1400 30 5 127 173

مقاله علمی – پژوهشی:‌ کیفیت آب و عملکرد ایمنی ماهیان انگشت‌قد تیلاپیای نیل (Oreochromis niloticus) تحت تاثیر زمان‌های مختلف افزودن کربوهیدرات در سیستم تعویض آب محدود Water quality and immune function of Nile tilapia (Oreochromis niloticus( fingerlings under the influence of different times of carbohydrate addition in a limited water exchange system 1 1 در مطالعه حاضر تاثیر زمان‌های مختلف افزودن کربن آلی ملاس بر کیفیت آب و عملکرد ایمنی موکوس ماهی تیلاپیای نیل (Oreochromis niloticus) در سیستم بیوفلاک با تعویض آب محدود بررسی شد. ماهیان تیلاپیای نیل با میانگین وزن 53/1 گرم در تانک های فایبرگلاس (مقطع دایره‌ای) با حجم 130 لیتر آب با تراکم یک قطعه در لیتر به مدت 37 روز پرورش داده شدند. پنج تیمار آزمایشی شامل یک تیمار شاهد (فاقد بیوفلاک) بدون افزودن ماده کربن دار و چهار تیمار بیوفلاک با افزودن ملاس به صورت روزانه (بیوفلاک 1)، دو روز یک بار (بیوفلاک 2)، سه روز یک بار (بیوفلاک 3) و چهار روز یک بار (بیوفلاک 4) در نظر گرفته شدند. به تیمارهای بیوفلاک 5/2 میلی لیتر بر لیتر توده میکروبی به عنوان استارتر اضافه گردید. همچنین از ماده کربن‌دار ملاس جهت تنظیم نسبت کربن به نیتروژن به میزان 65 درصد خوراک ورودی استفاده گردید. طبق نتایج کیفیت آب در تیمارهای بیوفلاک بهبود نشان داد به‌طوری‌که کمترین میزان نیتروژن آمونیاکی کل (23/0 میلی گرم در لیتر)، بیشترین میزان نیترات (5/25 میلی گرم در لیتر) و بیشترین تراکم باکتری های هتروتروف در تیمار بیوفلاک 1 (افزودن ملاس روزانه) به‌دست آمد که اختلاف معنی‌داری با سایر تیمارها نشان داد (05/0>p). نتایج عملکرد ایمنی موکوس ماهی تیلاپیا کمترین میزان ایمنوگلوبولین کل (66/43 میلی گرم بر 100 میلی‌لیتر) و فعالیت لیزوزیم (u/ml/min 33/17) در تیمار شاهد (فاقد بیوفلاک) مشاهده شد (05/0>p). به طور کلی، مطالعه حاضر نشان داد که کیفیت آب در سیستم بیوفلاک با افزودن ملاس به صورت روزانه بهتر می باشد و نیز عملکرد ایمنی موکوس ماهی تیلاپیای نیل در سیستم‌های بیوفلاک نسبت به سیستم معمولی بدون توده میکروبی فعال‌تر است (05/0>p). 2 In current study, the effect of different times of molasses addition on water quality and immune performance of Nile tilapia (Oreochromis niloticus( mucus in biofloc system with limited water exchange was investigated. Nile tilapia with an average weight of 1.53 g was cultured in fiberglass tanks (circular cross section) with a volume of 130 liters of water at a density of one fish per liter for 37 days. Five experimental groups were considered including a control (without biofloc) group without carbonaceous substance addition and four biofloc treatments with molasses added daily (biofloc 1), once every two days (biofloc 2), once every three days (biofloc 3) and once every four days (biofloc 4). 2.5 ml/l microbial mass was added as a starter to biofloc treatments. Also, molasses carbonaceous material (65% of the input feed) was used to adjust the carbon to nitrogen ratio. According to the results, water quality in biofloc treatments showed that the lowest amount of total ammonia nitrogen (0.23 mg/l) and the highest amount of nitrate (25.5 mg/l) were obtained in biofloc 1 treatment (daily molasses addition), that showed a significant difference with other treatments (p<0.05). Based on the results of immune function of tilapia mucus, the lowest amount of total immunoglobulin (43.66 mg/100 ml) and lysozyme activity (17.33 ml/min) were observed in the control (without biofloc) group (p<0.05). Generally, the current research showed that the water quality in the biofloc system is improved with the addition of molasses on a daily basis and also the immune function of Nile tilapia mucus in biofloc system is more active than the normal system without microbial floc. 1 12 2020/10/29 1399/8/8 2021/02/22 1399/12/4 محمدحسین خانجانی Mohammad Hossein Khanjani دانشگاه جیرفت Iran m.h.khanjani@gmail.com مرتضی علیزاده Morteza Alizadehe موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran m.h.khanjani@ujiroft.ac.ir محمد محمدی Mohammad Mohammedi مرکز تحقیقات ملی آبزیان آبهای شور Iran khanjanimohammad1364@yahoo.com حبیب سرسنگی علی آباد مرکز تحقیقات ملی آبزیان آبهای شور Iran khanjani.phd@hormozgan.ac.ir Water quality Immunity Nile tilapia Biofloc Molasses کیفیت آب ایمنی تیلاپیای نیل بیوفلاک ملاس ##خانجانی، م. ح.، سجادی، م. م.، علیزاده، م. و سوری نژاد، ا.، 1394. تاثیر نسبتهای مختلف غذادهی برکیفیت آب، عملکرد رشد و بقاء پست لاروهای میگوی سفید غربی(Litopenaeus vannamei Boone, 1931) با استفاده از تکنولوژی بیوفلاک. مجله علمی شیلات ایران، 24(2): 28-13.##خانجانی، م. ح.، سجادی، م. م.، علیزاده، م. و سوری نژاد، ا.، 1398. تغذیه میگوی سفید غربی (Penaeus vannamei Boone1931)) با بیومس تودههای زیستی (biofloc) و اثر آن بر کیفیت آب و عملکرد رشد. نشریه علمی توسعه آبزی پروری، 13(4): 67-55.##خانجانی، م. ح.، 1398. تأثیر سطوح مختلف شوری و منابع کربن در سیستم تولید توده زیستی (Biofloc). مجله علمی شیلات ایران، 28(4): 79-69. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.119415##Ahmad, I., Verma, A.K., Babitha Rani, A.M., Rathore, G., Saharan, N. and Gora, A.H., 2016. Growth, non-specific immunity and disease resistance of Labeo rohita against Aeromonas hydrophila in biofloc systems using different carbon sources. Aquaculture, 457: 61-67. DOI:10.1016/j.aquaculture.2016.02.011.##Alves, G.F.O., Fernandes, A.F.A., Alvarenga, E.R., Turra, E.M., Sousa, A.B. and Teixeira, E.A., 2017. Effect of the transfer at different moments of juvenile Nile tilapia (Oreochromis niloticus) to the biofloc system in formation. Aquaculture, 479: 564–570. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2017.06.029##Anand, P., Kumar, S., Kohli, M., Sundaray, J., Sinha, A. and Pailan, G., 2017. Dietary biofloc supplementation in black tiger shrimp, Penaeus monodon: effects on immunity, antioxidant and metabolic enzyme activities. Aquaculture Research, 48: 4512–4523. DOI:10.1111/are.13276.##APHA., 2012. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater ## (22nd ed.). American Public Health Association, Washington, DC, USA. ##Asaduzzaman, M., Wahab, M., Verdegem, M., Huque, S., Salam, M. and Azim, M., 2008. C/N ratio control and substrate addition for periphyton development jointly enhance freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii production in ponds. Aquaculture, 280: 117–123. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2008.04.019##Avnimelech, Y., 2011. Tilapia production using biofloc technology (BFT). Proc 9th Int Symp on Tilapia in Aquaculture; Liping L & Fitzsimmons K (eds.). pp: 362- 366. AquaFish Collaborative Research Support Program, Shanghai.##Avnimelech, Y., 2012. Biofloc technology: a practical guide book, 2nd Edition. The World Aquaculture Society, Baton Rouge, Louisiana, United States. 272 P.##Bakhshi, F., Najdegerami, E.H., Manaffar, R., Tokmechi, A., Farah, K.R. and Jalali, A.S., 2018. Growth performance, haematology, antioxidant status, immune response and histology of common carp (Cyprinus carpio L.) fed biofloc grown on different carbon sources. Aquaculture Research, 49: 393–403. DOI:10.1111/are.13469##Cavalcante, D., Lima, F., Reboucas., V. and Sa, M., 2016. Association between periphyton and bioflocs systems in intensive culture of juvenile Nile tilapia. Acta Scientiarum. Animal Sciences, 38: 119–125. DOI: 10.4025/actascianimsci.v38i2.27592##Crab, R., Defoirdt, T., Bossier, P. and Verstraete, W., 2012. Biofloc technology in aquaculture: beneficial effects and future challenges. Aquaculture, 356-357: 351–356. DOI:10.1016/j.aquaculture.2012.04.046 ##Cuesta, A., Meseguer, J. and Esteban, M.A. 2004. Total serum immunoglobulin M levels are affected by immunomodulators in seabream (Sparus aurata L.). Veterinary Immunology and Immunopathology, 101: 203-210.##Dauda, A.B., 2020. Biofloc technology: a review on the microbial interactions, operational parameters and implications to disease and health management of cultured aquatic animals. Reviwes in Aquaculture, 12(2): 1193-1210. DOI:10.1111/raq.12379.##Ekasari, J., Crab, R., Verstraete, R., 2010. Primary nutritional content of Bio-Flocs cultured with different organic carbon sources and salinity. HAYATI Journal of Biosciences, 17: 125–130. DOI:10.4308/hjb.17.3.125##El-Sayed, E.M., 2006. Tilapia Culture. CABI Publishing, Cambridge Massachusetts USA275 p.##Jenabi Haghparast, R., Moghanlou, K.S., Mohseni, M. and Imani, A., 2019. Effect of dietary soybean lecithin on fish performance, hemato-immunological parameters, lipid biochemistry, antioxidant status, digestive enzymes activity and intestinal histomorphometry of pre-spawning Caspian brown trout (Salmo trutta caspius). Fish and Shellfish Immunology, 91: 50-57. DOI:10.1016/j.fsi.2019.05.022##Khanjani, M.H. and Sharifinia, M., 2020. Biofloc technology as a promising tool to improve aquaculture production. Reviwes in Aquaculture. 12(3): 1836-1850. DOI: 10.1111/RAQ.12412.##Khanjani, M.H., Alizadeh, M. and Sharifinia, M., 2020a. Rearing of the Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei in a biofloc system: The effects of different food sources and salinity levels. Aquaculture Nutrition, 26: 328–337. DOI:10.1111/anu.12994##Khanjani, M.H., Sharifinia, M. and Hajirezaee, S., 2020b. Effects of different salinity levels on water quality, growth performance and body composition of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei Boone, 1931) cultured in a zero water exchange heterotrophic system. Annals of Animal Science, 20(4): 1-16. DOI: 10.2478/aoas.2020-0036##Khanjani, M.H, Alizadeh, M. and Sharifinia, M., 2021a. Effects of different carbon sources on water quality, biofloc quality, and growth performance of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) fingerlings in a heterotrophic culture system. Aquaculture International, 29: 307-321. DOI:10.1007/s10499-020-00627-9.##Khanjani, M.H., Alizadeh, M., Mohammadi, M. and Sarsangi Aliabad, H., 2021b. Biofloc system applied to Nile tilapia (Oreochromis niloticus) farming using different carbon sources: growth performance, carcass analysis, digestive and hepatic enzyme activity. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 20(2): 490-513. DOI: 10.22092/ijfs.2021.123383.##Liu, G., Ye, Z., Liu, D., Zhao, J., Sivaramasamy, E., Deng, Y. and Zhu, S., 2018. Influence of stocking density on growth, digestive enzyme activities, immune responses, antioxidant of Oreochromis niloticus fingerlings in biofloc systems. Fish and Shellfish Immunology, 81: 416-422. ## DOI: 10.1016/j.fsi.2018.07.047.##Long, L., Yang, J., Li, Y., Guan, C. and Wu, F. 2015. Effect of biofloc technology on growth, digestive enzyme activity, hematology, and immune response of genetically improved farmed tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture, 448: 135–141. DOI:10.1016/j.aquaculture.2015.05.017##Luo, G., Zhang, N., Cai, S., Tan, H. and Liu, Z., 2017. Nitrogen dynamics, bacterial community composition and biofloc quality in biofloc- based systems cultured Oreochromis niloticus with polyb- hydroxybutyric and polycaprolactone as external carbohydrates. Aquaculture, 479: 732–741. DOI:10.1016/j.aquaculture.2017.07.017##Mansour, A.T. and Esteban, M.Á., 2017. Effects of carbon sources and plant protein levels in a biofloc system on growth performance, and the immune and antioxidant status of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Fish and shellfish immunology, 64: 202-209. DOI: 10.1016/j.fsi.2017.03.025.##Menaga, M., Felixb, S., Charulatha, M., Gopalakannana, A. and Panigrahic, A., 2019. Effect of in-situ and ex-situ biofloc on immune response of Genetically Improved Farmed Tilapia. Fish Shellfish Immunology, 92: 698–705. DOI:10.1016/j.fsi.2019.06.031.##Mohammadi, M., Imani, A., Farhangi, M., Gharaei, A. and Hafezieh, M., 2020. Replacement of fishmeal with processed canola meal in diets for juvenile Nile tilapia (Oreochromis niloticus): Growth performance, mucosal innate immunity, hepatic oxidative status, liver and intestine histology. Aquaculture, 518: 734-824. DOI:10.1016/j.aquaculture.2019.734824.##Qiao, G., Chen, P., Sun, Q., Zhang, M., Zhang, J., Li, Z. and Li, Q., 2020. Poly-β- hydroxybutyrate (PHB) in bioflocs alters intestinal microbial community structure, immune-related gene expression and early Cyprinid herpesvirus 2 replication in gibel carp (Carassius auratus gibelio). Fish and Shellfish Immunology, 97, 72–82. DOI:10.1016/j.fsi.2019.12.045##Ross, N.W., Firth, K.J., Wang, A., Burka, J.F. and Johnson, S.C., 2000. Changes in hydrolytic enzyme activities of naive Atlantic salmon (Salmo salar) skin mucus due to infection with the salmon louse (Lepeophtheirus salmonis) and cortisol implantation. Diseases of Aquatic Organisms, 41(1): 43-51. DOI:10.3354/dao041043.##Salinas, I., Zhang, Y.A. and Sunyer, J.O., 2011. Mucosal immunoglobulins and B cells of teleost fish. Developmental and Comparative Immunology, 35(12): 1346-1365. DOI: 10.1016/j.dci.2011.11.009##Subramanian, S., MacKinnon, Sh. L. and Ross, N.W., 2007. A comparative study on innate immune parameters in the epidermal mucus of various fish species. Comparative Biochemistry and Physiology, 148(3): 256-263. DOI:10.1016/j.cbpb.2007.06.003##Van Doan, H., Hoseinifar, S.H., Hung, T.Q., Lumsangkul, C., Jaturasitha, S., Ehab El- Haroun and Paolucci, M., 2020. Dietary inclusion of chestnut (Castanea sativa) polyphenols to Nile tilapia reared in biofloc technology: Impacts on growth, immunity, and disease resistance against Streptococcus agalactiae. Fish and Shellfish Immunology, 105: 319–326. DOI:10.1016/j.fsi.2020.07.010##Verster, N., 2017. Comparison of growth rates of tilapia species (Oreochromis mossambicus and Oreochromis niloticus) Raised in a Biofloc and a standard recirculating aquaculture (RAS) system. Thesis Master of Science in Aquaculture. Ghent University Belgium.##Zhu, L.Y., Nie, L., Zhu, G., Xiang, L.X. and Shao, J.Z., 2013. Advances in research of fish immune-relevant genes: a comparative overview of innate and adaptive immunity in teleosts. Developmental and Comparative Immunology, 39(1-2): 39-62. DOI:10.1016/j.dci.2012.04.001. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ اثر آرتمیا Artemia urmiana غنی شده با ریزجلبک کیتوسروس (Chaetoceros sp.) بر ترکیب اسیدهای چرب و وضعیت آنتی‌اکسیدانی میگوی پاسفید غربی (Litopenaeus vannamei) Effect of enriched Artemia urmiana with Chaetoceros sp. microalgae on fatty acid composition and antioxidant status of Litopenaeus vannamei 1 1 تحقیق حاضر، به‌‌منظور بررسی اثر آرتمیا Artemia urmiana غنی شده با ریزجلبک کیتوسروس (Chaetoceros sp.) بر ترکیب اسیدهای چرب و وضعیت آنتی‌اکسیدانی میگوی پاسفید غربی  (Litopenaeus vannamei) به مدت دو ماه صورت گرفت. در این مطالعه، تعداد 3000 پست لارو میگو با میانگین وزنی  03/0± 36/0 گرم در یک طرح کاملا تصادفی با چهار تیمار آزمایشی و سه تکرار ( با تعداد 250 قطعه در هر تکرار) که شامل تیمار آزمایشی شاهد (تغذیه شده با ناپلیوس آرتمیای غنی نشده) و تیمارهای آزمایشی 2، 3، 4 که به‌ترتیب با ناپلیوس آرتمیای غنی شده با ریز جلبک کیتوسروس با تراکم 104× 442، 104× 348 و 104× 120 سلول در هر میلی‌‌لیتر تغذیه شده‌اند، مورد استفاده قرار گرفتند. بر اساس نتایج حاصله، در پایان آزمایش، بیشترین میزان ایکوزاپنتانوییک اسید (35/0±95/6 درصد) و دوکوزاهگزانوئیک اسید (07/1±91/7 درصد)، آراشیدونیک اسید (02/1±28/6 درصد)، گاما لینولنیک اسید (12/0±87/0 درصد) و استئاریک اسید (15/0±75/9 درصد) در تیمار 4 مشاهده شد. همچنین بیشترین میزان سوپراکسید دیسموتاز (18/2±12/26 واحد بر میلی‌‌لیتر)، گلوتاتیون پراکسیداز (80/4±10/83 واحد بر میلی‌‌لیتر) و کاتالاز (12/0±38/5 واحد بر میلی‌‌لیتر) در تیمار4 گزارش شد و اختلاف معنی‌‌داری با سایر تیمارها نشان داد (05/0>p). در کل، نتایج این تحقیق نشان داد که تیمارهای تغذیه شده با ناپلیوس آرتمیا غنی شده با تراکم مختلف ریزجلبک کیتوسروس، ترکیب اسید‌‌های چرب و وضعیت آنتی اکسیدانی بهتری را در مقایسه با شاهد نشان دادند و استفاده از ناپلیوس آرتمیای غنی شده با تراکم 104× 120 سلول در هر میلی‌‌لیتر ریزجلبک کیتوسروس در جیره غذایی پست لارو میگو توصیه می‌‌گردد. 2 The present study was conducted to evaluate the effect of enriched Artemia urmiana with Chaetoceros sp. microalgae on fatty acid composition and antioxidant status of Litopenaeus vannamei for two months. This study was conducted in a completely randomized design with 3000 post- larvae of shrimp (with an average weight of 0.36±0.03 g) in four treatments and three replicates (n=250 in each replicate), including a control group fed with un-enriched Artemia nauplius, other groups (treatment 2, 3, and 4) fed with Artemia nauplius enriched with Chaetoceros sp. microalgae with 442×104, 348×104 and 120×104 cell/mL densities respectively. The results showed that at the end of the experiment, the highest EPA (6.95± 0.35%) and DHA (7.91±1.07 %), arachidonic acid (AA; 6.28± 1.02%), gamma-Linolenic acid (0.87±0.12 %) and stearic acid (9.75±0.15 %) was showed in treatment 4. Also, the highest, superoxide dismutase (SOD, 26.12±2.18 Unit/mL), glutathione Peroxidase (GPx, 83.10±4.80 Unit/ mL), and catalase (CAT, 5.38±0.12 Unit/mL) shown in treatment 4 which showed significant difference compared to other treatments (P<0.05). Overall, the results of this study showed that treatments fed with enriched Artemia nauplius with different densities of Chaetoceros sp. microalgae showed better fatty acid composition and antioxidant status compared to those of the control. And the use of enriched Artemia nauplius with a density 120× 104 cell/mL of Chaetoceros sp. microalgae are recommended in Litopenaeus vanname post larvae. 13 23 2020/10/292021/06/6 1400/3/16 2021/02/222021/12/1 1400/9/10 شه پری ریگی گونک Shah Pari Rigi Gonk دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار Iran pariaakbary1355@gmail.com پریا اکبری Paria Akbary دانشگاه دریانوردی و علوم دریااریی چابه Iran paria.akbary@gmail.com Artemia nauplius Fatty acid composition Antioxidant status Chaetoceros sp. microalgae Litopenaeus vannamei ناپلیوس آرتمیا ترکیب اسید چرب وضعیت آنتی اکسیدانی ریزجلبک کیتوسروس میگوی پاسفید غربی ##اکبری، پ.، امینی خویی، ز. و عرفانی فر، ا.، 1399. اثر ریزجلبک Aphanothece halophytica بر ترکیب اسید‌‌های چرب و اسید‌‌های آمینه ناپلیوس آرتمیا اورمیانا (Artemia urmiana). مجله علمی شیلات ایران. ۲۹ (۵):۲۷-۳۶.DOI: .10.22092/ISFJ.2021.123192##خورشیدی، د.، کامرانی، ا.، سالارزاده، ع.، دشتیان نسب، ع.، نفیسی بهابادی، م.، خورشیدیان، ک. و موحد، ع.، 1393. اثرات غنی سازی آرتمیا با عصاره جلبک دریایی پادینا (Padina sp.. ) بر بقاء و رشد پست لارو میگوی سفید غربی (Litopenaeus vannamei). مجله بهره برداری و پرورش آبزیان، 3(2): 46-33.##عشقی، ش.ن.، نوری، ف.، ایمانی، ا. و آق، ن.، 1395. اثرات جایگزینی جلبک دونالیلا Dunaliella salina با سبوس گندم و برنج و پروبیوتیک Lactobacillus rhamnosus بر شاخص‌‌های رشد، تجزیه تقریبی بدن و ترکیب اسیدهای چرب A franciscana. مجله علمی شیلات ایران، 26(1): 214-207.##مناف فر، ر.، 1380. غنی سازی ناپلئوس Artemia urmiana با امولسیون اسیدهای چرب و جلبک دونالیلا و بررسی متابولیسم HUFA تحت انکوباسیون سرد. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه تربیت مدرس. 345 صفحه.##Akbary, P. and Aminikhoei, Z., 2018. Effect of polysaccharides extracts of algae Ulva rigida on growth, antioxidant, immune response and resistance of shrimp, Litopenaeus vannamei against Photobacterium damselae. Aquaculture Research, 49(7): 2503-2510. DOI: org/10.1111/are.13710.##Andersen, R.A., 2005. Algal culturing techniques. (Ed.). Elsevier. Academic Press, USA, 596 P. 2005.##AOAC, 2000. Official Methods of Analysis. 17th Edition, the Association of Official Analytical Chemists, Gaithersburg, MD, USA. Methods 985.29, 991.43. DOI: org/10.1016/j.aquaculture.2004.09.015.##Assunção, M.F.G., Amaral, R., Martins, C.B., Ferreira, J.D., Ressurreição, S., Santos, S.D. and Santos, L.M.A., 2017. Screening microalgae as potential sources of antioxidants. Journal of Applied Phycology, 29: 865-877. DOI:10.1007/s10811-016-0980-7.##Banerjee, S., Hew, W.E., Khatoon, H., Shariff, M. and Yusoff, F.M., 2011. Growth and proximate composition of tropical marine Chaetoceros calcitrans and Nannochloropsis oculata cultured outdoors and under laboratory conditions. African Journal of Biotechnology, 10(8): 1375-1383. DOI: 10.5897/AJB10.1748.##Bengtson, D.A., Léger, P. and Sorgeloos, P., 1991. Use of Artemia as a food source for aquaculture. Artemia Biology, 11: 255-285. DOI:10.1201/9781351069892-11.##Chakraborty, R.D., Chakraborty, K. and Radhakrishnan, E.V., 2007. Variation in fatty acid composition of Artemia salina nauplii enriched with microalgae and baker's yeast for use in larviculture. Journal of agricultural and food chemistry, 55(10): 4043-4051. DOI: org/10.1021/jf063654l.##Chen, J.C., Lin, M.N., Ting, Y.Y. and Lin, J.N., 1995. Survival, haemolymph osmolality and tissue water of Penaeus chinensis juveniles acclimated to different salinities and temperature levels. Comparative Biochemistry and Physiology, ## 110:253- 258. DOI: org/10.1016/0300-9629(94)00164-O.