.V., Clark, W.H. and Cherr, G.N., 1986. Elimination of adhesiveness in eggs from the white sturgeon, Acipenser transmontanus: chemical treatment of fertilized eggs. Aquaculture, 65:139-143. DOI: 10.1016/0044-8486(86)90068-2.##Kucharczyk, D., Kestemont, P. and Mamcarz, A., 2007. Artificial Reproduction of Pikeperch. Mercurius, Olsztyn, 80 P.##Kujawa, R., Kucharczyk, D. and Mamcarz, A., 2010. The effect of tannin concentration and egg unsticking time on the hatching success of tench Tinca tinca (L.) larvae. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 20: 339-343. DOI: 10.1007/s11160-009-9136-z. ##Levine, R.L., Garland, D., Oliver, C.N., Amici, A., Climent, I., Lenz, A.G., Ahn, B.W., Shaltiel, S., and Stadtman, E.R., 1990. Determination of carbonyl content in oxidatively modified proteins. Methods in Enzymology, 186: 464-478. DOI: 10.1016/0076-6879(90)86141-H.##Linhart, O. and Kudo, S., 1997. Surface ultrastructure of paddlefish eggs before and after fertilization. Journal of Fish Biology, 51: 573-582. DOI: 10.1111/j.1095-8649. 1997.tb01513.x.##Linhart, O., Gela, D., Flajšhans, M., Duda, P., Rodina, M. and Novák, V., 2000. Alcalase enzyme treatment for elimination of egg stickiness in tench, Tinca tinca L. Aquaculture, 191: 303-308. DOI: 10.1016/S0044-8486(00)00433-6.##Linhart, O., Rodina, M., Gela, D., Kocour, M. and Rodriguez, M., 2003. Improvement of common carp artificial reproduction using enzyme for elimination of egg stickiness. Aquatic Living Resources, 16: 450-456. DOI: 10.1016/S0990-7440(03)00083-4.##Linhart, O., Gela, D., Rodina, D. and Kocour, M., 2004. Optimization of artificial propagation in European catfish, Silurus glanis L. Aquaculture, 235:619-632. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2003.11.031.##Markov, K.P., 1978. Adhesiveness of egg membranes in sturgeons (family Acipenseridae). Journal of Ichthyology, 18: 437-445.##Mizuno, S., Sasaki, Y., Omoto, N. and Imada, K., 2004. Elimination of adhesiveness in the eggs of shishamo smelt Spirinchus lanceolatus using kaolin treatment to achieve high hatching rate in an environment with a high iron concentration. Aquaculture, 242: 713-726. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2004.09.019.##Mohler, J.W., 2003. Culture Manual for Atlantic Sturgeon: Acipenser oxyrinchus oxyrinchus. US Fish & Wildlife Service Publication, Region 5. Hadley, MA, 66 P.##Monaco, G. and Doroshov, S.I., 1983. Mechanical de-adhesion and incubation of white sturgeon eggs (Acipenser transmontanus Richardson) in jar incubators. Aquaculture, 36: 117-123. DOI: 10.1016/0044-8486(83)90079-0.##Pourasadi, M., Falahatkar, B. and Azari Takami, G., 2009. Minimally invasive surgical technique for egg collection from Persian sturgeon, Acipenser persicus. Aquaculture International, 17: 317-321. DOI: 10.1007/s10499-008-9203-9##Proteau, J.P., Schlumberger, O. and Albiges, C., 1994. Nouvelle technique de decollage des oeufs du silure glane Silurus glanis. In: Legender, M., Proteau, J.P. (Eds). International Workshop on the Biological Bases for Aquaculture of Siluriformes. CEMAGREF Publications, Montpellier, France, 48 P.##Pšenička, M., 2016. A novel method for rapid elimination of sturgeon egg stickiness using sodium hypochlorite. Aquaculture, 453: 73-76. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2015.11.039.##Pšenička, M., 2018. Rapid de-adhesion of northern pike Esox lucius eggs using sodium hypochlorite. Fish Physiology and Biochemistry, 44: 1535-1539. DOI: 10.10.1007/s10695-018-0544-7.##Pšenička, M. and Franěk, R., 2020. Brief communication: rapid elimination of egg stickiness using sodium hypochlorite in wels catfish Silurus glanis. Fish Physiology and Biochemistry, 47: 681-685. DOI: 10.1007/s10695-020-00843-3.##Reuter, G., Schauer, R., Szeiki, C., Kamerling, J.P. and Vliegenthart, J.F., 1989. A detailed study of the periodate oxidation of sialic acids in glycoproteins. Glycoconjugate Journal, 6: 35-44. DOI: 10.1007/BF01047888.##Riehl, R. and Patzner, R.A., 1998. The modes of egg attachment in teleost fishes. Italian Journal of Zoology, 65: 415-420. DOI: 10.1080/12250009809386857.##Rinchard, J., Dazbrowski, K., Van Tassell, J.J. and Stein, R.A., 2005. Optimization of fertilization success in Sander vitreus is influenced by the sperm: egg ratio and ova storage. Journal of Fish Biology, 67: 1157–1161. DOI: 10.1111/j.0022-1112.2005.00800.x.##Schoonbee, H.J. and Brandt, F., 1982. Observations on some techniques employed for the removal of egg adhesiveness of the common carp, Cyprinus carpio, during induced spawning. Water SA, 8: 145-148.##Siddique, M.A.M., Pšenička, M., Cosson, J., Dzyuba, B., Rodina, M., Golpour, A. and Linhart, O., 2014. Egg stickiness in artificial reproduction of sturgeon: an overview. Reviews in Aquaculture, 6: 1-12. DOI: 10.111/RAQ.12070.##Van Eenennaam, J.P., Bruch, R. and Kroll, K., 2001. Sturgeon sexing, staging maturity and spawning induction workshop. Abstract of the 4th International Symposium on Sturgeon. Oshkosh, WI, 50 P.##Van Eenennaam, J.P., Fiske, A.J. and Leal, M.J., 2020. Mechanical shock during egg de-adhesion and post-ovulatory ageing contribute to spontaneous autopolyploidy in white sturgeon culture (Acipenser transmontanus). Aquaculture, 515: 734530. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2019. 734530.##Verreth, J. and Meyling, A.G., 1989. The use of an industrial enzyme, Maxatase, to eliminate the adhesiveness of Clarias gariepinus (Burchell) eggs. In: De Pauw, N. (ed.). Aquaculture: A Biotechnology in Progress. European Aquaculture Society, Bredene, Belgium, Volume 1, 579 P.##Vorob’eva, E.I. and Markov, K.P., 1999. Specific ultra-structural features of eggs of Acipenseridae in relation to reproductive biology and phylogeny. Journal of Ichthyology, 39: 157-169.##Williot, P., Arlati, G., Chebanov, M., Gulyas,T., Kasimov, R., Kirschbaum, F., Patriche, N., Pavlovskaya, L.P., Poliakova, L. and Pourkazemi, M., 2002. Status and management of Eurasian sturgeon: An overview. International Reviews of Hydrobiology, 87: 483-506. DOI: 10.1002/1522-2632.##Woynarovich, E. and Woynarovich, A., 1980. Modified technology for elimination of stickiness of common carp Cyprinus carpio eggs. Aquacultura Hungarica (Szarvas), 2: 19-21.##Żarski, D., Krejszeff, S., Kucharczyk, D., Palińska-Żarska, K., Targońska, K. and Kupren, K., 2013. The application of tannic acid to the elimination of egg stickiness at varied moments of the egg swelling process in pikeperch, Sander lucioperca (L.). Aquaculture Research, 46: 324-334. DOI: 10.1111/are.12183. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ مطالعه اثر تروگزروتین خوراکی بر مقاومت در برابر انگل ایکتیوفتیریوس مولتی‌‌فیلیس (Ichthyophthirius multifilis) در ماهی‌‌قرمز (Carassius auratus) Study of the effect of oral troxerutin on resistance against Ichthyophthirius multifilis in goldfish (Carassius auratus) 1 1 تروگزروتین با فرمول شیمیایی C33H42O19 که به عنوان ویتامین P4 شناخته می‌‌شود، یک مشتق تری‌‌هیدروکسی اتیله شده از بیوفلاونوئید طبیعی روتین (Rutin) است. اثرات مثبت تروگزروتین در بهبود عملکرد رشد، شاخص‌‌های فیزیولوژیک و ایمنی در مطالعات گذشته مشخص شده است. این مطالعه نیز به منظور ارزیابی اثر تروگزروتین بر مقاومت در برابر انگل خارجی Ichthyophthirius multifilis در ماهی قرمز انجام گرفت. بدین منظور، ماهی‌‌ها با میانگین وزن اولیه‌‌ 08/0±74/2 گرم در 8 تانک شیشه‌‌ای و چهار گروه آزمایشی شامل یک گروه کنترل و سه گروه تیمار توزیع شدند. در دوره آزمایشی، ماهی‌‌ها با جیره‌‌های حاوی 0، 1/0، 3/0 و 5/0گرم افزودنی تروگزروتین به ازاء هر کیلوگرم جیره، به مدت 80 روز تغذیه شدند. در پایان دوره، ماهی‌‌ها در معرض تعداد 4000 ترونت ایک به ازای هر ماهی قرار گرفتند. نتایج نشان داد که علائم مختلف، از جمله پرخونی و زخم باله‌‌ها، در گروه شاهد در مقایسه با گروه‌‌های تیمار برجسته است. تعداد کل تروفونت‌‌های انگل نیز در ماهیان تیمار شده با مقادیر 3/0 و 5/0 گرم در کیلوگرم تروگزروتین در مقایسه با ماهی‌‌های گروه شاهد به طور معنی‌‌داری کاهش یافت (05/0>p).  نتایج مطالعه حاضر نشان‌‌دهنده تأثیر مثبت تروگزروتین خوراکی بر مقاومت در برابر انگل خارجی I.  multifiliis در ماهی قرمز است. 2 Troxerutin (C33H42O19), known as vitamin P4, is a tri-hydroxyethylated derivative of natural bioflavonoid rutin. In the previous studies, the beneficial effects of troxerutin in enhancing the growth performance, physiological and immunological indices were proved. This study was designed to evaluate the effect of troxerutin on resistance against the exoparasite Ichthyophthirius multifilis in goldfish. Fish with mean weight 2.74±0.08 g were distributed in eight glass tanks and four experimental groups, including one control group and three treatment groups. During the feeding trail, fish were fed on diets supplemented with different levels of 0, 0.1, 0.3 and 0.5 g kg-1 troxerutin for 80 days. At the end of the trial, fish were exposed to theronts stage of I. multifilis at 4,000 theronts per fish. Results showed that different signs, including hyperemia and fin erosions, were prominent in the control group in comparison with the treated fish. Total numbers of parasite trophonts were also significantly decreased in the fish treated with 0.3 and 0.5 g kg-1 troxerutin compared to the control fish. These data indicated a positive effect of dietary troxerutin on disease resistance against exoparasite Ichthyophthirius multifilis in goldfish. 95 105 2020/08/162020/11/132020/12/92021/07/232018/10/72020/08/312021/04/272021/04/24 1400/2/4 2021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/1 1400/8/10 شلاله موسوی Shalaleh Mousavi گروه بهداشت مواد غذایی و آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران. Iran shalaleh.mousavi@tabrizu.ac.ir نجمه شیخ زاده Najmeh Sheikhzadeh گروه بهداشت مواد غذایی و آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران. Iran ns76032@gmail.com امین مرندی Amin Marandi گروه بهداشت و بیماریهای آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران. Iran amin.marandi@ut.ac.ir‬ Troxerutin Goldfish Parasite Ichthyophthirius multifilis تروگزروتین ماهی قرمز انگل Ichthyophthirius multifilis ##پورغلام، ر.، شریف‌‌روحانی، م.، صفری، ر.، سعیدی، ع.، بینایی، م.، نجفیان، ر.، بانکه‌‌ساز، ز.، تقوی، م.، سپهداری، ا.