1400 30 6 128 156

مقاله علمی – پژوهشی:‌ اثرات سطوح مختلف جایگزینی پودر ملخ صحرایی (Schistocerca gregaria) بر عملکرد رشد، بقا، ترکیبات بیوشیمیایی و آنزیم‌‌های هضمی روده بچه ماهیان قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) Effects of different levels of locust meal (Schistocerca gregaria) replacement on growth function, survival, biochemical composition and intestinal digestive enzymes of rainbow trout fingerling (Oncorhynchus mykiss) 1 1 مطالعه حاضر به منظور بررسی اثرات سطوح مختلف پودر ملخ صحرایی (Schistocerca gregaria) به جای پودر ماهی بر عملکرد رشد، بقاء و ترکیب بیوشیمیایی بچه ماهیان قزل آلای رنگین کمان انجام شد. چهار جیره با مقدار یکسان نیتروژن (5/46 درصد) و انرژی (4652 کیلوکالری)، با سطوح مختلف جایگزینی 0 درصد (تیمار شاهد)، 15 درصد (SG15)، 30 درصد (SG30) و 60 درصد (SG60) پودر ماهی با پودر ملخ صحرایی فرموله شدند. جیره‌‌ها در قالب طرح کاملاً تصادفی در 4 تیمار و سه تکرار و میانگین وزن اولیه (33/0± 08/5 گرم) در 12 مخزن و به مدت 8 هفته توزیع شدند (تعداد 25 قطعه ماهی در هر تانک) و غذادهی سه بار در روز تا حد سیری انجام شد. پارامترهای فیزیکوشیمیایی مانند درجه حرارت (3/17 درجه سانتیگراد)، اکسیژن محلول (49/6 میلی‌‌گرم در لیتر)، pH (55/7) در طول آزمایش ثابت بودند. مطابق با نتایج، بیشترین وزن نهایی در تیمار 30 درصد مشاهده شد (89/34±20/616 درصد) و تفاوت بین تیمارهای صفر، 15 و 60 درصد معنی‌‌دار بود (05/0>p). در تیمار 60 درصد کاهش معنی‌‌دار شاخص‌‌های رشد و کارایی تغذیه نسبت به تیمار شاهد مشاهده شد (05/0>p). حداکثر مقدار پروتئین در تیمار 30 درصد بود و مقادیر چربی و رطوبت لاشه در تیمارهای آزمایشی نیز دارای تفاوت معنی‌‌داری با تیمار شاهد بودند (05/0>p). مطابق با آنالیز آنزیم‌‌های گوارشی، بیشترین مقدار فعالیت آنزیم‌‌های پروتئاز و آمیلاز در ماهیان تغذیه شده با جیره SG30 مشاهده گردید. نتایج حاصل از این مطالعه نشان داد استفاده از 30 درصد پودر ملخ به جای پودر ماهی می‌‌تواند باعث بهبود عملکرد رشد، ترکیبات بیوشیمیایی لاشه و آنزیم‌‌های گوارشی گردد. 2 The present study was conducted to evaluate of different levels of locust meal (Schistocerca gregaria) on growth function, survival, biochemical composition and intestinal digestive enzymes in rainbow trout fingerling. Four experimental diets with different replacement levels of 0 (control treatment), 15 (SG15), 30 (SG30) and 60% (SG60) of fish meal with locust meal were formulated with equal protein (46.5%) energy (4652 kcal) contents. Diets were distributed in a completely randomized design in four treatment and each with three replications and the average initial weight (5.08±0.33) in 12 tanks for eight weeks (25 pieces of fish in each tank) and Feeding was done three times a day to satiety. Physicochemical parameters such as temperature (17.3°C), dissolved oxygen (6.49 mg), pH (7.55) were constant during the experiment. The results revealed that the highest final weight was observed in 30% treatment (89.34±20.616 %) and differences between 0, 15 and 60% treatments (p<0.05). In 60% treatment, a significant decrease in growth indices and nutritional efficiency was observed (p<0.05). Also, the amounts of protein, fat and moisture in the body of fish were significantly different compared to the control treatment (p>0.05). Analysis of digestive enzymes showed that the highest activity of protease and amylase enzymes was observed in fish fed SG30 diet. The results of this study showed that using 30% locust meal instead of fish meal can improve growth performance, the biochemical composition and digestive enzymes rainbow trout fingerlings. 1 12 2021/07/28 1400/5/6 2021/12/31 1400/10/10 هادی اسدی Hadi Asadi دانشگاه گیلان Iran asadi.shil@gmail.com حمید علاف نویریان Hamid Allaf Noveirian دانشگاه گیلان Iran navi@guilan.ac.ir مجیدرضا خوش خلق Majid reza Khishkholgh دانشگاه گیلان Iran majidreza@guilan.ac.ir رقیه صفری Roghaieh Safari دانشگاه گیلان Iran fisheriessafari@yahoo.com Insect meal Feed efficiency Survival Body composition Rainbow trout پودر حشره کارایی غذا بازماندگی ترکیب لاشه ماهی قزل آلای رنگین کمان ##ارباب، ع.، 1397. نقش حشرات در جیره‌‌ی غذایی آبزیان: مطالعه موردی سوسک زرد آرد، میلورم (Tenebrio molitor). مجله آبزیان زینتی، 5: 52-41. DOI: 10.22069/japu.2019.15264.1449##هرسیج، م.، آدینه، ح.، ملک‌‌نژاد، ر.، جعفریان، ح. و اسدی، م.، 1397. استفاده از میل ورم زنده (Tenebrio molitor) در جیره غذایی ماهی قزل آلای رنگین کمان: تاثیر بر عملکرد رشد و بازماندگی، بهره‌‌وری تغذیه‌‌ای، ترکیبات لاشه و آنزیم‌‌های هضمی روده. مجله علوم و فنون شیلات، 3: 143-137. DOI: JFST. 2019. 6-29053 ##ولی‌پور، م.، اوجی فرد، ا،. حسینی، ع.، ستوده، ا. و باقری، د.، 1397. اثر جایگزینی پودر ماهی با پودر لارو سوسک زرد (Tenebrio molitor) بر عملکرد رشد، شاخص‌‌های خون شناسی و برخی پارامترهای ایمنی غیراختصاصی بچه ماهیان قزل الای رنگین کمان (Onchorhynchus mykiss). مجله شیلات ایران، 28(4):61-49. DOI:10.22092/ISFJ.2019.118906 ##Alegbeleye, W.O., Obasa, S.O., Olude, O., Otubu, K. and Jimoh, W., 2012. Preliminary evaluation of the nutritive value of the variegated grasshopper (Zonocerus variegatus L.) for African catfish Clarias gariepinus (Burchell. 1822) fingerlings. Aquaculture, 43: 412-420. DOI:10.1111/j.1365-2109.2011.02844.x##AOAC, 2016. Official Methods of Analysis, 20th ed. (Editor: Dr. George W.Latimer, Jr) Association of Official Analytical Chemists, Washington, DC. USA. 3172 P.##Balogun, B.I., 2011. Growth performance and feed utilization of Clarias gariepinus (Teugels) fed different dietary levels of soaked Bauhinia monandra (Linn.) seed meal and sun-dried locust meal (Schistocerca gregaria). Unpublished Ph.D Thesis, Ahmadu Bello University, Zaria. DOI: 10.1007/s10126-012-9462-3.##Dedeke, G.A., Owa, S.O., Olurin, K., Akinfe, A. and Awotedu, O., 2013. Partial replacement of fih meal by earthworm meal (Libyodrilus violaceus) in diets for Afrian catfish, Clarias gariepinus. International Journal Fisheries and Aquaculture, 9:229-233. DOI: 10.5897/IJFA2013. 0354.##Dumas, A., De Lange, C.F., France, J. and Bureau, D.P., 2007. Quntitative description of body composition and rates of nutrient deposition in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, 273:165-181. DOI: 10.1016/j.2007.09.026.##FAO, 2019. The State of World Fisheries and Aquaculture 2016. Contributing to Food Security and Nutrition for All. FAO, Rome, 200P. DOI: 10.1016/j.marpol.2018.12.009.##Garcia‐Carreno, F.L. and Haard, N.F., 1993. Characterization of proteinase classes in langostilla (Pleuroncodes planipes) and crayfish (Pacifastacus astacus) extracts. Journal Food Biochem, 17(2): 97-113. DOI: 10.1111/j.1745-4514.1993.tb00864.##Glencross, B.D., Booth, M. and Allan, G.L., 2007. A feed is only as good as its ingredients a review of ingredient evaluation strategies for aquaculture feeds. Aquaculture Nutrition, 13: 17–34. DOI: 10.1111/j.1365-2095.2007.00450.##Harinder, P.S., Makkar, Gilles, T., Valerie, H. and Philippe, A., 2014. State othe art on use of insects as animal feed. Animal Feed Science and Technology, 197:1-33. DOI: 10.1016/j.anifeedsci.2014.07.008.##Hilaire, S., Sheppard, C., Newton, L., Mosley, E. and Sealey, W., 2007. Fly prpupe as a feedstuff rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Journal of the World Aquaculture Society, 38:59-67.##Iijima, N., Tanaka, S. and Ota, Y., 1998. Purification and characterization of bile salt‐activated lipase from the hepatopancreas of red sea bream, Pagrus major. Fish Physiology and Biochemistry, 18(1):59‐69. DOI:10.1023/A:1007725513389.##Katya, K., Borsra, M.Z.S., Ganesan, D., Kuppusamy, G., Herriman, M., Salter, A., and Ali, S.A., 2017. Efficacy of insect larval meal to replace fish meal in juvenile barramundi, Lates calcarifer reared in freshwater. International Aquatic Research, 9: 303-31. DOI:10.1007/s40071-017-0178-x.##Lock, E.R., Arsiwalla, T. and Waagbo, A., 2015. Insect larvae meal as an atlternative source of nutrients in the diet atlantic salmon (Salmo salar) postsmolt. Aquaculture Nutrition, 130:122-134. DOI: 10.1111/anu.12343.##N.R.C. (National Research Council), 2011. Nutrient Requirements of Poultry. 9th revised edition. National Academy Press, Washington, D.C 450 P. DOI: 10.1007/s10499-011-9480-6.##Nogales, S., Jover cerda, M., Liorens, S. and Vidal, A., 2011. Study of partical replacement of fish meal with sunflower meal on growth, amino acid retention, and body composition of sharp snout sea bream. Diplodus puntazzo. Acta Ichthyologica et Piscatoria, 41:47-54. DOI: 10.3750/AIP2011.41.1.07.##Oliva-Teles, A., Enes, P. and Peres, H., 2015. Replacing fishmeal and fish oil in industrial aquafeeds for carnivorous fish, Feed and Feeding Practice in Aquaculture. Woodhead Publishing, Cambridge, 1250 P. DOI: 10.1016/B978-0-08-100506-4.00008-8.##Rapatsa, M.M. and Moyo, A.G., 2017. Evaluation of Imbrasiabelina meal as a fishmeal substitute in Oreochromis mossambicus diets: Growth performance, histologicalanalysis and enzyme activity. Aquaculture Reports, 5: 18-26. DOI:10.1016/j.aqrep.2016.11.004.##Riddick, E.W., 2014. Insect protein as partial replacement for fishmeal in the diets of juvenile fish and crustaceans. Invertebrates and Entomopathogens. Academic Press, San Diego, USA, 565-582. DOI:10.1016/B978-0-12-391453-8.00016-9.##Rust, M.B., 2002. Nutritional physiology. In: Fish Nutrition. The Academic Press, New York, USA, 368-446 p. DOI:10.1016/B978-012319652-1/50008-2.##Taufek, N.M., Aspani, F., Muin, H., Raji, A., Razak, Sh. and Alias, Z., 2016. The effect of dietary cricket meal (Gryllus bimaculatus) on growth performance, antioxidant enzyme activities, and haematological response of African catfish (Clarias gariepinus). Fish Physiology and Biochemistry, 18:51-94. DOI 10.1007/s10695-016-0204-8.##Tran, G., Heuze, V. and Makkar, H.P.S., 2015. Insects in fish diets. Animal Frontiers, 5: 37-44. DOI:10.2527/af.2015-0018.##Tschirner, M. and Simon, A., 2015. Influence of different growing substrates and processing on the nutrient composition of black soldier fly larvae destined for animal feed. Journal of Insects as Food, 1(3): 1-12. DOI:10.3920/JIFF2014.0008.##Van Huis, A., Itterbeeck, J., Klunder, H., Mertens, E., Halloran, A., Muir, G. and Vantomme, P., 2013. Edible insects: future prospects for food and feed security, 171. 187 P. DOI:10.1023/A:1007725513389##Vargas, R.J., Guimaraes, S.M., Kessler, A.M. and Baggio, N., 2008. Replacement of fish oil with vegetable oils in diets for jundia: Effect on performance and whole body fatty acid composition. Aquaculture Research, 39: 657-665. DOI: 10.1111/j.1365-2109. 2008.##Wilfred, O.A., Obasa, S., Otuba, K. and Jimoh, A., 2012. Preliminary evaluation of the nutritive value of the variegated grasshopper (Zonocerus variegatus) for African catfish Clarias gariepinus (Burchell. 1822) fingerlings. Aquaculture Research, 2012, 43, 412–420 DOI:10.1111/j.1365-2109.2011.02844.##Worthington Biochemical Corporation, 1993. Worthington enzyme manual. Enzymes and related biochemical. Lakewood. New Jersey. 68-75. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌بررسی رشد، زنده مانی و بد‌شکلی ناشی از القاء تریپلوئیدی در ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان به‌وسیله شوک گرمایی Evaluation of growth rate, survival and deformity due to triploid induction in Rainbow trout by heat shock 1 1 وقوع بلوغ جنسی معمولاً باعث کاهش نرخ رشد بدنی می‌‌شود که امری نامطلوب برای پرورش‌‌دهندگان است. یکی از راهکارهای کنترل این امر، تولید ماهیان عقیم می‌باشد. در تکنیک ایجاد ماهیان تریپلوئید، به عنوان یکی از روش‌های عقیم‌سازی، آگاهی از توان ماهی‌ها در تحمل شرایط پر استرس محیط پرورش و بررسی میزان رشد، بازماندگی و بد‌شکلی ناشی از شوک بسیار مهم می‌‌باشد. در تحقیق حاضر، 3 تیمار برای القاء تریپلوئیدی با استفاده از شوک گرمایی در نظر گرفته شد. در تیمار A تخمها پس از گذشت 30 دقیقه از لقاح به مدت 15 دقیقه در آب با دمای 27 درجه سانتی‌گراد قرارگرفتند. در تیمار B شوک‌دهی 20 دقیقه پس از لقاح، به مدت 20 دقیقه و در دمای 26 درجه انجام گرفت و در تیمار C ، شوک‌دهی 40 دقیقه پس از لقاح، به مدت 10 دقیقه و در دمای 28 درجه انجام شد. یک گروه نیز (D) به عنوان شاهد در نظر گرفته شد. بازدهی القاء تریپلوئیدی، در تیمار  A برابر  با 84% و در تیمار B برابر با 76% و در تیمار  C برابر با 98% به‌دست آمد. نتایج حاصل از 10 مرحله بررسی رشد بچه ماهی‌ها، اختلاف معنی‌داری را تا 208 روز پس از تخم‌گشایی از خود نشان نداد (05/0≤p). میزان بازماندگی ماهیان تیمارها نیز در 7 مرحله مجزا مورد بررسی قرار گرفت که در مجموع، بازماندگی تیمار A برابر با 66%، بازماندگی تیمار B 81%، بازماندگی تیمار C  72% و بازماندگی گروه شاهد 86% به‌دست آمد. همچنین میزان لاروهای دارای بد‌شکلی و نقص ظاهری نیز از مرحله تخم‌گشایی تا شروع شنای فعال و تا رسیدن به وزن 200 میلی‌گرم در تیمارهای تریپلوئید بالاتر از تیمار شاهد بود (05/0>p). در مجموع، میزان بد شکلی در تیمار A برابر با 51/6 درصد، در تیمار B برابر با 65/7 درصد، در تیمار C 75/10 درصد و در گروه شاهد 6/0 درصد به‌دست آمد (05/0>p). در نهایت بالاترین میزان تریپلوئیدی و بد‌ریختی ناشی از آن در تیمار C و بیشترین بازماندگی در تیمارهای آزمایشی در تیمار B مشاهده شد، ولی تفاوتی در رشد تیمارها مشاهده نگردید. 2 The occurrence of puberty usually slows down the body's growth rate because the energy from the food is diverted to gonadal development instead of muscle production. By producing sterile fish, these problems can be solved. One method of sterilization is through ploidy induction (especially triploid). Given that these triploid fish are stressed in the early stages of life, it is important to be aware of their ability to withstand the rearing environment's stressful conditions and assess the rate of growth, survival and deformity caused by shock. 3 treatments were considered for the triploidy inducing in this study. In treatment A, the eggs were placed in water at 27° C for 15 minutes after fertilization for 30 minutes. In treatment B, shock was performed 20 minutes after fertilization for 20 minutes at 26° C and in treatment C, shock 40 minutes after fertilization was performed for 10 minutes at 28° C. A treatment with 13,200 eggs was considered as Control Group (D). The efficiency of triploid induction was 84% in treatment A, 76% in treatment B and 98% in treatment C. The results of 10 stages of juvenile growth study did not show a significant difference until 208 days after hatching (p≥0.05). The fish survival of the treatments was examined in 7 separate stages. In total, the survival of treatment A was 66%, the survival of treatment B was 81%, the survival of treatment C was 72% and the survival of Control group was 86%. Also, the number of larvae with deformity and appearance defects from the hatching stage to the beginning of active swimming and reaching a weight of 200 mg were examined quantitatively and qualitatively. In total, the malformation rate in treatment A was equal to 6.51%, in treatment B was equal to 7.65%, in treatment C was 10.75% and in Control group was 0.6% (p<0.05). 13 24 2021/07/282021/08/10 1400/5/19 2021/12/312021/12/31 1400/10/10 داود ضرغام Davood Zargham موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran davoodzargham61@gmail.com کمیل رزمی Komeil Razmi 2- مؤسسه مطالعات دریایی و قطب جنوب، دانشگاه تاسمانیا، استرالیا Iran k.razmi@hotmail.com طیبه باشتی Tayyebeh Bashti موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran t.bashty@gmail.com Triploid Rainbow trout Deformity Survival Growth Oncorhynchus mykiss تریپلوئید قزل‌آلای رنگین کمان رشد بازماندگی بد‌شکلی Oncorhynchus mykiss ##- باباحیدری،ص.، کیوان شکوه، س.، درافشان، س.، جوهری، ع.، 1396. مقایسه میزان بازماندگی، رشد و پاسخ به تنش حمل و نقل در ماهیان دیپلوئید، تریپلوئید و تتراپلوئید قزل آلای رنگین کمان، پژوهشهای ماهی شناسی، دوره پنجم، شماره دوم، صص: 97-116).##- کلباسی، م.، جوهری، ع.، بررسی امکان تولید جمعیت تمام ماده تریپلوئید قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)، فصلنامه علوم آب و خاک، دوره 12، شماره ، صص 269-274. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ برخی عوامل خطرساز بر تولید ماهیان قزل‌آلای رنگین‌کمان با تأکید بر شاخص‌‌های میکروبی و فلزات سنگین آب مزارع حاشیه رودخانه هراز Evaluation of some risk factors on the rainbow trout production with emphasis on water microbial indices and heavy metals of farms along the Haraz River 1 1 رودخانه هراز نقش مهمی در توسعه آبزی‌پروری و تولید قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان در مازندران دارد. هدف این بررسی ارزیابی شاخص‌‌های میکروبی و فلزات سنگین آب و نیز شناسایی عوامل باکتریایی بیماری‌‌زا رایج و قدرت مقاومت آنها در برابر آنتی بیوتیک‌‌های مصرفی به عنوان عوامل موثر بر تولید ماهیان بوده است. این تحقیق طی چهار فصل (تابستان، پاییز  و زمستان 1396 و بهار 1397) در 6 مزرعه مجاور رودخانه هراز انجام گردید. بر اساس نتایج میزان جیوه آب ورودی مزارع مورد بررسی در تمام فصول از حداقل 3 برابر حداقل حد مجاز (1 میکروگرم بر لیتر) تا حداکثر 6 برابر حداکثر حد مجاز (2 میکروگرم بر لیتر) بود ولی میزان ارسنیک، سرب و کادمیوم در تمام مراحل نمونه برداری در حد استاندارد بود. مهمترین علایم بالینی مشاهده شده در ماهیان، پوسیدگی باله، شنای نامتعارف، التهاب و پرخونی کبد و کلیه بود. از مجموع 420 عدد ماهی واجد علایم بالینی  15/12% و 85/87% به‌ترتیب از نظر کشت باکتری مثبت و منفی بودند. عوامل باکتریایی جداسازی شده همگی از باکتری‌‌های گرم‌منفی و براساس درصد فراوانی شامل یرسینیا (25/37%)، آئروموناس (35/33%)، ادواردزیلا (76/11%)، ویبریو (84/7%)، پاستورلا (88/5%) و سیتروباکتر (92/3%) بودند. بیشترین مقاومت آنتی‌‌بیوتیکی در برابر آموکسی‌‌سیلین و کمترین آن مربوط به تری‌متوپریم سولفامتوکسازول بود. در ارزیابی شاخص‌‌های میکروبی آب شامل شمارش کلی باکتری، کلیفرم، کلیفرم مدفوعی و اشریشیا کولی، نتایج نشان داد که شاخص‌‌های میکروبی آب تقریباً در بیشتر مراحل نمونه‌برداری بیش از حد مجاز بود. با توجه به نتایج به‌نظر می‌رسد، تاثیر فلز سنگین جیوه بر سلامت ماهیان براساس علایم بالینی، افزایش مقاومت عوامل باکتریایی بیماری‌‌زا در برابر آنتی‌‌بیوتیک‌‌ها و نیز بیش از حد مجاز بودن شاخص‌‌های میکروبی آب از عواملی هستند که به طور مستقیم و غیر مستقیم تولید ماهیان قزل‌آلا مزارع حاشیه رودخانه هراز را تحت تاثیر قرار داده‌‌اند. لذا، توجه به استفاده از روش‌‌های مناسب مدیریت آب در جهت کاهش بار میکروبی و فلز جیوه در کنار استفاده از تغذیه و مدیریت پرورش مناسب تا حدود زیادی مشکلات تولید را در این رودخانه حل خواهد نمود. 2 Haraz River has an important role in the development of aquaculture and the production of rainbow trout in Mazandaran province. Since 2015, the production of rainbow trout has been decreased in the farms along the river and almost halved. This study have been investigated the microbial indices and heavy metals in water as well as the identification of common bacterial pathogens and their resistance to antibiotics and used them as effective factors in the fish health and production. This study was conducted during four seasons (summer, autumn and winter 2017 and spring 2018) in 6 rainbow trout farms along the Haraz River. The results showed that the amount of the water mercury in all seasons was from minimum 2 to maximum 12 times the allowable limit but the arsenic level was standard in all sampling times. The most important clinical symptoms were observed in the fish including fin rot, erratic swimming, inflammation and hyperemia of the liver and kidneys. From 420 fish with clinical signs, 12.15% and 87.85% of fish were positive and negative bacterial culture respectively. The all of bacterial isolates were gram-negative and no gram-positive bacteria were isolated. The bacterial agents identified were including, Yersinia (37.25%), Aeromonas (33.35%), Eduardzilla (11.76%), Vibrio (7.84%), Pasteurella (5.88%) and Citrobacter (3.92%). The highest and lowest antibiotic resistances were found against amoxicillin and trimethoprim sulfamethoxazole respectively. In evaluation of the microbial water indices including total bacterial count, coliform count, fecal coliform count and E. coli, the results showed that the all of microbial indices were not allowable level in the most of the sampling time.  25 42 2021/07/282021/08/102021/10/8 1400/7/16 2021/12/312021/12/312021/12/31 1400/10/10 مریم قیاسی Maryam Ghiasi پژوهشکده اکولوژی دریای خزر Iran ghiasimaryam4@gmail.com حسن نصراله زاده ساروی Hassan Nasrollahzadeh Saravi پژوهشکده اکولوژی دریای خزر Iran hnsaravi@gmail.com حسن فضلی Hassan Fazli پژوهشکده اکولوژی دریای خزر Iran hn_fazli@yahoo.com رضا صفری Reza Safari پژوهشکده اکولوژی دریای خزر Iran safari1351@gmail.com سید محمد وحید فارابی Seyed Mohammad Vahid Farabi پژوهشکده اکولوژی دریای خزر Iran smv_farabi@hotmail.com محمد بینائی Mohammad Binaii پژوهشکده اکولوژی دریای خزر Iran bbinaeii@gmail.com زهرا یعقوب زاده Zahra Yaghobzadeh پژوهشکده اکولوژی دریای خزر Iran za_yaghoub@yahoo.com عین اله زارع Eynolah Zare اداره شیلات شهرستان آمل Iran E_zare@yahoo.com شهریار بهروزی Shahryar Behrozui پژوهشکده اکولوژی دریای خزر Iran behrouzi.sh.1967@gmail.com فرشیده حبیبی Farshideh Habibi پژوهشکده اکولوژی دریای خزر Iran farshidehhabibi@gmail.com Haraz River Rainbow trout Fecal coliform Mercury Trimethoprim sulfamethoxazole رودخانه هراز قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان کلیفرم مدفوعی جیوه تری متوپریم سولفامتوکسازول ##بهروزی، ش.، 1382. بررسی آلودگیهای انگلی و باکتریایی در مزارع پرورش ماهیان سردآبی و گرم آبی در استان مازندران، گزارش نهایی 629/81 گ ن، موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی دریای خزر.##حقیقی خیابانیان اصل، ع.، سلطانی، م.، سهرابی حقدوست، ا. و شریف پور، ع.، 1384. بررسی بیماری نکروز عفونی مراکز خونساز (IHN) به روش ایمونوهیستوشیمی در برخی از مراکز تکثیر و پرورش ماهیان قزل آلای ایران. مجله علوم دامپزشکی ایران، 2(2):164-157.##ذریه‌زهرا، س.ج.، سلطانی، م.، شریف‌پور، ع.، سعیدی، ع.ا. و مهرابی، م.،1384. بررسی مقدماتی امکان ردیابی علل عفونی (ویروسی- باکتریایی) سندرم تلفات نوزادان و ماهیان جوان قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان(استانهای تهران، مازندران، گیلان، مرکزی، کرمان ، فارس و کهکیلویه و بویر احمد)، گزارش نهایی 470/84، موسسه تحقیقات شیلات ایران.##راستیان نسب، ا.، موسوی، س.م.، ذوالقرنین، ح.و. و حسین زاده صحافی، ه.، 1396. بررسی تاثیر پروبیوآنزیمبر بیان ژنهای وابسته به ایمنی و کنترل بیماری دهان قرمز (Yersiniosis) در ماهی قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان. مجله علمی شیلات ایران، 26(1):166 – 153. DOI:10.22092/ISF.2017.110337##زرگر، ا.، سلطانی، م.، همت زاده، ف.، کاظمی، ب. و ابراهیم زاده موسوی، ح.، 1387. مطالعه پراکنش بیماری نکروز عفونی بافتهای خونساز(IHN) در پنج استان عمده تولید کننده بچه ماهی قزا آلای رنگین کمان کشور با استفاده از تکنیکهای آنتی بادی درخشان به روش غیر مستقیم(IFAT) و واکنش زنجیره ای پلی مراز (nested-RT-PCR)، مجله تحقیقات دامپزشکی،63(3): 105 – 99. ##سازمان شیلات ایران، 1390. سالنامه آماری شیلات ایران 1389-1379، معاونت برنامه ریزی و مدیریت منابع، صفحه 35.##سازمان شیلات ایران، 1400. سالنامه آماری شیلات ایران 1399-1394، معاونت برنامه ریزی و مدیریت منابع، صفحه 35.##سعیدی، ع. ا.، 1395. مطالعه برخی از عوامل خطر و ارزیابی تاثیر آنها در بروز استرپتوکوکوزیس در مزارع پرورش ماهیان سردآبی در شرق استان مازندران، گزارش نهایی 47579، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، پژوهشکده اکولوژی دریای خزر.##سلطانی. م. و رستمی، م.، 1376. عفونتهای ناشی از ارگانیسمهای شبیه فلکسی باکتر سایتوفاگا در کارگاه های پرورش قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان، مجله دامپزشکی دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران،52(3): 26 – 13.##سلطانی، م.، روح الهی، ش.، زرگر، ا.، عبدی، ک.، محمدیان، س. و قاجاری، ا.، 1393. مطالعه ی پراکنش بیماری نکروز عفونی پانکراس در مزارع قزل آلای ایران به روش RT-PCR. مجله دامپزشکی ایران، 10(2):39 – 29.##شهسواری پور، ن. و اسماعیلی ساری، ع.، 1390. بررسی آلودگی میکروبی رودخانه هراز و تعیین کاربری های مجاز آب رودخانه با توجه به استانداردهای جهانی، علوم و تکنولوژی محیط زیست ، 13(51):94 – 81.##قیاسی، م.، زاهدی طبرستانی، آ. و خوشباور رستمی، ح.، 1379. بروز اپیدمی استرپتوکوکوزیس (Streptococcosis) در ماهیان مولد قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان، اولین همایش بهداشت و بیماریهای آبزیان، 27 – 25 بهمن، اهواز، 52.##قیاسی، م.، خسروی، ع. و یوسفیان، م.، 1383. اولین گزارش از عفونت قارچی ناشی از ساپرولگنیا پارازیتیکا و آفانومایسس در هچری ماهیان قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان رودخانه هراز، اولین کنگره علوم دامی و آبزیان کشور، 6– 8 شهریور، کرج، 553 – 552. ##قیاسی، م.، باباعلیان، ع.، بینایی، م.، بهروزی، ش. و سعیدی، ع.ا.، 1389. بروز اپیدمی ساپرولگنیازیس در ماهیان قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان پرورشی در استان مازندران، شانزدهمین کنگره دامپزشکی ایران، 9 – 7 اردیبهشت، تهران، 159. ##قیاسی، م.، ذریه زهرا، س.ج.، باهنر، ع.، ، پورغلام، ر.، فارابی، س. م. و.، بینایی، م. و سعیدی، ع.ا.، 1392. ارزیابی مدیریت بهداشتی مراکز تکثیر و پرورش ماهیان قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان در استان مازندران. مجله شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد آزادشهر، 7 (3):112 – 103.##موسوی، س.،1386. بررسی بروز استرپتوکوکوزیس و استافیلوکوکوزیس در مزارع منتخب تکثیر و پرورش قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان، پایان نامه گروه شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان.##نصیراحمدی، ک.، یوسفی، ذ. و ترسلی، ا.، 1391. پهنه بندی کیفیت آب رودخانه هراز بر اساس شاخصNSFWQI، مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران، 22(92):71-64##نفیسی بهبادی، م.، 1385. راهنمای عملی تکثیر و پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان، انتشارات دانشگاه تهران. ص 18 - 17##واردی، ا.، 1386. بررسی تاثیر متقابل فعالیتهای تولیدی بر اکوسیستم های حوضه دریای خزر – فعالیت 1 – مزارع تکثیر و پرورش رودخانه هراز، گزارش نهایی 236/85، موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی دریای خزر.##یعقوب زاده، ز. و صفری، ر.، 1395. بررسی باکتری‌‌های کلیفرمی وتخم نماتود رواناب‌‌های رودخانه هراز، مجله علمی شیلات ایران، 25(1): 39 – 29. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110221##Afshan, S., Ali, S., Ameen, U.S., Farid, M., Bharwana, S.A., Hannan, F. and Ahmad, R., 2014. Effect of Different Heavy Metal Pollution on Fish. Research Journal of Chemical and Environmental Sciences, 2(1): 74-79.##APHA, 2005. Standard Methods for the Examination of water and Wastewater, American Public Health Association, Seventeenth Edition. 1113 P.##Austin, B. and Austin, D.A., 2012. Bacterial Fish Pathogens, Disease of Farmed and Wild Fish. 5th Edition, Springer, Netherlands, 654 P.##Authman, M.M.N., Zaki, M.S., Khallaf, E.A. and Abbas, H.A., 2015. Use of fish as bio-indicator of the effects of heavy metals pollution. Journal of Aquaculture Research and Development, 6(4): 1000328. DOI: 10.4172/2155-9546.1000328##Capkin, E., Terzi, E. and Altinok, I., 2015. Occurrence of antibiotic resistance genes in culturable bacteria isolated from Turkish trout farms and their local aquatic environment. Diseases of Aquatic Organisms, 114: 127–137. DOI: 10.3354/dao02852 ##Clarkson, T.W. and Magos, L., 2006. The toxicology of mercury and its chemical compounds. Critical Reviews in Toxicology, 36: 609-662. DOI: 10.1080/10408440600845619.##Dmitry, A., 2013. Effect of water quality on rainbow trout performance, Bachelor’s Thesis, Mikkelin Univesity.##Ebany, J.M.F., Chakraborty, S., Fretham, S.J.B. and Aschner, M., 2012. Cellular transport and homeostasis of essential and nonessential metals. Metallomics 4: 593-605. DOI: 10.1039/c2mt00185c.##Elbeshti, R.T.A., Elderwish, N.M., Abdelali, K.M.K. and Taştan, Y., 2018. Effects of heavy metals on fish. Menba Journal of Fisheries Faculty, 4: 36-47.##Erickson, R.J., Nichols, J.W., Cook, P.M. and Ankley, G.T., 2008. Bioavailability of chemical contaminants in aquatic systems, In: Di Giulio RT, Hinton DE, The Toxicology of Fishes, Florida, USA: CRC Press, 9-45.##Ferrara, R., Mazzolai, B., Lanzillota, E., Nucaro, E. and Pirrone, N., 2000. Volcanoes as emission sources of atmospheric mercury in the Mediterranean basin. Science Total Environment, 59:115–121. DOI:10.1016/S0048-9697(00)00558-1.##Garry, E., Ouattara, G., Williams, P. and Pesta, M., 2009. Chromogenic agar plates using the color qcount automated colony counter. Journal of Methods and Automation in Microbiology, 17(1): 1–12. DOI: 10.1111/j.1745-4581.2008.00150.x. ##Giblin, F.J. and Massaro, E.J., 1975. The erythrocyte transport and transfer of methyl mercury to the tissues of the rainbow trout (Salmo gairdneri). Toxicology 5: 243-254. DOI: 10.1016/0300-483x(75)90121-3.##Hayatghei, N., Calvez,S., Fournel, C., Pineau, L., Pouliquen, H. and Moreau, E., 2021. Antimicrobial susceptibility profiles and resistance genes in genus َAeromonas spp. isolated from the environment and rainbow trout of two fish farms in France. Microorganisms, 9: 1201. DOI:10.3390/microorganisms9061201.##Huang, Y., Jung, A., Schäfer, W.J., Mock, D., Michael, G.B., Runge, M., Schwarz, S. and Steinhagen, D., 2015. Analysis of Yersinia ruckeri strains isolated from trout farms in northwest Germany. Diseases of Aquatic Organisms, 116: 243–249. DOI: 10.3354/dao02920##Jonkers, A.R.T., Sharkey, K.J., Thrush, M.A.,Turnbull, J.F. and Morgan, K.L., 2010. Epidemics and control strategies for diseases of farmed salmonids: A parameter study. Epidemics, 2: 195–206. DOI:10.1016/j.epidem.2010.08.001.##Levy, S.B. and Marshall, B., 2004. Antibacterial resistance worldwide: causes, challenges and responses. Nature Medicine, 10: 122−129.##Macintyre, C.M., 2008. Water quality and welfare assessment on United Kingdom trout farms, thesis of PhD, Institute of Aquaculture and University of Sterling.##Makrinos, D.L. and Bowden, T.J., 2016. Natural environmental impacts on teleost immune function. Fish and Shellfish Immunology, 53: 50-57##Morcillo, P., Esteban, M.A., Cuesta, A., 2017. Mercury and its toxic effects on fish. AIMS Environmental Science, 4(3): 386-402.##Nguyen, H.N.K., Van, T.T., Nguyen, H.T., Smooker, P.M., Shimeta, J. and Coloe, P.J., 2014. Molecular characterization of antibiotic resistance in Pseudomonas and Aeromonas isolates from catfish of the Mekong Delta, Vietnam. Veterinary Microbiology, 171:397–405.##Philminaq, E.U., Nagothu, U., Ortíz, I., Ulstein, M., Jarle, N.N., 2008. Mitigating impact from aquaculture in the Philippines, European Union. https://cordis.europa.eu/project/id/31640/it .##Scmidt, A.S., Bruun, M.S., Dasgaard, I., Pedersen, K. and Larsen, J.L., 2000. Occurrence of antimicrobial resistance in fish-pathogenic and environmental bacteria associated with four Danish rainbow trout farms. Applied and Environmental Microbiology, 66(11): 4908–4915.##Sivaraja, R. and Nagarajan, K., 2014. Levels of indicator microorganisms (total and fecal coliforms) in surface waters of rivers cauvery and bhavani for circuitously predicting the pollution load and pathogenic risks. International Journal of PharmTech Research, 6(2): 455-461.##Svobodova, Z., Lloyd, R., Machova, J. and Vykusova, B., 1993. Water quality and fish health, EIFAC Technical Paper. No. 54. Rome, FAO. 59 P.##Terech-Majewska, E., 2016. Improving disease prevention and treatment in controlled fish culture. Archives of Polish Fisheries, 24: 115-165. DOI: https://doi.org/10.1515/aopf-2016-0013##Tveteras, R., Nystoyl, R. and Jory, D. E., 2019. GOAL 2019: global finfish production review and forecast, www.aquaculturealliance.org##Vineetha, N., Vignesh, R.A. and Sridhar, D., 2015. Preparation, standardization of antibiotic discs and study of resistance pattern for first-line antibiotics in isolates from clinical samples. International Journal of Applied Research, 1(11): 624-631. ##Voccia, I., Krzystyniak, K., Dunier, M., Flipo, D. and Fournier, M., 1994. In vitro mercury – related cytotoxicity and functional impairment of the immune cells od rainbow trout (Oncorhunchus mikiss). Aquatic Toxicology, 29: 37-48. