1402 32 2 136 134

مقاله علمی – پژوهشی:‌ اثر غوطه‌وری تخم در سطوح مختلف تیامین محلول در آب بر بهبود شاخص‌های انکوباسیون و رشد لارو فیل‌ماهی (Huso huso) پرورشی Effect of egg immersion at different levels of water-soluble thiamine on improving the incubation indices and larvae growth of farmed beluga (Huso huso) 1 1 تیامین یا ویتامین B1 به عنوان یک کوآنزیم مهم در متابولیسم چربی، کربوهیدرات و پروتئین نقش حیاتی در مراحل جنینی تخم و توسعه لارو ایفا می‌کند. به‌منظور بررسی اثر تیامین بر شاخص‌های انکوباسیون فیل‌ماهی (Huso huso) تخم‌های حاصل از تکثیر مولدین نر و ماده پرورشی پس از لقاح و در زمان جذب آب به‌ترتیب با چهار تیمار و سه تکرار شامل غلظت های شاهد (صفر میلی‌گرم تیامین در لیتر آب)، T500 (500 میلی‌گرم تیامین در لیتر آب)، T1000 (1000 میلی‌گرم تیامین در لیتر آب) و T1500 (1500 میلی‌گرم تیامین در لیتر آب) به مدت 30 دقیقه تحت درمان با تیامین محلول در آب به روش غوطه‌وری قرار گرفتند. سپس پنج مرتبه با آب تازه شستشو داده و تا زمان تفریخ در انکوباتورهای مخصوص نگهداری شدند. شاخص‌های انکوباسیون و رشد لارو از 24 ساعت پس از لقاح تخم تا 44 روز پس از شروع تغذیه فعال لارو بررسی شدند. نتایج نشان داد بیشترین و کمترین بازماندگی تخم از 24 ساعت پس از لقاح تا زمان تفریخ به ترتیب در تیمار T500و تیمار شاهد مشاهده شد (P<0.05). طول و وزن لارو در شروع تغذیه فعال تفاوت معنی‌داری بین تیمارها نداشت (P>0.05). اما تیامین در سطوح T1000 و T1500 توانست منجر به افزایش معنی‌دار طول، وزن و وزن کسب شده در انتهای دوره شود (P<0.05). غوطه‌وری تخم در تیامین محلول توانست منجر به افزایش نرخ رشد ویژه و درصد افزایش وزن بدن در دو تیمار T1000و T1500 در روز 36 پس از شروع تغذیه فعال شود (P<0.05). ضریب تبدیل غذایی، کارایی پروتئین و کارایی چربی در تیمارهای  T500 و شاهد کاهش معنی‌داری نسبت به دو غلظت بالاتر داشت (P<0.05). کمترین درصد بازماندگی از لارو زمان شروع تغذیه فعال تا 44 روز بعد در تیمار شاهد مشاهده شد (P<0.05). نتایج این تحقیق بیان می‌کند که غوطه‌وری تخم در محلول تیامین می‌تواند منجر به افزایش رشد و بازماندگی لارو شود، به‌همین منظور پیشنهاد می‌شود که تخم فیل‌ماهی پس از لقاح در محلول تیامین حداقل به‌میزان 1000 میلی گرم در لیتر قرار داده شود.   2 Thiamine, or vitamin B1, is an important coenzyme in lipid, carbohydrate, and protein metabolism that plays a vital role in the embryonic stages and larval development. To evaluate the effects of thiamine on incubation indices of beluga Huso huso, eggs obtained from farmed males and females after fertilization were immersion in water-soluble thiamine with four treatments and two replicates including control (0 mg thiamine per liter of water), T500 (500 mg thiamine per liter of water), T1000 (1000 mg thiamine per liter of water) and T1500 (1500 mg thiamine per liter of water) during water hardening for 30 minutes. Then, eggs were washed five times with fresh water and kept in special incubators until hatching. Incubation indices and larval growth were investigated 24 hours after fertilization to 44 days after starting feeding. Results showed the highest and lowest egg survival at 24 hours after fertilization until hatching were observed in T1500 and control, respectively (P<0.05). At the start of the feeding the results showed no significant difference in larval weight and length (P>0.05). However, thiamine increased the weight, length, and weight gain in T1000 and T1500 at the end of the experiment (P<0.05). Egg immersion in soluble Thiamine led to an increase in the specific growth rate and body weight in T1000 and T1500 at day 36 after the start of feeding (P<0.05). The food conversion ratio, protein efficiency ratio, and lipid efficiency ratio significantly decreased in control and T500 compared to other treatments (P<0.05). The lowest larval survival was observed in control at the beginning of feeding until day 44 (P<0.05). The results of this study indicate that immersion of eggs in thiamine solution can increase larval growth and survival. Therefore, it is recommended that beluga eggs immersion in thiamine solution at least 1000 mg L-1 thiamine after fertilization 1 12 2022/05/18 1401/2/28 2023/03/30 1402/1/10 محمود محسنی Mahmoud Mohseni انستیتو تحقیقات بین‌المللی ماهیان خاویاری، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران. Iran mahmoudmohseni73@gmail.com ذبیح اله پژند Z. Pazhand انستیتو تحقیقات بین‌المللی ماهیان خاویاری، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران. Iran ساره قیاسی S. Ghiasi دانش آموخته دانشگاه گیلان، دانشکده علوم کشاورزی صومعه سرا، رشت، ایران. Iran میرحامد سید حسنی M.H. انستیتو تحقیقات بین‌المللی ماهیان خاویاری، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران. Iran Seyed Hasani محمد پوردهقانی M. Pordehghani انستیتو تحقیقات بین‌المللی ماهیان خاویاری، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران. Iran رضا قربانی واقعی R. Ghorbani Vagheie انستیتو تحقیقات بین‌المللی ماهیان خاویاری، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران. Iran هوشنگ یگانه H. Yeganeh انستیتو تحقیقات بین‌المللی ماهیان خاویاری، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران. Iran سجاد قاسمیان S. Ghasemian انستیتو تحقیقات بین‌المللی ماهیان خاویاری، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران. Iran Vitamin B1 hatching rate larval survival incubation Huso huso ویتامین B1 درصد تخم‌گشایی بازماندگی لارو غوطه‌‌وری تخم انکوباسیون فیل‌‌ماهی ##محسنی، م.، پورکاظمی، م.، کرمی نسب، م. و راست روان، م.ا.، 1397. بررسی اثرات سطوح مختلف پروتئین جیره غذایی بر میزان رشد، ترکیب شیمیایی بدن و قابلیت هضم مواد مغذی در بچه ماهی آزاد دریای خزر (Salmo caspius). مجله علمی شیلات ایران، 28(2): 165-178.##Abdelghany, A.E. and Ahmad, H.M., 2002. Effects of feeding rates on growth and production of Nile tilapia, common carp and silver carp polycultured in fertilized ponds. Aquaculture Research, 33: 415–423. Doi: 10.1046/j.1365-2109.2002.00689.x##Amcoff, P., Akerman, G., Borjeson, H., Tjarnlund, U., Norrgren, L. and Balk, L., 2000. Hepatic activities of thiamine-dependent enzymes, glucose-6-phosphate dehydrogenase and cytochrome P4501A in Baltic salmon (Salmo salar) yolk-sac fry after thiamine treatment. Aquatic Toxicology, 48: 391-402. Doi: 10.1016/S0166-445X(00)00089-8.##Barnes, M.E., Zehfus, M.H., Schumacher, J.A., Stock, K.S., Farrokhi, F. and Nutter, R.L., 2001. Initial observations on thiamine hydrochloride of eggs of landlocked fall Chinook salmon. North American Journal of Aquaculture, 63: 338-342. Doi: 10.1577/1548-8454(2001)063<0338 :IOOTHT>2.0.CO;2## ##Bettendorff, L., 2013. The chemistry, biochemistry and metabolism of thiamin (vitamin B1). In: Preedy, V.R., (ed) B Vitamins and Folate: Chemistry, Analysis, Function and Effects. Royal Society of Chemistry, London, England. pp. 71-92.##Brown, S.B., Brown, L.R., Brown, M., Moore, K., Villella, M., Fitzsimons, J.D., Williston, B., Honeyfield, D.C., Hinterkopf, J.P., Tillitt, D.E., Zaijeck, J.L. and Wolgamood, M., 2005. Effectiveness of egg immersion in aqueous solutions of thiamine and thiamine analogs for reducing early mortality syndrome. Journal of Aquatic Animal Health, 17: 106-112. Doi: 10.1577/H03-075.1.##Carvalho, P.S.M., Tillitt, D.E., Zajicek, J.L., Dale, R.A., Honeyfield, D.C., Fitzsimons, J.D. and Brown, S.B., 2009. Thiamine deficiency effects on the vision and foraging ability of lake trout fry. Journal of Aquatic Animal Health, 21:315-325. Doi: 10.1577/H08-025.1.##Chalupnicki, M.C., Ketola, H.G., Zehfus, M.H., Crosswait, J.R. and Rinchard, J., 2012. Thiamine status of rainbow smelt (Osmerus mordax) eggs in the Great Lakes USA. Journal of Freshwater Ecology, 27: 31-39. Doi: 10.1080/02705060.2011.603204.##Chebanov, M. and Billard, R., 2001. The culture of sturgeons in Russia: production of juveniles for stocking and meat for human consumption. Aquatic Living Resource, 14: 375-381. Doi: 10.1016/S0990-7440(01)01122-6.##Fisher, J.P., Spitsbergen, J.M., Iamonte, T., Little, E.E. and DeLonay, A. 1995. Pathological and behavioral manifestations of the "Cayuga Syndrome" a thiamine deficiency in larval landlocked Atlantic salmon. Journal of Aquatic Animal Health, 7: 269-283. Doi: 10.1577/1548-8667(1995)007<0269:PABMOT>2.3.CO;2.##Fitzsimons, J.D., Brown,Fitzsimons, J.D., Brown, S.B., Williston, B., Williston, G., Brown, L.R, Moore, K., Honeyfield, D.C. and Tillitt, D.E., 2009. Influence of thiamine deficiency on lake trout larval growth, foraging, and predator avoidance. Journal of Aquatic Animal Health, 21: 302-314. Doi: 10.1577/H08-019.1.##Fitzsimons, J.D., Williston, B., Vandenbyllaardt, L., El-Shaarawi, A. and Brown, S.B., 2012. Use of a thiamine antagonist to evaluate the effects of thiamine deficiency on lake trout embryonic development. Journal of Great Lakes Research, 38: 236-242. Doi: 10.1016/j.jglr.2012.02.015.##Folch, J., Lees, M. and Sloane Stanley, G.H., 1957. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues. Journal of biology and Chemistry, 226(1): 497-509.##Futia, M. H. and Rinchard, J., 2019. Evaluation of adult and offspring thiamine deficiency in salmonine species from Lake Ontario. Journal of Great Lakes Research, 45: 811-820. Doi: 10.1016/j.jglr.2019.05.010.##Futia, M.H., Hallenbeck, S., Noyes, A.D., Honeyfield, D.C., Eckerlin, G.E. and Rinchard, J., 2017. Thiamine deficiency and the effectiveness of thiamine treatments through broodstock injections and egg immersion on Lake Ontario steelhead trout. Journal of Great Lakes Research, 43: 352-358. Doi: 10.1016/j.jglr.2017.01.001.##Ghiasi, S., Falahatkar, B., Arslan, M. and Dabrowski, K., 2017. Physiological changes and reproductive performance of Sterlet sturgeon Acipenser ruthenus injected with thiamine. Animal reproduction science, 178: 23-30. Doi: 10.1016/j.anireprosci.2017.01.005.##Graff, E., Waagbo, R., Fivelstad, S., Vermeer, C., Lie1, O. and Klundeby, A., 2002. A multivariate study on the effects of dietary vitamin K, vitamin D3 and calcium, and dissolved carbon dioxide on growth, bone minerals, vitamin status and health performance in smolting Atlantic salmon Salmo salar L. Journal of Fish Diseases, 25:599-614. Doi: 10.1046/j.1365-2761.2002.00403.x.##Harder, A.M., Ardren, W.R., Evans, A.N., Futia, M.H., Kraft, C.E., Marsden, J.E. and Christie, M.R., 2018. Thiamine deficiency in fishes: causes, consequences, and potential solutions. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 28: 865-886. Doi: 10.1007/s11160-018-9538-x.##Harder, A.M., Willoughby, J.R., Ardren, W.R. and Christie, M.R., 2020. Among‐family variation in survival and gene expression uncovers adaptive genetic variation in a threatened fish. Molecular Ecology, 29: 1035-1049. Doi: 10.1111/mec.15334.##Hung, S.S., 1989. Choline requirement of hatchery-produced juvenile white sturgeon (Acipenser transmontanus). Aquaculture, 2: 183-194. Doi: 10.1016/0044-8486(89)90031-8.##Ketola, H.G., Bowser, P.R., Wooster, G.A., Wedge, L.R. and Hurst, S.S., 2000. Effects of thiamine on reproduction of Atlantic salmon and a new hypothesis for their extirpation in Lake Ontario. Transactions of the American Fisheries Society, 129: 607-612. Doi: 10.1577/1548-8659(2000)129<0607:EOTORO>2.0.CO;2.##Ketola, H.G., Isaacs, G.R., Robins, J.S. and Lloyd, R.C., 2008. Effectiveness and retention of thiamine and Its analogs administered to steelhead and landlocked Atlantic salmon. Journal of Aquatic Animal Health, 20: 29-38. Doi: 10.1577/H07-012.1.##Lee, B., Jaroszewska, M., Dabrowski, K., Czesny, S. and Rinchard, J., 2009. Effects of vitamin B1 (Thiamine) deficiency in lake trout alevins and preventive treatments. Journal of Aquatic Animal Health, 21: 290-301.Doi: 10.1577/H07-053.1.##Mohseni, M., Hamidoghli, A. and Bai, S.C., 2021. Organic and inorganic dietary zinc in beluga sturgeon (Huso huso): Effects on growth, hematology, tissue concertation and oxidative capacity. Aquaculture, 539: 736672. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2021.736672.##Moore, B.J., Hung, S.S. and Medrano, J.F. 1988. Protein requirement of hatchery-produced juvenile white sturgeon (Acipenser transmontanus). Aquaculture, 3: 235-245. Doi: 10.1016/0044-8486(88)90262-1##Morito, C.L.H., Conrad, D.H. and Hilton, J.W., 1986. The thiamin deficiency signs and requirement of rainbow trout (Salmo gairdneri, Richardson). Journal of Fish Physiology and Biochemistry, 1: 93-104. Doi: 10.1007/BF02290209.##Romanova, E.M., Mukhitova, M.E., Romanov, V.V., Lyubomirova, V.N. and Spirina, E.V., 2019. Factors for increasing the survival rate of catfish fertilized eggs and larvae. Paper presented at the at IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, Makassar, South Sulawesi, Indonesia 7-8 August 2019, Doi: 10.1088/1755-1315/341/1/012197.##Ronyai, A., Peteri, A. and Radics, F., 1990. Cross breeding of starlet and Lena river sturgeon. Aquaculture Hungrica (Szarwas), 6: 13-18.##Ruban, G., Khodorevskaya, R. and Shatunovskii, M., 2019. Factors influencing the natural reproduction decline in the beluga (Huso huso, Linnaeus, 1758), Russian sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii, Brandt & Ratzeburg, 1833), and stellate sturgeon (A. stellatus, Pallas, 1771) of the Volga–Caspian basin: A review. Journal of Applied Ichthyology, 35: 387-395. Doi: 10.1111/jai.13885.##Tillitt, D.E. and Zajicek, J., 2005. Development of thiamine deficiencies and early mortality syndrome in lake trout Salvelinus namaycusch by feeding experimental and feral fish diets containing thiaminase. Journal of Aquatic Animal Health, 17: 4-12. Doi: 10.1577/H03-078.1.##Werner, M.R., Rook, B. and Greil1, R., 2006. Egg-thiamine status and occurrence of early mortality syndrome (EMS) in Atlantic Salmon from the St. Marys River. Michigan. Journal of Great Lakes Research, 32: 293-305. DOI: 10.3394/0380-1330(2006)32 [293:ESAOOE] 2.0.CO;2. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ ارزیابی زی‌‌توده، رشد، زنده‌‌مانی و ترکیبات بیوشیمیایی جلبک Tetraselmis tetrathele با استفاده از پساب‌های لبنیات و مخمر Evaluation of biomass, growth, viability, and biochemical composition of Tetraselmis tetrathele using dairy and yeast wastewaters 1 1 جلبک تک‌‌سلولی Tetraselmis tetrathele یکی از گونه‌‌های آب شور است که به علت ارزش غذایی زیاد و ترکیبات زیست‌‌فعال و سهولت در کشت، استفاده گسترده‌‌ای در صنعت و آبزی‌پروری دارد. در این مطالعه کشت انبوه جلبک T. tetrathele با استفاده از پساب کارخانه‌های شیر و مخمر با هدف ارزیابی رشد، زنده‌‌مانی و ترکیبات بیوشیمیایی (پروتئین، چربی، کربوهیدرات) مورد بررسی قرار گرفت. آزمایش به صورت یک طرح کاملاً تصادفی با 6 تیمار شامل؛ کانوی، پساب‌های خام شیر و مخمر به عنوان محیط کشت هر کدام در دو حالت رقیق (5 میلی‌لیتر به ازاء هر لیتر از محیط کشت) و غلیظ (10 میلی‌لیتر به ازاء هر لیتر از محیط کشت)، طی یک دوره 11 روزه انجام شد. نتایج نشان داد که این گونه از توانایی رشد در پساب خام شیر و مخمر برخوردار است، اما بیشترین تراکم‌‌سلولی در تیمار کانوی رقیق (تراکم106×12/9 سلول در هر میلی‌لیتر و رشد ویژه 87/0 در روز) و بیشترین میزان رشد ویژه جلبک در تیمار مخمر رقیق (تراکم106×68/6 سلول در هر میلی‌لیتر و رشد ویژه 84/2 در روز)، مشاهده شد. این در حالی است که تیمار پساب خام شیر رقیق زنده‌‌مانی بیشتری نسبت به سایر تیمارها داشت. بیشترین میزان پروتئین و چربی در تیمار پساب خام شیر غلیظ (به‌ترتیب 6/44 درصد و 71/9 درصد از وزن خشک) و بیشترین مقدار کربوهیدرات نیز در تیمار مخمر غلیظ (49/31 درصد از وزن خشک) به‌دست آمد. براساس میزان رشد ویژه، زنده‌مانی و ترکیبات بیوشیمیایی می‌‌توان نتیجه‌‌گیری کرد که پساب‌های شیر و مخمر می‌‌توانند به عنوان محیط کشت مناسب نیمه‌‌صنعتی در پرورش انبوه این جلبک به‌کار برود و برای تولید ترکیبات زیست‌فعال و سوخت‌های زیستی از زی‌توده حاصله توصیه می‌گردد. 2 Tetraselmis tetrathele is a species of saltwater that is widely used in industry and aquaculture due to its high nutritional value, bioactive compounds, and ease of cultivation. In this study, mass cultivation of this species was evaluated using effluent from dairy and yeast factories to evaluate growth, viability, and biochemical compounds (protein, fat, carbohydrate). The experiment was performed in a completely randomized design with six treatments; Conway, raw milk and yeast effluents as culture media, each in two modes, diluted (5 ml per liter of culture medium) and concentrated (10 ml per liter of culture medium) for 11 days. The results showed that this species was able to grow on dairy and yeast wastewaters, but the highest cell density in diluted Conway (9.12 × 106 cells per ml and 0.87 per day) and the highest specific growth rate in diluted yeast (6.68 × 106 cells per ml and 2.84 per day) were measured. However, the diluted raw dairy treatment had more survival than other treatments. The highest amount of protein and fat was obtained in the concentrated dairy treatment (44.6% and 9.71% of dry weight, respectively) and the highest amount of carbohydrates was obtained in the concentrated yeast treatment (31.49% of dry weight). Based on the specific growth rate, viability, and biochemical compositions it can be concluded that dairy and yeast wastewaters can be used as a suitable semi-industrial culture medium for mass cultivation of this species and it is recommended for the production of bioactive compounds and biofuels from the obtained biomass. 13 25 2022/05/182021/11/24 1400/9/3 2023/03/302023/07/1 1402/4/10 امیدوار فرهادیان Omidvar Farhadian دانشگاه صنعتی اصفهان Iran omfarhad@iut.ac.ir شیرین سلطانی سامانی Shirin Soltani Samani دانشگاه صنعتی Iran soltani-sh@gmail.com فاطمه رستمی Fatemeh Rostami دانشگاه صنعتی Iran rostami.1370@yahoo.com امید بیرقدار کشکولی Omid Beyraghdar دانشگاه صنعتی Iran omiid.beyraghdar@iut.ac.ir Wastewater Biochemical composition Dairy and yeast Growth Tetraselmis tetrathele پساب ترکیب بیوشیمیایی شیر و مخمر رشد Tetraselmis tetrathele ##حیدری، ص.، فرهادیان، ا. و صوفیانی، ن.، 1390. تولید زیست توده و حذف آمونیاک و نیتریت از پساب کارگاه پرورش ماهی به‌‌وسیله کشت جلبک سبز سندسموس کوادریکوادا. مجله محیط شناسی، 59: 28-15. ##صفری، ر.، میربخش، م.، غفاری، ه، ، ریحانی پول، س. و رحمتی ، ر.، ابراهیم زاده، مجید. 1401. اثر فاکتورهای دما ،pH و زمان بر پایداری و فعالیت آنتی اکسیدانی آستاگزانتین استخراج شده ازمیکروجلبک هماتوکوکوس Haematococcus pluvialis . مجله علمی شیلات ایران،120-109 (1)31.##فرهادیان، ا. و جعفری، ا.، 1394. تاثیر سختی محیط کشت بر خالص سازی و تشکیل کلونی در جلبک سبز Scenedesmus quadricauda. مجله پژوهش‌‌های گیاهی (مجله زیست شناسی ایران)، 28(5): 1076-1066. ##Abdel-Raouf, N., Al-Homaidan, A. and Ibraheem, I., 2012. Microalgae and wastewater treatment. Saudi Journal of Biological Sciences, 19(3): 257-75. Doi: 10.1016/j.sjbs.2012.04.005##Almomani, F.A. and Örmeci, B., 2016. Performance of Chlorella Vulgaris, Neochloris oleoabundans, and mixed indigenous microalgae for treatment of primary effluent, secondary effluent and centrate. Ecology Engineering, 95: 280-289. Doi: 10.1016/j.ecoleng.2016.06.038 ##Amini Khoeyi, Z., Seyfabadi, J. and Ramezanpour, Z., 2012. Effect of light intensity and photoperiod on biomass and fatty acid composition of the microalgae, Chlorella vulgaris. Aquaculture International, 20: 41-49. Doi: 10.1007/s10499-011-9440-1##Blonskaja, V. and Zub, S., 2009. Possible ways for post treatment of biologically treated wastewater from yeast factory. Journal of Environmental Engineering and Landscape Management, 17: 189-197. Doi: 10.3846/1648-6897.2009.17.189-197##Brown, M.R., Jeffrey, S.W., Volkman, J.K. and Dunstan, G.A., 1997. Nutritional properties of microalgae for mariculture. Aquaculture, 151: 315-331. DOI: 10.1016/S0044-8486(96)01501-3## Campbell, W.H., 1999. Nitrate reductase structure, function and regulation: bridging the gap between biochemistry and physiology. Annual Review of Plant Biology, 50(1):277-303. Doi: 10.1146/annurev.arplant.50.1.277## Carvalho, A.P., Silva, S.O., Baptista, J.M. and Malcata, F.X., 2011. Light requirements in microalgal photobioreactors: an overview of biophotonic aspects. Applied Microbiology and Biotechnology, 89: 1275-1288. Doi: 10.1007/s00253-010-3047-8##Chokshi, K., Pancha, I., Ghosh, A. and Mishra, S., 2016. Microalgal biomass generation by phycoremediation of dairy industry wastewater: An integrated approach towards sustainable biofuel production. Bioresource Technology, 221: 455–460. Doi: 10.1016/j.biortech.2016.09.070##Daneshvar, E., Zarrinmehr, M. J., Koutra, E., Kornaros, M., Farhadian, O. and Bhatnagar, A., 2019. Sequential cultivation of microalgae in raw and recycled dairy wastewater: Microalgal growth, wastewater treatment and biochemical composition. Bioresource Technology, 273: 556-564. Doi: 10.1016/j.biortech.2018.11.059##Fábregas, J., Otero, A., Morales, E.D., Arredondo-Vega, B.O. and Patiño, M., 1998. Modification of the nutritive value of Phaeodactylum tricornutum for Artemia sp. in semicontinuous cultures. Aquaculture, 169:167–176. Doi: 10.1016/s0044-8486(98)00376-7##Harrison, R.K. and Stein, R.L., 1990. Substrate specificities of the peptidyl prolyl ## cis-trans isomerase activities of cyclophilin and FK-506 binding protein: evidence for the existence of a family of distinct enzymes. Biochemistry, 29: 3813-3816. Doi: 10.1021/bi00468a001##Helena, K., Haris, H., Abdu, R.N. and Mimi, Z., 2018. Growth, Proximate Composition and Pigment Production of Tetraselmis chuii Cultured with Aquaculture Wastewater. Journal of Ocean University of China. 17: 641–646. Doi: 10.1007/s11802-018-3428-7##Ji, M.K., Yun, H.S., Park, Y.T., Kabra, A.N., Oh, I.H. and Choi, J., 2015. Mixotrophic cultivation of a microalga Scenedesmus obliquus in municipal wastewater supplemented with food wastewater and flue gas CO2 for biomass production. Journal of Environmental Management. 159: 115–120. Doi: 10.1016/j.jenvman.2015.05.037##Kalyuzhnyi, G. and Murray, R.W., 2005. Ligand effects on optical properties of CdSe nanocrystals. The Journal of Physical Chemistry B, 109: 7012-7021. Doi: 10.1021/jp045352x##Knuckey, R.M., Brown, M.R., Barrett, S.M. and Hallegraeff, G.M., 2002. Isolation of new nanoplanktonic diatom strains and their evaluation as diets for juvenile Pacific oysters (Crassostrea gigas). Aquaculture, 211: 253-274. Doi: 10.1016/S0044-8486(02)00010-8##Kobya, M. and Delipinar, S., 2008. Treatment of the baker's yeast wastewater by electrocoagulation. Journal of Hazardous Materials, 154:1133-1140. Doi: 10.1016/j.jhazmat.2007.11.019. ##Liu, Z.Y., Wang, G.C. and Zhou, B.C., 2008. Effect of iron on growth & lipid accumulation in Chlorella vulgaris. Bioresource Technology, 99: 4717- 4722. Doi: 10.1016/j.biortech.2007.09.073##Martinez, M.E., Sanches, S., Jimenes, J.M., Yousfi, F.E. and Munoz, L., 2000. Nitrogen and phosphorus removal from urban wastewater by the microalgae Scenedesmus obliqus. Bioresource Technology, 73: 263-272. Doi: 10.1016/S0960-8524(99)00121-2##Mercado-Blanco, J., Rodrıguez-Jurado, D., Hervás, A. and Jiménez-Dıaz, R.M., 2004. Suppression of Verticillium wilt in olive planting stocks by root-associated fluorescent Pseudomonas spp. Biological Control, 30: 474-486. Doi: 10.1016/j.biocontrol.2004.02.002##Meyer, E. and Walther, A., 1988. Methods for the estimation of protein, lipid, carbohydrates and chitin levels in freshwater invertebrates. Arch Hydrobiol, 113: 161-177.##Omori, M. and Ikeda, T., 1984. Methods in Marine Zooplankton Ecology. John Wiley, New York. 332 P.##Rice, E.W., Bird. R.B. and Eaton, A.D., 2017. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater, 23rd Edition. American Public Health Association, American Water Works Association, Water Environment Federation, 724 P.##Schüler, L.M., Santos, T., Pereira, H., Duarte, P. and Gangadhar, K.N., 2020. Improved production of lutein and β -carotene by thermal and light intensity upshifts in the marine microalga Tetraselmis sp. CTP4 45.Algal Research, 45: 101732. Doi: 10.1016/j.algal.2019.101732##Shifrin, N.S. and Chisholm, S.W., 1981. Phytoplankton lipids: interspecific differences andeffects of nitrate, silicate and light dark cycles. Phycology, 17: 372-384. Doi: 10.1111/j.1529-8817.1981.tb00865.x##Velichkova, K., Sirakov, I. and Stoyanova, S., 2014. Biomass production and wastewater treatment from aquaculture with Chlorella vulgaris under different carbon sources. Scientific Bulletin: Series F, Biotechnologies, 18: 83-88.##Wang, L.K., Hung, Y-T., Lo, H.H. and Yapijakis, C., 2006. Waste Treatment in the Food Processing Industry. Boca Raton: CRC Press, Florida, USA, 344 P.##Wang, Z., Zhao, Y., Ge, Z., Zhang, H. and Sun, S., 2016. Selection of microalgae for simultaneous biogas upgrading and biogas slurry nutrient reduction under various photoperiods. Journal of Chemical Technology & Biotechnology, 91(7):1982-89. Doi: 10.1002/jctb.4788 ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ مطالعه الگوی رشد نسبی، دوشکلی جنسی و اندازه بلوغ مورفومتریک دو گونه خرچنگ Ocypode rotundata (Miers, 1882) و Austruca iranica (Pretzmann, 1971) در سواحل جزیره قشم، خلیج فارس Study of relative growth pattern, sexual dimorphism, and morphometric maturity of two species crabs Ocypode rotundata (Miers, 1882) and Austruca iranica (Pretzmann, 1971) on the coasts of Qeshm Island, Persian Gulf 1 1 در این مطالعه رشد نسبی، دوشکلی جنسی و اندازه بلوغ مورفومتریک خرچنگ Ocypode rotundata در ساحل جنوب غربی و Austruca iranica در ساحل شمالی جزیره قشم بررسی شدند. نمونه‌ها در بهمن ماه سال 1400 جمع‌آوری شدند. براساس پهنای کاراپاس، خرچنگ‌های جنس نر O. rotundata (1/33 میلی‌متر) و A. iranica (4/12 میلی‌متر) دارای میانگین پهنای کاراپاس بیشتری نسبت به جنس ماده (2/32 میلی‌متر و 2/11 میلی‌متر) بودند. جنس نر و ماده خرچنگ A. iranica در سه صفت (پهنای اولین بند شکمی، پهنای چهارمین بند شکمی و پهنای ششمین بند شکمی) و جنس نر و ماده خرچنگ O. rotundata در چهار صفت ریخت‌سنجی نسبی (طول شکمی، پهنای اولین بند شکمی، پهنای چهارمین بند شکمی و پهنای ششمین بند شکمی) با یکدیگر تفاوت معنی‌دار داشتند (05/0 > p).  مقادیر CW50 (میانگین طول بلوغ جنسی) محاسبه شده براساس بلوغ مرفومتریک برای جنس نر خرچنگ O. rotundata به سه روش معمول، بوت استرپ و بیزین به‌ترتیب برابر با 02/33، 82/32 و 05/33 میلی‌متر بود. برای جنس ماده در هر سه روش برابر با 29 میلی‌متر محاسبه شد. همچنین، مقادیر بلوغ مورفومتریک برآورد شده برای خرچنگ A. iranica در سه روش استفاده شده برای هر جنس تقریباً با هم برابر بودند به‌طوری‌که مقادیر CW50 برای جنس نر و ماده به‌ترتیب 61/11 و 15/9 میلی‌متر به‌دست آمد. براساس نتایج، مقدار CW50 جنس نر در هر دو گونه مورد مطالعه بیشتر از جنس ماده برآورد شد. 2 In this study, relative growth, sexual dimorphism, and morphometric maturity of Ocypode rotundata and Austruca iranica were investigated on western south and northern of Qeshm Island. The samples were collected in February 2021. Based on the carapace width, the males of O. rotundata (33.1 mm) and males of A. iranica (12.4 mm) had average carapace width more than female crabs (32.2 mm and 11.2 mm). The male and female of A. iranica and O. rotundata had significantly different between three (first part of abdomen width, fourth part of abdomen width, and sixth part of abdomen width) and four (abdomen length, first part of abdomen width, and fourth part of abdomen width, sixth part of abdomen width) traits, respectively (p< 0.05). The calculated values of CW50 based on the morphometric maturity for O. rotundata males with three methods of common, Bootstrap and Bayesian were 33.02 mm, 32.82 mm, and 33.05 mm, respectively. This value was 29 mm for female crabs with three methods. Also, the morphometric maturity values for males and females of A. iranica were similar to the three performed methods. The values in the male and female were obtained 11.61 mm and 9.15 mm, respectively. Based on the results, the CW50 value in the male crabs for both studied species was more than the female crabs. 27 46 2022/05/182021/11/242022/11/9 1401/8/18 2023/03/302023/07/12023/07/1 1402/4/10 مجتبی نادری Mojtaba Naderi دانشگاه پیام نور Iran mojtabanaderi1364@yahoo.com یگانه درویش اولادی Yeganeh Darvish Oladi دانشگاه پیام نور Iran rad26401@gmail.com پرویز زارع Parviz Zare دانشگاه گرگان Iran parvizzare58@yahoo.com Morphometric maturity Relative growth Sexual dimorphism Abdomen بلوغ مورفومتریک رشد نسبی دوشکلی جنسی آبدومن ##حاجیانی‌نژاد، ز.، قربانی، ر.، هدایتی، س.ع.ا.، زارع، پ. و نادری، م.، 1401. بررسی برخی پارامترهای پویایی جمعیت خرچنگ Austruca iranica در سواحل شمالی جزیره قشم، بندر درگهان. مجله بهره برداری و پرورش آبزیان. 11(3): 28-13.##ماندگاری، م.ر.، کامرانی، ا.، صفایی، م.، نادری، م. و دلیری، م.، 1400. بررسی مقایسه‌ای رشد، تولیدمثل و رفتار لانه سازی در خرچنگ Austruca sindensis در جنگل‌های مانگرو مناطق بندرعباس و جزیره قشم. پایان نامه. دانشکده علوم و فنون دریایی. دانشگاه هرمزگان. 92 صفحه.##مصلح‌آبادی، ز.، درست‌قول، م. و پورمهدی، م. 1390. بررسی ویژگی‌های مورفومتریک، کاریولوژیک و بلوغ جنسی گونه Portunus plagicus در سواحل خوزستان از آب های خلیج فارس. پایان‌نامه. دانشگاه شهید چمران اهواز.##نادری، م.، حسینی، س.ع.، هدایتی، ع.ا.، پازوکی، ج. و لاسترا، م.، 1396. بررسی رشد، تولیدمثل و رفتار لانه‌سازی در خرچنگ Ocypode rotundata در سواحل جنوب‌غربی جزیره قشم (بندر صلخ). پایان‌نامه. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 154 صفحه.##نادری، م.، حسینی، س.ع.، هدایتی، ع.ا.، پازوکی، ج. و لاسترا، م.، 1397. بررسی برخی از خصوصیات ریخت سنجی، فاکتور وضعیت و پارامترهای رشد در خرچنگ Ocypode rotundata در سواحل جنوب غربی جزیره قشم. مجله بوم شناسی آبزیان. 8(2): 73-61.##نجفی، ع.، شکوری، آ.، گیلان، ع. و نیامیمندی، ن.، 1392. زیست شناسی تولیدمثل خرچنگ شبح با نام علمی Ocypode rotundata در خلیج چابهار. پایان نامه. دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، 72 صفحه.##Araújo, M.S.L.C., Castiglioni, D.S. and Petrônio, A.C., 2012. Width-weight relationship and condition factor of Ucides cordatus (Crustacea, Decapoda, Ucididae) at tropical mangroves of Northeast Brazil. Iheringia, Série Zoologia, Porto Alegre, 102(3):277-284. DOI: 10.1590/S0073-47212012000300005.