1401 31 3 131 138

مقاله علمی – پژوهشی:‌ جایگزینی روغن ماهی جیره غذایی با سطوح مختلف روغن گیاهی کانولا بر شاخص‌های رشد، ترکیب لاشه و ﻓﻌﺎﻟﯿﺖ آﻧﺰیﻢ‌های گوارشی بچه تاسماهیان سیبری (Acipenser baerii) Replacement of fish oil with canola vegetable oil based diets on growth and survival of the Siberian sturgeon (Acipenser baerii) fry 1 1 تاثیر جایگزینی سطوح مختلف روغن ماهی کیلکا با روغن کانولا بر شاخص‏های رشد، ترکیب لاشه و آنزیم‌های گوارشی بچه تاسماهیان سیبری (Acipenser baerii) مورد بررسی قرار گرفت. 180 عدد بچه ماهی (وزن متوسط 09/2±5/22 گرم) به مدت 10 هفته با 4 جیره غذایی پروتئین و چربی (44 و 14 درصد) ((1: 100 درصد روغن ماهی (FO100)، 2: 100 درصد روغن کانولا (CO100)،3: 50 درصد روغن ماهی + 50 درصد روغن کانولا (CO50+FO50) و 4: 70 درصد روغن ماهی + 30 درصد روغن کانولا (FO100+CO30)) تغذیه شدند. میاﻧﮕﻴن شاخص‌های رشد و کارایی غذا در ﺑﭽﻪﻣﺎﻫﻴان تغذیه شده با جیره های FO100 و CO100 به طور معنی‏داری نسبت به ماهیان تغذیه شده با جیره حاوی مخلوطی از روﻏﻦ کانولا و روغن ماهی (CO50+FO50 و FO100+CO30) کمتر بود (05/0p<). تغییر در نسبت روﻏﻦ ﻣﺎﻫﯽ و روﻏﻦ کانولا موجب تغییر معنی‌دار در رطوﺑﺖ، ﭼﺮﺑﯽ و خاکستر لاشه (05/0p<) شد، اما اثر معنی‌داری بر پروتئین لاشه نداشت (05/0p>). مقادیر آنزیم لیپاز و کیموتریپسین در ماهیان تغذیه‌شده با جیره ‏CO50+FO50 به‌ طور معنی‌داری بالاتر از ماهیان تغذیه شده با جیره‏های  FO100و CO100 بود (05/0p<). نتایج این تحقیق نشان داد که استفاده ترکیبی از منابع روغن گیاهی و روغن جانوری به نسبت مساوی تاثیر بهتری بر شاخص‌های رشد، ترکیب لاشه و آنزیم‌های گوارشی تاسماهی سیبری در مرحله رشد دارد. 2 The effect replacement of various kilka fish oil with canola oil was investigated on growth indices, body composition, and digestive enzymes of Siberian sturgeon (Acipenser baerii). One hundred and eighty fry fish (22.5±2 2.09 g average weight) were fed with four isonitroginus and isolipid diets (44 and 14%) (1: 100% fish oil (FO100), 2: 100 % of canola oil (CO100), 3: 50% fish oil+50% canola oil (CO50+FO50) and 4: 70% fish oil+30% canola oil (FO100+CO30)) for 10 weeks. The mean growth and feed efficiency indices in the fish fed with FO100 and CO100 diets were significantly lower than CO50+FO50 and FO100+CO30 (P<0.05). The changes in the canola oil/fish oil ratio caused changes in the body moisture and ash contents (P<0.05), but had no significant effect on the body protein (P>0.05). The lipase and chymotrypsin levels in the fish fed with CO50+FO50 diet were significantly higher than the fish fed with FO100 and CO100 diet. The results of this study indicated that using a combination of vegetable oil and fish oil in equal proportions has a relatively better effect on the growth indices, body composition, and digestive enzymes of Siberian sturgeon in the growth stage. 1 16 2021/05/27 1400/3/6 2022/09/1 1401/6/10 محمود محسنی Mahmoud Mohseni رشت- موسسه تاسماهیان Iran mahmoudmohseni73@gmail.com میرحامد سید حسنی MIrhamed Hassani رشت- موسسه تاسماهیان Iran mirhamedhassani@yahoo.com منصور شریفیان Mansour sharifian موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور- سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران. Iran سمیه حسن‌پور Somaye Hasanpour دانشگاه پیام نور گیلان، رشت، ایران. Iran Siberian sturgeon (Acipenser baeri) Canola oil Fish oil Growth performance and survival تاسماهی سیبری (Acipenser baerii) روغن کانولا روغن ماهی عملکرد رشد و ترکیب لاشه ##محسنی، م. و ملک پور، م. 1397. جایگزینی پودر ماهی با کنجاله کانولا و تاثیر آن بر عملکرد رشد، قابلیت هضم، برخی پارامترهای خونی و سطح هورمون های تیروئیدی تاسماهی سیبری (Acipenser baerii). مجله علمی شیلات ایران. شماره 3، صفحات 184-171. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ فعالیت آنزیم‌ کیموتریپسین استخراج شده از روده فیل ماهی (Huso huso) تحت تأثیر برخی عوامل فیزیکی و شیمیایی Chymotrypsin activity extracted from beluga (Huso huso) intestine under some physical and chemical factors 1 1 در مطالعه حاضر، عوامل فیزیکی و شیمیایی شامل تعیین دما و pH بهینه و اثر بازدارنده‌های آنزیمی، یون‌های فلزی، سورفاکتانت‌ها و عوامل اکسیدکننده بر میزان فعالیت آنزیم کیموتریپسین استخراج شده از روده فیل ماهی (Huso huso) بررسی گردید. براساس یافته‌های این تحقیق، دما و pH بهینه فعالیت آنزیم کیموتریپسین به‌ترتیب 50 درجه سانتی‌گراد و 8 بود و در دمای بالاتر از 50 درجه سانتی‌گراد فعالیت آن به‌شدت کاهش یافت. بازدارنده‌ها شامل SBTI، TLCK،PMSF، پارا آمینوبنزآمیدین، TPCK، ، یدواستیک اسید و EDTA بطور معنی‌داری از فعالیت آنزیم جلوگیری کردند که بازدارنده‌های PMSF، SBTI و TPCK اثر مهارکنندگی کاملی بر فعالیت آنزیم داشتند (05/0>P). یون‌های + + سبب افزایش معنی‌دار و یون‌هایCu2+،Ba2+، Co2+،Zn2+،Fe2+ + باعث کاهش معنی‌دار فعالیت آنزیم گردیدند (05/0>P). یون‌های+ و Na+اثر معنی‌داری بر فعالیت آنزیم نشان ندادند (05/0P>). فعالیت آنزیم کیموتریپسین در حضور سورفاکتانت‌های ساپونین و سدیم کولات افزایش معنی‌دار (05/0>P) و در حضور سدیم دودسیل سولفات و عوامل اکسیدکننده (سدیم پربورات و پراکسید هیدروژن) کاهش معنی‌داری (05/0>P) نشان داد. نتایج مطالعه حاضر نشان داد فعالیت آنزیم‌ کیموتریپسین در روده فیل‌‌ماهی در حضور بازدارنده‌ها، یون‌های فلزی (غیر +،Mg2+، K+ وNa+)، سدیم دودسیل سولفات، سدیم پربورات و پراکسید هیدروژن کاهش معنی‌دار و در حضور Ca2+ وMg2+، ساپونین و سدیم کولات افزایش معنی‌داری داشت که می‌تواند در ارزیابی اثرگذاری آنها بر فعالیت بهینه این آنزیم در فیزیولوژی گوارش فیل ماهی موثر باشد. 2 In the present study, the physical and chemical factors including optimum temperature and pH, the effect of inhibitors, metal ions, oxidizing agents, and surfactants were assayed on the chymotrypsin activity from beluga (Huso huso) intestine. According to the obtained results, the optimum temperature and pH of the chymotrypsin were recorded at 50°C and 8, respectively, and its activity was extremely decreased at temperature>50°C. Inhibitors including SBTI, TLCK, PMSF, ρ-aminobenzamidine, TPCK, pepstatin A, iodoacetic acid and EDTA significantly inhibited the enzyme activity that PMSF, SBTI and TPCK had a completely inhibition effect on the enzymatic activity (P<0.05). The enzyme activity was significantly increased in the presence of Ca+2 and Mg+2 and decreased by Cu+2, Ba+2, Co+2, Zn+2, Fe+2 and Al+3 (P<0.05). Na+ and K+ did not show any significant effect on the activity of enzyme (P>0.05). The enzymatic activity was significantly increased in presence of surfactants including saponin and sodium cholate and showed a significant decrease in presence of SDS and oxidizing agents like sodium perborate and hydrogen peroxide (P<0.05). Therefore, the results of this study showed that the chymotrypsin activity from beluga intestine had a significant decrease in presence of inhibitors, metal ions (except for Ca+2, Mg+2, K+ and Na+), SDS, sodium perborate and hydrogen peroxide and showed a significant increase in presence of Ca+2 and Mg+2, saponin and sodium cholate that it can be affected the maximum activity of the enzyme in digestive physiology of the beluga. 17 28 2021/05/272022/05/4 1401/2/14 2022/09/12022/09/1 1401/6/10 عباس زمانی Abbas Zamani دانشگاه ملایر Iran a.zamani@malayeru.ac.ir مریم خواجوی Maryam Khajavi دانشگاه ملایر Iran marykhajavi@yahoo.com Intestine Chymotrypsin Beluga Physical and chemical factors روده کیموتریپسین فیل ماهی عوامل فیزیکی و شیمیایی ##باقری، ط. و هدایتی، ع. ا.، 1398. تأثیر آلاینده‌های نفتی دریای خزر بر ماهیان خاویاری: مطالعه موردی بر شاخص‌های فیزیولوژیکی فیل‌ماهی (Huso huso) . اولین همایش ملی فرصت‌ها و چالش‌های پیش روی دریای خزر (با تکیه بر رژیم حقوقی، سیاسی و امنیتی، شیلات و محیط زیست، اقتصادی)، دانشگاه آزاد اسلامی واحد گرگان. https://civilica.com/doc/973867##راستا، م.، ستاری، م.، شکرالله زاده طالشی، م. و ایمان پور نمین، ج.، 1399. آلودگی میکروپلاستیک در رسوبات تالاب انزلی، جنوب غربی دریای خزر (استان گیلان). مجله علمی شیلات ایران،. 29(4): 121-133. (Doi): 10.22092/ISFJ.2020.122999##سازمان شیلات ایران، 99-1388. سالنامه آماری شیلاتی ایران، معاونت طرح و برنامه، سازمان شیلات ایران، تهران، 64 ص.##قلی‌پور، س.، خارا، ح. و پژند، ذ.، 1396. بررسی (LC50 96 h) و ضایعات هیستوپاتولوژیکی نیتریت روی بافت‌های آبشش، کبد و کلیه تاسماهی ازون برون (Acipenser stellatus). فیزیولوژی و تکوین جانوری (علوم زیستی).، 11(1): 1-12. ##کریمیان، ع.، ذاکری، م.، فارابی، م. و.، حقی، م. وکوچینیان، پ.، 1399. مطالعه پارامترهای غیر زیستی آب در مجاورت قفس های دریایی پرورش ماهی در ساحل جنوبی دریای خزر، منطقه عباس آباد. مجله علمی شیلات ایران، 29(6): 11-28. (Doi) : 10.22092/ISFJ.2021.123534##Balti, R., Bougherra, F., Bougatef, A., Hayet B.K., Nedjar-Arroume, N., Dhulster, P., Guillochon, D. and Nasri, M., 2012. Chymotrypsin from the hepatopancreas of cuttlefish (Sepia officinalis) with high activity in the hydrolysis of long chain peptide substrates: Purification and biochemical characterisation. Food Chemistry, 130(3): 475-484. Doi.org/Doi: 10.1016/j.foodchem.2011.07.019##Castillo-Yanez, F.J., Pacheco-Aguilar, R., García-Carreno, F.L. and Del Toro, M.A.N., 2005. Isolation and characterization of trypsin from pyloric caeca of Monterey sardine (Sardinops sagax caerulea). Comparative Biochemistry and Physiology, 140B: 91–98. Doi.org/10.1016/j.cbpc.2004.09.031##Chong, A.S.C., Hashim, R., Chow-Yang, L. and Ali A.B., 2002. Partial characterization and activities of proteases from the digestive tract of discus fish, Symphysodon aeguifasciata. Aquaculture, 203: 321-333. Doi.org/Doi: 10.1016/S0044-8486(01)00630-5##De Freitas-Júnior, A.C.V., da Costa, H.M.S., Marcuschi, M., Icimoto, M.Y., Machado, M.F., Machado, M.F., Ferreira, J.C., de Oliveira, V.M., Buarque, D.S. and Bezerra R.S., 2021. Substrate specificity, physicochemical and kinetic properties of a trypsin from the giant Amazonian fish pirarucu (Arapaima gigas). Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 35: 102073. Doi.org/Doi: 10.1016/j.bcab.2021.102073##De la Parra, A.M., Rosas, A., Lazo, J.P. and Viana, M.T., 2007. Partial characterization of the digestive enzymes of Pacific bluefin tuna Thunnus orientalis under culture conditions. Fish Physiology and Biochemistry, 33(3): 223-231. Doi.org/Doi: 10.1007/s10695-007-9134-9##Dos Santos, D.M.R.C., Dos Santos, C.W.V., De Souza, C.B., De Albuquerque, F.S., Dos Santos Oliveira, J.M. and Pereira, H.J.V., 2020. Trypsin purified from Coryphaena hippurus (common dolphinfish): Purification, characterization, and application in commercial detergents. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 25:101584. Doi: 10.1016/j.bcab.2020.101584##Esposito, T.S., Amaral, I.P.G., Buarque, D.S., Oliveira, G.B., Carvalho, L.B. and Bezerra, R.S., 2009. Fish processing waste as a source of alkaline proteases for laundry detergent. Food Chemistry.112: 125–130. Doi.org/Doi:10.1016/j.foodchem.2008.05.049##Finnegan, M., Linley, E., Denyer, S.P., McDonnell, G., Simons, C. and Maillard, J.Y., 2010. Mode of action of hydrogen peroxide and other oxidizing agents: differences between liquid and gas forms. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 65(10): 2108-2115. Doi.org/Doi: 10.1093/jac/dkq308##Freitas-Júnior, A.C., Costa, H.M., Icimoto, M.Y., Hirata, I.Y., Marcondes, M., Carvalho, Jr L.B., Oliveira, V. and Bezerra, R.S., 2012. Giant Amazonian fish pirarucu (Arapaima gigas): Its viscera as a source of thermostable trypsin. Food Chemistry, 133(4): 1596-1602. Doi.org/Doi: 10.1016/j.foodchem.2012.02.056##García-Carreno, F. L., Dimes, L. E. and Haard, N. F., 1993. Substrate-gel electrophoresis for composition and molecular weight of proteinases or proteinaceous proteinase inhibitors. Analytical Biochemistry, 214: 65–69. Doi.org/Doi: 10.1006/abio.1993.1457##Ghasemi, N., Imani, A., Noori, F. and Shahrooz, R., 2020. Ontogeny of digestive tract of stellate sturgeon (Acipenser stellatus) from hatching to juvenile stage: Digestive enzymes activity, stomach and proximal intestine. Aquaculture, 519: 734-751. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2019.734751##Golchinfar, F., Zamani, A., Hajimoradloo, A . and Madani, R., 2011. Assessment of digestive enzymes activity during the fry development of Rainbow Trout, Oncorhynchus mykiss: from hatching to primary stages after yolk sac absorption. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 10 (3): 403 - 414.##Green, N.M. and Neurath, H., 1953. The effects of divalent cations on trypsin. Journal of Biological Chemistry,. 204: 379-390. Doi.org/Doi: 10.1021/ja01128a523##Jellouli, K., Bougatef, A., Daassi, D., Balti, R., Barkia, A. and Nasri, M., 2009. New alkaline trypsin from the intestine of grey triggerfish (Balistes capriscus) with high activity at low temperature: Purification and characterisation. Food Chemistry, 116: 644–650. Doi: 10.1016/j.foodchem.2009.02.087##Khangembam, B.K. and Chakrabarti, R., 2015. Trypsin from the digestive system of carp Cirrhinus mrigala: Purification, characterization and its potential application. Food Chemistry,. 175: 386-394. https://doi.org/Doi: 10.1016/j.foodchem.2014.11.140##Khantaphant, S. and Benjakul, S., 2010. Purification and characterization of trypsin from the pyloric caeca of brownstripe red snapper (Lutjanus vitta). Food Chemistry, 120: 658–664. Doi.org/Doi: 10.1016/j.foodchem.2009.09.098##Klomklao, S. and Benjakul, S., 2018. Two trypsin isoforms from albacore tuna (Thunnus alalunga) liver: purification and physicochemical and biochemical characterization. International Journal of Biological Macromolecules. 107: 1864-1870. Doi.org/Doi: 10.1016/j.ijbiomac.2017.10.059##Kolkovski, S., 2001. Digestive enzymes in fish larvae and juveniles - Implications and applications to formulated diets. Aquaculture, 200 : 181-201. Doi: 10.1016/S0044-8486(01)00700-1##Ktari, N., Khaled, H.B., Nasri, R., Jellouli, K., Ghorbel, S. and Nasri, M., 2012. Trypsin from zebra blenny (Salaria basilisca) viscera: Purification, characterisation and potential application as a detergent additive. Food Chemistry, 130(3): 467-474. Doi: 10.1016/j.foodchem.2011.07.015##Lowry, O. H., Rosebrough, N. J., Farr, A. L. and Randall, R. J., 1951. Protein measurement with the folin phenol reagent. Journal of Biological Chemistry, 193: 265–275.