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ مقایسه ترکیب تقریبی و پروفایل اسیدهای آمینه پروتئین‌‌های هیدرولیز شده گوشت، آرد و پساب کارخانه آرد ماهی (استیک واتر) ماهی کیلکای آنچووی A comparison of the proximate compositions and amino acids profiles of protein hydrolysates produced from fishmeal effluents (stickwater), fishmeal and muscle of Anchovy sprat 1 1 در این مطالعه سه نوع پروتئین هیدرولیز شده حاصل از گوشت، آرد ماهی و پساب کارخانه آرد ماهی (استیک واتر) ماهی کیلکای آنچووی (Clupeonella engrauliformis) با استفاده از آنزیم آلکالاز (دمای 50 درجه سانتی‌‌گراد، pH 5/8 و مدت دو ساعت) تهیه و ترکیبات تقریبی و پروفایل اسیدهای آمینه مورد ارزیابی قرار گرفت. باتوجه به نتایج، بالاترین پروتئین (97/81 درصد) در KMH و کمترین چربی (51/0 درصد)، پروتئین (31/70 درصد) و بیشترین خاکستر (64/22 درصد) نیز در SWH به‌دست آمد. تیمار SWH با 23/17 درصد از بالاترین درجه هیدرولیز برخوردار بود (05/0p<). آسپارتیک اسید، گلوتامیک اسید و لیزین بیشترین اسیدهای آمینه دو تیمار KMH و FMH را تشکیل دادند درحالی‌که SWH غنی از گلوتامیک اسید، گلیسین و آلانین بود. بالاترین اسیدهای آمینه آب‌‌گریز و آروماتیک نیز در تیمار KMH مشاهده گردید (05/0p<). اسیدآمینه اورنیتین (44/1 درصد) فقط در SWH مشاهده شد. پروفایل اسیدهای آمینه و امتیاز شیمیایی محاسبه شده نشان داد که KMH و FMH غنی از اسیدهای آمینه ضروری بودند و نیازهای انسان، کپور، قزل آلا، تیلاپیا و میگوی ببری را پوشش می‌‌دهند درحالی‌که SWH تنها نیازهای قزل آلا را به طور کامل برآورده ساخته و برای اسیدهای آمینه متیونین، ترئونین، آرژینین و ایزولوسین برای گونه‌‌های آبزی پرورشی محدود کننده رشد خواهد بود. با توجه به ارزش غذایی بالا و محتوای اسیدهای آمینه در KMH و FMH، می‌‌توان از آنها به عنوان مکمل‌‌های پروتئینی بهبود دهنده سلامت استفاده نمود. همچنین ترکیبات SWH نشان داد که از این پساب می‌‌توان محصولات با ارزش افزوده بالا تولید نمود. 2 In this study, three protein hydrolysates were produced from muscle, fishmeal and fishmeal effluents (stickwater) of Anchovy Kilka fish (Clupeonella engrauliformis) using Alcalase (temperature=50ºC, pH=8.5, time=2 h) and their proximate compositions and amino acids profiles were analyzed. Based on the results, the highest protein content (81.97%) was in KMH and the lowest lipid (0.51%) and protein (70.31%) contents and the maximum ash (22.64%) were in SWH. The highest degree of hydrolysis was observed in SWH (17.23). KMH and FMH were rich in aspartic acid, glutamic acid and lysine while SWH was rich in glutamic acid, glycine and alanine. KMH had the highest content of hydrophobic and aromatic amino acids (p<0.05). SWH was the only treatment containing ornithine (1.44%). The results of amino acid profiles of hydrolysates and their calculated chemical scores showed that KMH and FMH were rich in the essential amino acids and met the nutritional needs to support optimal growth of human, common carp, rainbow trout, Nile tilapia and monodon shrimp. However, SWH could only meet the amino acid requirements of rainbow trout and the limiting amino acids for other species were methionine, threonine, arginine and isoleucine. Due to The high nutritional values and amino acid composition of KMH and FMH, they could be used as health promoting protein supplements. Also, the SWH composition showed that this effluent could be used for developing value-added products. 43 61 2021/07/282021/08/102021/10/82021/10/8 1400/7/16 2021/12/312021/12/312021/12/312021/12/31 1400/10/10 مهداد مهدابی Mahdad Mahdabi دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات Iran mahdad.mahdabi@gmail.com مهدی شمسایی مهرجان Mehdi Shamsaie Mehrgan دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات Iran m.shamsaie@srbiau.ac.ir هومن رجبی اسلامی Houman Rajabi Islami دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات Iran rajabi.h@srbiau.ac.ir Protein hydrolysate Anchovy Kilka Stickwater Amino acids Alcalase Chemical score پروتئین هیدرولیز شده کیلکای آنچووی استیک واتر اسیدهای آمینه آلکالاز امتیاز شیمیایی ##داورنیا، ب.، معتمدزادگان، ع. اسدی، غ.، عابدیان، ع. م. و اویسی پور، م. ر. 1391. تعیین طول زنجیره پروتئین هیدرولیز شده امعاء و احشاء ماهی تون زرد باله با آنزیم نیوتراز. نشریه پژوهشهای علوم و صنایع غذایی ایران. 8(2):. 149-137.##سالنامه آماری سازمان شیلات ایران (1398-1393).، 1398. واحد آمار معاونت برنامه ریزی و مدیریت منابع دفتر برنامه ریزی و بودجه. سازمان شیلات ایران. تهران. ایران. 64 ص.##طاهری، ع.، 1392. بررسی فعالیت آنتی اکسیدانی پروتئین آبکافت حاصل از ماهیچه و احشای ماهی یال اسبی (Trichiurus lepturus) صید شده از دریای عمان. نشریه شیلات. مجله منابع طبیعی ایران 67(2): 297-317.##علی نژاد، م.، معتمدزادگان، ع. و رضائی، م.، 1395. خواص کاربردی و فعالیت آنتی اکسیدانی پروتئین هیدرولیز شده کوسه چانه سفید (Carcharhinus dussumieri). فصلنامه علوم و صنایع غذایی 50(13): 159-169.##معتمد زادگان، ع.، شهیدی، ف.، مرتضوی، س.ع.، پورآذرنگ، ه.، حمزه، ش.، شهیدی یاساقی، س.ا.، قربانی حسن سرایی، آ. و خانی پور، ا.، 1388. اثر آنزیم پاپایین بر درجه هیدرولیز و طول زنجیره پپتیدی پروتئینهای میوفیبریلار ماهی کیلکا. مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی 16(3): 52-67..##یاسمی، م.، قمی مرز دشتی، م.ر.، دارنهال، ط.، محمدزاده، ب. و امینی، ه.، 1392. مقایسه راندمان بازیافت و درجه هیدرولیز پروتئینهای موجود در امعاء و احشای ماهی کپور سر گنده (Aristichthys nobilis) با استفاده از آنزیم. مجله علمی شیلات ایران 22(1): 149-156.##Abdul-hamid. A., Bakar, J. and Bee, G.H., 2002. Nutritional quality of spray dried protein hydrolysates from black Tilapia (Oreochromis mossambicus). Food Chemistry 78: 69-74.##Adler-Nissen, J., 1986. Enzymatic hydrolysis of food proteins. Elsevier. UK. 91p.##Alinejad, M., Motamedzadegan, A., Rezaei, M. and Regenstein, J.M., 2017. Gelatin films containing hydrolysates from whitecheek shark (Carcharhinus dussumieri) meat. Journal of Aquatic Food Product Technology. DOI:10.1080/10498850.2016.1201713##Alvares, T.S., Conte-Junior, C.A., Pierucci, A.P., de Oliveira, G.V. and Cordeiro, E.M., 2018. Acute effects of fish protein hydrolysate supplementation on vascular function in healthy individuals. Journal of Functional Foods 46: 250-255.##AOAC, 2005 Official methods of analysis (18th edition). Association of Official Analytical Chemists. Washington DC, USA.##Bechtel, P.J., 2005. Properties of Stickwater from fish processing byproducts. Journal of Aquatic Product Technology 14(2): 25-38.##Benjakul, S. and Morrissey, M.T., 1997. Protein hydrolysates from pacific whiting solid wastes. Journal of Agricultural Food Chemistry 45: 3423-3430.##Camargo, T.R., Ramos, P., Monserrat, J.M., Prentice, C., Fernandes, C.J.C., Zambuzzi, W.F. and Valenti, W.C., 2020. Biological activities of the protein hydrolysate obtained from two fishes common in the fisheries bycatch. Food Chemistry. DOI:10.1016/j.foodchem.2020.128361##Chalamaiah, M., Dinesh Kumar, B., Hemalatha, R. and Jyothirmayi, T., 2012. Fish protein hydrolysates: Proximate composition, amino acid composition, antioxidant activities and applications: A review. Food Chemistry 135: 3020–3038.##Clark, T.C., Tinsley, J., Sigholt, T., Macqueen, D.J. and Martin, S.A.M., 2020. Arginine, Ornithine, citrulline supplementation in rainbow trout: free amino acid dynamics and gene expression responses to bacterial infection. Fish and Shellfish Immunology 98: 374-390.##Clark, T.C., Tinsley, J., Sigholt, T., Macqueen, D.J. and Martin, S.A.M., 2019. Supplementation of arginine, ornithine, citrulline in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): Effects on growth, amino acid levels in plasma and gene expression responses in liver tissue. Comparative Biochemistry and Physiology Part A. DOI:10.1016/j.cbpa.2019.110632##Cordeiro, E.M., de Oliveira, G.V., Volino-Souza, M., Couto Velozo, O. and Alvares, T.S., 2019. Effects of fish protein hydrolysate ingestion on postexercise aminoacidemia compared with whey protein hydrolysate in young individuals. Journal of Food Science. DOI:10.1111/1750-3841.14970##Dong, Y.L., Sheng, G.Y., Fu, J.M. and Wen, K.W., 2005. Chemical characterization and anti-anaemia activity of fish protein hydrolysate from Saurida elongate. Journal of Food Science and Agriculture 85: 2033-2039.##Drotningsvik, A., Pampanin, D.M., Slizyte, R., Carvajal, A., Hogoy, I. and Remman, T., 2019. Hydrolyzed protein from herring and salmon rest raw material contain peptide motifs with angiotensin-I converting enzyme inhibitors and resulted in lower urine concentration of protein, cystatin C and glucose when fed to obese Zucker fa/fa rats. Nutrition Research 52: 14-21.##FAO, 2019. FAO yearbook. Fishery and Aquaculture Statistics 2017. Rome, Italy. 80p.##FAO/WHO/UNU, 2007. Amino acid requirements of adults. Protein and amino acids requirements in human nutrition. FAO/WHO/UNU: Geneva, Switzerland. 265p.##Fauzi, I.A., Haga, Y., Kondo, H., Hirono, I. and Satoh, S., 2020. Dietary citrulline improves survival of rainbow trout Oncorhynchus mykiss juveniles challenged with Vibrio anguillarum. Aquaculture 528: 735491. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2020.735491##Foh, M.B.K., Amadou, I., Foh, B.M., Kamara, M.T. and Xia, W., 2010. Functionality and antioxidant properties of tilapia (Oreochromis niloticus) as influenced by the degree of hydrolysis. International Journal of Molecular Science 11: 1851-1869.##Gao, R., Yu, Q., Shen, Y., Chu, Q., Chen, G., Fen, S., Yang, M., Yuan, L., McClements, D.J. and Sun, Q., 2021. Production, bioactive properties and potential application of fish protein hydrolysates: Developments and challenges. Trends in Food Science and Technology 110: 687-699.##Garcia-Santiago, J.C., Cavazos, C.J.L., Gonzalez-Fuentes, J.A., Zermeno-Gonzalez, A., Alvarado, E.R., Duarte, A.R., et al., 2021. Effects of fish-derived protein hydrolysate, animal-based organic fertilizers and irrigation method on the growth and quality of grape tomatoes. Biological Agriculture and Horticulture, 37(2): 107-124. DOI:10.1080/01448765.2021.1891458##Greyling, N., 2017. Optimisation of enzymatic hydrolysis of monkfish heads for preparing protein hydrolysates as animal feed ingredients. Dissertation, University of Stellenbosch.##Guo, J., Swanepoel, A., Joao, R., Salze, G., Rhodes, M. and Davis, D.A., 2020. Hydrolysed salmon meal as a replacement for salmon meal in practical diets for Pacific white shrimp (Liptopenaeus vannamei). Aquaculture Nutrition 26(2): 368-381.##Idowu, A.T. and Benjakul, S., 2019. Bitterness of fish protein hydrolysate and its debittering prospects. Food Biochemistry. DOI:10.1111/jfbc.12978##Janbakhsh, S., Hosseini Shekarabi, S.P. and Shamsaie Mergan, M., 2018. Nutritional value and heavy metal content of fishmeal from the Southwest Caspian Sea. Caspian Journal of Environmental Sciences 16(4): 307-317.##Jones, B.N. and Gilligan, J.P., 1983. O-phthaldialdehyde precolumn derivatizationa and reverse-phased high-performance liquid chromatography of polypeptide hydolysates and physiological fluids. Journal of Chromatography 266: 471-482.##Khantaphant, S., 2010. Proteases from pyloric caeca of brownstripe red snapper (Lutjanus vita): purification, characterization and the use for production of hydrolysate with antioxidative activity. Dissertation. Prince Songkala University of Thailand.##Kleber-Lorenz, E., Barone, R.S.C., Franca, W.G., Sabioni, R.E., Koch, J.F.A. and Cyrino, J.E.P., 2017. Performance, hematology and immunology of Salminus brasiliensis fed diets containing swine liver hydrolysate. Aquaculture 483: 46-52.##Kristinsson, H.G. and Rasco, B.A., 2000. Fish protein hydrolysates: production, biochemical and functional properties. Critical Reviews in Food Science and Nutrition 40(1): 43–81.##Liceaga-Gesualdo, A M. and Li-Chan, E.C.Y., 1999. Functional properties of fish protein hydrolysate from Herring (Clupea harengus). Journal of Food Science 64(6): 1000-1004.##Mahdabi, M. and Hosseini Shekarabi, S.P., 2018. A comparative study on some functional and antioxidant properties of kilka meat, fishmeal, and stickwater protein hydrolysates, Journal of Aquatic Food Product Technology. DOI:10.1080/10498850.2018.1500503##Monirujamman, M., 2014. Metabolic and physiological roles of branched chain amino acids. Advances in Molecular Biology. DOI:10.1155/2014/364976##Nelson, G., Paxton, J.R. and Eschmeyer, W.N., 1998. Encyclopedia of fishes. Academic Press. San Diego. USA. pp 91-95.##Nilsang, S., Lertsiri, S., Suphantharika, M. and Assavanig, A., 2005. Optimization of enzymatic hydrolysis of fish soluble concentrate by commercial proteases. Journal of Food Engineering. DOI:10.1016/j.jfoodeng.2004.10.011##NRC, 2011 Nutrient requirements of fish and shrimp. National Research Council. National Academy Press. Washington DC. USA. 376p.##Ovissipour, M., Safari, R., Motamedzadegan, A. and Shabanpour, B., 2009. Chemical and biochemical hydrolysis of Persian sturgeon (Acipenser persicus) visceral protein. Food Bioprocess Technology. DOI:10.1007/s11947-009-0284-x.##Pacheco-Aguilar, R., Mazorra-Manzano, M.A. and Ramiorez-Suarez, J.C., 2008. Functional properties of fish protein hydrolysates from Pacific whiting (Merluccius productus) muscle produced by a commercial protease. Food Chemistry 109: 782-789.##Prabha, J., Nithin, A., Mariarose, L. and Vincent, S., 2019. Processing of nutritive fish protein hydrolysate from Leiognathus splendens. International Journal of Peptide Research and Therapeutics. DOI:10.1007/s10989-019-09892-6##Pyz-Łukasik, R. and Paszkiewicz, W., 2018. Species variations in the proximate composition, amino acid profile, and protein quality of the muscle tissue of grass carp, bighead carp, siberian sturgeon, and wels catfish. Journal of Food Quality. DOI:10.1155/2018/2625401##Rajendran, S.R.C.K., Mohan, A., Khiari, Z., Udenigwe, C.C. and Mason, B., 2018. Yield, physiochemical, and antioxidant properties of Atlantic salmon visceral hydrolysate: comparison of lactic acid bacterial fermentation with Flavourzyme proteolysis and formic acid treatment. Journal of Food Processing and Preservation. DOI:10.1111/jfpp.13620##Rivero-Pino, F., Espejo-Carpio, F.J. and Guadix, E.M., 2020. Evaluation of the bioactive potential of foods fortified with fish protein hydrolysates. Food Research International. DOI:10.1016/j.ffodres.2020.109572##Sathivel, S., Bechtel, P.J., Babbit, J., Smiley, S., Crapo, C., Reppond, K.D. and Prinyawiwatkul, W., 2003. Biochemical and functional properties of Herring (Clupea harengus) byproduct hydrolysates. Journal of Food Science 68(7): 2196-2200.##Sathivel, S., Smiley, S., Prinyawiwatkul, W. and Bechtel, P.J., 2005. Functional and nutritional properties of red salmon (Oncorhynchus nerka) enzymatic hydrolysates. Journal of Food Science 70(6): C401-C406.##Shahidi, F., Han, X.Q. and Synowiecki, J., 1995. Production and characteristics of protein hydrolysates from capelin (Mallotus villosus). Food Chemistry 53: 285-293.##Shahidi, F., Varatharajan, V., Peng, H. and Senadheera, R., 2019. Utilization of marine by-products for the recovery of value-added products. Journal of Food Bioactives 6: 10-61.##Shi, Y., Zhong, L., Ma, X., Liu, Y., Tang, T. and Hu, Y., 2019. Effect of replacing fishmeal with stickwater Hydrolysate on the growth, serum biochemical indexes, immune indexes, intestinal histology and microbiota of rice field eel (Monopterus albus). Aquaculture Reports 15(100223): 1-9.##Siddik, M.A.B., Howieson, J. and Fotedar, R., 2019. Beneficial effects of tuna hydrolysate in poultry by-product meal diets on growth, immune response, intestinal health and disease resistance to Vibrio harveyi in juvenile barramundi, Lates calcarifer. Fish and Shellfish Immunology 89: 61-70.##Slizyte, R., Mozuraityte, R., Martinez-Alvarez, O., Falch, E., Fouchereau-Peron, M. and Rustad, T,. 2009. Functional, bioactive and antioxidative properties of hydrolysates obtained from cod (Gadus morhua) backbones. Process Biochemistry 44: 668-677.##Spellman, D., McEvoy, E., O’Cuinn, G. and FitzGerald, R., 2003. Proteinase and exopeptidase hydrolysis of whey protein: Comparison of the TNBS, OPA and pH stat methods for quantification of degree of hydrolysis. International Dairy Journal 13(6): 447 - 453.##Stone, F.E. and Hardy, R.W., 1986. Nutritional value of acid stabilized silage and liquefied fish protein. Journal of the Science of Food and Agriculture 37: 797–803.##Thiansilakul, Y., Benjakul, S. and Shahidi, F., 2007. Compositions, functional properties and antioxidant activity of protein hydrolysates prepared from round scad (Decapterus maruadsi). Food Chemistry 103: 1358-1394##Vazquez, J.A., Rodriguez-Amado, I., Sotelo, C.G., Sanz, N., Perez-Martin, R. and Valcarcel, J., 2020. Production, characterization and bioactivity of fish protein hydrolysate from aquaculture turbot (Schophthalmus maximus) wastes. Biomolecules. DOI:10.3390/biom10020310##Wasswa, J., Tang, J., Gu, X. and Yuan, X., 2007. Influence of the extent of hydrolysis on the functional properties of protein hydrolysate from grass carp (Ctenopharyngodon idella) skin. Food Chemistry 104: 1698-1704.