##Dazy, M., Jung, V., Férard, J. F. and Masfaraud, J.F., 2008. Ecological recovery of vegetation on a coke-factory soil: role of plant antioxidant enzymes and possible implications in site restoration. Chemosphere, 74(1): 57-63. DOI: org/10.1016/j.chemosphere.2008.09.014.##Ghaeni, M., Matinfar, A., Soltani, M., Rabbani, M. and Vosoughi, A., 2011. Comparative effects of pure spirulina powder and other diets on larval growth and survival of green tiger shrimp, Penaeus semisulcatus. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 10(2): 208-217. ##Henderson, R.J., 1996. Fatty acid metabolism in freshwater fish with particular reference to polyunsaturated fatty acids. Archive Animal Nutrition, 49(1), 5-22. DOI:org/10.1080/17450399609381859.##Herawati, V.E., Hutabarat, J. and Radjasa, O.K., 2014. Nutritional Content of Artemia sp. Fed with Chaetoceros calcitrans and Skeletonema costatum. Journal of Biosciences, 21(4):166-172. DOI: 10.4308/hjb.21.4.166.##Hrytsyniak, I., Smolyaninov, K., Yanovich, D., Vudmaska, I. and Yanovich, V., 2009. The biological role of n-3 polyunsaturated fatty acids and the peculiarities of their metabolism in freshwater fish. Fishery Science of Ukraine, 1: 83-87. ##Jaseera, K.V., Sanal, E., Sayooj, P., Anusree, V.N. and Kaladharan, P., 2021. Dietary supplementation of microalgae, Aurantiochytrium sp. and co-feeding with Artemia enhances the growth, stress tolerance and survival in Penaeus monodon (Fabricius, 1798) post larvae. Aquaculture, 533: 736176. DOI:org/10.1016/j.aquaculture.2020.736176.## Ju, Z.Y., Forster, I.P. and Dominy, W.G., 2009. Effects of supplementing two species of marine algae or their fractions to a formulated diet on growth, survival and composition of shrimp (Litopenaeus vannamei). Aquaculture, 292(3-4): 237-243. ##Khairy, H.M. and El-Sayed, H.S., 2012. Effect of enriched Brachionus plicatilis and Artemia salina nauplii by microalga Tetraselmis chuii (Bütcher) grown on four different culture media on the growth and survival of Sparus aurata larvae. African Journal of Biotechnology, 11(2): 399-415. DOI:10.5897/AJB11.2341##Kim, H.J., Miyazaki, M. and Ntambi, J.M., 2002. Dietary cholesterol opposes PUFA-mediated repression of the stearoyl-CoA desaturase-1 gene by SREBP-1 independent mechanism. Journal of Lipid Research, 43(10): 1750-1757. DOI: 10.1194/jlr.m100433-jlr200##Navarro, J.C. and Sargent, J.R., 1992. Behavioural differences in starving herring Clupea harengus L. Larvae correlate with body levels of essential fatty acids. Journal of Fish Biology, 41(3): 509-513.##Peixoto, M.J., Svendsen, J.C., Malte, H., Pereira, L.F., Carvalho, P., Pereira, R., Gonçalves, J.F. and Ozório, R.O., .2016. Diets supplemented with seaweed affect metabolic rate, innate immune, and antioxidant responses, but not individual growth rate in European seabass (Dicentrarchus labrax). Journal of Applied Phycology, 28: 2061–2071. DOI: org/10.1007/s10811-015-0736-9.##Pérez, L., Salgueiro, J.L., Maceiras, R., Cancela, Á. and Sanchez, Á., 2017. An effective method for harvesting of marine microalgae: pH induced flocculation. Biomass and bioenergy, 97: 20-26. DOI: org/10.1016/j.biombioe.2016.12.010.##Priyadarshani, I. and Rath, B., 2012. Commercial and industrial applications of micro algae–A review. Journal of Algal Biomass Utilization, 3(4): 89-100. ##Prusiñska, M., Chepurkina, M., Wiszniewski, G., Duda, A. and Kolman, R., 2011. Preliminary results of rearing larval Russian sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii) fed live enriched feed. In: Zakêœ, Z., Demska-Zakêœ, K. and Kowalska, A., (ed) New species in aquaculture. Reproduction, rearing, prophylactics. (Eds.), IRS, Olsztyn, Polish. pp. 45-52##Radhakrishnan, S., Saravana Bhavan, P., Seenivasan, C., Shanthi, R. and Muralisankar, T., 2014. Replacement of fishmeal with Spirulina platensis, Chlorella vulgaris and Azolla pinnata on non-enzymatic and enzymatic antioxidant activities of Macrobrachium rosenbergii. Journal of Basic and Applied Zoology, 67(2): 25-33. DOI: org/10.1016/j.jobaz.2013.12.003.##Rekhad, C., 2007. Variation in fatty acid Composition of Artemia salina nauplii enriched with microalgae and baker’s yeast for Use in larviculture. Journal of Agriculture Food Chemistry Resource, 18: 295-389.##Sargent, J.R., Bell, J.G., Henderson, R.J. and Tocher D.R., 1995. Requirement criteria for essential fatty acids. Journal of Applied Ichthyology, 11: 183-198. DOI: org/10.1111/j.1439-0426.1995.tb00018.x##Tocher, D., 2003. Metabolism and functions of lipids and fatty acids in teleost fish. Review Fish Science, 11(2): 107-184.##Wikifors, G.H., 2000. Microalgal culture. In: Stickney, R.R. (Eds.) Encylopedia of Aquaculture. John Wiley and Sons, New York. pp. 520-525##Winterbourn, C.C., Hawkins, R.E., Brian, M. and Carrell, R.W., 1975. The estimation of red cell superoxide dismutase activity. The Journal of laboratory and Clinical Medicine, 85(2):337-341. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ مدل‌سازی پراکنش ماهی تون هوور (Thunnus tonggol Bleeker, 1851) با استفاده از مدل جمعی تعمیم ‌یافته و داده‌های سنجش از دور در آبهای دریای عمان Modeling distribution of Thunnus tonggol Bleeker, 1851 in the waters of the Oman Sea using the Generalized Additive Model and Remote sensing data 1 1 برای انجام این مطالعه، از داده‌های صید شناورهای پرساینر ایرانی که در دوره سه ساله (۹۸-۱۳۹۶) گله‌های آزاد تون ماهیان را در آبهای دریای عمان صید می‌کردند، استفاده شد. آزمون تحلیل کاهشی(RDA)  و مدل جمعی تعمیم ‌یافته (GAM) برای تعیین مطلوبیت زیستگاه ماهی هوور (Thunnus tonggol) با استفاده از داده‌های ماهواره‌ای سنجنده MODIS و HYCOM مورد استفاده قرار گرفت. آنالیز کاهشی نشان داد که عرض جغرافیایی، دمای سطحی آب دریا، سرعت جریانات دریایی و شوری سطحی آب متغیرهای تأثیرگذار بر پراکنش و تراکم ماهی هوور در هر زیستگاه می‌باشند. نقشه‌‌های مطلوبیت زیستگاه بر اساس لایه اطلاعاتی احتمال حضور استخراج گردیدند. 25-23 درجه عرض شمالی و 60-57 درجه طول شرقی زیستگاه‌های مطلوب ماهی هوور می‌باشند که با تراکم بالا در این مناطق پراکنش دارند و بیانگر تمایل زیست این گونه، در منطقه فلات قاره و آبهای کرانه‌‌ای است. در سمت شرق دریای عمان از منطقه بریس تا خلیج گواتر، از مطلوبیت زیستگاه این گونه کاسته می‌‌شود. بر اساس نتایج تحقیق حاضر، به‌نظر می‌رسد که متغیرهای غلظت کلروفیل-a و ارتفاع سطح دریا (SSH) گرچه از نظر آماری معنی‌دار هستند، اما در کنترل حضور و فراوانی ماهی هوور در منطقه از اهمیت ثانویه برخوردارند. 2 This study uses data of 5 Iranian industrial purse seiners that fish on free school tuna species in the Oman Sea. The catch data from 2015 to 2019 in the Oman Sea waters were used. The essential fish habitat of Thunnus tonggol was modeled using Satellite remote sensing (HYCOM. and MODIS). Redundancy analysis (RDA) was applied to provide a preliminary view of relationships between fish presence/absence and environmental variables, followed by the application of the Generalized Additive Model (GAM). According to GAM the presence/absence of T. tonggol is related to Latitude, Sea Surface Temperature (SST), Sea surface current velocity, and sea surface salinity (SSS). EFH maps were generated using GAM model based on the probability of the presence of T. tonggol. Latitude 23N to 25N degrees and longitude 57E to 60 E degrees are the preferred habitats of T. tonggol that are distributed in high density in these areas and indicate the habitat of this species in the continental shelf and coastal waters. Based on the analysis the distribution and density of T. tonggol on the east side of the Oman Sea Iranian waters, from Beris to Gwatar Bay, could be neglectable. Based on the results of the present study, it seems that, although, the relationship between chlorophyll-a concentration, sea surface height (SSH) and distribution, of T. tonggol is statistically significant, still the Latitude, Sea Surface Temperature (SST), Sea surface current velocity, and Sea surface salinity (SSS are the most important factors affecting the abundance of this species in the region. 25 39 2020/10/292021/06/62021/10/2 1400/7/10 2021/02/222021/12/12021/12/1 1400/9/10 آرزو وهاب نژاد Arezoo Vahabnezhad موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران Iran avn9400@gmail.com سید امین اله تقوی مطلق seyedaminollah Taghavimotlagh موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران Iran s_taghavimotlagh@hotmail.com علی سالارپوری Ali Salarpouri موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران Iran salarpouri@gmail.com Essential fish habitat Redundancy analysis Generalized Additive Model Thunnus tonggol Oman Sea ماهی هوور زیستگاه مطلوب روش آنالیز کاهشی مدل جمعی تعمیم‌یافته دریای عمان ##بحری، ع. و خسروی، ی.، 1399. بررسی روند بلند مدت تغییرات زمانی-مکانی دمای سطح دریای عمان. نشریه تحقیقات کاربردی علوم جغرافیایی، 20(58): 217-199.##پارسا، م.، کامرانی، ا.، صفائی، ص.، پیغمبری، ی. و نیشیدا، ت.، 1396. بررسی فراوانی طولی، رابطه طول-وزن و صید به ازای واحد تلاش ماهی هوور معمولی (Thunnus tonggol) و گیدر (Thunnus albacares) در صید به روش پرس‌ساین در دریای عمان. مجله بوم شناسی آبزیان، ۷(۲): ۲۹-19.##تقوی مطلق، س.ا.، 1397. ماهیان اقتصادی خلیج فارس و دریای عمان و پیش بینی برداشت پایدار از ذخایر آنها. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 660 صفحه.##حقی وایقان، ع.، کنگرلویی، آ. و کیمرام، ف.، 1399. ارتباط برخی متغیرهای محیطی حاصل از تصاویر ماهوارهای با شاخص صید بر واحد تلاش (CPUE) ماهی هوور معمولی(Thunnus tonggol Bleeker, 1851) در آبهای دریای عمان. مجله علمی شیلات ایران، 29: 96-85.##درویشی، م.، بهزادی، س. و سالارپور، ع.، 1382. تخم ریزی, هماوری و تغذیه ماهی هوور (Thunnus tonggol) در آبهای خلیج فارس و دریای عمان (محدوده استان هرمزگان). پژوهش و سازندگی، 16: 70.##قاضی، ا.، بیدختی، ع. و ذوالجودی، م.، 1400. مطالعه وارونگی‌های دما و شوری در آب‌های دریای عمان. نشریه علمی پژوهشی اقیانوس شناسی، 12: 27-17.##وهاب نژاد، آ.، ۱۴۰۰. بررسی امکان استفاده از سنجش از دور برای برآورد پراکنش تون ماهیان در آب های دریای عمان- فاز نخست: مطالعاتی. گزارش نهایی موسسه تحقیقات علوم شیلاتی، ۱۱۷ صفحه.##Alabia, I.D., Saitoh, S.I., Igarashi, H., Ishikawa, Y., Usui, N., Kamachi, M., Awaji, T. and Seito, M., 2016. Ensemble Squid Habitat Model Using Three-Dimensional Ocean Data. ICES Journal of Marine Science, 73: 1863-1874. DOI:10.1093/icesjms/fsw075##Archer, M.R., Roughan, M., Keating, S.R. and Schaeffer, A., 2017. On The Variability of The East Australian Current: Jet Structure, Meandering, and Influence On Shelf Circulation. Journal of Geophysical Research: Oceans, 122: 8464-8481. DOI:10.1002/2017JC013097##Booth, R.E. and Booth, B., 2000. Using Arcgis 3D Analyst: GIS By ESRI, Esri Press.##Dan, F., 2020. Assessment of Indian Ocean Longtail Tuna (Thunnus Tonggol) Using Data-Limited Methods. IOTC–2020–WPNT10–13,16##Erauskin‐Extramiana, M., Arrizabalaga, H., Hobday, A. J., Cabré, A., Ibaibarriaga, L., Arregui, I., Murua, H. and Chust, G., 2019. Large‐Scale Distribution of Tuna Species in a Warming Ocean. Global Change Biology, 25: 2043-2060. DOI:10.1111/gcb.14630##Grande, M., Murua, H., Zudaire, I., Arsenault‐Pernet, E., Pernet, F. and Bodin, N. 2016. Energy Allocation Strategy of Skipjack Tuna Katsuwonus Pelamis During Their Reproductive Cycle. Journal of Fish Biology, 89: 2434-2448. DOI:10.1111/jfb.13125##Griffiths, S.P., Fry, G.C., Manson, F.J. and Pillans, R.D., 2007. Feeding Dynamics, Consumption Rates And Daily Ration Of Longtail Tuna (Thunnus tonggol) In Australian Waters, With Emphasis on The Consumption of Commercially Important Prawns. Marine And Freshwater Research, 58: 376-397. DOI:10.1071/MF06197##Griffiths, S.P., 2020. Restricted Vertical and Cross-Shelf Movements of Longtail Tuna (Thunnus tonggol) As Determined By Pop-Up Satellite Archival Tags. Marine Biology, 167: 1-12. DOI:10.1007/s00227-020- 03733-7##Haghi Vayghan, A., Ghorbani, R., Peyghambari, S., Lee, M., Kaplan, D. and Block, B., 2017. Relationship Between Yellowfin Tuna (Thunnus Albacares) Distribution Caught by Iranian Purse Seiners and Environmental Variables in The Indian Ocean. Iranian Journal of Fisheries Sciences:26 (1) :67-82.##Hastie, T. and Tibshirani, R., 1990. Exploring The Nature Of Covariate Effects In The Proportional Hazards Model. Biometrics, 1005-1016.## ##Hosseini, S.A., Lee, C.W., Kim, H.S., Lee, J. and Lee, G.H., 2011. The Sinking Performance of The Tuna Purse Seine Gear With Large-Meshed Panels Using Numerical Method. Fisheries Science, 77: 503-520.##Iran National Report, 2020. Iran Islamic Republic of National Report To The Scientific Committee Of The Indian Ocean Tuna Commission. 20th Meeting of The IOTC Scientific Committee, Mahé, Seychelles, 2020.##Jiang, L.B., Xu, L.X. and Huang, J.L., 2005. Relationship Between Vertical Distribution Of Bigeye Tuna (Thunnus obesus) and Water Temperature In Indian Ocean. Journal of Shanghai Fisheries University, 14 (3): 333–336 ##Karakulak, F.S., 2004. Catch and Effort Of The Bluefin Tuna Purse-Seine Fishery in Turkish Waters. Fisheries Research, 68: 361-366. DOI: 10.1016/S0165-7836(04)00071-2##Kleyer, M., Dray, S., Bello, F., Leps, J., Pakeman, R.J., Strauss, B., Thuiller, W. and Lavorel, S., 2012. Assessing Species and Community Functional Responses To Environmental Gradients: Which Multivariate Methods? Journal of Vegetation Science, 23: 805-821. DOI:10.1111/j.1654-1103.2012.01402.x##Laurel, B., Stoner, A., Ryer, C., Hurst, T. and Abookire, A., 2007. Comparative Habitat Associations In Juvenile Pacific Cod and Other Gadids Using Seines, Baited Cameras and Laboratory Techniques. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 351: 42-55. DOI: 10.1016/j.jembe.2007.06.005##Moazzam, M., 2020., Status Of Neritic Tuna In Pakistan With Special Reference to Longtail Tuna. Tenth Session of IOTC Working Party On Neritic Tuna (WPNT10) July, 6-8.##Morrell, L.J. and James, R., 2008. Mechanisms For Aggregation In Animals: Rule Success Depends On Ecological Variables. Behavioral Ecology, 19: 193-201.##Mugo, R. and Saitoh, S.I., 2020. Ensemble Modelling Of Skipjack Tuna (Katsuwonus Pelamis) Habitats In The Western North Pacific Using Satellite Remotely Sensed Data; A Comparative Analysis Using Machine-Learning Models. Remote Sensing, 12: 2591. DOI:10.3390/rs12162591##Orúe, B., Pennino, M.G., Lopez, J., Moreno, G., Santiago, J., Ramos, L. and Murua, H., 2020. Seasonal Distribution of Tuna and Non-Tuna Species Associated With Drifting Fish Aggregating Devices (Dfads) In The Western Indian Ocean Using Fishery-Independent Data. Frontiers In Marine Science, 7: 441. DOI:10.3389/fmars.2020.00441##Syahailatua, A., Roughan, M. and Suthers, I.M., 2011. Characteristic Ichthyoplankton Taxa in The Separation Zone Of The East Australian Current: Larval Assemblages as Tracers Of Coastal Mixing. Deep Sea Research Part II: Topical Studies in Oceanography, 58: 678-690.##Valavanis, V.D., Pierce, G.J., Zuur, A.F., Palialexis, A., Saveliev, A., Katara, I. and Wang, J., 2008. Modelling Of Essential Fish Habitat Based on Remote Sensing, Spatial Analysis and GIS. Essential Fish Habitat Mapping in The Mediterranean, 5-20. DOI: 10.1007/s10750-008-9493-y##Yen, K.W., Su, N.J., Teemari, T., Lee, M.A. and Lu, H.J., 2016. Predicting the catch potential of skipjack tuna in the western and central Pacific Ocean under different climate##change scenarios. Journal of Marine Science Technology. 24, 1053–1062. DOI:10.6119/ JMST-016-0713-1.##Yesaki, M., 1994., A Review Of The Biology and Fisheries for Longtail Tuna (Thunnus Tonggol) in The Indo-Pacific Region. FAO Fisheries Technical Paper, 336: 370-387.##Zuur, A., Ieno, E.N., Walker, N., Saveliev, A.A. and Smith, G.M., 2009. Mixed Effects Models and Extensions in Ecology With R, Springer Science & Business Media. Journal of Statistical SoftwareNovember 2009, Volume 32, Book Review 1. DOI: 10.18637/jss.v032.b01. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ اثر دو شکل معدنی ونانو ذره سلنیوم بر پارامترهای بیوشیمیایی عضله، سرم، دفاع آنتی‌‌اکسیدانی پس از مواجهه با کلرید جیوه در ماهی شانک زرد باله (Acanthopagrus latus) Effect of sodium selenite and selenium nanoparticles on biochemical parameters of muscle, serum, antioxidant defense and exposure to mercury chloride in Acanthopagrus latus 1 1 جیوه با تولید رادیکال‌های آزاد اکسیژن و از بین بردن منابع آنتی ‌اکسیدان باعث ایجاد استرس اکسیداتیو می‌شود. مهم‌ترین کاربرد سلنیوم، نقش آن در ساختمان آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی از قبیل گلوتاتیون‌‌ پراکسیداز است و عملکرد آن حذف رادیکال‌های‌‌ آزاد و گونه‌های اکسیژن ‌‌فعال می‌باشد. هدف از این تحقیق بررسی تأثیر آنتی‌اکسیدانتی نانو ذرات سلنیوم و سلنیت سدیم بر پارامترهای بیوشیمیایی و دفاع‌‌آنتی‌‌اکسیدانی در ماهی شانک زرد باله (Acanthopagrus latus) در مواجهه با کلرید جیوه می‌‌باشد. دراین مطالعه تعداد 300 قطعه بچه‌‌ماهی با میانگین وزنی 3±25 گرم در پنج تیمار و با جیره‌‌غذایی سلنیت‌‌سدیم و نانو‌‌ذره‌‌سلنیوم با دو غلظت 1 و 5/1میلی‌‌گرم‌‌ برکیلوگرم به مدت 6 هفته تغذیه‌‌ شدند، سپس به مدت دوهفته در معرض کلریدجیوه با دوز تحت‌‌کشنده قرار گرفتند. در پایان از همه تیمارها نمونه‌های خون و کبد برداشت و فعالیت آنزیم‌‌های کبدی و آنتی‌‌اکسیدانی مورد سنجش قرارگرفتند. نتایج نشان‌‌ دادند که فرم نانوذره‌‌سلنیوم باعث افزایش فعالیت آنزیم‌‌های آنتی‌‌اکسیدانی گلوتاتیون‌‌پراکسیداز و کاتالاز، کاهش محتوای مالون‌‌دی‌‌آلدئید، آسپارتات‌‌آمینو‌‌ترانسفراز و آلکانین‌‌فسفاتاز شد (05/0>p). در طول دوره در معرض گذاری، فرم نانو ذره ‌‌سلنیوم در بالا بردن فعالیت آنزیم‌‌های آنتی‌‌اکسیدانی گلوتاتیون‌‌پراکسیداز و کاتالاز اثر بخش‌‌تر از شکل معدنی‌‌سلنیوم بود. کاهش محتوای ‌‌مالون‌‌دی‌‌آلدئید در کبد ماهیان تغذیه ‌‌شده با نانوذره‌‌ سلنیوم نشان‌‌دهنده کاهش پراکسیداسیون لیپید و کاهش استرس اکسیداتیو بود. فعالیت آنزیم‌‌های آلانین‌‌آمینوترانسفراز، آسپارتات‌‌آمینوترانسفراز و آلکالین‌‌فسفاتاز تحت تاثیر فلز جیوه درگروههای تغذیه شده با سلنیت‌‌سدیم نسبت به گروه‌‌های تغذیه شده با نانو‌‌ذره افزایش بیشتری داشت (05/0>p) و بالارفتن سطح این آنزیم‌ها در خون نشانه آسیب کبدی است. به طورکلی، افزودن نانو‌‌ذره‌‌سلنیوم در جیره غذایی پایه اثر بخشی بهتری از نظر شاخص‌‌های آنتی‌‌اکسیدانی در ماهی‌‌شانک‌‌زرد باله متعاقب مواجهه با کلرید‌‌جیوه داشت. 2 Mercury causes oxidative stress in the body by producing oxygen free radicals and destroying antioxidant sources. The most important application of selenium is its role in the construction of antioxidant enzymes such as glutathione peroxidase, the function of which is to eliminate free radicals and reactive oxygen species. The aim of this study was to investigate the antioxidant effect of selenium nanoparticles and sodium selenite on biochemical parameters and antioxidant defense in Acanthopagrus latus in the presence of mercury chloride. A total number of 300 fish (25±3 g) were randomly distributed in five groups according to diet: control, nanoSe and sodium selenite (1 and 1.5 mg/kg). Fish were fed with experimental diets for six weeks. They were then exposed to a sublethal dose of HgCl2 for two weeks. At the end of the feeding period and after exposure, blood and liver samples were taken from all treatments and the activity of liver enzymes and antioxidants were measured. After six weeks of feeding the results showed that the form of selenium nanoparticles improved growth performance, increased the activity of antioxidant enzymes GPX and CAT and reduced the content of MDA, AST and ALT (p<0.05). The results showed that the form of selenium nanoparticles was more effective than the inorganic form of selenium during the period of exposure in increasing the activity of the antioxidant enzymes GPX and CAT. Decreased MDA content in the liver of fish fed selenium nanoparticles indicated a reduction in lipid peroxidation and a reduction in oxidative stress. The activity of ALT, AST and ALP enzymes increased more in the groups fed with selenium sodium than in the groups fed with nanoparticles (p<0.05). This study showed that the addition of selenium nanoparticles to the basic diet was more effective in terms of growth and antioxidant indices in yellowfin porgy (A. latus) after exposure to mercury chloride. 41 57 2020/10/292021/06/62021/10/22021/07/18 1400/4/27 2021/02/222021/12/12021/12/12021/12/1 1400/9/10 فرحناز کیان ارثی FARAHNAZ KIANERSI پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور Iran FARAHNAZ.KIANERSI@GMAIL.COM علیرضا صفاهیه گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران Iran نگین سلامات گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران Iran امیر پرویز سلاطی گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی دریایی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران Iran حسین هوشمند پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران Iran Yellowfin porgy Selenium nanoparticles Sodium Selenite Mercury ماهی شانک زرد باله سلنیت سدیم نانوذره سلنیوم جیوه ##بابادی، ص.، صفاهیه، ع.، نبوی، س.م.ب.، غانمی، ک. و رونق، م.ت.، 1394. نحوه توزیع جیوه در بافت های مختلف ماهی شانک زرد باله(Acanthopagrus latus) خور موسی، خلیج فارس. مجله منابع طبیعی ایران، 68 (8): 27-39.##خندان بارانی،ه. و میری، م.