##Marquez-Rios, E., Cota-Arriola, O., Villalba-Villalba, A.G., Ezquerra-Brauer, J.M., Ocaño-Higuera, V.M., Lopez-Corona, B.E. and Torres-Arreola, W., 2016. Chymotrypsin isolation from jumbo squid (Dosidicus gigas) hepatopancreas: Partial characterization and effect on muscle collagen. Food Science and Biotechnology, 25(4):1011-1016. Doi: 10.1007/s10068-016-0163-y##Rubingh, D.N., 1996. The influence of surfactants on enzyme activity. Current Opinion in Colloid & Interface Science, 1(5): 598-603. Doi.org/Doi: 10.1016/S1359-0294(96)80097-5##Simpson, B. K., 2000. Digestive proteinases from marine animals. In: Haard, N. F. and Simpson, B. K., (eds.) Seafood Enzymes: Utilization and Influence on Postharvest Seafood Quality. New York, Marcel Dekker, USA. pp. 531–540.##Tsai, I. H., Chuang, K. L. and Chuang, J. L., 1986. Chymotrypsins in digestive tracts of crustacean decapods (shrimps). Comparative Biochemistry and Physiology, 85B: 235–239. Doi.org/Doi: 10.1016/0305-0491(86)90248-8##Twining, S.S., Alexander, P.A., Huibregste, K. and Glick, D.M., 1983. A pepsinogen from rainbow trout. Comparative Biochemistry and Physiology, 75B: 109–112. Doi:10.1016/0305-0491(83)90046-9 ##Von Elert, E., Agrawal, M.K., Gebauer, C., Jaensch, H., Bauer, U. and Zitt, A., 2004. Protease activity in gut of Daphnia magna: evidence for trypsin and chymotrypsin enzymes. Comparative Biochemistry and Physiology, 137B 137B (3): 287-296. Doi: 10.1016/j.cbpc.2003.11.008##Yang, F., Su, W.J., Lu, B.J., Wu, T., Sun, L.C., Hara, K. and Cao, M.J., 2009. Purification and characterization of chymotrypsins from the hepatopancreas of Crucian carp (Carassius auratus). Food Chemistry, 116(4): 860-866. Doi.org/Doi: 10.1016/j.foodchem.2009.03.035##Yufera, M. and Darias, M.J., 2007. The onset of exogenous feeding in marine fish larvae. Aquaculture, 268: 53–63. Doi.org/Doi: 10.1016/j.aquaculture.2007.04.050##Zamani, A. and Benjakul, S., 2016. Trypsin from unicorn leatherjacket (Aluterus monoceros) pyloric caeca: purification and its use for preparation of fish protein hydrolysate with antioxidative activity. Journal of the Science of Food and Agriculture, 96(3): 962-969. Doi: 10.1002/jsfa.7172##Zamani, A., Hajimoradloo, A., Madani, R . and Farhangi, M., 2009. Assessment of digestive enzymes activity during the fry development of the endangered Caspian brown trout Salmo caspius. Journal of Fish Biology, 75(4): 932-937. Doi.org/Doi: 10.1111/j.1095-8649.2009.02348.x##Zamani, A., Madani, R., Rezaei, M. and Benjakul, S., 2017. Antioxidative activitiy of protein hydrolysate from the muscle of common kilka (Clupeonella cultriventris caspia) prepared using the purified trypsin from common Kilka intestine. Journal of Aquatic Food Product Technology, 26(1): 2-16. Doi/abs/Doi: 10.1080/10498850.2015.1073822##Zamani, A., Rezaei, M., Madani, R. and Habibi Rezaie, M., 2014. Trypsin enzyme from viscera of common kilka (Clupeonella cultriventris caspia): purification, characterization, and its compatibility with oxidants and surfactants. Journal of Aquatic Food Product Technology,. 23(3): 237-252. Doi/abs/Doi: 10.1080/10498850.2012.712630##Zhou, L., Budge, S.M., Ghaly, A.E., Brooks, M.S. and Dave D., 2011. Extraction, purification and characterization of fish chymotrypsin: A review. American Journal of Biochemistry and Biotechnology, 7(3):104-123. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ مقایسه میزان فعالیت آنتی‌اکسیدانی و محتوای فنلی عصاره‌های اتانولی، آبی و آبی– اتانولی چهار گونه نرم‌تن دریایی ساحل قشم Comparison of antioxidant activity and phenolic content of ethanolic, aqueous, and hydro-ethanolic extracts from four species of marine mollusk in the Qeshm coast 1 1 این مطالعه به مقایسه فعالیت آنتی اکسیدان و محتوای فنلی عصاره چهار گونه نرم‌‌تن (دوکفه‌ای صخره‌ای اویستر؛ Saccostrea cuculate، دوکفه‌ای کلم؛ Callista umbonella و صدف ملوک یا استوانه‌ای؛ Solen vagina و حلزون خوراکی؛ Ampullaria cuprina) و تعیین بهترین نرم‌‌تن درساحل قشم پرداخته است. گونه‌های نرم‌‌تن (هرکدام 100 عدد) پس از جمع‌آوری، در جعبه‌های سرد به همراه یخ نگهداری و به آزمایشگاه انتقال داده شدند. نمونه‌‌ها‌‌ به‌خوبی آسیاب و عصاره‌های آبی، اتانولی (اتانول 90 درصد) و اتانولی: آبی (50:50) از آنها تهیه شد. نتایج نشان داد که بیشترین مقدار محتوای فنلی (66/81 میلی‌‌گرم بر گرم عصاره)، فعالیت ضد رادیکالی دی فنیل پیکریل هیدرازیل (66/1722 میکرومول ترولکس بر گرم عصاره) و فعالیت ضد رادیکالی معادل ترولکس آن (33/649 میکرومول ترولکس بر گرم عصاره) در عصاره اتانولی حلزون خوراکی مشاهده شد. همچنین میزان فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی به سه روش فسفومولیبدیم 66/606 میکرومول ترولکس و احیاء آهن (740 میکرومول آهن در گرم عصاره و توان احیاء کنندگی 24/1 در حلزون خوراکی دارای ماکزیمم فعالیت بود. عصاره‌های آبی، اتانولی و اتانولی: آبی 4 گونه نرم‌‌تن در تمامی مدل‌های مورد مطالعه سطوح مختلفی از فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی از خود نشان دادند. در کل، عصاره اتانولی حلزون خوراکی بهترین فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی و محتوای فنلی را نشان داد که می‌تواند به عنوان منابع غنی از آنتی اکسیدان‌های طبیعی برای استفاده از مواد غذایی توصیه شود. 2 This study compares the antioxidant activity and phenolic content of extracts of four mollusk species (Oyster rock bivalve; Saccostrea cuculate, cabbage bivalve; Callista umbonella and Molok or cylindrical clam; Solen vagina and edible snail; Ampullaria cuprina) and determine the best mollusk in Qeshm coast. Mollusc species (n=100 for each mollusk) were stored in cold boxes with ice and transferred to the laboratory after collection. The samples were well ground and aqueous, ethanolic (90% ethanol) and hydro-ethanolic (50:50) extracts were prepared from them. The results showed that the highest amount of phenolic content (81.66 mg GAE/g extract), diphenylpicrylhydrazyl (DPPH) antiradical activity (1722.66 µmol Trolex /g extract) and antiradical activity equivalent to Trolex (649.33 µmol Trolex/g) extract) was observed in the ethanolic extract of edible snail. Also, the amount of antioxidant activity was maximum in three methods: PMP, 606.66 µmol Trolex, FRAP: (740 µmol iron/ gram of extract and RP: 1.24 in edible snail. Aqueous, ethanolic and hydro-ethanolic extracts of four Mollusca species showed different levels of antioxidant activity in all studied models. In general, ethanolic extract of edible snail showed the best antioxidant activity and phenolic content, which can be considered as rich sources of natural antioxidants for food usage is recommended 29 38 2021/05/272022/05/42020/03/25 1399/1/6 2022/09/12022/09/12020/05/6 1399/2/17 پریا اکبری paria akbary دانشگاه دریانوردی Iran paria.akbary@gmail.com سیمین دلیران گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران. Iran اسماء مفتاح‌زهی گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران. Iran Antioxidant acitivity phenol Saccostrea cuculate Callistaumbonella Solen vagina Ampullaria cuprina فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی فنل دو کفه‌ای اویستر دو کفه‌ای کلم ملوک حلزون خوراکی ##مهدی آبکنار، ع. 1400. بررسی تغییرات فصلی بر میزان فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی جلبک قهوه‌ای Nizamuddinia zanardinii قبل و بعد از مانسون در سواحل شمالی دریای عمان. مجله علمی شیلات ایران، 30(5): 99-110. DOI: 20.1001.11261354.1400.30.5.8.1. ##Alexandru, V., Balan, M., Gaspar, A., Craciunescu, O. and Moldovan, I., 2007. Studies on the antioxidant activity, phenol and flavonoid contents of some selected Romanian medicinal plants used for wound healing. Biotechnology Letter, 12(6):3467-3472.##Arnao, M.B., 2000. Some methodological problems in the determination of antioxidant activity using chromogen radicals: a practical case. Trends Food Science and Technology, 1(11):419-421. DOI:10.1016/S0924-2244(01)00027-9##Amsler, Ch.D ., McClintock, J.D. and Baker, B.J., 2001. Secondary Metabolites as Mediators of Trophic Interactions among Antarctic Marine Organisms. American Zoologist, 41(1), 17-26.##Benzie, I.F.F. and Strain, J.J., 1999. Ferric reducing (antioxidant) power as a measure of antioxidant capacity: the FRAP assay. In: Packer L (ed) Oxidants and Antioxidants Volume 299 of Methods in Enzymology. Academic Press, Orlando, pp 15–27.##Harborne, J.B., 1998. Phytochemical Methods a guide to modern techniques of plant analysis. London, New York. 295p.##Jayaprakash, G.K., Singh, R.P. and Sakariah, K.K., 2001. Antioxidant activity of grape seed extracts on per oxidation models in vitro. Journal of Agriculture Food Chemistry, 55:1018-1022. DOI: 10.1016/S0308-8146(00)00298-3##Kanchana, S., Arumugam, M., Giji, S. and Balasubramanian, T., 2013. Isolation, characterization and antioxidant activity of ## hyaluronic acid from marine bivalve mollusk Amussium pleuronectus (Linnaeus, 1758). Bioactive Carbohydrates and Dietary Fibre, 2(1): 1-7. DOI: 10.1016/j.bcdf.2013.06.001.##Kanner, J., Frankel, E., Granit, R., German, B., Kinsella, J.E., 1994. Natural antioxidants in grapes and wines. Journal of Agriculture Food Chemistry.42:64-69.##Lagouri,V. and Boskou, D., 1996. Nutrient antioxidants in origano. International Journal of Food Science Nutrient, 47:493-497. DOI: 10.3109/09637489609031878.##Nazeer, R. and Naqash, S.Y., 2013. In vitro antioxidant activity of two molluscs, Loligo duvauceli Orbigny and Donax cuneatus Linnaeus, by solvent extraction methods. Mediterranean Journal of Nutrition and Metabolism, 6(1): 17-21. DOI: 10.1007/s12349-011-0088-1##Oyaizu, M., 1986. Studies on products of browning reactions: Antioxidative activities of browning products of browning reaction prepared from glucosamine. Japanese Journal of Nutrition, 44: 307–315.DOI:10.5264/eiyogakuzashi.44.307##Pachaiyappan, Y.,Muthuvel, A.,Sadhasivam,G., Vidhya Sankar,V.J., Sridhar,N.and Kumar,M., 2014. In vitro antioxidant activity of different Gastropods, Bivalves and Echinoderm by Solvent Extraction method. International Journal of Pharmaceutical Sciences and Research, 5(6):2539-2545. DOI:10.13040/IJPSR.0975-8232.5 (6).2529-45##Prieto, P., Pineda, M. and Aguilar, M., 1999. Spectrophotometric quantitation of antioxidant capacity through the formation of a phosphomolybdenum complex: specific application to the determination of vitamin E. Analytical biochemistry, 269(2), 337–341. DOI:10.1006/abio.1999.4019##Prior, R.L., Wu, X. and Schaich, K., 2005. Standardized methods for the determination of antioxidant capacity and phenolics in foods and dietary supplements. Journal of Agriculture Food Chemistry, 53(8):3101–3113. DOI:10.1021/jf0502698##Qiao, D., Ke, C., Hu, B., Luo, J., Ye, H., Sun, Y. and Zeng, X., 2009. Antioxidant activities of polysaccharides from Hyriopsis cumingii. Carbohydrate polymers, 78(2):199-204.##Rajesh, M., Nagarajan, A.,Perumal, S. and Sellamuthu, M., 2008.The antioxidant activity and free radical scavenging potential of two different solvent extracts of Camellia sinensis, Ficus bengalensis and Ficusracemosa. Food Chemistry, 107:1000–1007. DOI:10.1016/j.foodchem.2007.09.008##Re, R., Pellegrini, N., Proteggente, A., Pannala, A., Yang, M. and Rice-Evans,C., 1992. Antioxidant activity applying an improvedABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Biology, 26: 1231–1237. DOI:10.1016/j.carbpol.2009.03.018##Ridzwan, B.H., Kaswandi, M.A., Azman, Y.and Fuad, M., 1995. Screening for antibacterial agents in three species of sea cucumbers from coastal areas of Sabah. General Pharmacology, 26: 1539–1543. DOI:10.1016/0306-3623(95)00041-0.## Shimada, K., Fujikawa, K., Yahara, K.and Nakamura, T., 1992. Antioxidative properties of xanthan on the autoxidation of soybean oil in cyclodextrin emulsion. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 40(6),945-48. DOI: 10.1021/jf00018a005##Shimoji, Y., Tamura, Y., Nakamura, Y., Nanda, K.,. Nishidai , Sh., Nishikawa, Y., Kazuo, N., Ishihara, N., Uenakai, K. and Ohigashi, H. 2002. Isolation and Identification of DPPH Radical Scavenging Compounds in Kurosu (Japanese Unpolished Rice Vinegar). Journal of agricultural and food chemistry, 50,6501-6503. DOI: 10.1021/jf020458f##Singleton, V.L., and Rossi, J.A., 1965. Colourimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungtic acid reagents. American Journal of Enology and Viticulture, 16: 144–158. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ تحلیل راهبردی توسعه زیست بوم کارآفرینی و کسب و کارهای نوپای حوزه ماهیان گرم‌آبی Strategic analysis of development of entrepreneurship and start-up businesses in the field of warm-water fish 1 1 هدف این پژوهش کاربردی، شناسایی و ارائه راهکارهای توسعه زیست بوم کارآفرینی و کسب و کارهای نوپا حوزه ماهیان گرم‌آبی بود که با روش آمیخته (کیفی+کمی) انجام پذیرفت. جامعه آماری در بخش کیفی شامل 12 نفر از خبرگان صاحب نظر بود که به روش نمونه‌‌گیری گلوله برفی انتخاب و تا نقطه اشباع نظری داده‌‌ها از آنها جمع‌‌آوری شد. در بخش کمی نیز جامعه آماری متشکل از کارشناسان و صاحبنظران حوزه شیلاتی و کارآفرینی از سه دسته سیاستگذاران و تصمیم‌‌گیرندگان، خبرگان و کنشگران فعال حوزه ماهیان گرم‌آبی و بهره‌‌برداران شیلات بود که 40 مصاحبه و پرسشنامه به روش نمونه‌‌گیری دردسترس از آنها تکمیل گردید. در بخش کیفی این تحقیق با استفاده از تکنیک تحلیل محتوای مصاحبه‌‌های صورت گرفته، نقاط قوت، ضعف، فرصت و تهدیدها در چارچوب مدل SWOT، شناسایی و در قالب پرسشنامه در اختیار پاسخگویان قرار گرفت و داده‌‌ها از آنها جمع‌‌آوری شد. نتایج بخش کمی نشان داد که در فضای درونی زیست‌‌بوم کارآفرینی و کسب و کارهای نوپای ماهیان گرم‌آبی، نقاط قوت و در فضای بیرونی نقاط ضعف حاکم هستند. به عبارت دیگر، راهبردهای توسعه این زیست بوم در محدوده راهبردهای رقابتی-تنوع یا راهبرد انطباقی قرار دارد. این راهبردها سعی دارند تا با کاستن از ضعف‌ها بتواند حداکثر استفاده را از فرصت‌های موجود ببرد. در نهایت برای توسعه زیست بوم باید مجموعه راهکارهایی را در هفت بخش تأمین نهاده، تولید و تولیدکننده، جمع آوری/فرآوری، توزیع/ تدارکات، تامین منابع مالی، بازار/ مشتری و تامین منابع انسانی اتخاذ نمود. 2 The main purpose of this applied research which was carried out by a mixed-method (qualitative + quantitative) approach, was to identify and provide strategies for the development of entrepreneurial ecosystems and start-up businesses in the field of warm-water fish. The statistical population of the research in the qualitative part included 12 experts in entrepreneurship, business, and fisheries, who were selected by snowball sampling, and data were collected from them so the theoretical saturation was achieved. In the quantitative part, the statistical population consisted of experts in the field of fisheries and entrepreneurship from three categories of policymakers, decision-makers, experts, and activists in the field of warm water fish and fisheries operators, of whom 40 interviews and questionnaires were completed through convenience sampling method. In the qualitative part of the research, using the content analysis technique of the interviews, four dimensions of the SWOT model including strengths, weaknesses, opportunities, and threats were identified and it was provided to the respondents in the form of a questionnaire, and the data was collected from them. Based on the results of the quantitative part, strengths in the interior and weaknesses in the exterior environment were dominant. In other words, the development strategies of this ecosystem are within the range of competitive-diversity strategies or adaptive strategies. These strategies try to make the most of the available opportunities by reducing weaknesses. Finally, for the development of entrepreneurship and start-up businesses in the field of warm-water fish, a set of strategies in seven categories of inputs, production and producer, collection/processing, distribution/procurement, financial resources, market/customer, and human resources were proposed. 