، 1392. اثر عصاره سرخار گل (Echinacea purpurea) بر برخی شاخص‌‌های ایمنی و بازماندگی قزل‌‌آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) در برابر استرپتوکوک اینیایی (Streptococcus iniae). مجله علمی شیلات ایران، 22 (3): 1-12. DOI: 10.22092/isfj.2017.110128 ##سلطانی، م.، 1387. ایمنی شناسی ماهیان و سخت‌‌پوستان. موسسه انتشارات و چاپ دانشگاه تهران، ایران. 264 ص.##شیخ زاده، ن.، موسوی، ش. و مرندی، ا.، 1400. اثرات تروگزروتین بر بیان mRNA ژن های کد کننده لیزوزیم و فاکتور نکروز دهنده تومور آلفا و بافت شناسی پوست ماهی‌قرمز .(Carassius auratus) نشریه توسعه آبزی‌‌پروری (در دست انتشار).##عادل، م.، پورغلام، ر.، ذریه زهرا، س.ج.، قیاسی، م.، 1394. تاثیر سطوح مختلف عصاره نعناع فلفلی بر برخی شاخص‌‌های خونی، بیوشیمیایی و ایمنی ماهی قزل‌‌آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران، 24 (1): 37-47. DOI: 10.22092/ISFJ.2014.103049 ##لطفی، ک.، حسینی شکرابی، س.پ.، شمسایی مهرجان، م.، 1399. اثر افزودنی پودر فلفل پاپریکا (Capsicum annum) بر عملکرد رشد و برخی فاکتورهای ایمنی ماهی زبرا (Danio rerio). مجله علمی شیلات ایران، 29 (5): 67-78. (DOI): 10.22092/ISFJ.2021.123163##Alishahi, M. and Buchmann, K., 2006. Temperature-dependent protection against Ichthyophthirius multifliis following immunisation of rainbow trout using live theronts. Diseases of Aquatic Organisms, 72: 269-273. DOI: 10.3354/dao072269.## ##Ardó, L., Yin, G., Xu, P., Váradi, L., Szigeti, G., Jeney, Z. and Jeney, G., 2008. Chinese herbs (Astragalus membranaceus and Lonicera japonica) and boron enhance the non-specific immune response of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) and resistance against Aeromonas hydrophila. Aquaculture, 275(1-4): 26-33. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2007.12.022.##Bai, S.C. and Gatlin, D.M., 1992. Dietary rutin has limited synergistic effects on vitamin C nutrition of fingerling channel catfish (Ictalurus punctatus). Fish Physiology and Biochemistry, 10(3): 183-188. DOI: 10.1007/BF00004512.##Buchmann, K., Sigh, J., Nielsen, C.V. and Dalgaard, M., 2001. Host responses against the fish parasitizing ciliate Ichthyophthirius multifiliis. Veterinary Parasitology, 100(1-2): 105-116. DOI: 10.1016/s0304-4017(01)00487-3.##Ekanem, A.P. and Brisibe, E.A., 2010. Effects of ethanol extract of Artemisia annua L. against monogenean parasites of Heterobranchus longifilis. Parasitology Research, 106(5): 1135-1139. DOI:10.1007/s00436-010-1787-0.##Fan, S.H., Zhang, Z.F., Zheng, Y.L., Lu, J., Wu, D.M., Shan, Q., Hu, B. and Wang, Y.Y., 2009. Troxerutin protects the mouse kidney from d-galactose-caused injury through anti-inflammation and anti-oxidation. International Immunopharmacology, 9(1): 91-96. DOI: 10.1016/j.intimp.2008.10.008.##Formica, J.V. and Regelson, W., 1995. Review of the biology of quercetin and related bioflavonoids. Food and Chemical Toxicology, 33(12): 1061-1080. DOI: 10.1016/0278-6915(95)00077-1.##Gibson, G. and Rastall, R., 2005. Gastrointestinal infections and the protective role of probiotics and prebiotics. Food Science and Technology Bulletin, 1: 1-17. DOI: 10.1616/1476-2137.3664.##Gui, Y., Li, A., Chen, F., Zhou, H., Tang, Y., Chen, L., Chen, S. and Duan, S., 2015. Involvement of AMPK/SIRT1 pathway in anti-allodynic effect of troxerutin in CCI-induced neuropathic pain. European Journal of Pharmacology, 769: 234-241. DOI: 10.1016/j.ejphar.2015.11.023.##Harikrishnan, R., Balasundaram, C. and Heo, M.S., 2011. Impact of plant products on innate and adaptive immune system of cultured finfish and shellfish. Aquaculture, 317(1-4): 1-15. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2011.03.039.##Iqbal, Z.A.F.A.R. and Hussain, U.Z.M.A., 2013. Parasitic infection of an ornamental fish, Shubunkin, Carassius auratus L. imported to Pakistan. Biologia (Pakistan), 59(2): 281-286.##Iwama, G. and Nakanishi, T., 1996. The fish immune system: organism, pathogen, and environment. Fish physiology, Academic Press, USA. 395 P. ##Jaafar, R.M., Skov, J., Kania, P.W. and Buchmann, K., 2011. Dose dependent effects of dietary immunostimulants on rainbow trout immune parameters and susceptibility to the parasite Ichthyophthirius multifiliis. Journal of Aquaculture Research and Development, 3: S3-001. DOI: 10.4172/2155-9546.S3-001.##Ji, J., Lu, C., Kang, Y., Wang, G.X. and Chen, P., 2012. Screening of 42 medicinal plants for in vivo anthelmintic activity against Dactylogyrus intermedius (Monogenea) in goldfish (Carassius auratus). Parasitology Research, 111(1): 97-104. DOI: 10.1007/s00436-011-2805-6.##Jørgensen, L.V.G., Korbut, R., Jeberg, S., Kania, P.W. and Buchmann, K., 2018. Association between adaptive immunity and neutrophil dynamics in zebrafish (Danio rerio) infected by a parasitic ciliate. PLOS ONE, 13(9): 203-297. DOI: 10.1371/journal.pone.0203297.##Kar, B., Mohanty, J., Hemaprasanth, K.P. and Sahoo, P.K., 2015. The immune response in rohu, Labeo rohita (Actinopterygii: Cyprinidae) to Argulus siamensis (Branchiura: Argulidae) infection: kinetics of immune gene expression and innate immune response. Aquaculture Research, 46(6): 1292-1308. DOI: 10.1111/are.12279.##Liang, J.H., Fu, Y.W., Zhang, Q.Z., Xu, D.H., Wang, B. and Lin, D.J., 2015. Identification and effect of two flavonoids from root bark of Morus alba against Ichthyophthirius multifiliis in grass carp. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 63(5): 1452-1459. DOI: 10.1021/jf505544e.##Ling, F., Wang, J.G., Liu, Q.F., Li, M., Ye, L.T. and Gong, X.N., 2010. Prevention of Ichthyophthirius multifiliis infestation in goldfish (Carassius auratus) by potassium ferrate (VI) treatment. Veterinary Parasitology, 168(3-4): 212-216. DOI: 10.1016/j.vetpar.2009.11.009.##Mousavi, H.E., Mood, S., Omrani, B., Mokhayer, B., Ahmadi, M., Soltani, M., Mirzargar, S., Masoumian, M. and Pazooki, J., 2009. Gill ectoparasites of goldfish (Carassius auratus, pearl scale variety) imported into Iran. Bull Eur Assoc Fish Pathol, 29(5): 175-180.##Moyses, C.R.S., Spadacci-Morena, D.D., Xavier, J.G., Antonucci, A.M. and Lallo, M.A., 2015. Ectocommensal and ectoparasites in goldfish Carassius auratus (Linnaeus, 1758) in farmed in the State of São Paulo. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, 24(3): 283-289. DOI: 10.1590/S1984-29612015054.##Nazeri, S., Farhangi, M. and Modarres, S., 2017. The effect of different dietary inclusion levels of rutin (a flavonoid) on some liver enzyme activities and oxidative stress indices in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum) exposed to Oxytetracycline. Aquaculture Research, 48(8): 4356-4362. DOI: 10.1111/are.13257.##Parida, S., Mohapatra, A., Kar, B., Mohanty, J. and Sahoo, P.K., 2018. Transcriptional analysis of immune-relevant genes in the mucus of Labeo rohita, experimentally infected with Argulus siamensis. Acta parasitologica, 63(1): 125-133. DOI: 10.1515/ap-2018-0014.##Pês, T.S., Saccol, E.M., Ourique, G.M., Londero, É.P., Gressler, L.T., Finamor, I.A., Rotili, D.A., Golombieski, J.I., Glanzner, W.G., Llesuy, S.F. and Gonçalves, P.B., 2016. Effect of diets enriched with rutin on blood parameters, oxidative biomarkers and pituitary hormone expression in silver catfish (Rhamdia quelen). Fish Physiology and Biochemistry, 42(1): 321-333. DOI: 10.1007/s10695-015-0140-z.##Pieters, N., Brunt, J., Austin, B. and Lyndon, A.R., 2008. Efficacy of in-feed probiotics against Aeromonas bestiarum and Ichthyophthirius multifiliis skin infections in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum). Journal of Applied Microbiology, 105(3): 723–732. DOI: 10.1111/j.1365-2672.2008.03817.x.##Sheikhzadeh, Najmeh., Marandi, Amin., 2021. Influence of dietary troxerutin on growth performance in goldfish (Carassius auratus). 5th International Congress of Developing Agriculture, Natural Resources, Environment and Tourism of Iran, 05-07 January 2021.##Song, K., Ling, F., Huang, A., Dong, W., Liu, G., Jiang, C., Zhang, Q. and Wang, G., 2015. In vitro and in vivo assessment of the effect of antiprotozoal compounds isolated from Psoralea corylifolia against Ichthyophthirius multifiliis in fish. International Journal for Parasitology: Drugs and Drug Resistance, 5(2): 58-64. DOI: 10.1016/j.ijpddr.2015.04.001.##Zheng, Y., Zhao, Z., Fan, L., Meng, S., Song, C., Qiu, L., Xu, P. and Chen, J., 2017. Dietary supplementation with rutin has pro-/anti-inflammatory effects in the liver of juvenile GIFT tilapia, Oreochromis niloticus. Fish & Shellfish Immunology, 64: 49-55. DOI: 10.1016/j.fsi.2017.03.014. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ بررسی روند سلامت مرجان‌های انتقال یافته در خلیج چابهار با روش Coral Watch و Line Intercept Transect مبتنی بر پارامترهای آب و هوایی Evaluation of health trends of relocated corals in Chabahar Bay by Coral Watch and Line Intercept Transect method based on climatic parameters 1 1 به منظور توسعه بندر شهید بهشتی چابهار، حدود 20 هزار کلنی مرجانی از محدوده طرح توسعه بندر مذکور به سایت جدیدی واقع در شمال بندر شهید کلانتری منتقل گردید. پس از گذشت یک دهه از زمان انتقال مرجان‌ها، جهت تصمیم‌گیری آتی در موارد مشابه، اطلاع از روند سلامت آنها ضروری است. در این پژوهش ضمن بررسی روند دمای هوا و دمای آب خلیج چابهار، با عملیات غواصی و استفاده از روش‌های Line Intercept Transect و Coral Watch وضعیت سلامت و پوشش مرجان‌ها به طور ماهانه طی سال‌های 90-1398 پایش گردید. داده‌های آب و هوایی مورد نیاز این پژوهش از ایستگاه هواشناسی چابهار و پایگاه داده ماهواره‌ای مرکز ECMWF اخذ گردیدند. بررسی ارتباط بین متغیرها از طریق آزمون همبستگی پیرسون و تحلیل روند من کندال و قابلیت نرم افزارهای SPSS وMinitab  صورت گرفت. طبق نتایج، وضعیت سلامت و توسعه مرجان‌های مذکور، دارای روند کاهشی بوده تا حدی که درصد پوشش مرجان زنده از 98 درصد در سال1390، به 5/71 درصد در سال 1398 رسیده است. از سویی، نمره رنگی شاخص سلامت مرجان‌های شاخه‌ای با کسب 31/4 نمره از 6 در وضعیت "خوب" و مرجان‌های توده‌ای با کسب 59/3 نمره در وضعیت "متوسط" قرار داشته است. به رغم وجود همبستگی منفی بین دما و سلامت مرجان‌ها و وجود روند افزایشی معنی‌دار در پارامتر دمای هوا، به علت عدم معنی‌داری روند افزایشی دمای آب، به‌نظر می‌رسد عوامل دیگری به‌جز نوسان دمای آب، در روند کاهشی وضعیت سلامت مرجان‌ها دخیل بوده‌اند. 2 In order to develop Shahid Beheshti port of Chabahar, about 20,000 coral colonies were moved from the port development plan to a new site located in the north of Shahid Kalantari port. A decade after the corals were transferred, it is essential to know their health in order to make future decisions in similar cases. In this study, while examining the trend of air temperature and water temperature of Chabahar Bay, by diving operations and using Line Intercept Transect and Coral Watch methods, the health status and coverage of corals was monitored monthly from 2011 to 2017. Climatic data required for this study were obtained from Chabahar Meteorological Station and the satellite database of ECMWF Center. The relationship between the variables was examined through Pearson correlation test and Man Kendall trend analysis and the capability of SPSS and Minitab software. According to the results, the health status and development of the mentioned corals has a decreasing trend to the extent that the percentage of live coral coverage has increased from 98% in 1390 to 71.5% in 1398. On the other hand, the color degree of the health index of branched corals with a score of 4.31 out of 6 was in the "good" condition and mass corals with a score of 3.59 points were in the "average" condition. Despite the negative correlation between temperature and health of corals and the existence of a significant upward trend in the parameter of air temperature, due to the insignificance of the upward trend of water temperature, it seems that other factors besides water temperature fluctuations in the downward trend of health of corals have been involved.   