، 1396. تغییرات سطوح آنزیم‌‌های متابولیک تحت تاثیر فلزهای سنگین روی و کادمیوم در ماهی سفیدک سیستان(Schizothorax zarudnyi). مجله بوم شناسی آبزیان، 6 (4): 31-59.##عسکری ساری، ا.، جواهری، م.، محجوب، ث. و ولایت زاده، م.، 1394. میزان فلزات سنگین (جیوه، کادمیوم، سرب) در عضله ماهی شوریده در بنادر صیادی آبادان و بندرعباس. مجله علمی شیلات، 21(3): 99-106.##Abdel-Tawwab, M., Mousa, M.A. and Abbass, F.E., 2007. Growth performance and physiological response of African catfish, Clarias gariepinus (B.) fed organic selenium prior to the exposure to environmental copper toxicity. Aquaculture, 272(1-4): 335-345. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2007.09.004.##Acerete, L., Balasch, J.C., Espinosa, E., Josa, A. and Tort, L., 2004. Physiological responses in Eurasian perch (Perca fluviatilis, L.) subjected to stress by transport and handling. Aquaculture, 237(1-4): 167-178. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2004.03.018.## ##Al-Deriny, S.H., Dawood, M.A., Elbialy, Z.I., El-Tras, W.F. and Mohamed, R.A., 2020. Selenium Nanoparticles and Spirulina Alleviate Growth Performance, Hemato-Biochemical, Immune-Related Genes, and Heat Shock Protein in Nile Tilapia (Oreochromis niloticus). Biological Trace Element Research, 198(2). DOI: 10.1007/s12011- 020-02096-w.##Anual, Z.F., Maher, W., Krikowa, F., Hakim, L., Ahmad, N.I. and Foster, S., 2018. Mercury and risk assessment from consumption of crustaceans, cephalopods and fish from West Peninsular Malaysia. Microchemical Journal, 140: 214-221. DOI: 10.1016/j.microc.2018.04.024.##Arshad, A., Jimmy, A., Nurulamin, S.M., Japarsidik, B. and Harah, Z.M., 2008. Length-weight and length-length relationships of five fish species collected from seagrass beds of the Sungai Pulai estuary, Peninsular Malaysia. Journal of Applied Ichthyology, 24(3): 328-329. DOI: 10.1111/j.1439-0426.2007.01026.x.##Ashouri, S., Keyvanshokooh, S., Salati, A.P., Johari, S.A. and Pasha-Zanoosi, H., 2015. Effects of different levels of dietary selenium nanoparticles on growth performance, muscle composition, blood biochemical profiles and antioxidant status of common carp (Cyprinus carpio). Aquaculture, 446: 25-29. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2015.04.021.##Belzile, N., Chen, Y.W., Gunn, J.M., Tong, J., Alarie, Y., Delonchamp, T. and Lang, C.Y., 2006. The effect of selenium on mercury assimilation by freshwater organisms. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 63(1): 1-10. DOI: 10.1139/f05-202.##Buege, J.A. and Aust, S.D., 1978. Microsomal lipid peroxidation methods enzymol, 52: 302–310. Find this article online. DOI: 10.1016/S0076-6879 (78)52032-6.##Burk, R.F. and Hill, K.E., 2009. Selenoprotein P—expression, functions, and roles in mammals. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-General Subjects, 1790(11): 1441-1447. DOI: 10.1016/j.bbagen.2009.03.026.##Cotter, P.A., Craig, S.R. and McLean, E., 2008. Hyper accumulation of selenium in hybrid striped bass: a functional food for aquaculture. Aquaculture Nutrition, 14(3): 215-222. DOI: 10.1111/j.1365-2095.2007.00520.x.##Dawood, M.A., Zommara, M., Eweedah, N.M. and Helal, A.I., 2020. The evaluation of growth performance, blood health, oxidative status and immune-related gene expression in Nile tilapia (Oreochromis niloticus) fed dietary nanoselenium spheres produced by lactic acid bacteria. Aquaculture, 515: 734571. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2019.734571##Durigon, E.G., Kunz, D.F., Peixoto, N.C., Uczay, J. and Lazzari, R., 2018. Diet selenium improves the antioxidant defense system of juveniles Nile tilapia (Oreochromis niloticus L.). Brazilian Journal of Biology, 79: 527-532. DOI: 10.1590/1519-6984.187760.##Elia, A.C., Prearo, M., Pacini, N., Dörr, A.J.M. and Abete, M.C., 2011. Effects of selenium diets on growth, accumulation and antioxidant response in juvenile carp. Ecotoxicology and Environmental Safety, 74(2): 166-173. DOI:10.1016/j.ecoenv.2010.04.006.##Fang, Y.Z., Yang, S. and Wu, G., 2002. Free radicals, antioxidants, and nutrition. Nutrition, 18(10), pp.872-879. DOI.org/10.1016/S0899-9007(02)00916-4.##Finley, J.W., 2006. Bioavailability of selenium from foods. Nutrition Reviews, 64(3): 146-151. DOI: 10.1111/j.1753-4887.2006.tb00198.x.##Fontagné, S., Lataillade, E., Breque, J. and Kaushik, S., 2008. Lipid peroxidative stress and antioxidant defence status during ontogeny of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). British Journal of Nutrition, 100(1): 102-111. DOI.org/10.1017/S0007114507876215 ##Fracalossi, D.M., Cyrino, J.E.P. and Eurico, P., 2013. Nutriaqua: Nutrição e alimentação de espécies de interesse para a aqüicultura brasileira (375 p.). Sociedade Brasileira de Aquicultura e Biologia Aquática/AQUABIO, Florianópolis, Santa Catarina, BR.##Gabriel, U.U., Akinrotimi, O.A. and Ariweriokuma, V.S., 2012. Changes in metabolic enzymes activities in selected organs and tissue of Clarias gariepinus exposed to cypermethrin. Journal of Chemical Engineering, 1(1): 25-30.##Gatlin III, D.M. and Wilson, R.P., 1984. Dietary selenium requirement of fingerling channel catfish. The Journal of Nutrition, 114(3): 627-633. DOI: 10.1093/jn/116.6.1061.##Gonzalez-Raymat, H., Liu, G., Liriano, C., Li, Y., Yin, Y., Shi, J., Jiang, G. and Cai, Y., 2017. Elemental mercury: Its unique properties affect its behavior and fate in the environment. Environmental Pollution, 229: 69-86. DOI: 10.1016/j.envpol.2017.04.101.## Goth, L., 1991. A simple method for determination of serum catalase activity and revision of reference range. Clinica Chimica Acta, 196(2-3): 143-151. DOI: 10.1016/0009-8981(91)90067-M.##Han, D., Xie, S., Liu, M., Xiao, X., Liu, H., Zhu, X. and Yang, Y. 2011. The effects of dietary selenium on growth performances, oxidative stress and tissue selenium concentration of gibel carp (Carassius auratus gibelio). Aquaculture Nutrition, 17(3): e741-e749. DOI: org/10.1111/j.1365-2095.2010.00841.x.##Hao, X., Ling, Q. and Hong, F., 2014. Effects of dietary selenium on the pathological changes and oxidative stress in loach (Paramisgurnus dabryanus). Fish Physiology and Biochemistry, 40(5): 1313- 1323. DOI: 10.1007/s10695-014-9926-7.##Health, A.G., 1995. Water poultion and fish physiology, vol. 2. CRC Lewis publishers, Boca Raton, 340p.##Hu, C.H., Li, Y.L., Xiong, L., Zhang, H.M., Song, J. and Xia, M.S., 2012. Comparative effects of nano elemental selenium and sodium selenite on selenium retention in broiler chickens. Animal Feed Science and Technology, 177(3-4): 204-210. DOI: 10.1016/j.anifeedsci.2012.08.010.##Huang, B., Zhang, J., Hou, J. and Chen, C., 2003. Free radical scavenging efficiency of Nano-Se in vitro. Free Radical Biology and Medicine, 35(7): 805-813. DOI: 10.1016/s0891-5849(03)00428-3.##Jeevanaraj, P., Hashim, Z., Elias, S.M. and Aris, A.Z., 2016. Mercury accumulation in marine fish most favoured by Malaysian women, the predictors and the potential health risk. Environmental Science and Pollution Research, 23(23): 23714-23729. DOI: 10.1007/s11356-016-7402-x##Kashkooli, O.B., Dorcheh, E.E., Mahboobi-Soofiani, N. and Samie, A., 2011. Long-term effects of propolis on serum biochemical parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Ecotoxicology and Environmental Safety, 74(3): 315-318. DOI: 10.1016/j.ecoenv.2010.10.014##Khan, K.U., Zuberi, A., Nazir, S., Fernandes, J.B.K., Jamil, Z. and Sarwar, H., 2016. Effects of dietary selenium nanoparticles on physiological and biochemical aspects of juvenile Tor putitora. Turkish Journal of Zoology, 40(5): 704-712. DOI: 10.3906/zoo-1510-5##Kohshahi, A.J., Sourinejad, I., Sarkheil, M. and Johari, S.A., 2019. Dietary cosupplementation with curcumin and different selenium sources (nanoparticulate, organic, and inorganic selenium): influence on growth performance, body composition, immune responses, and glutathione peroxidase activity of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish Physiology and Biochemistry, 45(2): 793-804. DOI: 10.1007/s10695-018-0585-y.##Lall, S.P., 2000. Nutrition and health of fish. Avances en nutrición acuícola: 13-23.##Le, K. and Fotedar, R., 2013. Dietary selenium requirement of yellowtail kingfish (Seriola lalandi). Agricultural Sciences, 4(6A), pp.68-75. DOI:10.4236/as.2013.46A011##Le, K.T. and Fotedar, R., 2014. Bioavailability of selenium from different dietary sources in yellowtail kingfish (Seriola lalandi). Aquaculture, 420, pp.57-62. DOI:org/10.1016/j.aquaculture.2013.10.034##Le, K.T., Dao, T.T., Fotedar, R. and Partrigde, G.J., 2014. Effects of variation in dietary contents of selenium and vitamin E on growth and physiological and haematological responses of yellowtail kingfish, Seriola lalandi. Aquaculture International, 22(2): 435-446. DOI: 10.1007/s10499-013-9651-8.##Lin, Y.H. and Shiau, S.Y., 2005. Dietary selenium requirements of juvenile grouper, Epinephelus malabaricus. Aquaculture, 250(1-2): 356-363. DOI:10.1016/j.aquaculture.2005.03.022##Linhua, H.A.O., Zhenyu, W.A.N.G. and Baoshan, X.I.N.G., 2009. Effect of sub-acute exposure to TiO2 nanoparticles on oxidative stress and histopathological changes in Juvenile Carp (Cyprinus carpio). Journal of Environmental Sciences, 21(10), pp.1459-1466. DOI:org/10.1016/S1001-0742(08)62440-7##Liu, K., Wang, X.J., Ai, Q., Mai, K. and Zhang, W., 2010. Dietary selenium requirement for juvenile cobia, Rachycentron canadum L. Aquaculture Research, 41(10): e594-e601. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2010.02562.x##Liu, Y., Buchanan, S., Anderson, H.A., Xiao, Z., Persky, V. and Turyk, M.E., 2018. Association of methylmercury intake from seafood consumption and blood mercury level among the Asian and Non-Asian populations in the United States. Environmental Research, 160: 212-222. DOI: 10.1016/j.envres.2017.09.031.##Mansour, A.T.E., Goda, A.A., Omar, E.A., Khalil, H.S. and Esteban, M.Á., 2017. Dietary supplementation of organic selenium improves growth, survival, antioxidant and immune status of meagre, Argyrosomus regius, juveniles. Fish & Shellfish Immunology, 68: 516-524. DOI: 10.1016/j.fsi.2017.07.060##McCord, J.M. and Fridovich, I., 1969. Superoxide dismutase: an enzymic function for erythrocuprein (hemocuprein). Journal of Biological Chemistry, 244(22): 6049-6055. Doi.org/10.1016/S0021-9258(18)63504-5##Naderi, M., Keyvanshokooh, S., Salati, A.P. and Ghaedi, A., 2017. Proteomic analysis of liver tissue from rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) under high rearing density after administration of dietary vitamin E and selenium nanoparticles. Comparative Biochemistry and Physiology Part D: Genomics and Proteomics, 22: 10- 19. DOI: 10.1016/j.cbd.2017.02.001##Neamat-Allah, A.N., Mahmoud, E.A. and Abd El Hakim, Y., 2019. Efficacy of dietary Nano-selenium on growth, immune response, antioxidant, transcriptomic profile and resistance of Nile tilapia, Oreochromis niloticus against Streptococcus iniae infection. Fish & Shellfish Immunology, 94, pp.280-287. DOI.org/10.1016/j.fsi.2019.09.019##Obomanu, F.G., Gabriel, U.U., Edori, O.S. and Emetonjor, J.N., 2009. Biomarker enzymes in muscle tissue and organs of Clarias gariepinus after intramuscular injection with aqueous extracts of Lepidagathis alopecuroides leaves. Journal of Medicinal Plants Research, 3(12): 995-1001. DOI: 10.5897/JMPR.9000309.##O'Bryhim, J.R., Adams, D.H., Spaet, J.L., Mills, G. and Lance, S.L., 2017. Relationships of mercury concentrations across tissue types, muscle regions and fins for two shark species. Environmental Pollution, 223: 323-333. Doi.org/10.1016/j.envpol.2017.01.029 ##Polettini, A.E., Fortaner, S., Farina, M., Groppi, F., Manenti, S., Libralato, G. and Sabbioni, E., 2015. Uptake from water, internal distribution and bioaccumulation of selenium in Scenedesmus obliquus, Unio mancus and Rattus norvegicus: part A. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 94(1): 84-89. DOI: 10.1007/s00128-014-1407-2.##Rezvanfar, M.A., Rezvanfar, M.A., Shahverdi, A.R., Ahmadi, A., Baeeri, M., Mohammadirad, A. and Abdollahi, M., 2013. Protection of cisplatin-induced spermatotoxicity, DNA damage and chromatin abnormality by selenium nano-particles. Toxicology and Applied Pharmacology, 266(3): 356-365. DOI: 10.1016/j.taap.2012.11.025.##Rotruck, J.T., Pope, A.L., Ganther, H.E., Swanson, A.B., Hafeman, D.G. and Hoekstra, W., 1973. Selenium: biochemical role as a component of glutathione peroxidase. Science, 179(4073): 588-590. DOI:10.1126/scien ce.179.4073.588##Sabzi, E., Mohammadiazarm, H. and Salati, A.P., 2017. Effect of dietary L-carnitine and lipid levels on growth performance, blood biochemical parameters and antioxidant status in juvenile common carp (Cyprinus carpio). Aquaculture, 480: 89–93. DOI:10.1016/j.aquaculture.2017.08.013##Saffari, S., Keyvanshokooh, S., Zakeri, M., Johari, S. and Pasha-Zanoosi, H., 2016. Effects of different dietary selenium sources (sodium selenite, selenomethionine and nanoselenium) on growth performance, muscle composition, blood enzymes and antioxidant status of common carp (Cyprinus carpio). Aquaculture Nutrition, 23(3): 611-617. DOI: 10.1111/anu.12428##Saleh, R., Betancor, M.B., Roo, J., Benítez‐Dorta, V., Zamorano, M.J., Bell, J.G. and Izquierdo, M., 2015. Effect of krill phospholipids versus soybean lecithin in microdiets for gilthead seabream (Sparus aurata) larvae on molecular markers of antioxidative metabolism and bone development. Aquaculture Nutrition, 21(4): 474-488. DOI:10.1111/anu.12177##Selin, N.E., 2009. Global biogeochemical cycling of mercury: a review. Annual Review of Environment and Resources, 34: 43-63. DOI:10.1146/annurev.environ.051308.084314##Shi, L.G., Yang, R.J., Yue, W.B., Xun, W.J., Zhang, C.X., Ren, Y.S., Shi, L. and Lei, F.L., 2010. Effect of elemental nano-selenium on semen quality, glutathione peroxidase activity, and testis ultrastructure in male Boer goats. Animal Reproduction Science, 118(2-4): 248-254. DOI: 10.1016/j.anireprosci.2009.10.003##Ticto, P., 2012. Relationships between body size, weight, condition and fecundity of the threatened fish Puntius ticto (Hamilton, 1822) in the Ganges River, Northwestern Bangladesh. Sains Malaysiana, 41(7): 803-814.##Wang, C. and Lovell, R.T., 1997. Organic selenium sources, selenomethionine and selenoyeast, have higher bioavailability than an inorganic selenium source, sodium selenite, in diets for channel catfish (Ictalurus punctatus). Aquaculture, 152(1-4), pp.223-234. DOI.org/10.1016/S0044-8486(96)01523-2##Wang, Y., Han, J., Li, W. and Xu, Z., 2007. Effect of different selenium source on growth performances, glutathione peroxidase activities, muscle composition and selenium concentration of allogynogenetic crucian carp (Carassius auratus gibelio). Animal Feed Science and Technology, 134(3-4): 243-251. DOI:10.1016/j.anifeedsci.2006.12.007##Yu, J.H., Han, J.J. and Park, S.W., 2010. Haematological and biochemical alterations in Korean catfish, Silurus asotus, experimentally infected with Edwardsiella tarda. Aquaculture Research, 41(2): 295-302. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2009.02331.x## Zaza, S., de Balogh, K., Palmery, M., Pastorelli, A.A. and Stacchini, P., 2015. Human exposure in Italy to lead, cadmium and mercury through fish and seafood product consumption from Eastern Central Atlantic Fishing Area. Journal of Food Composition and Analysis, 40: 148-153. DOI:10.1016/j.jfca.2015.01.007##Zhang, J., Wang, X. and Xu, T., 2008. Elemental selenium at nano size (Nano-Se) as a potential chemopreventive agent with reduced risk of selenium toxicity: comparison with se-methylselenocysteine in mice. Toxicological Sciences, 101(1): 22-31. DOI:10.1093/toxsci/kfm221##Zheng, N., Wang, S., Dong, W., Hua, X., Li, Y., Song, X., Chu, Q., Hou, S. and Li, Y., 2019. The toxicological effects of mercury exposure in marine fish. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 102(5): 714-720. DOI: 10.1007/s00128-019-02593-2##Zhou, X., Wang, Y., Gu, Q. and Li, W., 2009. Effects of different dietary selenium sources (selenium nanoparticle and selenomethionine) on growth performance, muscle composition and glutathione peroxidase enzyme activity of crucian carp (Carassius auratus gibelio). Aquaculture, 291(1-2): 78-81. DOI: 10.1016/j.aquaculture. 03.007##Zwolak, I., 2020. The role of selenium in arsenic and cadmium toxicity: an updated review of scientific literature. Biological Trace Element Research, 193(1): 44-63. DOI:10.1007/s12011-019-01691-w. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ مقایسه سیستم مدار بسته و بایوفلاک بر تغییرات شاخص‌های رشد، ایمنی غیر اختصاصی و ترکیبات بیوشیمی لاشه کپور ماهی معمولی (Cyprinus carpio) Comparison of biofloc and recirculation aquaculture systems on growth performance, nonspecific immunity and body composition of common carp 1 1 تحقیق حاضر به منظور سنجش و مقایسه سیستم‌‌های پرورش ماهی بر اساس شاخص‌‌های تغذیه، رشد، ایمنی غیر اختصاصی و ترکیبات لاشه ماهی کپور معمولی انجام شد. ماهیان با میانگین وزنی حدودی3/0±5/21 گرم انتخاب و بعد از طراحی سیستم‌‌های مورد نظر و طی دوره سازگاری، در تانک‌‌های فایبرگلاس 100 لیتری در چهار تیمار (بایوفلاک، مداربسته و دو تیمار شاهد) به مدت دو ماه پرورش داده شدند. در انتهای دوره پرورش شاخص‌‌های رشد، ایمنی و ترکیبات لاشه ماهیان مورد آزمایش قرار گرفت. در نهایت بین شاخص‌‌های رشد و تغذیه مانند وزن نهایی، ضریب رشد ویژه، ضریب تبدیل غذایی و درصد بازماندگی و نیز شاخص‌‌های ایمنی غیر اختصاصی بین تیمارهای بایوفلاک و مداربسته اختلاف معنی‌‌دار مشاهده شد .(p<0/05) دربین تیمارهای بایوفلاک، مداربسته و شاهد 1 از لحاظ ترکیبات پروتئین، چربی و رطوبت اختلاف معناداری مشاهد نشد (p>0/05). اما بین این تیمارها با تیمار شاهد 2 اختلاف معنا‌‌داری وجود داشت .(p<0/05) از لحاظ شاخص‌‌‌های ایمنی نیز اختلاف معناداری بین سیستم مداربسته و بایوفلاک مشاهده نشد، اما میزان سوپر اکسیداز دیسموتاز در تیمار بایوفلاک سطح بالاتری را نشان داد. به طور کلی، نتایج نشان می‌‌دهد که تیمار بایوفلاک از نظر شاخص‌‌های رشد، ایمنی غیر اختصاصی مانند سوپراکسیداز دیسموتاز و نیز ترکیبات لاشه با توجه به کاهش غذای مصرفی روزانه شرایط بهتری را جهت پرورش کپور ماهی معمولی فراهم نماید. 2 This study was carried out to compare the effect of different culture systems on the growth performance and body composition of common carp (Cyprinus carpio). Fish juvenile was selected by initial average weight of 21.5 ±0. 3 after designs the systems and adaptation period were randomly distributed in fiberglass tanks (with 100 liters capacity). The experiment lasted for 2 months.  At the end of experiment, growth parameters including final weight, weight gain percentage, specific growth rate, survival; and whole body proximate analyses including protein, fat and ash levels were examined. Finally, there were significant differences in final weight, specific growth rate, and feed conversion ratio and survival rate between experimental treatments (p<0.05). There was no significant difference between treatments (biofloc, recirculating aquaculture system) for whole body’s moisture, fat and protein (p>0.05). But there was a significant difference among body protein, ash and fat among control 2 treatment and other treatments (p<0.05). Also there was no significant difference between biofloc and recirculating aquaculture system for lysozyme and complement activity in treatments whereas the fish in biofloc showed a significant higher superoxide dismutase than the others (p<0.05). The results obtained in this experiment, suggest that biofloc improves growth parameters, immune response even with decreasing percentage of daily feeding in common carp. 59 68 2020/10/292021/06/62021/10/22021/07/182020/01/30 1398/11/10 2021/02/222021/12/12021/12/12021/12/12021/12/1 1400/9/10 مونا تبرک Mona Tabarrok تربیت مدرس Iran monatabarrok@yahoo.com سید جعفر سیف آبادی Seyed Jafar Seyfabadi تربیت مدرس Iran jseyfabadi@gmail.com غلام رضا ضالحی جوزانی Gholamreza Salehi Jouzani تربیت مدرس Iran gsalehi2002@yahoo.com حبیب الله یونسی Habibollah Younesi تربیت مدرس Iran hunesi@yahoo.com Biofloc Closed system Common carp Growth Body compounds بایوفلاک مداربسته کپور معمولی رشد ترکیبات لاشه ##خانجانی، م.ح.، سجادی، م.م، علیزاده، م. و سوری نژاد، ا.، 1394 .تاثیر نسبت‌‌های مختلف غذادهی برکیفیت آب، عملکرد رشد و بقاء پست لاروهای میگوی سفید غربی(Litopenaeus vannamei) با استفاده از تکنولوژی بیوفلوک. مجله علمی شیلات ایران. 27-13:(2)24. DOI: 10.22092/ISFJ.2015.103126.##سرسنگی علی آبادٍ، ح، ناجی، ا، سید مرتضایی، س.ر، سوری نژاد، ا، و اکبرزاده، ا.، 1399. تاثیر سیستم بیوفلاک بر کیفیت آب، عملکرد رشد، شاخص‌‌های ایمنی و ترکیب لاشه ماهی تیلاپیا (Oreochromis niloticus) در تراکم‌‌های مختلف در آب لب‌‌شور. مجله علمی شیلات ایران. 185-175:(2)30. DOI: 10.22092/ISFJ.2021.124698.