39 58 2021/05/272022/05/42020/03/252022/06/20 1401/3/30 2022/09/12022/09/12020/05/62022/07/30 1401/5/8 شهرام دادگر shahram dadgar 1- موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران Iran shdadgar@ifro.ir امید جمشیدی omid jamshidi 2- گروه ترویج و آموزش کشاورزی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران Iran omidjamshidi@gmail.com حسن علیپور hassan alipoor 3- سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران Iran halipour2001@yahoo.com محمود بهمنی mahmoud bahmani 1- موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران Iran mahmoudbahmani@ymail.com سید داود حاجی میررحیمی davood mirrahimi 4- مرکز آموزش عالی امام خمینی (ره)، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران Iran mirrahimi@ihec.ir همایون حسین زاده صحافی houmayun hosseinzadeh 1- موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران Iran h_hosseinzadeh@yahoo.com محمود حافظیه mahmoud hafezieh 1- موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران Iran jhafezieh@yahoo.com ندا علیزاده neda alizade 3- سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران Iran nedaalizade@yahoo.com رضا نهاوندی reza nahavandi 5- موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران Iran rezanahavandi91@gmail.com Entrepreneurship Start-ups Ecosystem Warm-water fish کارآفرینی کسب و کارهای نوپا زیست‌‌بوم ماهیان گرم‌آبی ##اخلی، م.، دیده‌خانی، ح.، شریف شریف زاده، م. و حسینی، س،م،ر.، 1397. الگوی مفهومی تشخیص فرصت کارآفرینان نوپای فناور دانشگاهی کشاورزی. فصلنامه پژوهش مدیریت آموزش کشاورزی، 10(45): 158-139.DOI: 10.22092/JAEAR.2018.122687.1529##آذری تاکامی، ق. و مقصودی فر، ا.ا.، 1394. بررسی اثرات همیاری در تولید ارگانیک ماهیان گرم‌آبی. مجله علوم آبزی‌‌پروری، 1(3): 81-74.##آریانژاد، م.، 1395. تحلیل راهبردی وضعیت صنعت شیلات استان هرمزگان در جهت توسعه صادرات. پایانامه کارشناسی ارشد. دانشکده مدیریت و حسابداری، دانشگاه تهران، ایران.##انصاری اردلی، ع.، کلانتری، خ.، اسدی، ع. و علیزاده، ن.، 1396. بررسی دلایل گرایش به پرورش ماهی در بین پرورش دهندگان ماهی در استان چهارمحال و بختیاری. تحقیقات اقتصاد و توسعه کشاورزی ایران، 3(48): 463-453.DOI: 10.22059/IJAEDR.2017.63965##بهمنش، ش.، حسین زاده صحافی، ه.، عبدالحی، ح. و سپهداری، ا.، 1396. مشکلات و موانع پرورش ماهیان گرم آبی در منطقه البرز شمالی با تاکید بر استان گیلان. توسعه آبزی‌‌پروری (علوم زیستی)، 11(1): 9-24. ##رکن‌ الدین افتخاری، ع. و مهدوی، د.، 1385. راهکارهای توسعه گردشگری روستایی با استفاده از مدل SWOT (مورد: دهستان لواسان کوچک). برنامه‌ریزی و آمایش فضا، ۱۰ (۲): ۳۱-۱.##سالارزهی، ح.ا.، روشندل اربطانی، ط. و معصومی، ا.، 1393. تحلیل استراتژیک توسعه کارآفرینی در صنایع شیلاتی استان بوشهر با رویکرد ترکیبی SWOT-AHP. پژوهش‌‌های مدیریت عمومی، 7(25): 118-97. DOI: 10.22111/JMR.2014.1907##سالنامه آماری سازمان شیلات ایران، 1400-1395. سازمان شیلات ایران. دفتر برنامه و بودجه، گروه برنامه‌‌ریزی و آمار، تهران. (چاپ نشده).##سالنامه آماری شیلات ایران، 99-1394. سازمان شیلات ایران. دفتر برنامه و بودجه، گروه برنامه‌‌ریزی و آمار، ایران، تهران.##سخدری، ک.، زارعی، ب. و صادقی، ب.، 1396. تحلیل مدل رفتاری کسب و کارهای نوپا با استفاده از مدل توسعه مشتری (مطالعه موردی: کسب و کارهای نوپای مستقر در شتابدهنده‌‌های شهر تهران). مجله توسعه کارآفرینی، 10(3): 415-395. DOI: 10.22059/JED.2017.236576.652243##سیفی، ج.، 1393. پرورش ماهیان گرم‌آبی در منابع آبی خرد. سازمان تحقیقات و آموزش کشاورزی، نشر آموزش، تهران##شریف زاده، م.ش. و عبداله زاده، غ.، 1399. زیست بوم نوآفرینی کشاورزی در استان گلستان. مجله علوم ترویج و آموزش کشاورزی ایران، 16(1): 22-1. DOI: 10.22034/IAEEJ.2020.232032.1527##شهرکی، م. و شریف زاده، م.، 1394. ارزیابی جایگاه آبزی پروری در معیشت پایدار روستایی کشاورزان شهرستان زاهدان. پژوهش های روستایی، 6(1)، 97-116. DOI: 10.22059/JRUR.2015.54233##صمصام‌‌پور، ص.، شاه‌‌منصوری، ا.، چراغعلی، م.ح. و سهرابی، ط.،1399. بررسی و تحلیل زیست‌‌بوم نوآوری صنعت شیلات و آبزی‌‌پروری استان هرمزگان. مجله بوم‌‌شناسی آبزیان. 10(3): 99-82##عادلی، ا.، بایی، ه. و پندار، م.، 1399. شناسایی و رتبه بندی عوامل موثر بر صادرات محصولات شیلاتی ایران. مجله علمی شیلات ایران، 29(1): 13-25. ##علیپور، ح. و تورجی، م.، 1392. بررسی نیازهای آموزشی اعضای تعاونی‌‌های پرورش دهندگان ماهیان گرم آبی (مطالعه موردی استان گیلان و مازندران) مجله علمی شیلات ایران، 22(3): 116-103. DOI: 10.22092/JAEAR.2018.122687.1529##علیپور، ح. و تورجی، م.، 1392. بررسی نیازهای آموزشی اعضای تعاونی‌‌های پرورش دهندگان ماهیان گرم آبی (مطالعه موردی استان گیلان و مازندران) مجله علمی شیلات ایران، 22(3): 116-103##قائدی، م. و گلشنی، ع.، 1395. روش تحلیل محتوا، از کمی‌‌گرایی تا کیفی گرایی. روش‌‌ها و مدل‌‌های روان شناختی، 7(23): 57-82. ##گلرد، پ. و صمصام‌‌پور، ص.، 1397. بررسی فرصت‌‌ها و چالش‌‌های کارآفرینی فروش آبزیان شیلاتی حوضه خلیج فارس با رویکرد تجارت الکترونیک (شهرستان بندرعباس). مجله بوم‌‌شناسی آبزیان، 7(4): 123-112.##محبوبی، م. و حسن آبادی، ن.، 1393. شناسایی عوامل بازدارنده کسب و کار پرورش ماهیان گرم آبی در استان گلستان، مجله تحقیقات اقتصاد و توسعه کشاورزی ایران، 45(1): 313-305. DOI: 10.22059/IJAEDR.2014.52166##محمدی تبار، ب.، الهیاری، م. و بهمنش، ش.، 1398. موانع و محدودیت‌های توسعه پرورش ماهیان گرم‌آبی در شهرستان رشت. توسعه آبزی‌‌پروری (علوم زیستی)، 13(2): 107-124. ##میارکلائی، ح.، میارکلائی، ح. و مشازمینی، م.، 1394. توسعه کارآفرینی گامی در جهت پیشبرد اهداف اقتصادی و اجتماعی شیلات: تبیین و رتبه بندی عوامل محیطی (زمینه‌‌ای) موثر با استفاده از رویکرد دلفی فازی و AHP فازی. مجله علمی شیلات ایران، 23(3): 149-125.##میثمی، ا.م.، الیاسی، ق.، دهکردی، ع. و حجازی، س.ر.، 1396. ابعاد و مؤلفه‌های اکوسیستم کارآفرینی فناورانه در ایران. فصلنامه مدیریت توسعه فناوری، 5(3): 42-9. DOI: 10.22104/JTDM.2018.2553.1866##FAO. 2020. The State of World Fisheries and Aquaculture, Sustainability in action. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome, Italy. 224p. DOI: 10.4060/ca9229en##Gomes, L.A., Facin, A.L., Salermo, M.S. and Ikenami, R.K., 2018. Unpacking the innovation ecosystem construct: Evolution, gaps and trends. Technological Forecasting and Social Change, 136: 30-48. DOI: 10.1016/j.techfore.2016.11.009##Islam, A., 2015. Entrepreneurship and the allocation of government spending under imperfect markets. World Development, 70: 108-121.##Petersen, J.A., Paulich, B.J., Khodakarami, F., Spyropoulou, S. and Kumar, V., 2022. Customer-based execution strategy in a global digital economy. International Journal of Research in Marketing, 39(2): 566-582. DOI: 10.1016/j.ijresmar.2021.09.010.## ##Septiara, E. D., Elfitasari, T. and Amalia, R., 2022. The Effect of Fishpreneurs Utilization of Social Media on Production and Marketing of Freshwater Aquaculture in Semarang City. Aquacultura Indonesiana, 23(1): 64-54. DOI: 10.21534/ai.v23i1.277.##Spigel, B., 2015. The relational organization of entrepreneurial ecosystems. Entrepreneurship Theory and Practice, 41(1): 49-72. DOI: 10.1111/etap.12167##WIPO. 2021. Global Innovation Index 2021 (Tracking Innovation through the COVID-19 Crisis). Available at https://www.wipo.int/global_innovation_index/en/2021/##Ziakis, C., Vlachopoulou, M. and Petridis, K., 2022. Start-Up Ecosystem (StUpEco): A Conceptual Framework and Empirical Research. Journal of Open Innovation: Technology, Market, and Complexity, 8(1): 35. DOI: 10.3390/joitmc8010035. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ جداسازی، تکثیر و انتقال ژن VP28 ویروس عامل لکه سفید میگو در میکروجلبک Chlorella vulgaris به روش الکتروپوریشن (تراواسازی الکتریکی) Isolation, replication and transmission of VP28 gene of shrimp white spot virus into Chlorella vulgaris microalgae using electroporation 1 1 بیماری لکه‌سفید یکی از مهمترین بیماری‌ها در پرورش میگو می‌باشد که موجب کاهش تولید و خسارت اقتصادی شدیدی در کل دنیا از جمله ایران گردیده است. مرگ ‌و میر ناشی از این بیماری شدید و بسیار بالا و به 100% طی 10-3 روز از شروع بیماری می‌رسد. بر اساس آمارهای جهانی سالانه در دنیا حدود 300 هزار تن میگو بر اثر این بیماری تلف می‌شود. برای مثال، در ایران در سال های 1386,1383, 1394,1387، 1395 و 1398 شیوع این بیماری خسارات میلیاردی به تولید کنندگان وارد کرد. با توجه به این‌که ژن پروتئین ویروسی VP28 یکی از مهم‌ترین پروتئین‌‌های پوششی ویروس بیماری لکه سفید و در چسبیدن و نفوذ به سلول‌های میگو نقش دارد و از آن‌جایی‌که مهم‌ترین منبع غذایی میگو در مرحله لاروی میکروجلبک می‌باشد، می‌تواند منبع مناسبی برای ساخت واکسن باشد. در این تحقیق ژن VP28 به میکروجلبک انتقال داده شد تا از این راه کمکی در جهت تولید واکسن خوراکی برای جلوگیری از بیماری لکه‌‌سفیدمیگو انجام گیرد. در این تحقیق نمونه‌های میگو (Penaeus indicus) مشکوک به بیماری سندروم لکه سفید از استخرهای پرورشی آبادان (مهرماه 1390) به آزمایشگاه مؤسسه واکسن و سرم‌سازی رازی-شعبه اراک منتقل و DNA ژنومیک ویروس با استفاده از روش پروتئیناز K و فنل/کلرفرم استخراج شد. با طراحی آغازگرهای اختصاصی ژن VP28 به روش PCR تکثیر و به داخل وکتور pCAMBIA1304 منتقل و نهایتاً طی فرایند تراواسازی الکتریکی به میکروجلبک Chlorella vulgaris که خود یکی از میزبان‌های بسیار مناسب انتقال ژن می‌باشد، منتقل گردید. 2 White spot disease (WSD) is one of the most important diseases in shrimp farming, which has caused a decrease in production and severe economic damage all over the world, including Iran. Mortality caused by this severe disease is very high and reaches 100% within 3 to 10 days from the onset of the disease. According to global statistics, about 300,000 tons of shrimp are lost due to this disease every year in the world. For example, within the years 2004, 2006, 2007, 2015, 2016 and 2019, the outbreak of this disease caused millions of dollar losses to the producers in Iran. Since the VP28 viral protein gene is one of the most important white spot disease virus envelope proteins and plays a role in sticking to and penetrating shrimp cells, and since microalgae is the most important source of food for shrimp in the larval stage, So it can be a suitable host for making  a vaccine. So in this study, samples of shrimp (Penaeus indicus) suspected of white spot disease from Abadan (Khuzestan province) breeding ponds were transferred to the laboratory of Razi Vaccine and Serum Institute of Arak branch and the genomic DNA of the virus was extracted using proteinase K and phenol/chloroform methods. The VP28 gene was proliferated by PCR method, inserted into pCAMBIA1304 vector and finally transferred to Chlorella vulgaris microalgae using electroporation method. 59 69 2021/05/272022/05/42020/03/252022/06/202020/09/19 1399/6/29 2022/09/12022/09/12020/05/62022/07/302022/09/1 1401/6/10 سید داود حسینی seyed Davood Hosseini موسسه تحقیقات واکسن و سرمسازی رازی Iran hosseinida@yahoo.com محدثه السادات حسینی Mohadesehosatad Hosseini دانشکده بیوتکنولوژی دانشگاه الزهرا Iran hadisda74@ymail.com سید مهدی رضایی seyed Mahdi Rezai دانشگاه ساری ،استان مازنذران Iran fahud14@yahoo.com VP28 white spot Microalgae Chlorella vulgaris Electroporation ژن VP28 لکه سفید میگو میکروجلبک کلرلاولگاریس الکتروپوریشن ##Borowitzka, M.A., 1999. Commercial production of microalgae: ponds, tanks, tubes and fermenters. Journal of Biotechnology, 70, 313-321. Doi: 10.1016/S0168-1656(99)00083-8##Cardozo, K. H. M., Guaratini, T., Barros, M. P., Falcao, V. R., Tonon, A. P., Lopes, N. P., Campos, S., Torres, M. A., Souza, A. O., Colepicolo, P. and Pinto, E., 2007. Metabolites from algae with economical impact. Comparative Biochemistry and Physiology part C Toxicology and Pharmacology, 146, 60-78.Doi: 10.1016/j.cbpc.2006.05.007##Chaisvisuthangkura, P., Tangkhabuanbutra, J., Longyant, S., Sithigorngul, W., Rukpratanporn, S., Menasveta, P. and Sithigorngul, P., 2004. Monoclonal antibodies against a truncated viral envelope protein (VP28) can detect white spot syndrome virus (WSSV) infections in shrimp. ScienceAsia, 30(4).359-363. Doi: 10.2306/scienceasia1513-1874.2004.30.359##Daliry, S., Hallajisani, A., Mohammadi, R. J., Nouri, H. and Golzary, A., 2017. Investigation of optimal condition for Chlorella vulgaris microalgae growth. Global Journal of Inviromental Science and management, 2(10),217-230. Doi: 10.22034/gjesm.2017.03.02.010 Global Journal of ##Du, H., Xu, Z., Wu, X., Li, W. and Dai, W., 2006. Increased resistance to white spot syndrome virus in Procambarus clarkii by injection of envelope protein VP28 expressed using recombinant baculovirus. Aquaculture, 260, 39-43. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2006.06.032##Dyo, Y. M. and Purton, S. 2018. The algal chloroplast as a synthetic biology platform for production of therapeutic proteins. Microbiology (Reading), 164, 113-121.Doi: 10.1099/mic.0.000599 ##Caipong C.M. and Fagutao. F. 2013.'Transcriptional upregulation of fortilin in shrimp, Penaeus (Metapenaeus) japonicus fed diets containing recombinant VP28, an antigenic protein of white spot syndrome virus (WSSV). Aquaculture, Aquarium, Conservation and Legislation, International Journal of the Bioflux Society, 6(4):345-351. http://www.bioflux.com.ro/aacl##Guohua YI, Z. W., Yipeng QI, Lunguang Y, Juan Q. and Longbo H. 2004. Vp28 of Shrimp White Spot Syndrome Virus Is Involved in the Attachment and Penetration into Shrimp Cells. Journal of Biochemistry and Molecular Biology, 37, 726-734. Doi: 10.5483/bmbrep.2004.37.6.726##Huahua D. Z. X., XiaofengW.,Weifen, L. and Wei D. 2006. Increased resistance to white spot syndrome virus in Procambarusclarkii by injection of envelope protein VP28 expressed using recombinant baculovirus. Aquaculture, 260(1-4), 39-43. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2006.06.029##Jha, R. K., Xu, Z. R., Shen, J., Bai, S. J., Sun, J.Y. and Li, W.F., 2006. The efficacy of recombinant vaccines against white spot syndrome virus in Procambarusclarkii, Immunology Letters, 105(1), 68-76. Doi: 10.1016/j.imlet.2006.01.004##Kiataramgul, A., Maneenin, S., Purton, S., Areechon, N., Hirono, I., Brocklehurst, T. W. and Unalak, S., 2020. An oral delivery system for controlling white spot syndrome virus infection in shrimp using transgenic microalgae. Aquaculture, 521, 735022. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2020.735022##Ma, K., Bao, Q., Wu, Y., Chen, S., Zhao, S., Wu, H. and Fan, J., 2020. Evaluation of Microalgae as Immunostimulants and Recombinant Vaccines for Diseases Prevention and Control in Aquaculture. Frontiers Bioengeenering Biotechnology, 8, 590431. Doi: 10.3389/fbioe.2020.590431##Makesh, M., Koteeswaran, A., Chandran, N. D. J., Murali M. B. and Ramasamy, V. 2006. Development of monoclonal antibodies against VP28 of WSSV and its application to detect WSSV using immunocomb. Aquaculture, 261, 64-71. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2006.08.034##Namikoshi, A., Wu, J. L., Yamashita, T., Nishizawa, T., Nishioka, T., Arimoto, M. and Muroga, K. 2004. Vaccination trials with Penaeus japonicus to induce resistance to white spot syndrome virus. Aquaculture, 229, 25-35. Doi: 10.1016/s0044-8486(03)00363-6##Sambrook, J., Fritsch, E.F. and Maniatis, T., 1989. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, ISBN 0879693096, 267, 9289-9293.##Soltani, N., Khavari-nejad, R. A., Yazdi, M. T., Shokravi, S. and Fernandez-valiente, E., 2006. Variation of nitrogenase activity, photosynthesis and pigmentation of the cyanobacterium Fischerellaambigua strain FS18 under different irradiance and pH values. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 22, 571-576.Doi: 10.1007/s11274-005-9073-5##Taengchiyaphum, S., Nakayama, H., Srisala, J., Khiev, R., Aldama-cano, D. J., Thitamadee, S. and Sritunyalucksana, K., 2017. Vaccination with multimeric recombinant VP28 induces high protection against white spot syndrome virus in shrimp. Developmental and Comparative Immunology, 76, 56-64.Doi:10.1016/j.dci.2017.05.016##Tang, X., Wu, J., Sivaraman, J. and Hew, C. L., 2007. Crystal structures of major envelope proteins VP26 and VP28 from white spot syndrome virus shed light on their evolutionary relationship. Journal of Virology, 81(12), 6709-17. Doi: 10.1128/JVI.02505-06##Van Hulten, M. C., Witteveldt, J., Peters, S., Kloosterboer, N., Tarchini, R., Fiers, M., Sandbrink, H., Lankhorst, R. K. and Vlak, J. M., 2001. The white spot syndrome virus DNA genome sequence. Virology, 286(1), 7-22. Doi: 10.1006/viro.2001.1002##Witteveldt, J., Vlak, J. M. and van Hulten, M.C., 2006. Increased tolerance of Litopenaeusvannamei to white spot syndrome virus (WSSV) infection after oral application of the viral envelope protein VP28. Disease of Aquatic Organisms, 70(1-2), 167-70. Doi: 10.3354/dao070167##Yang, B., Liu, J., Jiang, Y. and Chen, F., 2016. Chlorella species as hosts for genetic engineering and expression of heterologous proteins: Progress, challenge and perspective. Biotechnology Journal, 11, 1244-1261. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ مقایسه تولید و شاخص‌های بهره‌وری پرورش میگوی سفید غربی (Litopenaeus vannamei) با دو روش ذخیره‌سازی مستقیم و اجرای دوره نوزادگاهی Comparison of production and productivity indicators of western white shrimp (Litopenaeus vannamei) with two methods of direct stocking and nursery stocked 1 1 نوزادگاهی باعث بهبود شاخص‌های رشد و افزایش راندمان تولید می‌شود. در این تحقیق مقایسه بین شاخص‌های رشد، وزن نهایی برداشت، بازماندگی و ضریب تبدیل غذایی بین دو گروه میگوی نوزادگاهی شده و نوزادگاهی نشده صورت گرفت. برای این منظور تعداد 819000 قطعه پست لارو 12 با تراکم 13 قطعه در مترمربع در 9 استخر ذخیره‌سازی و 90 روز پرورش داده شد. به همین تعداد پست لارو با تراکم 4000 قطعه در مترمکعب به مدت 30 روز در گلخانه مرحله نوزادگاهی را سپری کرده، سپس در 9 استخر با تراکم 13 قطعه در مترمربع ذخیره‌سازی و به مدت 60 روز پرورش داده شد. زیست‌سنجی هر 15 روز یک‌بار انجام شد، فاکتورهای فیزیکو شیمیایی آب به‌ صورت پنج روز یک‌بار اندازه‌گیری و ثبت شد. وزن نهایی میگوهای نوزادگاهی شده 51/0±13/28 و میگوهای نوزادگاهی نشده 67/0±22/17 رسید که تفاوت معنی‌داری را نشان می‌دهد (05/0>P) .احتمالاً به دلیل فعال شدن رشد جبرانی میگوهاست. نرخ رشد روزانه در گروه نوزادگاهی 01/0±21/0 نسبت به گروه نوزادگاهی نشده 01/0±15/0 به‌ طور معنی‌داری افزایش داشت. همچنین ضریب تبدیل غذایی به ‌طور معنی‌داری کاهش داشت. بنابراین، بر اساس این مطالعه می‌توان بیان کرد، تولید میگو با استفاده از میگوهای نوزادگاهی شده علاوه بر کاهش طول دوره پرورشی که خطر بروز بیماری را کاهش می‌دهد، با کاهش غذای مصرفی و افزایش وزن و مقدار تولید میگو، افزایش بهره‌وری به‌همراه دارد. 2 A nursery can improve growth indicators and increase production efficiency. This research compared growth indicators, final harvest weight, and survival rate and feed conversion ratio between nursery and un nursery groups. The number of 819,000   pieces of post larvae 12 with density of 13 pieces per square meter was reared in stocking for 90 days in 9 ponds. The same number of post larves with a density of 4000 pieces per cubic meter was reared in the greenhouse for 30 days. Then it was stocked in 9 ponds with a density of 13 pieces per square meter and they were cultured for 60 days. Biomass was measured every 15 days. Physico -chemical factors of water were recorded every five days. The final weight nursery shrimps was 28.13±0.51 1 and non-nursery shrimps 17.22±0.67. It shows a significant difference (P<0.05). It is probably activated by the compensatory growth of shrimps. The daily growth rate in the nursery group was 0.21±0.01 which was higher compared non nursery group 0.15±0.01 compared to the non-nursery group. It increased significantly. Also, the food conversion rate was significantly reduced. This this study, it can be said that shrimp production using shrimps nursery, in addition to reducing period of the culture with reduces the risk of disease. Also, reducing the food consumption and increasing the weight and quantity of shrimp production would increase the productivity. 71 79 2021/05/272022/05/42020/03/252022/06/202020/09/192022/02/23 1400/12/4 2022/09/12022/09/12020/05/62022/07/302022/09/12022/09/1 1401/6/10 مهرداد محمدی دوست Mehrdad Mohammadidust پژوهشکده آبزی پروری آبهای جنوب کشور، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران Iran mmohammadidoust@yahoo.com لفته محسنی نژاد Lefteh Mohseninejad پژوهشکده آبزی پروری آبهای جنوب کشور، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران Iran lmohseni1@yahoo.com Greenhouse Stocking weight Compensatory growth گلخانه وزن ذخیره‌سازی رشد جبرانی ##افشارنسب، م.، 1385. بیماری ویروسی میگو. انتشارات مؤسسه تحقیقات شیلات ایران، تهران ، 210 صفحه. ##افشار نسب، م.، متین فر، ع.، محمدی دوست، م.، قوام پور، ع.، مرتضایی، ر.، سبز علیزاده، س.، پذیر.، خ.، فقیه، خ.، حق نجات، م. و قاسمی، ش.، 1386. تعیین نرخ رشد، میانگین وزن، میزان بقا، ضریب تبدیل غذا و تولید کل در پرورش میگوی وانامی در ایران. مجله علمی شیلات ایران، 4 (1)، 28-14.##سلطانی. م.، 1381. اثرات ملی و بین‌المللی ناشی ی از بیماری ویروسی لکه در صنعت میگو. فصلنامه نظام دامپزشکی ، 2 (1)، 57-53.##سیدمرتضایی، س. ر, هوشمند، ح.، آهنگر زاده، م.، محسنی نژاد، ل، اسماعیلی فر، ج.، 1389. پایش عوامل عفونی در استخرهای پرورش میگوی وانامی در چوئبده آبادان. انتشارات مؤسسه تحقیقات شیلات ایران ، تهران ، 35 صفحه.##عبدالحی، ح. و عسگری. ر.، 1399. واکاوی آخرین وضعیت آبزی‌پروری جمهوری اسلامی ایران مجله پژوهش‌های راهبردی در علوم کشاورزی و منابع طبیعی ،2 (5)، 205-190.##محمدی دوست، م. و محسنی نژاد، ل.، 1399. نرسری راهکاری مؤثر در پیشگیری از بیماری لکه سفید ویروسی در مزارع پرورش میگوی چوئبده آبادان. فصلنامه میگو و سخت‌پوستان ، 5 (12)، 8-4.##محمدی‌دوست، م.، محسنی نژاد، ل. و حکمت پور، ف.، 1400. بررسی تأثیر وزن ذخیره‌سازی پست لارو میگوی سفید غربی بر عملکرد رشد و بازماندگی در مزارع چوئبده آبادان. مجله ترویجی علوم آبزی‌پروری پیشرفته، 4(2): 39-45.##Abedian Kenari, A. and Pagheh, E., 2007. Effects of salinity and dietary protein contents on growth performance and body composition of indian white shrimp (Fenneropenaeus indicus). Asian Fisheries Science, 20(5), 191-203. DOI: 10.33997/j.afs.2007.20.2.005 ##AOAC, 1997. Official Methods of Analysis of Association of Official Analytical Chemists, 16th ed. AOAC. Arlington. VA, 1298 P.##Chang, P.S., Lo, C.F., Wang, Y.C. and Kou, G.H., 1996. Identification of white spot syndrome associated baculovirus WSBV target organs in the shrimp Penaeus monodon by in situ hybridization. Diseases of Aquatic Organisms, 27, 131-139. DOI: 10.3354/dao027131 ##Corsin, F., Phi, T.T., Phuoc, L.H., Tinh, N.T.N., Hao, N.V. and Mohan, C.V.l., 2002. Problems and solutions with the design and execution of an epidemiological study of white spot disease in black tiger shrimp (Penaeus monodon) in Vietnam. Preventive Veterinary Medicine, 53, 117-132. DOI: 10.1016/s0167-5877(01)00265-3 ##Esparza-Leal, H.M., Magallón-Barajas, F.J., Portillo-Clark, G., Perez-Enriquez, R., ÁLvarez-Ruíz, P., Escobedo-Bonilla, C.M., Méndez-Lozano, J., Mañón-Ríos, N., Valerio-García, R.C., Hernández-López, J., Vibanco-Pérez, N. and Casillas-Hernández, R., 2010. Infection of WSSV-negative shrimp, Litopenaeus vannamei, cultivated under fluctuating temperature conditions. Journal of the World Aquaculture Society, 41, 912–922. DOI:10.1111/j.1749-7345.2010.00434.x ##Gunalan, B., Soundarapamndian, P., Ramchandran, K., Theivasidamani, A. and Kotia, A.S., 2011. First report on White Spot Syndrome Virus (WSSV) infection in white leg shrimp Litopenaeus vannamei (Crustacea, Penaeidae) under semi intensive culture condition in India. AACL Bioflux, 4, 301-305. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2014.10.005. ##Juliana, R.M., Diego, A.G., Fernando, M.C., Trinidad Encinas, E.G., Daniel, E., Coronado, M., Guillermo, P.C., Maria, R.F., Marques, F. J., Magallón, B. and Jorge, H.L., 2012. Water temperature influences viral load and detection of White Spot Syndrome Virus (WSSV) in Litopenaeus vannamei and wild crustaceans. Aquaculture, 326-329, 9–14. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2011.10.033 ##Kakoolaki, S., Sharifpour, I., Soltani, M., EbrahimzadehMousavi, H., Mirzargar, S. and Rostami, M., 2010. Selected morpho-chemical features of hemocytes in farmed shrimp, Fenneropenaeusindicus in Iran. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 9, 219-232.##Lightner, D.V., Redman R.M., Pantoja, C.R., Tang, K.F.J., Noble, B.L., Schofield, P., Mohney, L.L., Nunan, L.M. and Navarro, S.A., 2012. Historic emergence, impact and current status of shrimp pathogens in the Americas. Journal of Invertebrate Pathology,110, 174–183. DOI: 10.1016/j.jip.2012.03.006 ##Lo, C.F., Ho, C.H., Peng, S.E., Chen, C.H., Hsu, H.C. and Chiu, Y.L., 1996. White spot syndrome baculovirus (WSBV) detected in cultured and captured shrimp, crabs and other arthropods. Diseases of Aquatic Organism, 27, 215-225. 28. DOI: 10.3354/dao027215 ##Lombardi, J.V., De Almeida, M.H.L., Toledo, L.P.R., Salee, B.O.J. and De Paula, E.J., 2006. Cage Polyculture of the Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei and the Philippines Sea weed Kappaphycus alvarezii. Aquaculture, 258, 412-415. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2006.04.022 ## Lotz, J.M., Browdy, W.H., Carr, P.F. and Lightner, D.V., 1995. USMSFP suggested procedures and guidelines for assuring the specific pathogen status of shrimp brood stock and seed. p. 66-75.## Oh, S. Y., Noh, C.H. and Cho, S.H., 2007. Effect of Restricted Feeding Regimes on Compensatory Growth and Body Composition of Red Sea Bream, Pagrus major. J Journal of the World Aquaculture Society, 38, 443–449. DOI: /10.1111/j.1749-7345.2007.00116.x ##Rahman, M.M., Escobedo-Bonilla, C.M., Corteel, M., Dantas-Lima, J.J., Wille, M., Alday Sanz, V., Pensaert, M.B., Sorgeloos, P. and Nauwynck, H.J., 2006. Effect of high water temperature (33 °C) on the clinical and virological outcome of experimental infections with white spot syndrome virus (WSSV) in specific pathogen-free (SPF) Litopenaeus vannamei. Aquaculture, 261, 842–849. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2006.09.007 ##Rahman, M.M., Corteel, M., Dantas-Lima, J.J., Wille, M., Alday-Sanz, V., Pensaert, M.B., Sorgeloos, P. and Nauwynck, H.J., 2007. Impact of daily fluctuations of optimum (27°C) and high water temperature (33°C) on Penaeus vannamei juveniles infected with white spot syndrome virus (WSSV). Aquaculture, 269, 107–113. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2007.04.056 ##Smolko, E.E. and Lombardo, J.H., 2005. Virus inactivation studies using ion beams, electron and gamma irradiation. Nuclear Instruments and Methods in Physics Research Section B: Beam Interactions with Materials and Atoms, 236, 249-253. DOI: 10.1016/j.nimb.2005.04.055 ##Tendencia, E.A., Bosma, R.H. and Verreth, J.A.J., 2011. WSSV risk factors related to water physic chemical properties and microflora in semi-intensive Penaeus monodon culture ponds in the Philippines. Aquaculture, 302: 164-168. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2010.03.008##Tsai, M.F., Kou, G.H., Liu, H.C. and Liu, K.F., 1999. Chang, C.F. and Peng, S.E., et al. Long term presence of white spot syndrome virus (WSSV) in a cultivated shrimp population without disease outbreak. Diseases Aquatic Organization, 38, 107–114. DOI: 10.3354/dao038107 ##Viau, D.M., Souza, E.M., Rodrı´guez, W.W., Paulo, C.A. and Eduardo, L.C., 2012. Biofilm feeding by postlarvae of the pink shrimp Farfantepenaeus brasiliensis (Decapoda, Penaeidae). Aquaculture Research, 44, 783–794. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2011.03087.x ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ ارزیابی ریسک تالاب اینچه بر اساس شاخص‌‌های ژئوشیمیایی (استان گلستان) Risk assessment of the Incheh wetland based on geochemical indices (Golestan Province) 1 1 تالاب اینچه با اهمیت اکولوژیک بالا، در شمال شهر آق‌‌قلا در استان گلستان واقع شده است. در مطالعه حاضر، به منظور منشاء‌یابی و تعیین میزان آلودگی فلزات سنگین در تالاب و محاسبه شاخص‌‌های فاکتور غنی‌‌شدگی (EF)[1] و بار آلودگی (PLI)[2]، رسوبات سطحی تالاب اینچه از هفت ایستگاه با حداکثر عمق 8/2 متر در آبان 1397 جمع‌‌آوری شد. متغیرهای محیطی آب، فلزات سنگین، دانه‌‌بندی و مواد آلی کل رسوب، به‌ترتیب با دستگاه پرتابل مولتی‌‌پارامتر، طیف‌سنجی جرمی پلاسمای جفت‌شده القایی، روش پراکنش لیزی و روش سوزاندن در کوره اندازه‌‌گیری شد. میانگین آلومینیوم و آهن در رسوبات به‌ترتیب 0±8/0 و 6/0±5/1% بوده است. همچنین میانگین آرسنیک، مس، نیکل، سرب، کروم، روی و وانادیوم در رسوبات به‌‌ترتیب 6/4±8/2، 6/3±8/12، 4/6±7/26، 7/2±0/7، 8/7±7/25، 2/16±4/32 و 1/7±6/28 میلی‌‌گرم در کیلوگرم اندازه‌گیری شد. به ‌‌طور ‌‌کلی، از لحاظ شاخص فاکتور غنی‌‌شدگی، تالاب دارای غنی‌‌شدگی کم (8/1-1) بوده است درحالی‌‌‌که ایستگاه 5، از لحاظ میزان آهن (7/3) و آرسنیک (7/5) به‌‌ترتیب دارای غنی‌‌شدگی متوسط و غنی‌‌شدگی متوسط الی شدید است. از نظر گستره شاخص بار آلودگی (84/0- 46/0)، کلیه ایستگاه‌‌ها کمتر از یک بوده، بنابراین فاقد آلودگی بودند. به طور کلی، چون میزان نیکل و آرسنیک به‌ترتیب در کلیه ایستگاه‌‌ها و ایستگاه 5 از استاندارد "سطوح اثرات آستانه" بالاتر بوده است، می‌‌توان نتیجه گرفت احتمال بروز اثرات شدید زیستی بر اکثر موجودات بسترزی، کم و در حد آستانه است.   [1] Enrichment factor (EF) [2] Pollution Load Index (PLI) 2 The Incheh wetland, with high ecological importance, is located in the north of Aq-Qala (Golestan province). In this study, the surface sediments of the Incheh wetland from 7 stations with a maximum depth of 2.8 m were collected in November 2018 to find the source and determine the amount of heavy metals pollutions in the wetland and calculate the indices of enrichment factor and pollution load. The water environmental parameters, heavy metals, grain size, and total organic matter were measured by portable multi-parameter meter, inductively-coupled plasma mass spectrometry, laser diffraction particle size analyzer, and oven combustion, respectively. The mean of Al and Fe in the sediments were 0.8±0.4 and 1.5±0.6%. Also, the mean of As, Cu, Ni, Pb, Cr, Zn and V in the samples were measured 2.8±4.6, 12.8±3.6, 26.7±6.4, 7.0±2.7, 25.7±7.8, 32.4±16.2 and 28.6±7.1 mg/kg, respectively. In general, in terms of the enrichment factor index, the wetland has low enrichment (1-1.8). In the case that station 5, in terms of Fe (3.7) and As (5.7) had moderate enrichment and moderate to severe enrichment, respectively. In terms of the range of pollution load index (0.46-0.84), all stations were less than 1, so they were not polluted. In general, due to the fact that the amount of nickel and arsenic in all stations and station 5 was higher than the TEL, respectively, it can be concluded that the probability of severe biological effects on most of benthic organisms is low and at the threshold level. 81 98 2021/05/272022/05/42020/03/252022/06/202020/09/192022/02/232022/03/20 1400/12/29 2022/09/12022/09/12020/05/62022/07/302022/09/12022/09/12022/09/1 1401/6/10 سید قاسم قربان زاده زعفرانی Ghasem Ghorbanzadeh zaferani پژوهشکده محیط زیست و توسعه پایدار، حفاظت محیط زیست Iran Ghorbanzadeh110@yahoo.com فرهاد حسینی طایفه Farhad Hosaini Tayefeh پژوهشکده محیط زیست و توسعه پایدار، حفاظت محیط زیست Iran farhadtayefeh@gmail.com منا ایزدیان Mona Izadian پژوهشکده محیط زیست و توسعه پایدار، حفاظت محیط زیست Iran izadian.mona@gmail.com بهزاد رایگانی Behzad Raygani پژوهشکده محیط زیست و توسعه پایدار، حفاظت محیط زیست Iran behzad.rayegani@gmail.com Sediment Incheh Wetland Heavy metals Enrichment factor Pollution load index رسوب تالاب اینچه فلزات سنگین فاکتور غنی‌‌شدگی شاخص بار آلودگی ##باقری، ح.، درویش بسطامی، ک.، شارمد، ت. و باقری، ز.، 1391. ارزیابی پراکنش آلودگی فلزات سنگین در خلیج گرگان، اقیانوس شناسی، 11(3): 72-65. Doi : ‎ 20.1001.1.15621057.1391.3.11.7.0 ##حبیب پور گتابی، ک. و صفری شالی، ر.، 1391. راهنمای جامع کاربرد SPSS در تحقیقات پیمایشی (تحلیل داده‌های کمی). نشر لویه. 866 صفحه.##خدابخشی، خ.، کریم‌زاده، ف.، خوش منش، ب. و ضیاء ظریفی، ا.، 1396. بررسی مقادیر عناصرآلوده کننده رسوب رودخانه کرج در محدوده اسلامشهر ) جنوب تهران) و اثرات سوءآن بر محیط زیست پیرامون، فصلنامه علمی پژوهشی زمین‌شناسی محیط زیست، 11(83): 103-85.##زرپرور، پ.، آموزگار، م.ع. و فلاحیان، م. ر.، 1393. بررسی تنوع زیستی باکتری‌های نمک‌دوست نسبی و تحمل‌کننده نمک قابل کشت در تالاب پرشور اینچه‌برون، مجله پژوهش‌های سلولی و مولکولی (مجله زیست شناسی ایران)، 27 (1): 56-46.##علی پور، ح.، کریمی، غ.، مرتضوی، ث. و حسن پور، م.، 1396. ارزیابی زیست محیطی آلودگی روی، کادمیوم و سرب در آب، رسوب و میگوی رودخانه‌ای شرق (Macrobrachium nipponense De Haan, 1849) در تالاب آلاگل، زیست شناسی دریا، 9 (33): 82-73.##فرح‌بخش، ز.، اکبرزاده، آ. و ناجی، ا.، 1398. ارزیابی خطر فلزات سنگین Cu, Zn, Ni برای سلامت انسان ناشی از مصرف عضله ماهی سیاه‌کولی (Linnaeus, 1754) Vimba vimba persa و ماهی سفید(kamansky, 1901) Rutilus frisii kutum در تالاب انزلی، دریای خزر، مجله شیلات ایران، 28 (3): 88-77. Doi : 10.22092/ISFJ.2019.119236##فیضی، و. و شجاع جمال آباد، م.،1389. اندازه‌گیری بقایای آلودگی‌های نفتی "هیدروکربن‌های آروماتیک چند حلقه‌ای" درآب‌های 3 تالاب بین‌المللی (آلاگل، آلماگل و آجی‌گل) در شمال ایران، فصلنامه علمی محیط زیست، 49: 63- 57.##قاسمی، ا.، 1390. بررسی ساختار جمعیت و تنوع گونه‌ای ماکروبنتوزهای دریای خزر در مناطق ساحلی سیسنگان و نوشهر. پایان‌نامه کارشناسی ارشد زیست‌شناسی دریا. دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، 80 صفحه.##قربان زاده زعفرانی، س. ق.، حسینی طایفه، ف.، عظیمی، س. ب.، گندمکار، م.، غلامعلی فرد، م. و بادام فیروز، ج.، 1400. ارزیابی کیفیت محیطی رسوبات رودخانه کرج (استان البرز)، مجله علمی شیلات ایران، ۳۰ (۱): ۵۲-۳۷. Doi : 10.22092/ISFJ.2021.123946##قره محمودلو، م.، رقیمی، م.، قلی‌زاده، م. و صیادی، م.، 1399. ارزیابی کیفی آب دریاچه اینچه در بخش کشاورزی قبل از ورود پساب کارخانه ید. سی و نهمین کنگره ملی و چهارمین کنگره بین‌المللی علوم زمین، سازمان زمین شناسی و اکتشافات معدنی کشور، تهران، 4 تا 6 اسفند 1399، 7 صفحه. ##هاشمیان کفشگری، ع.، 1377. بررسی پراکنش و تغییرات فصلی زی‌توده (بیوماس) و تنوع ماکروبنتوزهای غالب سواحل جنوبی خزر. پایان نامه کارشناس ارشد. دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی نور. دانشگاه تربیت مدرس.##یوسفی، ذ.، ظفرزاده، ع.، محمدپور تهمتن، ر.ع.، شکرزاده، م.، بابانژاد اریمی، ا.، فولادیان، ع. و خیرآبادی، و.، 1398. ارزیابی آلودگی و پهنه‌بندی فلزات سنگین (سرب، کادمیوم و نیکل در آب و رسوب تالاب آلا‌گل استان گلستان درسال 1396، مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران، 29 (177): 194-180.##Abrahim, G.M.S. and Parker, R.J., 2008. Assessment of heavy metal enrichment factors and the degree of contamination in marine sediments from Tamaki Estuary, Auckland, New Zealand. Estuarine. Coastal and Shelf Science, 136: 227-238. Doi: 10.1007/s10661-007-9678-2.##Acevedo-Figueroa, D., Jimenez, B.D. and Rodriguez-Sierra, C.J., 2006. Trace metals in sediments of two estuarine lagoons form Puerto Rico. Journal of Environmental Pollution, 141: 336-342. Doi: 10.1016/j.envpol.2005.08.037.##Adamo, P., Arienzo, M., Imperato, M., Naimo, D., Nardi, G. and Stanzione, D., 2005. Distribution and partition of heavy metals in surface and sub-surface sediments of Naples City port. Chemosphere, 61: 800–809. Doi: 10.1016/j.chemosphere.2005.04.001##Agah, H., Hashtroudi, M.S. and Baeyens, W., 2012. Trace Metals and Major Elements in Sediments of the Northern Persian Gulf, Journal of the Persian Gulf (Marine Science), 3 (7/13): 45-58.##Al-Yamani, F., Bishop, J., Ramadhan, E., Al-Husaini, M. and Al-Ghadban, A., 2004. Oceanographic Atlas of Kuwait̕s Water, Kuwait Institute for Scientific Research, Safat, Kuwait, 203p.##Bagheri, H., Bastami, K.D., Sharmad, T. and Bagheri, Z., 2012. Assess the distribution of heavy metal pollution in Gorgan Bay. Oceanography, 3(11): 65-72.##Bastami, D.K., Bagheri, H., Kheirabadi, V., Ghorbanzadeh Zaferani, G., Teymori, B., Hamzehpoor, A., Soltani, F., Haghparast, S., Moussavi Harami, S.R., Farzaneh Ghorghani, N. and Ganji, S., 2014a. Distribution and ecological risk assessment of heavy metals in surface sediments along southeast coast of the Caspian Sea. Marine Pollution Bulletin, 81: 262-267. Doi:10.1016/J.Marpolbul.2014.01.029.##Bastami, K. D, Taheri, M., Bagheri, H., Foshtomi, M.Y., Ganji, S. Haghparast, S., Soltani, F., Hamzehpoor A. and Karimi, B., 2014b. Response of sediment-dwelling annelida community in relation to geochemical parameters in the Gorgan Bay, Caspian Sea. International Journal of Environmental Science and Technology, 11, 2025–2036. Doi:10.1007/s13762-014-0658-0.## Bastami, K.D., Bagheri, H., Haghparast, S., Soltani, F., Hamzehpoor, A. and Bastami, M.D., 2012. Geochemical and geo-statistical assessment of selected heavy metals in the surface sediments of the Gorgan Bay, Iran. Marine pollution Bulletin, 64: 2877-2884. Doi: 10.1016/J.Marpolbul.2012.08.015.##Buchman, M.F., 2008, NOAA Screening Quick Reference Tables (SQuiRTs), NOAA OR and R Report; 08-1, Seattle WA, Office of Response and Restoriation Division, National Oceanic and Atmospheric Administration, 34p. ##Flemming, W.B, 2000. A revised textural classification of gravel-free muddy sediments on the basis of ternary diagrams. Continental Shelf Research, 20: 1125-1137. Doi: 10.1016/S0278-4343 (00)00015-7.##Folk, R.L., Andrews, P.B. and Lewis D.W., 1970. Detrital sedimentary rock classi"cation and nomenclature for use in New Zealand. New Zealand Journal of Geology and Geophysics, 13: 937-968. Doi:10.1080/00288306.1970.10418211.##Ghorbanzadeh, Zaferani, S.G., Machinchian Moradi, A., Mousavi Nadushan, R., Sari A.R. and Fatemi S.M.R., 2016. Distribution pattern of heavy metals in the surficial sediment of Gorgan Bay (South Caspian Sea, Iran). Iranian Journal of Fisheries Sciences, 15(3): 1144-1166. Doi: 20.1001.1.15622916.2016.15.3.18.6.##Ghorbanzadeh, Zaferani, S.G., Machinchian Moradi, A., Mousavi Nadushan, R., Sari A.R. and Fatemi S.M.R., 2017. Spatial and temporal patterns of benthic macrofauna in Gorgan Bay, south Caspian Sea, Iran). Iranian Journal of Fisheries Sciences, 16(1): 251-274. Doi: 20.1001.1.15622916.2017.16.1.21.2.##Grant, A. and Middleton, R., 1990. An assessment of metal contamination of sediments in the Humber Estuary. Estuarine, Coastal and Shelf Science, 31: 71–85. Doi: 10.1016/0272-7714(90)90029-Q.##Huang, K.M. and Lin, S., 2003. Consequences and implication of heavy metal spatial variations in sediments of the Keelung River drainage basin, Taiwan. Chemosphere, 53: 1113–1121. Doi: 10.1016/s0045-6535(03)00592-7.##Kaki, C., Guedenon, P., Kelome, N., Edorh, P.A. and Adechina, R., 2011. Evaluation of heavy metals pollution of Nokoue Lake. African Journal of Environmental Science and Technology, 5(3): 255-261.##Long, E.R.; MacDonald, D.D., Smith, S.L. and Calder, F.D., 1995. Incidence of adverse biological effects within ranges of chemical concentrations in marine and estuarine sediments. Environmental Management, 19: 18–97. Doi:10.1007/BF02472006.##Loska, K. and Wiechula, D., 2003. Application of principal component analysis for the estimation of Sources of heavy metal contamination in surface sediments form the Rybnik Reservori. Chemosphere, 51: 723-733. Doi: 10.1016/S0045-6535(03)00187-5.##MacDonald, D.D., Ingersoll, C.G., and Berger, T.A., 2000. Development and evaluation of consensus-based sediment quality guidelines for freshwater ecosystems. Archives of Environment Contamination and Toxicology, 39: 20- 31. Doi: 10.1007/s002440010075.##Miller, J.R. and Orbock Miller , S.M., 2007. Contaminated rivers : A Geomorphological-Geochemical Approach to Site Assessment and Remediation, Springer, Dordreeht, The Netherlands, 432 p.##Montgomery, W.C. 2006. Environmental Geology. McGraw Hill. New York, New York, US, 576 p.##De Mora, S.D. and Sheikholeslami, M.R., 2002. ASTP: Contaminant Screening Program: Final report: Interpretation of Caspian Sea sediment data. Caspian Environment Program (CEP), 27 p.##Moreno, M., Albertelli, G. and Fabiano, M., 2009. Nematode response to metal, PAHs and organic enrichment in tourist marinas of the mediterranean sea. Marine Pollution Bulletin, 58: 1192–1201. Doi:10.1016/J.Marpolbul.2009.03.016.##Persaud, D., Jaagumagi, R. and Hayton, A., 1993. Guidelines for the protection and management of aquatic sediment quality in Ontario. Ministry of Environment and Energy, Queen's Printer for Ontario, Canada, 39 p.##Sakan, S., Dević, G., Relić, D., Andelkovic, I., Sakan, N. and Dordevic, D., 2015. Evaluation of sediment contamination with heavy metals: the importance of determining appropriate background content and suitable element for normalization. Environmental Geochemistry and Health, 37: 97–113. Doi: 10.1007/s10653-014-9633-4.##Seshan, B.R.R., Natesan, U. and Deepthi, K., 2010. Geochemical and statistical approach for evaluation of heavy metal pollution in core sediments in southeast coast of India. International Journal of Environmental Science and Technology, 7 (2): 291–306. Doi:10.1007/BF03326139.##Shajan, K.P., 2001. Geochemistry of bottom sediments from a river-estuary-shelf mixing zone on the tropical southwest coast of India. Bulletin of the Geological Survey of Japan, 52(8): 371-382. Doi: 10.9795/bullgsj.52.371.