##Wu, D., Zhou, L., Gao, M., Wang, M., He, J., Lou, Q., Ye, Y., Chai, C., Wu, P., Zhang, Y. and Pu, Q., 2018. Effects of stickwater hydrolysates on growth performance for yellow catfish (Pelteobagrus fulvidraco). Aquaculture 488: 161-173.##Yathisha, U.G., Bhat, I., Karunasagar, I. and Mamatha, B.S., 2018. Antihypertensive activity of fish protein hydrolysates and its peptides. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. DOI:10.1080/10408398.2018.1452182##Yin, S. W., Tang, C.H., Cao, J.S., Hu, E.K., Wen, Q.B. and Yang, X.Q., 2010. Effects of limited hydrolysis with trypsin on the functional properties of hemp (Cannabis sativa L.) protein isolate. Food Chemistry 106: 1004-1013.##Zamora-Sillero, J., Ramos, P., Monserrat, J.M. and Prentice, C., 2018. Evaluation of the antioxidant activity in vitro and in hippocampal HT-22 cells system of protein hydrolysates of common carp (Cyprinus carpio) by-product. Journal of Aquatic Food Product Technology 27: 21-34. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ اثر بسته‌بندی اتمسفر اصلاح شده و اسانس رازیانه بر رشد باکتری‌های هوازی و بی‌هوازی و خواص کیفی ماهی قزل‌آلای رنگین کمان تازه Effect of modified atmosphere packaging and fennel essential oil on the growth of aerobic and anaerobic bacteria’s and quality properties of fresh rainbow trout 1 1 در این مطالعه اثر غلظت‌های مختلف سه نوع مخلوط گازی (دی‌اکسید‌کربن، نیتروژن و اکسیژن) و نیز شرایط تحت خلاء و بسته‌بندی معمولی، در 3 نوع پوشش قابل انعطاف 4 لایه همراه با اسانس رازیانه برای افزایش زمان ماندگاری ماهی قزل‌‌آلا تازه در شرایط دمایی یخچال ‌‌4 درجه سانتی‌گراد ‌‌مورد بررسی قرار گرفت.‌‌ بسته‌بندی بدون تزریق گاز و اسانس با 4 نوع بسته‌بندی با اتمسفر اصلاح شده با ترکیبات گازی شامل 1) 25 درصد N2 + 75 درصد CO2، 2) 75 درصد N2 + 25 درصد CO2، 3) 48 درصد N2 + 48 درصد CO2 +4 درصد O2 و 4) تحت خلأ، به همراه تزریق اسانس‌‌ رازیانه یا بدون اسانس به میزان 2 درصد وزنی بودند، مقایسه گردید. برای بسته‌‌بندی نمونه‌‌های ماهی از پوشش‌‌های چند لایه، PET12/AL7 /OPP20/ LLD90 ، PET12 /AL7/PET 12/LLD 100 و PET12/AL7 /PA15/ LLD 90‌‌  استفاده شد‌‌. نمونه‌های بسته‌بندی شده، طی 20 روز در روزهای مختلف 5، 10، 15 و 20 مورد آزمون‌های شمارش باکترهای هوازی و باکترهای بی‌‌هوازی، تغییرات pH،‌‌ اندازه‌‌گیری‌‌ مقادیر پراکسید و بازهای نیتروژنی فرار و خواص حسی قرار گرفتند. آزمایش‌‌ها نشان داد ترکیب گازی 75 درصد CO2 همراه اسانس رازیانه و بسته‌بندی با پوشش 4 لایه PET12/AL7 /PA15/ LLD 90 (123 میکرون) حاوی پلی آمید با نفوذپذیری و عبور بخار آب کمتر به رغم ضخامت کمتر، برای ماندگاری ماهی قزل آلا تا 20 روز بهتر بود و تأثیر مطلوبی بر کنترل رشد میکروبی ، کنترل خواص شیمیایی و ارزیابی حسی (رنگ، بو، مزه، ظاهر و بافت) نمونه‌‌ها گذاشت که به دلیل خاصیت ضد‌ میکروبی این دو عامل ارزیابی شد. 2 In this study, the effect of different concentrations of three gas mixtures (carbon dioxide, nitrogen, oxygen), as well as vacuum conditions, and ordinary packagings in 3 types  of flexible 4-layer films, containing fennel essential oil were evaluated for extending shelf life of fresh rainbow trout fish at 40C. Ordinary conditions as control samples, were compared with four kinds of modified atmosphere packaging 1)75% CO2+25% N2, 2) 25% CO2+75% N2, 3)% 48CO2+48% N2+4% O2 and 4) under vacuum condition, along with injection fennel essential oil(2% WE/Ws), and samples without essential oil. Fish samples were packaged in different flexible multi-layer films, PET12/AL7‌‌/OPP20/‌‌LLD90, PET12‌‌/AL7/PET 12/LLD‌‌100 ‌‌, and‌‌ PET12/AL7‌‌/PA15/‌‌LLD‌‌90, under MAP. The microbial aerobics and anaerobic counts and the pH changes, determination of peroxide content, total volatile nitrogen, and sensory properties of samples were performed on the packaged samples at different 5, 10, 15, 20 days. The experiments revealed that the gas composition of 75% CO2 combined with fennel essential oil due to high antimicrobial properties of these factors, and 4-layer PET12/AL7 /PA15/ LLD 90)123 μ) ‌‌‌‌along with poly amid as a low water vapor transmission rate containers in spite of less thickness, were used to maintain the long-term of (20 days) fresh trout fish and had a desire effect on controlling microbial growth and chemical properties, and sensory evaluation of samples(odor, color, texture, appearance, and taste) were observed better.   63 82 2021/07/282021/08/102021/10/82021/10/82021/08/1 1400/5/10 2021/12/312021/12/312021/12/312021/12/312021/12/31 1400/10/10 مرضیه ببری Marzieh Babri گروه علوم و صنایع غذایی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین – پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران Iran babri876@yahoo.com نازنین زند Nazanin Zand گروه علوم و صنایع غذایی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین – پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران Iran n_zand2008@yahoo.com Modified atmosphere packaging Fresh rainbow trout Flexible multi-layer films Fennel essential oil بسته‌بندی تحت اتمسفر اصلاح شده ماهی قزل آلا تازه پوشش‌های انعطاف‌پذیر چند لایه اسانس رازیانه ##ذوالفقاری، م.، شعبانپور، ب. و فلاح زاده. س.،1390. اثر نمک سود کردن، بسته بندی در خلأ و تأثیر توأمان آنها بر ماندگاری فیله ماهی قزل آلای رنگین کمان طی نگه‌‌داری در دمای 4 درجه سانتی‌گراد .فصلنامه علوم و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، شماره 8،31،44-35.##سلمانی‌‌جلودار، ع.‌‌،‌‌پرویز. م،‌‌صفری،‌‌ر.‌‌، غرقی‌‌، ا.‌‌، ارشد، ر.‌‌، جلیلی، ح.‌‌، رفیع‌‌پور، ف.‌‌، صدریان، م.‌‌ و غلامی‌‌پور. س.، ‌‌1388. بررسی استفاده از تکنیک بسته بندی در اتمسفر اصلاح شده در بهبود زمان ماندگاری ماهی قزل آلای تازه. مرکز ملی فرآوری آبزیان، مؤسسه تحقیقات شیلات ایران،41 صفحه.##موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران.1386. میکروبیولوژی مواد غذایی کنسرو شده – ویژگی‌‌ها و روش‌‌های آزمون، استاندارد ملی ایران، شماره 2326.##موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران. 1371. گوشت تازه و فرآورده دریایی – ویژگی‌ها، استاندارد ملی ایران، شماره 9714.##موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران.1393. روش جامع برای شمارش کلی میکروارگانیسم‌‌ها در 30 درجه سلسیوس، استاندارد ملی ایران، شماره 1-5272 و 2-5272.##میثاقی، ع.، سعیدی، م.، نوری، ن. و رضایی گلستانی، م.ر.، ۱۳۹۷. مطالعه تأثیر اسانس پونه کوهی و عصاره اتانولی بره موم بر ویژگی‌های ضد باکتریایی و برخی ویژگی‌های فیزیکی فیلم‌های زیست تخریب پذیر پلی لاکتیک اسید، مجله سلامت و محیط زیست. فصلنامه علمی پژوهشی انجمن علمی بهداشت محیط ایران، دوره ۱۱، شماره ۱، ۱۲۲-۱۱۱.##هدایتی فر، م. و اروجعلیان، ع.، 1389. افزایش زمان ماندگاری فیله ماهی اوزون برون تازه (Acipenser stellatus) در شرایط بسته بندی تحت اتمسفر اصلاح شده (MAP) و خلاء. مجله علمی شیلات ایران. شماره 19، 3،140-127.##Bingol, E.B. and Ergun, O., 2011. Effect of modified atmosphere packaging (MAP) on the microbiological quality and shelf life of ostrich meat. Meat Science, 774-785. DOI:10.1016/j.meatsci.2011.03.013.##Caleb, O.J., Opara, U.L. and Witthuhn, C.R., 2012. Modified atmosphere packaging of pomegranate fruit and arils: a review. Journal of Food and Bioprocess Technology, 5: 15–30. DOI:10.1007/s11947-011-0525-7.##Chan, S.S., Skare, M., Rotabakk, B.T., Sivertsvik, M., Lerfall, J., Løvdal, T. and Roth, B., 2021. Evaluation of physical and instrumentally determined sensory attributes of Atlantic salmon portions packaged in modified atmosphere and vacuum skin. LWT-Food Science and Technology, 146:111404. DOI:‌‌10.1016/j.lwt.2021.111404. ##Charles, F., Sanchez, J. and Gontard, N., 2006. Absorption kinetics of oxygen and carbon. dioxide scavengers as part of active modified atmosphere packaging. Journal of Food Engineering, 72: 1-7.##Dawood, A.A., 1995. Physical and sensory characteristics of Najdi-camel meat. Meat Science, 39(1): 59-69. DOI: 10.1016/0309-1740(95)80007-7.##Egan, H.K.R.S. and Sawyer, R., 1997. Pearson’s Chemical Analysis of Food.9 th. Longman Scientific and Technical Inc., London, England,9:609-34.##Erkan, N., Ozden, O., Alakavuk, D.U., Yildirim, S.Y. and Inugur, M., 2006. Spoilage and shelf life of sardines (Sardina pilchardus) packed in modified atmosphere. European Food Research Technology, 222:667- 673.##Gammariello, D, Incoronato, A.L., Conte, A. and DelNobile, M.A., 2015. Use of Antimicrobial Treatments and Modified Atmosphere to Extend the Shelf Life of Fresh Sausages. Food Processing & Technology, 6(6):1-7. DOI: 10.4172/2157-7110.1000456.##Genigeorgis, C.A., 2003. Microbial and safety implication of the use of modified atmospheres to extend the storage life of fresh meat and fish. International Journal of Food Microbiology, 1:237-251.##Gill, C.O., Harrison, J.C.L. and Penney, N., 2002. The storage life of chicken carcass packaged under carbon dioxide. Food Microbiology, 11:151-158.##Gimenez, B., Roncales, P. and Beltran, J.A., 2002. Modified atmosphere packaging of filleted rainbowtrout. Journal of the Science Food and Agriculture, 84:1154–59.##Goulas, A.E. and Kontominas, M.G., 2007. Combined effect of light salting, modified atmosphere packaging and oregano essential oil on the shelf-life of sea bream (Sparus aurata), Biochemical and sensory attributes. Journal of Food Chemistry, 100:287–296. DOI:10.1016/j.foodchem.2005.09.045.##Hur, S.J., Jin, S.K., Park, J.H., Jung, S.W. and Lyu, H.J., 2013. Effect of Modified Atmosphere Packaging and Vacuum Packaging on Quality Characteristics of Low Grade Beef during Cold Storage. Asian-Australia Journal Animal Science, ‌‌26(12):1781–1789. DOI: 10.5713/ajas.2013.13225.##Irkin, R. and Esmer, O.K., 2010. Control of Listeria monocytogenes in ground chicken breast meat under aerobic, vacuum and modified atmosphere packaging conditions with or without the presence of bay essential oil at 4°C. Food Science Technology, 16: 285-290. DOI:10.3136/FSTR.16.285.##Kamenik, J., 2013. The microbiology of meat spoilage: A Review. Maso-International, 1: 3-10.##Kerry, J., Grady, M. and Hogan, S., 2006. Current and potential utilization of active and intelligent packaging systems for meat and muscle- based products, A review. Meat Science, 74:113-130. DOI: 10.1016/j.meatsci.2006.04.024 .##Marcinkowska-Lesiak, M., Zdanowska-Sąsiadek, Z., Stelmasiak, A., Damaziak, K., Mchalczuk, M., Poławska, E., Wyrwisz, J. and Wierzbicka, A., 2016. Effect of packaging method and cold-storage time on chicken meat quality. CyTA - Journal of Food, 14(1): 41-46. DOI: 10.1080/19476337.2015.1042054.##McMillin, K.W., 2008. Where is MAP going? A review and future potential of modified atmosphere for meat. Meat Science, 80:43-65. DOI: 10.1016/j.meatsci.2008.05.028.##Merlo, T.C., Contreras-Castillo, C.J., Saldana, E., Barancelli, G.V., Dargelio, M.D.B., Yoshida, C.M.P., Junior, E.E.R., Massarioli, A. and Venturini, A.C., 2019. Incorporation of pink pepper residue extract into chitosan film combined with a modified atmosphere packaging: Effects on the shelf life of salmon fillets. Food Research International, 125:108633. DOI: 10.1016/j.foodres.2019.108633.##Mol, S., Ucok Alakavuk, D. and Ulusoy, S., 2014. Effects of modified atmosphere packaging on some quality attributes of a ready-to-eat salmon sushi. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 13, 2, 394-406.##Newton, K.G., Harrison, J.C.L. and Smith, K.M., 2000. The effect of storage in various gaseous atmospheres on the micro flora of lamb chops held at 10°C. Journal of Applied Bacteriology, 43:53-59.##Nielsen, D. and Hyldig, G., 2004. Influence of handling procedures and biological factors on the QIM evaluation of whole herring (Clupea harengus L.). Food Research International, 37:975-983. DOI:10.1016/j.foodres.2004.06.006.##Ozogul, F., Polata, A. and Ozogul, Y., 2004. The effects of modified atmosphere packaging and vacuum packaging on chemical, sensory and microbiological changes of sardines (Sardina pilchardus). Food Chemistry, 85(1):49-57. DOI: 10.1016/j.foodchem.2003.05.006.##Rather, M.A., Dar, B.A., Sofi, S.N., Bhat, B.A., Qurishi, M.A. 2016.‌‌ Foeniculum vulgare :A comprehensive review of its traditional use, photochemistry, pharmacology, and safety. Arabian Journal of Chemistry, 9) 2):1574–1583.‌‌ DOI:10.1016/j.arabjc.2012.04.011.##Sanhya, M., 2010. Modified atmosphere packaging of fresh produce: Current status and future needs. Journal of LWT - Food Science and Technology, 43: 381-392. DOI: 10.1016/j.lwt.2009.05.018.##Singh, G.S., Maurya, M.P. and Lampasona, C., 2006. Chemical constituents, antifungal and antioxidative potential of Foeniculum vulgare volatile oil and its acetone extract. Food Control, 17:745-752. DOI:10.1016/J.FOODCONT.2005.03.010.##Taylor, A.A., 2008. Packaging fresh meat. In: Developments in Meat Science, 3rd ed. Lawrie, R. (ed). Elsevier Applied Science Publishers, London.##Vanderzant, C., Hanna, M.O., Ehlers, J.G., Savel, J.W., Smith, G.C., Griffin, D.B., Terrell, R.N., Lind, K.D.A. and Galloway, D.E., 2000. Centralized packaging of beef lion steaks with different Oxygen-barrier films: Microbiological characteristics. Journal of Food Science, 47:1070-1079.##Zand, N. and Jabbari, Sh., 2018. Effect of Modified atmosphere packaging and multi-layer flexible films on pH of fresh quail meat. Microbiology Research Journal International,‌‌ 20(5):‌‌1-11. DOI:10.9734/MRJI/2017/29564.##Zand, N. and Mailova, E., 2010a. Combined packaging material flexible packs characteristics dependence on changes of components composition and quantity. Processing of Engineering Academy of Armenia, 7(1):129-132 (In Russian).## Zand, N. and Mailova, E., 2010b. The strength of the weld seams of flexible packages depending on the sealing mode. Journal of Agro Science, 1-2: 73-77 (In Russian).##Zand, N., Sakian Mohammadi, A. and Eshaghi, M.R., 2016‌a. Influence of MAP and multi-layer flexible pouches on clostridium count of smoked kutum fish (Rutilus frisii kutum). Journal of International Medical Research & Health Sciences, 5(11): 191-198.##Zand, N., Sakian Mohammadi, A. and Eshaghi, M.R., 2016‌b. Effect of modified atmosphere packaging and multi-layer flexible films on sensory evaluation of smoked kutum fish (Rutilus frisii kutum). Der Pharma Chemica, 8(19): 600-607.##Zand, N., Sakian Mohammadi, A. and Eshaghi, M.R., 2017. Effect of modified atmosphere packaging and multi-layer flexible films on pH of smoked kutum fish (Rutilus frisii kutum). International journal of Aquatic Science, 5(11): 34-40. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ نانو ریزپوشانی پپتیدهای زیست‌‌فعال حاصل از آبکافت آنزیمی ضایعات میگو با پوشش ترکیبی نانولیپوزوم-کیتوزان و ارزیابی فعالیت ضد باکتریایی، آنتی‌‌اکسیدانی و ضد فشار خونی محصول Nanoencapsulation of bioactive peptides from shrimp wastes enzymatic hydrolysis with combined coating of nanoliposome-chitosan and evaluation of antibacterial, antioxidant and antihypertensive activity of the product 1 1 هدف از مطالعه حاضر ارزیابی خواص مختلف پپتیدهای زیست‌‌فعال (با وزن کمتر از 3 کیلودالتون) نانوریزپوشانی‌‌شده با پوشش ترکیبی نانولیپوزوم و کیتوزان بود. به همین جهت، ضایعات مراکز فراوری و بسته‌‌بندی میگو با استفاده از آنزیم نئوتراز آبکافت و خواص ضدباکتریایی، آنتی‌‌اکسیدانی و ضد فشار خونی محصول در قالب پنج تیمار شامل P (پپتیدهای آزاد)، NP (نانولیپوزوم‌‌های حامل پپتید)، NP-CH-0.05 (نانولیپوزوم‌‌های حامل پپتید با پوشش 05/0 درصد کیتوزان)، NP-CH-0.01 (نانولیپوزوم‌‌های حامل پپتید با پوشش 1/0 درصد کیتوزان) و NP-CH-0.5 (نانولیپوزوم‌‌های حامل پپتید با پوشش 5/0 درصد کیتوزان) ارزیابی شد. نتایج نشان داد، همه تیمارهای تحقیق تا حد مشخصی خواص ضد باکتریایی، آنتی‌‌اکسیدانی و ضد فشار خونی دارند. تیمارهای P و NP در هر سه خاصیت، مقادیر تقریباً برابری ارائه کردند و خواص آنها اختلاف معنی‌‌داری نداشت (05/0<p). تیمارهای دارای پوشش کیتوزان به صورت معنی‌‌داری نسبت به تیمارهای P و NP خواص ضد باکتریایی، آنتی‌‌اکسیدانی و ضد فشار خونی بیشتری داشتند (05/0>p). در سه تیمار دارای پوشش کیتوزان، با افزایش میزان کیتوزان، هر سه خاصیت مذکور به صورت معنی‌‌داری افزایش یافتند (05/0>p). در بین تیمارهای تحقیق، بیشترین فعالیت مهار رشد باکتری‌‌های اشریشیاکلای، باسیلوس‌‌ سرئوس و استافیلوکوکوس اورئوس (به‌‌ترتیب 96/0±89/45، 75/0±82/34 و 45/1±67/49 درصد)، بالاترین نرخ مهار رادیکال‌‌های آزاد DPPH، ABTS و پراکسیداسیون لینولئیک‌‌اسید (به‌‌ترتیب 86/2±52/63، 29/0±91/73 و 11/2±06/89 درصد) و موثرترین خاصیت ضد فشار خونی (29/1±91/37 درصد) نیز مربوط به تیمار NP-CH-0.5 بود. 2 The aim of this study was to evaluate the different properties of bioactive peptides encapsulated with a combined coating of nanoliposome and chitosan. Therefore, the wastes of shrimp processing and packaging centers were hydrolyzed using Neuterase enzyme and the antibacterial, antioxidant and antihypertensive properties of the product were evaluated in the form of five treatments of P (free peptides), NP (peptide-carrying nanoliposomes), NP-CH-0.05 (peptide-carrying nanoliposomes with a coating of 0.05% chitosan), NP-CH-0.1 (peptide-carrying nanoliposomes with a coating of 0.1% chitosan) and NP-CH-0.5 (peptide-carrying nanoliposomes with a coating of 0.5% chitosan). The results showed that all research treatments have certain antibacterial, antioxidant and antihypertensive properties. P and NP treatments provided almost equal values for all three properties and their properties did not differ significantly (p>0.05). Chitosan-coated treatments had significantly more antibacterial, antioxidant and antihypertensive properties than P and NP treatments (p<0.05). In chitosan-coated treatments, with increasing the amount of chitosan in the coating, all three mentioned properties were significantly increased (p<0.05). The highest growth inhibition activity of Escherichia coli, Bacillus cereus and Staphylococcus aureus (45.89±0.96, 34.82±0.75 and 49.67±1.45%, respectively), the maximum amount of inhibition of DPPH, ABTS and linoleic acid peroxidation (63.52±2.86, 73.91±0.29 and 89.06±2.11%, respectively) and also the most effective antihypertensive property (37.91±1.29%) were related to NP-CH-0.5 treatment. 