107 117 2020/08/162020/11/132020/12/92021/07/232018/10/72020/08/312021/04/272021/04/242021/02/8 1399/11/20 2021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/1 1400/8/10 محمدرضا علیمرادی Mohammadreza Alimoradi دانشگاه حکیم سبزواری Iran mralimoradi@gmail.com محمد باعقیده Mohammad Baaghideh وزارت علوم Iran m.baaghideh@hsu.ac.ir علیرضا انتظاری Alireza Entezari وزارت علوم Iran entezari@hsu.ac.ir محسن حمیدیان پور Mohsen Hamidianpour وزارت علوم Iran mhamidianpour@gep.usb.ac.ir تیمور امینی راد Teimour Aminirad مرکز تحقیقات شیلات ایران Iran taminrad@gmail.com علی مهدی آبکنار Ali Mahdi Abkenar دانشگاه آزاد Iran aliabkenar@gmail.com Coral Coral Watch Method Line Intercept Transect Method Climate parameters Chabahar Bay جوامع مرجان روش Coral Watch روش Line Intercept Transect پارامترهای آب و هوایی خلیج چابهار ##اداره محیط زیست دریایی سیستان و بلوچستان، 1398-1390. گزارشات نظارت و پایش مرجان‌های خلیج چابهار.##اژدری، د.، 1397. معرفی دستگاه جدید انتقال مرجان ها (Coral carrier) و مقایسه آن با دستگاه (Carrier basket). مجله علمی شیلات ایران، ۲۷ (۴): 66-57. (DOI): 10.22092/ISFJ. 2018.117724##بلوکی‌کورنده، م.، نبوی، س. م. ب.، شکری، م. و غانمی، ک.، 1397. بررسی وضعیت سلامت آبسنگ های مرجانی جزایر خارگ و خارگو، فصلنامه اقیانوس شناسی، سال نهم، 34: 17-11.## (DOR):98.1000/1562-1057.1397.9.11.0. 34.1576.1608##بهزادی، س.، رامشی، ح.، سالارپوری، ع.، درویشی، م.، پور مظفر، س.، صیدمرادی، ش. و همکاران.، 1399. یافته علمی کوتاه: بررسی علل سفید شدگی مرجان‌های شاخ گوزنی (Acropora spp.) جزیره هندورابی. مجله علمی شیلات ایران، ۲۹ (۳): ۱۹۱-۱۹۶. 20.1001.1.10261354.1399.29.3.1.3 (DOR):##حیدری، ف.، سواری، ا.، دهقان مدیسه، س. و نبوی، س. م. ب.، 1390. بررسی تاثیر برخی پارامترهای محیطی بر بیوماس مرجان ها در زیستگاه های مصنوعی منطقه بحرکان (شمال خلیج فارس)، مجله زیست شناسی دریا (بیولوژی دریا) ، 2 (6): 11-3. id=145186، (DOI): 10.22113/JMST.2019.119999.2127 ##علیمرادی، م.، میری، غ. و انوری، م. ر.، 1393. بررسی سایت‌های مناسب در خلیج چابهار جهت احیای اکوسیستم‌های مرجانی با هدف توسعه اکوتوریسم با استفاده از مدل شاخص مرکزیت وزنی. اولین کنگره ملی آمایش سرزمین در هزاره سوم با تاکید بر جنوب شرق ایران،.26 و 27 آذرماه 93. دانشگاه آزاد اسلامی، زاهدان.##عوفی، ف.، ربانی ها، م.، بهزادی، س. و مهردوست، م.، 1397. پیامد های ناشی از تغییر اقلیم بر ساختار زیستگاهی و تنوع گونه ای ماهیان آبسنگ های مرجانی در بوم سازگان های جزیره ای خلیج فارس، اولین همایش ملی توسعه پایدار خلیج فارس (اکوسیستم های حساس)، 7 آذر 97، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ،https://civilica.com/doc/908451 . COI: PGSD01_073.##قوام مصطفوی، پ.، 1385. بررسی و شناسایی مولکولی جلبک های همزیست زوگسانتله با مرجان های آبسنگ ساز غالب جزیره کیش، رساله دکتری رشته بیولوژی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات، تهران، COI: NBCI04_097##ولوی، ح.، 1388. تعیین پتانسیل و کارایی نشانگرهای زیستی در آبسنگ‌های مرجانی شمال خلیج فارس. پایان نامه دکتری رشته بیولوژی دریا رشته جانوران دریایی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی##Aminirad, T. and Sanjani, M.S., 2010. Statuse of Coral reef species at Chabahar bay. Sistan and Baluchestan. Iran. Pakistan journal of Biological Sciences. 13, 8, pp. 369-374, ISSN: 1028-8880, DOI: 10.3923/pjbs.2010.369.374.##Castro, P. and Huber, H.M.E., 2003. Marine Biology. Mcgraw-Hill Science /Engineering/Math, UK, 170p.##CoralWatch, 2008. Online website and database of bleaching observations. Queensland Brain Institute, the University of Queensland St Lucia, Qld 4072 Australia http://www.coralwatch.org, Cited in 2002.##ECMWF, 2020. European Centre for Medium-Range Weather Forecasts. Shinfield Park, Reading, RG2 9AX, UK, https://www.ecmwf.int. Cited in 1975. ##English, S., Wilkinson, C. and Baker, V., 1997. Survey Manual for Tropical Marine Resources, Australian Institute of Marine Science, Townsville, Australia, 378 P.##Hill, J. and Wilkinson, C., 2004. Methods for Ecological Monitoring of Coral Reefs. Townsville: Australian Institute of Marine Science Press, 1–117.##Hubbard, J.A. and Pocock, Y., 1997. Sediment rejection by re-cent scleractinian corals: a key to paleoenvironment- al reconstruction. Geol Rundsch, 61: 598-626.##Idris, M.H., Muta Harah, Z. and Arshad, A., 2006. Status of coral reefs species at Patricia Shoals. Bintulu. Sarawak. Malaysia. Journal of Applied Sciences Research, 2 (10): 816-820.##Kendall, M.G., 1975. “Rank Correlation Measures”. Charles Griffin. London Mann H. B. 1945. Nonparametric Tests against Trend. Econometrica, 13: 245-259.##Loya, Y., 1978. Plotless and transect methods. In D. R. S. and R. E. Johannes (Ed.). Monographs on Oceanic Methodology. Coral Reefs, 5: 197–218.##NOAA, 2020. National Oceanic and Atmospheric Administration, 1401 Constitution Avenue NW, Room 5128, Washington, DC 20230, https://www.noaa.gov/.##Tehranifard, A., Farhadi M. and Aminirad, T., 2012. Health Status of Coral Reefs in Chabahar Bay. Iran. International Journal of Bioscience. Biochemistry and Bioinformatics, 2(1): 27-30. ISSN: 2010-3638, DOI: 10.7763/IJBBB.2012.V2.63. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ بررسی اثرات تغذیه از لارو مگس خانگی بر میزان هماوری مولدین و تکامل لاروی میگوی وانامی (Litopenaeus vannamei) Study on the dietary effects of Housefly larvae (Musca domestica) on fecundity and growth rate of Litopenaeus vannamei spawners 1 1 جهت بررسی اثرات تغذیه‌ای از لارو مگس خانگی به ‌عنوان جایگزین کرم پرتار نرئیس (Perinereis nuntia) بر میزان هماوری مولدین و تکامل لاروی میگوی وانامی (Litopenaeus vannamei)، تعداد 30 جفت مولد میگوی وانامی در 3 مخزن 5 تنی از جنس فایبرگلاس حاوی آب دریای فیلترشده، تحت شرایط یکسان ذخیره‌سازی گردیدند. مولدین با 3 رژیم غذایی شامل غذای مرسوم کارگاه‌های تکثیر (کرم پرتار، اسکوئید، گوشت صدف و پلت غذایی) به همراه ۵ درصد از لارو مگس خانگی به‌ عنوان مکمل (رژیم غذایی A)، غذای مرسوم کارگاه‌های تکثیر به همراه 10 درصد لارو مگس خانگی به ‌عنوان جایگزین کرم پرتار (رژیم غذایی B) و غذای مرسوم کارگاه‌های تکثیر نیز به ‌عنوان شاهد (رژیم غذایی C) تغذیه گردیدند. نتایج نشان داد که هنگامی‌که مولدین میگو از غذای مرسوم کارگاهی به همراه ۵ درصد از لارو مگس خانگی به ‌عنوان مکمل (رژیم غذایی A) استفاده نمودند، میزان هماوری، اختلاف معنی‌داری با دو تیمار دیگر نشان داد (05/0>p). میزان تفریخ تخم‌ها در تیمارهای مختلف اختلاف معنی‌داری نشان نداد (05/0<p). تکامل لارو میگوی وانامی حاصل از تخم‌ریزی مولدین نشان داد که درصد بیشتری از لاروهایی حاصل از مولدین تغذیه‌شده با رژیم غذایی مرسوم کارگاهی به همراه ۵ درصد از لارو مگس خانگی (رژیم غذایی A)  نسبت به سایر تیمارها سریع‌تر به مرحله بعدی تکامل پیدا نمودند که به‌ویژه در مراحل پست لاروی، اختلاف معنی‌داری نیز نشان داد (05/0>p). به‌هرحال، استفاده از مگس خانگی به‌ صورت مکمل غذای مرسوم کارگاهی می‌تواند باعث افزایش میزان هماوری مولدین میگو و تکامل سریع‌تر لاروها شود، اما به‌ عنوان جایگزین کرم پرتار(P. nuntia)  در ترکیب غذای مرسوم در کارگاه‌های تکثیر میگو، دارای کارایی لازم نمی‌باشد. 2 In order to evaluate the dietary effects of housefly larvae (Musca domestica) as an alternative to Perinereis nuntia, on fecundity rate and larval stages development of Pacific white leg shrimp Litopenaeus vannamei, 30 pairs of L. vannamei shrimp were stocked in 3 fiberglass tanks of 5 tones containing filtered seawater under identical conditions. The brooders were fed with 3 diets including conventional diets of hatchery (P. nuntia, squid, oysters and food pellets), along with 5% of housefly larvae as a supplement (Diet A), conventional diets of hatchery along with 10% of housefly larvae as an alternative to P. nuntia (Diet B) and conventional diets of hatchery as a control (Diet C). The experiment results showed that diet A presented significant differences in promoting fecundity rates of shrimp broodstocks with the other treatments (p<0.05). The number of hatching eggs (hatching) in the treatments did not show any significant difference (p>0.05). The larval development stages of hatched eggs produced with different treatments showed that a greater percentage of larvae from broodstocks fed with diet A have developed faster to the next stage than the other two treatments, which has shown a significant difference (p<0.05), especially in post-larvae stages. However, the use of housefly larvae diet as a supplement to conventional diets of hatchery can increase the fecundity rates of shrimp broodstocks and result in faster larval development; but as an alternative to the polychaete worm (P. nuntia) in conventional diets of the hatchery, have no effect on shrimp broodstock hatcheries. 