##Bezerra, A.E.L. and Matthews-Cascona, H., 2007. Population and reproductive biology of the fiddler crab Uca thayeri Rathbun, 1900 (Crustacea: Ocypodidae) in a tropical mangrove from Northeast Brazil. Acta Oecologica, 31:251–258.##Conan, G.Y. and Comeau, M., 1986. Functional maturity and terminal molt of male snow crab, Chionoecetes opilio. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 43: 1710-1719.##Corgos, A., and J. Freire. 2006. Morphometric and gonad maturity in the spider crab Maja brachydactyla: a comparison of methods for estimating size at maturity in species with determinate growth. Journal of Marine Science and Engineering, 63:851–859. DOI: 10.1016/j.icesjms.2006.03.003##Dahl, E., 1953. Some aspects of the ecology and zonation of the fauna on sandy beaches. Oikos, 4: 1-27.##Davie, P.J.F., 1994. Variations in diversity of mangrove crabs in tropical Australia. Memoirs of the Queensland Museum, 36: 55-58.##De Almeida Farias, A.C., Da Silva Castiglioni, D. and José Eduardo Garcia, J.E., 2014. Population structure of the fiddler crab Uca thayeri Rathbun, 1900 (Crustacea, Decapoda, Ocypodidae) in a tropical mangrove. Thalassa, 30 (1): 21–37.##Diaz, H. and Conde, J.E., 1989. Population dynamics and life history of the mangrove crab Aratus pisonii (Brachyura, Grapsidae) in a marine environment. Bulletin of Marine Science, 45: 148-163.##Fernández-Vergaz, V., López Abellán, L.J. and Balguerías, E., 2000. Morphometric, functional and sexual maturity of the deep-sea red crab Chaceon affinis inhabiting Canary Island waters: chronology of maturation. Marine Ecology Progress Series, 204: 169–178. DOI: 10.3354/meps204169.##González-Gurriarán, E. and Freire, J., 1994. Sexual maturity in the velvet swimming crab Necora puber (Brachyura, Portunidae): morphometric and reproductive analyses. ICES Journal of Marine Science, 51: 133–145. DOI: 10.1006/jmsc.1994.1015.##Haley, S.R., 1969. Relative growth and sexual maturity of the Texas ghost crab, Ocypode quadrata (Fabr.) (Brachyura, Ocypodidae). Crustaceana, 17: 285–297.##Hartnoll, R.G., 1969. Mating in Brachyura. Crustaceana, 16: 161–181. DOI: 10.1163/156854069X00420##Hartnoll, R.G., 1974. Variation in growth pattern between some secondary sexual characters in crabs (Decapoda,Brachyura). Crustaceana, 27(2): 151-156. DOI: 10.1163/156854074X00334.##Hartnoll, R.G., 1978. The determination of relative growth in Crustacea. Crustaceana, 34: 281– 293. DOI: 10.1163/156854078X00844.##Hirose, G.L., Fransozo, V., Tropea, C., López-Greco, L.S. and Negreiros-Fransozo, M.L., 2013. Comparison of body size, relative growth and size at onset sexual maturity of Uca uruguayensis (Crustacea: Decapoda: Ocypodidae) from different latitudes in the south-western Atlantic. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom, 93(3):781–788. DOI: 10.1017/S0025315412001038.##Koch, V., Wolff, M. and Diele, K., 2005. Comparative population dynamics of four fiddler crabs (Ocypodidae, genuse Uca) from a north Brazilian mangrove ecocystem. Marine Ecology Progress Series, 291: 177-188. DOI: 10.3354/meps291177.##Ivo, C.T.C., Dias, A.F. and Mota, R.I., 1999. Estudo sobre a biologia do caranguejo-uçá, Ucides cordatus cordatus, (Linnaeus, 1763), capturado no delta do Rio Parnaíba, estado do Piauí. Boletim Tecnico-Científico, 78(1): 7-42. ##Mokhtari, M., Savari, A., Rezai, H., Kochanian, P. and Bitaab, A., 2008. Population ecology of fiddler crab, Uca lactea annulipes (Decapoda: Ocypodidae) in Sirik mangrove estuary, Iran. Estuarine, Coastal and Shelf Science, 76:273–281. DOI: 10.1016/j.ecss.2007.07.010.##Naderloo, R. and Turkay, M., 2012. Decapod crustaceans of the littoral and shallow sublittoral Iranian coast of the Persian Gulf: Faunistics, Biodiversity and Zoogeography. Zootaxa, 67 P.##Naderloo, R., Ebrahimnezhad, S. and Sari, A.R., 2015. Annotated checklist of the decapod crustaceans of the Gulf of Oman, northwestern Indian Ocean. Zootaxa, 4028: 397-412.##Naderloo, R., 2017. Atlas of crabs of the Persian Gulf. Speringer, Switzerland. 440 P.##Naderi, M., Zare, P., Lastra, M. and Pishehvarzad, F., 2018a. First record of ghost crab Ocypode sinensis (Dai Song and Yang, 1985) (Decapoda: Brachyura: Ocypodidae) from Qeshm Island, Persian Gulf, Iran. Cahiers de Biologie Marine, 59: 527-531. DOI: 10.21411/CBM.A.51F168A3.##Naderi, M., Hosseini, S.A., Hedayati, A., Pazooki, J., Zare, P. and Lastra, M., 2018b. Reproductive biology of Ghost crab Ocypode rotundata (Miers, 1882) (Decapoda, Ocypodidae) of Qeshm Island (Persian Gulf). Crustaceana, 91(9): 1039-1059. DOI: 10.1163/15685403-00003804.##Negreiros-Fransozo, M.L., Fransozo, A. and Bertini, B., 2002. Reproductive cycle and recruitment period of Ocypode quadrata (Decapode, ocypode) at a sandy beach in southeastern Brazil. Journal of Crustacean Biology, 22(1): 157–161. DOI: 10.1651/0278-0372(2002)022[0157:RCARPO]2.0.CO;2.##Pinheiro, M.A.A. and Fransozo, A., 1998. Sexual maturity of the speckled swimming crab Arenaeus cribrarius (Lamarck, 1818) (Decapoda, Brachyura, Portunidae), in the Ubatuba littoral, São Paulo state. Crustaceana, 71: 434-452.##Paul, J.M. and Paul, A.J., 1990. Breeding success of sublegal size male red king crab Paralithodes camtschatica (Tilesius, 1815) (Decapoda, Lithodidae). Journal of Shellfish Research, 9: 29-32. ##Paul, A. J., 1992. A review of size at maturity in male tanner (Chionoecetes bairdi) and king (Paralithodes camtschaticus) crabs and the methods used to determine maturity. American Zoologist, 32: 534e540. DOI: 10.1093/icb/32.3.534.##Saeedi, H., Kamrani, E., Nordhaus, I. and Diele, K., 2018. Sediment Temperature Impact on Population Structure and Dynamics of the Crab Austruca iranica Pretzmann, 1971 (Crustacea: Ocypodidae) in Subtropical Mangroves of the Persian Gulf. Wetlands, 38: 539–549. DOI: 10.1007/s13157-018-0998-5.##Saher, N.S., Qureshi, N.A. and Odhano, S., 2019. Relative growth and the onset maturity size analysis of Austruca iranica (Ocypodidae) along the two coastal regions of Sandspit, Karachi, Pakistan. Biharean Biologist, 13(2): 77-84. ##Saher N.U. and Qureshi N.A., 2011. Relative growth and morphological sexual maturity of Ilyoplax frater (Brachyura: Ocypodoidea: Dotillidae) from Mangrove area of Korangi Creek. Pakistan Journal of Zoology, 43: 133-140. ##Sainte-Marie, B., Raymond, S. and Breˆthes, J.C., 1995. Growth and maturation of the benthic stages of male snow crab, Chionoecetes opilio (Brachyura: Majidae). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 52: 903-924.##Sampedro, M.P., González-Gurriarán, E., Freire, J. and Muiño, R., 1999. Morphometry and Sexual Maturity in the Spider Crab Maja Squinado (Decapoda: Majidae) in Galicia, Spain. Journal of Crustacean Biology, 19: (3) 578–592. DOI: 10.2307/1549263.##Somerton, D.A., 1980. A computer technique for estimating the size of sexual maturity in crabs. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 37: 1488-1494.##Somerton, D.A., 1981. Regional variation in the size of maturity of two species of tanner crab (Chionoecetes bairdi and C. opilio) in the eastern Bering Sea, and its use in defining management subareas. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 38: 163-174.##Shih, H.T., Ng, P.K.L., Davie, P.J.F., Schubart, C.D., Turkay, M., Naderloo, R., Jones, D. and Liu M.Y., 2016. Systematics of the family Ocypodidae Rafinesque, 1815 (Crustacea: Brachyura), based on phylogenetic relationships, with a reorganization of subfamily rankings and a review of the taxonomic status of Uca Leach, 1814, sensulato and its subgenera. Raffles Bulletin of Zoology, 64: 139-175. DOI: 10.5281/zenodo.5355087.##Sukumaran, M., 1985. Certain aspects of reproductive biology of the ghost crab, Ocypode platytarsis. (Ph.D. thesis). University of Calicut, kerala, India.##Thurman, C.L., 1985. Evaporative water loss, corporal tempera- ture and the distribution of sympatric fiddler crabs (Uca) from south Texas. Comparative. Biochemistry and Physiology, 119: 279-286.##Viau, V.E., Greco, L.S.L., Bond-Buckup, G. and Rodriguez E.M., 2006 Size at the onset of sexual maturity in the anomuran crab, Aegla uruguayana (Aeglidae). Acta Zoology-Stockholm, 87: 253-264. ##Wenner, A.M., Fusard, C. and Oaten, A., 1974. Size at onset of sexual maturity and growth rate in crustacean populations. Canadian Journal of Zoology, 52: 1095-1106. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ اثر 2-فنوکسی اتانول بر ظرفیت آنزیم‌‌های آنتی‌اکسیدانی در بافت‌‌های مختلف ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss) Effect of 2-phenoxyethanol on antioxidant enzymes capacity in the various tissues of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) 1 1 پژوهش حاضر با هدف ارزیابی اثر داروی بیهوشی 2-فنوکسی اتانول بر ظرفیت آنزیم‌‌های آنتی‌اکسیدانی شامل سوپر اکسید دیسموتاز (SOD)، کاتالاز (CAT) و گلوتاتیون پراکسیداز (GPx) در بافت‌‌های مختلف (مغز، آبشش، کبد، خون و موکوس) ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss) در مراحل مختلف بیهوشی بلافاصله و 24 ساعت پس از بیهوشی صورت گرفت. ابتدا تعداد 180 عدد ماهی با میانگین وزن 8/0±82/5 گرم در 6 گروه (هر گروه با 3 تکرار) تقسیم و در معرض غلظت‌‌های صفر، 2/0، 3/0، 4/0، 5/0 و 6/0 میلی‌‌لیتر در لیتر 2-فنوکسی اتانول برای تعیین حداقل غلظت بیهوش‌کنندگی قرار گرفتند. حداقل غلظت 2-فنوکسی اتانول برای ایجاد بیهوشی، 3/0 میلی‌‌لیتر در لیتر تعیین شد. سپس برای ارزیابی اثر این غلظت از ماده بیهوشی بر ظرفیت آنزیم‌‌های آنتی‌‌اکسیدانی در بافت‌های مختلف ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان، تعداد 72 قطعه ماهی با میانگین وزنی 73/0±79/5 گرم در دو گروه شاهد و آزمایش (هر گروه 36 قطعه ماهی) جایابی شدند. از ماهیان هر دو گروه در زمان‌های صفر (بلافاصله بعد از بیهوشی) و 24 ساعت بعد از بیهوشی، نمونه‌‌‌‌های سرم خون، موکوس پوست و عصاره‌‌های بافتی (مغز، آبشش و کبد) تهیه و آنزیم‌‌های SOD، CAT، GPx و نیز پروتئین در آنها اندازه‌گیری شد. نتایج نشان داد که داروی بیهوشی 2-فنوکسی اتانول سبب مهار ظرفیت‌‌های آنتی‌‌اکسیدانی بافت‌‌های مختلف، احتمالاً از طریق افزایش گونه‌‌های فعال اکسیژن و آسیب اکسیداتیو شد. مقایسه نتایج ظرفیت آنزیم‌‌های آنتی‌‌اکسیدانی در بافت‌‌های مختلف ماهیان قزل‌آلای رنگین‌کمان بیهوش‌‌شده با 2-فنوکسی اتانول و تفاوت آشکار در سیر نزولی یا صعودی این آنزیم‌ها نشان می‌دهد که روش غیرتهاجمی (نمونه‌‌های موکوس و خون) برای بیان وضعیت سیستم دفاع آنتی‌‌اکسیدانی ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان در مواجهه با داروی بیهوشی 2-فنوکسی اتانول مناسب نیست. 2 This study aimed to evaluate the effect of 2-phenoxyethanol on antioxidant enzymes capacity including superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT), and glutathione peroxidase (GPx) in various tissues (blood, mucus, brain, gill, and liver) of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) at immediately and 24 h after induction anesthesia. First, the fish (n=180, with an average weight of 5.82±0.8) were divided into six groups (each group with 3 repetitions) and exposed to 0.2, 0.3, 0.4, 0.5, and 0.6 mL/L of 2-phenoxyethanol for the determination of its lowest concentration for inducing anesthesia. The minimum concentration for anesthesia was determined 0.3 mL/L. Then, 72 fish (with an average weight of 5.79±0.73) were assigned to control and experiment groups (36 fish in each group) to evaluate the effect of this concentration of anesthetic on antioxidant enzymes capacity in various tissues of rainbow trout. The samples of blood serum, mucus, and tissue extract (brain, gill, and liver) were prepared from fish in each group, along with measuring various enzymes (SOD, CAT, and GPx) and protein, at 0 (immediately after anesthesia) and 24 h (after induction anesthesia). The results showed that the anesthetic 2-phenoxyethanol inhibited the antioxidant capacities in different tissues, probably through the increase of reactive oxygen species (ROS) and oxidative damage. The comparing the results of the capacity of antioxidant enzymes in different tissues of rainbow trout anesthetized with 2-phenoxyethanol and the obvious difference in the downward or upward course of these enzymes shows that the non-invasive method (mucus and blood samples) to express the status of the antioxidant defense system of rainbow trout is not suitable when faced with the anesthetic 2-phenoxyethanol. 47 62 2022/05/182021/11/242022/11/92022/10/22 1401/7/30 2023/03/302023/07/12023/07/12023/07/1 1402/4/10 علی خسروانی زاده ali khosravanizadeh گروه علوم آبزیان، پژوهشکده تالاب بین‌‌المللی هامون، پژوهشگاه زابل، زابل، ایران. Iran akhosravanizadeh@gmail.com عبدالعلی راهداری abdolali Rahdari گروه علوم آبزیان، پژوهشکده تالاب بین‌‌المللی هامون، پژوهشگاه زابل، زابل، ایران. Iran rahdari67@gmail.com ساحل پاکزاد توچایی sahel Pakzad Toochaei گروه اکوسیستم‌های طبیعی، پژوهشکده تالاب بین‌‌المللی هامون، پژوهشگاه زابل، زابل، ایران. Iran sahel.pakzad@gmail.com Superoxide dismutase Catalase Glutathione peroxidase Oxidative stress Rainbow trout سوپر اکسید دیسموتاز کاتالاز گلوتاتیون پراکسیداز استرس اکسیداتیو ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان ##Akbary, P., Pirbeigi, A. and Jahanbakhshi, A., 2016. Analysis of primary and secondary stress responses in bighead carp (Hypophthalmichthys nobilis) by anesthetization with 2- phenoxyethanol.International Journal of Environmental Science and Technology, 13: 1009– 1016. DOI:10.1007/s13762-015-0923-x##Akgündüz, M.Ç., Çavuşoğlu, K. and Yalçın, E., 2020. The potential risk assessment of phenoxyethanol with a versatile model system. Scientific Reports, 10(1): 1-10. DOI:10.1038/s41598-020-58170-9##Anderson, H.R., Nileson, J., Nielson, F. and Grandsean. P., 1997. Antioxidative enzyme activities erythrocyte. Clinical chemistry, 43(4): 552-556. DOI:10.1093/clinchem/43.4.562##Barbaneagra, T., Cristica, M., Ciornea, E. and Manoliu, A., 2012. Influence of nutritive substrate and pH on Catalase and Peroxidase production in Saprophytic Fungus Rhizopus nigricans. Journal of Experimental and Molecular Biology, 13(3): 71 -76.##Barton, B.A. and Helfrich, H., 1981. Time dose responses of juvenile rainbow trout to 2-phenoxyethanol. The Progressive Fish-Culturist, 43(4): 223–231. DOI:10.1577/1548-8659(1981)43%5b223: TROJRT%5d2.0.CO;2##Barton, B.A. and Iwama, G.K., 1991. Physiological changes in fish from stress in aquaculture with emphasis on the response and effects of corticosteroids. Annual Review of fish diseases, 10: 3–26. DOI:10.1016/0959-8030(91)90019-G##Bell, G.R., 1964. A guide to properties, characteristics, and uses of some general anaesthetics for fish. Bulletin of Fisheries Research Board of Canada, 148: 1–4.