##Aberoumad, A. and Pourshafi, K., 2010. Chemical and proximate composition properties of different fish species obtained from Iran. Worldjournal of Fish Marine Sience, 2(3): 237-239. DOI:10.12691/ajfn-3-4-3.##Amar, E.C., Kiron, V., Satoh, S. and Watanabe, T., 2000. Effects of dietary B – carotene on the immune response of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fisheries Science, 66 (6): 1068 – 75.##AOAC, 1998. Association of Official Analytical Chemists. Official methods of analysis of the Association of Official Analytical Chemists, 16thedn. AOAC, Arlington.##Avnimelech, Y., 1999. Carbon/nitrogen ratio as a control element in aquaculture systems. Aquaculture, 176:227-235. DOI:10.1016/S0044-8486(99)00085-X.##Avnimelech, Y. and Ritvo, G., 2003. Shrimp and Fish Pond Soils Processes and Management. Aquaculture, 220: 549-567. DOI:10.1016/S0044-8486(02)00641-5.##Avnimelech, Y., 2007. Feeding with microbial flocs by tilapia in minimal discharge ## bioflocs technology ponds. Aquaculture, 264: 140-147. ##Avnimelech, Y., 2009. Biofloc Technology - A Practical Guide Book. In: 1. The World Aquaculture Society, Baton Rouge, Louisiana, United States, 182 P.##Azim, M.E. and Little, D.C., 2008. The biofloc technology (BFT) in indoor tanks: water quality, biofloc composition, and growth and welfare of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture, 283: 29-35. DOI:10.1016/j.aquaculture.2008.06.036.##Bakhshi, F., Najdegerami, E., Manaffar, R., Tokmechi, A., Rahmani Farah, K. and Shalizar Jalali, A., 2018. Growth performance, haematology, antioxidant status, immune response and histology of common carp (Cyprinus carpio L.) fed biofloc grown on different carbon sources. Aquaculture Research, 49: 393-403. DOI:10.1111/are.13469.##Breck, J.E., 2014. Body composition in fishes: body size matters. Aquaculture, 433, 40–49. DOI:10.1016/ j.aquaculture.2014.05.049. ##Clerton, P., Troutaud, D., Verlhac, V., Gabaudan, J. and Deschaux, P., 2001. Dietary vitamin E and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) phagocyte functions: effect on gut and on head kidney leucocytes. Fish and Shellfish Immunology, 11(1): 1– 13. DOI:10.1006/fsim.2000.0287.##Crab, R., Defoirdt, T., Bossier, P. and Verstraete, W., 2012. Biofloc technology in aquaculture: beneficial effects and future challenges. Aquaculture, 356–357, 351–356. DOI:10.1016/j.aquaculture.2012.04.046.##Dalsgaard, J., Lund, I., Thorarinsdottir, R., Drengstig, A., Arvonen, K. and Pedersen, P., 2013. Farming different species in RAS in Nordic countries: current status and future perspectives. Aquacultural Engineering, 53, 2–13. DOI:10.1016/j.aquaeng.2012.11.008.##Deng, D.F., Ju, Z.Y., Dominy, W., Murashige, R. and Wilson, R.P., 2011. Optimal dietary protein levels for juvenile Pacific threadfin (Polydactylus sexfilis) fed diets with two levels of lipid. Aquaculture, 316: 25-30. DOI:10.1016/j.aquaculture.2011.03.023.##Ekasari, J., Rivandi, D., Firdausi, A., Surawidjaja, E., Zairin Jr., M., Bossier, P. and De Schryver, P., 2015. Biofloc technology positively affects Nile tilapia (Oreochromis niloticus) larvae performance. Aquaculture, 441, 72-77. DOI:10.1016/j.aquaculture.2015.02.019.##Emerenciano, M., Gaxiola, G. and Cuzon, G., 2013. Biofloc Technology: A review for aquaculture application and animal food industry. pp. 301-328. DOI:dx.doi.org/10.5772/53902.##Hargreaves, J.A., 2006. Photosynthetic suspended-growth systems in aquaculture. Aquacultural Engineering, 34, 3, pp. 344-363. DOI:dx.doi.org/10.1016/j.aquaeng.2005.08.009.##Kim, K.W., Moniruzzaman, M., Kim, K.D., Han, H.S. and Yun, H., 2016. Effects of dietary protein levels on growth performance and body composition of juvenile parrot fish, Oplegnathus fasciatus. International Aquatic Research, 8(3), 239–245. DOI:10.1007/s40071-016-0139-9. ##Liu, G., Ye, Z. and Liu, D., 2018. Nitrogen control, growth, and immunophysiological response of Litopenaeus vannamei (Boone, 1931) in a biofloc system and in clear water with or without commercial probiotic. Aquaculture International, 26 (4), pp. 981-DOI:999.10.1007/s10499-018-0263-1.##Luo, G., Gao, Q., Wang, C., Liu, W., Sun, D., Li, L. and Tan, H., 2014. Growth, digestive activity, welfare, and partial cost-effectiveness of genetically improved farmed tilapia (Oreochromis niloticus) cultured in a recirculating aquaculture system and an indoor biofloc system. Aquaculture, 422: 1-7. DOI:10.1016/j.aquaculture.2013.11.023.##Marklund, S. and Marklund, G., 1974. Involvement of the superoxide anion radicalin the autoxidation of pyrogallol and aconvenient assay for superoxide dismutase. Europ Journal of Biochemistry, 47, 469–474. DOI:10.1111/j.1432-1033.1974.tb03714.x.##Megahed, M.E., 2010. The effect of microbial biofloc on water quality, survival and growth of the green tiger shrimp (Penaeus Semisulcatus) fed with different crude protein levels. Journal of the Arabian Aquaculture Society, 5, 119-142. DOI:10.3923/pjbs.2020.1563.1571.##Rijn, J.V. 1996. The potential for integrated biological treatment systems in recirculating fish culture-A review. Aquaculture, 139: 181- 201. DOI:10.1016/0044-8486(95)01151-X.##Shearer, K.D., 1994. Factors affecting the proximate composition of cultured fishes with emphasis on salmonids. Aquaculture, 119: 63–88. DOI:10.1016/0044-8486(94)90444-8.##Torstensen, B., Espe, M., Sanden, M., Stubhaug, I., Waagbø, R., Hemre, G.-I., Fontanillas, R., Nordgarden, U., Hevrøy, E. and Olsvik, P., 2008. Novel production of Atlantic salmon (Salmo salar) protein based on combined replacement of fish meal and fish oil with plant meal and vegetable oil blends. Aquaculture, 285:193-200. DOI:10.1016/j.aquaculture.2008.08.025.##Tukmechi, A., Morshedi, A. and Delirezh, N., 2007. Changes in intestinal microflora and immune response following probiotic administration in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Animal and Veterinary Advances, 6: 1183 – 1189. ##Wasielesky, W., Atwood, H. and Stokes, A., 2006. Effect of natural production in a zero exchange suspended microbial floc based super-intensive culture system for white shrimp Litopenaeus vannamei. Aquaculture, 258, 396-403. DOI:10.1016/j.aquaculture.2006.04.030 ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ اثر استفاده از بیوسیلاژ تولیدی از ضایعات مرغ در فرمولاسیون جیره بر شاخص‌‌های رشد ماهی قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان (Oncorhynchus mykiss) Effect of using biosilage produced from chicken waste in diet formulation on growth indices of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) 1 1 هدف از مطالعه حاضر امکان‌‌سنجی استفاده از بیوسیلاژ تولیدی از ضایعات مرغ و جایگزینی این محصول در جیره ماهی قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان به جای پودر ماهی است. زیرا بیوسیلاژ در مقایسه با پودر ماهی خواص بالاتر و قیمت پایین‌تری  دارد. بدین منظور، پس از تولید بیوسیلاژ بر پایه تخمیر باکتری‌‌های اتوژن، این محصول در قالب دو تیمار 50 درصد بیوسیلاژ-50 درصد پودر ماهی و تیمار 100 درصد بیوسیلاژ به فرمولاسیون جیره اضافه و شاخص‌‌های رشد و کارایی خوراک (افزایش وزن بدن، ضریب چاقی، ضریب رشد ویژه، ضریب تبدیل غذایی و نسبت کارائی پروتئین) این دو تیمار در کنار  شاهد (100 درصد پودر ماهی) در روزهای صفر، 30 و 50 مورد ارزیابی و مقایسه قرار گرفت. نتایج نشان داد شاخص‌‌های افزایش وزن بدن، ضریب چاقی، شاخص رشد ویژه در تیمار دارای 50 درصد بیوسیلاژ-50 درصد پودر ماهی به صورت معنی‌‌داری نسبت به دو تیمار دیگر در سطح بالاتری قرار دارند. همچنین در ادامه مشخص شد این تیمار از نظر ضریب تبدیل غذایی و نسبت کارائی پروتئین نیز نسبت به دو تیمار دیگر وضعیت مطلوب‌‌تری دارد. مطابق نتایج، بیوسیلاژ تولیدی از ضایعات مرغ جایگزین مناسبی برای پودر ماهی در جیره آبزیان است. ضمن اینکه تیمار داری50 درصد بیوسیلاژ -50 درصد پودر ماهی نسبت به تیمار دارای 100 درصد پودر ماهی و 100 درصد بیوسیلاژ از نظر شاخص رشد و خوراک مطلوب‌‌تر است. 2 The aim of the present study was to evaluate the feasibility of using biosilage produced from chicken waste and to replace this product in the diet of rainbow trout instead of fish meal. Because biosilage has higher properties and lower prices than fish meal. For this purpose, after producing biosilage based on fermentation of autogenous bacteria, is added to the diet formulation in the form of two treatments of 50% biosilage -50% fish meal and 100% biosilage and the growth performances and feed efficiency (WG, CF, SGR, FCR, PER) indices of these two treatments along with the control treatment (100% fish meal) on days 30 and 50 were evaluated and compared. The results showed that the indicators of WG, CF and SGR, in the treatment with 50% biosilage -50% fish meal are significantly higher than the other two treatments. It was also found that this treatment is more favorable than the other two treatments in terms of FCR and PER. According to the results, biosilage produced from chicken waste is a good alternative to fish meal. In addition, 50% biosilage-50 fish meal treatment is more desirable in terms of growth and feed index than 100% fish meal and 100% biosilage treatment. 69 82 2020/10/292021/06/62021/10/22021/07/182020/01/302021/08/10 1400/5/19 2021/02/222021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/1 1400/9/10 رضا صفری Reza Safari موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران Iran safari1351@gmail.com حسن نصراله زاده ساروی Hasan Nasrollahzadeh موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران Iran hnsaravi@gmail.com سید محمد وحید فارابی Mohammad Vahid Farabi موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران Iran smv_farabi@hotmail.com عبداله جعفری Abdollah Jafari موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران Iran Jafariabdollah@gmail.com سهیل ریحانی پول Soheyl Reyhani Poul دانش آموخته دکتری تخصصی، گروه فرآوری محصولات شیلاتی، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران. Iran soheylreyhani@gmail.com محمد مهدی عباس زاده Mohammad mehdi Abbaszadeh داره کل شیلات استان مازندران، بابلسر، ایران. Iran Mehdiabbaszadeh11@gmail.com مونا زمانی Mona Zamani داره کل شیلات استان مازندران، بابلسر، ایران. Iran monazamani@ut.ac.ir مجید ابراهیم زاده Majid Ebrahimzadeh موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران Iran llmily40@gmail.com Biosilage Chicken waste Growth performances Rainbow trout FCR بیوسیلاژ ضایعات مرغ شاخص های رشد ماهی قزلآلا ضریب تبدیل غذایی ##صفری، ر.، نصراله‌‌زاده، ح.، فارابی، م، و.، جعفری، ع. و ابراهیم‌‌زاده، م.، 1398. تولید بیوسیلاژ از ضایعات ماهی قزل آلای رنگین‌‌کمان. گزارش نهایی. پژوهشکده اکولوژی دریای خزر.##فراهانی، ر.، شیرازی، غ. و خوشخو، ژ.، 1394. راهنمای پرورش ماهی قزل آلا. سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی. نشر آموزش کشاورزی، 297 ص.##Abdel-Tawwab, M., Abdel-Rahman, A.M. and Ismael, N.E., 2008. Evaluation of commercial live bakers’ yeast, Saccharomyces cerevisiae as a growth and immunity promoter for Fry Nile tilapia, Oreochromis niloticus (L.) challenged in situ with Aeromonas hydrophila. Aquaculture, 280(1-4): 185-189. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2008.03.055.##Austreng, E., 1978. Digestibility determination in fish using chromic oxide marking and analysis of contents from different segments of the gastrointestinal tract. Aquaculture, 13(3): 265-272. DOI: 10.1016/0044-8486 (78)90008-X.##Badillo, D., Herzka, S.Z. and Viana, M.T., 2014. Protein Retention Assessment of Four Levels of Poultry By-Product Substitution of Fishmeal in Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss) Diets Using Stable Isotopes of Nitrogen (δ 15 N) as Natural Tracers. PLoS One, 9(9): e107523. DOI: 10.1371/journal.pone.0107523.##Belal, I.E.H., Al‐Owaifeir, A. and Al‐Dosari, M., 1995. Replacing fish meal with chicken offal silage in commercial Oreochromis niloticus (L.) feed. Aquaculture Research, 26(11): 855-858. DOI: 10.1111/j.1365-2109.1995.tb00879.x.##Dawood, M.A.O., Magouz, F.I., Mansour, M., Saleh, A.A., Asely, A.M.E., Fadl, S.E., Ahmed, H.A., Al-Ghanim, K.A., Mahboob, S., and Al-Misned, F., 2020. Evaluation of yeast fermented poultry by-product meal in Nile tilapia (Oreochromis niloticus) feed: Effects on growth performance, digestive enzymes activity, innate immunity, and antioxidant capacity. Frontiers in Veterinary Science, 6: 516. DOI:10.3389/fvets.2019.00516.##De Silva, S.S. and Anderson, T.A., 1995. Fish Nutrition in Aquaculture. Springer Science and Business Media, Azar 9, 1373 AP - Science - 320 P.##Emre, Y., Sevgili, H. and Diler, İ., 2003. Replacing fish meal with poultry by-product meal in practical diets for mirror carp (Cyprinus carpio) fingerlings. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 3(2), 81-85.##Fagbenro, O.A. and Fasakin, E.A., 1996. Citric-acid-ensiled poultry viscera as protein supplement for catfish (Clarias gariepinus). Bioresource technology, 58(1): 13-16. DOI: 10.1016/S0960-8524(96)00081-8.## ##Fowler, L.G., 1991. Poultry by-product meal as a dietary protein source in fall Chinook salmon diets. Aquaculture, 99(3-4): 309-321. DOI: 10.1016/0044-8486(91)90251-2##Goosen, N.J., de Wet, L.F., Görgens, J.F., Jacobs, K. and de Bruyn, A., 2014. Fish silage oil from rainbow trout processing waste as alternative to conventional fish oil in formulated diets for Mozambique tilapia Oreochromis mossambicus. Animal Feed Science and Technology, 188: 74-84. DOI: 10.1016/j.anifeedsci.2013.10.019.##Güllü, K., Acar, Ü. Tezel, R. and Yozukmaz, A., 2014. Replacement of fish meal with fish processing by-product silage in diets for the rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Pakistan Journal of Zoology, 46(6): 697-1703. ##Helland, S.J., Grisdale-Helland, B. and Nerland, S., 1996. A simple method for the measurement of daily feed intake of groups of fish in tanks. Aquaculture, 139(1-2): 157-163. DOI: 10.1016/0044-8486(95)01145-5.##Hernández, C., Osuna, L. and Hernandez, A.B., 2014. Effect of fishmeal replacement by poultry by-product meal on growth performance, proximate composition, digestive enzyme activity, haematological parameters and gene expression of gilthead seabream (Sparus aurata). Aquaculture Nutrition, 42 (1): 1-12. DOI:10.1111/anu.12824.##Hevrøy, E. M., Espe, M., Waagbø, R., Sandnes, K., Ruud, M. and Hemre, G. I., 2005. Nutrient utilization in Atlantic salmon (Salmo salar L.) fed increased levels of fish protein hydrolysate during a period of fast growth. Aquaculture Nutrition, 11(4): 301-313. DOI:10.1111/j.1365-2095.2005.00357.x.##Hong, Y.C., Chien, A. and Sheen, S.S., 2020. The effects of replacement of fish meal protein with a mixture of poultry byproduct meal, fish silage and fish protein hydrolysate on the growth performances of Asian sea bass (Lates calcarifer). Journal of Marine Science and Technology, 27(6): 532-539. DOI: 10.6119/JMST.201912_27 (6).0006.##Kamei, M., Sahu, B., Raman, S., Nanda, S., Choudhury, D. and Dorothy, M.S., 2018. Use of Fish Silage Based Blended Protein Source for Replacement of Fish Meal in Thai-Pangas Diet. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 7(10): 2949-2961. DOI:10.20546/ijcmas.2018.710.342.##Shao, J., Jiang, K. and Wang, L., 2019. Litopenaeus vannamei fed diets with different replacement levels of fish meal by fish silage: A molecular approach on intestinal microbiota. Aquaculture Nutrition, 25(3): 721-728. DOI: 10.1111/anu.12900.##Siddik, M.A., Chungu, P., Fotedar, R. and Howieson, J., 2019. Bioprocessed poultry by-product meals on growth, gut health and fatty acid synthesis of juvenile barramundi, Lates calcarifer (Bloch). Plos one, 14(4): 1- 18. DOI:10.1371/journal.pone.0215025.##Tacon, A.G., 1990. Standard Methods for the Nutrition and Feeding of Farmed Fish and Shrimp. Argent librations press. Redmond, Wash, 1, 117P.##Yildirim, O., Türker, A., Ergün, S., Yigit, M. and Gülsahin, A., 2009. Growth performance and feed utilization of Tilapia zillii (Gervais, 1848) fed partial or total replacement of fish meal with poultry by-product meal. African Journal of Biotechnology, 8(13): 3092-3096. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ سنجش خواص عملکردی پپتیدهای زیست‌‌فعال تولیدی از ضایعات میگو در مراکز فراوری با استفاده از آنزیم پروتامکس در درجات آبکافت مختلف Evaluation of functional properties of bioactive peptides produced from shrimp wastes in processing centers using protamex enzyme in different degrees of hydrolysis 1 1 هدف از مطالعه حاضر بررسی خواص عملکردی پپتیدهای زیست‌‌فعال تولیدی از ضایعات میگو در مراکز فراوری در سه درجه آبکافت است. بدین منظور، ضایعات مراکز فراوری میگو طی سه زمان یک، دو و سه ساعت با استفاده از آنزیم پروتامکس آبکافت و خواص عملکردی پپتیدهای حاصل (SPH1،  SPH2و SPH3) ارزیابی شد. نتایج نشان داد، با افزایش زمان آبکافت از یک به دو و سه ساعت، درجه آبکافت و بازیافت نیتروژنی فرایند به صورت معنی‌‌داری افزایش یافتند (05/0p<). مطابق یافته‌‌ها، میزان حلالیت SPH3 به صورت معنی‌‌داری از SPH2 و SPH1 بیشتر بود و حداکثر میزان آن در 10=pH معادل 54/1±82/97 گزارش گردید (05/0p<). SPH1 نسبت به SPH2 و SPH3 شاخص فعالیت امولسیفایری و پایداری امولسیونی بیشتری داشت. در این پپتید بالاترین مقدار شاخص فعالیت امولسیفایری 84/2±15/68 متر مربع بر گرم ثبت شد که مربوط به 10=pH بود. اما حداکثر شاخص پایداری امولسیونی در 6=pH گزارش شد (08/5±84/166 دقیقه). بیشترین میزان فعالیت کف‌‌زایی اندازه‌‌گیری ‌‌شده 91/5±52/165 درصد بود که در SPH1 و 10= pHثبت شد. همچینن حداکثر پایداری کف در بین پپتیدها، معادل 23/3±32/118 اندازه‌‌گیری شد که مربوط به SPH1 در 6=pH بود. SPH1 ظرفیت جذب روغن بیشتری (33/0±92/5 میلی‌‌لیتر در گرم) نسبت به SPH2 و SPH3 داشت (05/0p<). بیشترین ظرفیت نگهداری آب هم مربوط به SPH3 (71/0±18/5 میلی‌‌لیتر در گرم) بود (05/0p<). بنابر یافته‌‌ها، خواص عملکردی پپتیدهای تولیدی از ضایعات مراکز فراوری میگو با استفاده از آنزیم پروتامکس در سطح قابل قبولی جهت استفاده در مواد غذایی مختلف قرار دارند. 2 The aim of this study was to investigate the functional properties of bioactive peptides produced from shrimp wastes in processing centers in three degrees of hydrolysis. For this purpose, the wastes of shrimp processing centers were hydrolyzed in three times of one, two and three hours using protamex enzyme and the functional properties of the resulting peptides (SPH1, SPH2 and SPH3) were evaluated. The results showed that with increasing the hydrolysis time from one to two and three hours, the degree of hydrolysis and nitrogen recovery of the process increased significantly (p<0.05). According to the findings, the solubility of SPH3 was significantly higher than SPH1 and SPH2 and its maximum was reported at pH=10, equal to 97.82±1.54% (p<0.05). SPH1 had higher emulsifying activity and emulsion stability index than SPH2 and SPH3. In this peptide, the highest value of emulsifying activity index was reported 68.15±2.84 m2/g, which was related to pH=10. But the maximum emulsion stability index was reported at pH=6 (166.84±5.08 minute). The highest measured foaming activity was 165.52±5.91% which was recorded at SPH1 and pH=10. Also, the maximum foam stability among the peptides was measured 118.32±3.23%, which was related to SPH1 at pH=6. SPH1 had a higher oil absorption capacity (5.92±0.33 ml/g) than SPH2 and SPH3 (p<0.05). The highest water holding capacity (5.18±0.71 ml/g) was related to SPH3 (p<0.05). According to the findings, the functional properties of peptides produced from wastes of shrimp processing centers using protamax enzyme are at an acceptable level for use in various foods. 83 97 2020/10/292021/06/62021/10/22021/07/182020/01/302021/08/102021/10/24 1400/8/2 2021/02/222021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/1 1400/9/10 سکینه یگانه Sakineh Yeganeh گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران Iran S.yeganeh@sanru.ac.ir سهیل ریحانی پول Soheyl Reyhani Poul گروه فراوری محصولات شیلاتی، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران Iran soheylreyhani@gmail.com Shrimp wastes Protamex Bioactive peptides functional properties of peptides ضایعات میگو پروتامکس پپتیدهای زیست‌‌‌‌فعال خواص عملکردی پپتیدها ##اویسی پور، م . و قمی م.ر. 1387. بیوتکنولوژی در تولید فراورده‌های دریایی. انتشارات دانشگاه آزاد اسلامی واحد تنکابن. 104- 37.##اویسی پور، م .، عابدیان کناری، ع .، معتمدزادگان، ع . و نظری ر. 1389. بررسی خواص پروتئین‌های هیدرولیز شده امعاء و احشاء ماهی تون زردباله (Thunnus albacares) با استفاده از آنزیم های تجاری. پژوهش های علوم و صنایع غذایی ایران، 6 (1)، 76-68.##درجانی پ .،1392. پپتید‌های زیست‌فعال حاصل از گوشت و فراورده‌های جانبی گوشت. بیست و یکمین کنگره ملی علوم و صنایع غذایی ایران، دانشگاه شیراز.##رضوی شیرازی ح .، 1380. تکنولوژی فراورده‌های دریایی، علم فراوری (2). انتشارات نقش مهر.چاپ دوم، 91-14.##ریحانی پول، س.، جعفرپور، ع. و صفری، ر. 1395. خواص کارکردی و آنتی‌اکسیدانی پروتئین آبکافتی تولیدشده از اندرونه ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss) با استفاده از روش آنزیمی. علوم و فنون شیلات، 5 (4): 28-13##ریحانی پول، س. و جعفرپور. 1396. اثر درجه آبکافت بر خواص عملکردی و فعالیت آنتی‌اکسیدانی پروتئین آبکافتی تولیدشده از فریم و سر ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). علوم و صنایع غذایی ایران، 68 (14): 124-113.