83 95 2021/07/282021/08/102021/10/82021/10/82021/08/12021/12/1 1400/9/10 2021/12/312021/12/312021/12/312021/12/312021/12/312021/12/31 1400/10/10 سکینه یگانه Sakineh Yeganeh دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران Iran skyeganeh@gmail.com سهیل ریحانی پول Soheyl Reyhani Poul گروه فراوری محصولات شیلاتی، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان گرگان، ایران. Iran soheylreyhani@gmail.com Shrimp waste Bioactive peptides Antibacterial properties Antioxidant activity Antihypertensive effects ضایعات میگو پپتیدهای زیست‌‌فعال نانولیپوزوم خواص ضد باکتریایی فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی ##اجاق، م.، حسنی، ش. و حسنی، م.، 1400. تاثیر فرایندهای انجماد-انجمادزدایی و خشک‌کردن انجمادی-رهیدراسیون بر پایداری فیزیکی نانولیپوزوم‌های حامل پپتیدهای زیست‌فعال. نوآوری در علوم و فناوری غذایی، 13 (4): 81-65. DOI: 10.30495/JFST.2021.680663##حسنی، ش.، شهیدی نوقابی، م. و اجاق، م.، 1398. تولید و ارزیابی نانولیپوزوم‌های حامل پپتیدهای زیست‌فعال به دست‌آمده از ضایعات ماهی با استفاده از آنزیم‌ آلکالاز. نشریه پژوهش و نوآوری در علوم و صنایع غذایی، 8 (1): 44-31. DOI: 10.22101/JRIFST.2019.04.30.813##ریحانی پول، س.، جعفرپور، ع. و صفری، ر.، 1397. بررسی پروفیل اسیدچرب روغن، خواص عملکردی و آنتی‌اکسیدانی پروتئین حاصله از آبکافت آنزیمی اندرونه ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss) با استفاده از آنزیم‌های پروتامکس و نئوتراز. نشریه پژوهش‌های علوم و صنایع غذایی ایران، 14 (1): 176-162. DOI:10.22067/ifstrj.v1395i0.53714##ریحانی پول، س. و جعفرپور، علی.، 1399. اثر پوشش فعال کیتوزان حاوی پروتئین آبکافتی بر خواص شیمیایی و میکروبی فیله ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss) طی دوره نگهداری در دمای یخچال. نشریه پژوهش‌های علوم و صنایع غذایی ایران، 16 (4): 505-493. DOI: 10.22067/ifstrj.v16i4.82198##صادقیان امین، ی.، صادقی ماهونک، ع.، قربانی، ن.، اعلمی، م. و جوشقانی، ح.، 1399. بررسی ویژگی فیزیکی، شیمیایی و آنتی‌اکسیدانی نانولیپوزوم‌های بارگیری‌شده با پروتئین هیدرولیزشئه دانه کینوآ. مجله علوم تغذیه و صنایع غذایی ایران، 15 (2): 82-71##صفری، ر.، ریحانی پول، س.، بانکه‌ساز، ز.، تقوی، م. و صفری، ع.، 1400. تولید سیلاژ بیولوژیک از ضایعات ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss) با استفاده از باکتری‌های اتوژن و سنجش کمی و کیفی پروفیل اسیدهای آمینه و اسیدهای چرب محصول. علوم آبزی‌پروری، 9 (1): 212-203.##طاهری، ع.، جلالی‌نژاد، س. و علی‌انوار، ا.، 1391. خواص ضد فشار خون و ضداکسیدان پنج نوع پروتئین آبکافت حاصل از ضایعات میگوی سفید هندی (Penaeus indicus). پاتوبیولوژی مقایسه‌ای، 9 (1): 608-599##یعغوب‌زاده، ز.، کابوسی، ح.، پیروی، ف.، صفری، ر. و فتاحی، ا.، 1398. بررسی خواص ضد باکتریایی و آنتی‌اکسیدانی پروتئین هیدرولیز‌شده پوست ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران، 28 (2): 128-117. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.119049##Alemán, A., Pérez-Santín, E., Bordenave-Juchereau, S., Arnaudin, I., Gómez-Guillén, M. C. and Montero, P., 2011. Squid gelatin hydrolysates with antihypertensive, anticancer and antioxidant activity. Food Research International, 44(4), 1044-1051. DOI: 10.1016/j.foodres.2011.03.010##Chen, J., Wang, Y., Zhong, Q., Wu, Y. and Xia, W., 2012. Purification and characterization of a novel angiotensin-I converting enzyme (ACE) inhibitory peptide derived from enzymatic hydrolysate of grass carp protein. Peptides, 33(1), 52-58. DOI:10.1016/j.peptides.2011.11.006##Di Bernardini, R., Harnedy, P., Bolton, D., Kerry, J., O’Neill, E., Mullen, A. M. and Hayes, M., 2011. Antioxidant and antimicrobial peptidic hydrolysates from muscle protein sources and by-products. Food Chemistry, 124(4), 1296-1307. DOI:10.1016/j.foodchem.2010.07.004##Goodfriend, T. L., Elliott, M. E. and Catt, K. J., 1996. Angiotensin receptors and their antagonists. New England Journal of Medicine, 334(25), 1649-1655. DOI: DOI: 10.1056/NEJM199606203342507##Guerard, F., Guimas, L. and Binet, A., 2002. Production of tuna waste hydrolysates by a commercial neutral protease preparation. Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, 19, 489-498. DOI: 10.1016/S1381-1177(02)00203-5##Ghorbanzade, T., Jafari, S. M., Akhavan, S., and Hadavi, R., 2017. Nano-encapsulation of fish oil in nano-liposomes and its application in fortification of yogurt. Food chemistry, 216, 146-152. DOI: 10.1016/j.foodchem.2016.08.022##Hoyle, N. T. and Merritt, J. O. H. N., 1994. Quality of fish protein hydrolysates from herring (Clupea harengus). Journal of Food Science, 59(1), 76-79. DOI:10.1111/j.1365-2621.1994.tb06901.x##Hou, W. C., Chen, H. J. and Lin, Y. H., 2003. Antioxidant peptides with angiotensin converting enzyme inhibitory activities and applications for angiotensin converting enzyme purification. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 51(6), 1706-1709. DOI: 10.1021/jf0260242##Jia, J., Ma, H., Zhao, W., Wang, Z., Tian, W., Luo, L. and He, R., 2010. The use of ultrasound for enzymatic preparation of ACE-inhibitory peptides from wheat germ protein. Food Chemistry, 119(1), 336-342. DOI: 10.1016/j.foodchem.2009.06.036##Khantaphant, S., Benjakul, S. and Kishimura, H., 2011. Antioxidative and ACE inhibitory activities of protein hydrolysates from the muscle of brownstripe red snapper prepared using pyloric caeca and commercial proteases. Process Biochemistry, 46(1), 318-327. DOI: 10.1016/j.procbio.2010.09.005##Li, Z., Paulson, A. T. and Gill, T. A., 2015. Encapsulation of bioactive salmon protein hydrolysates with chitosan-coated liposomes. Journal of Functional Foods, 19, 733-743. DOI: 10.1016/J.JFF.2015.09.058##Mitsuda, H., 1966. Antioxidative action of indole compounds during the autoxidation of linoleic acid. Eiyo to shokuryo, 19, 210-221. DOI: 10.4327/jsnfs1949.19.210##Messerli, F. H. 1999. Hypertension and sudden cardiac death. American journal of hypertension, 12(S9), 181S-188S.##Mosquera, M., Giménez, B., da Silva, I. M., Boelter, J. F., Montero, P., Gómez-Guillén, M. C. and Brandelli, A., 2014. Nanoencapsulation of an active peptidic fraction from sea bream scales collagen. Food chemistry, 156, 144-150. DOI: 10.1016/S0895-7061(99)00106-5##Osawa, T., and Namiki, M., 1985. Natural antioxidants isolated from Eucalyptus leaf waxes. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 33(5), 777-780. DOI: 10.1021/jf00065a001##Ovissipour, M., Benjakul, S., Safari, R. and Motamedzadegan, A., 2010. Fish protein hydrolysates production from yellowfin tuna Thunnus albacares head using alcalase and protamex. International Aquatic Research, 2, 87-95. ##Page, D. T. and Cudmore, S., 2001. Innovations in oral gene delivery: challenges and potentials. Drug discovery today, 6(2), 92-101. DOI: 10.1016/s1359-6446(00)01600-7##Park, P. J., Jung, W. K., Nam, K. S., Shahidi, F. and Kim, S. K., 2001. Purification and characterization of antioxidative peptides from protein hydrolysate of lecithin-free egg yolk. Journal of the American Oil Chemists' Society, 78(6), 651-656. DOI: 10.1007/s11746-001-0321-0##Paomephan, P., Assavanig, A., Chaturongakul, S., Cady, N. C., Bergkvist, M. and Niamsiri, N., 2018. Insight into the antibacterial property of chitosan nanoparticles against Escherichia coli and Salmonella Typhimurium and their application as vegetable wash disinfectant. Food Control, 86, 294-301. DOI: 10.1016/j.foodcont.2017.09.021##Rasti, B., Jinap, S., Mozafari, M. R. and Yazid, A. M., 2012. Comparative study of the oxidative and physical stability of liposomal and nanoliposomal polyunsaturated fatty acids prepared with conventional and Mozafari methods. Food chemistry, 135(4), 2761-2770. DOI: 10.1016/j.foodchem.2012.07.016##Ramezanzade, L., Hosseini, S. F. and Nikkhah, M., 2017. Biopolymer-coated nanoliposomes as carriers of rainbow trout skin-derived antioxidant peptides. Food chemistry, 234, 220-229. DOI: 10.1016/j.foodchem.2017.04.177##Sun, J., He, H., and Xie, B. J. 2004. Novel antioxidant peptides from fermented mushroom Ganoderma lucidum. Journal of agricultural and food chemistry, 52(21), 6646-6652. DOI: 10.1021/jf0495136##Sarmadi, B. H. and Ismail, A., 2010. Antioxidative peptides from food proteins: a review. Peptides, 31(10), 1949-1956. DOI: 10.1016/j.peptides.2010.06.020##Segura-Campos, M., Chel-Guerrero, L., Betancur-Ancona, D. and Hernandez-Escalante, V. M., 2011. Bioavailability of bioactive peptides. Food Reviews International, 27(3), 213-226. DOI: 10.1080/87559129.2011.563395##Witherow, F. N., Helmy, A., Webb, D. J., Fox, K. A. and Newby, D. E., 2001. Bradykinin contributes to the vasodilator effects of chronic angiotensin-converting enzyme inhibition in patients with heart failure. Circulation, 104(18), 2177-2181. DOI: 10.1161/hc4301.098252##Wu, H. C., Chen, H. M. and Shiau, C. Y., 2003. Free amino acids and peptides as related to antioxidant properties in protein hydrolysates of mackerel (Scomber austriasicus). Food research international, 36(9), 949-957. DOI: 10.1016/S0963-9969(03)00104-2##Wald, M., Schwarz, K., Rehbein, H., Bußmann, B. and Beermann, C., 2016. Detection of antibacterial activity of an enzymatic hydrolysate generated by processing rainbow trout by-products with trout pepsin. Food Chemistry, 205, 221-228. DOI: 10.1016/j.foodchem.2016.03.002 ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ بررسی آلودگی میکروپلاستیک در رسوبات بستر ناحیه ساحلی جنوب دریای خزر Investigation of microplastic pollution in the Southern Caspian Sea Coastal Sediments 1 1 وجود میکروپلاستیک‌‌ها (ذرات پلاستیک کوچکتر از 5 میلی‌‌متر) در محیط‌‌های دریایی به دلیل وزن پایین، ماندگاری بالا و خطرآفرینی برای جوامع دریایی مرتبط، باعث نگرانی رو به رشد جهانی شده است. با توجه به  طبیعت و خطرات ذرات میکروپلاستیک برای جوامع کفزی و گونه‌‌های اقتصادی دریای خزر این مطالعه با هدف بررسی پراکندگی میکروپلاستیک‌‌ها در رسوبات بستر منطقه ساحلی حاشیه جنوبی دریای خزر انجام شد. نمونه‌های رسوب با استفاده از بنتوز گیر ون وین  از شش ایستگاه آستارا، بندرانزلی، کیاشهر، رودسر، ساری و بندر ترکمن در زمستان 1397 برداشته شدند. ایستگاه ساری با میانگین 20±340 قطعه در یک کیلوگرم از رسوبات خشک بیشترین و ایستگاه بندر ترکمن با 71/75±66/156 قطعه در کیلوگرم دارای کمترین فراوانی میکروپلاستیک بودند. اندازه میکروپلاستیک‌‌ها 7/9- 2/0 میلی‌‌متر متغیر بود و بیشتر میکروپلاستیک‌‌های یافت شده (54/35 %) اندازه 2-1 میلی‌‌متر داشتند. میکروپلاستیک‌‌های استخراج شده عمدتاً رشته‌‌ای بودند و میکروپلاستیک‌‌های قطعه‌‌ای و فیلم هم مشاهده شدند. در نمونه‌‌های بررسی شده تنوع رنگی بالایی  مشاهده شد که رنگ‌‌های آبی (85/63 %) و قهوه‌‌ای (31/20 %)، دارای بیشترین فراوانی بودند. با استفاده از آنالیز ATR-FTIR، 4 نوع پلیمر سلوفون، پلی‌‌اتیلن، پلی‌‌پروپیلن و پلی‌‌وینیل استات شناسایی شدند. فراوان‌‌ترین میکروپلاستیک شناسایی شده سلوفون بود. در پایان یک نتیجه گیری مشخص ارائه شود و از کلی گویی خودداری گردد. 2 The presence of microplastics (less than 5 mm) in marine environments, owing to their persistence and risk imposed to marine communities has become a growing global concern. Considering the hazardous nature of microplastic particles to benthic communities and commercial species of the Caspian Sea, the study was conducted to investigate the distribution of microplastics in sediments of the southern shores of the Caspian Sea. Sediment samples were taken by a Van Ween grab as sampling sites located in Astara, Bandar Anzali, Kiashahr, Rudsar, Sari and Turkmen port during the winter 2018. Sari station with an average of (340±20 items/kg dry sediment) had the highest and Turkmen port station with (156.66±75.71 items/kg dry sediment) had the lowest microplastic frequency. The size of the microplastics varied from 0.2-9.2 mm and most of the microplastics found (35.54%) were 1-2 mm in size. The extracted microplastics were mainly filamentous although fragment microplastics and films were also observed. In the studied samples, high color diversity was observed and blue (63.85%) and brown (20.31%) had the highest frequency. Using ATR-FTIR analysis, 4 types of polymers including cellophane, polyethylene, polypropylene and polyvinyl acetate were identified. The most abundant microplastics identified were cellophane. This study is among very few studies on microplastic contamination in the sediments of the southern Caspian Sea and the obtained results vital for further studies. 97 110 2021/07/282021/08/102021/10/82021/10/82021/08/12021/12/12020/09/3 1399/6/13 2021/12/312021/12/312021/12/312021/12/312021/12/312021/12/312020/07/31 1399/5/10 میلاد محیطی Milad Mohiti دانشگاه گیلان Iran miladmohiti@gmail.com جاوید ایمانپور نمین Javid Imanpour Namin دانشگاه گیلان Iran javidiman@gmail.com مسعود ستاری Masoud Sattari دانشگاه گیلان Iran msattari@guilan.ac.ir مجتبی شکراله زاده طالشی Mojtaba Shokrollah Zadeh Taleshi دانشگاه مازندران Iran mojtabataleshi@gmail.com microplastics pollution Caspian Sea Sediment ATR-FTIR میکروپلاستیک آلودگی دریای خزر رسوب ATR-FTIR ##صادقی راد، م.، و امینی رنجبر، غ.، و جوشیده، ه.، و ارشد، ع.، 1388. تعیین مقادیر فلزات سنگین (Cd ,Pb ,Cu ,Zn) در رسوبات بخش جنوب غربی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. دوره 18، شماره 3، صفحه 89-98.##نصراله زاده ساروی، ح.، افرایی بندپی، م.ع.، پورنگ، ن.، رضایی، م. و احمد نژاد، ا.، 1396. بررسی وضعیت آلودگی عناصر فلزی و ترکیبات نفتی رسوبات در محدوده استقرار قفس های پرورش ماهی واقع در سواحل دریای مازندران (شهرستان کلارآباد). مجله علمی شیلات ایران. دوره 26، شماره 1، صفحه 111-125. DOI: 10.22092/isfj.2017.110334##Agardy, T. and Alder, J., 2005. Coastal systems. In: Hassan, R., Scholes, R. and Ash, N., (eds) Ecosystems and Human Well-being, Vol 2. Island Press, Washington, D.C., USA. 948p.##Barnes, D.K., Galgani, F., Thompson, R.C. and Barlaz, M., 2009. Accumulation and fragmentation of plastic debris in global environments. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences, 364(1526): 1985-1998. DOI: 10.1098/rstb.2008.0205.##Bayramov, E., Knee, K., Kada, M. and Buchroithner, M., 2018. Using multiple satellite observations to quantitatively assess and model oil pollution and predict risks and consequences to shoreline from oil platforms in the Caspian Sea. Human and Ecological Risk Assessment: An International Journal, 24(6): 1501-1514. DOI: 10.1080/10807039.2017.1416454.##Boerger, C.M., Lattin, G.L., Moore, S.L. and Moore, C.J., 2010. Plastic ingestion by planktivorous fishes in the North Pacific Central Gyre. Marine Pollution Bulletin, 60(12): 2275-2278. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2010.08.007.##Brennecke, D., Duarte, B., Paiva, F., Caçador, I. and Canning-Clode, J., 2016. Microplastics as vector for heavy metal contamination from the marine environment. Estuarine, Coastal and Shelf Science, 178: 189-195. DOI: 10.1016/j.ecss.2015.12.003.