119 129 2020/08/162020/11/132020/12/92021/07/232018/10/72020/08/312021/04/272021/04/242021/02/82020/09/22 1399/7/1 2021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/1 1400/8/10 کیومرث روحانی قادیکلایی Kiuomars Rohani-Ghadikolaei موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran roohani2001ir@yahoo.com عیسی عبدالعلیان Eeesa Abdolalian موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran eesa48@yahoo.com مریم معزی Maryam Moezzei موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran maryammoezzi1360@yahoo.com محمدرضا زاهدی MohammadReza Zahedi موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran zahedi_persica@yahoo.com@yahoo.com محمد گرگیج جاسکی Mohammad Gorgij Jaski دانشگاه آزاد اسلامی بندرعباس Iran sontderafshrimp@yahoo.com فریبرز احتشامی Fariborz Ehteshamei موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran ehteshamei@yahoo.com شهرام دادگر Shahram Dadgar موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran shdadgar@yahoo.com Post larvae Vannamei shrimp Polychaete worm Housefly پست لارو میگوی وانامی کرم پرتار مگس خانگی ##Adeniji, A., 2007. Effect of replacing groundnut cake with maggot meal in the diet of broilers. International Journal of Poultry Science, 6: 822–825. DOI:10.3923/IJPS.2007.822.825.##Adhikari, S., Chaurasia, V., Naqvi, A.A. and Pillai, B., 2007. Survival and growth of Macrobrachium rosenbergii (de Man) juvenile in relation to calcium hardness and bicarbonate alkalinity. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 7: 23–26. Corpus ID: 86236947##Almeda, R., Pedersen, T.M., Jakobsen, H.H., Alcaraz, M., Calbet, A. and Hansen, B.W., 2009. Feeding and growth kinetics of the planktotrophic larvae of the spionid polychaete Polydora ciliata. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 382:61–68. DOI: 10.1016/j.jembe.2009.09.017 ##Alofa, C.S., Adite A. and Abou, Y., 2020. Evaluation of Spirulina (Spirulina platensis) wastes and live housefly (Musca domestica) larvae as dietary protein sources in diets of Oreochromis niloticus (Linnaeus 1758) fingerlings. Aquatic Research, 1: 24-35. DOI: 10.3153/ar20003.## ##Antiporda, J.L., 1986. Optimum dietary protein requirement for Macrobrachium rosenbergii juveniles. Fisheries/Project Reports (not in a Series), Network of Aquaculture Centers in Asia, Bangkok, Thailand: pp. 1–20.##Arcos, F.G., Ibarra, A.M. and Racotta, I.S., 2011. Vitellogenin in hemolymph predicts gonad maturity in adult female Litopenaeus vannamei shrimp. Aquaculture, 316: 93–98. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2011.02.045.##Asghari, S., Salarzadeh, A.R., Rohani, K, Yahyavi, M. and Mohammadizadeh, F., 2017. Fatty Acid Profile of Wild and Farmed Sandworms, Perinereis nuntia, in the Coast of Bandar Abbas, Iran. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 17:1049–1053. DOI:10.4194/1303-2712-v17-5-21.##Bondari, K. and Sheppard, D.C., 1987. Soldier fly Hermetia illucens L., as feed for channel catfish, Ictalurus punctatus (Rafinesque), and blue tilapia, Oreochromis aureus (Steindachner). Aquaculture and Fisheries Management, 18: 209–220. DOI: 10.1111/j. 1365-2109.1987.tb00141.x.##Briggs, M., Funge-Smith, S., Subasinghe, R. and Phillips, M., 2004. Introduction and movement of Penaeus vannamei and Penaeus stylirostris in Asia and the Pacific. RAP publication, Bangkok. 79 P. Corpus ID: 108288834.##Cahu, C.L., Cuzon, G. and Quazuguel, P., 1995. Effect of highly unsaturated fatty acids, α-tocopherol and ascorbic acid in broodstock diet on egg composition and development of Penaeus indicus. Biochemistry Physiology, 112: 417–424. DOI: 10.1016/0300-9629(95) 02009-8.##Coman, G.J., 2006. Effect of two maturation diet combinations on reproductive performance of domesticated Penaeus monodon. Aquaculture, 263:75–83. DOI:10.1016/j.aquaculture. 2006.10.016.##Haryadi, D., Verreth, J.A., Verdegem, M.C. and Vlak, J.M., 2015. Transmission of white spot syndrome virus (WSSV) from Dendronereis spp. (Peters) (Nereididae) to penaeid shrimp. Journal of Fish Disease, 38:419–28. DOI: 10.1111/jfd.12247.##Hilaire, S., Sheppard, C., Tomberlin, J.K., Irving, S., McGuire, M.A., Mosley, E.E., Hardy, R.W. and Sealey, W., 2007. Fly prepupae as a feedstuff for rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Journal of the World Aquaculture Society, 38: 59–67. DOI:10.1111/j.1749-7345. 2006.00073.x.##Hoang, T., Keenan, C.P. and Marsden, G.T., 2002. Effect of light intensity on maturation and spawning of ablated female Penaeus merguiensis. Aquaculture, 209: 347–358. DOI:10.1016/S0044-8486(01)00814-6.##Huang, J., Jiang, S., Lin, H., Zhou, F. and Ye, L., 2008. Effect of dietary highly unsaturated fatty acids and astaxanthin on the fecundity and lipid content of pond reared Penaeus monodon (Fabricius) broodstock. Aquaculture Research, 39: 240–251. DOI：10.1111/j. 1365-2109.2007.01868.x.##Hussein, M., Pillai, V.V., Goddard, J.M., Park, H.G., Kothapalli, K.S. and Ross, D.A., 2017. Sustainable production of housefly (Musca domestica) larvae as a protein-rich feed ingredient by utilizing cattle manure. PLOS ONE, 12: e0171708. DOI:10.1371/ journal.pone.0171708.##Lin, Y.H. and Mui, J.J., 2017. Evaluation of dietary inclusion of housefly maggot (Musca domestica) meal on growth, fillet composition and physiological responses for barramundi, Lates calcarifer. Aquaculture Research, 48: 2478-2485. DOI.org/10.1111/ are.13085.##McLean, E., 2021. Background color and cultured invertebrates – A review. Aquaculture, 537: 1276–1289. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2021.736523.##Merican, Z.O. and Shim, K.F., 1996. Qualitative requirements of essential fatty acids for juvenile Penaeus monodon. Aquaculture, 174: 275–291.DOI: 10.1016/S0044-8486 (96)01379-8.##Meunpol, O., Duangjai, E., Yoonpun, R. and Piyatiratitivorakul, S., 2010. Detection of prostaglandin E2 in polychaete Perinereis sp. and its effect on Penaeus monodon oocyte development in vitro. Fisheries Science, 76: 281–286. DOI:10.1007/s12562-009-0208-8.##Panouse, J.B., 1943. Influence of eyestalk ablation on the growth ovarian of cancer shrimp Leander serratus. Renderings of the Academy of Sciences Paris, 217: 553–555. DOI: 10.4194/trjfas.2010.0314.##Poltana, P., Lerkitkul T., Pongtippatee-Taweepreda, P., Asuvapongpattana, S., Wongprasert, K., Sriurairatana, S., Chavadej, J., Sobhon, P., Olive, P.J.W. and Withyachumnarnkul, B., 2007. Culture and development of the polychaete Perinereis cf. nuntia. Invertebrate Reproduction and Development, 50: 13–20. DOI: 10.1080/07924259. 2007.9652222##Ronquillo, J.D., Saisho, T. and McKinley, R.S., 2006. Early developmental stages of the green tiger prawn, Penaeus semisulcatus de Haan (Crustacea, Decapoda, Penaeidae). Hydrobiologia, 560: 175–196. DOI:10.1007/s10750-005-1448-y.##Roy, L.A., Davis, D.A., Saoud, I.P. and Henry, R.P., 2007. Effects of varying levels of aqueous potassium and magnesium on survival, growth, and respiration of the Pacific White shrimp, Litopenaeus vannamei, reared in low salinity waters. Aquaculture, 262: 461-469. DOI:10.1016/j.aquaculture.2006.10.011. ##Sarac, Z., Thaggard, H., Saunders, J., Gravel, M., Neill, A. and Cowan, R.T., 1993. Observations on the chemical composition of some commercial prawn feeds and associated growth responses in Penaeus monodon. Aquaculture, 115:97–110. DOI:10.1016/0044-8486(93)90361-2.##Shalini, R., Badhul Haq, M.A., Sajith Ahamed, A., Kumar, P., Sedhuraman, V. and Nirosh Banu, M., 2016. WSSV Transmission Studies on Polychaete Pereneris cultifera to Pacific White Shrimp SPF Litopenaeus vannamei in Captivity. International Journal of Pure Applied Bioscience, 4: 59–75. DOI:10.18782/2320-7051.2366.##Subasinghe, R., Soto, D. and Jiansan, J., 2009. Global aquaculture and its role in sustainable development. Reviews in Aquaculture, 1: 2–9. DOI:10.1111/j.1753-5131.2008.01002.x.##Techaprempreecha, S., Khongchareonporn, N., Chaicharoenpong, C., Aranyakananda, P., Chunhabundit, S. and Petsom, A., 2011. Nutritional composition of farmed and wild sandworms, Perinereis nuntia. Journal of Animal Feed Science and Technology, 169: 265–269. DOI:10.1016/j.anifeedsci.2011.06.007.##Thoman, E.S., Allen Davids, .D. and Arnold, C.R., 1999. Evaluation of growth out diets with varying energy levels for drum (Sciaenops ocellatus). Aquaculture, 176: 343-353. DOI:10.1016/S0044-8486(99)00118-0.##Wang, L., Li, J., Jin, J.N., Zhu, F., Roffeis, M. and Zhang, X.Z., 2017. A comprehensive evaluation of replacing fishmeal with housefly (Musca domestica) maggot meal in the diet of Nile tilapia (Oreochromis niloticus): growth performance, flesh quality, innate immunity and water environment. Aquaculture Nutrition, 23: 983-993. DOI:10.1111/anu.12466.##Xiang, J., Qin, L., Zhao, D., Xiong, F., Wang, G., Zou, H., Li, W., Li, M., Song, K. and Wu, S., 2020. Growth performance, immunity and intestinal microbiota of swamp eel (Monopterus albus) fed a diet supplemented with house fly larvae (Musca domestica). Aquaculture Nutrition, 26: 693-704. DOI:10.1111/anu.13029.##Xie, S.W., Tian, L.X., Jin, Y., Yang, H.J., Liang, G.Y. and Liu, Y.J., 2014. Effect of glycine supplementation on growth performance, body composition and salinity stress of juvenile Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei fed low fishmeal diet. Aquaculture, 418: 159-164. DOI:10.1016/j.aquaculture.2013.10.023. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ تأثیر سطوح مختلف آستازانتین جیره غذایی بر شاخص‌‌های بیوشیمیایی همولنف، محتوای کاروتنوئید کل و فلور میکروبی روده میگوی آب شیرین رودخانه‌ای شرق (Macrobrachium nipponense) Influence of different dietary Astaxanthin levels on hemolymph biochemical parameters, total carotenoid content and intestinal microbial flora of the oriental river prawn, Macrobrachium nipponense 1 1 برای انجام تحقیق، 225 قطعه میگوی آب شیرین رودخانه‌‌ای شرق (Macrobrachium nipponense) با میانگین وزنی 05/40±0/1 گرم به مدت 8 هفته با پنج جیره غذایی فرموله شده، حاوی سطوح مختلف رنگدانه آستازانتین صفر (شاهد)، 50، 100، 150 و 200 میلی‌‌گرم در کیلوگرم، در آکواریوم شیشه‌‌ای نگهداری گردیدند و مورد غذادهی قرار گرفتند. در پایان دوره پرورشی، پس از جمع‌‌آوری همولنف و همچنین نمونه‌‌برداری از بافت‌‌های روده، عضله و بخش پوسته، شاخص‌‌های بیوشیمیایی همولنف، محتوای کاروتنوئید کل و فلور میکروبی روده در میگوها مورد مطالعه قرار گرفتند. شاخص‌‌‌‌های بیوشیمیایی همولنف همچون اوره، ازت اوره، گلوکز، کراتینین و تری گلیسیرید با افزایش سطوح آستازانتین، کاهش یافتند درحالی‌‌که HDL و LDL به طور معنی‌‌داری افزایش پیدا نمودند (05/0>p). بااین‌وجود، اوریک اسید، کلسیم، فسفر و کلسترول تحت تأثیر تیمارهای حاوی آستازانتین قرار نگرفتند (05/0<p). تیمارهای 150 و 200 میلی‌‌گرم در کیلوگرم آستازانتین، کمترین شمارش کل باکتری‌‌ها را از خود نشان دادند. باکتری‌‌های اسید لاکتیک روده نیز در تیمار 150 میلی‌‌گرم در کیلوگرم آستازانتین افزایش یافت (05/0>p). محتوای کاروتنوئید کل میگوها با افزایش سطوح آستازانتین جیره غذایی، افزایش یافت (05/0>p). به طور کلی، نتایج مطالعه حاضر نشان داد که افزایش سطوح آستازانتین در جیره غذایی موجب بهبود شاخص‌های بیوشیمیایی همولنف، محتوای کاروتنوئید کل و فلور میکروبی روده میگوی رودخانه‌ای شرق گردید و افزودن میزان 150 میلی­گرم در کیلوگرم از این رنگدانه به جیره غذایی با هدف بهبود شاخص‌‌های مذکور در این میگو پیشنهاد می‌گردد. 2 In the present experiment, two hundred and twenty-five oriental river prawns (Macrobrachium nipponense) with mean weight of 1.40±0.05 gram were fed by five formulated diets containing different astaxanthin levels, zero (control), 50, 100, 150 and 200 milligrams per kilogram in glass aquarium tank for eight weeks. At the end of the culture period, after collecting hemolymph and also the tissues of intestinal tract, muscle and exoskeleton were sampled, hemolymph biochemical parameters, total carotenoid content and intestinal microbial flora in prawns were studied. Hemolymph biochemical parameters such as urea, urea nitrogen, glucose, creatinine and triglycerides were decreased with increasing of astaxanthin levels, while HDL and LDL increased significantly (p<0.05). However, uric acid, calcium, phosphorus and cholesterol were not affected by astaxanthin treatments (p>0.05). Treatments containing 150 and 200 mg/kg astaxanthin showed the lowest total bacterial count. Intestinal lactic acid bacteria also increased in the treatment of 150 mg/kg astaxanthin (p<0.05). Total carotenoid content of prawns was elevated by increasing dietary astaxanthin levels (p<0.05). Generally, the results of present study showed that increasing dietary astaxanthin levels improves hemolymph biochemical parameters, total carotenoid content and intestinal microbial flora of the oriental river prawn and adding 150 milligrams astaxanthin per kilogram of this pigment to the diet was suggested to improve the parameters that mentioned of this prawn. 131 147 2020/08/162020/11/132020/12/92021/07/232018/10/72020/08/312021/04/272021/04/242021/02/82020/09/222021/08/8 1400/5/17 2021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/1 1400/8/10 محمد اتفاق دوست Mohammad Ettefaghdoost دانشگاه گیلان Iran ettefaghdoost@phd.guilan.ac.ir حمید علاف نویریان Hamid Alaf Noveirian دانشگاه گیلان Iran ---@yahoo.com میر مسعود سجادی دانشگاه گیلان Iran ----@yahoo.com بهرام فلاحتکار Bahram Falahatkar دانشگاه گیلان Iran -----@yahoo.com Astaxanthin Carotenoids Dietary supplement Metabolism Oriental river prawn آستازانتین کاروتنوئیدها مکمل غذایی متابولیسم میگوی رودخانه‌ای شرق ##اتفاق دوست، م.، حقیقی، ح. و علاف نویریان ح.، 1394. اثر دفعات غذادهی بر شاخص های رشد، بازماندگی و ترکیب شیمیایی بدن میگوی رودخانه ای شرق Macrobrachium nipponense (De Haan,1849). مجله علمی شیلات ایران. دوره ۲۴، شماره ۱، صفحات ۸۳-۹۵. DOI: 10.22092/ISFJ.2014.103096.##اتفاق دوست، م. و علاف نویریان ح.، 1395. اثر درصدهای غذادهی متفاوت بر شاخص های رشد، ضریب تبدیل غذایی و ترکیب شیمیایی بدن میگوی رودخانه ای شرقMacrobrachium nipponense (De Haan,1849) . مجله علمی شیلات ایران. دوره 25، شماره 5، صفحات 97-111. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110318.##Ahmad, M.T., Shariff, M., Yusoff, F., Goh, Y.M. and Banerjee, S., 2020. Applications of microalga Chlorella vulgaris in aquaculture. Reviews in Aquaculture, 12(1): 328-346. DOI: 10.1111/raq.12320.##Akbarzadeh, A., Pakravan, S., Karimi, K., Abkenar, K.B., Nimvari, M.E., Niroomand, M., Sobhani, S.A. and Dorcheh, E.E., 2019. Utilization of date seed meal in the diet of Pacific white shrimp (Penaeus vannamei): growth performance, body and fatty acid composition, biochemical parameters, and tolerance of salinity stress. Aquaculture International, 27(3): 647-661. DOI: 10.1007/s10499-019-00352-y.##Alitabar, A., Hosseinifard, S.M. and Ghobadi, S., 2017. Comparative effect of astaxanthin and red beet (Beta vulgaris conditiva) on blood serum factors of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Breeding and Aquaculture Sciences, 4(11): 43-50. ##Alizadeh, M., Khanjani, M.H., Karimi, O., Ansari, R. and Rafieepour, A., 2017. The effect of different levels of synthetic and algal astaxanthin (Heamatococcus pluvialis) on some biochemical parameters of blood serum in rainbow trout broodstock Oncorhynchus mykiss (Walbaum 1792). Journal of Applied Ichthyological Research, 5(2): 47-64. ##AOAC. 2016. Official Methods of Analysis, 20th Ed. (Editor: Dr. George W. Latimer, Jr.) Association of Official Analytical Chemists, Washington, DC. USA. 3172P. ISBN: 0935584870. ##Azwar, A., Rantetondok, A. and Anshary, H., 2019. Screening and application of lactic acid bacteria isolated from vanamei shrimp (Litopenaeus vannamei) intestine as a probiotic potential for tiger shrimp (Penaeus monodon). Aquaculture, Aquarium, Conservation & Legislation, 12(5): 1866-1881. ##Babin, A., Moreau, J. and Moret, Y., 2019. Storage of Carotenoids in Crustaceans as an Adaptation to Modulate Immunopathology and Optimize Immunological and Life‐History Strategies. BioEssays, 41(11): 1800254. DOI: 10.1002/bies.201800254.##Briggs, M., 2005. Introductions and movement of two penaeid shrimp species in Asia and the Pacific. Aquaculture Consultant Bangkok, Thailand, 476 P. ## ##Chuchird, N., Rorkwiree, P. and Rairat, T., 2015. Effect of dietary formic acid and astaxanthin on the survival and growth of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) and their resistance to Vibrio parahaemolyticus. SpringerPlus, 4(1): 440-447. DOI: 10.1186/s40064-015-1234-x.##Cocke, J., Salazar, M. and Rye, M., 2017. Strategies for managing diseases in non‐native shrimp populations. Reviews in Aquaculture, 9(3): 211-226. DOI: 10.1111/raq.12132.##de Carvalho, C.C. and Caramujo, M.J., 2017. Carotenoids in aquatic ecosystems and aquaculture: a colorful business with implications for human health. Frontiers in Marine Science, 4(93): 1-14. DOI: 10.3389/fmars.2017.00093.##De Grave, S. and Ghane, A., 2006. The establishment of the oriental river prawn, Macrobrachium nipponense (de Haan, 1849) in Anzali Lagoon, Iran. Aquatic Invasions, 1(4): 204-208. DOI: 10.3391/ai.2006.1.4.2.##Ding, Z., Kong, Y., Zhang, Y., Li, J., Cao, F., Zhou, J. and Ye, J., 2017. Effect of feeding frequency on growth, body composition, antioxidant status and mRNA expression of immunodependent genes before or after ammonia-N stress in juvenile oriental river prawn, Macrobrachium nipponense. Fish & Shellfish Immunology, 68: 428-434. DOI: 10.1016/j.fsi.2017.07.045.##Dose, J., Matsugo, S., Yokokawa, H., Koshida, Y., Okazaki, S., Seidel, U., Eggersdorfer, M., Rimbach, G. and Esatbeyoglu, T., 2016. Free radical scavenging and cellular antioxidant properties of astaxanthin. International Journal of Molecular Sciences, 17(1): 103-110. DOI: 10.3390/ijms17010103.##Enes, P., Panserat, S., Kaushik, S. and Oliva-Teles., 2009. Nutritional regulation of hepatic glucose metabolism in fish. Fish Physiology and Biochemistry, 35(3): 519-539. DOI: 10.1007/s10695-008-9259-5.##Ettefaghdoost, M., Alaf Noveirian, H. and Falahatkar, B., 2018. Growth performance, feed efficiency and whole-body chemical composition of the oriental river prawn, Macrobrachium nipponense, fed different dietary protein to lipid ratio. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 17(3): 585-602. DOI: 10.22092/IJFS.2018.116551.##FAO, 2020. Fishery Statistics Yearbook. The State of World Fisheries and Aquaculture 2020. Sustainability in action, Retrieved Nov.2019. FAO, Rome, Italy. ISBN: 978-92-5-132692-3. ##Farhangi, M., Ahmadi, S., Rafiee, G., Ghaednia, B. and Taghavi, D., 2014. Evaluation of the effect of different dietary levels of astaxanthin pigment on some biochemical parameters and non-specific immuno of whiteleg shrimp (Litopenaeus vannamei) juveniles faced with a sharp decline in oxygen tension. Journal of Khoramshahr Marine Science and Technology, 12(2): 103-114. ##Fehsenfeld, S., Weihrauch, D. and Quijada-Rodriguez, A., 2017. Nitrogen excretion in aquatic crustaceans. Acid-base balance and nitrogen excretion in invertebrates,1-24. ##Flegel, T.W., 2019. A future vision for disease control in shrimp aquaculture. Journal of the World Aquaculture Society, 50(2): 249-266. DOI: 10.1111/jwas.12589.##Fredrick, W.S. and Ravichandran, S., 2012. Hemolymph proteins in marine crustaceans. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 2(6): 496-502. DOI: 10.1016/S2221-1691(12)60084-7.##Hoeger, U. and Schenk, S., 2020. Crustacean Hemolymph Lipoproteins. Vertebrate and Invertebrate Respiratory Proteins, Lipoproteins and other Body Fluid Proteins, 94(1): 35-62. DOI: 10.1007/978-3-030-41769-7_2.##Hu, J., Lu, W., Lv, M., Wang, Y., Ding, R. and Wang, L., 2019. Extraction and purification of astaxanthin from shrimp shells and the effects of different treatments on its content. Revista Brasileira de Farmacognosia, 29(1): 24-29. DOI: 10.1016/j.bjp.2018.11.004.##Huang, F., Wang, L., Zhang, C.X. and Song, K., 2017. Replacement of fishmeal with soybean meal and mineral supplements in diets of Litopenaeus vannamei reared in low-salinity water. Aquaculture, 473: 172-180. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2017.02.011.##Jescovitch, L.N., Ullman, C., Rhodes, M. and Davis, D.A., 2018. Effects of different feed management treatments on water quality for Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei. Aquaculture Research, 49(1): 526-531. DOI: 10.1111/are.13483.##Jiang, X., Zu, L., Wang, Z., Cheng, Y., Yang, Y. and Wu, X., 2020. Micro-algal astaxanthin could improve the antioxidant capability, immunity and ammonia resistance of juvenile Chinese mitten crab, Eriocheir sinensis. Fish & Shellfish Immunology, 102: 499-510. DOI: 10.1016/j.fsi.2020.05.021.##Jouladeh-Roudbar, A., Eagderi, S., Ghanavi, H.R. and Doadrio, I., 2017. A new species of the genus Capoeta valenciennes, 1842 from the Caspian Sea basin in Iran (Teleostei, Cyprinidae). ZooKeys, 682:137-155. DOI: 10.3897/zookeys.682.12670.