##ریحانی پول، س.، عالیشاهی، ع.، عادلی، افشین.، نرگسیان، ع. و اجاق، م.، 1398. مطالعه رفتار، اولویت‌ها و موانع مصرف میگو در کشور. مجله علمی شیلات ایران، 28(6): 46-35. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.119783.##شعبانپور، ب.، کردجزی، م. و نظری، خ. 1394. بهینه‌سازی شرایط هیدرولیز آنزیمی پروتئین ضایعات سر سینه میگوی ببری سبز (Penaeus semisulcatus) با استفاده از روش پاسخ سطح. بهره‌برداری و پرورش آبزیان، 4 (3): 50-29.##صفری، ر.، نصرالله‌زاده، ح.، فارابی، و.، جعفری، ع.، قیاسی، م.، بینائی، م. و افرائی، م. 1399. تولید سیلاژ بیولوژیک از ضایعات طیور و تاثیر آن بر شاخص‌های رشد و ایمنی ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان، پیوهشکده اکولوژی دریای خزر، گزارش نهایی، 112ص.##یگانه، س.، اسماعیلی، م. و احمدی، ح. 1399. تاثیر زمان آبکافت بر فعالیت آنتی‌اکسیدانی پروتئین آبکافتی حاصل از سر ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله علمی شیلات ایران، 29 (6): 42-29. DOI: 10.22092/ISFJ.2021.123536##Adler-Nissen, J.1986. Enzymatic hydrolysis of food proteins. London: Elsevier Applied Science. 57–109.##Chobert, J. M., Bertrand-Harb, C., and Nicolas, M. G.1988. Solubility and emulsifying properties of caseins and whey proteins modified enzymically by trypsin. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 36(5), 883-892. DOI: org/10.1021/jf00083a002##Deeslie, W. D., and Cheryan, M. 1988. Functional properties of soy protein hydrolyzates from a continuous ultrafiltration reactor. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 36(1), 26-31.##Dos Santos, S. D. A., Martins, V. G., Salas-Mellado, M., and Prentice, C. 2011. Evaluation of functional properties in protein hydrolysates from bluewing searobin (Prionotus punctatus) obtained with different microbial enzymes. Food and bioprocess technology, 4(8), 1399-1406. DOI: org/10.1007/s11947-009-0301-0##Elavarasan, K., Naveen Kumar, V., and Shamasundar, B. A. 2014. Antioxidant and functional properties of fish protein hydrolysates from fresh water carp (Catla catla) as influenced by the nature of enzyme. Journal of Food Processing and Preservation, 38(3), 1207-1214. DOI: org/10.1111/jfpp.12081##Gauthier, S. F., Paquin, P., Pouliot, Y., and Turgeon, S. 1993. Surface activity and related functional properties of peptides obtained from whey proteins. Journal of Dairy Science, 76(1), 321-328. DOI: org/10.3168/jds.S0022-0302(93)77353-1##Giménez, B., Gómez-Estaca, J., Alemán, A., Gómez-Guillén, M. C., and Montero, M. P. 2009. Physico-chemical and film forming properties of giant squid (Dosidicus gigas) gelatin. Food Hydrocolloids, 23(3), 585-592. DOI: org/10.1016/j.foodhyd.2008.07.003##Haque, Z. U. 1993. Influence of milk peptides in determining the functionality of milk proteins: a review. Journal of dairy science, 76(1), 311-320. DOI: org/10.3168/jds.S0022-0302(93)77352-X##Hoyle, N. T., and Merritt, J. O. H. N. 1994. Quality of fish protein hydrolysates from herring (Clupea harengus). Journal of Food Science, 59(1), 76-79. DOI: org/10.1111/j.1365-2621.1994.tb06901.x##Kinsella, J.E. 1976 . Functional properties of proteins in food: A survey,Crit. Rev. Food Science & Nutrition. 8, 219–280. DOI: org/10.1080/10408397609527208.##Kristinsson, H. G., and Rasco, B. A. 2000. Fish protein hydrolysates: production, biochemical, and functional properties. Critical reviews in food science and nutrition, 40(1), 43-81. DOI: org/10.1080/10408690091189266##Kim, S. K., & Wijesekara, I. 2010. Development and biological activities of marine-derived bioactive peptides: A review. Journal of Functional Foods, 2(1), 1-9. DOI: org/10.1016/j.jff.2010.01.003##Klompong, V., Benjakul, S., Kantachote, D., and Shahidi, F. 2007. Antioxidative activity and functional properties of protein hydrolysate of yellow stripe trevally (Selaroides leptolepis) as influenced by the degree of hydrolysis and enzyme type. Food chemistry, 102(4), 1317-1327. DOI: org/10.1016/j.foodchem.2006.07.016##Layne, E. 1957. [73] Spectrophotometric and turbidimetric methods for measuring proteins. Methods in enzymology, 3, 447-454. DOI: org/10.1016/S0076-6879(57)03413-8##Linder, M., Fanni, J., and Parmentier, M. 1996. Functional properties of veal bone hydrolysates. Journal of Food Science, 61(4), 712-716. DOI: org/10.1111/j.1365-2621.1996.tb12187.x##Mahmoud, M. I. 1994. Physicochemical and functional properties of protein hydrosylates in nutritional products. Food Technology, 48(10), 89-95.##Mutilangi, W. A. M., Panyam, D., and Kilara, A. 1996. Functional properties of hydrolysates from proteolysis of heat‐denatured whey protein isolate. Journal of Food Science, 61(2), 270-275. DOI: org/10.1111/j.1365-2621.1996.tb14174.x##Ovissipour, M., Benjakul, S., Safari, R., and Motamedzadegan, A. 2010. Fish protein hydrolysates production from yellowfin tuna Thunnus albacares head using alcalase and protamex. International Aquatic Research, 2, 87-95.##Pearce, K. N., and Kinsella, J. E. 1978. Emulsifying properties of proteins: evaluation of a turbidimetric technique. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 26(3), 716-723. DOI: org/10.1021/jf60217a041##Pearson, A. M. 1983. Soy proteins. In B. J. F. Hudson (Ed.), Developments in food proteins-2(pp. 67–108). Essex, England: Applied Science Publishers.##Pacheco-Aguilar, R., Mazorra-Manzano, M. A., and Ramírez-Suárez, J. C. 2008. Functional properties of fish protein hydrolysates from Pacific whiting (Merluccius productus) muscle produced by a commercial protease. Food Chemistry, 109(4), 782-789. DOI: org/10.1016/j.foodchem.2008.01.047##Robinson, H. W., and Hogden, C. G. 1940. The biuret reaction in the determination of serum proteins. 1. A study of the conditions necessary for the production of a stable color which bears a quantitative relationship to the protein concentration. Journal of Biological Chemistry, 135, 707-725.##Rahali, V., Chobert, J. M., Haertle, T., and Gueguen, J. 2000. Emulsification of chemical and enzymatic hydrolysates of β‐lactoglobulin: characterization of the peptides adsorbed at the interface. Food/Nahrung, 44(2), 89-95. DOI: org/10.1002/(SICI)1521-3803(20000301)44:2%3C89::AID-FOOD89%3E3.0.CO;2-U##Rodríguez-Ambriz, S. L., Martinez-Ayala, A. L., Millán, F., and Davila-Ortiz, G. 2005. Composition and functional properties of Lupinus campestris protein isolates. Plant Foods for Human Nutrition, 60(3), 99-107.##Shahidi, F., Han, X. Q., and Synowiecki, J. 1995. Production and characteristics of protein hydrolysates from capelin (Mallotus villosus). Food chemistry, 53(3), 285-293. DOI: org/10.1016/0308-8146(95)93934-J##Souissi, N., Bougatef, A., Triki-Ellouz, Y., and Nasri, M. 2007. Biochemical and functional properties of sardinella (Sardinella aurita) by-product hydrolysates. Food Technology and Biotechnology, 45(2), 187.##Šližytė, R., Mozuraitytė, R., Martínez-Alvarez, O., Falch, E., Fouchereau-Peron, M., and Rustad, T. 2009. Functional, bioactive and antioxidative properties of hydrolysates obtained from cod (Gadus morhua) backbones. Process Biochemistry, 44(6): 668-677. DOI: org/10.1016/j.procbio.2009.02.010##Safari, R., Motamedzadegan, A., Ovissipour, M., Regenstein, J. M., Gildberg, A., and Rasco, B. 2012. Use of hydrolysates from yellowfin tuna (Thunnus albacares) heads as a complex nitrogen source for lactic acid bacteria. Food and Bioprocess Technology, 5(1), 73-79. DOI: org/10.1007/s11947-009-0225-8##Taheri, A., Anvar, S. A. A., Ahari, H., and Fogliano, V. 2013. Comparison the functional properties of protein Hydrolysates from poultry byproducts and rainbow trout (Onchorhynchus mykiss) viscera. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 12(1), 154-169.##Wasswa, J., Tang, J., Gu, X. H., and Yuan, X. Q. 2007. Influence of the extent of enzymatic hydrolysis on the functional properties of protein hydrolysate from grass carp (Ctenopharyngodon idella) skin. Food Chemistry, 104(4), 1698-1704. DOI: org/10.1016/j.foodchem.2007.03.044 ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ بررسی تغییرات فصلی بر میزان فعالیت آنتی‌اکسیدانی جلبک قهوه‌ای Nizamuddinia zanardinii قبل و بعد مانسون در سواحل شمالی دریای عمان Investigation of seasonal changes on the antioxidant activity of brown algae Nizamuddinia zanardinii pre- and post-Monsoon in North coasts of the Oman Sea 1 1 در مطالعه حاضر تأثیر تغییرات فصلی بر محتوای آنتی‌اکسیدانی جلبک قهوه‌ای Nizamuddinia zanardinii در دو بازه زمانی قبل (فروردین لغایت خرداد 1398) و بعد مانسون (مهر لغایت آذر 1398) بررسی شد. نمونه‌برداری از سه ایستگاه بندر تنگ، بندر چابهار و بندر گواتر انجام شد. عصاره متانولی نمونه‌ها استخراج شد. بر اساس نتایج آزمون T تمامی شاخص‌های اندازه‌گیری شده به‌جز میزان IC50 در شرایط بعد مانسون نسبت به شرایط قبل از مانسون به‌ طور معنی‌داری بیشتر بود درحالی‌که میزان IC50 قبل مانسون در سطح بالاتری قرار داشت. نتایج تجزیه واریانس نیز نشان داد که میزان آنتوسیانین (mg/100g DW97/0±13/4) و FRAB (02/0±56/0 درصد) بعد مانسون در ایستگاه بندر گواتر به شکل معنی‌داری کمتر از سایر ایستگاه‌ها بود (05/0p<) درحالی‌که قبل مانسون اختلاف معنی‌داری بین ایستگاه‌‌ها وجود نداشت (05/0p>). میزان فلاونوئید نیز بعد مانسون بین هر سه ایستگاه اختلاف معنی‌داری نشان داد (05/0p<) درحالی‌که قبل مانسون اختلاف معنی‌داری بین ایستگاه‌ها مشاهده نشد (05/0p>). بیشترین میزان فلاونوئید بعد مانسون در ایستگاه بندر چابهار ( mg QE/ 100g DW51/1±41/5) اندازه‌گیری شد. بیشترین میزان IC50 در هر دو شرایط قبل و بعد مانسون در ایستگاه بندر گواتر (به‌ترتیب µg/ml20/2±68/69 و 09/13±08/126) اندازه‌گیری شد که به شکل معنی‌داری بیشتر از سایر ایستگاه‌ها بود (05/0p<)، اما بین سایر ایستگاه‌ها قبل و بعد مانسون اختلاف معنی‌داری مشاهده نشد (05/0p>). در مجموع، نتایج این تحقیق نشان داد که میزان فعالیت آنتی‌اکسیدانی جلبک N. zanardinii به‌جز میزان IC50 بعد مانسون به ‌طور معنی‌داری بیشتر از شرایط قبل از مانسون می‌باشد. این نتایج می‌تواند در بررسی توان آنتی‌اکسیدانی این گونه جهت فعالیت‌های تجاری مورد توجه قرار گیرد. 2 In the present study, the effect of seasonal variability was investigated on the antioxidant content of brown algae Nizamuddinia zanardinii in the pre (April to June 2019) and post (October to December 2019) monsoon periods. Sampling was performed from Tang Bay, Chabahar Port and Goater Bay. T-test results indicated that all indices except IC50 were significantly higher in post monsoone condition compared pre monsoon (p<0.05). While, IC50 significantly higher in pre monsoon (p<0.05).  Comparison of results between stations indicated the levels of anthocyanin (4.13±0.97 DW/mg) and FRAB (0.56±0.02%) at Goater bay in pre monsoon were significantly lower than compared other stations (p<0.05); While, there was no significant difference between stations in post monsoon (p>0.05). The level of flavonoids showed a significant difference between all three stations in post monsoon (p<0.05); whereas no significant difference was observed between stations in pre monsoon (p>0.05). The highest amount of flavonoids in post monsoon were measured at Chabahar Bay Station (5.41±1.51 mg QE/100g DW). The highest level of IC50 was measured in both pre and post monsoon at Goater Bay (respectively 69.68±2 2.20 and 126.08±13.09 μg/ml), which was significantly higher than compared to other stations (p<0.05); But there was no significant difference between other stations in pre and post Monsoon (p>0.05).In conclusion, the results of this study showed that the level of antioxidant activity of N. zanardinii algae except IC50 after monsoon is significantly higher than pre- monsoon conditions. These results can be considered in the study of antioxidant potential of this species for commercial activities. 99 110 2020/10/292021/06/62021/10/22021/07/182020/01/302021/08/102021/10/242021/08/15 1400/5/24 2021/02/222021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/1 1400/9/10 علی مهدی آبکنار Ali Mahdi Abkenar گروه شیلات، واحد چابهار، دانشگاه آزاد اسلامی، چابهار، ایران Iran aliabkenar@gmail.com Abdel-rahman E.H. Saad A.E.A. and Hassanain M.A. 2020. Electrophoretic profile of treated Lymnaea natalensis snails with Pterocladia capillacea Jania rubens and Ulva lactuca algal extracts. Egyptian Journal of Aquatic Biology and Fisheries 24 443� مانسون دریای عمان فعالیت آنتی‌اکسیدانی DPPH Nizamuddinia zanardinii ##اعتمادیان، ی.، خانی پور، ع.ا.، شعبانپور، ب.، کردجزی، م.، قائمی. و. و زحمتکش، ع.ع.، 1396. بررسی خاصیت دارویی 5 جلبک قهوه‌ای بومی حوزه آب‌های جنوب کشور و ترویج آن‌ها برای پرورش. فصلنامه علوم آبزی‌پروری پیشرفته، 1(1): 52-43. ##سارانی یازتپه، ع.م.، 1398. ارزیابی کمی محتوای ترکیبات پلی فنولیک، آنتوسیانین‌‌ها و بتاکاروتن عصاره به دست آمده از سه نوع جلبک بومی منطقه چابهار اولوا، نیزیمودینیا زناردینی و سارگاسوم ایلیسی فولیوم و بررسی اثر ضد اکسیدانی آن‌ها. پایان‌نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه آزاد اسلامی واحد زاهدان، 92 صفحه. ##سارانی یازتپه، ع.م.، حسینی طباطبایی، س.م.ر. و مهدی آبکنار، ع.، 1399. مقایسه فعالیت آنتی‌اکسیدانی و بتا کاروتن استخراج شده از سه گونه جلبک‌های بومی دریای عمان (Ulva lactuca، Sargassum ilicifolium و Nizimuddinia zanardini). مجله علمی شیلات ایران 29 (6): ۵۳-۶۳. 10.22092/ISFJ.2021.123538 DOI: ##محمدی، ع.، 1395. مقایسه خواص فیزیکوشیمیایی و فراسودمندی دو گونه جلبک قهوه‌ای (Iyengaria stellate و Nizimuinia zanardini ) سواحل قشم. پایان‌نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، 65 صفحه. ##محمدی، ع.، شعبانپور، ب. و کردجزی، م.، 1397. اثر عصاره آبی جلبک قهوه‌ای Nizimuddinia zanardini سواحل قشم بر عوامل بیماری‌زای انسان و تعیین خواص ضداکسیدانی آن. مجله علمی پژوهشی زیست‌شناسی دریا، دوره 10، شماره 4، صفحات 82-75. ##مهدی آبکنار، ع.، 1392. بررسی میزان آلژینات‌‌ها در جلبک قهوه‌ای Sargassum illicifolium، Cystoseira indica و Nizamuddinia zanardinii در سواحل استان سیستان و بلوچستان. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، مرکز تحقیقات شیلاتی آب‌های دور – چابهار، 66 صفحه. ##Abdel-Rahman, E.H., Saad, A.E.A. and Hassanain, M.A., 2020. Electrophoretic profile of treated Lymnaea natalensis snails with Pterocladia capillacea, Jania rubens and Ulva lactuca algal extracts. Egyptian Journal of Aquatic Biology and Fisheries, 24, 443–451. DOI: 10.21608/ejabf.2020.71466.##Abka Khajouei, R., Keramat, J., Hamdami, N., Ursu, A.V., Delattre, C., Laroche, C., Gardarin, C., Lecerf, D., Desbrières, J., Djelveh, G. and Michaud, P., 2018. Extraction and characterization of an alginate from the Iranian brown seaweed Nizimuddinia zanardini. International Journal of Biological Macromolecules, 118 (Part A), 1073-1081. DOI: 0.1016/j.ijbiomac.2018.06.154.##Alencar, D.B., Silva, S.R., Pires-cavalcante, K., Lima, R. L., Pereira, F. N., Sousa, M. B., Viana, F.A., Nagano, C.S., Do nascimento, K.D., Cavada, B.S., Sampaio, A.H. and Saker-sampaio, S., 2014. Antioxidant potential and cytotoxic activity of two red seaweed species, Amansia multifida and Meristiella echinocarpa, from the coast of Northeastern Brazil. Anais da academia brasileira de ciências, 86, 251-263.‌ DOI: 10.1590/0001-37652014116312.##Ansari, A. A. and Ghanem, S.M., 2017. Seasonal variation in the growth responses of some chlorophytic algal flora of the Red Sea. The Egyptian Journal of Aquatic Research, 43(2), 129-134.‌ DOI: 10.1016/j.ejar.2017.04.001.##Attaran, G., Jangizehi, S. and Zahedi, M.M., 2015. Seasonal variation of total lipid, fatty acids, fucoxanthin content, and antioxidant properties of two tropical brown algae (Nizamuddinia zanardinii and Cystoseira indica) from Iran. Journal of Applied Phycology, 28(2), 1323-1331.‌ DOI: 10.1007/s10811-015-0645-y##Blois, M.S., 1958. Antioxidant determinations by the use of a stable free radical. Naturevolume, 181, 1199-1200. DOI: 10.1038/1811199a0. ##Cagalj, M., Skroza, D., Tabanelli, G., Özogul, F. and Šimat, V., 2021. Maximizing the antioxidant capacity of padina pavonica by choosing the right drying and extraction methods. Processes, 9, 587. DOI: 10.3390/pr9040587##Chang, C.C., Yang, M.H., Wen, H.M. and Chern, J.C., 2002. Estimation of total flavonoid content in propolis by two complementary colorimetric methods. Journal of Food and Drug Analysis, 10(3), 178-82. DOI:10.38212/2224-6614.2748##El-Chaghaby, G.A., Rashad, S., Abdel-Kader, S.F., Rawash, E.-S.A. and Moneem, M.A., 2019. Assessment of phytochemical components, proximate composition and antioxidant properties of Scenedesmus obliquus, Chlorella vulgaris and Spirulina platensis algae extracts. Egyptian Journal of Aquatic Biology and Fisheries, 23(4), 521–526. DOI:10.21608/ejabf.2019.57884.##Fellah, F., Louaileche, H., Dehbi-Zebboudj, A. and Touati, N., 2017. Seasonal variations in the phenolic compound content and antioxidant activities of three selected species of seaweeds from Tiskerth islet, Bejaia, Algeria. Journal of Materials and Environmental Science, 8(12), 4451-4456.‌ DOI. 10.26872/jmes.##Francavilla, M., Franchi, M., Monteleone, M. and Caroppo, C., 2013. The Red Seaweed Gracilaria gracilis as a Multi Products Source. Marine Drugs, 11, 3754-3776. DOI. 10.3390/md11103754.##Ghorbanli, M., Amirkian Tehran, T. and Niyakan, M., 2012. Seasonal changes in antioxidant activity, flavonoid, anthocyanin and phenolic compounds in Flavoparmelia caperata (L.) Hale and Physcia dubia (Hoffm.) Lettau from Babol forest sites in north of Iran. Iranian Journal of Plant Physiology, 2 (3), 461‐ 469. DOI. 10.22034/IJPP.2012.540781.##Kokilam, G., Vasuki, S. and Sajitha, N., 2013. Biochemical composition, alginic acid yield and antioxidant activity of brown seaweeds from Mandapam region, Gulf of Mannar. Journal of Applied Pharmaceutical Science, 3(11), 99-104. DOI. 10.7324/JAPS.2013.31118##Muanda, F.N., Soulimani, R., Diop, B. and Dicko, A., 2011. Study on chemical composition and biological activities of essential oil and extracts from stevia rebaudiana Bertoni leaves. LWT- Food Science and Technology, 44, 1865-1872. DOI. 10.1016/j.lwt.2010.12.002.##Saeed, A.M., Abotaleb, S.I., Alam, N.G., Elmehalawy, A.A. and Gheda, S.F., 2020. In vitro assessment of antimicrobial, antioxidant and anticancer activities of some marine macroalgae. Egyptian Journal of Botany, 60, 81–96. DOI. 10.21608/EJBO.2019.11363.1303##Sanchez-Machado, D.I., Lopez-Cervantes, J., Lopez-Hernandez, J. and Paseiro-Losada, P., 2004. Fatty acids, total lipid, protein and ash contents of processed edible seaweeds. Food Chemistry, 85(3), 439-444. DOI. 10.1016/j.foodchem.2003.08.001.##Sellimi, S., Younes, I., Ben Ayed, H., Maalej, H., Montero, V., Rinaudo, M., Dahia, M., Mechichi, T., Hajji, M. and Nasri, M., 2015. Structural, physicochemical and antioxidant properties of sodium alginate isolated from a Tunisian brown seaweed. International Journal of Biological Macromolecules, 72, 1358–1367. DOI. 10.1016/j.ijbiomac.2014.10.016.##Taga, M.S., Miller, E.E. and Pratt, D.E., 1984. Chia seeds as a source of natural lipid antioxidants. Journal of the American Oil Chemists’ Society, 61(5), 928-931. DOI. 10.1007/BF02542169.##Zhang, Y., Li, Q., Xing, H., Lu, X., Zhao, L., Qu, K. and Bi, K., 2013. Evaluation of antioxidant activity of ten compounds in different tea samples by means of an on-line HPLC–DPPH assay. Food Research International, 53(2), 847-856.‌ DOI. 10.1016/j.foodres.2013.03.026##Zucchi, M. R. and Necchi Jr., O., 2001. Effects of temperature, irradiance and photoperiod on growth and pigment content in some freshwater red algae in culture. Phycological Research, 49(2), 103-114.‌ DOI. 10.1111/j.1440-1835.2001.tb00240.x. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ بررسی ویژگی‌های زیستگاهی قزل‌آلای خال قرمز (Salmo trutta Linnaeus, 1758) در سرشاخه‌های رودخانه طالقان Habitat characteristics of Brown trout (Salmo trutta Linnaeus, 1758) in tributaries of the Taleghan River 1 1 این مطالعه در سال 1396 با نمونه‌‌برداری از 7 ایستگاه در سرشاخه‌‌های رودخانه طالقان به ‌‌منظور تعیین مطلوبیت زیستگاه ماهی قزل‌‌آلای خال قرمز (Salmo trutta) انجام شد. نمونه‌برداری با استفاده از دستگاه الکتروشوکر به صورت سه تکرار در هر ایستگاه صورت گرفت. هشت فاکتور محیطی از جمله درجه حرارت آب (درجه سانتیگراد)، عمق آب (سانتیمتر)، عرض رودخانه (متر)، شیب (درجه)، سرعت جریان آب (متر بر ثانیه)، قطر متوسط سنگ بستر (سانتیمتر)، عرض ساحل و ارتفاع از سطح دریا مورد سنجش قرار گرفتند. مقادیر عددی شاخص مطلوبیت فاکتورهای مورد مطالعه در هر ایستگاه تعیین و میانگین حسابی شاخص‌‌های مطلوبیت هر فاکتور در کلیه ایستگاه‌‌های نمونه‌‌برداری به ‌‌عنوان شاخص مطلوبیت آن فاکتور در نظر گرفته شد. بر طبق نتایج، مطلوب‌ترین دما در دامنه 12-5/10 درجه سانتیگراد، مطلوب‌ترین عمق در دامنه‌‌ 30-20 سانتیمتر، مطلوب‌ترین عرض رودخانه در دامنه 0/3-5/2 متر، مطلوب‌ترین شیب در دامنه 9/1-6/1، مطلوب‌ترین سرعت آب در دامنه 62/0-41/0 متر بر ثانیه، مطلوب‌ترین ارتفاع در دامنه 3000-2250 متر و مطلوب‌ترین قطر سنگ بستر در دامنه 20-11 سانتیمتر و مطلوب‌ترین عرض ناحیه ساحلی 6/3-8/1 متر محاسبه شد. به عنوان یک نتیجه‌گیری کلی، رودخانه طالقان دارای مطلوبیت متوسط برای ماهی قزل‌‌آلای خال قرمز بود. 2 This study was conducted in 2017 by sampling from 7 stations in the headwaters of the Taleghan River to study the habitat suitability of Brown trout, Salmo trutta. Sampling was carried out using an electrofishing device with three replications in each station. Eight environmental factors, including water temperature (°C), water depth (cm), river width (m), slope (degree), water velocity (m/s), average diameter of the dominant bedrock (cm), potamal width and elevations were measured. The values of suitability index of the studied factors in each station were determined and the arithmetic mean of the indices in all sampling stations was considered as the suitability index of that factor. The results showed that the most preferred temperature is in the range of 10-5-12°C, depth in 20-30cm, river width in of 2.5-3m, slope in 1.6-1.9, water velocity in 0.41-0.62m/s, elevation in 2250-300 m and average diameter of the dominant bedrock in 11-20cm, and the potamal width 1.8-3.6m were calculated. As a general conclusion, the Taleghan River had a moderate suitability for S. trutta. 