## ##Browne, M.A., Dissanayake, A., Galloway, T.S., Lowe, D.M. and Thompson, R.C., 2008. Ingested microscopic plastic translocates to the circulatory system of the mussel, Mytilus edulis (L.). Environmental science & technology, 42: 5026-5031. DOI: 10.1021/es800249a.##Castro, R.O., Silva, M.L., Marques, M.R.C. and de Araújo, F.V., 2016. Evaluation of microplastics in Jurujuba Cove, Niterói, RJ, Brazil, an area of mussels farming. Marine Pollution Bulletin, 110(1): 555-558. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2016.05.037.##Claessens, M., De Meester, S., Van Landuyt, L., De Clerck, K. and Janssen, C.R., 2011. Occurrence and distribution of microplastics in marine sediments along the Belgian coast. Marine Pollution Bulletin, 62(10): 2199-2204. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2011.06.030.##Cole, M., Lindeque, P., Halsband, C. and Galloway, T.S., 2011. Microplastics as contaminants in the marine environment: a review. Marine Pollution Bulletin, 62(12): 2588-2597. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2011.09.025.##Cole, M., Lindeque, P., Fileman, E., Halsband, C., Goodhead, R., Moger, J. and Galloway, T.S., 2013. Microplastic Ingestion by Zooplankton. Environmental science & technology, 47: 6646-6655. DOI: 10.1021/es400663f.##de Mora, S., Sheikholeslami, M.R., Wyse, E., Azemard, S. and Cassi, R., 2004. An assessment of metal contamination in coastal sediments of the Caspian Sea. Marine Pollution Bulletin, 48(1-2): 61-77. DOI: 10.1016/S0025-326X(03)00285-6.##de Sá, L.C., Luís, L.G. and Guilhermino, L., 2015. Effects of microplastics on juveniles of the common goby (Pomatoschistus microps): confusion with prey, reduction of the predatory performance and efficiency, and possible influence of developmental conditions. Environmental Pollution, 196: 359-362. DOI: 10.1016/j.envpol.2014.10.026.##Derraik, J.G., 2002. The pollution of the marine environment by plastic debris: a review. Marine Pollution Bulletin, 44(9): 842-852. DOI: 10.1016/S0025-326X(02)00220-5.##Gad, S.E., 2014. Polymers. In: Wexler, P., (ed) Encyclopedia of Toxicology 3rd edn. Oxford, Academic Press, London, UK. pp1045-1050. DOI: 10.1016/B978-0-12-386454-3.00912-X##Graca, B., Szewc, K., Zakrzewska, D., Dołęga, A. and Szczerbowska-Boruchowska, M., 2017. Sources and fate of microplastics in marine and beach sediments of the Southern Baltic Sea—a preliminary study. Environmental Science and Pollution Research, 24: 7650-7661. DOI: 10.1007/s11356-017-8419-5.##Hidalgo-Ruz, V., Gutow, L., Thompson, R.C. and Thiel, M., 2012. Microplastics in the marine environment: a review of the methods used for identification and quantification. Environmental science & technology, 46(6): 3060-3075. DOI: 10.1021/es2031505.##Imhof, H.K., Laforsch, C., Wiesheu, A.C., Schmid, J., Anger, P.M., Niessner, R. and Ivleva, N.P., 2016. Pigments and plastic in limnetic ecosystems: A qualitative and quantitative study on microparticles of different size classes. Water research, 98: 64-74. DOI: 10.1016/j.watres.2016.03.015.##Jamshidi, S. and Abu Bakar, M.N., 2010. Temperature, salinity and density measurements in the coastal waters of the Rudsar, South Caspian Sea. Journal of the Persian Gulf, 1: 27-36.##Jang, Y.C., Lee, J., Hong, S., Lee, J.S., Shim, W.J. and Song, Y.K., 2014. Sources of plastic marine debris on beaches of Korea: more from the ocean than the land. Ocean Science Journal, 49: 151-162. DOI: 10.1007/s12601-014-0015-8.##Karian, H., 2003. Handbook of polypropylene and polypropylene composites. Marcel Dekker, New York, USA. 740p.##Kowalski, N., Reichardt, A.M. and Waniek, J.J., 2016. Sinking rates of microplastics and potential implications of their alteration by physical, biological, and chemical factors. Marine Pollution Bulletin, 109(1): 310-319. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2016.05.064.##Lee, K.-W., Shim, W.J., Kwon, O.Y. and Kang, J.H., 2013. Size-dependent effects of micro polystyrene particles in the marine copepod Tigriopus japonicus. Environmental science & technology, 47(19): 11278-11283. DOI: 10.1021/es401932b.##Löder, M.G.J., Kuczera, M., Mintenig, S., Lorenz, C. and Gerdts, G., 2015. Focal plane array detector-based micro-Fourier-transform infrared imaging for the analysis of microplastics in environmental samples. Environmental Chemistry, 12(5): 563-581. DOI: 10.1071/EN14205.##Lusher, A.L., O'Donnell, C., Officer, R. and O'Connor, I., 2015. Microplastic interactions with North Atlantic mesopelagic fish. ICES Journal of Marine Science, 73(4): 1214-1225. DOI: 10.1093/icesjms/fsv241.##Mataji, A., Taleshi, M.S. and Balimoghaddas, E., 2020. Distribution and Characterization of Microplastics in Surface Waters and the Southern Caspian Sea Coasts Sediments. Archives of environmental contamination and toxicology, 78(1): 86-93. DOI: 10.1007/s00244-019-00700-2.##Mehdinia, A., Dehbandi, R., Hamzehpour, A. and Rahnama, R., 2020. Identification of microplastics in the sediments of southern coasts of the Caspian Sea, north of Iran. Environmental Pollution, 258: 113738. DOI: 10.1016/j.envpol.2019.113738.##Monaco, A. and Prouzet, P., 2014. The Land-sea Interactions. John Wiley & Sons Ltd, London, UK. 315p. DOI:10.1002/9781119007647.##Napper, I.E. and Thompson, R.C., 2016. Release of synthetic microplastic plastic fibres from domestic washing machines: effects of fabric type and washing conditions. Marine Pollution Bulletin, 112(1-2): 39-45. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2016.09.025.##Nejat, S., Hermidas Bavand, D. and Farshchi, P., 2018. Environmental challenges in the Caspian Sea and international responsibility of its littoral states. Caspian Journal of Enironmental Science, 16(2): 97-110. DOI: 10.22124/cjes.2018.2953.##Nuelle, M.-T., Dekiff, J.H., Remy, D. and Fries, E., 2014. A new analytical approach for monitoring microplastics in marine sediments. Environmental Pollution, 184: 161-169. DOI: 10.1016/j.envpol.2013.07.027.##Ogata, Y., Takada, H., Mizukawa, K., Hirai, H., Iwasa, S., Endo, S., Mato, Y., Saha, M., Okuda, K. and Nakashima, A., 2009. International pellet watch: global monitoring of persistent organic pollutants (POPs) in coastal waters. 1. Initial phase data on PCBs, DDTs, and HCHs. Marine Pollution Bulletin, 58(10): 1437-1446. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2009.06.014.##Rasta, M., Sattari, M., Taleshi, M.S. and Namin, J.I., 2020. Identification and distribution of microplastics in the sediments and surface waters of Anzali Wetland in the Southwest Caspian Sea, Northern Iran. Marine Pollution Bulletin, 160: 111541. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2020.111541.##Ryan, P.G., Moore, C.J., van Franeker, J.A. and Moloney, C.L., 2009. Monitoring the abundance of plastic debris in the marine environment. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences, 364(1528): 1999-2012. DOI: 10.1098/rstb.2008.0207.##Sherbinin, A.d., Carr, D., Cassels, S. and Jiang, L., 2007. Population and environment. Annual Review of Environment and Resources, 32: 345-373. DOI: 10.1146/annurev.energy.32.041306.100243.##Stolte, A., Forster, S., Gerdts, G. and Schubert, H., 2015. Microplastic concentrations in beach sediments along the German Baltic coast. Marine Pollution Bulletin, 99(1-2): 216-229. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2015.07.022.##Tournier, V., Topham, C., Gilles, A., David, B., Folgoas, C., Moya-Leclair, E., Kamionka, E., Desrousseaux, M.-L., Texier, H. and Gavalda, S., 2020. An engineered PET depolymerase to break down and recycle plastic bottles. Nature, 580: 216-219. DOI: 10.1038/s41586-020-2149-4.##Tsang, Y., Mak, C., Liebich, C., Lam, S., Sze, E.T. and Chan, K., 2017. Microplastic pollution in the marine waters and sediments of Hong Kong. Marine Pollution Bulletin, 115(1-2): 20-28. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2016.11.003.##UNEP (United Nations Environment Programme), 2005. Marine litter: an analytical overview. http://hdl.handle.net/20.500.11822/8348##UNEP (United Nations Environment Programme), 2018a. Single-Use Plastics: A Roadmap for Sustainability. http://hdl.handle.net/20.500.11822/25496##UNEP (United Nations Environment Programme), 2018b. The State of Plastics: World Environment Day Outlook. http://hdl.handle.net/20.500.11822/25513##Van kleunen, M., Brumer, A., Gutbrod, L. and Zhang, Z., 2020. A microplastic used as infill material in artificial sport turfs reduces plant growth. PLANTS, PEOPLE, PLANET, 2(2): 157-166. DOI: 10.1002/ppp3.10071.##Vianello, A., Boldrin, A., Guerriero, P., Moschino, V., Rella, R., Sturaro, A. and Da Ros, L., 2013. Microplastic particles in sediments of Lagoon of Venice, Italy: First observations on occurrence, spatial patterns and identification. Estuarine, Coastal and Shelf Science, 130: 54-61. DOI: 10.1016/j.ecss.2013.03.022.##Welden, N.A. and Cowie, P.R., 2016. Environment and gut morphology influence microplastic retention in langoustine, Nephrops norvegicus. Environmental Pollution, 214: 859-865. DOI: 10.1016/j.envpol.2016.03.067.##Yang, D., Shi, H., Li, L., Li, J., Jabeen, K. and Kolandhasamy, P., 2015. Microplastic pollution in table salts from China. Environmental Science & Technology, 49(22): 13622-13627. DOI: 10.1021/acs.est.5b03163.##Zarfl, C. and Matthies, M., 2010. Are marine plastic particles transport vectors for organic pollutants to the Arctic? Marine Pollution Bulletin, 60(10): 1810-1814. DOI: 10.1016/j.marpolbul.2010.05.026.##Zhang, C., Zhou, H., Cui, Y., Wang, C., Li, Y. and Zhang, D., 2019. Microplastics in offshore sediment in the Yellow Sea and East China Sea, China. Environmental Pollution, 244: 827-833. DOI: 10.1016/j.envpol.2018.10.102.## ##  ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ تأثیر نانوذره سلنیوم، ویتامین‌های C و E ریزپوشانی شده بر عملکرد رشد، شاخص‌های ایمنی و آنزیم‌های کبدی فیل‌ماهی (Huso huso) پرورشی جوان The effect of nanoparticles selenium, vitamins C and E on growth indices, food efficiency, nonspecific immune system indices and liver enzymes in juvenile Huso huso 1 1 در آزمایش حاضر، تأثیر مخلوطی از مکمل‌های ریزپوشانی شده نانو‌ذره سلنیوم (اندازه ذره 30 نانومتر) (شرکت پیشگامان نانو مواد، خراسان)، ویتامین‌های C و E (1/0، 30 و 100 میلی‌گرم در کیلوگرم: جیره A)، (2/0، 60 و 200 میلی‌گرم در کیلوگرم: جیره B)، (3/0، 90 و 300 میلی‌گرم در کیلوگرم: جیره C) و جیره شاهد (فاقد مکمل: جیره D) بر شاخص‌های رشد، کارایی غذا، سیستم ایمنی و آنزیم‌های کبدی 120 عدد فیل ماهی با میانگین وزن اولیه 38/1±34/77 گرم پرورش یافته در تانک‌های فایبرگلاس نیم‌تنی (آب‌رسانی شده بامخلوطی از آب چاه و رودخانه) در قالب 4 تیمار (هریک با 3 تکرار) به مدت 10 هفته مورد بررسی قرار گرفت. ماهیان 2 درصد وزن بدن و 3 بار در روز تغذیه شدند. در انتهای آزمایش، وزن نهایی (5 درصد)، درصد افزایش وزن بدن (84/3 درصد)، نرخ رشد ویژه (89/1 درصد در روز) و رشد روزانه (23/6 درصد) در ماهیان تغذیه‌شده با جیره B به طور معنی‌داری بیشتر از جیره شاهد بود (P<0.05). فعالیت آنزیم‌های آسپارتات آمینوترانسفراز (SGOT) و آلانین آمینوترانسفراز (SGPT) سرم نسبت به ماهیان تغذیه‌شده با جیره شاهد بیشتر بود (P<0.05). اختلاف معنی‌داری در سطح ایمونوگلوبولین کل (Ig) سرم ماهیان تغذیه‌شده با جیره‌های B، C و شاهد مشاهده نشد (P>0.05)، میزان کمپلمان سرم در ماهیان تغذیه‌شده با جیره شاهد به طور معنی‌داری بیشتر از جیره‌های A و B بود (P<0.05) و اختلاف معنی‌داری در میزان لیزوزیم سرم ماهیان تیمار شاهد، A و B ثبت نگردید (P>0.05). نتایج این مطالعه نشان داد که افزودن مقادیر 2/0، 60 و 200 میلی‌گرم در کیلوگرم نانو‌ذره سلنیوم، ویتامین‌های C و E ریزپوشانی شده به جیره تجاری می‌تواند موجب افزایش معنی‌دار وزن نهایی و شاخص‌های رشد گردد، اما باید مطالعات بیشتری در مورد تأثیر نانوذره سلنیوم ریزپوشانی‌شده بر عملکرد کبد و شاخص‌های بیوشیمیایی این گونه صورت گیرد. 2 In this experiment, effect of micronutrient supplements of selenium nanoparticles, vitamin C and E supplemented to the diet at levels (0.1, 30 and 100 mg / kg: diet A), (0.2, 60 and 200 mg / kg: diet B), (0.3, 90 and 300 mg / kg: diet C) and control diet (no supplement: diet D) on Growth indices, food efficiency, immune system and liver enzymes of juvenile Huso huso were examined. A total of 120 Huso huso with an average initial weight of 77.34 ± 1.38 g for 10 weeks were randomly tested in 4 treatments (each with 3 replications) for 70 days. Final weight, body weight gain percentage, specific growth rate, daily growth and protein efficiency ratio in fish fed B diet (0.2, 60 and 200 mg / kg selenium nanoparticles, vitamins C and E) were significantly higher than the control diet. (P <0.05). The activity of aspartate aminotransferase (SGOT) and alanine aminotransferase (SGPT) enzymes was higher than that of fish fed the control diet. (P <0.05).significant difference was observed in the level of total immunoglobulin (Ig) of fish fed diets B, C and control (P> 0.05),but level of ACH50 in fish fed control diets was significantly higher than diets A and B (P <0.05) and There was no significant difference in lysozyme content in control fish, A and B (P> 0.05). The results of this study showed that adding 0.2, 60 and 200 mg / kg selenium nanoparticles, vitamins C and E to the commercial diet could significantly increase of final weight and growth indices, but more studies should be done on the effect of microcoated selenium nanoparticles on performance. Liver and immune system characteristics of this species. 111 125 2021/07/282021/08/102021/10/82021/10/82021/08/12021/12/12020/09/32021/10/4 1400/7/12 2021/12/312021/12/312021/12/312021/12/312021/12/312021/12/312020/07/312020/07/31 1399/5/10 علی حسین پور زلتی Ali Hossein Pourzelti 1- موسسه تحقیقات بین‌المللی تاسماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران. صندوق پستی 41635-3464 Iran ahpour.z@gmail.com میرحامد سید حسنی Mir Hamed SayedHassani 1- موسسه تحقیقات بین‌المللی تاسماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران. صندوق پستی 41635-3464 Iran mirhamedhassani@yahoo.com حسین آدینه Hossein Adineh دانشگاه گنبد کاووس، گروه شیلات- دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، صندوق پستی: 4971799151 Iran adineh.h@gonbad.ac.ir تورج سهرابی Tooraj Sohrabi 1 1- موسسه تحقیقات بین‌المللی تاسماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران. صندوق پستی 41635-3464 Iran tsohrabi@gmail.com Huso huso Nanoselnium Vitamins C and E Growth indices Food conversion ratio Immune system Liver enzymes فیلماهی نانوسلنیوم ویتامین C و E شاخص‌های‌رشد ضریب تبدیل غذا سیستم ایمنی آنزیم‌های کبدی ##آدینه، ح.، هرسیج، م.، اسدی، م. و احمدی‌‌فر، ا.، 1398. تأثیر سطوح مختلف مکمل‌های آنتی اکسیدانی ریزپوشانی شده بر عملکرد رشد و تغذیه، ترکیبات بدن و برخی شاخص‌های خونی ماهی قزل‌آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله تغذیه آبزیان، 5(1) 109- 97.##باذلی محبوب، ف.، ایمان، م.، عمو عابدینی، ق. و عطار، ح.، 1394. انکپسوله کردن اسکوربیک اسید درون نانومیسل. مجله تازه‌های بیوتکنولوژی سلولی – مولکولی، 20(5) 53- 47.##عبدالحی، ح. و کرمی راد، ن.، 1397. توسعه پرورش ماهیان خاویاری در ایران. دو فصلنامه ترویجی ماهیان ماهیان استروژن، 1: 32-44.##کاظمی، ر.، پوردهقانی، م.، یوسفی، آ.، یارمحمدی، م. و نصری‌تجن، م.، 1389. فیزیولوژی دستگاه گردش خون آبزیان و فنون کاربردی خون شناسی ماهیان. انتشارات بازرگان، رشت، 194 صفحه.## محمدی دوست، م.، آهنگرزاده، م.، هوشمند، ح.، حکمت پور، ف.، خسروی، م.، محمدیان، ت. و محسنی‌نژاد، ل.، 1399. تأثیر و یتامین‌های E و C و سلنیوم به عنوان محرک سیستم ایمنی بر فاکتورهای رشد و ایمنی سی‌باس آسیایی (Lates calcarifer). مجله تغذیه آبزیان، 6(2): 74-63.##Abdelghany, A.E. and Ahmad, M.H., 2002. Effects of feeding rates on growth and production of Nile tilapia, common carp and silver carp polycultured in fertilized ponds. Aquaculture Research, 33(6): 415-423. Doi: 10.1046/j.1365-109. 2002 .00689 .x.##Adineh, H., Naderi, M., Nazer, A., Yousefi, M. and Ahmadifar, E., 2020. Interactive effects of stocking density and dietary supplementation with Nano selenium and garlic extract on growth, feed utilization, digestive enzymes, stress responses, and antioxidant capacity of grass carp (Ctenopharyngodon idella). Journal of the World Aquaculture Society, 8(5): 417-432. Doi:10.1111/jwas.12747.