##Kalbassi, M. R., Abdollahzadeh, E. and Salari-Joo, H., 2013. A review on aquaculture development in Iran. Ecopersia, 1(2): 159-178.##Khan, M.T., Dalvin, S., Nilsen, F. and Male, R., 2017. Microsomal triglyceride transfer protein in the ectoparasitic crustacean salmon louse (Lepeophtheirus salmonis). Journal of Lipid Research, 58(8): 1613-1623. DOI: 10.1194/jlr.M076430.##Khatoon, H., Banerjee, S., Yuan, G. T. G., Haris, N., Ikhwanuddin, M., Ambak, M.A. and Endut, A., 2016. Biofloc as a potential natural feed for shrimp postlarvae. International Biodeterioration & Biodegradation, 113: 304-309. DOI: 10.1016/j.ibiod.2016.04.006.##Kumar, V., Sinha, A. K., Romano, N., Allen, K.M., Bowman, B.A., Thompson, K.R. and Tidwell, J. H., 2018. Metabolism and nutritive role of cholesterol in the growth, gonadal development, and reproduction of crustaceans. Reviews in Fisheries Science & Aquaculture, 26(2): 254-273. DOI: 10.1080/23308249.2018.1429384.##Kuo, H.W., Lin, D.W., and Cheng, W., 2019. Transient enhancement of immune resistance functions in Litopenaeus vannamei through a low-dose octopamine injection. Fish & Shellfish Immunology, 84: 532-540. DOI: 10.1016/j.fsi.2018.10.060.##Lavajoo, F., Amrollahi Biuki, N., Khanipour, A.A., Mirzajani, A., Gutiérrez Fruitos, J. and Akbarzadeh, A., 2019. Natural diet of Macrobrachium nipponense shrimp from three habitats in Anzali Wetland, Iran. Caspian Journal of Environmental Sciences, 17(2): 101-111. DOI: 10.22124/cjes.2019.3404.##Lim, K. C., Yusoff, F.M., Shariff, M. and Kamarudin, M. S., 2018. Astaxanthin as feed supplement in aquatic animals. Reviews in Aquaculture, 10(3): 738-773. DOI: 10.1111/raq.12200.##Liu, H., Zhang, X., Tan, B., Lin, Y., Chi, S., Dong, X. and Yang, Q., 2014. Effect of dietary potassium on growth, nitrogen metabolism, osmoregulation and immunity of pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) reared in low salinity seawater. Journal of Ocean University of China, 13(2): 311-320. DOI: 10.1007/s11802-014-2118-3.##Liu, T., Zhang, G., Feng, Y., Kong, C., Ayisi, C.L., Huang, X. and Hua, X., 2019. Dietary soybean antigen impairs growth and health through stress-induced non-specific immune responses in Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei. Fish & Shellfish Immunology, 84: 124-129. DOI: 10.1016/j.fsi.2018.09.062.##Mahfuzur, R., Lutzu, G. A., Alam, A., Sarker, P., Chowdhury, M.K., Parsaeimehr, A., Liang, Y. and Daroch, M., 2018. Microalgae in aquafeeds for a sustainable aquaculture industry. Journal of Applied Phycology, 30(1): 197-213. DOI: 10.1007/s10811-017-1234-z.##Mashiko, K. and Numachi, K.I., 2000. Derivation of populations with different-sized eggs in the palaemonid prawn Macrobrachium nipponense. Journal of Crustacean Biology, 20(1): 118-127. DOI: 10.1163/20021975-99990021.##Miao, S., Zhu, J., Zhao, C., Sun, L., Zhang, X. and Chen, G., 2017. Effects of C/N ratio control combined with probiotics on the immune response, disease resistance, intestinal microbiota and morphology of giant freshwater prawn (Macrobrachium rosenbergii). Aquaculture, 476: 125-133. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2017.04.027.##Mykles, D.L., 2011. Ecdysteroid metabolism in crustaceans. The Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology, 127(3-5): 196-203. DOI: 10.1016/j.jsbmb.2010.09.001.##Nakano, T. and Wiegertjes, G., 2020. Properties of Carotenoids in Fish Fitness: A Review. Marine Drugs, 18(11): 568-581. DOI: 10.3390/md18110568.##Nguyen, T., Nguyen, H., Pham, H., Nguyen, A., Phan, T., Hara, T., Takatsuka, Y. and Nguyen, A., 2020. Cooperative improvement in growth rate, red‐colour score and astaxanthin level of white‐leg shrimp by Bacillus strains originating from shrimp gut. Journal of Applied Microbiology, 129(1): 51-62. DOI: 10.1111/jam.14603.##Parisenti, J., Beirão, L., Maraschin, M., Mourino, J., Do Nascimento Vieira, F., Bedin, L. and Rodrigues, E., 2011. Pigmentation and carotenoid content of shrimp fed with Haematococcus pluvialis and soy lecithin. Aquaculture Nutrition, 17(2): 530-535. DOI: 10.1111/j.1365-2095.2010.00794.x.##Polakof, S., Panserat, S., Soengas, J. L. and Moon, T.W., 2012. Glucose metabolism in fish: a review. Journal of Comparative Physiology B, 182(8): 1015-1045. DOI: 10.1007/s00360-012-0658-7.##Rigi Ghazagh, H., Aberomand, A., Ziaienezhad, S. and Akbary, P., 2017. Effect of astaxanthin on growth, body chemical composition and some blood serum biochemical indices in grey mullet, (Mugil cephalus Linnaeus, 1758). Iranian Scientific Fisheries Journal, 26(2): 15-24. DOI: 10.22092/isfj.2017.113480.##Shahidi, F. and Brown, J.A., 1998. Carotenoid pigments in seafoods and aquaculture. Critical Reveiws in Food Science, 38(1): 1-67. DOI: 10.1080/10408699891274165.##Su, F., Yu, W. and Liu, J., 2020. Comparison of effect of dietary supplementation with Haematococcus pluvialis powder and synthetic astaxanthin on carotenoid composition, concentration, esterification degree and astaxanthin isomers in ovaries, hepatopancreas, carapace, epithelium of adult female Chinese mitten crab (Eriocheir sinensis). Aquaculture, 523: 735146. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2020.735146.##Tomas, A.L., Sganga, D.E. and Lopez Greco, L.S., 2020. Effect of background color and shelters on female pigmentation in the ornamental red cherry shrimp Neocaridina davidi (Caridea, Atyidae). Journal of the World Aquaculture Society, 51(3): 775-787. DOI: 10.1111/jwas.12660.##Valipour, A., Zahmatkesh, A. and Khanipour, A., 2017. Freshwater crayfsih as a suitable Species for introducing to aquaculture of Iran. Advanced Aquaculture Sciences Journal, 1(1): 73-87.##Wade, N.M., Budd, A., Irvin, S. and Glencross, B.D., 2015. The combined effects of diet, environment and genetics on pigmentation in the giant tiger prawn, Penaeus monodon. Aquaculture, 449: 78-86. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2015.01.023.##Wade, N.M., Cheers, S., Bourne, N., Irvin, S., Blyth, D. and Glencross, B.D. 2017a. Dietary astaxanthin levels affect colour, growth, carotenoid digestibility and the accumulation of specific carotenoid esters in the Giant Tiger Shrimp, Penaeus monodon. Aquaculture Research, 48(2): 395-406. DOI: 10.1111/are.12888.##Wade, N.M., Gabaudan, J. and Glencross, B.D., 2017b. A review of carotenoid utilisation and function in crustacean aquaculture. Reviews in Aquaculture, 9(2): 141-156. DOI: 10.1111/raq.12109.##Wang, W.N., Wang, A.L., Wang, D.M., Wang, L.P., Liu, Y. and Sun, R.Y., 2003. Calcium, phosphorus and adenylate levels and Na+–K+-ATPase activities of prawn, Macrobrachium nipponense, during the moult cycle. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology, 134(2): 297-305. DOI: 10.1016/S1095-6433(02)00284-2.##Wang, X.W. and Xing, J., 2015. Crustacean hemolymph microbiota: Endemic, tightly controlled, and utilization expectable. Molecular Immunology, 68(2): 404-411. DOI: 10.1016/j.molimm.2015.06.018.##Wang, W., Ishikawa, M., Koshio, S., Yokoyama, S., Hossain, M.S. and Moss, A.S., 2018. Effects of dietary astaxanthin supplementation on juvenile kuruma shrimp, Marsupenaeus japonicus. Aquaculture, 491: 197-204. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2018.03.025.##Weihrauch, D., Wilkie, M.P. and Walsh, P.J., 2009. Ammonia and urea transporters in gills of fish and aquatic crustaceans. Journal of Experimental Biology, 212(11): 1716-1730. DOI: 10.1242/jeb.024851.##Wyss, M. and Kaddurah-Daouk, R., 2000. Creatine and creatinine metabolism. Physiological Reviews, 80(3): 1107-1213. DOI: 10.1152/physrev.2000.80.3.1107.##Xu, Z., Guan, W., Xie, D., Lu, W., Ren, X., Yuan, J. and Mao, L., 2019. Evaluation of immunological response in shrimp Penaeus vannamei submitted to low temperature and air exposure. Developmental & Comparative Immunology, 100: 103413. DOI: 10.1016/j.dci.2019.103413.##Yanar, Y., Çelik, M. and Yanar, M., 2004. Seasonal changes in total carotenoid contents of wild marine shrimps (Penaeus semisulcatus and Metapenaeus monoceros) inhabiting the eastern Mediterranean. Food Chemistry, 88(2): 267-269. DOI: 10.1016/j.foodchem.2004.01.037.##Zhang, L., Cao, W., Gao, Y., Yang, R., Zhang, X., Xu, J. and Tang, Q., 2020. Astaxanthin (ATX) enhances the intestinal mucosal functions in immunodeficient mice. Food & Function, 11(4): 3371-3381. DOI: 10.1039/C9FO02555C.##Zhao, W., Wang, Z., Yu, Y., Qi, Z., Lü, L., Zhang, Y. and Lü, F., 2016. Growth and antioxidant status of oriental river prawn Macrobrachium nipponense fed with diets containing vitamin E. Chinese Journal of Oceanology and Limnology, 34(3): 477-483. DOI: 10.1007/s00343-015-4396-z.##Zhao, C., Fu, H., Sun, S., Qiao, H., Zhang, W., Jin, S., Jiang, S., Xiong, Y. and Gong, Y., 2017. Experimental inoculation of oriental river prawn Macrobrachium nipponense with white spot syndrome virus (WSSV). Diseases of Aquatic Organisms, 126(2): 125-134. DOI: 10.3354/dao03165. ##