111 120 2020/10/292021/06/62021/10/22021/07/182020/01/302021/08/102021/10/242021/08/152021/10/15 1400/7/23 2021/02/222021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/1 1400/9/10 سهیل ایگدری Soheil Eagderi گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران Iran soheil.eagderi@ut.ac.ir عطا مولودی صالح Atta Mouludi-Saleh گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران Iran atta.mouludisleh@ut.ac.ir محمد محمودی Mohammad Mahmoudi اداره کل حفاظت محیط زیست استان البرز، کرج، ایران. Iran moh_mahmoudi@gmail.com فردین حکیمی Fardin Hakimi اداره کل حفاظت محیط زیست استان البرز، کرج، ایران. Iran f.hakimi564@gmail.com Taleghan River Alborz Province Caspian basin Brown trout Habitat suitability رودخانه طالقان استان البرز حوضه آبریز دریای خزر قزل‌‌آلای خال قرمز مطلوبیت زیستگاه ##ایگدری، س.، زمانی فرادنبه، م.، پورباقر، ه. و مولودی صالح، ع.، 1400. مطالعه و مقایسه ترجیح زیستگاه جویبارماهی سفیدرود Oxynoemacheilus bergianus (Steindachner, 1897) رودخانه جاجرود در دو فصل پاییز و زمستان. نشریه محیط زیست طبیعی، 74(1): 11-1. DOI: 10.22059/jne.2021.311177.2087##حسنلی، ع. م.، 1379. روش‌های گوناگون اندازه گیری آب (هیدرومتری). انتشارات دانشگاه شیراز، 265 صفحه.##زرکامی، ر.، گودرزی، ص. و سحرخیز، م.، 1400. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه ماهی قزل‌آلای خال قرمز (Salmo trutta fario) در رودخانه چالوس با استفاده از مدل خطی تعمیم ‌یافته. شیلات، 74(1): 152-139. DOI: 10.22059/jfisheries.2021.317271.1222##سازمان جغرافیایی نیروهای مسلح، 13۸3. فرهنگ جغرافیایی رودهای کشور، حوزه آبریز ایران شمالی، انتشارات سازمان جغرافیایی.##سیهار، ج.ج.، 1991. کتاب راهنمای رنگی ماهیان آب شیرین. ترجمه دقیق روحی، ح. انتشارات موج سبز. 120 صفحه.##صلواتیان، م، عباسی، ک.، پورغلامی مقدم، ا.، سهرابی لنگرودی، ت. و عبداله پور بی ریا، ح.، 1396. مقایسه مورفومریستیک قزل آلای خال قرمز (Salmo trutta fario) رودخانه های حویق و شفارود استان گیلان. مجله علوم تکثیر و آبزی پروری، 4(13): 60-51.##طباطبایی، س.ن.، هاشم زاده، ا.، ایگدری، س. و زمانی فرادنبه، م.، 1393. عوامل تعیین کننده در زیستگاه انتخابی ماهی (Paracobitis iranica (Nalbant and Bianco 1998 در رودخانه کردان، حوضه دریاچه نمک. مجله بوم‌شناسی آبزیان، 3(4): 9-1. ##لطفی، ا.، 1391. راهنمای ارزیابی سریع خصوصیات محیط زیستی رودخانه‌ها. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست، 120صفحه.##مرادپوردرازکلایی، آ.، حق پرست، س.، رحمانی، ح. و آقایی مقدم، ع.، 1399. تعیین شاخص مطلوبیت زیستگاه و مهمترین عوامل اثر گذار بر الگوی پراکنش سیاه‌ماهی (Capoeta capoeta) در رودخانه رودبابل، استان مازندران. نشریه علمی پژوهشی پژوهش‌های ماهی شناسی کاربردی، ۸(۴) :14-1.DOI: 10.22034/jair.8.4.1##Ahmadi-Nedushan, B., St-Hilaire, A., Bérubé, M., Robichaud, É., Thiémonge, N. and Bobée, B., 2006. A review of statistical methods for the evaluation of aquatic habitat suitability for instream flow assessment. River Research and Applications, 22: 503-523. DOI: 10.1002/rra.918##Baker, J.A. and Ross, S.T., 1981. Spatial and temporal resource utilization by south eastern cyprinids. Copiea, 178-89. DOI: 10.2307/1444052##Bovee, K.D., 1986. Development and evaluation of habitat suitability criteria for use in the instream flow incremental methodology. Instream Flow Information Paper 21, U.S. Fish and Wildlife Ser. Biological Reports, 86(7): 1-235.##Chuang, L.C., Lin, Y.S. and Liang, S.H., 2006. Ecomorphological Comparison and Habitat## ## Preference of 2 Cyprinid Fishes, Varicorhinus barbatulus and Candidia barbatus, in Hapen Creek of Northern Taiwan. Zoological Studies, 45(1): 114-123.##Collen, B., Whitton, F., Dyer, E.E., Baillie, J.E.M., Cumberlidge, N., Darwall, W.R.T., Pollock, C., Richman, N.I., Soulsby, A.M. and B¨ohm, M., 2014. Global patterns of freshwater species diversity, threat and endemism. Global ecology and Biogeography, 23: 40-51. DOI: 10.1111/geb.12096##Consulting, J., 2014. Analysis of Habitat Suitability data. Available http://www.jowettconsulting.co.nz. Cited 2 March 2014.##Chen, X., Li, G., Feng, B. and Tian, S. 2009. Habitat suitability index of Chub mackerel (Scomber japonicus) from July to September in the East China Sea. Journal of Oceanography, 65(1): 93-102. DOI: 10.1007/s10872-009-0009-9##Damalas, D., Maravelias, C.D., Katsanevakis, S., Karageorgis, A.P. and Papaconstantinou, C., 2010. Seasonal aboundance of non-commercial demersal fish in the easter Meditarranean Sea in relation to hydrographic and sediment characteristics. Estuarine, Coastal and Shelf Science, 89: 107-118. DOI: 10.1016/j.ecss.2010.06.002##De Kerckhove, D.T., Smokorowski, K.E. and Randall, R.G., 2008. Department of Fisheries and Oceans, Sault Ste. Marie, ON (Canada). Great Lakes Lab. for Fisheries and Aquatic Sciences. A primer on fish habitat models (No. 2817). DFO, Sault Ste. Marie, ON (Canada).##Dudgeon, D., Arthington, A.H., Gessner, M.O., Kawabata, Z.I., Knowler, D.J., Lévêque, C. and Sullivan, C.A., 2006. Freshwater biodiversity: importance, threats, status and conservation challenges. Biological Reviews, 81: 163-182. DOI: 10.1017/S1464793105006950##Esmaeili, H.R., Sayyadzadeh, G., Eagderi, S. and Abbasi, K., 2018. Checklist of freshwater fishes of Iran. FishTaxa, 3(3): 1-95.##Froese, R. and Pauly, D., (Editors), 2011. FishBase. World Wide Webelectronic publication. Available http://www.fishbase.org. Cited 1 Jan 2011. ##Gorman, O.T. and Karr, J.R., 1978. Habitat structure and stream fish communities. Ecology, 59: 507-515. DOI: 10.2307/1936581##Li, F., Cai, O., Fu, X. and Liu, J., 2009. Construction of habitat suitability models (HSMs) for benthic macro invertebrate and their applications to instream environmental flows: A case study in Xiangxi River of Three Gorges Reservior region, China. Progress in Natural Science, 19: 359-367. DOI: 10.1016/j.pnsc.2008.07.011##Light-foot, G.W. and Jones, N.V., 1979. The relationship between the size of 0 group roach (Rutilus rutilus (L.), their swimming capabilities and distribution in a river. In Proceedings of the First British Freshwater Conference, University of Liver pool, pp. 230-236.##Marsh, P.C., Kesner, B.R. and Pacey, C.A., 2005. Repatriation as a management strategy to conserve a critically imperiled fish species. North American Journal of Fisheries Management, 25: 547-556.##McCain, M.E., 1992. Comparison of Habitat Use and Availability for Juvenile Fall Chinook Salmon in A Tributary of the Smith River, CA. Fish Habitat Relationship (FHR). Technical Bulletin, 7: 1-9.##Platts, W.S., Megahan, W.F. and Minshall, G.W., 1983. Methods for evaluating stream, riparian, and biotic conditions. Gen. Tech. Rep. INT-138. Ogden, UT: U.S. Department of Agriculture, Forest Service, Intermountain Forest and Range Experiment Station; 70 P.##Pont, D., Hugueny, B. and Oberdorff, T., 2005. Modelling habitat requirement of European fishes: do species have similar responses to local and regional environmental constraints? Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 62(1): 163-173. DOI: 10.1139/f04-183##Pusey, B.J., Arthington, A.H. and Read, M.G., 1993. Spatial and temporal variation in fish assemblage structure in the Mary River, south-eastern Queensland: the influence of habitat structure. Environmental Biology of Fishes, 37: 355-380. DOI: 10.1007/BF00005204##Rifflart, R., Carrel, G., Le Coarer, Y. and Fontez, B.N.T., 2009. Spatio‐temporal patterns of fish assemblages in a large regulated alluvial river. Freshwater Biology, 54(7): 1544-1559. DOI: 10.1111/j.1365-2427.2009.02200.x##Smokorowski, K.E. and Pratt, T.C., 2007. Effect of a change in physical structure and cover on fish and fish habitat in freshwater ecosystems-a review and meta-analysis. Environmental Reviews, 15(NA): 15-41. DOI: 10.1139/a06-007##Stalnaker, C.B., Lamb, B.L., Henriksen, J., Bovee, K. and Bartholow, J., 1995. The Instream Flow Incremental Methodology: A Primer for IFIM. Biological Report 29. Washington, DC: U.S.##Geological Survey. 45 P.##Voos, K.A., Lifton, W.S. and Consultants, W.C., 1988. Development of a bivariate depth and velocity suitability function for dolly varden (Salvelinus malma) juveniles. In Proceedings of a workshop on the development and evaluation of habitat suitability criteria. Fort Collins, CO: US Fish and Wildlife Ser. Biological Report, 88(11): 307-319.##Wakeley, J.S., 1988. A method to create simplified versions of existing habitat suitability index (HSI) models. Environmental Management, 12(1): 79-83. DOI: 10.1007/BF01867379##Wootton, R.J., 1990. Ecology of Teleost Fishes. Chapman and Hall, Upper Saddle River, New Jersey. 404 P. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ بررسی اثرات شوری‌‌‌های مختلف بر میزان رنگدانه‌‌‌های ارزشمند ریزجلبک نمکدوستCyanothece sp. شناسایی شده از کشندان پشت سدی لیپار (چابهار) در شرایط آزمایشگاهی Investigation the effects of different salinities on valuable pigments of halophyte microalgae Cyanothece sp. isolated from back barrier Lipar (Chabahar) in laboratory conditions 1 1 یکی از پیش‌‌نیازهای اصلی برای موفقیت در صنعت تولید ریزجلبک و استحصال رنگدانه‌های طبیعی از آنها، انتخاب سویه ریزجلبک مناسب برای پرورش است. در این مطالعه برای نخستین بار جداسازی، خالص‌سازی و شناسایی سویه بومی Cyanothece sp. از آبهای کشندان پشت سدی لیپار (شوری تا 400 قسمت در هزار) چابهار صورت گرفت. سپس این ریزجلبک در پنج سطح مختلف شوری (37، 60، 90، 120 و 180 قسمت در هزار) کشت داده شد و میزان رشد، تولید زی‌توده، محتوی رنگدانه کلروفیل a وb، کارتنوئید کل، بتا‌‌کاروتن و فیکوسیانین مورد سنجش قرار گرفتند. روند رشد با شمارش سلولی و سنجش رنگدانه‌‌ها با استفاده از دستگاه اسپکتوفتومتر اندازه‌گیری شد. نتایج آنالیز داده‌ها نشان داد که با افزایش شوری در دامنه 90-37 قسمت در هزار، تعداد سلول‌‌ها و زی‌توده ریزجلبک به طور معنی‌داری (05/0p<) افزایش یافت و به بیشینه 106× 0/5 سلول بر میلی‌لیتر و 4/1 گرم در لیتر در شوری 90 ppt در روز هشتم کشت رسید. حداکثر محتوی کلروفیل a، کلروفیل b و فیکوسیانین به‌ترتیب 32 میکروگرم بر میلی‌لیتر، 17 میکروگرم بر میلی‌لیتر و 47/2 میکروگرم بر میلی‌لیتر و در شوری 90ppt  به‌دست آمد. با افزایش شوری محیط کشت از 90-37 و120 ppt، میزان کارتنوئید کل نیز به طور معنی‌داری افزایش یافت به‌طوری‌که از 8/0 به 67/4 میکروگرم بر میلی‌لیتر رسید. بتا‌‌کاروتن نیز از 03/0 الی 17/0 میکروگرم بر میلی‌لیتر افزایش یافت. بر اساس نتایج به‌دست آمده، به‌نظر می‌‌رسد رشد مطلوب و بیشینه میزان رنگدانه‌‌های ارزشمند در ریزجلبک Cyanothece sp. در شوری 120-90 قسمت در هزار، قابل دستیابی است. 2 One of the main prerequisites for success in the microalgae production industry and the extraction of natural pigments from them is the selection of a suitable microalgae strain for culture. In this study, for the first time, isolation, purification and identification of native strain of Cyanothece sp. Chabahar was taken from Lipar back barrier (salinity up to 400 part per thousand, ppt). In the next step, to find suitable conditions for growing, this microalga was cultured in five different salinity levels (37, 60, 90, 120, 180 ppt) and growth rate, biomass production, chlorophyll a and b pigment content, total carotenoids and phycocyanin were assayed. The growth performance was performed by cell counting and measuring pigments using a spectrophotometer method. The analysis of data showed that increasing salinity from 37 to 90 ppt increased the number of microalgae cells and biomass and the maximum number of cells was 5×106 cells per ml and biomass 1.4 g/L was obtained at a salinity of 90 ppt. The maximum contents of chlorophyll a, chlorophyll b and phycocyanin were obtained (32μg/ml), (17μg/ml) and (2.47 μg/ml) at 90 ppt salinity, respectively. By increasing the salinity from 37 to 120 ppt, the total carotenoids production and beta-carotene also increased significantly, so that the amount of carotenoids reached from 0.8 to 4.67 μg/ml. Beta-carotene also increased from 0.03 to 0.17 mg/ml. Based on this information, optimal growth and accumulation of economic pigments in microalgae Cyanothece sp. can be obtained at salinity 90 to 120 ppt. 121 133 2020/10/292021/06/62021/10/22021/07/182020/01/302021/08/102021/10/242021/08/152021/10/152021/06/16 1400/3/26 2021/02/222021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/1 1400/9/10 زهرا امینی خوئی Zahra Aminikhoei مرکز تحقیقات شیلاتی آبهای دور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، چابهار، ایران Iran zamini.41@gmail.com الناز عرفانی فر مرکز تحقیقات شیلاتی آبهای دور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، چابهار، ایران Iran elnaz_erfani@yahoo.com اشکان اژدری Ashkan Ajdari مرکز تحقیقات شیلاتی آبهای دور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، چابهار، ایران Iran a_arzhan@yahoo.com سیما ابیر Sima Abir مرکز تحقیقات شیلاتی آبهای دور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، چابهار، ایران Iran siimaabir74@gmail.com Microalgae Cyanothece sp. Salinity Growth Beta-carotene Phycocyanin ریز‌‌جلبکCyanothece sp. شوری رشد بتا‌‌کاروتن فیکوسیانین ##اربابی، س.، اکبری، پ. و امینی خوئی، ز،. 1399. بررسی تاثیر روش لخته سازی بر راندمان برداشت زی‌‌توده و محتوی اسیدهای چرب ریزجلبک Dunaliella salina، جداسازی شده از تالاب لیپار، چابهار. مجله علمی شیلات ایران، (6): 120-109.##عنایتی، ش.، 1389. تاثیر شوری بر رشد، غلظت کلروفیل و بتاکاروتن در جلبک Dunaliella sp.جداسازی شده از خلیج چابهار. پایان نامه، گروه شیلات و محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران. ##Andersen, R.A. and Kawachi, M., 2005. Algal culturing techniques. Elsevier/Academic Press, New York, 205–218.##Azachi, M., Sadka, A., Fisher, M., Goldshlag, P., Gokhman, I. and Zamir, A., 2002. Salt induction of fatty acid elongase and membrane lipid modifications in the extreme halotolerant alga Dunaliella salina. Plant Physiology, 129:1320–1329. DOI:10.1104/pp.001909.##Ben-Amotz, A., 2004. Industrial production of microalgal cell-mass and secondary products major industrial species: Dunaliella. In: Richmond A (ed) Microalgal culture: biotechnology and applied phycology. Blackwell Science Oxford. pp. 273–280. DOI:10.1007/s00253-007-0844-9.##Chi, Z., Su, C.D. and Lu, W.D., 2007. A new exopolysaccharide produced by marine Cyanothece sp.. Bioresource Technology, 98(6): 1329-1332. DOI:10.1016/j.biortech.2006.05.001.##De Philippis, R., Margheri, M.C., Pelosi, E. and Ventura, S., 1993. Exopolysaccharide production by a unicellular cyanobacterium isolated from a hypersaline habitat. Journal of Applied Phycology, 5(4): 387-394. DOI:10.1007/BF02182731.##Dechatiwongse, P., Srisamai, S., Maitland, G. and Hellgardt, K., 2014. Effects of light and temperature on the photoautotrophic growth and photoinhibition of nitrogen-fixing cyanobacterium Cyanothece sp. ATCC 51142. Algal Research, 5: 103-111. DOI:10.1016/j.algal.2014.06.004.##Dufossé, L., Galaup, P., Yaron, A., Arad, S.M., Blanc, P., Murthy, K.N.C. and Ravishankar, G.A., 2005. Microorganisms and microalgae as sources of pigments for food use: a scientific oddity or an industrial reality? Trends in Food Science & Technology, 16(9): 389-406. DOI:10.1016/j.tifs.2005.02.006.##El Baz, F.K., Aboul-Enein, A.M., El-Baroty, G.S., Youssef, A.M. and Abdel-Baky, H.H., 2002. Accumulation of Antioxidant Vitamins in Dunaliella salina; F.A.O.: Rome, Italy.## ##El Semary, N.A. and Fouda, M., 2015. Anticancer activity of Cyanothece sp. strain extracts from Egypt: First record. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 5(12): 992-995. DOI:10.1016/j.apjtb.2015.09.004.##Hejazi, M.A., De Lamarliere, C., Rocha, J.M.S., Vermue, M., Tramper, J. and Wijffels, R.H., 2002. Selective extraction of carotenoids from the microalga Dunaliella salina with retention of viability. Biotechnology and Bioengineering, 79(1): 29-36. DOI:10.1002/bit.10270.##Jeffrey, S.T. and Humphrey, G., 1975. New spectrophotometric equations for determining chlorophylls a, b, c1 and c2 in higher plants, algae and natural phytoplankton. Biochemie und Physiologie der Pflanzen, 167: 191-194. DOI:10.1016/S0015-3796(17)30778-3.##Kaushik, B.D., 1987. Laboratory methods for blue –green algae, Associated Publixhing Company. DOI:.org/10.22092/BOTANY.2016.105984##Komárek, J., Kaštovský, J., Mareš, J. and Johansen, J., 2014. Taxonomic classification of cyanoprokaryotes (cyanobacterial genera), using a polyphasic approach. European Journal of Phycology, 86(4): 295-335. ##Krishnakumar, S., Gaudana, S.B., Digmurti, M.G., Viswanathan, G.A., Chetty, M. and Wangikar, P.P., 2015. Influence of mixotrophic growth on rhythmic oscillations in expression of metabolic pathways in diazotrophic cyanobacterium Cyanothece sp. ATCC 51142. Bioresource Technology, 188: 145-152. DOI:10.1016/j.biortech.2015.02.016.##Lauritano, C., Andersen, J.H., Hansen, E., Albrigtsen, M., Escalera, L., Esposito, F., Helland, K., Hanssen, K.Ø., Romano, G. and Ianora, A., 2016. Bioactivity screening of microalgae for antioxidant, anti-inflammatory, anticancer, anti-diabetes and antibacterial activities. Frontiers in Marine Science, 3: 1–12. DOI:10.3389/fmars.2016.00068.##Martínez Andrade, K.A., Lauritano, C., Romano, G. and Ianora, A., 2018. Marine microalgae with anti-cancer properties. Marine Drugs, 16(5): 165-185. DOI:10.3390/md16050165.##Matos, Â.P., 2017. The impact of microalgae in food science and technology. Journal of the American Oil Chemists' Society, 94(11): 1333-1350. DOI:10.1007/s11746-017-3050-7.##Melis, A., Neidhardt, J. and Benemann, J., 1999. Dunaliella salina (Chlorophyta) with small chlorophyll antenna sizes exhibit higher photosynthetic productivities and photon use efficiencies than normally pigmented cells. Journal of Applied Phycology, 10: 515–525. https://org/10.1023/A:1008076231267.##Mota, R., Pereira, S.B., Meazzini, M., Fernandes, R., Santos, A., Evans, C.A., De Philippis, R., Wright, P.C. and Tamagnini, P., 2015. Effects of heavy metals on Cyanothece sp. CCY 0110 growth, extracellular polymeric substances (EPS) production, ultrastructure and protein profiles. Journal of Proteomics, 120: 75-94. DOI:10.1016/j.jprot.2015.03.004.##Mota, R., Guimarães, R., Büttel, Z., Rossi, F., Colica, G., Silva, C.J., Santos, C., Gales, L., Zille, A., De Philippis, R. and Pereira, S.B., 2013. Production and characterization of extracellular carbohydrate polymer from Cyanothece sp. CCY 0110. Carbohydrate Polymers, 92(2): 1408-1415. DOI:10.1016/j.carbpol.2012.10.070.##Mota, R., Vidal, R., Pandeirada, C., Flores, C., Adessi, A., De Philippis, R., Nunes, C., Coimbra, M.A. and Tamagnini, P., 2020. Cyanoflan: A cyanobacterial sulfated carbohydrate polymer with emulsifying properties. Carbohydrate Polymers, 229: 115-525. DOI:10.1016/j.carbpol.2019.115525.##Novoveská, L., Ross, M.E., Stanley, M.S., Pradelles, R., Wasiolek, V. and Sassi, J.F., 2019. Microalgal carotenoids: A review of production, current markets, regulations, and future direction. Marine Drugs, 17(11): 640. DOI:10.3390/md17110640.##Ohki, K., Le, N.Q.T., Yoshikawa, S., Kanesaki, Y., Okajima, M., Kaneko, T. and Thi, T.H., 2014. Exopolysaccharide production by a unicellular freshwater cyanobacterium Cyanothece sp. isolated from a rice field in Vietnam. Journal of Applied Phycology, 26(1): 265-272. DOI:10.1007/s10811-013-0094-4.##Pagels, F., Pereira, R.N., Vicente, A.A. and Guedes, A., 2021. Extraction of Pigments from Microalgae and Cyanobacteria—A Review on Current Methodologies. Applied Sciences, 11(11): 51-87. DOI:10.3390/app11115187.##Rafiqul, I. M., Hassan, A., Sulebele, G., Orosco, C. A., Roustaian, P. and Jalal, K. C. A. 2003. Salt stress culture of blue green algae Spirulina fusiformis. Pakistan Journal of Biological Sciences, 6: 648–650.##Roy, S.S. and Pal, R., 2015, June. Microalgae in aquaculture: a review with special references to nutritional value and fish dietetics. In Proceedings of the Zoological Society, 68: 1-8. DOI:10.1007/s12595-013-0089-9.##Saito, M., Endo, K., Kobayashi, K., Watanabe, M., Ikeuchi, M., Murakami, A., Murata, N. and Wada, H., 2018. High myristic acid content in the cyanobacterium Cyanothece sp. PCC 8801 results from substrate specificity of lysophosphatidic acid acyltransferase. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Molecular and Cell Biology of Lipids, 1863(9): 939-947. DOI:10.1016/j.bbalip.2018.05.011.##Schneegurt, M.A., Arieli, B., McKeehen, J.D., Stephens, S.D., Nielsen, S.S., Saha, P.R., Trumbo, P.R. and Sherman, L.A., 1995. Compositional and toxicological evaluation of the diazotrophic cyanobacterium, Cyanothece sp. strain ATCC 51142. Aquaculture, 134(3-4): 339-349. DOI:10.1016/0044-8486(95)00054-6.##Silveira, S.T., Burkert, J.D.M., Costa, J.A.V., Burkert, C.A.V. and Kalil, S.J., 2007. Optimization of phycocyanin extraction from Spirulina platensis using factorial design. Bioresource Technology, 98(8): 1629-1634. DOI:10.1016/j.biortech.2006.05.050.##Sinetova, M.A., Červený, J., Zavřel, T. and Nedbal, L., 2012. On the dynamics and constraints of batch culture growth of the cyanobacterium Cyanothece sp. ATCC 51142. Journal of Biotechnology, 162(1): 148-155. DOI:10.1016/j.jbiotec.2012.04.009.##Sommer, T.R, D’Souza F.M.L. and Morrissy, N.M., 1992. Pigmentation of adult rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, using the green alga Haematococcus pluvialis. Aquaculture, 106: 63–74. DOI:10.1016/0044-8486(92)90250-O.##Wilde, E.W. and Fliermans, C.B., 1979. Fluorescence microscopy for algal studies. Transactions of the American Microscopical Society, 98: 96-102. DOI:10.2307/3225943.##Zhang, X., Yang, S., Sun, J., Wu, C., Wang, J., Zhang, G. and Ding, C., 2018. Morphology, ultrastructure and phylogeny of Cyanothece sp. (Cyanobacteriaceae: Cyanophyceae) isolated from the eastern Indian Ocean. Acta Oceanologica Sinica, 37(10): 4-10. DOI:10.1007/s13131-018-1297-y. ##