##Berlinsky, D.L., Watson, M.T., DiMaggio, M.A. and Breton, T.S., 2016. The use of tricaine methane sulfonate, clove oil, metomidate, and 2-phenoxyethanol for anesthesia induction in alewives. North American Journal of Aquaculture, 78: 84–91. DOI:10.1080/15222055.2015.1105891##Birben, E., Sahiner, U.M., Sackesen, C., Erzurum, S. and Kalayci, O., 2012. Oxidative stress and antioxidant defense. World allergy organization journal, 5: 9. DOI:10.1097/WOX.0b013e3182439613##Cazenave, J., Bistoni, M.D.A., Pesce, S.F. and Wunderlin, D.A., 2006. Differential detoxification and antioxidant response in diverse organs of Corydoras paleatus experimentally exposed to microcystin-RR. Aquatic toxicology, 76: 1–12. DOI:10.1016/j.aquatox.2005.08.011##Cheeseman, K.H. and Slater, J.F., 1993. An introduction to free radical biochemistry. In: Cheeseman, K.H. and Slater, T.S. (Eds.), Free Radicals in Medicine. Churchill Livingstone, New York. pp 481–493. DOI:10.1093/oxfordjournals.bmb.a072625##Coyle, S.D., Durborow, R.M. and Tidwell, J.H., 2004. Anesthetics in Aquaculture. Southern Regional Aquaculture Center Publication no. 3900, 6 p.##Faggio, C., Tsarpali, V. and Dailianis, S., 2018. Mussel digestive gland as a model for assessing xenobiotics: an overview. Science of the total environment, 613: 220–229. DOI:10.1016/j.scitotenv.2018.04.264.##FAO FishStat. 2023. Global aquaculture production Quantity (1950 - 2020): Rainbow trout. Available at https://www.fao.org/fishery/statistics-query/en/aquaculture/aquaculture_ quantity##[data downloaded march 2023]##Filiciotto, F., Buscaino, G., Buffa, G., Bellante, A., Maccarrone, V. and Mazzola, S., 2012. Anaesthetic qualities of eugenol and 2-phenoxyethanol and their effect on some haematological parameters in farmed European sea bass (Dicentrarchus labrax L.). Journal of Animal and Veterinary Advances, 11: 494–502. DOI:10.3923/javaa.2012.494.502##Grasshoff, C., Drexler, B., Rudolph, U. and Antkowiak, B., 2006. Anaesthetic drugs: linking molecular actions to clinical effects. Current pharmaceutical design, 12: 3665–3679. DOI:10.2174/138161206778522038##Gharaei, A., Khajeh, M., Khosravanizadeh, A., Mirdar, J. and Fadai, R., 2020. Fluctuation of biochemical, immunological, and antioxidant biomarkers in the blood of beluga (Huso huso) under effect of dietary ZnO and chitosan–ZnO NPs. Fish physiology and biochemistry, 46(2): 547-561. DOI:10.1007/s10695-019-00726-2##Halliwell, B. and Gutteridge, J., 2007. Antioxidant defences: endogenous and diet derived, Free radicals in biology and medicine, 4th edn. Oxford University Press Inc, New York, USA, 79–186 p.##Imamura-Kojima, H., Takashima, F. and Yoshida, T., 1987. Absorption, distribution and excretion of 2-phenoxyethanol in rainbow trout. Bulletin of the Japanese Society of Scientific Fisheries (Japan), 53: 1339–1342. DOI:10.2331/suisan.53.1339##Jafarinejad, R., Gharaei, A. and Mirdar Harijani, J., 2020. Dietary ginger improve growth performance, blood parameters, antioxidant capacity and gene expression in Cyprinus carpio. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 19(3): 1237-1252. DOI:10.22092/ijfs.2018.119876##Keene, J.L., Noakes, D.L.G., Moccia, R.D. and Soto, C.G., 1998. The efficacy of clove oil as an anaesthetic for rainbow trout, Oncorhyncus mykiss (Walbaum). Aquaculture Research, 29: 89–101. DOI:10.1046/j.1365-2109.1998.00927.x##Khosravanizadeh, A., Ghafari, M., Khajeh, M., Abtahi, B., Salehi, H., Zakipour-Rahimabadi, E. and Ahmadipour-Nezamabadi, K., 2012. Using clove oil (Eugenia caryophillata) loaded on the iron nanoparticles to induce anesthesia in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Iranian Scientific Fisheries Journal, 20(4): 43-52. DOI: 10.22092/ISFJ.2017.110022##Li, Z.H., Xie, S., Wang, J.X., Sales, J., Li, P. and Chen, D.Q., 2009. Effect of intermittent starvation on growth and some antioxidant indexes of Macrobrachium nipponense (De Haan). Aquaculture Research, 40: 526–532. DOI:10.1111/j.1365-2109.2008.02123.x##Molinero, A. and Gonzalez, J., 1995. Comparative effects of MS 222 and 2-phenoxyethanol on gilthead sea bream (Sparus aurata L.) during confinement. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Physiology, 111: 405–414. DOI:10.1016/0300-9629(95)00037-8##Noga, E.J., 1996. Fish disease: Diagnosis and treatment. First edition. Wiley-Blackwell, Iowa, USA. 544 p. DOI:10.1002/9781118786758##Priborsky, J., Stara, A., Rezabek, J., Zuskova, E., Lepic, P. and Velisek, J., 2015. Comparison of the effect of four anesthetics on haematological profile, oxidative stress and antioxidant enzymes in barbel (Barbus barbus). Neuroendocrinology Letters, 36 (1): 141–146. ##Ross, L.G. and Ross, B., 1999. Anaesthetic and Sedative Techniques for Aquatic Animals. Second Edition. Blackwell Science Ltd., Oxford. UK.159 p.##Ross, N.W., Firth, K.J., Wang, A., Burk,a J.F. and Jojnson, S.C., 2000. Changes in hydrolytic enzyme activities of Atlantic salmon (Salmo salar) skin mucus due to infection with the Salmon louse (Lepeophtheirus salmonis) and cortisol implantation. Disease of Aquatic Organisems, 41: 43-51. DOI:10.3354/dao041043##Salehi, H. and Khosravanizadeh, A., 2010. An analysis of final costs components in rainbow trout (Onchorynchus mykiss) farming sector in Iran. Iranian Scientific Fisheries Journal, 19 (2): 101-114. DOI:10.22092/ISFJ.2017.109946##Schmuck, G., Steffens, W. and Bomhard, E., 2000. 2-Phenoxyethanol: a neurotoxicant? Archives of Toxicology, 74: 281–287. DOI:10.1007/s002040000110##Sehonova, P., Tokanova, N., Hodkovicova, N., Kocour Kroupova, H., Tumova, J., Blahova, J., Marsalek, P., Plhalova, L., Doubkova, V., Dobsikova, R., Chloupek, P., Dolezalova, P., Faldyna, M., Svobodova, Z. and Faggio, C., 2019. Oxidative stress induced by fluoroquinolone enrofloxacin in zebrafish (Danio rerio) can be ameliorated after a prolonged exposure. Environmental Toxicology and Pharmacology, 67: 87-93. DOI:10.1016/j.etap.2019.02.002##Svacina, P., Priborsky, P., Blecha, M., Policar, T. and Velisek, J., 2016. Haematological and biochemical response of burbot (Lotalota L.) exposed to four different anaesthetics. Czech Journal of Animal Science, 61: 414–420. DOI:10.17221/14/2016-CJAS##Tubío, R.C., Weber, R.A., and Aldegunde, M., 2010. Home tank anesthesia: a very efficient method of attenuating handling stress in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum). Journal of Applied Ichthyology, 26(1): 116-117. DOI:10.1111/j.1439-0426.2009.01244.x##Ucar, A. and Atamanalp, M., 2010. The effects of natural (clove oil) and synthetical (2-phenoxyethanol) anesthesia substances on hematology parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and brown trout (Salmo trutta fario). Journal of Animal and Veterinary Advances, 9: 1925–1933. DOI:10.3923/javaa.2010. 1925.1933##Velisek, J. and Svobodova, Z., 2004. Anaesthesia of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) with 2-phenoxyethanol: acute toxicity and biochemical blood profile. Acta Veterinaria Brno, 73: 379– 384. DOI:10.2754/avb200473030379##Velisek, J., Stara, A., Li, Z. H., Silovska, S. and Turek, J., 2011. Comparison of the effects of four anaesthetics on biochemical blood profile and oxidative stress biomarkers of rainbow trout. Aquaculture, 310: 369–375. DOI:10.1016/j.aquaculture.2010.11.010##Velisek, J., Stejskal, V., Kouril, J. and Svodobova, Z., 2009. Comparison of the effects of four anaesthetics on biochemical blood profiles of perch. Aquaculture Research, 40: 354–361. DOI:10.1111/j.1365-2109.2008.02102.x##Wagner, T. and Congleton, J.L., 2004. Blood chemistry correlates of nutritional condition, tissue damage, and stress in migrating juvenile Chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 61: 1066–1107. DOI:10.1139/f04-050##Zelen, I., Mitrovic, M., Jurisic-Skevini, A. and Arsenijevic, S., 2010. Activity of SOD and Catalase and MDA content in seminal plasma of infertile patients. Medicinski pregled, 63(9-10): 624-629. DOI:10.2298/MPNS1010624Z##Zhang, X., Shan, P., Sasidhar, M., Chupp, G.L., Flavell, R.A., Choi, A.M.K. and Lee, P.J., 2003. Reactive oxygen species and extracellular signal regulated kinase 1/2 mitogenactivated protein kinase mediate hyperoxia-induced cell death in lung epithelium. American journal of respiratory cell and molecular biology, 28: 305–315. DOI:10.1165/rcmb.2002-0156OC##Zhang, X., Yang, F., Zhang, X., Xu, Y., Liao, T., Song, S. and Wang, H., 2008. Induction of hepatic enzymes and oxidative stress in Chinese rare minnow (Gobiocypris rarus) exposed to water borne hexabromocyclododecane (HBCDD). Aquatic Toxicology, 86: 4–11. DOI:10.1016/j.aquatox.2007.07.002 ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ ارزیابی فعالیت کمپلمان سرم تمساح مردابی (Crocodylus palustris) Evaluation of serum complement activity in Mugger crocodiles (Crocodylus palustris) 1 1 سیستم کملپمان به عنوان یکی از اجزاء مهم سیستم ایمنی ذاتی در کروکودیل‌ها کمتر شناخته شده است. ارزیابی فعالیت کمپلمان سرم به عنوان یک ابزار با ارزش برای تشخیص وضعیت سلامتی کروکودیل‌ها محسوب می‌شود. در این ﭘژوهش، پاسخ ایمنی ذاتی تمساح مردابی یا پوزه‌کوتاه (Crocodylus palustris)، بزرگترین خزنده بومی ایران، با استفاده از همولیز گلبول‌های قرمز خرگوش و کروکودیل مورد بررسی قرار گرفت. در این مطالعه تأثیر غلظت، حجم و دما بر فعالیت مسیر جایگزین کمپلمان تمساح مردابی (C. palustris) با استفاده از روش های همولیتیک استاندارد انجام و اندازه گیری میزان همولیز صورت گرفت. بر اساس نتایج به‌دست آمده ارتباط معنی‌داری بین غلظت، حجم و دما با میزان همولیزگلبول‌های قرمز خرگوش وجود داشت (05/0P<). میزان همولیز سرم در غلظت‌ها (25 درصد، 50 درصد و 100 درصد)، حجم ها (10، 20 و 30 میکرولیتر) و دماهای مختلف (35-5 درجه سانتی‌گراد) به طور معنی‌داری افزایش یافت (05/0P<). نتایج نشان می‌دهد که فعالیت مسیر جایگزین کمپلمان کروکودیل‌ ممکن است تحت تأثیر غلظت، حجم و دما قرار گیرد که این سبب افزایش پاسخ ایمنی غیراختصاصی و ایجاد مقاومت به شیوع بیماری‌ها می‌گردد . 2 Little is known about complement system as a component of innate immunity of the ectothermic vertebrates such as crocodiles. Serum complement is valuable tool in determining the health status of turtles. In this research effect of concentration, volume and temperature on alternative complement pathway activity of Mugger crocodiles (Crocodylus palustris) using standard haemolytic assays was studied. For this purpose, Crocodylus palustris serum complement hemolysis in different concentrations, volumes and temperatures was measured. Results indicated significant relation between relation measured hemolysis and concentration, volume and temperature (p<0.05). The measure of hemolysis in various concentrations (25%, 50% and 100%), volumes (10, 20, 30 µL) and temperatures (5-35°C) were significantly increased (p<0.05). The results show that alternative complement pathway activity of crocodiles might affect concentration, volume and temperature that it caused increased non-specific immunity and the resistance to the outbreak of diseases. 63 67 2022/05/182021/11/242022/11/92022/10/222022/07/13 1401/4/22 2023/03/302023/07/12023/07/12023/07/12023/07/1 1402/4/10 آزاده یکتاسرشت Azadeh Yektaseresht گروه ﭘاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران Iran azadeh_neisi@shirazu.ac.ir سیاوش سلطانیان Siyavash Soltanian 2گروه علوم درمانګاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران Iran Siyavash.Soltanian@yahoo.com امین غلامحسینی Amin Gholamhosseini 2گروه علوم درمانګاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران Iran Amin.Gholamhosseini@yahoo.com شیرین صفاییان Shirin Safaeian 3دانش آموخته دانشکده دامپزشکی دانشگاه شیراز، شیراز، ایران Iran Shirin.Safaeian@yahoo.com حسام الدین کردستانی Hesamodin Kordestani 3دانش آموخته دانشکده دامپزشکی دانشگاه شیراز، شیراز، ایران Iran Hesamodin.Kordestani@yahoo.com Complement Crocodiles Non-specific immunity Serum پاسخ ایمنی کمپلمان ایمنی ذاتی تمساح مردابی ##Ferronato, B.O., Merchant M.E., Marques T.S. and Verdade L.M., 2009. Characterization of innate immune activity in Phrynops geoffroanus (Testudines: Chelidae). Zoologia, 26(4):747-752. ##Holland, M.C.H. and Lambris, J.D., 2002. The complement system in teleosts. Fish and Shellfish Immunology, 12:399-420.##Koppenheffer, T.L., 1986. Activation of the alternative pathway by both high and low molecular weight turtle antibodies. American Zoologist, 26: 86.##Lachmann, P.J. and Hobart M.J., 1978. Complement technology.In: Weir, D.M. (eds). Handbook of experimental immunology. Blackwell Scientific Publications Ltd., Oxford, United Kingdom. pp 5A.12–5A.13. ##Major, S., Fontenot, C.L, Pojman, J.A. and Merchant, M.E., 2011. Serum complement activity in the three-toed amphiuma (Amphiuma tridactylum). Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Diseases, 34:115- 121. ##Merchant, M.E., Roche, C., Thibodeaux, D. and Elsey, R.M., 2005. Identification of alternative pathway serum complement activity in the blood of the American alligator (Alligator mississippiensis). Comparative biochemistry and physiology B, 141:281-288.##Merchant, M.E. and Britton, A.R.C., 2006. Characterization of serum complement activity of saltwater (Crocodylus porosus) and freshwater (Crocodylus johnstoni) crocodiles. Comparative Biochemistry and Physiology, 143:488-493.##Merchant, M.E., Henry, D., Falconi, R., Musche, B. and Bryja, J., 2012. Characterization of serum complement activity in serum of the Komodo dragon (Varanus komodoensis). Advances in Biological Chemistry, 2:353-359.##Merchant, M.E., Determan, R., Falconi, R. and Shirley, M., 2013. Serum Complement Activity in Two Species of Divergent Central African Crocodiles. Entomology, Ornithology & Herpetology, 2:2.##Yano, T., 1992. Assays of hemolytic complement activity. In: Stolen, J.S. Fletcher, T.C. Anderson, D.P. et al. (eds.) Techniques in fish immunology. Fair Haven, New Jersey: SOS, pp 131-141.##Yektaseresht, A., Gholamhosseini, A. and Janparvar, A., 2014. Assessing the impact of temperature, volume and concentration of serum on complement activity in the red‐eared slider turtle, (Trachemys scripta elegans). World Journal of Environmental Biosciences, 6:60-4.##Yektaseresht, A., Gholamhosseini, A. and Janparvar, A., 2018. Influence of temperature, concentration and volume of serum on alternative complement pathway activity in European pond turtle (Emys orbicularis). Journal of Research in Ecology, 6(1):1528-33. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ اثر سطوح مختلف کنجاله کانولای تخمیر شده خوراک بر رشد، کارایی خوراک، ترکیب لاشه و فعالیت آنزیم‌های گوارشی بچه ماهیان انگشت‌‌قد تیلاپیای نیل (Oreochromis niloticus) Dietary effect of different levels of fermented canola on growth, feed utilization, body composition, and digestive enzymes activity of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) fingerlings 1 1 مطالعه حاضر با هدف بررسی اثر سطوح مختلف کانولای تخمیر شده با باکتری جنس باسیلوس جدا شده از رسوبات دریای خزر بر شاخص‌های رشد، تغذیه، ترکیب لاشه و فعالیت آنزیم‌های گوارشی بچه‌‌ماهیان تیلاپیای نیل انجام گرفت. 225 عدد بچه‌ماهی با میانگین وزنی 05/0±90/1 گرم در 5 تیمار آزمایشی شامل شاهد، تیمار 1: خوراک بدون کانولای تخمیر شده، تیمار 2: خوراک حاوی 5/12 درصد کانولای تخمیر شده، تیمار 3: خوراک حاوی 25 درصد کانولای تخمیر شده، تیمار 4: خوراک حاوی 5/37 درصد کانولای تخمیر شده و تیمار 5: خوراک حاوی 50 درصد کانولای تخمیر شده، به‌ مدت 8 هفته تغذیه شدند. بر اساس نتایج به‌دست آمده، شاخص‌های رشد و تغذیه در تیمارهای مختلف آزمایش اختلاف معنی‌داری را در مقایسه با گروه شاهد نشان ندادند (05/0<p). نتایج تجزیه تقریبی لاشه ماهیان نشان داد که پروتئین در تیمارهای 2، 3 و 4، چربی و رطوبت در تیمارهای 3، 4 و 5 و خاکستر در تیمارهای 4 و 5 در مقایسه با گروه شاهد افزایش یافتند (05/0>p). همچنین نتایج فعالیت آنزیم‌های گوارشی روده ماهیان نشان داد که آلکالین پروتئاز در تیمارهای 3 و 4، لیپاز در تیمارهای 2 و 3 و آلفا آمیلاز در تیمار 3 در مقایسه با گروه شاهد افزایش یافتند (05/0>p). به ‌طور کلی، می‌‌توان چنین نتیجه گرفت که استفاده از 50 درصد کانولای تخمیر شده در خوراک بچه ماهیان انگشت‌‌قد تیلاپیای نیل بدون اثر منفی بر شاخص‌های رشد و تغذیه امکان‌پذیر است. 2 The present study was carried out to investigate the effect of different dietary levels of fermented canola meal by the Bacillus isolated from Caspian Sea sediments on growth and nutritional indices, proximate body composition, and digestive enzymes activity of Nile tilapia fingerlings. A total of 225 fry fish with an average weight of 1.90±0.05 g were fed with five different experimental diets including treatment 1: a diet without fermented canola, treatment 2: a diet containing 12.5% ​fermented canola, treatment 3: a diet containing 25% fermented canola, treatment 4: a diet containing 37.5% fermented canola, and treatment 5: a diet containing 50% fermented canola for 8 weeks. Results revealed that the growth and nutrition indices did not significantly differ among various experimental groups (p>0.05). Proximate analyses of the body composition showed that the protein contents of treatments 2, 3, and 4, the lipid and moisture contents of treatments 3, 4, and 5, and also the ash contents of treatments 4 and 5 were increased compared to the control group (p<0.05). Also, the results of digestive enzymes activity showed that the alkaline protease activity of treatments 3 and 4, lipase activity of treatments 2 and 3 and also the alpha amylase activity of treatment 3 were increased in comparison with the control group (p<0.05). In general, it was concluded that incorporating 50% of fermented canola did not affect growth performance and nutritional indices in Nile tilapia fingerlings. 69 82 2022/05/182021/11/242022/11/92022/10/222022/07/132023/01/15 1401/10/25 2023/03/302023/07/12023/07/12023/07/12023/07/12023/07/1 1402/4/10 نگین باقرزاده Negin Bagherzadeh دانشگاه ارومیه Iran negin.bgh1312@gmail.com احمد ایمانی Ahmad Imani دانشگاه ارومیه Iran a.imani@urmia.ac.ir کوروش سروی مغانلو Kourosh Sarvi Moghanlou دانشگاه ارومیه Iran k.sarvimoghanlou@urmia.ac.ir محمد محمدی Mohammad Mohammadi موسسه تحقیقات شیلات ایران Iran mohammaditabasy@ifro.ir Fermented canola Growth Nutritional indices Digestive enzymes Nile tilapia Bacillus کانولای تخمیر شده رشد شاخص‌های تغذیه آنزیم‌های گوارشی تیلاپیای نیل باسیلوس ##اسعدی، ر.، ایمان پور، م.، اصغری، م. و عنایت غلام پور، ط.، 1391. اثرات جایگزینی تدریجی پودر ماهی با پودر سویا و مکمل آنزیم فیتاز بر قابلیت هضم و ترکیبات عناصر لاشه فیل ماهی جوان (Huso huso). مجله دامپزشکی ایران 8(1): 14-5.##رحمتی، ف.، فلاحتکار، ب.، امیری مقدم، ج. و منییعی، ف.، 1388. اثرات دوره‌های گرسنگی و رشد جبرانی بر فاکتورهای رشد ماهی آزاد دریای خزر. مجموعه چکیده مقالات اولین همایش علمی دانشجویی علوم شیلاتی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، صفحه 13.##رجبی پور، ف.، حسن نیا، م.، مشائی، ن.، محمدی، م.، سرسنگی، ح.، جعفری، م.، نجار، م.، بهمنش، ش.، اخیگان، و. و شفیعی مبارکه، ج.، 1395. پرورش تیلاپیا در قفس در برخی منابع آبی (استخرهای پرورش و ذخیره آب کشاورزی) حوزه بافق. وزارت جهاد کشاورزی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور - مرکز تحقیقات ملی آبزیان آب‌های شور 49721: 37صفحه.##شفایی پور، آ.، یاوری، و.، غفله مرمضی، ج.، فلاحتکار، ب. و گرجی پور، ع.، 1388. بررسی اثرات سطوح متفاوت کنجاله کلزا (کانولا) بر رشد، ترکیب لاشه و پارامترهای بیوشیمیایی در قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران 18(1): 100-81.##ساریخانی، م. و ملبوبی، م.، 1389. فیتازها: از دیدگاه آنزیم شناسی، ویژگی‌های مولکولی، بیوشیمیایی و کاربردها. مجله بیوتکنولوژی کشاورزی 2(2): 40-13. ##صفایی، ح.، خارا، ح.، فلاحتکار، ب. و وهاب زاده، ح.، 1398. تاثیر جایگزینی سطوح مختلف پودر کنجاله سویا به جای پودر ماهی در جیره غذایی بر شاخص‌های رشد، کیفیت لاشه و برخی فاکتورهای خونی بچه‌ماهی استرلیاد (Acipenser ruthenus). فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری 11(1): 188-181.##محسنی، م.، قربانزاده، ف. و سید علیپور، ب.، 1396. تولید فیتاز از عصاره سبوس برنج به کمک سویه‌های باسیلوس جدا شده از رسوبات بستر دریای مازندران. مجله پژوهش‌های سلولی و ملکولی 3(4): 487-476. ##محسنی، م. و ملک پور، م.، 1397. جایگزینی پودر ماهی با کنجاله کانولا و تاثیر آن بر عملکرد رشد، قابلیت هضم، برخی پارامترهای خونی و سطح هورمون‌های تیروئیدی تاس‌ماهی سیبری (Acipenser baerii). مجله علمی شیلات ایران 27(5): 149-135. DOI: 10.22092/ISFJ.2019.118084##Alcaraz, L.D., Moreno-Hagelsieb, G., Eguiarte, L.E., Souza, V., Herrera-Estrella, L. and Olmedo, G., 2010. Understanding the evolutionary relationships and major traits of Bacillus through comparative genomics. BMC genomics 11(1): 332. DOI: 10.1186/1471-2164-11-332.##AOAC., 2005. Official methods of analysis of association of official agriculture chemists. 18th ed, Washington, Gaithersburg 25P. ##Bernfeld, P., 1955. Amylase α and β. In: Methods in Enzymology, Volume 1, Colowick, S.P. and Kaplan, N.O., editors. Academic Press, New York, USA: 149–158. https://doi.org/10.1016/0076- 6879(55)01021-5.##Burel, C., Boujard, T., Escaffre, A.M., Kaushik, S.J., Boeuf, G., Mol, K.A., Van der Geyten, S. and KuÈhn, E.R., 2000. Dietary low-glucosinolate rapeseed meal affects thyroid status and nutrient utilization in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). British Journal of Nutrition 83 (6): 653–664. https://doi.org/10.1017/S0007114500000830.##Cheng, Z., Ai, Q., Mai, K., Xu, W., Ma, H., Li, Y. and Zhang, J., 2010. Effects of dietary canola meal on growth performance, digestion and metabolism of Japanese seabass, Lateolabrax japonicus. Aquaculture 305(1–4): 102–108. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture. 2010.03.031.##De Boland, A. R., Garner, G. B. and O'Dell, B. L. (1975). Identification and properties of phytate in cereal grains and oilseed products. Journal of Agricultural and Food Chemistry 23(6): 1186-1189. DOI: 10.1021/jf60202a038.##Dossou, S., Koshio, S., Ishikawa, M., Yokoyama, S., Dawood, M.A.O., El Basuini, M.F., El-Hais, A.M. and Olivier, A., 2018. Effect of partial replacement of fish meal by fermented rapeseed meal on growth, immune response and oxidative condition of red sea bream juvenile, Pagrus major. Aquaculture 490(1): 228–235. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture. 2018.02.010.##Enami, H. 2011. A review of using canola/rapeseed meal in aquaculture feeding. Journal of Fisheries and Aquatic Science 6(1): 22-36. DOI: 10.3923/jfas.2011.22.36.##Farhangi, M. and Carter, C.G., 2007. Effect of enzyme supplementation to dehulled lupin‐based diets on growth, feed efficiency, nutrient digestibility and carcass composition of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Aquaculture Research 38(12): 1274-1282. DOI:10.1111/j.1365-2109.2007.01789.x##Figueiredo‐Silva, A., Corraze, G., Borges, P. and Valente, L., 2010. Dietary protein/lipid level and protein source effects on growth, tissue composition and lipid metabolism of blackspot seabream (Pagellus bogaraveo). Aquaculture Nutrition 16(2): 173-187. https://doi.org/10.1111/j.1365-2095.2009.00649.x##Francis, G., Makkar, H. P., and Becker, K., 2001. Antinutritional factors present in plant-derived alternate fish feed ingredients and their effects in fish. Aquaculture 199(3-4): 197-227. . https://doi.org/10.1016/S0044-8486(01)00526-9.##Garcia‐Carreno, F.L. and Haard, N.F., 1993. Characterization of proteinase classes in langostilla (Pleuroncodes planipes) and crayfish (Pacifastacus astacus) extracts. Journal of Food Biochemistry 17(2): 97–113. https://doi.org/10.1111/j.1745- 4514.1993.tb00864.x.##Gatlin III, D. M., Barrows, F. T., Brown, P., Dabrowski, K., Gaylord, T. G., Hardy, R. W. and Nelson, R., 2007. Expanding the utilization of sustainable plant products in aquafeeds: a review. Aquaculture Research 38(6): 551-579. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2007.01704.x##Hardy, R. W. 2010. Utilization of plant proteins in fish diets: effects of global demand and supplies of fishmeal. Aquaculture Research 41(5): 770-776. DOI: doi/abs/10.1111/j.1365-2109.2009.02349.x##Hassaan, M.S., Mohammady, E.Y., Soaudy, M.R. and Abdel Rahman, A.A.S., 2019. Exogenous xylanase improves growth, protein digestibility and digestive enzymes activities in Nile tilapia, Oreochromis niloticus, fed different ratios of fish meal to sunflower meal. Aquaculture Nutrition 25(4): 841–853. https://doi.org/10.1111/anu.12903.##Iijima, N., Tanaka, S. and Ota, Y., 1998. Purification and characterization of bile salt-activated lipase from the hepatopancreas of red sea bream, Pagrus major. Fish Physiology and Biochemistry 18(1): 59–69. https://doi.org/10.1023/A:10077255 13389.##Kim, S. S., Pham, M. A., Kim, K. W., Son, M. H. and Lee, K. J., 2010. Effects of Microbial Fermentation of Soybean on growth performances, phosphorus availability, and antioxidant activity in diets for juvenile olive flounder (Paralichthys olivaceus). Food Science and Biotechnology 19: 1605–1610. https://doi.org/10.1007/s10068-010-0227-3##Lemieux, H., Blier, P. and Dutil, J.D., 1999. Do digestive enzymes set a physiological limit on growth rate and food conversion efficiency in the Atlantic cod (Gadus morhua). Fish Physiology and Biochemistry 20(4): 293-303. DOI:10.1023/A:1007791019523.##Li, M. H. and Robinson, E.H., 1997. Microbial Phytase Can Replace Inorganic Phosphorus Supplements in Channel Catfish Ictalurus punctatus Diets 1. Journal of the World Aquaculture Society 28(4): 402-406. https://doi.org/10.1111/j.1749-7345.1997.tb00287.x##Lim, C., Webster, C.D. and Lee, C.S., 2008. Alternative protein sources in aquaculture diets: Haworth Press New York 1st: 594P.##Liu, B.L., Rafiq, A., Tzeng, Y.M. and Rob, A., 1998. The induction and characterization of phytase and beyond. Enzyme and Microbial Technology 22(5): 415-424. DOI: 10.1631/jzus.B0720006##Mazurkiewicz, J., Przybyi, A. and Golski, J., 2009. Usability of some plant protein ingredients in the diets of Siberian sturgeon (Acipenser baerii). Archives of Polish Fisheries 17: 45-52. DOI: 10.2478/v10086-009-0002-3##Mohammadi, M., Imani, A., Farhangi, M., Gharaei, A. and Hafezieh, M., 2020. Replacement of fishmeal with processed canola meal in diets for juvenile Nile tilapia (Oreochromis niloticus): Growth performance, mucosal innate immunity, hepatic oxidative status, liver and intestine histology. Aquaculture 518: 734824. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture. 2019.734824.##Mohammadi, M., Imani, A., Farhangi, M., Gharaei, A. and Hafezieh, M., 2021. Efficacy of various processed canola meals to replace fish meal in Nile tilapia Oreochromis niloticus diet: Growth performance, digestive enzymes, immune parameters, and liver antioxidative status. Iranian Journal of Fisheries Sciences 21(4) 966-986. DOI: 10.22092/ijfs.2022.127517.##Mukhametzyanova, A., Akhmetova, A. and Sharipova, M., 2012. Microorganisms as phytase producers. Microbiology 81(3): 267-275. http://dx.doi.org/10.1134/S0026261712030095##Mwachireya, S., Beames, R., Higgs, D. and Dosanjh, B., 1999. Digestibility of canola protein products derived from the physical, enzymatic and chemical processing of commercial canola meal in rainbow trout Oncorhynchus mykiss (Walbaum) held in fresh water. Aquaculture Nutrition 5(2): 73-82. 10.1046/J.1365-2095.1999.00089.X##NRC, National Research Council, 2011. Nutrient Requirements of Fish and Shrimp. National Academies Press, New York, USA.##Plaipetch, P. and Yakupitiyage, A., 2012. Use of yeast-fermented canola meal to replace fishmeal in the diet of Asian sea bass Lates calcarifer (Bloch, 1790). Journal of Aquaculture Research and Development 3(2): 1000125. https://doi.org/10.4172/2155- 9546.1000125.##Portz, L. and Liebert, F., 2004. Growth, nutrient utilization and parameters of mineral metabolism in Nile tilapia Oreochromis niloticus (Linnaeus, 1758) fed plant‐based diets with graded levels of microbial phytase. Journal of animal physiology and animal nutrition 88(9‐10): 311-320. https://doi.org/10.1111/j.1439-0396.2004.00486.x##Przyby, A., Mazurkiewicz, J. and Rozek, W., 2006. Partial substitution of fish meal with soybean protein concentrates and extracted rapeseed meal in the diet of sterlet (Acipenser ruthenus). Journal of Applied Ichthyology 22: 298-302. https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.2007.00973.x##Rodehutscord, M. and Pfeffer, E., 1995. Effects of supplemental microbial phytase on phosphorus digestibility and utilization in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Water Science and Technology 31(10): 143-147. https://doi.org/10.1016/0273-1223(95)00433-N##Roussos, S., Lonsane, B., Raimbault, M. and Viniegra-Gonzalez, G., 1997. Advances in solid state fermentation: Springer Science and Business Media, 1st ed 674P.##Rungruangsak-Torrissen, K., Moss, R., Andresen, L., Berg, A. and Waagbo, R., 2006. Different expressions of trypsin and chymotrypsin in relation to growth in Atlantic salmon (Salmo salar L.). Fish Physiology and Biochemistry 32(1): 7. DOI: 10.1007/s10695-005-0630-5##Singh, N.K., Joshi, D.K. and Gupta, R.K., 2013. Isolation of Phytase Producing Bacteria and Optimization of Phytase Production Parameters, Jundishapur J of Microbiol. Online ahead of Print 6(5): 6419. DOI: 10.5812/jjm.6419##Suzer, C., Saka, Ş., Firat, K., 2006. Effects of illumination on early life development and digestive enzyme activities in common pandora Pagellus erythrinus L. larvae. Aquaculture 260(1): 86–93. https://doi.org/10.1139/cjz-2015-0180##Taghizadeh, V., Imanpour, M.R., Asadi, R., Chaman Ara, V. and Sharbati, S., 2011. Effect of vegetable protein Substitution of fish meal on growth parameters, carcass quality and blood biochemical parameters in young Beluga Sturgeon (Huso huso). Iranian Journal of Fisheries 4: 33-42.