مقاله علمی – پژوهشی: بررسی اثر شدت نور بر میزان تولید چربی در ریزجلبک Chlamydomonas reinhardtii به منظور تولید سوخت زیستی The effect of light intensity on lipid production in Chlamydomonas reinhardtii to produce biofuels 1 1 گرم شدن تدریجی کره زمین به دلیل استفاده بی‌رویه از سوخت‌های فسیلی، آلودگی‌های زیست محیطی و افزایش گازهای گلخانه‌ای موجب گردیده است تا محققان بر توسعه منابع انرژی تجدیدپذیر مانند خورشید، باد، آب و سوخت‌های زیستی تمرکز کنند. از آنجایی‌که ریزجلبک‌ ها حاوی اسیدهای چرب زیادی می‌باشند، کاندید مناسبی برای تولید سوخت‎زیستی هستند. این پژوهش بر این اساس طراحی گردید تا اثر شدت‌های مختلف نوری را بر میزان رشد و تجمع چربی‎ در ریزجلبک آب شیرین Chlamydomonas reinhardtii بررسی نماید. برای این منظور، ریزجلبک‌‏ها در پنج شدت نوری 50، 100، 200، 300 و 400 میکرومول فوتون بر مترمربع بر ثانیه برای مدت 20 روز کشت داده شدند. بیشترین محتوای چربی‎ 06/72±1/45 درصد و بازدهی چربی‎ 63/1±21/105 میلی‌‌گرم در لیتر در روز، طبق منحنی‌‌های رشد در ریزجلبک‌‌‌هایی به‌دست آمد که تحت شرایط نوری 300 میکرومول فوتون برمتر مربع بر ثانیه کشت داده شده بودند. میزان اسیدهای چرب اشباع با افزایش شدت نور به شکل معنی‌‌داری افزایش یافت درحالی‌که مقدار اسیدهای چرب تک غیراشباع و چند غیراشباع کاهش یافتند. متیل استر[1]، اسید پالمتیک، اسید استئاریک و اسیدآلفالینولنیک در میان اسیدهای چرب، بیشترین مقدار را در شدت ‎نوری 300 میکرومول فوتون برمتر مربع بر ثانیه نشان دادند. همچنین به منظور بررسی کیفیت سوخت‎زیستی، پارامترهایی مانند میزان صابونی‌‌شدن (SV)، ارزش یدی (IV)، عدد ستانی (CN)، درجه غیراشباع‌‌ بودن (DU)، طول زنجیره‎ اشباع (LCSF) و نقطه انسداد فیلتر (CFPP) نیز برآورد شد. یافته‌‌های این تحقیق نشان داد که شدت ‎نور می‌‌تواند بازدهی چربی‎ و خصوصیات سوخت‎زیستی به‌‌دست آمده از ریزجلبک C. reinhardtii را به عنوان یک ماده اولیه در تولید سوخت‎زیستی بهبود بخشد.   [1] FAME 2 Global warming due to the excessive use of fossil fuels, environmental pollution, and rising greenhouse gases has led researchers to develop renewable energy sources such as the sun, wind, water, and biofuels. Microalgae, which are high in fatty acids, are suitable candidates for biofuel production.This study was designed to investigate the effect of different light intensities on the growth and accumulation of lipid in freshwater microalgae Chlamydomonas reinhardtii. For this purpose, microalgae were cultured at five light intensities of 50, 100, 200, 300, and 400 µmol m-2 s-1 for 20 days. The highest lipid content was (45.72±1.06%), and the lipid yield was (105.21±1.63 mg L−1 d−1), according to the growth curves in microalgae exposed to 300 µmol m-2 s-1. The amount of saturated fatty acids increased significantly with increasing light intensity, while monounsaturated and polyunsaturated fatty acids decreased. Among the fatty acids, methyl ester, palmitic acid, stearic acid, and alpha-linolenic acid showed the highest values at a light intensity of 300 µmol m-2 s-1. To evaluate the quality of biofuels, parameters such as saponification rate (SV), iodine value (IV), Cetane number (CN), degree of unsaturation (DU), long chain saturated factors (LCSF), and cold flow plugging properties (CFPP) was also estimated. The findings of this study showed that light intensity could improve the fat efficiency and biofuel properties obtained from the microalgae C. reinhardtii as a raw material in biofuel production. 149 160 2020/08/162020/11/132020/12/92021/07/232018/10/72020/08/312021/04/272021/04/242021/02/82020/09/222021/08/82021/09/5 1400/6/14 2021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/1 1400/8/10 مرضیه رعیتی marzie rayati گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران Iran marzieh.rayati@srbiau.ac.ir هومن رجبی اسلامی Houman Rajabi Islami گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران Iran rajabi.h@srbiau.ac.ir مهدی شمسایی مهرجان Mehdi Shamsaie Mehrgan گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران Iran shamsaei.m@srbiau.ac.ir Biofuel Growth Lipid Microalgae Light intensity سوخت زیستی رشد چربی‎ ریزجلبک شدت نور ##نظرپور، م.، تقی زاده علی سرایی، ا. و تاتاری، ع. ا.، 1398. اهمیت و کاربرد جلبک در تولید سوختهای زیستی. دوازدهمین کنگره ملی مهندسی مکانیک بیوسیستم و مکانیزاسیون، ایران، اهواز،18-16بهمن ماه. https://civilica.com/doc/1005432/##وزیرزاده، ا. و مقدس زاده، ح.،1397. بهینه سازی رشد و میزان چربی و کلروفیل ریزجلبک Chlorella vulgaris در سطوح مختلف نیتروژن، فسفر و دوره نوری با استفاده از طراحی مرکب مرکزی. مجله علمی شیلات ایران، ۲۷(۳) : ۹۵-85. 10.22092/ISFJ.2018.117018##Adams, C., Godfrey, V., Wahlen, B., Seefeldt, L. and Bugbee, B., 2013. Understanding precision nitrogen stress to optimize the growth and lipid content trade off in oleaginous green microalgae. Bioresource Technology, 131:18. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2012.12.143.##Adeniyi, O. M., Azimov, U. and Burluka, A., 2018. Algae biofuel: Current status and future applications Renewable and Sustainable Energy Reviews, 90: 316– 335. https://doi.10.1016/j.rser.2018.03.067l.##Bhatia, S.C., 2014. Advanced renewable energy systems. Woodhead publishing India, New Delhi, pp. 573–626. https://doi.org/10.1016/B978-1-78242-269-3.50022-X##Bligh, E.G. and Dyer, W.J., 1959. A rapid method of total lipid extraction and purification. Canadian Journal of Biochemistry Physiology, 37:911–917. https:// doi.org/10.1139/o59-099. ##Brennan, L. and Owende, P., 2010. Biofuels from microalgae. A review of technologies for production, processing, and extractions of biofuels and co-products. Renewable and Sustainable Energy Reviews, 14: 557–77. https://doi.org/10.1016/j.rser.2009.10.009. ##Christou, M., Alexopoulou, E., Cosentino, S.L., Copani, V., Nogues, S., Sanchez, E., Monti, A.,Zegada-Lizarazu, W., Pari, L. and Scarfone, A., 2018. 4 - Giant reed: from production to end use. In: Alexopoulou E (ed) Perennial grasses for bioenergy and bioproducts. Academic press, Cambridge, pp. 107–151. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-812900-5.00004-7. ##Enamala, M.K., Enamala, S., Chavali, M., Donepudi, J., Yadavalli, R., Kolapalli, B.,Aradhyula, V.T., Velpuri, J. and Kuppam, C., 2018. A review on cultivation, harvesting,lipid extraction, and numerous applications of microalgae. Renewable and Sustainable Energy Reviews, 94: 49–68. https://doi.org/10.1016/j.rser.2018.05.012. ##Goh, B.H.H., Ong, H.C., Cheah, M.Y., Chen, W.H., Yu, K.L. and Mahlia, T.M.L., 2019. Sustainability of direct biodiesel synthesis from microalgae biomass. Renewable and Sustainable Energy Reviews, 107:59–74. https://doi.org/10.1016/j.rser.2019.02.012. ##Gopinath, A., Puhan, S. and Nagarajan, G., 2009. Theoretical modeling of iodine value and saponification value of biodiesel fuels from their fatty acid composition. Renewable Energy, 34:1806–1811. https://doi.org/10.1016/j.renene.2008.11.023. ##Griffiths, M.J. and Harrison, S.T.L., 2009. Lipid productivity as a key characteristic for choosing algal species for biodiesel production. Journal of Applied Phycology, 21:493–507. https://doi.org/10.1007/s10811-008-9392-7. ## ##Ho, S.H., Chen C.Y. and Chang J.S., 2012. Effect of light intensity and nitrogen starvation on CO2 fixation and lipid/carbohydrate production of an indigenous microalga Scenedesmus obliquus CNW-N. Bioresource Technology, 113:244–252. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2011.11.133. ##Huanyang, W., 2016. Effect of different light qualities on growth, pigment content, chlorophyll fluorescence, and antioxidant enzyme activity in the red alga Pyropia haitanensis. BioMed Research International, 2016:7383918–7383918. https://doi.org/10.1155/2016/7383918. ##Kawasaki, Y., Nakada, T. and Tomita, M., 2013. Taxonomic revision of oil-producing green algae, Chlorococcum oleofaciens and its relatives. Journal of Phycology, 51:1000-1016. https://doi.org/10.1111/jpy.12343. ##Kumar, V., Kumar, R., Rawat, D. and Nanda, M., 2018. Synergistic dynamics of light,photoperiod and chemical stimulants influences biomass and lipid productivity in Chlorella singularis (UUIND5) for biodiesel production. Applied Biological Chemistry., 61:7–13. https://doi.org/10.1007/s13765-017-0332-6. ##Kumari, P., Reddy, C.R.K. and Jha, B., 2011. Comparative evaluation and selection of a method for lipid and fatty acid extraction from macroalgae. Analytical Biochemistry, 415:134–144. https://doi.org/10.1016/j.ab.2011.04.010. ##Mofijur, M., Rasul, M.G., Hassan, N.M.S. and Nabi, M.N., 2018. Recent development in the production of third generation biodiesel from microalgae. Energy Procedia, 156:53–58. https://doi.org/10.1016/j.egypro.2018.11.088. ##Onumaegbu, C., Alaswad, A., Rodriguez, C. and Olabi, A., 2019. Modelling and optimization of wet microalgae Scenedesmus quadricauda lipid extraction using microwave pretreatment method and response surface methodology. Renewable Energy, 132:1323–1331. https://doi.org/10.1016/j.renene.2018.09.008. ##Oromí-Farrús, M., Villorbina, G., Eras, J., Gatius, F., Torres, M. and Canela, R., 2010. Determination of the iodine value of biodiesel using 1H NMR with 1,4-dioxane as an internal standard. Fuel, 89:3489–3492. https://doi.org/10.1016/j.fuel.2010.06.016. ##Rajabi, H. and Assareh, R., 2020. Enhancement effects of ferric ion concentrations on growth andlipid characteristics of fresh water microalga Chlorococcum oleofaciens KF584224.1 for biodiesel production. Renewable Energy, 149:264–272. https://doi.org/10.1016/j.renene.2019.12.067. ##Rayati, M., Rajabi, H. and Shamsaie, M., 2020. Light intensity improves growth, lipid productivity and fatty acid profile of Chlorococcum oleofaciens for biodiesel production. Bioenergy Research, 13:1235–1245. doi.org/10.1007/s12155-020-10144-5. ##Rochaix, J.D., 2011. Regulation of photosynthetic electron transport. BBA- Bioenergetics, 1807:375–383. https://doi.org/10.1016/j.bbabio.2010.11.010. ##Shin, Y.S., Jeong, J., Nguyen, T.H.T., Kim, J.Y.H., Jin, E. and Sim, S.J., 2019. Targeted knockout of phospholipase A2 to increase lipid productivity in Chlamydomonas reinhardtii for biodiesel production. Bioresource Technology, 271: 368-374. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2018.09.121. ##Sibi, G., Shetty, V. and Mokashi, K., 2016. Enhanced lipid productivity approaches in microalgae as an alternate for fossil fuels – a review. Journal of the Energy Institute, 89(3):330–334. https://doi.org/10.1016/j.joei.2015.03.008. ##Singh, S.P. and Singh, P., 2015. Effect of temperature and light on the growth of algae species. Renewable and Sustainable Energy Reviews, 50: 431–444. Doi.org/10.1016/j.rser.2015.05.024. ##Sun, X., Cao, Y., Xu, H., Liu, Y., Sun, J., Qiao, D. and Cao, Y., 2014. Effect of nitrogen-starvation, light intensity and iron on triacylglyceride/carbohydrate production and fatty acid profile of Neochloris oleoabundans HK-129 by a two-stage process .Bioresource Technology, 155:204–212. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2013.12.10. ##Tan, K.W.M. and Lee, Y.K., 2016. The dilemma for lipid productivity in green microalgae: importance of substrate provision in improving oil yield without sacrificing growth. Biotechnology for Biofuels, 9: 255–255. doi.org/10.1186/s13068-016-0671-2. ##Tao, Li., Linglin, W., Aifen, L. and Chengwu, Z., 2013. Responses in growth, lipid accumulation, and fatty acid composition of four oleaginous microalgae to different nitrogen sources and concentration. Chinese Journal of Oceanology Limnology, 31:1306–1314. doi.org/10.1007/s00343-013-2316-7. ##Wahidin, S., Idris, A. and Shaleh S.R.M., 2013. The influence of light intensity and photoperiod on the growth and lipid content of microalgae Nannochloropsis sp. Bioresource Technology, 129:7–11. https://doi: 10.1016/j.biortech.2012.11.032. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ شناسایی مولکولی خرچنگ گرد (Brachyuran: Oziinae) Epixanthus frontalis از سواحل صخره ای استان بوشهر با استفاده از روش بارکدگذاری DNA Molecular identification of Epixanthus frontalis (Brachyuran: Oziinae) from the rocky shores of Bushehr province using DNA barcode method 1 1 گونهfrontalis  Epixanthus تنها گونه از جنس  Epixanthusدر خلیج فارس است که دارای‌‌ الگوهای رنگی مختلف می‌‌باشد. ازآنجایی‌که وجود گونه‌‌های مخفی در میان سخت‌‌پوستان دریایی بسیار رایج است، هدف مطالعه حاضر شناسایی دقیق و بررسی احتمال گونه‌‌های مخفی در میان نمونه‌‌های حاضر است. به همین منظور از 4 الگوی رنگی منسوب به گونه frontalis  E. از سواحل صخره‌‌ای استان بوشهر نمونه‌‌برداری انجام شد. سپس اولین گونوپودهای جنس نر، جداسازی گردیدند و با میکروسکوپ الکترونی نگاره (SEM) مورد عکس‌‌برداری قرار گرفتند. جهت مطالعات مولکولی، DNA نمونه‌‌ها با استفاده از روش تغییر یافته فنل-کلروفروم استخراج و قطعه ژنی زیر واحد یک سیتوکروم اکسیداز میتوکندری (COI) تکثیر و توالی‌یابی شد. نتایج مطالعه حاضر نشان داد، توالی نوکلئوتیدی این قطعه ژنی میتوکندریایی (COI)، در تمام مورفوتایپ‌‌های رنگی بر هم منطبق نیستند و این نتایج در توپولوژی درختان تکاملی برای هر دو آنالیز (Maximum likelihood, Bayesian) منعکس شد. مطالعه فراساختار قسمت راسی اولین گونوپود جنس نر نیز نشان داد، تفاوت‌‌هایی اساسی در قسمت راسی این اندام در برخی مورفوتایپ‌‌های رنگی دیده می‌‌شود. بررسی حاصل نشان داد، با وجود اینکه نمونه‌‌های مورد مطالعه از نظر خصوصیات ریخت‌‌شناسی به عنوان یک گونه شناسایی شده‌‌اند، ممکن است متعلق به گونه‌‌های جداگانه باشند که این فرآیند مستلزم بررسی‌‌های بیشتر با سایر نشانگرهای مولکولی می‌‌باشد. 2 Epixanthus frontalis is the only known species of the genus Epixanthus from the Persian Gulf which include color polymorphic specimens. Considering that cryptic species are common among crustaceans, the aim of this study was to identify the cryptic species complexes the collected samples from the Persian Gulf. For this purpose, 4 colorful morphotypes of E. frontalis collected from rocky shores along Bushehr province. Then the first male gonopods was separated and photographed by scanning electron microscopy (SEM). For molecular studies samples of DNA extracted by using phenol-chloroform and mitochondrial cytochrome oxidase subunit gene segment (COI) was PCR and sequenced. The results showed that the nucleotide sequence of this gene fragment of the mitochondrial (COI) is not identical in all colorful morphotypes. These results reflected in the evolution of tree topology for all two analyses (maximum likelihood, bayesian). The study of apical ultrastructure segments of the first male species showed that it can be seen fundamental differences in the apical organs in some colorful morphotypes. Results of this study indicated that although the specimens assigned to single species morphologically, they may belong to different species based on their genotype. Further molecular studies with specific markers are needed for molecular identifications.        161 171 2020/08/162020/11/132020/12/92021/07/232018/10/72020/08/312021/04/272021/04/242021/02/82020/09/222021/08/82021/09/52020/04/12 1399/1/24 2021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/12021/11/1 1400/8/10 فریده چناری Farideh Chenari دانشگاه علوم دریایی خرمشهر Iran chenari_bio@yahoo.com محمدباقر نبوی Seyyed Mohammad Bagher Nabavi شگاه علوم دریایی خرمشهر Iran nabavishiba31@gmail.com سیامک یوسفی سیاهکلرودی Siamak Yousefi siahkalroudi دانشگاه آزاد ورامین-پیشوا Iran Siamak.yousefi1@gmail.com محمدعلی سالاری Mohammad ali Salari شگاه علوم دریایی خرمشهر Iran salari@kmsu.ac.ir احمد سواری Ahmad Savari شگاه علوم دریایی خرمشهر Iran savari53@yahoo.com حسین ذوالقرنین Hossein Zolgharnein شگاه علوم دریایی خرمشهر Iran zolgharnein@kmsu.ac.ir COI Ultrastructure Gonopod Persian Gulf سیتوکروم اکسیداز میتوکندری فراساختار گونوپود خلیج فارس ##ایزدیان، م.، ذوالقرنین، ح.، نبوی، س.م.ب.، اشجع اردلان، آ. و یوسفی سیاه کلرودی، س.، 1395. شناسایی مولکولی و فیلوژنی گونه های جنس Nerita در سواحل صخره ای شمال خلیج فارس. مجله علمی شیلات ایران.25: 183-171.##عطاران فریمان، گ.، و موسوی پور، ی.، 1392. اولین بررسی فیلوژنتیکی گونهGoniobranchus annulatus (Mollusca :Nudibranchia در آب‌‌های ناحیه زیر جزر و مدی خلیج چابهار براساس توالی ژن سیتوکروم اکسیدازC زیر واحد I . مجله علمی شیلات ایران. 22: 86-77. ## ##Abele, L.G., 1971. Scanning electron photomicrographs of brachyuran gonopods. Crustaceana, 21:217-219.DOI: https://www.jstor.org/stable/20101832.##Apel, M., 2001. Taxonomie und Zoogeographie der Brachyura, Paguridea und Porcellanidae (Crustacea: Decapoda) des Persisch-Arabischen Golfes. Unpublished doctoral thesis, Johann Wolfgang Goethe-Universität, Frankfurt a. M., 268 P.##Bauer, R.T., 1986. Phylogenetic trends in sperm transfer and storage complexity in decapod crustaceans. Journal of Crustacean Biology, 6:313–325. DOI:10.1163/193724086X00181.##Bedini, R., 2002. Colour change and mimicry from juvenile to adult: Xantho poressa (Olivi, 1792) (Brachyura, Xanthidae) and Carcinus maenas (Linnaeus, 1758) (Brachyura, Portunidae).Crustaceana, 75:703–710. DOI: 10.1163/156854002760202688.##Costa, F.O. and Carvalho, GR., 2007.The Barcode of Life Initiative: synopsis and prospective societal impacts of DNA barcoding of Fish. Genomics, Society and Policy, 3:52–56.##Dayrat, B., 2005. Towards integrative taxonomy. Biological Journal of the Linnean Society, 85: 407-415. DOI:10.1111/j.1095-8312.2005.00503.x.##Folmer, O., Black, M., Hoeh, W., Lutz, R. and Vrijenhoek, R., 1994. DNA primers for amplification of mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates. Molecular Marine Biology and Biotechnology, 3: 294–299.##Gibbs, J., 2009. Integrative taxonomy identifies new (and old) species in the Lasioglossum (Dialictus) tegulare (Robertson) species group (Hymenoptera, Halictidae). Zootaxa, 2032: 1-38. DOI: 10.5281/zenodo.186301.##Harrison, J.S., 2004. Evolution, biogeography, and the utility of mitochondrial 16s and COI genes in phylogenetic analysis of the crab genus Austinixa (Decapoda: Pinnotheridae). Molecular Phylogenetics and Evolution, 30: 743–754. DOI:10.1016/S1055-7903(03)00250-1.##Hebert, P.D.N., Cywinska, A., Ball, S.L. and deWaard, J.R., 2003. Biological identifications throught DNAbarcodes. Proceedings of the Royal Society, 270: 313–321. DOI:10.1098/rspb.2002.2218##Heller, C., 1861. Beiträge zur Crustaceen-Fauna des Rothen Meeres. I. Theil. Sitzungsberichte der mathematisch-naturwissenschaftlichen Klasse der kaiserlichen Akademie der Wissenschaften Wien, 43: 297–374.##Hogarth, P.J., 1978. Variation in carapace pattern of juvenile. Carcinus maenas. Marine Biology, 44: 337–343.##Klaus, S., Schubart, C.D. and Brandis, D., 2006. Phylogeny, biogeography and a new taxonomy for the Gecarcinucoidea Rathbun, 1904 (Decapoda: Brachyura). Organisms Diversity & Evolution, 6: 199-217. DOI: 10.1016/j.ode.2005.09.006.##Knowlton, N., 1993. Sibling species in the sea. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics, 24:189-216.##Lefe´bure, T., Douady, C.J., Gouy, M. and Gibert, J., 2006. Relationship betwee morphological taxonomy and molecular divergence within Crustacea: Proposal of a molecular threshold to help species delimitation. Molecular Phylogenetics and Evolution, 40:435–447. DOI: 10.1016/j.ympev.2006.03.014.##Moyano, M.P.S., Gavio, M.A. and Cuartas, E.I., 2011. Copulatory system of the spider crab Libinia spinosa (Crustacea: Brachyura: Majoidea). Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom, 91:1617-1625. DOI:10.1017/S0025315411000257.##Naderloo, R. and Sari, A., 2007. Subtidal crabs of the Iranian coast of the Persian Gulf: New collections and biogeographic considerations. Aquatic Ecosystem Health, Management, 10: 341-349.DOI: https://DOI.org/10.1080/14634980701514620.##Naderloo, R. and Schubart, C.D., 2010. Description of a new species of Parasesarma (Crustacea; Decapoda;Brachyura; Sesarmidae) from the Persian Gulf, based on morphological and genetic characteristics. Zoologischer Anzeiger, 249:33–43. DOI: https://DOI.org/10.1016/j.jcz.2010.01.003##Naderloo, R., 2011. Grapsoid crabs (Decapoda: Brachyura: Thoracotremata) of the Persian Gulf and the Gulf of Oman. Zootaxa, 3048:1-43. DOI:10.11646/zootaxa.3048.1.1##Ng, P.K.L., Guinot, D. and Davie, P.J.F., 2008. Systema Brachyurorum: Part I. An annotated checklist of extant brachyuran crabs of the world. Raffles Bulletin of Zoology. Supplement, 17:1–286.##Palma, A.T., Orrego, C. and Arriagada, M., 2003. Crypsis in early benthic phases of brachyuran Decapod crustaceans in central Chile. Revista Chilena de Historia Natural, 76:149-156. DOI:10.4067/S0716-078X2003000200002.##Pessani, D. and Tirelli, T., 2006. Chromatic patterns of the hermit crab Calcinus tubularis related to the occupied shell. Hydrobiologia, 557: 107-112. DOI:10.1007/1-4020-4756-8_13.##Ponchunchoovong, S., 2006. Spices identification of Thai-filed crab in the lower north-eastern region of Thailand. Suranaree Journal of Science and Technology, 13(3):245-249.##Radulovici, A., Archambault, P. and Dufresne, F., 2010. DNA Barcodes for marine Biodiversity: Moving Fast Forward. Journal Diversity, 2: 450-472. DOI: 10.3390/d2040450.##Ronquist, F. and Huelsenbeck, J.P., 2003. MrBayes 3: Bayesian phylogenetic inference under mixed models. Bioinformatics, 19: 1572–1574. DOI:10.1093/bioinformatics/btg180.##Stephenson, W., 1961. Scientific results of marine investigations of the South China Sea and the Gulf of Thailand. Naga report, Scripps institution of oceanography, 38p. ID: (OCoLC) 421639432##Tamura, K., Stecher, G., Peterson, D., Filipski, A. and Kumar, S., 2013. MEGA6: Molecular Evolutionary Genetics Analysis. Version 6.0. DOI:10.1093/molbev/msw054.##Yamindago, A., Senanan, W. and Tangkrock-Olan, N., 2013. Verification on Morphological Identification of Grapsid Crabs Genus Metopograpsus H. Milne Edwards, 1853 from Chon Buri Province Using Partial Sequences of Mitochondrial 16S rRNA, 12S rRNA and Cytochrome c Oxidase Subunit I (COI) Genes. Burapha Science Journal, 1:181-193. DOI: https://DOI.org/10.1071/IS17034 ##