##Sharbaty, S., 2011. Two dimensional simulation of flow pattern in Gorgan Bay by using Mike21 software. Journal of Water and Soil Conservation, 18(4): 241-246.##Suresh, G., Ramasamy, V., Meenakshisundaram, V., Venkatachalapathy, R. and Ponnusamy, V., 2011. Influence of mineralogical and heavy metal composition on natural radionuclide concentrations in the river sediments, Applied Radiation and Isotopes, 69(10):1466-1474, Doi: 10.1016/j.apradiso.2011.05.020.##Taheri, M., Yazdani Foshtomi, M., Noranian1 M. and Mira S.S., 2012. Spatial distribution and biodiversity of macrofauna in the southeast of the Caspian Sea, Gorgan Bay in relation to environmental conditions, Ocean Science Journal, 47(2): 113-122. Doi:10.1007/s12601-012-0012-8.##Woitke, P., Wellmitz, J., Helm, D., Kube, P., Lepom, P. and Litheraty, P., 2003. Analysis and assessment of heavy metal pollution in suspended solids and sediments of the river Danube. Chemosphere, 51: 633–642. 2. Doi: 10.1016/S0045-6535(03)00217-0.##Yu, K.C., Tsal, L.J., Chen, S.H. and Ho, S.T., 2001. Chemical binding of heavy metals in anionic river sediments. Water Research, 35(17): 4086-4096. Doi:10.1016/S0043-1354(01)00126-9. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ مقایسه و ارزیابی بازده استخراج و فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی آستاگزانتین مستخرج از میکروجلبک هماتوکوکوس (Haematococcus pluvialis) با استفاده از حلال استون و تکنیک ترکیبی اسید-استون Comparison and evaluation of extraction efficiency and antioxidant activity of astaxanthin extracted from Haematococcus microalgae (Haematococcus pluvialis) using acetone solvent and acid-acetone combined technique 1 1 هدف از تحقیق حاضر، استخراج، صابونی‌‌کردن و خالص‌‌سازی رنگدانه آستاگزانتین از میکروجلبک هماتوکوکوس (Haematococcus pluvialis) و ارزیابی فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی (فعالیت مهار رادیکال آزاد DPPH و کاهندگی یون فریک) آن بود. جهت استخراج از دو روش منفرد (استخراج با استفاده از حلال استون یا ACE) و ترکیبی (استخراج به‌وسیله پیش‌‌تیمار با اسیدکلریدریک و سپس استخراج با استون یا HCl-ACE) استفاده گردید. مطابق نتایج، مقدار آستاگزانتین (میلی‌‌گرم بر گرم) مستخرج با دو روش استون (ACE) و پیش‌‌تیمار حاوی اسیدکلریدریک (HCl-ACE) در مراحل استخراج، صابونی‌‌کردن و خالص‌‌سازی نهایی به‌ترتیب 09/4 (65/13%)، 49/8 (30/28%)، 59/14 (65/48%) و 49/9 (65/31%)، 59/13 (30/45%) و 09/25 (65/83%) بود. فعالیت مهار رادیکال آزاد DPPH آستاگزانتین استخراج‌‌شده با دو روش ACE و HCl-ACE (غلظت 300-50 میکروگرم بر میلی‌‌لیتر) به‌ترتیب در دامنه 26/76-25/66 و 06/94-39/85 درصد متغیر بود. این مقادیر برای قدرت کاهندگی یون فریک به‌ترتیب در بازه جذب 75/0-61/0 و 92/0-78/0 در طول موج 700 نانومتر قرار داشت. رنگدانه استخراج‌‌شده با استفاده از روش ترکیبی (نسبت به روش منفرد) به صورت معنی‌‌داری دارای فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی بیشتری بود (05/0>p). علاوه‌براین، در هر دو آزمون، با افزایش غلظت آستاگزانتین تا 100 میکروگرم بر میلی‌‌لیتر، روند فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی، به صورت افزایشی و سپس ثابت ثبت شد (عدم اختلاف معنی‌‌دار بین غلظت‌‌های 200 و 300 میکروگرم بر میلی‌‌لیتر). مقایسه فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی آستاگزانتین با آنتی‌‌اکسیدان‌‌های مصنوعی نشان داد که رنگدانه استخراج‌‌شده با روش ترکیبی (در غلظت‌‌های بالا) فعالیت نزدیکتر یا بیشتری نسبت بهBHA  و BHT دارد. مطابق یافته‌‌‌‌ها، روش ترکیبی (اسید-استون) در مقایسه با روش منفرد (استون) می‌‌تواند بازده استخراج و فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی این رنگدانه را بهبود بخشد. بنابراین، روش مورد استفاده جهت استخراج و خالص‌‌سازی آستاگزانتین، به صورت بالقوه‌‌ای بازده استخراج و فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی آن را تحت تائیر قرار می‌‌دهد و با انتخاب روش استخراج بهینه، می‌‌توان دو شاخص مذکور را در رنگدانه ارتقاء داد. 2 The aim of the present study was to extract, saponify and purify astaxanthin pigment from Haematococcus microalgae (Haematococcus pluvialis) and evaluate its antioxidant activity (DPPH free radical scavenging activity and reduction of ferric ions). For extraction, two single (extraction using acetone solvent or ACE) and combined (extraction by pretreatment with hydrochloric acid and then extraction with acetone or HCl-ACE) methods were used. According to the results, amount of extracted astaxanthin (mg/g) by two methods of acetone (ACE) and hydrochloric acid pretreatment (HCl-ACE), in the extraction, saponification and final purification stages were 4.09 (13.65%), 8.49 (28.30%), 14.59 (48.65%) and 9.49 (31.65%), 13.59 (45.30%) and 25.09 (83.65%), respectively. DPPH free radical inhibition activity of extracted astaxanthin with two ACE and HCl-ACE methods (50 to 300 μg/ml) ranged from 66.25 to 76.26% and 85.39 to 94.06%, respectively. These values for ferric ion reduction power were in the absorption range of 0.61 to 0.75 and 0.78 to 0.92 at the wavelength of 700 nm, respectively. The pigment extracted using the combined method (compared to the single method) had significantly more antioxidant activity (p<0.05). In addition, in both tests, increasing the concentration of astaxanthin up to 100 μg/ml, the trend of antioxidant activity was recorded as increasing and then constant (no significant difference between the concentrations of 200 and 300 μg/ml). Comparison of the antioxidant activity of astaxanthin with synthetic antioxidants showed that the pigment extracted by combination method (at high concentrations) had the activity closer or even more than BHA and BHT. According to the findings, the combined method (acid-acetone) compared to the single method (acetone) can improve the extraction efficiency and antioxidant activity of this pigment. Therefore, the method used for the extraction and purification of astaxanthin potentially affects its extraction efficiency and antioxidant activity, and by choosing the extraction optimum method, the mentioned two indicators can be improved in the pigment. 99 112 2021/05/272022/05/42020/03/252022/06/202020/09/192022/02/232022/03/202022/02/28 1400/12/9 2022/09/12022/09/12020/05/62022/07/302022/09/12022/09/12022/09/12022/09/1 1401/6/10 رضا صفری Reza Safari پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران Iran safari1351@gmail.com حسن نصراله زاده hasan Nasrollahzadeh پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران Iran hnsaravi@gmail.com سهیل ریحانی پول Soheyl Reyhani Poul گروه فراوری محصولات شیلاتی، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران Iran soheylreyhani@gmail.com زهرا یعغوب زاده Zahra Yaghoubzadeh پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران Iran za_yaghoub@yahoo.com مرضیه رضایی Marzieh Rezaei پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران Iran rmarzieh92@gmail.com Haematococcus microalgae Astaxanthin Extraction efficiency Antioxidant activity میکروجلبک هماتوکوکوس آستاگزانتین بازده استخراج فعالیت آنتی‌‌اکسیدانی ##Ambati, R. R., Phang, S. M., Ravi, S., and Aswathanarayana, R. G. 2014. Astaxanthin: Sources, extraction, stability, biological activities and its commercial applications—A review. Marine drugs, 12(1), 128-152. DOI: 10.3390/md12010128##Binsan, W., Benjakul, S., Visessanguan, W., Roytrakul, S., Tanaka, M., and Kishimura, H. 2008. Antioxidative activity of Mungoong, an extract paste, from the cephalothorax of white shrimp (Litopenaeus vannamei). Food Chemistry, 106(1), 185-193. DOI: 10.1016/j.foodchem.2007.05.065##Chen, H. M., and Meyers, S. P. 1982. Extraction of astaxanthin plgment from crawfish waste using a soy oil process. Journal of Food Science, 47(3), 892-896. DOI: 10.1111/j.1365-2621.1982.tb12739.x##Cerón, M. C., García-Malea, M. D. C., Rivas, J., Acien, F. G., Fernández, J. M., Del Río, E., and Molina, E. 2007. Antioxidant activity of Haematococcus pluvialis cells grown in continuous culture as a function of their carotenoid and fatty acid content. Applied microbiology and biotechnology, 74(5), 1112-1119. DOI: 10.1007/s00253-006-0743-5##Dong, S., Huang, Y., Zhang, R., Wang, S., and Liu, Y. 2014. Four different methods comparison for extraction of astaxanthin from green alga Haematococcus pluvialis. The Scientific World Journal, 1-7. DOI: 10.1155/2014/694305##Dewati, P. R., Rohman, A., and Budiman, A. 2020. A Preliminary Study of Extraction and Purification Processes of Astaxanthin from Haematococcus pluvialisas a Natural Antioxidant. In IOP Conference Series: Materials Science and Engineering (Vol. 778, No. 1, p. 012032). IOP Publishing. DOI: 10.1088/1757-899X/778/1/012032##Irna, C., Jaswir, I., Othman, R., and Jimat, D. N. 2018. Comparison between high-pressure processing and chemical extraction: Astaxanthin yield from six species of shrimp carapace. Journal of dietary supplements, 15(6), 805-813. DOI: 10.1080/19390211.2017.1387885##Kang, C. D., and Sim, S. J. 2007. Selective extraction of free astaxanthin from Haematococcus culture using a tandem organic solvent system. Biotechnology progress, 23(4), 866-871. DOI: 10.1021/bp0700354##Liu, X., and Osawa, T. 2007. Cis astaxanthin and especially 9-cis astaxanthin exhibits a higher antioxidant activity in vitro compared to the all-trans isomer. Biochemical and biophysical research communications, 357(1), 187-193. DOI: 10.1016/j.bbrc.2007.03.120##Liu, X. J., Wu, Y. H., Zhao, L. C., Xiao, S. Y., Zhou, A. M., and Liu, X. 2011. Determination of astaxanthin in haematococcus pluvialis by first-order derivative spectrophotometry. Journal of AOAC International, 94(6), 1752-1757. DOI: 10.5740/jaoacint.10-177##Liu, Z. W., Zeng, X. A., Cheng, J. H., Liu, D. B., and Aadil, R. M. 2018. The efficiency and comparison of novel techniques for cell wall disruption in astaxanthin extraction from Haematococcus pluvialis. International Journal of Food Science & Technology, 53(9), 2212-2219. DOI: 10.1111/ijfs.13810##Miki, W. 1991. Biological functions and activities of animal carotenoids. Pure and applied chemistry, 63(1), 141-146. DOI: 10.1351/pac199163010141##Mayne, S. T. 1996. Beta‐carotene, carotenoids, and disease prevention in humans. The FASEB Journal, 10(7), 690-701. DOI: 10.1096/fasebj.10.7.8635686##Macías-Sánchez, M. D., Mantell, C., Rodriguez, M. D. L., De La Ossa, E. M., Lubián, L. M., and Montero, O. 2009. Comparison of supercritical fluid and ultrasound-assisted extraction of carotenoids and chlorophyll a from Dunaliella salina. Talanta, 77(3), 948-952. DOI: 10.1016/j.talanta.2008.07.032##Molino, A., Rimauro, J., Casella, P., Cerbone, A., Larocca, V., Chianese, S., and Musmarra, D. 2018. Extraction of astaxanthin from microalga Haematococcus pluvialis in red phase by using generally recognized as safe solvents and accelerated extraction. Journal of biotechnology, 283, 51-61. DOI: 10.1016/j.jbiotec.2018.07.010##Ou, B., Hampsch-Woodill, M., and Prior, R. L. 2001. Development and validation of an improved oxygen radical absorbance capacity assay using fluorescein as the fluorescent probe. Journal of agricultural and food chemistry, 49(10), 4619-4626. DOI: 10.1021/jf010586o##Ranga Rao, A. 2011. Production of astaxanthin from cultured green alga Haematococcus pluvialis and its biological activities (Doctoral dissertation, University of Mysore).##Sarada, R., Vidhyavathi, R., Usha, D., and Ravishankar, G. A. 2006. An efficient method for extraction of astaxanthin from green alga Haematococcus pluvialis. Journal of agricultural and food chemistry, 54(20), 7585-7588. DOI: 10.1021/jf060737t##Sindhu, S., and Sherief, P. M. 2011. Extraction, characterization, antioxidant and anti-inflammatory properties of carotenoids from the shell waste of arabian red shrimp Aristeus alcocki, ramadan 1938. In The open Conference proceedings journal (Vol. 2, No. 1). DOI: 10.2174/2210289201102010095##Sun, W., Lin, H., Zhai, Y., Cao, L., Leng, K., and Xing, L. 2015. Separation, Purification, and Identification of (3S, 3′ S)- trans-Astaxanthin from Haematococcus pluvialis. Separation Science and Technology, 50(9), 1377-1383. DOI:10.1080/01496395.2014.976873##Tan, Y., Ye, Z., Wang, M., Manzoor, M. F., Aadil, R. M., Tan, X., and Liu, Z. 2021. Comparison of Different Methods for Extracting the Astaxanthin from Haematococcus pluvialis: Chemical Composition and Biological Activity. Molecules, 26(12), 3569. DOI: 10.3390/molecules26123569##Valduga, E., Valério, A., Tatsch, P. O., Treichel, H., Furigo, A., and Di Luccio, M. 2009. Assessment of cell disruption and carotenoids extraction from Sporidiobolus salmonicolor (CBS 2636). Food and Bioprocess Technology, 2(2), 234-238. DOI: 10.1007/s11947-008-0133-3##Yuan, J. P., and Chen, F. 2000. Purification of trans-astaxanthin from a high-yielding astaxanthin ester-producing strain of the microalga Haematococcus pluvialis. Food Chemistry, 68(4), 443-448. DOI: 10.1016/S0308-8146(99)00219-8##Zulueta, A., Esteve, M. J., and Frígola, A. 2009. ORAC and TEAC assays comparison to measure the antioxidant capacity of food products. Food chemistry, 114(1), 310-316. DOI: 10.1016/j.foodchem.2008.09.033 ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ تأثیر افزودن ویتامین C، آستازانتین و لسیتین سویا به جیره غذایی بر قابلیت لقاح و شاخص‌های آنتی‌اکسیدانی مایع تخمدانی مولدین ماده ماهی آزاد دریای خزر (Salmo caspius) Effects of dietary adding vitamin C, astaxanthin, and soybean lecithin on fertilization ability and antioxidant indices in the ovarian fluids of Caspian trout (Salmo caspius) female broodstock 1 1 در تحقیق حاضر، اثرات افزودن ویتامین C، آستازانتین و لسیتین سویا به جیره غذایی بر قابلیت لقاح (درصد لقاح و تخم‌های چشم‌زده) و فعالیت آنزیم‌های سوپراکسید دیسموتاز (SOD)، کاتالاز (CAT) و گلوتاتیون پراکسیداز (GPx) مایع تخمدانی ماهی آزاد دریای خزر (Salmo caspius) بررسی شد. بدین‌منظور، 9 جیره آزمایشی مختلف: C0A0L0 (صفر میلی‌‌گرم در کیلوگرم ویتامین C، صفر میلی‌‌گرم در کیلوگرم آستازانتین و صفر درصد لسیتین سویا)، C300A50L0، C700A100L0، C0A50L6، C300A100L6، C700A0L6، C0A100L9، C300A0L9 و C700A50L9 فرموله شد و مولدین (05/0±51/2 کیلوگرم) به ‌مدت چهار ماه تغذیه شدند. پس از حصول رسیدگی جنسی و تخم‌کشی، مایع تخمدانی برای سنجش فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی (AAE) و بررسی قابلیت لقاح آن، جدا شد. از مخلوط اسپرمی 9 مولد نر برای سنجش قابلیت لقاح استفاده شد. نتایج حاکی از افزایش هماوری نسبی و AAE مایع تخمدانی بود. کمترین هماوری نسبی (38±640 تعداد تخمک در کیلوگرم وزن مولد)، فعالیت آنزیم‌های SOD، CAT و GPx (به‌ترتیب 60/67±33/816 واحد در میلی‌‌لیتر، 40/0±29/1 نانومول در دقیقه در میلی‌‌لیتر و 08/0±06/1 نانومول در دقیقه در میلی‌‌لیتر) در مایع تخمدانی ماهیان گروه C0A0L0 مشاهده شد که با سایر تیمارها اختلاف معنی‌داری داشت (05/0p<). بالاترین درصد لقاح و درصد تخم‌های چشم‌زده در تیمار C300A100L6 (به‌ترتیب 13/5±66/91 درصد و 3/1±63/87 درصد) به‌دست آمد که با تیمار آب شیرین (به‌ترتیب 16/4±66/77 درصد و 1/5±86/47 درصد) اختلاف معنی‌داری داشتند (05/0p<). طبق نتایج این تحقیق افزودن 100 میلی‌‌گرم در کیلوگرم آستازانتین به همراه حداقل 300 میلی‌‌گرم در کیلوگرم ویتامین C و حداقل 6 درصد لسیتین سویا می‌تواند موجب افزایش هماوری نسبی، قابلیت لقاح‌پذیری و AAE مایع تخمدانی ماهی آزاد دریای خزر شود. 2 In this study, the effects of dietary addition of vitamin C, astaxanthin, and lecithin on the fertility ability (percentage of fertilization and eyed-eggs) and activity of SOD, CAT and GPx in the ovarian fluids of Caspian trout (Salmo caspius) were investigated. For this purpose, nine different experimental diets: C0A0L0 (0 mg kg-1 vitamin C, 0 mg kg-1 astaxanthin and 0% soybean lecithin), C300A50L0, C700A100L0, C0A50L6, C300A100L6, C700A0L6, C0A100L9, C300A0L9, and C700A50L9 were formulated and the broodstocks (2.51±0.05 kg) were fed for four months. After sexual maturation and spawning, the ovarian fluids were isolated to measure the activity of antioxidant enzymes (AAE) and to evaluate its fertilization ability. The sperm mixture of 9 male broodstocks was used to measure fertilization ability. The results showed an increase in the relative fecundity and AAE in ovarian fluid. The lowest relative fecundity (680±38 eggs per Kg of broodstock weight) and SOD, CAT, and GPx (816.33±67.60 u/ml, 1.29±0.40 nmol/min/ml and 1.06±0.08 nmol/min/ml, respectively) were observed in C0A0L0 which significantly different from other treatments (p<0.05). The highest percentage of fertilization and eyed-eggs were obtained in C300A100L6 (91.66±5.13% and 87.63±1.3%, respectively) which significantly different from the freshwater treatment (77.66±4.16% and 47.86±5.1%, respectively; p<0.05). According to the results of this research, adding of 300 mg kg-1 vitamin C with 100 mg kg-1 astaxanthin and 6% lecithin can increase the relative fecundity, fertilization ability and AAE in ovarian fluids of Caspian brown trout. 113 127 2021/05/272022/05/42020/03/252022/06/202020/09/192022/02/232022/03/202022/02/282022/07/31 1401/5/9 2022/09/12022/09/12020/05/62022/07/302022/09/12022/09/12022/09/12022/09/12022/09/1 1401/6/10 فراز پنجوینی Faraz Panjvini دانشگاه ارومیه Iran f.panjvini@urmia.ac.ir کوروش سروی مغانلو Kourosh Sarvi Moghanlou دانشگاه ارومیه Iran k.sarvimoghanlou@urmia.ac.ir راحله طهماسبی Raheleh Tahmasebi جهاد دانشگاهی واحد آذربایجان غربی Iran r.t.tahmasebi@gmail.com احمد ایمانی Ahmad Imani دانشگاه ارومیه Iran a.imani@urmia.ac.ir Antioxidant enzyme Astaxanthin Eyed-eggs Fertilization Ovarian fluids Soybean lecithin Vitamin C آستازانتین تخم چشم‌زده آنزیم آنتی‌اکسیدانی لسیتین سویا لقاح مایع تخمدانی ویتامین C ##آق، ن. و ایرانی، ع،. 1399. بررسی اثرات رژیم‌های نوری مختلف بر رشد و رسیدگی جنسی آزادماهی دریای خزر(Salmo caspius). مجله علمی شیلات ایران. ۲۹ (۶):۱۰-۱. URL: http://isfj.ir/article-1-2058-fa.html##صیادبورانی، م.، مقصودیه کهن، ح.، صیادبورانی، م.، زحمتکش کومله، ع.، ولی پور، ع.، دقیق روحی، ج. و عموزاده عمرانی، م.، 1391. بررسی امکان پرورش ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius) در تراکم‌های مختلف با استفاده از آب دریای خزر. نشریه توسعه آبزی پروری، ۶ (۲): ۵۵-۴۷. URL: https://aqudev.liau.ac.ir/article-1-104-fa.html##قادری فهلیانی، ز.، فلاحتکار، ب.، علاف نویریان، ح. و شفائی پور، آ. 1394. اثرات ال-اسکوربیل-2-پلی فسفات به عنوان منبع ویتامین C بر شاخص‌های تولید مثلی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله پژوهش‌های جانوری، 28 (4): 513-508. URL: https://animal.ijbio.ir/article_827.html##Agh, N. and Irani, A., 2021. Effects of Artemia powder in Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) broodstock diet on the egg quality. Journal of Aquaculture Development, 15, 1-13. Doi: 10.52547/aqudev.15.2.1##Ahmadi, M., Bazyar, A., Safi, S., Ytrestøyl, T. and Bjerkeng, B., 2006. Effects of dietary astaxanthin supplementation on reproductive characteristics of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Applied Ichthyology, 22, 388-394. Doi: 10.1111/j.1439-0426.2006.00770.x##Billard, R., 1983. Effects of coelomic and seminal fluids and various saline diluents on the fertilizing ability of spermatozoa in the rainbow trout, Salmo gairdneri. Reproduction, 68, 77-84. Doi: 10.1530/jrf.0.0680077##Billard, R., 1992. Reproduction in rainbow trout: sex differentiation, dynamics of gametogenesis, biology and preservation of gametes. Aquaculture, 100, 263-298. Doi: 10.1016/0044-8486(92)90385-X##Billard, R. and Cosson, M.P., 1992. Some problems related to the assessment of sperm motility in freshwater fish. Journal of Experimental Zoology, 261, 122-131. DOI: 10.1002/jez.1402610203##Blickley, T.M., Matson, C.W., Vreeland, W.N., Rittschof, D., Di Giulio, R.T. and Mcclellan-Green, P.D., 2014. Dietary CdSe/ZnS quantum dot exposure in estuarine fish: bioavailability, oxidative stress responses, reproduction, and maternal transfer. Aquatic toxicology, 148, 27-39. Doi: 10.1016/j.aquatox.2013.12.021##Chen, Y.J., Yuan, R.M., Liu, Y.J., Yang, H.J., Liang, G.Y. and Tian, L.X., 2015. Dietary vitamin C requirement and its effects on tissue antioxidant capacity of juvenile largemouth bass, Micropterus salmoides. Aquaculture, 435, 431-436. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2014.10.013##Ciji, A., Akhtar, M., Tripathi, P.H., Pandey, A., Rajesh, M. and Kamalam, B.S., 2021. Dietary soy lecithin augments antioxidative defense and thermal tolerance but fails to modulate non-specific immune genes in endangered golden mahseer (Tor putitora) fry. Fish & shellfish immunology, 109, 34-40. Doi: 10.1016/j.fsi.2020.11.031##Coffman, M.A. and Goetz, F.W., 1998. Trout ovulatory proteins are partially responsible for the anti-proteolytic activity found in trout coelomic fluid. Biology of Reproduction, 59, 497-502. Doi: 10.1095/biolreprod59.3.497##Dabrowski, K., Ciereszko, R., Blom, J. and Ottobre, J., 1995. Relationship between vitamin C and plasma concentrations of testosterone in female rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Fish physiology biochemistry, 14, 409-414. Doi: 10.1007/BF00003378##Dawood, M.A. and Koshio, S., 2016. Vitamin C supplementation to optimize growth, health and stress resistance in aquatic animals. Reviews in Aquaculture, Doi: 10, 334-350. DOI: 10.1111/raq.12163##Diogo, P., Martins, G., Gavaia, P., Pinto, W., Dias, J., Cancela, L. and Martínez‐Páramo, S., 2015. Assessment of nutritional supplementation in phospholipids on the reproductive performance of zebrafish, Danio rerio (Hamilton, 1822). Journal of Applied Ichthyology, 31, 3-9. Doi: 10.1111/jai.12733##Dong, J., Li, C., Dai, D., Zhang, M., Gao, Y., Li, X., Li, M., Zhang, J., Wang, X. and Zhou, C., 2021. Protective effects of astaxanthin from Haematococcus pluvialis on the survival and oxidative stress of zebrafish embryos induced by microcystin-LR. Journal of Applied Phycology, 33, 2261-2271. Doi: 10.1007/s10811-021-02448-6##Geffen, A. and Evans, J., 2000. Sperm traits and fertilization success of male and sex-reversed female rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, 182, 61-72. Doi: 10.1016/S0044-8486(99)00248-3##Goth, L., 1991. A simple method for determination of serum catalase activity and revision of reference range. Clinica Chimica Acta, 196, 143-151. Doi: 10.1016/0009-8981(91)90067-M##Hatef, A., Niksirat, H. and Alavi, S.M.H., 2009. Composition of ovarian fluid in endangered Caspian brown trout, Salmo trutta caspius, and its effects on spermatozoa motility and fertilizing ability compared to freshwater and a saline medium. Fish Physiology and Biochemistry, 35, 695-700. Doi: 10.1007/s10695-008-9302-6##Hossen, M.S., Reza, A., Rakhi, S.F., Takahashi, K. and Hossain, Z., 2014. Effect of phospholipids in broodstock diets on serum calcium level, gamete quality and spawning of threatened Bagrid catfish gulsha, Mystus cavasius. International Journal of Research in Fisheries Aquaculture, 4, 70-76. Doi: 10.37745/ijfar.15##Ibiyo, L.M.O., Atteh, L.J.O., Omotosho, J.O. & Madu, C.T. 2007. Profitability of an economic diet in practical fish farming: a case study of vitamin C inclusion in the diet of Heterobranchus longifilis fingerlings. 21st Annual Conference of the Fisheries Society of Nigeria (FISON). Calabar, Nigeria: Fisheries Society of Nigeria. URL: http://hdl.handle.net/1834/37775##Izquierdo, M., Fernandez-Palacios, H. and Tacon, A., 2001. Effect of broodstock nutrition on reproductive performance of fish. Aquaculture, 197, 25-42. Doi: 10.1016/S0044-8486(01)00581-6##Jamali, H., Ahmadifard, N., Noori, F., Gisbert, E., Estevez, A. and Agh, N., 2019. Lecithin-enriched Artemia combined with inert diet and its effects on reproduction and digestive enzymes of Aequidens rivulatus. Aquaculture, 511, 734253. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2019.734253##Jenabi Haghparast, R., Sarvi Moghanlou, K., Mohseni, M. and Imani, A., 2019. Effect of dietary soybean lecithin on fish performance, hemato-immunological parameters, lipid biochemistry, antioxidant status, digestive enzymes activity and intestinal histomorphometry of pre-spawning Caspian brown trout (Salmo trutta caspius). Fish & shellfish immunology, 91, 50-57. Doi: 10.1016/j.fsi.2019.05.022##Johnson, S.L., Borziak, K., Kleffmann, T., Rosengrave, P., Dorus, S. and Gemmell, N.J., 2020. Ovarian fluid proteome variation associates with sperm swimming speed in an externally fertilizing fish. Journal of Evolutionary Biology, 33, 1783-1794. Doi: 10.1111/jeb.13717##Kazemi, E., Nazari, S., Sourinejad, I., Pourkazemi, M., Paknejad, H. and Eslamloo, K., 2021. Effect of different dietary zinc sources on seminal plasma enzymatic activity, antioxidant, and immune-related gene expression in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture International, 1-20. Doi: 10.1007/s10499-021-00778-3##Khara, H., Sayyadborani, M. and Sayyadborani, M., 2016. Effects of α-tocopherol (vitamin E) and ascorbic acid (vitamin C) and their combination on growth, survival and some haematological and immunological parameters of Caspian brown trout, Salmo Trutta Caspius juveniles. Turkish Journal of Fisheries Aquatic Sciences, 16, 385-393. Doi: 10.4194/1303-2712-v16_2_18##Lim, K.C., Yusoff, F.M., Shariff, M. and Kamarudin, M.S., 2017. Astaxanthin as feed supplement in aquatic animals. Reviews in Aquaculture, 10, 738-773. Doi: 10.1111/raq.12200##Lin, Z., Qi, C., Han, F., Chen, X., Qin, C., Wang, C., Wang, X., Qin, J. and Chen, L., 2020. Selecting suitable phospholipid source for female Eriocheir sinensis in pre-reproductive phase. Aquaculture, 528, 735610. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2020.735610##Litvak, M.K. and Trippel, E.A., 1998. Sperm motility patterns of Atlantic cod (Gadus morhua) in relation to salinity: effects of ovarian fluid and egg presence. Canadian Journal of Fisheries Aquatic Sciences, 55, 1871-1877. Doi: 10.1139/f98-093##Maneii, K., Oujifard, A., Ghasemi, A. and Mozanzadeh, M.T., 2019. Reproductive performance and vitellogenin mRNA transcript abundance in the hepatopancreas of female Litopenaeus vannamei fed diets with different soy lecithin content. Animal reproduction science, 211, 106228. Doi: 10.1016/j.anireprosci.2019.106228##Marklund, S. and Marklund, G., 1974. Involvement of the superoxide anion radical in the autoxidation of pyrogallol and a convenient assay for superoxide dismutase. European journal of biochemistry, 47, 469-474. Doi: 10.1111/j.1432-1033.1974.tb03714.x##Martins, G., Diogo, P., Santos, T., Cabrita, E., Pinto, W., Dias, J. and Gavaia, P.J., 2020. Microdiet formulation with phospholipid modulate zebrafish skeletal development and reproduction. Zebrafish, 17, 27-37. Doi.org/10.1089/zeb.2019.1794##Mohammed, A., Al-Suwaiegh, S. and Al-Shaheen, T., 2019. Effects of follicular fluid components on oocyte maturation and embryo development in vivo and in vitro. Advances in Animal and Veterinary Sciences, 7, 346-355. Doi: 10.17582/journal.aavs/2019/7.5.346.355##Mohebbi, A., Nematollahi, A., Dorcheh, E.E. and Asad, F.G., 2012. Influence of dietary garlic (Allium sativum) on the antioxidative status of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture Research, 43, 1184-1193. Doi: 10.1111/j.1365-2109.2011.02922.x##Myers, J., Bradford, A., Hallas, V., Lawson, L., Pitcher, T., Dunham, R. and Butts, I., 2020a. Channel catfish ovarian fluid differentially enhances blue catfish sperm performance. Theriogenology, 149, 62-71. Doi: 10.1016/j.theriogenology.2020.03.022##Myers, J.N., Senior, A., Zadmajid, V., Sørensen, S.R. and Butts, I.A.E., 2020b. Associations between ovarian fluid and sperm swimming trajectories in marine and freshwater teleosts: a meta-analysis. Reviews in Fisheries Science Aquaculture. 