##Turchini, G.M., Torstensen, B.E. and Ng, W.K., 2009. Fish oil replacement in finfish nutrition. Reviews in Aquaculture 1(1): 10-57. https://doi.org/10.1111/j.1753-5131.2008.01001.x##Van Soest, P.J., Robertson, J.B. and Lewis, B.A., 1991. Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber, and nonstarch polysaccharides in relation to animal nutrition. Journal of Dairy Science 74(10): 3583–3597. https://doi.org/10.3168/jds.S0022- 0302(91)78551-2.##Yamamoto, T., Iwashita, Y., Matsunari, H., Sugita, T., Furuita, H., Akimoto, A. and Suzuki, N., 2010. Influence of fermentation conditions for soybean meal in a non-fish meal diet on the growth performance and physiological condition of rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Aquaculture 309(1-4): 173-180. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2010.09.021##Zhou, Q. L., Habte‐Tsion, H. M., Ge, X., Xie, J., Ren, M., Liu, B. and Pan, L., 2018. Graded replacing fishmeal with canola meal in diets affects growth and target of rapamycin pathway gene expression of juvenile blunt snout bream, Megalobrama amblycephala. Aquaculture nutrition 24(1): 300-309. https://doi.org/10.1111/anu.12560 ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ ارتباط پارامترهای فیزیکو شیمیایی آب و زی‌توده حلزون بابیلون (Babylonia spirata, Linnaeus, 1758) در آبهای شمالی دریای عمان (استان سیستان و بلوچستان) Relationship between Babylonia snail (Babylonia spirata, Linnaeus, 1758) biomass and physicochemical parameters of water on the northern waters of the Oman Sea (Sistan and Baluchistan Province) 1 1 در بررسی حاضر، ارتباط پارامترهای فیزیکیوشیمیایی آب (نمونه‌برداری از آب و خاک) و زیتوده حلزون بابیلون با نمونه‌برداری از چهار منطقه صیادی این گونه در آبهای شمالی دریای عمان شامل پسابندر، بریس، پزم و کنارک از شهریور 1400 لغایت شهریور 1401 با قفس‌های دایره‌ای مخصوص صید حلزون صورت گرفت. با کمک آنالیز واریانس یک‌‌طرفه (بین چند دوره) مقایسه میانگین‌‌ها، مقادیر پارامترهای مختلف فیزیکوشیمیایی (PH، کدورت، TOM، اکسیژن محلول و شن و لای) و مواد مغذی مختلف (نیترات، فسفات، آمونیاک و نیتریت) در فصول قبل و بعد مانسون، تفاوت معنی داری نشان نداد (05/0<p). پارامترهای حرارت و سیلت فصول مختلف (قبل و بعد مانسون) دارای اختلاف معنی‌داری بود (05/0>p). زی‌توده حلزون در ایستگاه‌های مختلف و نیز فصول مختلف (قبل و بعد مانسون) دارای اختلاف معنی‌داری بود (05/0>p). جهت ارتباط بین زی‌توده حلزون، پارامترهای فیزیکوشیمیایی و مواد مغذی آب از شبکه عصبی مصنوعی چند لایه استفاده شد و نتایج نشان داد از بین پارامترهای موثربر زی توده حلزون ، حرارت و نیتریت دارای بیشترین تاثیرگذاری بودند. شهریور الی آبان ماه با توجه به کاهش حرارت آب و افزایش نیتریت، بالاترین میزان صید دیده شد و فصل اصلی صید حلزون بابیلون در منطقه سیستان و بلوچستان بود. این مطالعه می‌تواند جهت پایداری صید، مدیریت اصولی در بهره‌برداری و نیز درک بهتر ویژگی‌های زیستی و جمعیتی این گونه حلزون مدنظر قرار گیرد. 2 In this study, the relationship between water physicochemical parameters (sampling of water and soil) and Babylon snail biomass was done by sampling from four fishing grounds of this species in the north of the Oman Sea including Pasabandar, Breis, Pozm, and Konarak from September 2021 to September 2022 by circular cages. The average values of different physicochemical parameters (pH, salinity, turbidity, TOM, dissolved oxygen, and sand and silt) and different nutrients (nitrate, phosphate, ammonia, and nitrite) in the before and after seasons (monsoon) did not show a significant difference (p>0.05) through one-way variance analysis (between several periods) comparison of averages. Temperature and silt parameters from different seasons (before and after monsoon) had significant differences (p<0.05). Multi-layer artificial neural network was used for the correlation among the snail biomass, physicochemical parameters, and water nutrients and it showed that Temperatures and Nitrite were the most impact parameters on (snail biomass). From September to November, the highest catch rate was observed and it was the main season of Babylon snail fishing in Sistan and Baluchistan region due to the decrease in the water temperature and increase in the nitrite content. This study can be considered for fishing sustainability, basic management in exploitation, and a better understanding of the biological and demographic characteristics of this snail species. 83 93 2022/05/182021/11/242022/11/92022/10/222022/07/132023/01/152023/04/1 1402/1/12 2023/03/302023/07/12023/07/12023/07/12023/07/12023/07/12023/06/11 1402/3/21 سید احمدرضا هاشمی Seyed Ahmadreza Hashemi موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran seyedahmad91@gmail.com مسطوره دوستدار Mastooreh Doustdar موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran mastooreh.doustdar@gmail.com اشکان اژدری Ashkan Azhdari موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran a_arzhan@yahoo.com الناز عرفانی فر Elnaz Erfani far موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran elnaz_erfani@yahoo.com پریا اکبری Paria Akbari دانشگاه علوم دریایی و دریانوردی چابهار Iran Paria.akbary@gmail.com قاسم رحیمی قره میرشاملو Ghasem Qaramirshamlo موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran Ghrahimi88@yahoo.com Physicochemical parameters Artificial Neural Network (ANN) Babylonia snail Oman Sea پارامترهای فیزیکو شیمیایی آب شبکه عصبی مصنوعی چند لایه حلزون بابیلون دریای عمان ##Al-Azri, A., Piontkovski, S., Al-Hashmi, K., Al Gheilani, H., Al-Habsi, H., Al-Khusaibi, S. and AlAzri, N., 2012. The occurrence of algal blooms in Omani coastal waters. Aquatic Ecosystem Health and Management, 15: 56-63. Doi: 10.1080/14634988.2012.672151 ##Al-Hashmi, K., Sarma, Y.V.B., Claereboudt, M., Al- Azri, A.R., Piontkovski, S.A. and Al-Habsi. H., 2012. Phytoplankton community structure in the Bay of Bandar Khyran, Sea of Oman with special reference to harmful algae. International Journal of Marine Science, 2(5): 31-42. Doi: 10.5376/ijms.2012.02.0005##Amin Rad, T., 2018. Assessment of reserves and determination of the distribution pattern of the dominant species of Babylon snail in the coastal waters of Sistan and Baluchistan province. Fisheries Science Research Institute-Offshore Fisheries Research Center (Chabahar) - 155 P. [in Farsi]##Archana, A. and Babu, K.R., 2013. Seasonal variations of physicochemical parameters in coastal waters of Visakhapatnam, East coast of India. Middle East Journal Scientific Research, 14 (2): 161-167. Doi: 10.5829/idosi.mejsr.2013.14.2.72193.##Arias-Gonzales, E.J., Nunes-Lara, E., Gonzales-alas, C. and Galzin, R., 2004. Trophic models for investigation of fishing effect on coral reef ecosystems. Ecological Modelling, 172:197–212. Doi: 10.1016/j.ecolmodel.2003.09.007##Asghari, S., Ahmadi, M., Mohammadizadeh, F., Ebrahimi, M. and Ajjali, K., 2013. Investigating the effects of the summer monsoon on the abundance of bivalves and gastropoda in the Iranian coasts of the Oman Sea. Aquatic Fisheries Journal, 22, 2, pp. 15-23. [in Farsi]##Barratt, L., Ormond, R.F.G., Campbell, A., Hiscock, S., Hogarth, P. and Taylor, J., 2011. Ecological Study of Rocky Shores on the South Coast of Oman. Report of the International Union for the Conservation of Nature and Natural Resources to the United Nations Environmental Programme, Geneva. 102 P.##Boyd, C.E. and Tucker, C.S., 1998. Pond aquaculture water quality management. Kluwer Academic Publishers, London. 700 P.##Chang, H., 2008. Spatial analysis of water quality trends in the Han River basin, South Korea. Water Research, 42(13): 3285-3304. https://doi.org/10.1016/j.watres.2008.04.006 ##Doustdar, M., Hashemi, S.A. 2023. Feeding and reproductive biology of Babylonia spirata (Linnaeus, 1758) in the northern Oman Sea. Iranian Journal of Fisheries Sciences. 22(2) 450-459. Doi: 10.22092/ijfs.2023.129159 ##Fazeli, N. and Zare, R., 2011. Effect of seasonal monsoons on calanoid copepod in Chabahar bay, Gulf of Oman. Jordan Journal of Biological Sciences. 4(1): 55-62. ##Fraussen, K. and Stratmann, D., 2013. A Conchological Iconography: The Family Babyloniidae. ConchBooks, Harxheim. 96 P.##Hashemi, S.A., 2021. Estimation of the optimal catch level of sea cucumber (Holothuria leucospilota) in the Northern Waters of the Oman Sea (Sistan and Baluchistan Province). Final Report 60568, Offshore Fisheries Research Center (Chabahar). 69 P. [ in Farsi]##Hashemi, S.A., 2022. Investigating the fishing status of Spiral Babylon in the waters of Sistan and Baluchistan province. Final report, Offshore Fisheries Research Center (Chabahar). 71 P. [in Farsi]##Hassan, F.M., Taylor, W.D., Al-Taee, M.M. and Al-Fatlawi, H.J., 2010. Phytoplankton composition of Euphrates River in Al-Hindiya barrage and kifil city region of Iraq. Journal of Environmental Biology, 31(3): 343-350 . ##Holme, N.A. and McIntyre, A.D., 1984. Methods for the study of Marine Benthos. Blackwell Scientific Publications, London. Pp. 42- 43.##King, M., 2007. Fisheries biology & assessment and management. Fishing news press, Print ISBN:9781405158312 |Online ISBN:9781118688038 |Doi:10.1002/9781118688038.##Lek, S. and Guegan, J.F., 2000. Artificial neuronal networks, applications to ecology and evolution. Springer-Verlag. 244 P.##Mashjoor, S. and Kamrani, E., 2015. Evaluation of the “fishing down marine food web” process in the north-west of Persian Gulf (Khuzestan Province) during the period of 2002–2011. Acta Oceanologica Sinica, 34:103–110 p. Doi: 10.1007/s13131-015-0726-4.##Mohan, A., 2007. Eco-biology and fisheries of whelk, Babylonia spirata (Linnaeus, 1758) and Babylonia zeylanica (Bruguiere, 1789) along Kerala coast, India. Ph.D Thesis. Cochin University .174 P.##Mohan, A., Kripa V. and Mohamed, K.S., 2012. Stock assessment and management options for whelks along south-eastern Arabian Sea. Indian Journal of Fisheries, 59: 69–76.##MOOPAM, 2010. Manual of Oceanographic and Observations and Pollutant Analyses Methods (MOOPAM), Regional organization for the protection of the marine environment. Kuwait. 586 P.##Muhammad, M., Yong, T.M., Muhammad, N., Yin, H. and Ana, M., 2018. Estimation of Maximum Sustainable Harvest Levels and Bioeconomic Implications of Babylonia spirata Fisheries in Pakistan by Using CEDA and ASPIC. Oceanogr Fish Open Access Journal, 7(3): 555-715. Doi: 10.19080/OFOAJ.2018.07.555715.##Nowrouzi, S. and Valavi, H., 2011. Effects of environmental factors on phytoplankton abundance and diversity in Kaftar Lake. Journal of Fisheries and Aquatic Science, 6(2): 130- 145.##Pandian, T.J., 2017. Reproduction and Development in Mollusca, Volume 2. Series on Reproduction and Development in Aquatic Invertebrates. Taylor & Francis Group, LLC., Boca Raton. 304 P.##Pauly, D., 1998. Tropical fishes: patterns and propensities. Journal Fish Biology. 53 (Suppl. A): 1–17 Pp.##Pillia, N. Pillai, P. Yohannan, T. and Muthaih, C., 2000. Management of scombroids Resource of India. Ln.Pillai,N.G.K., Menon,N.G., Pillai,P.P and Ganga,U. (Eds.) Management Scombroids Fisheries, Central Marine Fishery Research Institute, Kochin. 240-250 . ##Razzaghi, M., Mashjoor, S. and kamarani, E., 2017. Mean trophic level of coastal fisheries landings in the Persian Gulf (Hormuzgan Province), 2002–2011. Chinese Journal of Oceanology and Limnology. Doi: 10.1007/s00343-017-5311-6.##Reynolds, C., 2006. The ecology of fresh water phytoplankton: ecology, biodiversity, and conservation. Cambridge University Press, UK. 403 P.##Rixen, T., Baum, A., Gaye, B. and Nagel, B., 2013. Seasonal and interannual variations of the nitrogen cycle in the Arabian Sea. Biogeosciences Discuss, 10: 19541-19570. https://doi.org/10.5194/bg-11-5733-2014 ##Sarda, R., 1995. life cycle Demography and production of marenzeleria viridis in sait marsh of southern new England. Journal marine Biology, 75 pp. Doi: 10.1007/BF00349119##Sealifebase, 2021. Babylonia spirata.https://www.sealifebase.ca/summary/Babylonia-spirata.html.##Stamatopoulos, C., 2002. Sample-based fishery surveys. A technical handbook, FAO Fisheries Technical paper, Rome, Italy. 425 P.##Tan, S.K. and Low, M.H.Y., 2013. First record of babylonia spirata in Singapore, with notes of congeners in the local seafood trade (Mollusca: Gastropoda: Babyloniide). Nuture in Singapore, 6(1):191–195.##Wright, J. and Colling, A., 1989. Seawater: its composition, properties, and behaviour. Pergamon prepared by an open university course Team, Press. 2 nd Edition, January1. York. 180 P. ##Zar, J.H., 1996. Biostatistical analysis. Prentice-Hall Inc., New Jersey, USA. 662 P. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ اثرات افزودن سطوح مختلف سلنیوم در جیره غذایی بررشد، بازماندگی و ترکیب شیمیایی لاشه قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss) Effects of adding different dietary levels of selenium on the growth, survival, and carcass chemical composition of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) 1 1 دراین تحقیق تاثیر سطوح مختلف سلنیوم در جیره غذایی بر رشد بازماندگی و ترکیب شیمیایی بافت عضله ماهی قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان (Oncorhynchus mykiss) با میانگین وزنی 57/0±80 گرم در مدت 60 روز مورد بررسی قرار گرفت. 320 عدد ماهی به صورت تصادفی در 12 مخزن فایبر گلاس 1500 لیتری توزیع شدند. سلنیوم در چهار سطح، بدون سلنیوم (شاهد)، 5/0 (تیمار 1)، 5/1 (تیمار 2) و 3  (تیمار 3) میلی‌گرم بر کیلوگرم به جیره غذایی افزوده و ماهیان به مدت 6 هفته تغذیه شدند. نتایج نشان داد نرخ رشد ویژه، درصد افزایش وزن بدن، میانگین رشد روزانه و ضریب تبدیل غذایی در تیمار تغذیه شده با جیره حاوی 3 میلی‌‌گرم در کیلوگرم سلنیوم اختلاف معنی‌داری با شاهد داشتند (05/0p<). شاخص بقاء در تیمارهای مورد بررسی با گروه شاهد اختلاف معنی‌داری نداشت (05/0p>). تأثیر افزودن سلنیوم بر ترکیب شیمیایی نشان‌دهنده اختلاف معنی‌داری در میزان پروتئین لاشه بود (05/0p<). بیشترین مقدار مربوط به تیمار 4 (57/0±20/18 درصد) وکمترین مقدار مربوط به گروه شاهد 16/0±47/16 درصد بود. در تیمارهای تغذیه شده با سلنیوم کاهش مقدار چربی لاشه مشاهده شد که با گروه شاهد اختلاف معنی‌دار داشتند (05/0p<). رطوبت و خاکستر در گروه شاهد با سایر تیمارها اختلاف معنی‌داری نداشت (05/0p>). بالاترین تاثیر سلنیوم بر رشد مربوط به تیمار 4 (3 میلی‌‌گرم بر کیلوگرم سلنیوم) بود، اما اختلاف معنی‌داری با تیمار 3 (5/1 میلی‌گرم بر کیلوگرم سلنیوم) نداشت (05/0p>). در مجموع، نتایج این تحقیق نشان‌دهنده تأثیر مثبت افزودن 3 میلی‌گرم بر کیلوگرم سلنیوم به غذا بر شاخص‌های رشد و بهبود ترکیب شیمیایی لاشه بود. 2 In this study, the effect of different dietary levels of selenium on the growth of survival and muscle chemical composition of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) with an average weight of  80±0.57 g was investigated for 60 days. 320 fish were distributed randomly in 12 fiber tanks of 1500 L. Selenium was added at four levels, no selenium (control), 0.5 (treatment1), 1.5 (treatment2), and 3 (treatment3) mg/kilogram and the fish were fed for 6 weeks. The results showed that the specific growth rate, percentage of body weight gain, average daily growth, and food conversion ratio in the treatment fed with a diet containing 3 mg/kg selenium were significantly different from the control (p<0.05). There was no significant difference in the survival index between the investigated treatments and the control group (p>0.05). The effect of adding selenium on the chemical composition showed a significant difference in the level of carcass protein (p<0.05). The highest value related to treatment 4 (18.20±0.57 %) and the lowest value related to control group (16.47±0.16 %). In the treatments fed with selenium, a decrease in rainbowtrout fat was seen, which was significantly different from the control group (p<0.05). The moisture and ash levels in the control group were not significantly different from other treatments (p>0.05). The highest effect of selenium on growth was related to treatment 4 (3 mg/kg of selenium), but there was a significant difference with treatment 3 (1.5 mg/kg selenium) did not have (p>0.05). Overall, the results of this research showed the positive effect of adding 3 mg/kg selenium to the diet on the growth indices and improving the chemical composition of the rainbow trout. 