مقاله علمی – پژوهشی: ارزیابی اثرات حمام با غلظت‌های مختلف عصاره‌ هیدرو‌‌الکلی آلوئه‌ورا Aloe brabadensis)) بر کنترل ساپرولگنیازیس، شاخص‌های خونی و پاسخ‌های ایمنی ماهی قزل‌آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) Effect different concentrations of hydro-alcoholic Aloe vera )Aloe brabadensis) extract by bath therapy on blood indices and immune responses and control of saprolegniasis in rainbow trout 1 1 هدف از این تحقیق بررسی اثر غلظت‌های مختلف عصاره‌ی هیدرو‌الکلی گیاه آلوئه‌‌‌ورا با روش حمام‌درمانی بر شاخص‌های سرمی، خونی و کنترل بیماری ساپرولگنیازیس در ماهی قزل‌آلای ‌رنگین‌کمان بود. بدین منظور، 180 ماهی با میانگین وزن 27/0±22 گرم پس از 10 روز سازگاری با محیط، در 4 چهار گروه آزمایش و دو گروه شاهد منفی (بدون آلودگی و بدون درمان با آلوئه‌‌‌ورا) و شاهد مثبت (با آلودگی و بدون درمان با آلوئه‌‌‌ورا) با سه تکرار (هرتکرار 30 قطعه ماهی) به طور تصادفی تقسیم شدند. پس از فلس‌‌برداری از ساقه‌ دمی ماهیان، به استثناء گروه شاهد منفی سایر گروه‌ها با غلظت 105×3 زئوسپور Saprolegnia parasitica در هر لیتر آب به مدت 4 ساعت آلوده شدند. پس از آن، چهار گروه آزمایش روزانه یک ساعت و به مدت یک هفته به‌ترتیب 50، 100، 150 و 200 میلی‌گرم در لیتر عصاره‌ هیدروالکلی آلوئه‌‌‌ورا دریافت کردند. بررسی نتایج آزمایش‌ها در پایان یک هفته حمام‌دهی با غلظت‌های مختلف آلوئه‌‌‌ورا (هفته اول) و یک هفته پس از قطع حمام‌دهی (هفته دوم)، نشان داد که شاخص‌های خون‌شناسی، بیوشیمیایی سرم و ایمنی ماهی قزل‌آلای‌ رنگین‌کمان درمان شده 100 میلی‌گرم بر لیتر عصاره هیدروالکلی آلوئه‌‌‌ورا به صورت معنی‌داری افزایش یافته است. همچنین در این غلظت کم ترین تلفات در ماهیان مشاهده شد که نسبت به گروه کنترل مثبت تفاوت معنی‌دار آماری داشت (p<0/05). با توجه به نتایج به‌دست آمده می‌توان گفت که عصاره هیدروالکلی آلوئه‌ورا، اثر ضد قارچی علیه  S. parasitica دارد و برای درمان می‌توان حمام با غلظت 100 میلی‌گرم بر لیتر روزانه به مدت یک ساعت، برای یک دوره یک هفته‌ای را پیشنهاد نمود. 2 The aim of this study was to evaluate the effect of hydroalcoholic extract of Aloe vera plant by bath therapy on immunological and blood parameters and control of saprolegniasis in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). After two weeks of adaptation, fish with an average weight of 22±0.27g were randomly divided into 6 experimental treatments with three replications (30 fish repetitions each). After scaling from the caudal fin, the fish were infected with 3×105 zoospores of Saprolegnia parasitica per litter for 4 hours. After that, four treatments received 50, 100, 150 and 200 mg/L Aloe vera hydroalcoholic extract for one hour daily for one week. The other two treatments belonged to the positive control groups (with infection and without Aloe vera treatment) and the negative control group (without infection and without Aloe vera treatment). Evaluation of hematological and immunological parameters at the end of one week of bathing with the above concentrations (first week) and one week after cessation of bathing (second week) showed that hematological, biochemical and immunological parameters of rainbow trout (O. mykiss) treated with 100 mg/l Aloe vera hydroalcoholic extract was significantly increased. Also, at this concentration of hydroalcoholic extract of Aloe vera, minimal losses were observed, which was statistically significant compared to the control group. According to the results, treatment of rainbow trout with saprolegniasis with 100 mg of hydroalcoholic extract of Aloe vera per litter can improve immune function and increase their survival against saprolegniasis. 135 146 2020/10/292021/06/62021/10/22021/07/182020/01/302021/08/102021/10/242021/08/152021/10/152021/06/162020/10/20 1399/7/29 2021/02/222021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/1 1400/9/10 نرگس عالیشاه Narges Alishah دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری Iran n.alishah69@gmail.com فرید فیروزبخش Farid Firouzbakhsh دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری Iran f.firouzbakhsh@yahoo.com زیبنده محرابی Zibandeh Mehrabi سازمان شیلات ایران، معاونت توسعه‌ی آبزی‌پروری Iran zi_mehrabi@yahoo.com Aloe vera Saprolegniasis Rainbow trout Bath therapy Hematology آلوئه‌ورا ساپرولگنیازیس قزل‌آلای رنگین‌‌کمان حمام درمانی خون‌ شناسی ##Adel, M., Dadar, M., Zorriehzahra, J., Elahi, R. and Stadtlander, T., 2020. Antifungal activity and chemical composition of Iranian medicinal herbs against fish pathogenic fungus, Saprolegnia parasitica. Iranian journal of fisheries sciences, 19(6): 3239-3254. https://doi.org/20.1001.1.15622916.2020.19.6.5.7##Adel, M., Pourgholam, R., Zorriehzahra, J. and Ghiasi, M., 2016. Hemato–Immunological and biochemical parameters, skin antibacterial activity, and survival in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) following the diet supplemented with Mentha piperita against Yersinia ruckeri. Fish & shellfish immunology, 55: 267-273. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2016.05.040.##Ahmadifar, E., Azari Takami, G.A. and Sudagar, M., 2009. Growth performance, survival and immunostimulation, of Beluga (Huso huso) juvenile following dietary administration of alginicacid (Ergosan). Pakistan journal of nutrition, 8(3): 227232. http://dx.doi.org/10.3923/pjn.2009.227.232.##Akbari, P., 2015. Effect of Aloe vera extract on wound healing in (Mugil cephalus). Journal of Animal Research (Iranian Journal of Biology), 28(3): 383-388.##Alderman, D.J. and Clifton, H., 1993. Malachite green: a pharmacokinetic study in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Journal of fish diseases, 16: 297-311. https://doi.org/10.1111/j.1365-2761.1993.tb00864.x.##Alishahi, M., Tulaby Dezfuly, Z., Mohammadian, T. and Mesbah, M., 2017. Effects of Aloe vera crude extract on growth performance and some hemato-immunological indices of Oncorhynchus mykiss in farm scale. Iranian Journal of Veterinary Medicine, 11(4): 383-394. https://dx.doi.org/10.22059/ijvm.2017.231790.1004806.##Alishahi, M., 2011. Effects of different levels of Aloe vera crude extract on the growth rate and resistance against Aeromonas hydrophila infection in Amphilophus labiatus. Journal of marine biology, 2(4): 41-46 http://jmb.iauahvaz.ac.ir/article-1-93-fa.html##Alishah, N., Firouzbakhsh, F. and Mehrabi, Z., 2019. Bathing effects of nettle (Urtica dioica) hydroalcoholic extract on immunological and hematological indices in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) infected with Saprolegnia fungal. Iranian Scientific Fisheries Journal, 28(4): 55-67. https://dx.doi.org/10.22092/isfj.2019.119417.##Bazari Moghaddam, S., Haghighi, M., Sharif Rohani, M., Hamidi, M., and Ghasemi, M., 2016. Effects of Aloe vera extract on growth indices, carcass composition and bacterial flora of intestine in Siberian sturgeon (Acipenser baerii). Iranian scientific fisheries journal, 25(1): 39-52. https://doi.org/10.22092/ISFJ.2017.110222 ##Bazari Moghaddam, S., Haghighi, M., Sharif Rohani, M., Hamidi, M., and Ghasemi, M., 2017. The effects of different levels of Aloe vera extract on some of the hematological and non-specific immune parameters in Siberian sturgeon (Acipenser baerii). Iranian scientific fisheries journal. 16(4): 1234-1247. https://doi.org/10.22092/ISFJ.2017.110222 ##Borges, A., Scotti, L.V., Siqueira, D.R., Jurinitz, D.F. and Wassermann, G.F., 2004. Hematologic and serumbiochemical values for jundiá (Rhamdia quelen). Fish physiology and biochemistry, 30(1): 21-25.https://doi.org/10.1007/s10695-004-5000-1.##Bradford, M.M., 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal biochemistry, 72(1-2): 248-254. https://doi.org/10.1016/0003-2697(76)90527-3.##Channa, A.A., Qazi, I.H., Soomro, S.A., Shah, A.H., Gandahi, J.A., Korejo, R.A., Shah, I.A., Kalhoro, N.A. and Khaskeli, B., 2014. Effect of oral supplementation of Aloe vera extract on haematology indices and immune cells of blood in rabbit. African journal of pharmacy and pharmacology, 8: 497-501. https://doi.org/DOI%2010.5897/AJPP2014.4018.##de Assis, R.W.S. and Urbinati, E.C., 2020. Physiological activity of Aloe vera in pacu (Piaractus mesopotamicus) inoculated with Aeromonashydrophila. Fish physiology and biochemistry, 46: 1421–1430. https://doi.org/10.1007/s10695-020-00800-0.##Devi, G., Harikrishnan, R., Paray, B.A., Al-Sadoon, M.K., Hoseinifar, S.H. and Balasundaram, C., 2019. Effects of aloe-emodin on innate immunity, antioxidant andimmune cytokines mechanisms in the head kidney leucocytes of Labeo rohita against Aphanomyces invadans. Fish and shellfish immunology, 87: 669-678. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2019.02.006.##Ebrahimzadeh Mousavi, H.A., Hoosseinifard, S.M., Khosravi, A.R., Soltani, M. and Yosefian, M., 2007. Isolation and identification of parasite and saprophyte fungi from fungal affected eggs of the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in Mazandaran province. Veterinary research, 62(3): 163-168.##Firouzbakhsh, F., Afsarian, M.H., Hooshangi, S. and Badali, H., 2014. Evaluation of in vitro antifungal activity of Foeniculum, Achillea, Satureja, Cinnamomum and Artemisiaagainst Saprolegnia parasitica. Arak Medical University Journa, 17(5): 60-69. ##Firouzbakhsh, F., Mehrabi, Z., Heydari, M., Khalesi, M.K. and Tajick, M.A., 2014. Protective effects of a synbiotic against experimental Saprolegnia parasitica infection in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture Research, 45(4): 609-618. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2012.03261.x##Gabriel, N.N., Qiang, J., He, J., Ma, X.Y., Kpundeh, M.D. and Xu, P., 2015. Dietary Aloe vera supplementation on growth performance, some haemato-biochemical parameters and disease resistance against Streptococcus iniae in tilapia (GIFT). Fish and shellfish immunology, 44(2): 504-514. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2015.03.002.##Golestan, G., Salati, A.P., Keyvanshokooh, S., Zakeri, M. and Moradian, H., 2015. Effect of dietary Aloe vera on growth and lipid peroxidation indices in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Faculty of Veterinary Medicine, Urmia University, 6(1): 63 – 67. ##Haghighi, M., Sharif Rohani, M., Samadi, M., Tavoli, M., Eslami, M. and Yusefi, R., 2014. Study of effects Aloe vera extract supplemented feed on hematological and immunological indices of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). International Journal of Advanced Biological and Biomedical Research, 2(6): 2143-2154. DOI: 10.33945/SAMI/IJABBR.##Hamman, J.H., 2008. Composition and applications of Aloe vera leaf gel. Molecules, 13(8): 1599-1616. https://doi.org/10.3390/molecules13081599.##Houston, A.H., 1990. Blood and circulation. In: Schreck, C.B. and Moyle, P.B., (eds.) Methods for fish biology. American Fisheries Society, Bethesda, MD, USA, pp. 273-334.##Karimi Pashaki, A., Ghasemi, M., Zorrieh Zahra, J., Shrif Rohani, M. and Hosseini, S.M., 2019. Effectof diets containing aqueousalcoholic extract of olive leaf (Olea eurcpaea L.) on growth performance and some blood and immune parameters in common carp (Cyprinus carpio) fingerlings. Iranian Scientific Fisheries Journal, 27(2): 71-80. Doi: 10. 220092/ISFJ.2018. 116698.##Kumari, J., Sahoo, P.K., Swain, T., Sahoo, S.K., Sahu, A.K. and Mohanty, B.R., 2006. Seasonal variation in the innate immune parameters of the Asian catfish (Clarias batrachus). Aquaculture, 252(2-4): 121-127. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2005.07.025.##Matsuyama, H., Tanaka, K., Nakao, M. and Yano, T., 1988. Characterization of the alternative complement pathway of carp. Developmental and Comparative Immunology, 12(2): 403-408. https://doi.org/10.1016/0145-305X(88)90015-8.##Mehrabi, Z., Firouzbakhsh, F., Rahimi-Mianji, G. and Paknejad, H., 2019. Immunostimulatory effect of Aloe vera (Aloe barbadensis) on non-specific immune response, immune gene expression, and experimental challenge with Saprolegnia parasitica in rainbow trout (Oncorhynchusmykiss). Aquaculture, 500: 330-338. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2019.01.025.##Mehrabi, Z. and Firouzbakhsh, F., 2020. Short-term effects of feeding powdered Aloe vera (Aloe barbadensis) and nettle (Urtica dioica) on growth performance and stimulation of innate immune responses in rainbow trout (Oncorhynchusmykiss). Comparative Clinical Pathology, 29(2): 441-449. https://doi.org/10.1007/s00580-019-03068-w.##Mesbah, M., Alishahi, M., Saberi Afshar, and Mohammadian, 2014. Histopathological study of the influence of Aloe vera extract on wound healing in common carp (Cyprinus carpio). Iranian Veterinary Journal, 9(4): 11-25.##Meyer, F.P. and Jorgenson, T.A., 1983. Teratological and other effects of malachite green on development of rainbow trout and rabbits. Transactions of the American Fisheries Society, 112(6): 818824. https://doi.org/10.1577/15488659(1983)112%3C818:TAOEOM%3E2.0.CO;2.##Nya, E.J. and Austin, B., 2011. Development of immunity in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum) to Aeromonas hydrophila after the dietary application of garlic. Fish and Shellfish Immunology, 30(3): 845–850.##Nayak, S.K., Swain, P., Nanda, P.K., Dash, S., Shukla, S., Meher, P.K. and Maiti, N.K., 2008. Effect of endotoxin on the immunity of Indian major carp, Labeo rohita. Fish and Shellfish Immunology, 24(4): 394-399. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2007.09.005PMID:18289877.##Safari, M., Chelehmal Dezfouli Nejad, M., Mesbah, M. and Jangaran Nejad, A., 2019. Effects of Aloe vera extract on growth and some hematological parameters of shirbot, Tor grypus (Heckel, 1843). Iranian Scientific Fisheries Journal, 18(3): 445-456. DOI: 10.22092/ijfs.2018.118042.##Sahoo, P.K., Kumari, J., Mishra, B.K., 2005. Non‐specific immune responses in juveniles of Indian major carps. Journal of Applied Ichthyology, 21(2): 151-155. https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.2004.00606.x.##Shakib, Z., Shahraki, N., Razavi, B.M. and Hosseinzadeh, H., 2019. Aloe vera as an herbal medicine in the treatment of metabolic syndrome: A review. Phytotherapy Research, 33(10): 2649-2660. https://doi.org/10.1002/ptr.6465 ##Sharif Rohani, M., Haghighi, M. and Bazari Moghadam, S., 2017. Study on nanoparticles of Aleo vera extract on growth performance, survival rate and body composition in Siberian sturgeon (Acipenser baerii). Iranian Journal of Fisheries Sciences, 16: 457-468. https://doi.org/20.1001.1.15622916.2017.16.2.1.4 ##Stoskopf, M.K., 1993. Fish Medicine. W.B. Sanders. Pilladelphia. USA. 220P.##Tafi, A.A., Meshkini, S., Tukmechi, A., Alishahi, M. and Noori, F., 2020. Therapeutic and Histopathological Effect of Aloe vera and Salvia officinalis Hydroethanolic Extracts against Streptococcus iniae in Rainbow Trout. Archives of Razi Institute, 75(2):275-287. https://dx.doi.org/10.22092/ari.2019.122855.1232.##Zanuzzo, F.S., Zaiden, S.F., Senhorini, J.A., Marzocchi-Machado, C.M. and Urbinati, E.C., 2015. Aloe vera bathing improved physical and humoral protection in breeding stock after induced spawning in matrinxã (Brycon amazonicus). Fish and Shellfish Immunology, 45(1): 132-140. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2015.02.017PMID: 25703714. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ ارزیابی کارایی فنی شرکت‌‌های تعاونی صید پره استان گیلان Investigating technical efficiency of beach seine fishery cooperatives in Guilan Province 1 1 این پژوهش با هدف ارزیابی کارایی فنی تعاونی‌‌های صید پره استان گیلان انجام شد. در این تحقیق از روش تحلیل پوششی داده‌‌ها استفاده شد و داده‌‌های این تحقیق با استفاده از پرسشنامه از سطح شرکت‌‌های تعاونی‌‌صید پره در سال 1396 جمع‌‌آوری شد. طبق نتایج به‌‌‌‌دست آمده، این تعاونی‌‌ها به‌‌ طور میانگین 93 درصد کارایی فنی داشته‌‌اند. بنابراین، شرکت‌‌های تعاونی مذکور بدون افزایش نهاده‌‌ها می‌‌توانند به ‌‌طور میانگین 7 درصد صید بیشتری داشته باشند. همچنین حدود 46 درصد از تعاونی‌ها در وضعیت بازدهی افزایشی به مقیاس یا صرفه‌‌های مقیاس و حدود 26 درصد از تعاونی‌‌ها در وضعیت بازدهی کاهشی به مقیاس یا عدم صرفه‌‌های مقیاس قرار دارند. علاوه‌براین، در این مطالعه، مهم‌ترین تعاونی مرجع و نیز امکان کاهش نهاده‌‌ها برای تعاونی‌‌هایی که کارایی 100 درصد ندارند، مشخص شد. در مجموع، هرچند شرکت‌‌های تعاونی صید پره استان گیلان از نظر کارایی فنی در جایگاه مطلوبی قرار دارند، ولی با توجه به میزان کارایی فنی و بازدهی به مقیاس آنها بهتر است، سازمان شیلات ایران برای کارایی بیشتر و کاهش هزینه‌‌ها، تعاونی‌‌هایی با کارآیی کمتر را مورد حمایت بیشتری قرار دهد و تعاونی‌‌های کارا و برتر را تشویق نماید. 2 This study was conducted to evaluate the technical efficiency of Gilan seine fishing cooperatives. In this research, the data envelopment analysis method was used and the data of this research were collected by using a questionnaire from the cooperatives for the year 2017. The results showed that these cooperatives had about 93% technical efficiency on average. So, the cooperatives can have 7% more fishing without increasing their inputs. Also, about 46% of cooperatives are in a state of incremental returns to scale or scale economies and about 26% of cooperatives are in a state of decreasing returns to scale or scale diseconomies. In addition, this study identified the most important reference cooperatives as well as the possibility of reducing inputs for cooperatives that are not 100% efficient. In general, although the fishing cooperatives of Guilan province are in a favorable position in terms of technical efficiency, but, considering the amount of technical efficiency and returns to scale, it is better that the Fisheries Organization of Iran provide more support to cooperatives that are less efficient to become more efficient and reduce costs, and encourage more efficient and superior cooperatives. 147 159 2020/10/292021/06/62021/10/22021/07/182020/01/302021/08/102021/10/242021/08/152021/10/152021/06/162020/10/202021/08/9 1400/5/18 2021/02/222021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/1 1400/9/10 هاجر قنبرزاده لیاولی Hajar Ghanbarzadeh دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان Iran hajar.ghanbarzadeh2018@gmail.com فرشید اشراقی Farshid Eshraghi دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان Iran f_eshraghi@yahoo.com افشین عادلی Afshin adeli دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان Iran afshinadeli@yahoo.com اعظم رضایی Azam Rezaie دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان Iran azam.rezaee12@gmail.com Data Envelopment Analysis Technical Efficiency Caspian sea Guilan Province تحلیل پوششی داده ها کارایی فنی دریای خزر استان گیلان ##احمدزاده، ص.،کاوند، ح.، سرگزی، ع. و صبوحی، م.، 1391. تعیین کارایی شالیکاران با استفاده از رهیافت تحلیل پوششی داده ها (مطالعه موردی شهرستان رشت). تحقیق در عملیات در کاربردهای آن (ریاضیات کاربردی)، 9(3): 63-76. ##اشراقی، ف. و کاظمی، ف.، 1393. ارزیابی کارایی اقتصادی و فنی گاوداری‌‌های شیری شهرستان گرگان. نشریه پژوهش در نشخوارکنندگان، 2(1): 212-195. DOR: 20.1001.1.23454253.1393.2.1.12.0##امامی میبدی، ع.