##Affonso, C.M., Da Silva, L.C., Lima, F.G. and Soares, S., 2004. MW and MVar management on supply and demand side for meeting voltage stability margin criteria. IEEE TRANSACTIONS on Power Systems, 19 (3): 1538-1545. DOI: 10.1109/TPWRS.2004.831659. ##Albrecht, M.A., Evans, C.W. and Raston, C.L., 2006. Green chemistry and the health implications of nanoparticles. Green Chemistry, 8(5): 417-432. DOI: 10.1039/b517131h.##Ashouri, S., Keyvanshokooh, S., Salati, A.P., Johari, S.A. and Pasha-Zanoosi, H., 2015. Effects of different levels of dietary selenium nanoparticles on growth performance, muscle composition, blood biochemical profiles and antioxidant status of common carp (Cyprinus carpio). Aquaculture, 446: 25-29. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2015.04.021.##Bernabucci, U., Ronchi, B., Lacetera, N. and Nardone, A., 2002. Markers of oxidative status in plasma and erythrocytes of transition dairy cows during hot season. Journal of Dairy Science, 85(9): 2173-2179. Doi: 10.3168/jds.S0022-0302(02)74296-3.##Cotter, P.A., Craig, S. R. and McLean, E., 2008. Hyperaccumulation of selenium in hybrid striped bass: a functional food for aquaculture?. Aquaculture Nutrition, 14(3): 215-222. DOI:10 .111.1365-2095. 2007 .00520 .x 1/j. ##Coz-Rakovac, R., Strunjak-Perovic, I., Hacmanjek, M., Lipej, Z. and Sostaric, B., 2005. Blood chemistry and histological properties of wild and cultured sea bass (Dicentrarchus labrax) in the North Adriatic Sea. Veterinary Research Communications, 29(8): 677-687. DOI: 10. 1007 /s11259-005-3684-z.##Dabrowski, K. and Ciereszko, A., 2001. Ascorbic acid and reproduction in fish: endocrine regulation and gamete quality. Aquaculture Research, 32(8): 623-638. DOI:10.1046/j.1365-2109.2001. 00598.x##Diplock, A.T. and Hoekstra, W.G., 1976. Metabolic aspects of selenium action and toxicity. CRC Critical Reviews in Toxicology, 4(3): 271-329. DOI:10. 1080/ 10408447609164016.##Ellis, A.E., 1990. Lysozyme assays. In: Stoka, J.S., Fletcher, T.C., Anderson, D.P., Roberton, B.S. Van Muiswisal, W.B. (Eds). Techniques in Fish Immunology. SOS Publications. USA, 101-103.##El-Shenawy, N.S., AL-Harbi, M.S. and Hamza, R.Z., 2015. Effect of vitamin E and selenium separately and in combination on biochemical, immunological and histological changes induced by sodium acid in male mice. Experimental and Toxicologic Pathology, 67(1): 65-76. DOI: 10.1016/j .etp.2014.10.005.##Ewan, R.C., 1976. Effect of selenium on rat growth, growth hormone and diet utilization. The Journal of Nutrition, 106: 702–709. DOI:10.1093/jn/106.5.702.##Fonseca, S.B.D., Silva, J.H.V.D., Beltrão Filho, E.M., Mendes, P.D.P., Fernandez, J.B.K., Amancio, A.L.L. and Silva, F.R.P.D., 2013. Influence of levels and forms of selenium associated with levels of vitamins C and E on the performance, yield and composition of tilapia fillet. Food Science and Technology, 33: 109-115. DOI:10.1590/S0101-20612013000500017.##Fynn-Aikins, K., Hung, S.S.O and Hughes, S.G., 1993. Effects of feeding a high level of D-glucose on liver function in juvenile white sturgeon (Acipenser transmontanus). Fish Physiology and Biochemistry, 12 (4): 317-325.DOI:org/10.1007/BF00004416.##Gatlin, III, D.M., Poe, W.E., Wilson, R.P., Ainsworth, A.J. and Bowser, P.R., 1986. Effects of stocking density and vitamin C status on vitamin E-adequate and vitamin E-deficient fingerling channel catfish. Aquaculture, 56(3-4): 187-195. DOI:10. 1016/0044-8486(86)90334-0.##Hardy, R.W. and Barrows, F.T., 2002. Diet formulation and manufacture. In: Halver, J.E., Hardy, R.W (Eds). Fish Nutrition. Academic Press, London. pp. 505-600.##Harsij, M., Kanani, H.G. and Adineh, H., 2020. Effects of antioxidant supplementation (nano selenium, vitamin C and E) on growth performance, blood biochemistry, immune status and body composition of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) under sub-lethal ammonia exposure. Aquaculture, 521: 734-942.DOI:10.1016/j.aquaculture.2020.734942.##Holland, M.C.H. and Lambris, J.D., 2002. The complement system in teleosts. Fish and Shellfish Immunology, 12: 399–420. DOI:10.1006/fsim.2001.0408.##Hung, S.S.O. and Lutes, P.B., 1987. Optimum feeding rate of hatchery-produced juvenile white sturgeon (Acipenser transmontanus): at 20 C. Aquaculture, 65(3-4): 307-317. DOI:1016/0044- 8486 (87) 90243-2.##Jamil, Z., 2013. Effects of inorganic and nanoform of selenium on growth performance and biochemical indices of mahseer (Tor putitora). M.Phil. Thesis, Quaid-i-Azam University, Islamabad, Pakistan. 260 P. ##Khalil, H.S., Mansour, A.T., Goda, A.M.A. and Omar, E.A., 2019. Effect of selenium yeast supplementation on growth performance, feed utilization, lipid profile, liver and intestine histological changes, and economic benefit in meagre, (Argyrosomus regius), fingerlings. Aquaculture, 501: 135-143.DOI:10.1016/j.aquaculture.2018.11.018.##Khan, K.U., Zuberi, A., Nazir, S., Fernandes, J.B.K., Jamil, Z. and Sarwar, H., 2016. Effects of dietary selenium nanoparticles on physiological and biochemical aspects of juvenile Tor putitora. Turkish Journal of Zoology, 40 (5): 704-712. DOI:10.3906/zoo-1510-5.##Khan, K.U., Zuberi, A., Fernandes, J.B.K., Ullah, I. and Sarwar, H., 2017. An overview of the ongoing insights in selenium research and its role in fish nutrition and fish health. Fish physiology and Biochemistry, 43(6): 1689-1705. DOI: 10.1007/s10695-017-0402-z.##Khara, H., Sayyadborani, M. and Sayyad Borani, M., 2016. Effects of α-Tocopherol (vitamin E) and ascorbic acid (vitamin c) and their combination on growth, survival and some hematological and immunological parameters of Caspian brown trout, Salmo trutta caspius juveniles. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 16: 385-393. DOI:10.4194/1303-2712-v16_2_18.##Kim, K., Wang, X., Choi, S., Park, G., Koo, J. and Bai, S. C., 2003. No synergistic effects by the dietary supplementation of ascorbic acid, a-tocopheryl acetate and selenium on the growth performance and challenge test of Edwardsiella tarda in fingerling Nile tilapia (Oreochromis niloticus L). Aquaculture Research, 34: 1053–1058. DOI:10.4194/1303-2712-v17_3_09.##Koyama, I., Miura, M., Matsuzaki, H., Sakagishi, Y. and Komoda, T., 1987. Sugar-chain heterogeneity of human alkaline phosphatases: differences between normal and tumour-associated isozymes. Journal of Chromatography B: Biomedical Sciences and Applications, 413: 65-78. DOI:10.1016/ 0378-4347(87)80214-1.##Lee, S., Park, G., Moniruzzaman, M., Bae, J., Song, Y., Kim, K. and Bai, S.C., 2016. Synergistic effects of dietary vitamin C and selenium on induced methylmercury toxicity in juvenile olive flounder (Paralichthys olivaceus). Turkish Journal Fish Aquaculture Science. 17: 527-533. DOI:10.4194 /1303-2712-v17_3_09.##Levander, O.A., 1986. Selenium. In: Mertz W (ed) Trace elements in human and animal nutrition. Academic Press, London, pp. 139–197.##Lorentzen, M., Maage, A. and Julshamn, K., 1994. Effects of dietary selenite or selenomethionine on tissue selenium levels of Atlantic salmon (Salmo salar). Aquaculture, 121(4): 359-367. https ://doi .org/ 10.1016/0044- 8486(94)90270-4##Luo, L., Xue, M., Wu, X.F., Cai, X.F., Cao, H.N. and Liang, Y.M., 2006. Partially or totally replacement of fish meal by solvent extracted cottonseed meal in diets for juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture Nutrition, 12: 418–424. DOI:10.1111/j.1365-2095. 2006. 00443.x.##Mansour, A.T.E., Goda, A.A., Omar, E.A., Khalil, H.S. and Esteban, M.A., 2017. Dietary supplementation of organic selenium improves growth, survival, antioxidant and immune status of meagre, (Argyrosomus regius), juveniles. Fish & Shellfish Immunology, 68: 516-524. DOI: 10.1016/j.fsi.2017.07.060.##Moniruzzaman, M., Park, G., Yun, H., Lee, S., Park, Y. and Bai, S.C., 2015. Synergistic effects of dietary vitamin E and selenomethionine on growth performance and tissue methyl mercury accumulation on mercury induced toxicity in juvenile olive flounder (Paralichthys olivaceus, Temminck et Schlegel). Aquaculture Research, 48 (2): 1–11 DOI: 10.1111/are.12904.##Moore, B.J., Hung, S.S. and Medrano, J.F., 1988. Protein requirement of hatchery-produced juvenile white sturgeon (Acipenser transmontanus). Aquaculture, 71(3): 235-245. DOI: 10.1016/0044 -8486(88)90262-1##Morgan, B.P., Marchbank, K.J., Longhi, M.P., Harris, C.L. and Gallimore, A.M., 2005. Complement: central to innate immunity and bridging to adaptive responses. Immunology Letter, 97: 171-179. DOI:10.1016/j.imlet.2004.11.010.##Muller, E.E., Locatelli, V. and Cocchi, D., 1999. Neuroendocrine control of growth hormone secretion. Physiological Reviews, 79 (2): 511-607. DOI:10.1152/physrev.1999.79.2.511.##Naderi, M., Keyvanshokooh, S., Salati, A. P. and Ghaedi, A., 2017. Effects of dietary vitamin E and selenium nanoparticles supplementation on acute stress responses in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) previously subjected to chronic stress. Aquaculture, (473): 215-222. DOI: 10.1016/ j.aquaculture.2017.02.020.##Nayak, S.K., 2010. Probiotics and immunity: a fish perspective. Fish & Shellfish Immunology, 29(1): 2-14. DOI:10.1016/ j.fsi.2010.02.017.##NRC (National Research Council), 2011. Nutrient Requirements of Fish and Shrimp. The National Academy Press, Washington, D. C., 329 P.##Rider, S. A., Davies, S.J., Jha, A.N., Fisher, A.A., Knight, J. and Sweetman, J.W., 2009. Supra-nutritional dietary intake of selenite and selenium yeast in normal and stressed rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): implications on selenium status and health responses. Aquaculture, 295(3-4): 282-291. DOI:10. 1016/j .aquaculture .2009.07.003.##Rodríguez, H. and Rojas, S., 2014. Efecto de dietas enriquecidas con vitamina ey selenio orgánico en el comportamiento productivo y calidad funcional del filete de trucha arco iris (Oncorhynchus mykiss). Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú, 25(2): 213-225.##Rónyai, A., Ruttkay, A., Varadi, L. and Peteri, A., 1990. Growth of Siberian sturgeon (Acipenser baeri B.) and that of its both hybrids with the sterlet (Acipenser ruthenus L.) in recycling system. In: Rónyai, A., (ed) Acipenser Premier Colloque International Sur l'esturgeon, Bordeaux, CEMAGREF. pp. 423-427.##Rotruck, J.T., Pope, A.L., Ganther, H.E., Swanson, A.B., Hafeman, D.G. and Hoekstra, W.G., 1973. Selenium: biochemical role as a component of glutathione peroxidase. Science, 179: 585–590. DOI: 10.1126/science.179.4073.588.##Saffari, S., Keyvanshokooh, S., Zakeri, M., Johari, S. A. and Pasha‐Zanoosi, H. J. A. N., 2017. Effects of different dietary selenium sources (sodium selenite, selenomethionine and nanoselenium) on growth performance, muscle composition, blood enzymes and antioxidant status of common carp (Cyprinus carpio). Aquaculture Nutrition, 23(3): 611-617.DOI:10.1111/anu.12428.##Shenkin, A., 2006. Micronutrients in health and disease. Postgraduate Medical Journal, 82(971): 559-567. http://dx.doi.org/10.1136/pgmj.2006.047670.##Sritunyalucksana, K., Intaraprasong, A., Sa-nguanrut, P., Filer, K. and Fegan, D.F., 2011. Organic selenium supplementation promotes shrimp growth and disease resistance to Taura syndrome virus. Science Asia, 37: 24–30. DOI: 10. 2306 /scienceasia1513-1874.2011.37.02.##Taveekijakarn, P., Miyazaki, T., Matsumoto, M. and Aral, S., 1996. Histopathological and haematological changes in amago salmon, Oncorhynchus rhodurus (Jordan & McGregor), fed a vitamin‐D‐free diet. Journal of Fish Diseases, 19(4): 289-294. DOI:10. 1046/j. 1365-2761.1996.d01-85.x.##Thomas, I., 1998. Alanine aminotransferasr (ALT), aspartate amino transferase (AST). In: Thomas, I (ed). Clinical Laboratory Diagnostic.2 rd.edn. Frankfurt TH-Books Verlagsgesellsc, pp. 55-65.##Van Muiswinkel, W. B. and Vervoorn-Van Der Wal, B., 2006. The Immune System of Fish. In: Woo, P.T.K.,(ed) Fish Diseases and Disorders. CAB International, Netherlands, Wageningen, pp. 678-701.##Wang, C. and Lovell, R. T., 1997. Organic selenium sources, selenomethionine and selenoyeast, have higher bioavailability than an inorganic selenium source, sodium selenite, in diets for channel catfish (Ictalurus punctatus). Aquaculture, 152(1-4): 223-234. https:DOI:10.1016/S0044-8486(96)01523-2.##Wang, Y., Yan, X. and Fu, L., 2013. Effect of selenium nanoparticles with different sizes in primary cultured intestinal epithelial cells of crucian carp, (Carassius auratus gibelio). International Journal of Nanomedicine, 8: 4007-4013. DOI: 10.2147/IJN.S43691.##Whanger, P.D., 1981. Selenium and heavy metal toxicity. In: Spallholz J.E; Martin J. L; Ganther, H.E (ed) Selenium in biology and medicine. 2rd edn AVI Publishing, England, Westport CT, pp. 230–255.##Yano, T., 1992. Assays of hemolytic complement activity. In: Stolen, J.S., Fletcher, T.C., Anderson, D.P (ed).Techniques in Fish Immunology, 2rd.edn Fair Haven, USA, New Jersy, pp.150- 158.##Yu, H., Zhang, C., Zhang, X., Wang, C., Li, P., Liu, G. and Ji, H., 2020. Dietary nano‐selenium enhances antioxidant capacity and hypoxia tolerance of grass carp Ctenopharyngodon idella fed with high‐fat diet. Aquaculture Nutrition, 26(2): 545-557. DOI:.org/10.1111/anu.13016. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ ارزیابی میزان رشد، ‌‌توده زنده و محتوای رنگدانه‌‌های جلبک Dunaliella salina پرورش یافته در آبهای ژرف سیستان Evaluation growth, biomass and pigment contents of Dunaliella salina cultivated in deep aquifer well waters of Sistan 1 1 در این مطالعه میزان رشد، توده زنده، محتوی کلروفیل a و b و غلظت کارتنوئیدهای ریزجلبک Dunaliella salina کشت شده در 5 تیمار مختلف (تمیار 1: آب شهر به همراه نمک 35 قسمت در هزار، تیمار 2: آب شهر با نمک20 قسمت در هزار، تیمار 3: آب ژرف با نمک 35 قسمت در هزار، تیمار 4: آب ژرف تغلیظ شده 35 قسمت در هزار و تیمار 5: آب ژرف20 قسمت در هزار)، در شرایط یکسان از نظر شدت نور (μmol.m2.s1 75/33)، رژیم نوری (16 ساعت روشنایی و 8 ساعت تاریکی)، دما (1±25 درجه سانتی‌‌گراد)، pH (8)، محیط کشت (جانسون) و هوادهی (24 ساعته) به مدت 24 روز مورد بررسی قرار گرفت. بر اساس نتایج به‌دست آمده کمترین میزان نوسان pH در تیمارهای 3، 4 و 5 (تیمارهای دارای آب ژرف) مشاهده شد. به‌علاوه، تیمارهای 3، 4 و 5 وضعیت بهتری از نظر نمودار رشد داشتند و تا روز 21 آزمایش روند صعودی رشد در آنها دیده شد. حداکثر تعداد سلول‌‌ (R) در تیمارهای 3، 4 و 5 در روز 21 آزمایش ثبت شد که 9 روز بیشتر از سایر تیمارها (تیمارها 1 و 2) بود. کمترین تعداد سلول شمارش شده، کمترین میزان جذب نوری، کمترین نرخ رشد ویژه (SGR)، کمترین زمان دو برابر شدن (DT)، کمترین زی‌‌توده خشک و بالاترین تعداد تقسیم سلولی در روز (k) برای تیمار 2 ثبت شد. بالاترین میزان زی‌‌توده تولیدی در تیمار 4 مشاهده شد. بالاترین و پایین‌‌ترین میانگین غلظت کلروفیل a به‌ترتیب در تیمارهای 4 و  2 دیده شد درحالی‌که بیشترین و کمترین میانگین غلظت کلروفیل b به‌ترتیب در تیمارهای 2 و 1 ثبت شد. بالاترین و پایین‌‌ترین میانگین غلظت کارتنوئیدها به‌ترتیب در تیمارهای 1 و  2 به‌دست آمد. بنابراین، طبق نتایج این مطالعه امکان استفاده از آب ژرف برای پرورش جلبک D.salina وجود دارد. 2 In this study, growth, biomass, concentration of chlorophyll a chlorophyll b, and carotenoid content of Dunaliella salina were evaluated in five different treatment (including: T1: 35 ppt (freshwater + salt), T2: 20 ppt (freshwater + salt), T3: 35 ppt (deep aquifer well water+ salt), T4: 35 ppt (concentrated deep aquifer well water), and T5: 20 ppt (deep aquifer well water)) in the same conditions, including the amount of light intensity (33.75 μmol.m2.s1) Photoperiodic lighting (16 hours of light:8 hours of dark), the temperature at (25±1 degrees centigrade), pH (8), cultivation medium (modified Johnson medium), and the same 24-hour aeration for 24 days. The results showed that among different treatments, the lowest pH fluctuation was observed in the T3, T4, and T5. In addition, T3, T4, and T5 had a better situation in terms of growth, and growth rate was increased until the 21st day of the experiment. Maximum cellular yield (R) for T3, T4, and T5 was recorded on day 21, which was 9 days longer than other groups (T1 & T2). The Minimum cell number, minimum optical density (OD), minimum specific growth rate (SGR), minimum doubling time (DT), minimum dry biomass, and maximum Division per day (k) were recorded for T2. The maximum dry biomass was observed in T4. The highest and lowest mean of chlorophyll a concentration appeared in T4 and T2, respectively. While the maximum and minimum mean of chlorophyll b level was recorded in T2 and T1, respectively. The highest and lowest mean of carotenoids concentration was obtained in T1 and T2, respectively. Based on the results of this study, the cultivation of D.salina with deep aquifer well water is possible. 