95 105 2022/05/182021/11/242022/11/92022/10/222022/07/132023/01/152023/04/12022/02/16 1400/11/27 2023/03/302023/07/12023/07/12023/07/12023/07/12023/07/12023/06/112023/07/1 1402/4/10 سمیه کیانی شاهوندی somaih kiani shahwandi گروه شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد اهواز، اهواز، ایران. Iran kiani.s@na.iut.ac.ir ابوالفضل عسکری ساری abolfazl askari sari گروه شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد اهواز، اهواز، ایران. Iran askarysary@gmail.com مژگان خدادادی mojgan khodadady گروه بیولوژی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد اهواز، اهواز، ایران. Iran mjkhodadadi@iauahvaz.ac.ir Growth Survival Chemical composition Rainbow trout Nutrition Selenium رشد بازماندگی ترکیب شیمیایی قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان تغذیه سلنیوم ##Abdel‐Tawwab, M. and Wafeek, M., 2010. Response of Nile tilapia, Oreochromis niloticus (L.) to environmental cadmium toxicity during organic selenium supplementation. Journal of the World Aquaculture Society, 41(1):106-114. Doi: 10.1111/j.1749-7345.2009.00317.x.##Abdel-Tawwab, M., Mousa, M.A. and Abbass, F.E., 2007. Growth performance and physiological response of African catfish, Clarias gariepinus (B.) fed organic selenium prior to the exposure to environmental copper toxicity. Aquaculture, 272(1-4:.335-345. Doi:10.1016/j.aquaculture.2007.09.004.##Adeli, A. and Ojagh, S.M., 2018. Evaluation of chemical composition, color change and fillet yield with increase weight of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Utilization and Caltivation of Aquatic, 7(2): 2-12. Doi:20.1001.1.2345427.1397.7.2.3.4.##Adeyeye, E.I. and Adubiaro, H.O., 2004. Chemical composition of shell and flesh of three prawn samples from Lagos lagoon. Journal of the Science of Food and Agriculture, 84(5): 411-414. Doi:10.1002/jsfa.1649.##Akrami, R., Ghelichi, A. and Gharae, A., 2010. The use of prebiotics in aquaculture. Journal of Fisheries, 4(1): 77-84.##Ali, M., Miraghefi, A., Porbagher and Asadichamnani, F., 2014. The study of the effect of vitamin E, selenium and C supplements on antioxidant defense activity and lipid peroxidation index of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in the face of subacute concentration of diazinon. Journal of Applied Fisheries Research, 2(1): 92-75.##AOAC (Association of Official Analytic Chemists), 1990. Official methods of analysis.18th ed. Washington DC. 1018 P. ## ##Ashouri, S., Keyvanshokooh, S., Salati, A.P., Johari, S.A. and Pasha-Zanoosi, H., 2015. Effects of different levels of dietary selenium nanoparticles on growth performance, muscle composition, blood biochemical profiles and antioxidant status of common carp (Cyprinus carpio). Aquaculture, 446(3):25-29. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2015.04.021.##Askarysary, A. and Velayatzadeh,M., 2011. Measurement and comparison of the chemical composition of the muscle of two species of western white shrimp (Litopenaeus vannamei) and Indian white shrimp (Penaeus indicus) farmed in Iran. Veterinary and Laboratory Journal, 3:117-124. Doi:10.22075/JVLR.2017.835.##Baboli, M.J., Velayatzadeh, M. and Branch, A., 2013. Determination of heavy metals and trace elements in the muscles of marine shrimp, Fenneropenaeus merguiensis from Persian Gulf, Iran. Journal of Animal and Plant Sciences, 23(3): 786-791.##Bagenal, T., 1978. Methods for assessment of fish production in fresh waters.Blackwell Scientific Publication, Oxford, 365 P.##Bunglavan, S.J., Garg, A.K., Dass, R.S. and Shrivastava, S., 2014. Effect of supplementation of different levels of selenium as nanoparticles/sodium selenite on blood biochemical profile and humoral immunity in male Wistar rats. Veterinary World, 7(12) :1075-1081. Doi:10.14202/vetworld.2014.1075-1081.##Cotter, P., 2006. Dietary selenium in cultured hybrid striped bass .Doctoral dissertation, Virginia Tech.109P.##Dietz, C., Landaluze, J.S., Ximénez-Embún, P., Madrid-Albarrán, Y. and Cámara, C., 2004. Volatile organo-selenium speciation in biological matter by solid phase microextraction–moderate temperature multicapillary gas chromatography with microwave induced plasma atomic emission spectrometry detection. Analytica Chimica Acta, 501(2):157-167. Doi: 10.1016/j.aca.2003.09.027.##Elia, A.C., Prearo, M., Pacini, N., Dörr, A.J.M. and Abete, M.C., 2011. Effects of selenium diets on growth, accumulation and antioxidant response in juvenile carp. Ecotoxicology and Environmental Safety, 74(2): 166-173. Doi: 10.1016/j.ecoenv.2010.04.006.##Esmaili Sari, A., 2002. Pollution, Health and Environmental Standards. Naghshmehr Publisher,Tehran,767P.##FAO, 2020. Food and Agriculture Organization of the United Nations, 110 P. https://doi.org/10.4060/cb7874t.##Fazaeli, H., 2009. Methods of Study Upon Minerals in Animal Nutrition. Journal of research and construction, 74(36):150-152. Doi. 10.22092/vj.1995.112608.##Forster, I., Higgs, D.A., Dosanjh, B.S., Rowshandeli, M. and Parr, J., 1999. Potential for dietary phytase to improve the nutritive value of canola protein concentrate and decrease phosphorus output in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) held in 11 C fresh water. Aquaculture, 179(4): 109-125. Doi: 10.1016/S0044-8486(99)00156-8.##Gaber, M.M., 2009. Efficiency of selenium ion inclusion into common carp (Cyprinus carpio L.) diets. African Journal of Agricultural Research, 4(4):348-353. Doi: 10.5897/AJAR.9000280.##Garduño‐Lugo, M., Herrera‐Solís, J.R., Angulo‐Guerrero, J.O., Muñoz‐Córdova, G. and De la Cruz‐Medina, J., 2007. Nutrient composition and sensory evaluation of fillets from wild‐type Nile tilapia (Oreochromis niloticus, Linnaeus) and a red hybrid (Florida red tilapia× red O. niloticus). Aquaculture Research, 38(10):1074-1081. Doi: 10.1111/j.1365-2109.2007.01773.x##Iqbal, S., Atique, U., Mahboob, S., Haider, M.S., Iqbal, H.S., Al-Ghanim, K.A., Al-Misned, F., Ahmed, Z. and Mughal, M.S., 2020. Effect of supplemental selenium in fish feed boosts growth and gut enzyme activity in juvenile tilapia (Oreochromis niloticus). Journal of King Saud University-Science, 32(5):2610-2616. Doi: 10.1016/j.jksus.2020.05.001.##Karimzadeh, J., Keramat, A., Abedian Kenari, A. and Karimzadeh, G., 2012. Interactions of dietary selenium and fat on fatty acid compositions of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Iranian Scientific Fisheries Journal, 20(4):107-116.##Khan, K.U., Zuberi, A., Nazir, S., Ullah, I., Jamil, Z. and Sarwar, H., 2017. Synergistic effects of dietary nano selenium and vitamin C on growth, feeding, and physiological parameters of mahseer fish (Tor putitora). Aquaculture Reports, 5)6(:70-75. Doi: 10.1016/j.aqrep.2017.01.002.##Kojouri, G.A. and Sharifi, S., 2013. Preventing effects of nano-selenium particles on serum concentration of blood urea nitrogen, creatinine, and total protein during intense exercise in donkey. Journal of Equine Veterinary Science, 33(8):597-600. Doi: 10.1016/j.jevs.2012.09.008##Le, K.T. and Fotedar, R., 2014. Bioavailability of selenium from different dietary sources in yellowtail kingfish (Seriola lalandi). Aquaculture, 420:(10)57-62. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2013.10.034##Lovell, T., 1989. Nutrition and feeding of fish (Vol. 260). New York: Van Nostrand Reinhold.##Nastova, R., Gjorgovska, N. and Kostov, V., 2014. Selenium supplementation in fish nutrition. AgroLife Scientific J, 3(1):32-45##Parvane,V., 1998. Quality control and chemical tests of food.Tehran University Publications,325 P.##Rehbein, H. and Oehlenschlager, J., 2009. Fishery products quality safety and authenticity. John Wiley and Sons Publishing, 4-10. https://doi.org/10.1080/10498850.2010.513326.##Rehbein, H. and Oehlenschlager, J., 2010. Fishery Products—Quality, Safety and Authenticity. Journal of Aquatic Food Product Technology,19(3): 318-325.## Doi: 10.1080/10498850.2010.513326.##Rodne, N., Gjorgovska, N. and Kostov, V., 2014. Selenium supplemention in fish nutrition. Agro Life Scientific Journal, 3(1): 103-107.##Safabakhsh, M. and Bahri, A.H., 2019. The effect of selenium on growth indices, carcass composition and some blood indices of elephants (huso huso). Aquaculture Development Journal, 13(1): 89-101 Doi: 20.1001.1.23223545.1398.13.1.6.7.##Schwarz, K., 1976. Essentiality and metabolic functions of selenium. Medical Clinics of North America, 60(4): 745-758. Doi:10.1016/s0025-7125(16)31858-2.##Shaghayeghpor, A., 2019. Investigating the effects of replacing canola meal instead of fish meal on the growth of carcass chemical composition and biochemical parameters in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). PhD thesis. ##Sinka Karimi, M.H., Hassanpour, M. and Ahmadpour, A., 2014. Concentration of Selenium and Vanadium in Clupeonella cultiventris caspia and Alosa caspia and their consumption risk assessment from southern coast Caspian Sea. Zanco Medical Journal, 15(47): 1-9.##Statistical Yearbook of Iranian Fisheries, 2015-2020. Iranian Fisheries Organization. Program and Budget Office, Deputy Planning and Resource Management, IranIran, Tehran. 35 P.##Tarsoli, A., Esmaeli sary, A. and Valinasab, T., 2012. Investigating the bioaccumulation of mercury and its relationship with selenium in the muscle tissue and liver of the thresher shark (Rhizoprionodon acutus). Environmental Journal, 38(3):37-46. Doi:10.22059/jes.2012.29147.##Wang, L., Sagada, G., Wang, R., Li, P., Xu, B., Zhang, C., Qiao, J. and Yan, Y., 2022. Different forms of selenium supplementation in fish feed: The bioavailability, nutritional functions, and potential toxicity. Aquaculture, 549:737-819. Doi: 10.1016/j.aquaculture.2021.737819##Wangkahart, E., Bruneel, B., Chantiratikul, A., de Jong, M., Pakdeenarong, N. and Subramani, P.A., 2022. Optimum dietary sources and levels of selenium improve growth, antioxidant status, and disease resistance: Re-evaluation in a farmed fish species, Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Fish & Shellfish Immunology, 121(2):172-182. Doi:10.1016/j.fsi.2021.12.003##Zhou, X., Wang, Y., Gu, Q. and Li, W., 2009. Effects of different dietary selenium sources (selenium nanoparticle and selenomethionine) on growth performance, muscle composition and glutathione peroxidase enzyme activity of crucian carp (Carassius auratus gibelio). Aquaculture, 291(1-2):78-81. Doi:10.1016/j.aquaculture.2009. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ ارزیابی الگوی مکانیزاسیون در مزارع منتخب دومنظوره استان مرکزی Evaluating the level of mechanization in the selected dual-purpose farms of Central Province 1 1 این تحقیق با هدف بررسی کارآیی وضعیت مکانیزاسیون بر بهره‌وری انرژی در مزارع دو منظوره کشاورزی پرورش ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان استان مرکزی انجام شد. این تحقیق به روش میدانی و از طریق تحلیل داده‎های پرسش‎نامه‎ای در خصوص وضعیت مکانیزاسیون در مزارع این استان انجام شد. بدین‌منظور، بعد از طراحی پرسش‎نامه‎ها، اطلاعات ورودی‎ها شامل مساحت کشت و تجهیزاتی مانند غذاپاش، الکتروپمپ‎ها، کف‎کش، دیزل ژنراتور و هواده‎ها از 5 شهرستان استان مرکزی شامل 30 واحد تولیدی که دارای بیشترین سهم تولید ماهی قزل‌آلا بودند، جمع‎آوری شد. سپس خروجی‎ها شامل درجه، ظرفیت و ضریب مکانیزاسیون، راندمان تولید، ظرفیت تولید و کارایی انرژی با مدلسازی چند ورودی – خروجی و تحلیل پوششی داده‎ها (DEA) محاسبه شدند. نتایج نشان داد، واریانس درجه مکانیزاسیون در مزارع این استان 96/0 می‎باشد. همچنین با در نظر گرفتن سطح شاخص کارایی مطلوب 1 برای مزارع مشاهده شد که 40 درصد از مزارع استان در وضعیت مطلوب قرار دارند. نتایج بررسی عملکرد هر یک از واحدها بر حسب شاخص کارایی انرژی نیز نشان داد که صرفاً 20 درصد از مزارع استان دارای شاخص کارایی بالاتر از 4/0 و 80 درصد دارای بهره‌وری انرژی کمتر از 1 هستند. نتایج بیانگر این نکته است که الگوی توزیع مکانیزاسیون در همه مزارع استان به صورت یکنواخت نبوده و نیازمند بهبود است. 2 This research was conducted with the aim of investigating the effectiveness of the mechanization status on energy efficiency in the dual-purpose farms of rainbow salmon breeding in the central province. This research was conducted by field method and through the analysis of questionnaire data regarding the state of mechanization in the farms of this province. For this purpose, after designing the questionnaires, the input information includes the area of cultivation and equipment such as feeding system, electric pumps, drainage pump, diesel generators and fans. The farms have been selected from 5 cities of Central Province, including 30 production units that have the largest share. Then the outputs, including degree, capacity and mechanization level, as well as production efficiency, production capacity, and energy efficiency were calculated by multi-input-output modeling and data envelopment analysis (DEA). The results showed that the variance of the degree of mechanization in the farms of this province is 0.96. Also, considering the optimal efficiency index level of 1 for farms, it was observed that 40% of farms in this province are in a favorable condition. The results of examining the performance of each unit in terms of energy efficiency index also showed that only 20% of farms in the province have an efficiency index higher than 0.4, and 80% have an energy efficiency of less than 1. The results show that the distribution pattern of mechanization in all farms of the province is not uniform and needs to be improved. 