28, 322-339. Doi: 10.1080/23308249.2020.1739623##Paglia, D.E. and Valentine, W.N., 1967. Studies on the quantitative and qualitative characterization of erythrocyte glutathione peroxidase. The Journal of Laboratory Clinical Medicine, 70, 158-169. Doi: 10.5555/uri:pii:0022214367900765##Palma, J., Andrade, J.P. and Bureau, D., 2017. The impact of dietary supplementation with astaxanthin on egg quality and growth of long snout seahorse (Hippocampus guttulatus) juveniles. Aquaculture Nutrition, 23, 304-312. Doi: 10.1111/anu.12394##Poston, H.A., 1991. Response of Atlantic salmon fry to feed-grade lecithin and choline. The Progressive Fish-Culturist, 53, 224-228. Doi: 10.1577/1548-8640(1991)053<0224:ROASFT>2.3.CO;2##Ramsden, C.S., Smith, T.J., Shaw, B.J. and Handy, R.D., 2009. Dietary exposure to titanium dioxide nanoparticles in rainbow trout, (Oncorhynchus mykiss): no effect on growth, but subtle biochemical disturbances in the brain. Ecotoxicology, 18, 939-951. Doi: 10.1007/s10646-009-0357-7##Rashidian, G., Rainis, S., Prokić, M.D. and Faggio, C., 2021. Effects of different levels of carotenoids and light sources on swordtail fish (Xiphophorus helleri) growth, survival rate and reproductive parameters. Natural Product Research, 35, 3675-3686. Doi: 10.1080/14786419.2020.1723091##Ribeiro, J.C., Braga, P.C., Martins, A.D., Silva, B.M., Alves, M.G. and Oliveira, P.F., 2021. Antioxidants present in reproductive tract fluids and their relevance for fertility. Antioxidants, 10, 1441. Doi: 10.3390/antiox10091441##Saleh, N.E., Wassef, E.A., Kamel, M.A., El-Haroun, E.R. and El-Tahan, R.A., 2021. Beneficial effects of soybean lecithin and vitamin C combination in fingerlings gilthead seabream (Sparus aurata) diets on; fish performance, oxidation status and genes expression responses. Aquaculture, 546, 737345. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2021.737345##Seyfettinoglu, S., Sahin, G., Akdogan, A., Tavmergen, E.N., Akcay, Y., Sozmen, E. and Tavmergen, E., 2022. Total antioxidant capacity and oxidative stress in follicular fluid and embryo cell culture media, their role in fertilization and embryo selection in IVF cycles. Authorea Preprints. Doi: 10.22541/au.164864722.23396384/v1##Sui, L.Y., Wu, X., Wille, M., Cheng, Y. and Sorgeloos, P., 2009. Effect of dietary soybean lecithin on reproductive performance of Chinese mitten crab Eriocheir sinensis (H. Milne-Edwards) Broodstock. Aquaculture International, 17, 45-56. Doi: 10.1007/s10499-008-9178-6##Suloma, A., Tahoun, A. and Mabrok, R., 2017. Development of Brood-stock Diets for Nile tilapia Under Hapa-in-Pond Hatchery System; Optimal Dietary Vitamin C Level for the Optimum Reproductive Performance and Fry Survival. Journal of Aquaculture Research & Development, 2, 2. Doi: 10.4172/2155-9546.S2-010##Thompson, K., Muzinic, L., Christian, T., Webster, C., Manomaitis, L. and Rouse, D., 2003. Lecithin requirements of juvenile Australian red claw crayfish Cherax quadricarinatus. Aquaculture Nutrition, 9, 223-230. Doi: 10.1046/j.1365-2095.2003.00246.x##Tizkar, B., Kazemi, R., Alipour, A., Seidavi, A., Naseralavi, G. and Ponce-Palafox, J.T., 2015. Effects of dietary supplementation with astaxanthin and β-carotene on the semen quality of goldfish (Carassius auratus). Theriogenology, 84, 1111-1117. Doi: 10.1016/j.theriogenology.2015.06.011##Tizkar, B., Soudagar, M., Bahmani, M., Hosseini, S.A., Chamani, M., Seidavi, A., Sühnel, S. and Ponce-Palafox, J.T., 2016. Effects of dietary astaxanthin and β-carotene on gonadosomatic and hepatosomatic indices, gonad and liver composition in goldfish Carassius auratus (Linnaeus, 1758) broodstocks. Latin American Journal of Aquatic Research, 44, 363-370. Doi: 10.3856/vol44-issue2-fulltext-17##Tocher, D.R., Bendiksen, E.Å., Campbell, P.J. and Bell, J.G., 2008. The role of phospholipids in nutrition and metabolism of teleost fish. Aquaculture, 280, 21-34. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2008.04.034##Turner, E. and Montgomerie, R., 2002. Ovarian fluid enhances sperm movement in Arctic charr. Journal of Fish Biology, 60, 1570-1579. Doi: 10.1111/j.1095-8649.2002.tb02449.x##Wang, S., He, G., Chen, M., Zuo, T., Xu, W. and Liu, X., 2017. The role of antioxidant enzymes in the ovaries. Oxidative medicine cellular longevity, 2017. Doi: 10.1155/2017/4371714##Wu, X., Cheng, Y., Sui, L., Zeng, C., Southgate, P.C. and Yang, X., 2007. Effect of dietary supplementation of phospholipids and highly unsaturated fatty acids on reproductive performance and offspring quality of Chinese mitten crab, Eriocheir sinensis (H. Milne-Edwards), female broodstock. Aquaculture, 273, 602-613. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2007.09.030##Yong, A.S.K., Seoka, M., Takaoka, O., Ji, S.C., Biswas, A.K., Takii, K. and Kumai, H., 2007. Effect of dietary docosahexaenoic acid and soybean lecithin on spawning performance, egg and broodfish fatty acid and lipid class of striped knifejaw, Oplegnathus fasciatus. Aquaculture Science, 55, 449-458. Doi: 10.11233/aquaculturesci1953.55.449##Zadmajid, V., Myers, J.N., Sørensen, S.R. and Butts, I.A.E., 2019. Ovarian fluid and its impacts on spermatozoa performance in fish: a review. Theriogenology, 132, 144-152. Doi: 10.1016/j.theriogenology.2019.03.021 ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ بررسی مولکولی کوی هرپس ویروس (Koi Herpesvirus) در تلفات مزارع پرورشی ماهیان گرمابی استان خوزستان Molecular study of Koi herpesvirus in warm-water fish farms mortality in Khuzestan province 1 1 هرپس ویروس نوع 3 (CyHV-3)، عامل اصلی بیماری واگیردار کوی هرپس ویروس (KHVD) در ماهی کپور معمولی و کوی در سرتاسر جهان است. بدین منظور از 60 قطعه ماهی کپور معمولی از مزارع تلفات دار و مزارع استان خوزستان که در چند سال اخیر تلفات گزارش کرده بودند، طی سال‌های 1400-1396، جهت ردیابی بیماری ویروس هرپس کوی به روش مولکولی نمونه برداری شد. جهت افزایش بار ویروس در بافت‌‌های آبشش و کلیه، به ازای سه ماهی، سه نمونه آبشش و سه نمونه کلیه به صورت جداگانه با یکدیگر مخلوط شدند. استخراج DNA بافت با استفاده از کیت تجاری شرکت رهازیست پادتن[1] طبق دستورالعمل کیت انجام شد. سپس آزمایش واکنش زنجیره‌‌ای پلی‌‌مراز آشیانه‌‌ای[2] با استفاده از مسترمیکس Amplicon و پرایمرهای مربوط به ژن پلی‌‌مراز انجام شد. نتایج حاصل از Nested PCR نشان داد که 3 نمونه (دو نمونه آبشش و یک نمونه بافت کلیه) از 40 نمونه مخلوط شده مورد آزمایش دارای باند 339 کیلوجفت باز بودند و به عنوان نمونه مثبت در نظر گرفته شدند. تعیین توالی محصولات PCR و آنالیز اولیه Blast نشان داد که توالی یکی از نمونه‌‌های مثبت به توالی‌‌های مربوط به CyHV-3 شباهت داشت. نتایج هم‌ترازی ردیف‌‌های نوکلئوتیدی و درخت فیلوژنی این توالی، کوی هرپس ویروس را با قطعیت تشخیص داده و با شماره دسترسی LC713276 در بانک ژن جهانی ثبت گردید.   [1] Raha‌‌‌‌ Zist Padtan [2] Nested PCR 2 Herpesvirus type 3 (CyHV-3) is the main cause of contagious koi herpesvirus infectious (KHVD) in common carp and koi worldwide. For this purpose, 60 pieces of common carp from farms with losses and farms from Khuzestan province that reported losses in the last few years were sampled during 2017 to 2021 for detection of Koi herpes virus disease by molecular method. In order to increase the virus load in gill and kidney tissues, three gills and kidney samples were separately mixed together for each three fish. DNA extraction from the tissue was performed using the commercial kit of Raha Zist Padtan Company according to the instructions. Afterward, Nested PCR test was performed using Amplicon master mix and polymerase gene primers. The results of the Nested PCR showed that 3 samples (two gill samples and one kidney tissue sample) out of 40 mixed samples tested had 339 kbp band and were considered as positive samples. Sequencing of PCR products and preliminary Blast analysis showed that the sequence of one of the positive samples was similar to the CyHV-3. The results of the alignment of the nucleotide rows and the phylogeny tree of this sequence confirmed Koi herpesvirus and it was registered in the World Gene Bank with the accession number of LC713276. 129 138 2021/05/272022/05/42020/03/252022/06/202020/09/192022/02/232022/03/202022/02/282022/07/312022/07/22 1401/4/31 2022/09/12022/09/12020/05/62022/07/302022/09/12022/09/12022/09/12022/09/12022/09/12022/09/1 1401/6/10 صفیه شهوازی Safieh Shahvazi گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز Iran safiyeh.shahvazi@yahoo.com آناهیتا رضایی Annahita Rezaie گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز Iran a.rezaie@scu.ac.ir مسعود رضا صیفی آباد شاپوری Masood Reza Seifi Abad Shapouri گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز Iran masoudrs@scu.ac.ir مجتبی علیشاهی Mojtaba Alishahi گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز Iran alishahim@scu.ac.ir مینا آهنگرزاده Mina Ahangarzadeh پژوهشکده آبزی پروری آب‌های جنوب کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران Iran m.ahangarzadeh@yahoo.com Koi herpesvirus disease Common carp Nested PCR Khuzestan Province بیماری کوی هرپس ویروس کپور معمولی Nested PCR استان خوزستان ##طاهری میرقائد، ع.، عنایتی، الف.، سلطانی، م.، علیشاهی، م.، رحمتی هولاسو، ه.، حقیقی خیابان اصل، ع. و حسینی شکرابی، س.پ.، 1398. ردیابی بیماری کوی هرپس ویروس (KHVD) در برخی مزارع کپور ماهیان کشور: مطالعه مولکولی و آسیب شناسی. مجله دامپزشکی ایران، 15(2)، 78-69.##سازمان شیلات ایران.، 1400. سالنامه آماری 1399-1394. معاونت برنامه‌ریزی و مدیریت منابع، 64 صفحه.##Bergmann, S.M., Sadowski, J., Kiełpiński, M., Bartłomiejczyk, M., Fichtner, D., Riebe, R., Lenk, M. and Kempter, J., 2010. Susceptibility of koi× crucian carp and koi× goldfish hybrids to koi herpesvirus (KHV) and the development of KHV disease (KHVD). Journal of Fish Diseases, 33(3), 267-272. DOI:10.1111/j.1365-2761.2009.01127.x ##Donohoe, O., 2013. An investigation into the existence of Cyprinid Herpesvirus 3 encoded donomicroRNAs. Dissertation, University of Dublin.356 P.##Eide, K.E., Miller-Morgan, T., Heidel, J.R., Kent, M.L., Bildfell, R.J., LaPatra, S., Watson, G. and Jin, L., 2011. Investigation of koi herpesvirus latency in koi. Journal of Virology, 85(10), 4954-4962. DOI:10.1128/JVI.01384-10##Engelsma, M.Y., Way, K., Dodge, M.J., Voorbergen-Laarman, M., Panzarin, V., Abbadi, M., El-Matbouli, M., Skall, H.F., Kahns, S. and Stone, D.M., 2013. Detection of novel strains of cyprinid herpesvirus closely related to koi herpesvirus. Diseases of Aquatic Organisms, 107(2), 113-120. DOI: 10.3354/dao02666##Fijan, N., Spring viremia of carp and other viral diseases of warm-water fish. In: Woo PTK, Bruno DW (eds) Fish diseases and disorders,Vol.3.CAB International, Oxon, pp 177–244.##FAO. 2020. The State of World Fisheries and Aquaculture 2020. Sustainability in action. Rome. 224 P.DOI.org/10.4060/ca9229en##Gilad, O., Yun, S., Zagmutt-Vergara, F.J., Leutenegger, C.M., Bercovier, H. and Hedrick, R.P., 2004. Concentrations of a Koi herpesvirus (KHV) in tissues of experimentally-infected Cyprinus carpio koi as assessed by real-time TaqMan PCR. Diseases of aquatic organisms, 60(3), 179-187.##Gotesman, M., Soliman, H., Besch, R. and El-Matbouli, M., 2014. In vitro inhibition of Cyprinid herpesvirus-3 replication by RNAi. Journal of Virological Methods, 206, 63-66. DOI:org/10.1016/j.jviromet.2014.05.022##Hedrick, R.P., Gilad, O., Yun, S., Spangenberg, J.V., Marty, G.D., Nordhausen, R.W., Kebus, M.J., Bercovier, H. and Eldar, A., 2000. A herpesvirus associated with mass mortality of juvenile and adult koi, a strain of common carp. Journal of Aquatic Animal Health, 12(1), 44-57. Doi:org/10.1577/1548-8667(2000)012<0044:AHAWMM>2.0.CO;2##Ilouze, M., Davidovich, M., Diamant, A., Kotler, M. and Dishon, A., 2011. The outbreak of carp disease caused by CyHV-3 as a model for new emerging viral diseases in aquaculture: a review. Ecological research, 26, 885‒892. DOI:org/10.1007/s11284-010-0694-2##Ito, T., Sano, M., Kurita, J., Yuasa, K. and Iida, T., 2007. Carp larvae are not susceptible to koi herpesvirus. Fish pathology, 42, 107–109. DOI:10.3147/JSFP.42.107##King, A.M.Q., Adams, M.J., Carstens, E.B. and Lefkowitz, E.J., 2012. Virus taxonomy, Ninth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses. Academic Press, Elsevier; 1338 P.##Li, Y., Zheng, S., Wang, Q., Bergmann, S.M., Zeng, W., Wang, Y., Liu, C. and Shi, C., 2017. Detection of koi herpesvirus (KHV) using a monoclonal antibody against Cyprinus carpio IgM. Archives of virology, 162(8), 2381-2385. DOI: 10.1007/s00705-017-3357-6##Maclachlan, N.J. and Dubovi, E., 2016. Herpesvirales. In: Fenner's veterinary virology, 5th ed. Academic press, Davis, California, USA. pp 179-202.##Miyazaki, T., Kuzuya, Y., Yasumoto, S., Yasuda, M. and Kobayashi, T., 2008. Histopathological and ultrastructural features of Koi herpesvirus (KHV)-infected carp Cyprinus carpio, and the morphology and morphogenesis of KHV. Diseases of Aquatic Organisms, 80(1), 1-11. DOI: 10.3354/dao01929##Pokorova D., Piackova V., Cizek A., Reschova S., Hulova J., Vicenova M. and Vesely, T., 2007. Tests for the presence of Koi herpes virus (KHV) in common carp (Cyprinus carpio carpio) and Koi carp (Cyprinus carpio koi) in the Czech Republic. Veterinary Medicine, 52(12), 562-568. DOI:10.17221/1883-VETMED##Pokorova, D., Vesely, T., Piackova, V., Reschova, S. and Hulova, J., 2005. Current knowledge on koi herpesvirus (KHV): a review. Veterinarni Medicina, 50(4), 139-148. DOI: org/10.17221/5607-VETMED##Rahmati-Holasoo, H., Zargar, A., Ahmadivand, S., Shokrpoor, S., Ezhari, S. and Ebrahimzadeh Mousavi, H.A., 2016. First detection of koi herpesvirus from koi, Cyprinus carpio L. experiencing mass mortalities in Iran: clinical, histopathological and molecular study. Journal of Fish Disease, 39(10), 1153-63. Doi:10.1111/jfd.12448. Epub 2016 Jan 27.##Rathore, G., Kumar, G., Raja Swaminathan, T. and Swain, P., 2012. Koi herpes virus: a review and risk assessment of Indian aquaculture. Indian Journal of Virology, 23(2), 124-133. DOI: 10.1007/s13337-012-0101-4##Reed, A. N., 2014. The conserved biology of herpesvirus latency: a study in cyprinid herpesvirus 3. Dissertation, University of Oregon State.##Waltzek T.B., Kelley G.O., Yun S.C., McDowell T.S. and Hedrick, R.P., 2004. Relationships of Koi Herpesvirus (KHV) to Herpes-like Viruses of Fish and Amphibians. In: Proceedings, 35th Annual Conference, International Association for Aquatic Animal Medicine, University of California, 16-17 June 2004.##Wolf, K., 1988. Fish Viruses and Fish Viral Diseases. Cornell University Press, Ithaca, NY. 473P. ##