127 143 2021/07/282021/08/102021/10/82021/10/82021/08/12021/12/12020/09/32021/10/42021/11/29 1400/9/8 2021/12/312021/12/312021/12/312021/12/312021/12/312021/12/312020/07/312020/07/312021/12/31 1400/10/10 علی خسروانی زاده ali khosravanizadeh گروه شیلات، پژوهشکده تالاب بین‌المللی هامون، دانشگاه زابل، زابل، ایران. Iran Khosravani.ali@uoz.ac.ir عبدالعلی راهداری Sahel Pakzad Toochaei Rahdari گروه شیلات، پژوهشکده تالاب بین‌المللی هامون، دانشگاه زابل، زابل، ایران. Iran rahdari67@gmail.com ساحل پاکزاد توچایی Sahel Pakzad Toochaei گروه مدیریت اکوسیستم های طبیعی، پژوهشکده تالاب بین‌المللی هامون، دانشگاه زابل، زابل، ایران. Iran sahel.pakzad@gmail.com Deep aquifer well Dunaliella salina Algae Cultivation Sistan. کشت جلبک Dunaliella salina آب‌های ژرف سیستان. ##آقایی، پ. و شریعتی، م.، 1386. اثر کمبود سولفور بر رشد سلولی، تولید بتاکاروتن، کلروفیل و فتوسنتز در جلبک Dunaliella salina جدا شده از مرداب شور گاوخونی اصفهان. مجله زیست شناسی ایران، 20(2): 153-163.##اکبری، ف. و مددکار حق‌جو، م.، 1396. بهبود ارزش تغذیهای دوگونه میکروجلبک سبز Dunaliella به وسیله تغییر در فاکتورهای محیط کشت. شیلات، 70(3): 243-261.##رنجبر اقدم، م.، حجازی، م.ا.، آیین فر، س. و حسین زاده ن.، 1391. بررسی تاثیر چهار آنتی بیوتیک در رشد و کارایی آنها در عاری سازی آلودگی محیط کشت جلبک تک سلولی Dunaliella sp.. علوم محیطی، 9: 1-8.##عزیزی، گ.، علیمرادی، ل. و سیاهمرگویی، آ. 1390. بررسی رابطه بین عدد دستگاه کلروفیل متر با محتوای کلروفیل، فتوسنتز و میزان نیتروژن برگ در سویا (.Glycine max L). فیزیولوژی محیطی گیاهی (پژوهش های اکوفیزیولوژی گیاهی ایران)، 6(3): 34-40.##قرایی، ا. میردار هریجانی، ج. راهداری، ع. کیخا، م. خندان بارانی، ه. و کرمی، ر.، 1395. تغییرات زمانی و مکانی ساختار جامعه فیتوپلانکتونی در آبهای مخازن چاه نیمههای سیستان. بوم شناسی آبزیان، ۵(۴): ۴۰-۵۰.##محمدخانی، ر. و مددکار حق‌جو، م.، 1394. ارزیابی سرعت تکثیر، میزان پروتئین و برخی خصوصیات فیزیولوژیک دو سویه فیتوپلانکتون آب شور ریز جلبک Dunaliella، تحت اثر تغییر برخی عوامل محیطی. مجله علوم و فنون دریایی، 14(2): 25-42.##مددکار حق جو، م.، 1392. بررسی مقایسه ای برخی شاخص های فیزیولوژیک (محتوای کلروفیلی، فعالیت فتوسنتزی ...) در گزینش سویه های جلبک Dunaliella sp. (جداسازی شده از آب های ایران). سلول و بافت، 4(1): 85-102.##Abd El-baky, H.H., El Baz, F.K. and El-Baroty, G.S., 2004. Production of antioxidant by the green alga Dunaliella salina. International Journal of Agriculture & Biology, 6: 49-57.##Amrei, H.D., Ranjbar, R., Rastegar, S., Nasernejad, B. and Nejadebrahim, A., 2015. Using fluorescent material for enhancing microalgae growth rate in photobioreactors. Journal of Applied Phycology, 27(1): 67-74. https://doi.org/10.1007/s10811-014-0305-7.##Bauer, L.M., Costa, J.A.V., da Rosa, A.P.C. and Santos, L.O., 2017. Growth stimulation and synthesis of lipids, pigments and antioxidants with magnetic fields in Chlorella kessleri cultivations. Bioresource technology, 244: 1425-1432. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2017.06.036.##Borowitzka, M.A. and Siva, C.J., 2007. The taxonomy of the genus Dunaliella (Chlorophyta, Dunaliellales) with emphasis on the marine and halophilic species. Journal of Applied Phycology, 19(5): 567-590. https://doi.org/10.1007/s10811-007-9171-x.##Celekli, A. and Dönmez, G., 2006. Effect of pH, light intensity, salt and nitrogen concentrations on growth and β-carotene accumulation by a new isolate of Dunaliella sp. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 22(2): 183-189. https://doi.org/10.1007/s11274-005-9017-0.##Chavoshi, Z.Z. and Shariati, M., 2019. Lipid production in Dunaliella salina under autotrophic, heterotrophic, and mixotrophic conditions. Biologia, 74(12): 1579-1590. https://doi.org/10.2478/s11756-019-00336-6.##Chen, Y. and Vaidyanathan, S., 2013. Simultaneous assay of pigments, carbohydrates, proteins and lipids in microalgae. Analytica chimica acta, 776: 31-40. https://doi.org/10.1016/j.aca.2013.03.005.##Colusse, G.A., Mendes, C.R.B., Duarte, M.E.R., de Carvalho, J.C. and Noseda, M.D., 2020. Effects of different culture media on physiological features and laboratory scale production cost of Dunaliella salina. Biotechnology Reports, 27, p.e00508. https://doi.org/10.1016/j.btre.2020.e00508.##Deamici, K.M., Santos, L.O. and Costa, J.A.V., 2018. Magnetic field action on outdoor and indoor cultures of Spirulina: Evaluation of growth, medium consumption and protein profile. Bioresource technology, 249: 168-174. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2017.09.185.##Fazeli, M. R., Tofighi, H., Samadi, N. and Jamalifar, H. 2006. Effects of salinity on β-carotene production by Dunaliella tertiolecta DCCB26 isolated from the Urmia salt lake, north of Iran. Bioresource technology, 97: 2453-2456. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2005.10.037.##García, N., López-Elías, J.A., Miranda, A., Martínez-Porchas, M., Huerta, N. and García, A., 2012. Effect of salinity on growth and chemical composition of the diatom Thalassiosira weissflogii at three culture phases. Latin American Journal of Aquatic Research, 40(2): 435-440. https://doi.org/10.3856/vol40-issue2-fulltext-18.##Ghobadi, M., Khosravi, S., Kahrizi, D. and Shirvani, F., 2011. Study of water relations, chlorophyll and their correlations with grain yield in wheat (Triticum aestivum L.) genotypes. International Journal of Agricultural and Biosystems Engineering, 5(6): 353-356. https://doi.org/10.5281/zenodo.1085189.##Ghoshal, D., Mach, D., Agarwal, M., Goyal, A. and Goyal, A., 2002. Osmoregulatory isoform of dihydroxyacetone phosphate reductase from Dunaliella tertiolecta: purification and characterization. Protein expression and purification, 24(3): 404-411. https://doi.org/10.1006/prep.2001.1588.##Guillard, R.R., 1979. Methods for microflagellates and nannoplankton. Handbook of phycological methods: culture methods and growth measurements, pp. 289-311.##Heidari, R., Saadatmand, S. and Riahi, H., 2000. Effects of salt and irradiance stress on photosynthetic pigments and proteins in Dunaliella salina teodoresco. Journal of Sciences Islamic Republic of Iran, 11(2): 73-77. ##Helena, S., Zainuri, M. and Suprijanto, J., 2016. Microalgae Dunaliella salina (Teodoresco, 1905) growth using the LED light (light limiting dioda) and different media. Aquatic Procedia, 7: 226-230. https://doi.org/10.1016/j.aqpro.2016.07.031.##Hosseini Tafreshi, A. and Shariati, M. 2006. Pilot culture of three strains of Dunaliella salina for β-caroten production in open ponds in the central region of Iran. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 22: 1003-1009. https://doi.org/10.1007/s11274-006-9145-1.##Johnson, M.K., Johnson, E.J., MacElroy, R.D., Speer, H.L. and Bruff, B.S., 1968. Effects of salts on the halophilic alga Dunaliella viridis. Journal of bacteriology, 95(4): 1461-1468. https://doi.org/10.1128/JB.95.4.1461-1468.1968.##Lababpour, A., Shimahara, K., Hada, K., Kyoui, Y., Katsuda, T. and Katoh, S., 2005. Fed-batch culture under illumination with blue light emitting diodes (LEDs) for astaxanthin production by Haematococcus pluvialis. Journal of bioscience and bioengineering, 100(3): 339-342. https://doi.org/10.1263/jbb.100.339.##Lamers, P.P., Janssen, M., De Vos, R.C., Bino, R.J. and Wijffels, R.H., 2008. Exploring and exploiting carotenoid accumulation in Dunaliella salina for cell-factory applications. Trends in biotechnology, 26(11): 631-638. https://doi.org/10.1016/j.tibtech.2008.07.002.##Lavens, P. and Sorgeloos, P., 1996. Manual on the production and use of live food for aquaculture. FAO Fisheries Technical paper. No. 361, FAO, Rome. 305 p.##Marini, R.P., 1986. Do net gas exchange rates of green and red peach leaves differ? Hort Science, 21(1): 118-120.##Meade, J.W., 2012. Aquaculture management. Springer Science & Business Media: Van Nostrand Reinhold. New York, USA. 175 p.##Moreno-Garrido, I. and Canavate, J.P., 2001. Assessing chemical compounds for controlling predator ciliates in outdoor mass cultures of the green algae Dunaliella salina. Aquacultural Engineering, 24(2): 107-114. https://doi.org/10.1016/S0144-8609(00)00067-4.##Murthy, K.K. and Singh, M., 1979. Photosynthesis, chlorophyll content and ribulose diphosphate carboxylase activity in relation to yield in wheat genotypes. The Journal of Agricultural Science, 93(1): 7-11. https://doi.org/10.1017/S0021859600086068.##Rad, F.A., Aksoz, N. and Hejazi, M.A., 2011. Effect of salinity on cell growth and β-carotene production in Dunaliella sp. isolates from Urmia Lake in northwest of Iran. African Journal of Biotechnology, 10(12): 2282-2289.##Raja, R., Hemaiswarya, S., Balasubramanyam, D. and Rengasamy, R., 2007. Protective effect of Dunaliella salina (Volvocales, Chlorophyta) against experimentally induced fibrosarcoma on wistar rats. Microbiological Research, 162(2): 177-184. https://doi.org/10.1016/j.micres.2006.03.009.##Richmond, A., 2008. Handbook of microalgal culture: biotechnology and applied phycology. John Wiley & Sons, New York, USA. 566 p.##Sathasivam, R. and Juntawong, N., 2013. Modified medium for enhanced growth of Dunaliella strains. International Journal of Current Science, 5: 67-73.##Shariati, M. and Hadi, M.R., 2011. Microalgal biotechnology and bioenergy in Dunaliella. In Progress in Molecular and Environmental Bioengineering-From Analysis and Modeling to Technology Applications. IntechOpen. 483-506. DOI: 10.5772/19046.##Sharma, P., Agarwal, V., Mohan, M.K., Kachhwaha, S. and Kothari, S.L., 2012. Isolation and characterization of Dunaliella species from Sambhar Lake (India) and its phylogenetic position in the genus Dunaliella using 18S rDNA. National Academy Science Letters, 35(3): 207-213. https://doi.org/10.1007/s40009-012-0038-6.##Tester, M. and Davenport, R., 2003. Na+ tolerance and Na+ transport in higher plants. Annals of botany, 91(5): 503-527. https://doi.org/10.1093/aob/mcg058.##Törnwall, M.E., Virtamo, J., Korhonen, P.A., Virtanen, M.J., Taylor, P.R., Albanes, D. and Huttunen, J.K., 2004. Effect of α-tocopherol and β-carotene supplementation on coronary heart disease during the 6-year post-trial follow-up in the ATBC study. European Heart Journal, 25(13): 1171-1178. https://doi.org/10.1016/j.ehj.2004.05.007.##Tucker, C.C. and Robinson, E.H., 1990. Channel catfish farming handbook. Springer Science & Business Media: Van Nostrand Reinhold, New York, USA. 454 p.##Wijffels, R.H., 2008. Potential of sponges and microalgae for marine biotechnology. Trends in biotechnology, 26(1): 26-31. https://doi.org/10.1016/j.tibtech.2007.10.002.##Wood, A.M., Everroad, R.C. and Wingard, L.M., 2005. Measuring growth rates in microalgal cultures. Algal culturing techniques, 18: 269-288. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ تهیه پخشینه رژیمی با استفاده از پکتین و ژلاتین حاصل از پوست کپور نقره‌‌ای (Hypophthalmichthys molitrix) و ارزیابی آن طی پنج هفته نگهداری در یخچال Production of dietary low-fat spread using pectin and gelatin extracted from silver carp (Hypophthalmichthys molitrix) skin and its evaluation during 5 weeks at refrigerated storage 1 1 این مطالعه با هدف تعیین امکان تولید پخشینه رژیمی با استفاده از ژلاتین حاصل از پوست کپور نقره‌‌ای پرورشی و پکتین و مقایسه اثر غلظت‌‌های مختلف ژلاتین و پکتین بر کیفیت رنگ پخشینه کم چرب، تغییرات شیمیایی و میکروبی طی نگهداری در یخچال انجام شد. شش تیمار با غلظت‌ها و نسبت‌‌های مختلف ژلاتین ماهی به پکتین تهیه شد. آزمایش‌های فیزیکوشیمیایی و میکروبی شامل اسیدیته، pH، شمارش کلی باکتری‌‌ها، باکتری‌‌های سرمادوست، استافیلوکوکوس اورئوس و کپک و مخمر و تعیین عمر ماندگاری در دمای یخچال بود. اسیدیته و pH اختلاف معنی‌‌دار بین تیمارهای مختلف نشان ندادند. تیمارهای آزمایشی به مدت 4 هفته از ویژگی رنگ و میکروبی قابل پذیرش برخوردار بودند. اسیدیته و ویژگی‌های میکروبی بین تیمارهای آزمایشی تفاوت معنی‌‌دار نشان ندادند. بین تیمارهای آزمایشی از نظر رنگ نیز اختلاف معنی‌دار مشاهده نگردید. نتایج نشان داد که ژلاتین اسیدی استحصالی از پوست کپور نقره‌ای می‌تواند در ترکیب با پکتین، امکان تولید پخشینه رژیمی را فراهم نماید. مقدار 4 درصد ژلاتین ماهی و پکتین، به نسبت مساوی، برای تولید پخشینه کم‌چرب پیشنهاد می‌‌شود. 2 This study aimed to determine the possibility of producing dietary spread using farmed silver carp skin gelatin and pectin to compare the effect of different concentrations of gelatin and pectin on the physicochemical and microbial changes of the low-fat spread at refrigerated storage. Six treatments were produced with different concentrations and ratios of the fish gelatin and pectin. The physicochemical and microbiological tests included acidity, pH, total bacterial counts, psychrophilic bacteria, Staphylococcus aureus, and mold and yeast were measured to determine the shelf life at refrigerator temperature. The acidity and pH did not show significant differences between different treatments. The experimental treatments had acceptable color and microbial properties for 4 weeks. The acidity and microbial properties did not show significant differences between experimental treatments. No significant differences were observed between the experimental treatments in terms of color. The results showed that the acidic gelatin extracted from silver carp skin, in combination with pectin, enables the possibility of producing a dietary spread. It is recommended to produce a low-fat spread using 4% of the fish gelatin and pectin in equal proportions. 145 156 2021/07/282021/08/102021/10/82021/10/82021/08/12021/12/12020/09/32021/10/42021/11/292021/12/1 1400/9/10 2021/12/312021/12/312021/12/312021/12/312021/12/312021/12/312020/07/312020/07/312021/12/312020/07/31 1399/5/10 حسن جلیلی Hassan Jalili موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran jalilish@yahoo.com مینا سیف زاده Mina Seifzadeh موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran m_seifzadeh_ld@yahoo.com Dietary spread Silver carp skin gelatin Pectin shelf life. پخشینه رژیمی ژلاتین پوست کپور نقره‌ای پکتین عمر ماندگاری ##استاندارد ملی ایران شماره 143.، 1389. کره گیاهی (مارگارین)-ویژگی‌ها.##استاندارد ملی ایران شماره 437.، 1372. تعیین باکتری‌های کلی فرم.##استاندارد ملی ایران شماره 997.، 1372. تعیین کپک و مخمر در کره.##استاندارد ملی ایران شماره 2852.، 1366. شیر و فرآورده‌های آن روش تعیین اسیدیته کل و pH با تراکم یون‌های هیدروژن.##استاندارد ملی ایران شماره 1 - 6806.، 1384. تعیین استافیلوکوکوس اورئوس.##استاندارد ملی ایران شماره 8248.، 1386. کره، شیر تخمیری و پنیر تازه، شمارش میکروارگانیسم‌ها با استفاده از متد تعداد کلی در دمای 30 درجه سلسیوس.##پروانه، و.، ۱۳۸۶. کنترل کیفی و آزمایش‌های شیمیایی مواد غذایی. مؤسسه انتشارات دانشگاه تهران. 325 صفحه.##جلیلی، س. ح.، 1383. مقایسه راندمان و کیفیت ژلاتین استحصالی از پوست چهار گونه سپر ماهی غالب خلیج با یکدیگر. مجله علمی شیلات ایران. 13 (3): 68 – 55.##جلیلی، س. ح. و حسینی شکرابی، پ.، 1394. اثرات ژلاتین ماهی کپور نقره‌ای و پکتین بر خواص بافتی و رنگ پخشینه. فصلنامه علوم و صنایع غذایی. 47 (12): 131 – 123.##جلیلی، س. ح.، فرهوش، ر.، کوچکی، آ. و مطلبی، ع. ع.، 1399. اثرات هیدرولیز آلکالازی پوست کپور نقره‌ای (Hypophthalmicthys molitrix) بر برخی خصوصیات کیفی و پایداری اکسایشی روغن ماهی کیلکای ریزپوشانی شده. نشریه پژوهشهای علوم و صنایع غذایی ایران. 16 (1): 115 – 103.##صارم‌نژاد، س.، عزیزی، م. ح. و حسینی، ک.، 1387. ارزیابی برخی ویژگی‌های شیمیایی و میکروبی کره‌های حیوانی بسته بندی شده توسط کارخانجات لبنی کشور. و فصلنامه علوم و صنایع غذایی. 5 (4): 46 – 37.##عبدالعلی‌زاده، ا. و قره خانی، م.، 1397. تأثیر افزودن پکتین بر روی ویژگی‌های فیزیکی شیمیایی، بافتی و حسی نان بدون گلوتن بر پایه‌ی ذرت. علوم و صنایع غذایی. 75 (15): 189 – 277. ##