107 117 2022/05/182021/11/242022/11/92022/10/222022/07/132023/01/152023/04/12022/02/162023/01/28 1401/11/8 2023/03/302023/07/12023/07/12023/07/12023/07/12023/07/12023/06/112023/07/12023/07/1 1402/4/10 کامیار غرا Kamyar Gharra سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran kamyar.gharra75@gmail.com محمود حافظیه mahmood Hafeziyeh سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور Iran jhafezieh@ifro.ir علی نکوئی فرد Ali Nekooe fard مرکزتحقیقات آرتمیای کشور Iran dr.nekuiefard@gmail.com مسعود صیدگر Masoud seidgar معاون تحقیقاتی مرکز تحقیقات آرتمیای کشور-ارومیه Iran seidgar21007@yahoo.com Aquaculture Mechanization pattern Efficient level Markazi Province آبزی پروری الگوی مکانیزاسیون سطح کارامدی استان مرکزی ##Almasi, K., Kiani, Sh. and Lavimi, N., 2001. Mechanization in agriculture (principles and usage). Andishe Moaser Publications, 1-308. ISSN: 9789649812854 [inFarsi].##Aryal, J.P., Rahut, D.B., Thapa, G. and Franklin, S., 2021. Mechanization of small scale farms in south Asia: Emperical evidence derived from household surveys. Journal of Technology in Science, 65: 1-14. Doi: 10.1016/j.techsoc.2021.10159##Bagheri, N., 2006. Examining the evolution of agricultural machinery in the world and estimating the number of developments until 2020 AD, the 4th National Congress of Agricultural Machinery Engineering and Mechanization, Tabriz University, 1-2 September, 1-10 [in Persian].##Behrouzilar, M., 2001. Management of tractors and agricultural machines, Tehran University Press, 1-452 [in Persian].##Davies, R.M., Inko-Tariah, M.B. and Bekibele, D.O., 2008. The Mechanization of Fish Farms in Rivers State, Nigeria. World Applied Sciences Journal, 3(6), 926-929. Doi:10.1016/j.foodpol.2021.102095.##Dejand, M., 2012. Tools and equipment used for the mechanization of fish farms, management of coordination of agricultural promotion in Kerman province, 1-7 [in Persian].##Farahani, R., 2015. Trout breeding guide, Agricultural Research, Education, and Extension Organization (AREEO), Fisheries Sciences Research Institute (IFSRI), 1-20, [in Persian].##Ghavampour, A., 2020. Basics of mechanization and structure modification in shrimp farms, Shrimp Sciences Research Institute, 1-46, [in Persian].##Khanjani, M. and Yazdanpanah, K., 2009. Increasing production per surface unit in fish farms using mechanization, the first national conference of cold water fish, Tonkabon, Mazandaran, 22-24 April, 1-6 [in Persian]. ##Marzban, A. and KhajehNadeh, M., 2016, Review and comparison of new aquaculture systems, the second conference on new findings in the environment and agricultural ecosystems, 2nd Conference on New Finding in Environment and Agricultural Ecosystems, September 20, Tehran, Iran, 1-6, [in Persian].##Nafisi Behabadi, M., 2006. Getting to know the economic justification of breeding cold water fish. Publications of the Vice-Chancellor of Aquatic Breeding and Breeding of Fisheries of Iran, Publications of the Iranian Fisheries, General Directorate of Education and Extension, 1-89, [in Persian]. ##Nafisi Behabadi, M., 2008. A practical guide to raising rainbow trout. Hormozgan University Press, 2, 1-365, [in Persian]. ##Nafisi Behabadi, M., Jalali, B. and Vilaki, A., 1998. The principles of Trout farming in water storage ponds and agricultural channels, Iranian Fisheries Sciences Research Institute (IFSRI), 1-70, [in Persian].##Oladimeji, Y., Adepoju, S.A., Yusuf, H.O. and Yusuf, S., 2018. Energy efficiency improvement in fish production systems in Oyo state, Nigeria: a path towards sustainable protein supply. Nigerian Journal of Agricultural Extension, 19: 71-82. Doi: 10.1016/j.indic.2023.100231.##Sarkar, B., Mohapatra, B.C., S.K., Singh, Majhi, Sarangi, D.N. and Tiwari, G.N., 2007. Impact on Energy Consumption in Greenhouse Fish Production. Asian Journal of Agricultural Research, 1: 74-79. Doi: 10.3923/ajar.2007.74.79.##Yaghoubi, M. and Mohseni, M., 2014. An Investigation of Production and Efficiency Factors in Trout Farms in Province Fars, Iran, Journal of new technologies in Aquaculture development, 8 (2), 1-19, [in Persian].##Younesi M., Mohseni, S., and Pahlevani, M., 2013. Determination of energy efficiency indicators in salmon farming (Alborz province), The 8th National Congress on Agr. Machinery Eng. (Biosystem) & Mechanization of Iran, Mashhad, 1-14. ##

مقاله علمی – پژوهشی:‌ ارزیابی کمی و کیفی آلاینده‌‌های ورودی و خروجی مزارع پرورش ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان در مزارع منتخب استان مازندران Quantitative and qualitative assessment of the inlet and outlet pollutants of selected rainbow trout breeding farms in Mazandaran Province 1 1 این مطالعه به کیفیت آب ورودی و خروجی پنج کارگاه منتخب پرورش ماهی قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان در استان مازندران (هراز، چالوس، تنکابن و ساری) براساس پارامترهای محیطی طی چهار فصل  طی سال‌‌های 1401-1400پرداخت. 40 نمونه آب بر اساس روش‌‌های استاندارد اندازه‌گیری شد. طبق نتایج، دامنه تغییرات شامل دمای آب (0/24-0/3 درجه سانتی‌‌گراد)، دمای هوا (0/25-0/2 درجه سانتی‌‌گراد)، DO (24/12-16/6 میلی‌‌گرم بر لیتر)، BOD5 (76/2-24/0 میلی‌‌گرم بر لیتر)، COD (70/93-40/2 میلی‌‌گرم بر لیتر)، EC (783-284 میکروزیمنس ‌‌بر سانتی‌متر)، کدورت (0/220-12/1 نفلومتری)، TSS (288-2 میلی‌‌گرم بر لیتر)، pH (62/8-44/7)، فسفرکل (12/2-20/0 میلی‌‌گرم بر لیتر)، فسفات (206/0-01/0 میلی‌‌گرم بر لیتر)، آمونیم (538/0-012/0 میلی‌‌گرم بر لیتر)، آمونیاک (018/0-001/0 میلی‌‌گرم برلیتر)، نیتریت (426/0-001/0 میلی‌‌گرم بر لیتر)، نیترات (10/6-52/0 میلی‌‌گرم بر لیتر)، تعداد کلیفرم مدفوعی (CFU/100ml1000-6) و شاخص کیفیت آب (WQIIR) (0/91-0/62) بود. کیفیت آب این رودخانه براساس میانگین پارامترهای آلودگی آلی (BOD5 و COD) در کلاسIII (آلودگی کم) قرار گرفت و فعالیت‌‌های انسانی، یکی از عوامل اصلی در افزایش مواد آلی رودخانه نبود. غلظت آمونیم و نیتریت در حد مجاز کیفیت رودخانه بوده اما غلظت فسفات در تمام ایستگاه‌‌های ورودی و خروجی و فصول مختلف بیش از حداکثر مجاز رودخانه‌‌های عاری از آلودگی بود. براساس نتایج مقادیر شاخص کیفیت آب را در محدوده 91-62 را نشان داد. 5/7 درصد از کل داده‌‌ها و نیز میانگین کل این شاخص بیانگر کیفیت نسبتاً خوب آب ورودی و خروجی کارگاه‌های پرورش ماهی بود. بالاترین کیفیت آب (کیفیت بسیارخوب)، در 5/12 درصد از داده‌‌ها ثبت شد که عمدتاً در ورودی‌های کارگاه‌‌های پرورش ماهی مشاهده شد. اگرچه شاخص کیفیت خروجی کارگاه ها کمتر از ورودی آن بوده است، اما در طبقه کیفیت خوب قرار گرفتند. به ‌‌طور کلی، میانگین WQIIR (6/6±4/77) در کل ایستگاه‌های ورودی و خروجی بیانگر آن است که آب این کارگاه‌های پرورش ماهی، برای پرورش ماهی و حیات وحش و برای پرورش قزل‌‌آلای رنگین‌‌کمان نیز مناسب است. 2 The aim of the study was to determine the quality of the inlet and outlet water of five selected rainbow trout breeding farms in Mazandaran Province (Haraz, Chalous, Tonekabon, and Sari) based on environmental parameters during four seasons in 2021-2022. Forty samples were collected and measured based on standard methods. According to the results, the range of water temperature (3.0-24.0°C), air temperature (2.0-25.0°C), DO (6.16-12.24 mg/l), BOD5 (0.24-2.76 mg/l), COD (2.40-93.70 mg/l), EC (284-783 µs/cm), turbidity (1.12-220-0 NTU), TSS (2-288 mg/l), pH (7.44-8.62), total phosphorus (0.2-2.12 mg/l), phosphate (0.01-0.206 mg/l), ammonium (0.012-0.538 mg/l), ammonia (0.001-0.018 mg/l), nitrite (0.001-0.426 mg/l), nitrate (0.52-6.10 mg/l), fecal coliform count (6-1000 CFU/100ml) and water quality index (WQIIR) (62.0-91.0) were registered. The water quality of this river was placed in class III (low pollution) based on the average parameters of organic pollution (BOD5 and COD) and human activities were not one of the main factors in the increase of organic matter in the river. The concentration of ammonium and nitrite was within the threshold limit, but the concentration of phosphate in all the inlet and outlet stations and in different seasons was more than the maximum limit of unpolluted rivers. The results showed that the WQIIR was in the range of 62-91. 7.5% of the total data and the mean of this index indicated the relatively good quality of the inlet and outlet water of the rainbow trout breeding farms. The highest quality of water, i.e. very good quality, is recorded in 12.5% of all data, which is observed at the inlet water of rainbow trout breeding farms. The outlet quality index of the farms was lower than its inlet, but it was categorized as good quality. The overall WQIIR (77.4±6.6) in all inlet and outlet stations indicates that the water of this farm is suitable for fish and wildlife and also suitable for rainbow trout breeding. 119 134 2022/05/182021/11/242022/11/92022/10/222022/07/132023/01/152023/04/12022/02/162023/01/282023/03/28 1402/1/8 2023/03/302023/07/12023/07/12023/07/12023/07/12023/07/12023/06/112023/07/12023/07/12023/03/30 1402/1/10 حسن نصراله زاده ساروی Hassan Nasrollahzadeh saravi پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران Iran hnsaravi@gmail.com محمود حافظیه Mahmoud Hafezieh موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران Iran jhafezieh@yahoo.com ارژنگ جوادی Arzhang Javadi موسسه تحقیقات فنی و مهندسی کشاورزی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران Iran email2arzhang@yahoo.com رضا صفری Reza Safari پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران Iran safari1351@gmail.com مریم قیاسی Maryam Ghiasi پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران Iran ghiasimaryam4@gmail.com آسیه مخلوق Asieh Makhlough پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران Iran asieh_makhlough@yahoo.com مهدیه بالوئی Mahdieh Baloei پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران Iran m.baloei70@gmail.com علی نکوئی فرد Ali Nekuiefard مرکز تحقیقات آرتمیای کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ارومیه، ایران Iran dr.nekuiefard@gmail.com محمد میثم صلاحی اردکانی Mohamd meysam Salahi مرکز تحقیقات ژنتیک و اصلاح نژاد ماهیان سردابی کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، یاسوج، ایران Iran mmsalahi.a@gmail.com ایوب داودی لیمونی Ayob Davodi پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران Iran ayobdavodi@yahoo.com Environmental parameters Water quality Rainbow trout breeding farms Mazandaran Province پارامترهای محیطی کیفیت آب کارگاه‌های پرورش قزل‌آلا استان مازندران ##APHA (American Public Health Association), 2017. Standard Methods for the Examination of water and Wastewater, American Public Health Association, Seventeenth Edition. 1113 P.##Bash, J., Berman, C. and Bolton, S., 2001. Effects of Turbidity and Suspended Solids on Salmonids. Final Research Report Research Project T1803, Task 42. Washington State Transportation Commission. USA, 173 P.##CEC (Commission of European Communities),1978. Council Directive of 18 July 1978 on the quality of fresh waters needing protection or improvement in order to support fish life, (78/659/EEC). Official Journal, L/222, 1-10.##Clabby, K.J., Bowman, J.J., Lucey, J., McGarrigle, M.L. and Toner, P.F., 1992. Water Quality in Ireland 1987-1990. Environmental Research Unit, Dublin. 189 pp.##EPA (Environmental Protection Agency), 2013. National Rivers and Streams Assessment 2008–2009: A Collaborative Survey (Draft). Washington, DC: office of Wetlands, Oceans, and Watersheds, Office of Research and Development, U.S. Environmental Protection Agency (28 February 2013). Available: http://goo.gl/HHa3PH [accessed 29 October 2014]. 131 P.##EPA (Environmental Protection Agency), 2014. Nutrient Pollution > The Problem [website]. Washington, DC: office of Water, U.S. Environmental Protection Agency (updated 16 March 2014). Available: http://www2.epa.gov/nutrientpollution/problem [accessed 29 October 2014]. 24 P.##FAO (Food and Agriculture Organization), 1992. Aquaculture Production, 1984-1990. Fisheries Circular No. 815, Rome. 206 P. ##GEF (Global Environmental Facility), 2006. Water Quality in the Kura-Aras River Basin, RER/03/G41/A/1G/31: Reducing Trans-boundary Degradation of the Kura-Aras River Basin, 45 P.##Hafezieh, M. and Farabi M., 2018. Determination of effective parameters on final cost of rainbow trout production in marine cage culture of Mazandaran province. Journal of Iranian Fisheries Science, 27(5):11-18. DOI:10.22092/ISFJ.2018.117857. (in Farsi)##House, M.A. and Ellis, J.B., 1987. The Development of Water Quality Indices for Operational Management, Water Science Technology, 19(9):145-154.##Maitera, O.N., Ogugbuaja, V.O. and Barminas, J.T., 2010. An assessment of the organic pollution indicator levels of River Benue in Adamawa State, Nigeria. Journal of Environmental Chemistry and Ecotoxicology, 2(7):110-116.##Mirzajani, A.R., 2010. Study on Tudehbin dam of Zanjan province in due to aquaculture activity. Iranian Fisheries Science Research Institute: 4-73-12-89053. (in Farsi)##Mohebbi, M., Azam vaghefi, K., Montazeri, A., Abtahi, M., Oktahi, S., Gholamnia, R., Aliasgari, F., and Saeedi, R., 2013. Development of a modified drinking water quality index (MDWQI) and its application for assessing water quality in groundwater resources of Iran. Iranian Journal of Health and Environment, 6(2): 187-200. DOI: 20.1001.1.20082029.1392.6.2.7.5. (in Farsi)## ##Nasiri, R., 2009. SPSS17 step by step tutorial. Nashar Gostar publisher. Tehran, 344 pp. (in Farsi)##Prasad, B.S.R.V., Srinivasu, P.D.N., Sarada Varma, P., Raman, A.V. and Santanu, R., 2014. Dynamics of Dissolved Oxygen in Relation to Saturation and Health of an Aquatic Body: A Case for Chilka Lagoon, India. Journal of Ecosystems, 17 P##DOI: org/10.1155/2014/526245.##Sapozhnikov, V.N., Agativa, A.E., Arjanova, N.V., Nalitova, E.A., Mardosova, N.V., Zobarowij, V.L. and Bandarikov, E.A., 1988. Methods of hydrochemical analysis of the major nutrients. VNIRO publisher: Moscow, Russia. 150 P.##UNECE (United Nations Economic Commission for Europe), 1994. Standard Statistical Classification of Surface Freshwater Quality for the Maintenance of Aquatic Life. In: Readings in International Environment Statistics, United Nations Economic Commission for Europe, United Nations, New York and Geneva. 53-64.##USEPA (United States Environmental Protection Agency), 1978. Water quality indices: A survey of indices used in the United States, Washington, D.C.20460, USA. 138 pp.##USEPA (United States Environmental Protection Agency), 2000. National Nutrient Guidance for Anon Rivers and Streams. http://www.epa.gov/ost/criteria/nutrient/guidance/rivers/index.html (accessed February, 2003). 10 P.##Vowels, P.D. and Connel, D.W., 1980. Experiments in Environmental Chemistry. Pergamen Press, New York, 78 P. ##