، 1384. اصول اندازه‌‌گیری کارایی و بهره‌‌وری (عملی و کاربردی). چاپ دوم، انتشارات موسسه مطالعات و پژوهش‌‌های بازرگانی، تهران، 275 ص. ##بهروز، ع.، و امامی میبدی، ع.، 1393. اندازه‌‌گیری کارایی فنی، تخصیصی، اقتصادی و بهره‌‌وری زیر بخش زراعت ایران. مجله تحقیقات اقتصاد کشاورزی، 6(3): 66-43. DOR: 20.1001.1.20086407.1393.6.23.3.7##داد، س.، قربانی، ر.، دریجانی، ع.، یلقی، س. و یحیایی، م.، 1394. کارایی تکنیکی و عوامل موثر در آن با بهره‌‌‌‌گیری از رهیافت تحلیل فراگیر داده‌‌ها. مجله منابع طبیعی ایران، 48(4): 504- 495. 10.22059/jfisheries.2015.57245 :DOI##ریاحی، ا. و یزدانی، س.، 1397. ارزیابی کارایی فنی تعاونی‌های صید ماهیان استخوانی سواحل خزر با استفاده از روش تحلیل پوششی داده‌ها: مطالعه موردی استان مازندران. فصلنامه علمی -پژوهشی تحقیقات اقتصاد کشاورزی، 10(38): 64-49. DOR: 20.1001.1.20086407.1397.10.38.4.6##سالنامه آماری سازمان شیلات ایران، 1398. سازمان شیلات ایران معاونت برنامه ریزی و توسعه مدیریت، دفتر برنامه و بودجه. تهران، 64 ص.##شیرزادی لسکوکلایه، س.، مجرد، ع. و هنرمند، م.، 1398. بررسی کارایی انرژی در واحدهای پرورش ماهی شهرستان شیروان. مجله اقتصاد کشاورزی، 12(3): 278-259. DOR:20.1001.1.20086407.1398.11.43.13.2 ##عادلی، ا.، 1399. تحلیلی بر اشتغال و فرصت های کسب و کارهای شیلاتی ایران و جهان. فصلنامه بهره برداری و پرورش آبزیان، 9(1): 13-1. DOR: 20.1001.1.2345427.1399.9.1.1.4##فضلی، ح. و دریانبرد، غ.، 1396. بررسی تغییرات مکانی صید و گروه بندی شرکتهای تعاونی پره ساحلی در سواحل ایرانی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. ۲۶ (۲): ۶۱-۶۸. :DOI 10.22092/ISFJ.2017.113484 ##کریم کشته، م.ح. و مهری، م.ع.، 1379. بررسی کارایی مزارع گندم منطقه سیستان. سومین کنفرانس اقتصاد کشاورزی، جلد اول، ص1027-1013##کریمی، د.، کیانی، غ.، اسلامی، ف. و لیاقتی، ه.، 1390. ارتباط کارآیی فنی و بازده تولید با مساحت مزارع پرورش میگو در استان هرمزگان. مجله علمی شیلات ایران، ۲۰ (۲) :۱۰۹-۱۲۰. DOI:10.22092/ISFJ.2017.109996 ##یزدانی، س.، ریاحی، ا. و پیکانی، غ.، 1396. تحلیل اقتصادی تعاونیهای پره در استان مازندران. مجله تحقیقات اقتصاد و توسعه کشاورزی ایران، 48(2): 226-211. DOI:10.22059/ijaedr.2017.62741##یزدانی، س.، رمضانی، م.ر. و رفیعی، ح.، 1398. ارزیابی کارایی زیست محیطی نظام پرورش ماهی در قفس‌‌های دریایی: مطالعه موردی استان مازندران. مجله اقتصاد کشاورزی، 13(1): 131-105. DOI: 10.22034/iaes.2019.99704.1657##Alam, F., 2011. Measuring technical, allocative and cost efficiency of pangas (Pangasius hypophthalmus: Sauvage 1878) fish farmers of Bangladesh. Aquaculture Research, 42: 1487-1500. DOI:10.1111/j.1365-2109.2010.02741.x##Bayley, P. and Herendeen, R., 2000. The Efficiency of a Seine Net. Transactions of the American Fisheries Society, 129: 901-923. DOI:10.1577/1548-8659(2000)129<0901:TEOASN>2.3.CO;2##Castilla-Espino, D., García-Del-Hoyo, J.J, Metreveli M. and Bilashvili, K., 2014. Fishing capacity of the Southeaster black Sea anchovy fishery. Journal of Marine Systems, 135:160 -169. DOI:10.1016/j.jmarsys.2013.04.013##Charnes,A., Cooper,W.W. and Rhodes, E., 1978. Measuring the Efficiency of Decision Making Units. European Journal of Operational Research, 2: 429-444. DOI:10.1016/0377-2217(78)90138-8##Coelli, T.G., 1996. A Guide to DEAP version 2.1, A Data Envelop Analysis (Compute program). CEPA Working paper, No.8, Department of Economic, University of New England.##Farrell, M.J., 1957. The measurement of productive efficiency. Journal of the Royal Statistical Society Series A, CXX, part 3, 120(3): 253-281. DOI: 10.2307/2343100##Ferdous Alam, M. and Jahan, K.M., 2008. Resource allocation efficiency, Aquaculture farmers of Bangladesh. Aquaculture Economics and Management, 12:188-206. DOI: 10.1080/13657300802332976##Huy, D.H.X., 2009. Technical efficiency analysis for commercial Black Tiger prawn (penaeus monodon) aquaculture farm in Nha trang city, Vietnam, Master thesis in fisheries and Aquaciture, Management and Economics, (30 ECTS), The Norwegian collage of fishery science, University of Troms, Nor way and Nha Trang University, Vietnam. 69 P.##Jeyanthi, K.P., Chandrasekar, V., Ashok, A. and Nair, R., 2018. Institutional Development and Efficiency of Fishermen Co-operatives in Marine Fisheries: A Case study from Kerala. Fishery Technology, 55: 79-85.##Mehregan, N. and Ebrahimi, Y., 2018. Components Efficiency in sub sector of Fisheries of Iran. Journal of Fisheries and Technology, 7(4):305-310. DOR:20.1001.1.23225513.1397.7.4.5.0##Pham, T.D.T., Huang, H.W. and Chuang, C.T., 2014. Finding a balance between economic performance and capacity efficiency for sustainable fisheries: Case of the Da Nang gillnet fishery, Vietnam. Marine Policy, 44:287- 294. DOI: 10.1016%2Fj.marpol.2013.09.021.## ##Rahman, R., Zahid, Z., Khairi, S. and Hussin, S., 2016. Modeling technical efficiency of inshore fishery using data envelopment analysis. . Paper presented at the 4th International Conference on Quantitative Sciences and Its Applications, Bangi, Malaysia, 16–18 August 2016.##Riha, M., Kubecka, J., Mrkvicka, T., Prchalová, M., Čech, M., Draštík, V., Frouzova, J., Hladík, M., Hohausova, E., Jarolím, O., Jůza, T., Kratochvíl, M., Peterka, J., Tušer, M. and Vašek, M., 2008. Dependence of beach seine net efficiency on net length and diel period. Aquatic Living Resources, 21: 411-418. ##Tung, P.B.V., 2010. Technical efficiency of improved extensive shrimp farming in ca Mau province, Vietnam. Master thesis in fisheries and Aquaculture manage ment and Economics, University Of troms, 73 P.##Unal, V., GUvlUsoy, H. and Franquesa, R., 2009. A comparative study of success and failure of fishery cooperatives in the Aegean, Turkey. Journal of Applied Ichthyology, 25: 394 - 400. DOI: 0.1111/j.1439-0426.2009.01241.x ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ بررسی ویژگی‌های رشد و اثرات ژنوتوکسیک در جلبک سبز Chlorella vulgaris در حضور نانو لوله‌های کربنی تک دیواره Study of growth characteristics and genotoxicity effects in Chlorella vulgaris in the presence of single-walled carbon nanotubes 1 1 افزایش کاربری نانولوله های کربنی سبب سنتز گسترده و رهایش آنها در محیط زیست بویژه زیست بوم های آبی گشته است. از این‌رو، بررسی اثرات اکوتوکسیسیتی و ژنوتوکسیسیتی آنها بر جلبک‌ها به عنوان اولین زنجیره از شبکه غذایی حائز اهمیت می‌باشد. در این مطالعه اثرات نانو لوله‌های کربنی تک‌دیواره با قطر 2-1 نانومتر با انتخاب 6 تیمار با غلظت‌های 0 ( شاهد)، 5/2، 25، 50، 100 و 150 میلی‌گرم بر لیتر بر جلبک سبزChlorella vulgaris  در ساعات مختلف بررسی گردید. تعداد سلول، غلظت کلروفیل a و نرخ رشد ویژه، اندازه‎گیری شدند. نتایج نشان داد که تراکم سلولی دردامنه غلظت‌های مذکور کاهش یافته است و اختلاف تراکم سلولی بین شاهد و تیمارها معنی‌دار بود (05/0p<). حداکثر تعداد سلول در تیمار شاهد از 48 ساعت به بعد حدود 104×2/6 سلول در میلی‌لیتر بود و کمترین آن در غلظت 150 میلی‌گرم برلیتر نانو ذره از 72 ساعت به بعد از معرض‌گذاری برابر 104× 2 سلول در میلی‌لیتر ثبت شد. غلظت کلروفیل a در تیمار 5/12 میلی‌گرم بر لیتر نانو ذره تا 96 ساعت در معرض‌گذاری، روند افزایشی داشت به‌طوری‌که حداکثر مقدار به میزان 175/0میکروگرم بر لیتر در 72 ساعت از معرض گذاری ثبت شد. بیشترین نرخ رشد ویژه پس از 96 ساعت در معرض قرار گرفتن سلول جلبکی، در تیمار 5/12 میلی‌گرم بر لیتر نانو ذره  مشاهده شد که برابر 055/0 بود. به استثناء تیمار 5/12 میلی‌گرم بر لیتر نانو ذره، روند نرخ رشد ویژه سایر تیمارها نسبت به شاهد کاهشی بود. جهت بررسی آسیب DNA، سلول‌های جلبکی تیمار شده با روش ژل الکتروفورز تک سلول قلیایی (آزمون کامت) آماده‌سازی شده و با استفاده از رنگ فلوروسنت رنگ‌آمیزی شدند. بررسی تصاویر تهیه شده با میکروسکپ فلوئورسانس نشان داد که سلول‌های آسیب‌دیده‌ای متشکل از توده رنگی که به عنوان سرکامت شناخته می‌شوند به همراه یک دنباله که رشته‌های DNA مهاجرت کرده می‌باشند، دیده می شوند. سلول‌های تیمار نشده (شاهد) فاقد این دنباله می‌باشند. بنابراین، نانو لوله‌های کربنی تک دیواره آسیب DNA را در سلول جلبکی القاء می‌کنند. 2 The increasing use of carbon nanotubes has led to their synthesis and releasing into the environment, especially aquatic ecosystems. Therefore, it is important to study the effects of their ecotoxicity and their genotoxicity on algae as the first chain of the food web. In this study, the effects of single-walled carbon nanotubes with a diameter of 1-2 nm on green algae Chlorella vulgaris were analyzed. Treatments include: 0 (control), 12.5, 25, 50, 100, 150 mg/l were chosen to survey their effects on C. vulgaris at different hours. Cells number, chlorophyll a concentration and specific growth rate were measured. The results showed that cell density decreased, and there was significant difference between control and other treatments (p<0.05). The maximum and minimum number of cells in the control and 150 mg/l treatments were about 6.2×104 (after 48 hours) and 2× 104 cells/ml (After 72 hours) respectively. Increasing trend in chlorophyll a concentration was observed by treatment of 12.5 mg/l up to 96 after exposure.  After 72 hours, the maximum chlorophyll a concentration was recorded (0.175 μg/l). There was significant difference between control and other treatments (p<0.05). The specific growth rate at the treatment of 12.5 mg/l nanoparticles was the highest value equal to 0.055 after 96 hours, and decreasing trend of specific growth rate of control sample with other treatments was observed. According to DNA damage, treatmented cells were prepared by Alkaline single-cell gel electrophoresis method (comet assay), and stained with fluorescent dye. Microscopic images showed that damaged cells appear as comets composed of an intensively stained comet head and a tail of migrated DNA fragments. There was not sequence in untreated cells (control). Thus, single-walled carbon nanotubes induced DNA damage in algal cells. 161 173 2020/10/292021/06/62021/10/22021/07/182020/01/302021/08/102021/10/242021/08/152021/10/152021/06/162020/10/202021/08/92021/09/28 1400/7/6 2021/02/222021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/12021/12/1 1400/9/10 مژگان امتیازجو Mozhgan Emtyazjoo دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال ، تهران- ایران Iran moz_Emtyazjoo@yahoo.com سالومه پایور Salomeh Payvar دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال ، تهران، ایران . Iran sally_pyvr@yahoo.com فرشته اسلامی Fereshte Eslami موسسه تحقیقلت علوم شیلاتی کشور Iran fr_esla,i1689@yahoo.com حسین مزدرانی Hossien Mazdarani دانشگاه علوم پزشکی دانشگاه تربیت مدرس ، تهران ، ایران Iran mozdarah@modares.ac.ir Single- walled Carbon Nanotubes Chlorella vulgaris ecotoxicity effects DNA damage نانو لوله های کربنی تک دیواره Chlorella vulgaris اثرات اکوتوکسیسیتی آسیب DNA ##پنداشته، ح.، شریعتی، ف.، کشاورزی، ع. و رمضان پور، ز.، 1391. بررسی سمیت نانو ذره اکسید روی بر گونه های جلبک Chlorella vulgaris وScenedesmus dimorphus . پانزدهمین همایش ملی بهداشت محیط، رشت.##کاظمی، م. و شریعتی، ف.، 1398. سمیت نانوذرۀ اکسید مس روی جلبک Scenedesmus dimorphus. فصلنامه علمی-پژوهشی زیست شناسی میکرو ارگانیسم ها، 8(30): 25-13 DOI: 10.22108/BJM.2019.113648.1165 ##مزدرانی، ح. و خشای، س.، 1384. آسیب های زمینه DNA در اسپرم های افراد سالم و نابارور با استفاده از روش ستاره دنباله دار. حکیم، 8(2): 24-17.##Adochite, C. and Andronic, L., 2021. Aquatic Toxicity of Photocatalyst Nanoparticles to Green Microalgae Chlorella vulgaris. Water, 13(1): 2-13. DOI:10.3390/w13010077. ##Akcha, F., Arzul, G., Rousseau, S. and Bardouil, M., 2008. Comet assay in phytoplankton as biomarker of genotoxic effects of environmental pollution. Marine Environmental Research, 66(1): 59-61. DOI: 10.1016/j.marenvres.2008.02.022.##Aizdaicher, N.K. and Berezovskaya N.A., 1997. The effect of copper ions and a detergent on green microalgae Dunaliella tertiolecta and Platymonas sp. Oceanographic Literature Review, 2(44): 156.‌##Andersen, R.A., 2005. Algal Cultural Techniques, Elsevier academic press, London, 592 P.##Aruoja, V., Dubourguier, H.C., Kasemets, K. and Kahru, A., 2009. Toxicity of nanoparticles of CuO, ZnO and TiO2 to microalgae Pseudokirchneriella subcapitata. Science of the Total Environment, 407(4): 1461–1468. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2008.10.053.##Baker, T.J., Tyler, C.R. and Galloway, T.S., 2014. Impacts of metal and metal oxide nanoparticles on marine organisms. Environmental Pollution,186: 257–271. DOI: 10.1016/j.envpol.2013.11.014.##Banerjee, S., Hew, W.E., Khatoon, H. and Shariffi, M., 2011. Growth and proximate composition of tropical marine Chaetoceros calcitrans and Nannochloropsis oculata cultured outdoors and under laboratory condition. African Journal of Biotechnology, 10(8): 1375-1383. DOI: 10.5897/AJB10.1748.##Bavandi, R., Emtyazjoo, M., Nasrollahzadeh Saravi, H.,Yazdian, F. and Sheikhpour, M., 2019, Study of nano-structure zero-valent iron and graphene-oxid capability onbioremoval of trinitrophenol from wastewater in a bubble column bioreactor. Electronic Journal of Biotechnology, 39: 8-14.##Chen, T.F., Zheng, W.J., Luo, Y., Yang growth, F., Bai, Y. and Tu, F., 2005. Effects of selenium stress on photosynthetic pigment contents and of Chlorella vulgaris. Journal of Plant Physiology and Molecular Biology, 31(4): 369–373. ##Chae, S.R. and Shin, H.S., 2007. Characteristics of simultaneous organic and nutrient removal in a pilot-scale vertical submerged membrane bioreactor (SMBR) treating municipal wastewater at various temperatures. Process Biochemistry, 42: 193-198. DOI: 10.1016/j.procbio.2006.07.033.##Coleman, J.N., Khan, U., Blau, W.J. and Gunko, Y.K., 2006. Small but strong: a review of the mechanical properties of carbon nanotube-polymer composites. ## Carbon, 44(9): 1624– 1652. DOI: 10.1016/j.carbon.2006.02.038.##Desai, S.R., Verlecar, X.N. and Goswami, U., 2006. Genotoxicity of cadrniurn in marine diatom Chaetoceros tenuissimus using the alkaline Comet assay. Ecotoxicology, 15(4): 359-363. DOI: 10.1007/s10646-006-0076-2.##De Volder, M.F., Tawfck, S.H., Baughman, R.H. and Hart, A.J., 2013. Carbon nanotubes: present and future commercial applications. Science, 339(6119): 535–539.##Emtyazjoo, M., Abbaszadeh, A. and Shahhosseiny, M.H., 2019. Diagnosis toxogenic Saxitoxin Cyanobacteria by molecular method in Amir Kalayeh Lagoon–Iran. Research in Marine Sciences, 49(2): 528–538.##Ji, J., Long, Z. and Lin, D., 2011. Toxicity of oxide nanoparticles to the green algae Chlorella sp. Chemical Engineering Journal, 170(2-3): 525-530. DOI: 10.1016/j.cej.2010.11.026.##Handy, R.D., Brink, N.V.D., Chapple, M., Muhling, M., Behra, R., Dusinska, M., Simpson, P., Ahtiainen, J., Jha, A N., Seiter, J., Bendnar, A., Kennedy, A., Fernandes, T.F. and Riediker, M., 2012. Practical considerations for conducting ecotoxicity test methods with manufactured nanomaterials: what have we learnt so far? Ecotoxicology, 21(4): 933–972. DOI: 10.1007/s10646-012-0862-y.##Hanley, C., Thurber, A., Hanna, C., Punnoode, A., Zhang, J. and Wingett, D.G., 2009. The influences of cell type and ZnO nanoparticle size on immune cell cytotoxicity and cytokine induction. Nanoscale Research Letters, 4(12): 1409-1420. DOI:10.1007/s11671-009-9413-8.##Khoshnamvand, M., Ashtiani, S., Chen, Y. and Liu, J., 2020. Impacts of organic matter on the toxicity of biosynthesized silver nanoparticles to green microalgae Chlorella vulgaris. Environmental Research, 185, 109433. DOI: 10.1016/j.envres.2020.109433.##Kwok, K.W.H., Leung, K.M.Y., Flahaut, E., Cheng, J. and Cheng, S.H., 2010. Chronic toxicity of double-walled carbon nanotubes to three marine organisms: influence of different dispersion methods. Nanomedicine, 5(6): 951–961. DOI: 10.2217/nnm.10.59.##Li, M., Gao, X., Wu, B., Qian, X., Giesy, J.P. and Cui, Y., 2014. Microalga Euglena as a bioindicator for testing genotoxic potentials of organic pollutants in Taihu Lake, China. Ecotoxicology, 23(4): 633-40. DOI: 10.1007/s10646-014-1214-x.##Long, Z., Ji, J., YangK, L.D. and Wu, F., 2012. Investigation of the Mechanism of Carbon Nanotubes’ Toxicity toward Alga. EnvironmentalScience Technology, 46(15): 8458-8466. DOI: 10.1021/es301802g.##Miri, M. and Khandan Barani, H., 2016. Effect of CuO nanoparticle on growth, protein content, Chlorophyll and carotenoid in Chlorella vulgaris. Journal of Plant Researches, 29(1): 235-242.##OECD (Guidelines for the Testing of Chemicals), 2011. Freshwater algae and cyanobacteria, growth inhibition tests, Test NO.201.##Oukarroum, A., Bras, S., Perreault, F. and Popovic, R., 2012. Inhibitory effects of silver nanoparticles in two green algae, Chlorella vulgaris and Dunaliella tertiolecta. Ecotoxicology and Environmental Safety, 78: 80–85. DOI: 10.1016/j.ecoenv.2011.11.012.##Piccinno, F., Gottschalk, F., Seeger, S. and Nowack, B., 2012. Industrial production quantities and udes of ten engineered nanomaterials in Europe and the world. Journal of Nanoparticle Research, 14(1109): 11. DOI: 10.1007/s11051-012-1109-9.##Prado, R., Díaz, R., Rioboo, C., Abalde, J., Herrero, C. and Cid, A., 2009. Use of the Comet Assay to Evaluate Pesticide Toxicity on Non-Target Microalgae. In: Kocsis, A. & Molnar H., eds. Genotoxicity: Evaluation, Testing and Prediction. Hauppauge, NY: Nova Science Publishers, pp. 311-319.##Rhiem, S., Riding, M J., Baumgartner, W., Martin, F.l., Semple, K.T., Jone, K.C., Schaffer, A. and Maes, H.M., 2015. Interactions of multi-walled carbon nanotubes with algal cells: Quantification of association, visualization of uptake, and measurement of alterations in the composition of cells. Environmental Pollution, 196: 431-439. DOI: 10.1016/j.envpol.2014.11.011.##Ritchie, R.J., 2006. Consistent Sets of Spectrophotometric Chlorophyll Equations for Acetone, Methanol and Ethanol Solvents. Photosynthesis Research, 89: 26-41.DOI: 10.1007/s11120-006-9065-9.##Schwab, F., Bucheli, T.D., Lukhele, L.P., Magrez, A., Nowack, B., Sigg, L. and Knauer, K., 2011. Are carbon nanotube effects on green algae caused by shading and agglomeration? Journal of Environmental Science and Technology, 45(14):36–6144. DOI: 10.1021/es200506b.##Singh, N.P., McCoy, M.T., Tice, R.R. and Schneider, E.L., 1988. A simple technique for quantitation of low levels of DNA damage in individual cells. Experimental Cell Research, 175(1): 184-191. DOI: 10.1016/0014-4827(88)90265-0.##Sohn, E.K., Chung, Y.S., Johari, S.A., Kim, T.G., Kim, J.K., Lee, J.H., Lee, Y.H., Kang, S.W. and Yu, I.J., 2015. Acute toxicity comparison of single-walled carbon nanotubes in various freshwater organisms. BioMed Research International, 323090: 1 -12.DIO:10.1155/2015/323090.##Stone, V., Nowack, B., Baun, A., Brink, N.V.V., Kammer, F.V., Dusinska, M., Handy, R., Hankin, S., Hassellov, M., Joner, E. and Fernandes, T.F., 2010. “Nanomaterials for environmental studies: classification, reference material issues, and strategies for physico-chemical characterization. Science of the Total Environment, 408(7): 1745–1754. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2009.10.035.##Tartiel, M.B., 2005. Physiological studies on some green algae. Thesis, Faculty of Agriculture, Cairo University, Egypt. Pages??##Thakkar, M., Mitra, S. and Wei, L., 2016. Effect on Growth, Photosynthesis, and Oxidative Stress of Single-Walled Carbon Nanotubes Exposure to Marine Alga Dunaliella tertiolecta. Journal of Nanomaterials, 10: 1-9. DOI: 10.1155/2016/8380491.##Um, B.H. and Kim, Y.S., 2009. Review: a chance for Korea to advance algal-biodiesel technology. Journal of Industrial and Engineering Chemistry, 15:1–7. DOI:10.1016/j.jiec.2008.08.002.##Wang, Y. and Yang, K., 2013. Toxicity of single-walled carbon nanotubes on green microalga Chromochloris zofingiensis. Chinese Journal Oceanology And Limnology, 31(2): 306–311. DOI: 10.1007/s00343-013-2131-1. ##Wei, L., Thakkar, M., Chen, Y., Ntim, S.A., Mitra, S. and Zhang, X., 2010. Cytotoxicity effects of water dispersible oxidized multi-walled carbon nanotubes on marine alga, Dunaliella tertiolecta. Aquatic Toxicology, 100(2): 194–201. DOI: 10.1016/j.aquatox.2010.07.001.##Wu, Y., Wang, Y.J., Li, Y.W., Du, J., Wang, Z.H. and Deng, S.H., 2018. Effects of single- walled carbon nanotubes on growth and physiological characteristics of Microcystis aeruginosa. Journal of Central South University, 5: 1628-1641. DOI: 10.1007/s11771-3855-z.##Youn, S., Wang, R., Gao, J., Hovespyan, A., Ziegler, K.J., Claude, J. and Bonzongo, J., 2012. Mitigation of the impact of single-walled carbon nanotubes on freshwater green algae: Pseudokirchneriella subcapitata. Nanotoxicology, 6(2): 161–172. DOI: 10.3109/17435390.2011.562329.##Yousefi, N., Emtyazjoo, M., Mohamad Noori, S., Janitabar Darzi, S. and Akhavan Sepahy, A., 2020. Green synthesis of Pseudomonas aeruginosa immobilized Fe3O4-multiwalled carbon nanotubes bio-adsorbent for the removal of 2, 4, 6-trinitrophenol from aqueous solution. Environmental Technology & Innovation, 20(219):101071. DOI: 10.1016/j.eti.2020.101071.##Zhu, X.S., Zhu, L., Tian, S.Y., Lang, Y.P. and Li, Y., 2008. Aquatic ecotoxicities of nanoscale TiO2, ZnO and Al2O3 water suspensions. Acta Ecologica Sinica, 28(8): 3507–3516. DOI: 10.1016/S1001-0742(09)60087-5. ##